SU1089119A1 - Способ получени @ -лактамазы - Google Patents

Способ получени @ -лактамазы Download PDF

Info

Publication number
SU1089119A1
SU1089119A1 SU823516135A SU3516135A SU1089119A1 SU 1089119 A1 SU1089119 A1 SU 1089119A1 SU 823516135 A SU823516135 A SU 823516135A SU 3516135 A SU3516135 A SU 3516135A SU 1089119 A1 SU1089119 A1 SU 1089119A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
phage
lactamase
culture
plasmid
gene
Prior art date
Application number
SU823516135A
Other languages
English (en)
Inventor
Виталий Арнольдович Кордюм
Светлана Игоревна Черных
Татьяна Владимировна Сорочинская
Original Assignee
Институт Молекулярной Биологии И Генетики Ан Усср
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт Молекулярной Биологии И Генетики Ан Усср filed Critical Институт Молекулярной Биологии И Генетики Ан Усср
Priority to SU823516135A priority Critical patent/SU1089119A1/ru
Application granted granted Critical
Publication of SU1089119A1 publication Critical patent/SU1089119A1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ/ -ЛАКТАМАЗЫ путем культивировани  продуцента E., содержащего плазмиду pBR 322, с фагом, отличающийс  тем, что, с целью повышени  выхода р-лактамазы, фаг Ц ApQR внос т в культуруЕ.сое;W 3101 гее , причем используют фаг -Д. ApQR с множественностью от 1 до 20 фаговых корпускул на клетку.

