SK149198A3 - Feline vaccines containing chlamydia psittaci and method for making the same - Google Patents

Feline vaccines containing chlamydia psittaci and method for making the same Download PDF

Info

Publication number
SK149198A3
SK149198A3 SK1491-98A SK149198A SK149198A3 SK 149198 A3 SK149198 A3 SK 149198A3 SK 149198 A SK149198 A SK 149198A SK 149198 A3 SK149198 A3 SK 149198A3
Authority
SK
Slovakia
Prior art keywords
chlamydia psittaci
feline
vaccine
cats
cell line
Prior art date
Application number
SK1491-98A
Other languages
English (en)
Inventor
Rebecca A Atherton
Norbert Schmeer
Jean A Hallstrom
Jennifer K Lane
Kristina J Hennessy
Original Assignee
Bayer Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Bayer Ag filed Critical Bayer Ag
Publication of SK149198A3 publication Critical patent/SK149198A3/sk

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/118Chlamydiaceae, e.g. Chlamydia trachomatis or Chlamydia psittaci
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/23Parvoviridae, e.g. feline panleukopenia virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/245Herpetoviridae, e.g. herpes simplex virus
    • A61K39/265Infectious rhinotracheitis virus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/51Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising whole cells, viruses or DNA/RNA
    • A61K2039/52Bacterial cells; Fungal cells; Protozoal cells
    • A61K2039/521Bacterial cells; Fungal cells; Protozoal cells inactivated (killed)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/55Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
    • A61K2039/552Veterinary vaccine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/70Multivalent vaccine
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2710/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA dsDNA viruses
    • C12N2710/00011Details
    • C12N2710/16011Herpesviridae
    • C12N2710/16711Varicellovirus, e.g. human herpesvirus 3, Varicella Zoster, pseudorabies
    • C12N2710/16734Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/10034Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2750/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssDNA viruses
    • C12N2750/00011Details
    • C12N2750/14011Parvoviridae
    • C12N2750/14311Parvovirus, e.g. minute virus of mice
    • C12N2750/14334Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2770/00MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA ssRNA viruses positive-sense
    • C12N2770/00011Details
    • C12N2770/16011Caliciviridae
    • C12N2770/16034Use of virus or viral component as vaccine, e.g. live-attenuated or inactivated virus, VLP, viral protein

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Vynález sa týka deaktivovanej, imunogénne účinnej a nereaktívnej mačacej vakcíny proti Chlamydia psittaci, ďalej postupu výroby tejto vakcíny a spôsobu prevencie chlamýdiovej infekcie u mačiek za použitia tejto vakcíny.
Doterajší stav techniky
Mačacia chlamydiáza je častým ochorením spojiviek a dýchacieho traktu mačiek, známa pod názvom mačacia pneumonitída (FPn). Charakteristickým rysom tohto vysoko nákazlivého ochorenia je kýchanie a kašľanie s pridruženými mukopurulentnými výtokmi z očí a ňufáka (hlien a hnis). Na toto ochorenie sú citlivé mačky všetkých vekových skupín, a i keď mortalita nie je vysoká, toto ochorenie infikované mačky a staršie mačky značne oslabuje. Vzhľadom k extrémne infekčnej povahe predstavuje FPn závažný problém pre nemocnice, kliniky pre domáce zvieratá i chovné stanice pre mačky. Predpokladá sa zároveň, že perzistentná infekcia pohlavného ústroja Chlamydiou psittaci je príčinou neúspešného rozmnožovania v chovných staniciach pre mačky.
Výsledky štúdií vakcinácie s prípravkami, obsahujúcimi modifikované živé Chlamydia psittaci, neboli jednoznačné a poskytli rozporuplné výsledky. V publikácii : Cello, Am. J. Vet. Med. Assoc. 158:932-938, 1971, bolo preukázané, že tieto vakcíny nepredstavujú pre mačky významný spôsob ochrany. V publikácii : Shewen a kol., Can. J. Com. Vet. Res. 44:244-251, 1980, bol popísaný spôsob čiastočnej ochrany pomocou tejto vakcíny, zatiaľ čo v publikácii : McKercher (Am. J. Vet. Res. 13,557-561, 1952, a v ďalších publikáciách autori uvádzajú takmer 100 % ochranu, poskytovanú týmito vakcínami. Pretože však vakcínované mačky dostávajú živé Chlamydia psittaci, môžu sa niektoré z týchto mikroorganizmov preniesť na iné mačky a výsledkom môže byť opačný proces.
