SU1470765A1 - Способ получени субкультуры клеток человека и животных - Google Patents
Способ получени субкультуры клеток человека и животных Download PDFInfo
- Publication number
- SU1470765A1 SU1470765A1 SU874291323A SU4291323A SU1470765A1 SU 1470765 A1 SU1470765 A1 SU 1470765A1 SU 874291323 A SU874291323 A SU 874291323A SU 4291323 A SU4291323 A SU 4291323A SU 1470765 A1 SU1470765 A1 SU 1470765A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- cells
- monolayer
- culture
- subculture
- animal cells
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к технике культивировани клеток дл организма и может найти применение в биологии и медицине. Целью изобретени вл етс повышение жизнеспособности субкультуры. Дл этого в состав культуральной питательной среды ввод т сыворотку крови собаки и после образовани моносло культуру помещают в холодильник при 4-6°С НА 12-24 Ч. В РЕЗУЛЬТАТЕ ЭТОГО МОНОСЛОЙ ПОЛНОСТЬЮ ОТДЕЛЯЕТСЯ ОТ ПОДЛОЖКИ, И ПОСЛЕ ПИПЕТИРОВАНИЯ ОБРАЗУЮТСЯ МЕЛКИЕ КЛЕТОЧНЫЕ АГРЕГАТЫ, ПРОЦЕНТ ЖИВЫХ КЛЕТОК В КОТОРЫХ ПО ТРИПАНОВОЙ ПРОБЕ СОСТАВЛЯЕТ 95-99%.
Description
Изобретемте относитс к технике культивировани клеток вне организма и. может найти применение в биологии и медицине.
Целью изобретени вл етс повышение ж.изнеспособности и сохранение нормальных функций клеток.
Пример. Эндотелиальные клет- ; ки аорты взрослой собаки выдел ют механическим соскабливанием их скальпе- - лем со стороны интимы. Клеточные агрегаты размельчают пипетированием в среде Игла MEM и центрифуг-ируют, Клетки ресуспендируют в 10 мл питательной ;Среды Игла MEM и разливают по 5 мл в два фпакона Фалкон. Причем в один :из них внос т 20% эмбриональной сыво- ротки коровы (контрольна культура Ь другой - 20% собачей сыворотки (опытна культура). Смену питатель- ных сред на соответствующие производ т через 2-3 суток. Через 12 суток культивировани при в обоих флаконах образовалс монослой эндотедиальных клеток с типичной морфало гией - булыжной мостовой. Затем куаьтуры помещают в термостат Ц-1241М с температурой 6°С. Через 24 ч культуры вы- нимают из термостата-холодильника и . просматривают под шткроскопом. В кон- трольной культуре моноспой IOICTOK остаетс прочно прикрепленным к подпож- -ке, тогда как в культуре с 20% собачьей сыворотки монослой полностью от- :дел етс от подложки и плавает в среде В виде пленки размером 547 см. После энергичной тр ски флакона с: клeтoч |ной пле1жой и последующего ггапетирова- ци образовываютс небольшие агрега- ты, содержащие в среднем по 5-15 клеток , которые пересеваютс в свежую среду Игла с 20% собачьей сыворотки в соотношении 1:6.
Часть клеток при этом используют дл оценки их жизнеспособности посредством окраски трипановым синим.Количество сизнеспособных (т.е. непоглотивших краситель) клеток в исходной
сд
успензии составл ет 95%. Через 4-5 ч осле помещеда культуры в термостат ри 37°С практически все клетки прикепл ютс к подложке и распластывают- j
.
Дл отделени клеток от подложки в.контрольной культуре используют ,1%-ный раствор трипсина в солевом уфере. В результате получают суспен- ю зию единичных клеток, котора также пересеваетс в соотношении 1:6 в среду Игла +20% эмбриональной сыворотки коровы. Окрашивание пробы этих клеток трипановым синим показывает, что коли-15 чество жизнеспособных клеток не превышает 80%, а врем прикреплени их к подложке и распластывани более 12 ч. Дальнейшее пассирование контрольной и опытной субкультур известным и 20 предлагаемым способом (т.е. без использовани ферментов) показывает, что после четвертого пересева эндоте- лиапьные клетки в контрольной культуре резко снижают скорость роста и сре-25 ди них по вл ютс аномальные гигантские клети, тогда как в опытной культуре изменений клеток по этим характеристикам не происходит. После п того пересева клетки в контрольной культу-: зо ре полностью дегенерируют, тогда как опытна культура пересеваетс восемь раз без каких-либо заметных изменений в скорости роста и морфологии.
П р и м е р 2. Перевиваемые фибро- j бласты мьшш линии ШН выращивают в , среде 199 + 10% .бычьей сыворотки до образовани моносло . Обработкой моносло этих клеток раствором 0,25% трип- сина получают суспензию фибробластов 40 в среде 199. Полученную суспензию клеток NIH. плотностью 35 тыс/мл помещают в шесть флаконов Каррел по 7 мл в
каждый.
В три из них добавл ют 10% бычьей 45 сыворотки (контрольньш культуры), в три других - 5% бычьей сыворотки плюс 5% собачьей сыворотки (опытные культуры ) и их помещают в термостат при . Периодически культуры просматри- р вают под микроскопом. В опытных культурах образование моносло происхо- дат через 3,5-4 суток, в контрольных - на 4,5-5 сутки..После образовани моносло опытные культуры помещают в термостат . Через 12 ч нахождени при в опытных культурах отмечают значительные участки отслоившегос от
подложки моносло и после встр хивани флаконов происходит его полное открепление . Посредством пипётировани клеточные пленки разбивают до образовани суспензии агрегатов в среднем по 3- 10 клеток в каждом. Окрашивание этой суспензии показывает, что 98% клеток жизнеспособны. Врем их распластывани на подложке после посева в свежую среду составл ет 1,0-1,5 ч в обоих типах сред.