Description

Изобретение относитс  к получению белковых продуктов, например ферментов из микроорганизмов, и может быть использова.но дл  получе ни  биологических активных веществ в частности фермента / -лактамазы из микроорганизмов в промьшшенных масштабах, а также дл  повышени  биосинтеза продуктов рекомбинатных молекул ДНК плазмид при тестировании экспрессии последних. Известен способ получени  биоло гически активного вещества на осно многокопийных плазмид, содержащих ген, ответственный за синтез заданного продукта. Фрагмент ДНК с генами рестриктазы и метилазы EcoR встраивают в мультикопийный вектор который обеспечивает как увеличени количества копий рекомбинатной плазмиды до 10, так и более эффективную экспрессию клонированны генов ферментов, причем плазмидна  ДНК обеспечивает повьшенньй синтез фермента в 3 раза по сравнению с исходным уровнем 1 . Недостатками данного способа  в л етс  то, что после процесса ампл ф:/сации антибиотики необходимо удал ть из культуральной среды, поэтому  вл етс  нетехнологичным. Наиболее.близким к предлагаемом  вл етс  способ получени  ( -лакта мазы, включающий выращивание культ ры E.co2ic 600, содержащей плаз идy pBR 322 и последующее введение в эту культуру фага 857 с мутаци ми в генах Q и R 2 . Недостатком известного способа  вл етс  невысокий выход фермента Цель изобретени  - повышение выхода fi -лактамазы. Поставленна  цель достигаетс  тем, что согласно способу получе и  Я -лактамазы путем культивировани  продуцента Е.соЕ содержащего плазмиду рВЕ 322, с фагом, фаг Л внос т в культуру E. VM3101 гее /f 13 вир, причем используют фаг -Д с множест венностью от 1 до 20 фаговых корпускул на клетку. Способ осуществл ют следующим образом. С помощью фага Я переключают белковый синтез с бактериальной хромосомы на геном фага и геном плазмиды. При этом в составе гено фага и в составе генома плазмиды содержитс  ген, отвечающий за синтеа интересующего нас продукта. В частности используют фаг 71 , содержащий в своем составе ген Ар, отвечающий на синтез фермента в -лактамазы , разрушающего антибиотики с 1 -лактамным кольцом, который по предлагаемому способу должен содержатьс  и в геноме плазмиды. В качестве бактериальной кyльтypы содержащей плазмиду pBR 322 и подвергающейс  заражению фагом Д с Ар-агентом, используют E.co6iW3101 гес A l39up. Используют эту культуру из-за снижени  частоты рекомбинации между гомологичными последовательност ми фага Я и плазмиды pBft 322, имеющими место в виде Ар-гена. Мутаци  в гее А-гене это условие вьшолн ет. Культуру E-coPiWaiOl гее А 13 5Up° с плазмидой pBR 322 выращивают до плотности клеток в 1 МП при 37°С и довод т до посто нной скорости роста, затем заражают фагом Д с Ар-геном в соотношении 10 фаговых корпускул на 1 бактериальную клетку, инкубируют 2,5-3 ч при , а затем инкубируют 14 15 ч при 28°Сч. Инкубирование культуры , зараженной фагом Я , при 28 С способствует замедлению лизиса клеток , так как оптимальной дл  развити  фага  вл етс  37 С. Замедление лизиса клеток способствует накоплению / -лактамазы, дл  чего используют amber-мутации в фаговых генах Q и R. Ген Q  вл етс  регул тор ым геном, отвечающим за включение поздних генов фага, среди которых находитс  и ген R, продукт которого принимает участие в лизисе бактериальной оболочки. В результате в бактериальной культуре Е,со€л W 3101 гее yap, содержащей плазмиду pBR 322, в течение 16 ч при 37 С синтезируетс  13555 ед. активности } -лактамазы (за единицу активности прин то наименьшее количество фермента, которое инактивирует ЮМ пенициллина (60 ед.) за 1 ч при 37 С в фосфатном буфере рН 6,8-7,0). В этой же бактериальной культуре, не содержащей плазмиду pBR 322, но подвергавшейс  заражению фагом Я ApQan,117 Ram курировавшейс  2,5-3 ч при , 3 а затем 14-15 ч при , синтезируетс  227796 ед активности р -лак тамазы в1 мл культуральной жидкос В бактериальной культуре E.coBi )N 3101 гее , содержащей плаз МИДУ pBR 322 и подвергавшейс  зара жению фагом , активность. Р -лактамазы после инкубировани  2,5-3 ч при , а за тем 14-15 ч при 28 С, достигает 2 млн. ед. в 1 мл. Пример. Культуру E. 3101 гее SUp° с плазмидой pBR 322 выращивают на среде Амино пептид, разведенной.О,14 М раствором NaC в соотношении 1:1 при 37С на качалке до плотности 1 Ю клеток в 1 мл. Затем эту культуру заражают фагом }( , содер жащим Ар-ген, а qmber -мутации в генах Q и R, блокирующие лизис бактериальной клетки, что в свою очередь обеспечивает более длитель ное функционирование Ар-гена. Заражение осуществл ют с множественностью 10 фаговых корпускул на 1 бактериальную клетку. Фаг получают следующим образом. Лизогенную культуру, содержащую в составе своей хромосомы нужный нам фаг, в данном случае )(. ApQ R 94 выращивают при на среде Аминопептид на качалке до плотности клеток 1 «1Сгв 1 мл. Затем эти клетки прогревают .20 мин при 43 С, в результате чего инактивируетс  фаговый репрессор благодар  t -мутации в С1-гене, и фаг начинает развиватьс  по литическому пути, через 50 мин после прогрева (термоиндукции ) при 43 С клетки лизируют , освобожда  каждые 100-200 фаговых корпускул. Если плотность клеток была 1МО° мл, то они образуют 1-2flO фаговых корпускул в 1 мл. Заражение Е. с плазмидой, выросшей до плотности 1Х10 фагом с множественностью 10 означает, что например, к 10 мл культуры надо прилить 1 МП фаговой суспензии. После внесени  фага культуру вьщерживают 2,5-3 ч при 37 С, затем культуру, зараженную фагом, инкубируют при 28 С в .течение 14 ч. Перенесение культуры с оптимальной температуры на пониженную гпосббстеует замедлению развити  фага и более длительному функционированию Ар-гена. За это врем  в 1 мл суспензии накапливаетс  до 2 млн,ед активности уЗ -лактамазы.

Claims (1)

  1. СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ft-ЛАКТАМАЗЫ путем культивирования продуцента E.CO&, содержащего плазмиду pBR 322,' с фагом, отличающийся тем, что, с целью повышения выхода р-лактамазы, фаг Ц ApQR~ вносят в культуруE.cog;W 3101 rec A'13J3up°, причем используют фаг ApQR с множественностью от 1 до 20 фаговых корпускул на клетку.
SU823516135A 1982-11-29 1982-11-29 Способ получени @ -лактамазы SU1089119A1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823516135A SU1089119A1 (ru) 1982-11-29 1982-11-29 Способ получени @ -лактамазы

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU823516135A SU1089119A1 (ru) 1982-11-29 1982-11-29 Способ получени @ -лактамазы

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU1089119A1 true SU1089119A1 (ru) 1984-04-30

Family

ID=21037267

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU823516135A SU1089119A1 (ru) 1982-11-29 1982-11-29 Способ получени @ -лактамазы

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU1089119A1 (ru)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000071731A1 (en) * 1999-05-25 2000-11-30 Phage Biotechnology Corporation Phage-dependent super-production of biologically active protein and peptides
JP2004517607A (ja) * 2000-08-15 2004-06-17 ファージ バイオテクノロジー コーポレイション 生物学的に活性なヒト酸性線維芽細胞成長因子の産生方法および血管新生の促進におけるその使用
JP2004528005A (ja) * 2000-08-15 2004-09-16 ファージ バイオテクノロジー コーポレイション 生物学的に活性なタンパク質およびペプチドのファージ依存性超産生
US7252818B2 (en) 1998-07-24 2007-08-07 Cardiovascular Biotherapeutics, Inc. Method of producing biologically active human acidic fibroblast growth factor and its use in promoting angiogenesis