31100/H
Štúdie s deaktivovanými chlamýdiovými vakcínami viedli k rôznorodým výsledkom a k neprijateľným lokálnym a systémovým reakciám u vakcínovaných mačiek. Štúdie s porovnávateľnými typmi expozície, uskutočňované so štyrmi prípravkami deaktivovaných vakcín a sériovo vyrábanou modifikovanou živou vakcínou ukázali, že deaktivované prípravky nezaisťujú prakticky žiadnu ochranu proti chlamýdiovým infekciám u mačiek (viď. publikácia : Shewen a kol., Can. J. Comp. Med. 44:244-251, 1980). Vakcína s deaktivovanou Chlamydia psittaci \e popisovaná v patente Spojených štátov amerických č. 5 242 686 (autori Chu a kol.). Táto vakcína však nie je čistená a po podaní mačkám spôsobuje neprijateľné lokálne reakcie (COMPENDIUM).
Ak je známe, že vakcíny s modifikovanými živými chlamýdiovými vírusmi môžu byť vzhľadom k možnosti prenosu vírusov nebezpečné pre iné zvieratá, ďalej, že sa môžu rekombinovať s divokými kmeňmi Chlamydia psittaci a môže dôjsť k obnove ich virulencie, a ak je rovnako známe, že vakcíny s deaktivovanými chlamýdiami, ktoré sú v súčasnej dobe na trhu, sú buď neúčinné alebo spôsobujú neprijateľné lokálne reakcie, potom je zrejmé, že v tomto odbore existuje potreba účinných, nereaktívnych vakcín proti chlamýdiovým infekciám.
Podstata vynálezu
Cieľom predloženého vynálezu je ponúknuť prípravok, obsahujúci deaktivovanú chlamýdiu, s vysokou imunogenitou bez vysokého podielu antigénovej hmoty, určený na použitie u mačiek. Ďalším cieľom tohto vynálezu je ponúknuť jednoduchý spôsob výroby vhodne čistenej Chlamydia psittaci na výrobu nereaktívnej, účinnej vakcíny ako monovalentného prípravku alebo v kombinácii s ďalšími mačacími antigénmi.
Tento vynález sa týka deaktivovanej, imunogénne účinnej Chlamydia psittaci, inkorporovanej do vakcín proti chlamýdii vo veľmi malých množstvách (nízka antigénová záťaž alebo nízky podiel antigénovej hmoty), ktorá sa čistí mimo bunky, v ktorých sa pestuje, pričom týmto spôsobom sa získava vakcína, ktorá po podaní mačkám je nereaktívna, avšak vysoko účinná. V tejto vakcíne
31100/H je imunogénne účinná, čistená Chlamydia psittaci s nízkou antigénovou hmotou, kombinovaná s účinným množstvom adjuvans a farmaceutický prijateľným nosičom alebo riedidlom na tieto látky. Proces čistenia pri výrobe Chlamydia psittaci zahrňuje niekoľko krokov, medzi ktoré patrí použitie membrány žítkového vaku, umytie žítkového materiálu ako východiskového produktu na inokuláciu línie cicavčích buniek, ako napríklad línie buniek Buffalo Green Monkey (BGM) (ATCC č. ) načo po skončení deštrukcie buniek chlamýdií (cytopatický účinok alebo CPE) nasleduje odstránenie buniek a ich zvyškov z prípravku pred deaktiváciou. Jednou z hlavných požiadaviek tohto vynálezu je, aby línie buniek, použité na pestovanie Chlamydia psittaci, boli mikroorganizmom zničené do 7 dní od infekcie Chlamydia psittaci (preukaz minimálne 80 % CPE do 7 dní od infekcie chlamýdií).
Popis priloženého obrázku
Na priloženom obrázku 1 je znázornený graf, predstavujúci skupinový prehľad klinických skóre (priemerné skóre/deň, ktorý je ďalej uvedený v tabuľke 1, ukazujúci, že pokiaľ sa do vakcíny inkorporovali veľmi malé množstvá Chlamydia psittaci (menej než 50 pg/dávku), zaisťovala táto dávka rovnakú ochranu ako veľké množstvo Chlamydia psittaci (50 až 1000 pg/mililiter, ako je uvedené v publikácii Chu a kol.).
Podľa predmetného vynálezu bola vyvinutá kompozícia vakcíny obsahujúca veľmi malé množstvo čistenej, deaktivovanej, imunogénne účinnej Chlamydia psittaci v kombinácii s účinným množstvom adjuvans, a farmaceutický prijateľného nosiča alebo riedidla týchto látok, ktorú možno kombinovať s inými mačacími antigénmi. Po podaní mačkám je vakcína nereaktívna, avšak vysoko účinná.
Termín „imunogénne účinné množstvo“, v zmysle v ktorom sa používa v tomto texte, označuje schopnosť Chlamydia psittaci, obsiahnutej vo vakcíne, chrániť po vakcinácii mačky pred infekciou Chlamydia psittaci. Termín „veľmi malé množstvo“ sa týka množstva Chlamydia psittaci , pridaného do vakcíny, ktoré je menšie než 50 pg/dávku. Termín „čistený“ sa týka procesov, pri ktorých dochádza k odstráneniu prítomnosti žítkového materiálu v konečnej vakcíne.