В контрольных культурах отделение клеток провод т обработкой их моно- сло смесью трипсин-версена в соотношении 1:4. Количество жизнеспособных клеток по трипановой пробе составл ет 82%. Врем распластывани фибробластов после пересева составл ет от 1,5 до 2,5 ч.
П р и м е р 3. Фибропласты линии ВНК-21 культивируют до образовани моносло и затем обрабатывают раствором 0,25% трипсина с целью получени суспензии единичных клеток. Полученные клетки высевались в среду Игла MEM в два флакона Каррел . В один из них добавл ют 10% бычьей сыворотки в другой -5% бычьей сыворотки +5% сыворотки собаки. Через 3 суток в обоих культурах фибробласты образовывают монослой.. Флакон с культурой, содержащей сыворотку собаки, помещают в термостат при 5°С. Через 15 ч такой инкубации происходит полное от-- крепление клеток от стекла. После пипётировани И окраски трипановым синим устанавливают подсчетом, что 99% клеток вл ютс жизнеспособными.
Контрольна культура обрабатываетс 0,25%-ным раствором трипсина. Три- панова проба показывает, что жизне-, способными вл ютс 82% клеток.
Claims (1)
- Формула изобретениСпособ пассировани клеток человека и животных, включаощий их выращивание в среде, содержащей сыворотку крови собаки, и последующее отделение образовавшегос моносло от подложки , отлич ающий с тем, что, с целью повышени жизнеспособности и сохранени нормальных функций клеток, отделение моносло осуществл ют инкубацией культуры клеток на холоду при температуре 4-6°С в iечение 12-24 ч.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874291323A SU1470765A1 (ru) | 1987-07-29 | 1987-07-29 | Способ получени субкультуры клеток человека и животных |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU874291323A SU1470765A1 (ru) | 1987-07-29 | 1987-07-29 | Способ получени субкультуры клеток человека и животных |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU1470765A1 true SU1470765A1 (ru) | 1989-04-07 |
Family
ID=21322121
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU874291323A SU1470765A1 (ru) | 1987-07-29 | 1987-07-29 | Способ получени субкультуры клеток человека и животных |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU1470765A1 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1994003586A1 (en) * | 1992-08-05 | 1994-02-17 | Scientific Dimensions U.S.A., Inc. | A method for detaching intact cells and reducing implant rejection |
-
1987
- 1987-07-29 SU SU874291323A patent/SU1470765A1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Ryan et al. Tissue and Cell 1980, V. 12, № 4, pp. 619-635. - Graham at al. Surgery 1982, v. 91, 5, pp. 550-559.. . .. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO1994003586A1 (en) * | 1992-08-05 | 1994-02-17 | Scientific Dimensions U.S.A., Inc. | A method for detaching intact cells and reducing implant rejection |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Williams et al. | Isolation and long-term cell culture of epithelial-like cells from rat liver | |
Whitlock et al. | Murine B cell lymphopoiesis in long term culture | |
CN101374942A (zh) | 干细胞及胚胎来源的心肌细胞及推定的心肌细胞的纯化方法 | |
Rahat et al. | Cultivation of bacteria-free Hydra viridis: missing budding factor in nonsymbiotic hydra | |
CN110283777A (zh) | 一种对虾细胞连续培养方法 | |
CN108486050A (zh) | 从犬的脐带制备间充质干细胞的方法 | |
CN110684724A (zh) | 一种3d培养中华乌塘鳢精巢细胞产生精子的方法和应用 | |
JPS6219840B2 (ru) | ||
CN111269877B (zh) | 一种着床前无透明带胚胎聚合及体外培养的方法 | |
SU1470765A1 (ru) | Способ получени субкультуры клеток человека и животных | |
Adams et al. | Growth and maintenance of the canine venereal tumor in continuous culture | |
US6140118A (en) | Avian blastodermal cell lines | |
Freed et al. | Characteristics of cell lines from haploid and diploid anuran embryos | |
CN104805053B (zh) | 珍珠龙胆石斑鱼吻端组织细胞系及其构建方法、应用 | |
UA72732C2 (en) | Preparation of cells for production of biological objects. | |
CN101886059A (zh) | 用于胚胎体外生产的培养液以及牛胚胎体外生产的方法 | |
Harkey et al. | Mass isolation and culture of sea urchin micromeres | |
Lynn et al. | Development of a continuous cell line from the insect egg parasitoid, Trichogramma pretiosum (Hymenoptera; Trichogrammatidae) | |
CN113881623A (zh) | 一种利用孤雌激活的孤雌胚胎干细胞体外分化形成卵子的方法 | |
Li et al. | A Method for Tissue Culture of Hydra Cells. | |
JP2003219873A (ja) | サケ科キングサーモン由来の不死化細胞 | |
JP2002176866A (ja) | 胞子および発芽体の集塊化による海藻養殖法 | |
CN100446051C (zh) | 一种胚胎体外着床模型的建立方法及其用途 | |
Nester et al. | Antheridiogen activity of Anemia mexicana | |
RU1808010C (ru) | Штамм перевиваемых клеток ичников куколок хлопковой совки НеLIотнIS аRмIGеRа (НUвN.) дл культивировани вирусов дерного полиэдроза |