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
i. Доклады АН СССР, 1980, 252, № 4, с. 995-998. 2. Авторское свидетельство СССР по за вке № 3435949/13, кл. С 12 М 9/38, 11.02.83 (прототип). *

Cited By (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7252818B2 (en) 1998-07-24 2007-08-07 Cardiovascular Biotherapeutics, Inc. Method of producing biologically active human acidic fibroblast growth factor and its use in promoting angiogenesis
WO2000071731A1 (en) * 1999-05-25 2000-11-30 Phage Biotechnology Corporation Phage-dependent super-production of biologically active protein and peptides
JP2003500059A (ja) * 1999-05-25 2003-01-07 フエイジ・バイオテクノロジー・コーポレイシヨン 生物活性タンパク質およびペプチドのファージ依存大量生成
EP1180153B1 (en) * 1999-05-25 2005-04-13 Phage Biotechnology Corporation Phage-dependent super-production of biologically active proteins and peptides
JP2004517607A (ja) * 2000-08-15 2004-06-17 ファージ バイオテクノロジー コーポレイション 生物学的に活性なヒト酸性線維芽細胞成長因子の産生方法および血管新生の促進におけるその使用
JP2004528005A (ja) * 2000-08-15 2004-09-16 ファージ バイオテクノロジー コーポレイション 生物学的に活性なタンパク質およびペプチドのファージ依存性超産生
EP1309716A4 (en) * 2000-08-15 2005-08-03 Phage Biotechnology Corp METHOD FOR PRODUCING BIOLOGICALLY ACTIVE HUMAN AZIDES FIBROBLAST GROWTH FACTOR AND USE THEREOF FOR PROMOTING ANGIONESIS

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Seo et al. Effects of recombinant plasmid content on growth properties and cloned gene product formation in Escherichia coli
Leive A nonspecific increase in permeability in Escherichia coli produced by EDTA
JP7165730B2 (ja) 遺伝子改変バチルス・サブティリス(Bacillus subtilis)株、最適化されたベクター、及びその使用
Hiromichi et al. Gene transfer into intact plant cells by electroinjection through cell walls and membranes
JPS5835197A (ja) プラスミドpcg2
US4332897A (en) Novel bacteriophage and method for preparing same
SU1089119A1 (ru) Способ получени @ -лактамазы
KR900007630B1 (ko) 아세트산을 지표로한 배양방법 및 그 장치
Karkhoff-Schweizer et al. Utilization of a mim-Dlac transposable element to create an α-complementation and regulated expression system for cloning in Pseudomonas aeruginosa
FR2559781A1 (fr) Nouveau vecteur plasmidique hybride de e. coli conferant le pouvoir de faire fermenter le saccharose et son procede de preparation
JPS6287086A (ja) 遺伝子組換え大腸菌の遺伝子生産物を採取する方法および装置
ES2217763T3 (es) Metodo para el aislamiento de adn plasmidico ccc.
US4788148A (en) Plasmid with stabilized inheritance
JPS62503074A (ja) 不安定な遺伝性レプリコンの安定化方法
Shimizu et al. Introduction of an active enzyme into permeable cells of Escherichia coli: acquisition of ultraviolet light resistance by uvr mutants on introduction of T4 endonuclease V
EP1889903A1 (en) Biocatalysts with amine acylase activity
SU974817A1 (ru) Способ получени L-треонина
KR20020048934A (ko) 미생물 발효 공정에서 재조합 단백질의 수율을 증진시키는방법
US3116218A (en) Process for the production of penicillin-splitting enzyme preparations
US5942421A (en) System useful for the production of proteins from recombinant DNA in single celled organisms
US4690897A (en) Method for transformation of anaerobic microorganisms
RU2174558C1 (ru) Способ получения l-аспарагиновой кислоты
RU2731289C2 (ru) Способ конструирования на основе бактерий рода Rhodococcus штамма-биокатализатора, обладающего нитрилазной активностью и повышенной операционной стабильностью, рекомбинантный штамм бактерий Rhodococcus rhodochrous, полученный таким способом, способ синтеза акриловой кислоты с использованием этого штамма в качестве биокатализатора
RU2053294C1 (ru) Способ культивирования бифидобактерий
SU1130602A1 (ru) Рекомбинантна плазмидна ДНК @ ,способ конструировани плазмидной ДНК и штамм-продуцент эндонуклеазы рестрикции @