31100/H
Medzi tieto procesy patrí (tento výpočet však nie je úplný) inokulácia tkanivovej kultúry membránou žítkového vaku, ktorá bola umytím zbavená žítkového materiálu, fyziologickým roztokom, pomletie a opätovné suspendovanie vo fosfátovom pufri s použitím línie buniek zničených Chlamydia psittaci , a odstránenie buniek a ich zvyškov pred deaktiváciou Chlamydia psittaci.
Do rozsahu predmetného vynálezu patrí i postup prípravy vakcíny proti chlamýdiovým infekciám, pri ktorom sa uskutoční kultivácia Chlamydia psittaci v žítkovom vaku, odber membrány žítkového vaku z tohto žítkového vaku a jeho zmrazenie ako základného východiskového produktu na inokuláciu, kultivácia tohto základného východiskového produktu na inokuláciu alebo pasážovanie tohto základného východiskového produktu na inokuláciu vysoko senzitívnou bunkovou líniou, pestované na povrchu až do doby, keď je minimálne 80 % tejto bunkovej línie zničené Chlamydiou psittaci, odber zničenej senzitívnej bunkovej línie a média obsahujúceho Chlamydia psittaci , doprevádzajúce uvedenú bunečnú líniu, odstránenie zničenej bunečnej línie z Chlamydia psittaci, deaktivácia Chlamydia psittaci a zmiešanie deaktivovanej Chlamydia psittaci s adjuvans a fyziologicky prijateľnou nosičovou látkou.
Chlamydia psittaci má vývojový cyklus s odlišnými reprodukčnými (retikulárnymi telieskami) a infekčnými (základné telieska) formami. Pokiaľ sa pestuje v bunkových líniách, najčastejšie používaných na pestovanie chlamydií (napríklad bunky psích pečienok, McCoyove bunky a bunky CRFK), nemá tento mikroorganizmus úplný cytopatický účinok na dosku s bunkami. Pri výrobe sa tak obtiažne stanovuje optimálna doba odberu. Dochádza i k produkcii chlamýdii s nízkou imunogenitou, takže je nutné uskutočňovať opakovane ich odber z buniek alebo ich po odbere vysoko koncentrovať. V niektorých prípadoch (popísaných v patente Spojených štátov amerických č. 5 242 686) je nutné uskutočňovať ich deaktiváciu v subkultúre. Výsledkom týchto procedúr je vakcína s vysokou antigénovou záťažou (vysoká antigénová hmota s hodnotou 50 až 1000 pg/dávku) a s reaktivitou u mačiek po vakcinácii. Infikovanie buniek, ako je napríklad bunková línia Buffalo Green Monkey, ktoré sú vysoko senzitívne voči infekcii mikroorganizmom Chlamydia psittaci, vedie k úplnej deštrukcii dosky s bunkami, keď je potom počet infekčných mikroorganizmov
31100/H v kultúre veľmi vysoký. Tieto mikroorganizmy možno ľahko odstrániť (vyčistiť) z buniek a zvyškov (debris) buniek filtráciou, centrifugáciou alebo ultracentrifugáciou a , pokiaľ sa formuluje do vakcíny obsahujúcej adjuvans a prijateľný farmaceutický nosič, je veľmi malé množstvo odobratých vyčistených Chlamydia psittaci (< 50 pg/dávku) imunogénne účinné.
Podľa vynálezu sa izolát Chlamydie, ako je kmeň Cello Chlamydia psittaci , najprv šíril v membráne žítkového vaku vajec s kuracími embryami. Izolát Chlamydia psittaci bol inokulovaný do žítkového vaku vajec s kuracími embryami a inkuboval sa 5 až 7 dní pri teplote 37 °C. Počínajúc piatym dňom boli vajcia každý deň prehliadnuté proti svetlu, aby sa určila ich viabilita. V deň, keď bolo zistené uhynutie embryí u 25 % vajec, boli membrány žítkových vakov stále ešte viabilných vajec odobraté, vymyté fosfátovým pufrom, aby sa zbavili prebytočného proteínu v žĺtku a aseptický zmiešané, načo nasledovalo opätovné suspendovanie týchto zmiešaných membrán vo fosfátovom pufri. Jednomililitrové alikvotné podiely tohto zmiešaného a resuspendovaného východiskového produktu na inokuláciu boli uložené v zmrazenom stave pri teplote - 70 °C. Rovnakým postupom ako je uvedené hore sa uskutočňuje až 5 pasáží tohto zárodočného materiálu (východiskový produkt), čím sa získa zárodočný produkt, použiteľný na inokuláciu buniek tkanivovej kultúry.
Pri výrobe antigénu vakcíny s Chlamydia psittaci sa začína prípravou kultúry tkanivových buniek. Bunky Buffalo Green Monkey sa pestovali v Bulbeccovom médiu MEM s vysokým obsahom glukózy (DMEM/H), obsahujúcim 5 % fetálneho bovinného séra, 10 mM pufru HERPES a neomycín. Akonáhle boli bunky konfluentné, boli infikované Chlamydia psittaci v DMEM/H s neomycínom. Chlamydia psittaci sa absorbovala do buniek s malým objemom média a potom bolo pridané ďalšie DMEM/H médium. Infikované bunky boli inkubované po dobu 5 až 7 dní pri teplote 37 °C. Za normálnych okolností bolo 6. deň po infikovaní 90 až 100 % dosiek s bunkami zničené. V tejto fáze bol uskutočnený odber Chlamydia psittaci (odberová tekutina), čo bolo uskutočnené pretrepávaním s nádobami, aby sa odstránili všetky zvyšné bunky. Bunky a zvyšky (debris) buniek boli z odberových tekutín odstránené pomocou filtrov schopných zachytiť častice s veľkosťou cez 5
31I00/H mikrometrov alebo centrifugáciou. Potom sa uskutočnila deaktivácia vyčistených odberových tekutín. Medzi deaktivačné činidlá patrí binárny etylénimín, formalín, timerosal a betapropiolaktón, pričom však tento výpočet nie je na tieto činidlá obmedzený. Hodnota pH bola upravená na neutrálnu hodnotu a vyčistené odberové tekutiny boli adjustované na imunogénne účinné množstvo pre prípravok s adjuvans zriedením vo fosfátovom pufri. Imunogénne účinné množstvo Chlamydia psittaci bolo obvykle menšie, než 50 gg/dávku a vo výhodnom uskutočnení nižšie než 10 gg/dávku. Pre tieto účely je možné použiť ľubovolný adjuvans. Medzi možné adjuvans, ktoré boli použité v prípade predmetného vynálezu, patria polyméry a kopolyméry, polyméry a kopolyméry kyseliny akrylovej, kyselina polyakrylová ako Carbopol, povrchovo aktívne činidlá ako hexadecylamín, saponín, Quil A, hydroxid hlinitý, fosforečnan hlinitý, peptidy ako je muramyldipeptid, olejové emulzie, imunomodulátory ako sú interleukíny a interferóny, induktory interferónov, kopolyméry etylénu a anhydrid kyseliny maleinovej ako sú EMA-31, NEOCRYL A640 a POLYGÉN® (ktoré je možné získať od firmy MVP Laboratories), pričom však týmto výpočtom nie je rozsah použiteľných látok nijako obmedzený. Možno tiež použiť zmesi ľubovolných vyššie uvedených adjuvans alebo kombinácie adjuvans.
Podľa predmetného vynálezu bolo zistené, že popísané adjuvans pôsobí v účinných množstvách medzi 0,01 % a 50 % obj. /obj. celkovej dávky vakcíny. Vo výhodnom uskutočnení sa nastaví koncentrácia adjuvans na hodnotu medzi 1 % a 15 %. Podľa ešte výhodnejšieho uskutočnenia sa POLYGÉN® používa v koncentráciách medzi 1 % a 5 % a Carbopol® sa používa v koncentráciách medzi 0,1 % a 0,5 %.
Kompozícia vakcíny v prípade predmetného vynálezu rovnako zahrňuje i farmaceutický prijateľný nosič alebo riedidlo a môže obsahovať i ďalšie mačacie antigény, ako sú antigény pre mačaciu rinotracheitidu, mačaciu leukémiu, mačací kalicivírus a mačaciu panleukopéniu, vírus imunodeficiencie mačiek, mačaciu infekčnú peritonitídu, Toxoplazma gondii a besnotu.
31100,Ή
Tabuľka 1
Prehľad výsledkov pre jednotlivé skupiny (klinické skóre) a priemerné výsledky za deň (priemerné skóre/deň)
Deň Kontrolná skupina 25μΙ antigénová hmota 50μΙ antigénová hmota 100μΙ antigénová hmota
-3 0,00 0,00 0,00 0,00
1 0,05 0,00 0,00 0,05
5 2,63 0,78 1,00 0,85
g 3,38 0,88 0,75 0,63
13 3,60 0,93 0,63 0,58
17 3,23 0,90 1,00 0,73
21 3,76 0,68 0,98 0,93
25 3,15 0,20 0,65 0,60
Priemer 5.-28.deň 3,29 0,73 0,83 0,72
V nasledujúcej tabuľke č. 2 je demonštrovaná účinnosť multikomponentnej vakcíny, obsahujúcej deaktivovaný vírus mačacej rinotracheitídy, mačací kalicivírus, vírus mačacej panleukopénie, vírus mačacej leukémie a mačacia Chlamydia psittaci, pripravená podľa tohto vynálezu.
31100.Ή
Tabuľka 2
Výsledky testovania účinnosti päťzložkovej mačacej vakcíny, obsahujúce mačacie Chlamydia psittaci, vírusy mačacej rinotrachitídy, leukémie, mačacej kalicivírus a vírus mačacej panleukopénie
Antigén pri expozícii Odpoveď titru č. >1:8/celkom Ochrana
Mačacia panleukopénia
SC 4/4 100%
IM 4/4 100%
ČÓŇŤ 0/4 0%
Mačacia leukémia
SC NA 80%
IM NA 90%
CONT NA 22%
Mačacia rinotracheitída
SC NA vynikajúci „T“ = 34
vakc. C.M. =9,7
cont. C.M. = 49,3
IM NA vynikajúci „T“ = 34
vakc. C.M. = 8,3
kont. C.M. = 49,3
CONT NA žiadna
Mačací kalcivírus
SC NA vynikajúci „T“ = 34
vakc. C.M. =9,0
cont. C.M. = 20,0
IM NA vynikajúci „T“ = 34
vakc. C.M. = 4,7
kont. C.M. = 20,0
CONT NA žiadna
Mačacia Chlamydia psittaci
SC NA vynikajúci, AV M.Š.= 0,54
IM NA vynikajúci, AV M.S. = 0,49
CONT NA žiadna, priem. AV M.Š. = 2,04
31100/H
C.M. - kumulatívne skóre
AV M.S.- priemerné skóre „T“ - štatistický výpočet (jednosmerná modifikácia Wilcoxonového testu s dvomi vzorcami v modifikácii Mann-Whitney) porovnávajúci klinické skóre vakcínovaných versus kontrolných mačiek (definované pomocou hodnôt 9 CFR
115.130, 113.149, 113.131, 115.150, SAM 310 a SAM 311. Hodnota „T“ > 31 sa rovná ochrane).
Ako ďalšie možné aplikácie predloženého vynálezu možno vakcínu podávať vo forme prípravku s postupným uvoľňovaním, napríklad prípravok s laktid-glykolidovým kopolymérom, vo forme mikročastíc, umožňujúce pozvoľné uvoľňovanie alebo vo forme implantátu.
Do rozsahu predmetného vynálezu patrí i spôsob prevencie vzniku chlamýdiovej infekcie u mačiek, keď sa mačke podáva imunogénne účinné množstvo vakcíny, ktorá je bližšie popísaná vyššie. Pri použití predloženého vynálezu sa jedná o parenterálne spôsoby aplikácie (subkutánne, intramuskulárne, intraperitoneálne a intradermálne) alebo perorálny/nasálny spôsob aplikácie. Výhodnými spôsobmi aplikácie sú subkutánne a intramuskulárne. Ukázalo sa , že účinným liečebným režimom je minimálne dvojitá aplikácia vakcíny, pričom interval medzi každou aplikáciou je 2 až 4 týždne, ideálne 14 až 30 dní.
Príklady uskutočnenia vynálezu
Mačacia vakcína obsahujúca Chlamydia psittaci, postup jej prípravy , použitie a aplikácia sú bližšie vysvetlené v nasledujúcich konkrétnych príkladoch, pričom tieto príklady sú iba ilustratívne a nijako neobmedzujú rozsah predmetného vynálezu.
Príklad 1
Monovalentná vakcína proti Chlamydia psittaci u mačky
Uchovávaný podiel buniek Buffalo Green Monkey sa rozmrazil, načo bol tento podiel pridaný do rastového média obsahujúceho DMEM/H + 5 % fetálneho hovädzieho séra, 10 mM HERPES pufru a 30 pg/ml neomycínu a tento podiel bol odstreďovaný po dobu 10 až 15 minút pri 400 až 600 g. Odstredený podiel buniek sa potom previedol do suspenzie v čerstvom rastovom médiu a potom bol vložený do otáčacích fliaš. Otáčacie fľaše sa inkubovali pri teplote 37 °C, až bunky dozreli do konfluencie (splynutia).
Subkultúry buniek sa získavali až do doby, kedy bol k dispozícii požadovaný počet otáčacích fliaš na výrobné účely. Veľkosť výrobných šarží
31100H obvykle dosahuje 50 až 500 otáčacích fliaš. Vo fáze keď boli produkčné kultúry buniek BGM v otáčaných fľašiach 3 až 5 dní staré a konfluentné s minimálne 95 %, odstránilo sa rastové médium a pridal sa východiskový produkt na inokuláciu Chlamydia psittaci pri multiplicite infekcie (MOI) od 0,01 do 0,1. Médiom, použitým na pestovanie Chlamydie, bolo DMEM/H plus 30 pg/ml neomycínu. Otáčané fľaše sa znovu inkubovali pre absorpciu Chlamydie pri teplote 36 až 38 °C po dobu 1 hodiny a potom sa do každej otáčanej fľaše pridalo 200 mililitrov ďalšieho média. Inkubácia pri teplote 36 až 38 °C pokračovala ďalších 5 až 7 dní až do dosiahnutia hodnoty CPE >80 %. Tekutina z otáčacích fliaš sa odobrala trepaním otáčacích fliaš, aby sa z povrchu odstránili všetky zvyšné bunky a preniesli sa odberové tekutiny do nádoby. Odberová tekutina sa vyčistila filtráciou cez polypropylénový filter (5 mikrónov), aby sa odstránili prebytočné zvyšky (debris) buniek. Vyčistené bunky sa deaktivovali pomocou 0,01 M binárneho etylenimínu (BEI) po dobu 72 hodín pri teplote 2 až 8 °C. Po deaktivácii sa BEI neutralizoval tiosulfátom sodným na konečnú koncentráciu 0,02 M.
Vyčistený, deaktivovaný produkt Chlamydia psittaci sa zriedil na tri rôzne hladiny antigénu (tri rôzne antigénové hmoty). Najvyššie skúšaná antigénová hmota bola 100 μΙ/dávku, čo sa rovnalo približne hodnote 100 pg/dávku, stredne vysoká skúšaná antigénová hmota dosahovala hodnoty 50 μΙ/dávku, čo sa približne rovnalo hodnote 50 μΙ/dávku, a najnižšie skúšaná antigénová hmota činila 25 μΙ/dávku, alebo približne 25 pg/dávku. Všetky antigénové hmoty boli zriedené fosfátovým pufrom tak, aby celkový objem každého prípravku bol 0,95 mililitra. Na získanie hotových vakcín sa do každého prípravku pridal POLYGÉNr s objemom 0,05 mililitrov ako adjuvans. Tieto vakcíny v dávke 1 mililiter boli podávané skupinám 5 séronegatívnych mačiek v intervale 3 týždňov. Prvá dávka bola podaná v deň 0, druhá dávka v 21. deň. Skupina 5 séronegatívnych mačiek rovnakého veku a z rovnakého prostredia nebola vakcinovaná a tvorila nevakcinované kontroly. Všetky mačky boli infikované intranasálne a intraokulárne virulentným kmeňom Chlamydia psittaci 2 až 8 týždňov po pomocnej druhej dávke. Všetky mačky boli sledované po dobu 28
31100/Ή
II dní na prítomnosť klinických známok ochorenia Chlamydia psittaci včítane teploty, výtoku zočí, konjunktivity, exsudátu zčumáka, kýchanie, kašľanie, dyspney, anorexie, dehydratácie a depresie. Analýza dát sa uskutočnila technikou vyhodnocovania skóre vážením. Vážnejšie znaky ochorenia dostávali vyššie číselné hodnoty. Všetky dáta boli štatisticky analyzované vo štvordennom intervale a sú uvedené v tabuľke 1. Tieto dáta sú v grafickej forme uvedené na obr. 1.
Výsledky, uvedené v tabuľke 1 a na obr. 1, jasne ukazujú, že Chlamydia psittaci, pokiaľ bola pripravená podľa tohto vynálezu, je účinná pri antigénovej hmote už 25 pg/dávku. Pretože vakcínou s tak nízkou antigénovou hmotou zaisťovala ochranu zodpovedajúcu ochrane, ktorú poskytovala vakcína s vysokou antigénovou hmotou, možno predpokladať, že hodnoty nižšie než 25 pg/dávku, pokiaľ sa pripravia podľa predloženého vynálezu, by tiež mali ochranný účinok.
Príklad 2
Deaktivovaná mačacia Chlamydia psittaci, pripravená podľa príkladu 1 tohto vynálezu, bola zmiešaná so štyrmi ďalšími deaktivovanými mačacími antigénmi, aby vznikla viaczložková vakcína. Chlamydia psittaci (106,° TCIDso/ml) s 35 mililitrami POLYGÉNu ako adjuvans bolo zmiešané s vírusom mačacej leukémie pri antigénovej dávke 1,25 ELISA relatívnej potencie jednotiek/dávka s POLYGÉNom ako adjuvans, 1O8,0 TCID5o/dávku vírusu mačacej panleukopénie s POLYGÉNom ako adjuvans. Táto päťzložková vakcína bola skúšaná na účinnosť pri vakcinácii/infekcii mačiek. Na začiatku experimentu bola však mačkám odobratá krv na získanie vzoriek séra a plnej krvi. U sér boli stanovené titre protilátok proti vírusom mačacej rinotracheitídy, kalicivírusu a panleukopénie. U všetkých mačiek bolo testovanie zahájené s titrami menšími než 1 : 2 pre tieto vírusy. Mačky použité v protokole FeLV vykazovali negativitu na antigén p27. Päť skupín mačiek (n = 74) vo veku 13 až 15 týždňov bolo vakcinovaných a o tri týždne neskôr dostali pomocnú dávku 1,0 mililitrov päťzložkovej vakcíny. Približne polovica mačiek bola vakcinovaná subkutánne a polovina dostala vakcínu intramuskulárne.
31100/H
Osem vakcinovaných (štyri subkutánne a 4 intramuskulárne) mačiek a jedna kontrolná mačka boli hodnotené na sérologickú odpoveď na vakcináciu a pomocnú dávku proti mačacej panleukopénii. Serologická odpoveď 1 : 8 sa u tohto prípravku považuje za hodnotu znamenajúcu ochranu. Výsledky po vakcinácii sú uvedené v tabuľke 2.
Dvanásť mačiek, ktorým bola aplikovaná päťzložková vakcína (6 subkutánne a 6 intramuskulárne) a štyri nevakcínované kontrolné mačky boli infikované virulentným vírusom mačacej rinotracheitídy. Pred infikovaním boli odobraté krčné stery a krvné vzorky. Po infikovaní boli všetky mačky sledované na známky ochorenia. Klinické známky ochorenia a teplota boli zaznamenávané a analyzované s použitím priemerných skóre, uvedených v tabuľke 2. Účinnosť sa preukazuje štatisticky významným rozdielom v klinických skóre medzi vakcinovanými mačkami a kontrolami.
Dvanásť mačiek, ktorým bola aplikovaná päťzložková vakcína (6 subkutánne a 6 intramuskulárne) a štyri nevakcínované kontrolné mačky boli infikované virulentným mačacím kalicivírusom. Po infikovaní boli odobraté krčné stery a krvné vzorky. Okrem toho boli mačky sledované na známky ochorení. Ďalej boli zaznamenávané klinické známky, bolo vyhodnotené skóre a bola uskutočnená analýza dát, ktorej výsledky sú uvedené v tabuľke 2. Účinnosť sa preukazuje štatisticky významným rozdielom v klinických skóre medzi vakcinovanými mačkami a kontrolami.
Dvanásť mačiek, ktorým už bola aplikovaná päťzložková vakcína (10 subkutánne a 10 intramuskulárne) a desať nevakcinovaných kontrolných mačiek bolo infikovaných virulentným vírom Chlamydia psittaci a sledovaných na prítomnosť klinických známok ochorení, ako je uvedené v príklade 1. Týmto klinickým známkam ochorení bolo prideľované skóre. Účinnosť sa preukazuje štatisticky významným rozdielom medzi skóre vakcionovaných mačiek a kontrol.
Súhrnné výsledky tohto experimentu sú tiež uvedené v tabuľke 2.
Dvadsaťdva mačiek, ktorým bola apikovaná päťzložková vakcína (11 subkutánne a 11 intramuskulárne) a deväť nevakcinovaných kontrolných mačiek, bolo infikovaných virulentným vírusom FeLV. Tento pokus vyžaduje
31100/H uskutočniť najprv imunosupresiu mačiek a potom ich nasledujúce dva dni infikovať. Mačky boli po 3. týždni až do 12. týždňa po infekcii kontrolované na prítomnosť virémie na základe detekcie antigénu p27 v krvi s použitím techniky nepriamej imunofluorescencie (IFA). Ochrana bola stanovená podľa zásad, popísaných v publikácii : Shibley a kol. (JAVMA 1991, 199: 1402-1406) a uvedených v tabuľke 2.
Z tabuľky 2 je zrejmé, že všetkých päť zložiek tejto viaczložkovej vakcíny, obsahujúcich mačací Chlamydia psittaci podľa toto vynálezu, bolo účinných. Je potrebné si tiež uvedomiť, že žiadna vakcinovaná mačka v tejto štúdii, ani žiadne vakcínované mačky v iných štúdiách, uskutočnených s vakcínou Chlamydia psittaci alebo s viaczložkovými vakcínami obsahujúcimi Chlamydia psittaci , nepreukázali lokálne ani systémové reakcie na vakcínu. Hlavným dôvodom pre túto absenciu reaktivity bola nízka antigénová hmota Chlamydia psittaci.
I keď sa v popise predmetného vynálezu uvádzajú konkrétne aplikácie predloženého vynálezu, je potrebné si uvedomiť, že možno použiť rôzne modifikácie a zmeny, ktoré sú zrejmé odborníkom pracujúcim v tomto odbore a oboznámených so súčasným stavom techniky, a ktoré tiež spadajú do rámca vynálezu podľa nasledujúcej definície patentových nárokov.

Claims (14)

1. Deaktivovaná, imunogénne účinná a nereaktívna vakcína proti Chlamydia psittaci, vyznačujúca sa tým, že obsahuje veľmi malé množstvo Chlamydia psittaci.
2. Deaktivovaná, imunogénne účinná a nereaktívna vakcína proti Chlamydia psittaci podľa nároku 1, vyznačujúca sa tým, že uvedené veľmi malé množstvo Chlamydia psittaci je množstvo nižšie než 50 pg/dávku.
3. Deaktivovaná, imunogénne účinná a nereaktívna vakcína proti Chlamydia psittaci podľa nároku 1, vyznačujúca sa tým, že ďalej obsahuje mačací antigén iný, než Chlamydia psittaci.
4. Deaktivovaná, imunogénne účinná a nereaktívna vakcína proti Chlamydia psittaci podľa nároku 3, vyznačujúca sa tým, že iný mačací antigén je vybraný zo skupiny zahrňujúcej mačaciu rinotracheitis, mačací kaicivírus, vírus mačacej leukémie, Toxoplazma gondii, vírus besnoty, vírus mačacej panleukopénie, vírus mačacej imunodeficiencie a vírus mačacej infekčnej peritonitídy.
5. Spôsob prípravy vakcíny proti chlamýdiovým infekciám, vyznačujúci sa tým, že zahrňuje:
- kultiváciu Chlamydia psittaci v žítkovom vaku,
- odber membrány žítkového vaku z uvedeného žítkového vaku a zmrazenie odberového materiálu ako základného zárodočného produktu na inokuláciu,
- kultiváciu uvedeného základného zárodočného produktu na inokuláciu alebo pasáže uvedeného základného zárodočného produktu vo vysoko senzibilnej bunkovej línii pestovanej na povrchu tak dlho, dokiaľ nie je minimálne 80 % bunkovej línie zničených Chlamydiou psittaci,
- odohranie zničenej senzibilnej bunkovej línie a média obsahujúceho Chlamydia psittaci a doprevádzajúceho uvedenú bunkovú líniu,
31100/Ή
- odstránenie zničenej bunkovej línie z Chlamydia psittaci,
- deaktiváciu Chlamydia psittaci,
- zmiešanie deaktivovanej Chlamydia psittaci s adjuvans a fyziologicky prijateľným nosičom.
6. Spôsob podľa nároku 5, vyznačujúci sa tým, že vysoko senzibilnou bunkovou líniou je bunková línia Buffalo Green Monkey.
7. Spôsob podľa nároku 5, vyznačujúci sa tým, že uvedená deaktivácia zahrňuje pridanie účinného množstva deaktivačnej látky na deaktiváciu «
Chlamydia psittaci, ktorá si stále ešte podržiava imunogenitu.
;;
8. Spôsob podľa nároku 7, vyznačujúci sa tým, že sa uvedená deaktivačná látka volí zo skupiny látok zahrňujúcej binárny etylenimín, betapropiolaktón, formalín, mertiolát, timerozal, glutaraldehyd a detergenty.
9. Spôsob podľa nároku 7, vyznačujúci sa tým, že deaktivačná látka je binárny etylenimín.
10. Spôsob podľa nároku 5, vyznačujúci sa tým, že sa adjuvans volí zo skupiny zahrňujúcej polyméry a kopolyméry, polyméry a kopolyméry kyseliny akrylovej, kyselinu polyakrylovú ako Carbopol, povrchovo aktívne látky ako hexadecylamín, saponín, Quil A, hydroxid hlinitý, fosforečnan hlinitý, peptidy, ako je muramyl dipeptid, olejové emulzie, imunomodulátory ako sú interleukíny a interferóny, induktory interferónu, kopolyméry etylénu a anhydridu kyseliny maleínovej, ako je EMA-31, NEOCRYL A640 a POLYGÉN® a ich zmesi.
«
11. Spôsob podľa nároku 5, vyznačujúci sa tým, že adjuvans je
POLYGÉN®.
12. Spôsob podľa nároku 5, vyznačujúci sa tým, že fyziologicky prijateľný nosič je zvolený zo skupiny zahrňujúcej fosfátový fyziologický pufor, fyziologický roztok a minimálne základné médium.
13. Spôsob prevencie chlamýdiovej infekcie u mačiek, vyznačujúci sa tým, že zahrňuje aplikáciu imunogénne účinného množstva vakcíny podľa nároku 3 mačke.
14. Spôsob prevencie chlamýdiovej infekcie u mačiek, vyznačujúci sa tým, že zahrňuje aplikáciu imunogénne účinného množstva vakcíny podľa nároku 5 mačke.
SK1491-98A 1996-05-06 1997-04-21 Feline vaccines containing chlamydia psittaci and method for making the same SK149198A3 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US08/643,673 US5972350A (en) 1996-05-06 1996-05-06 Feline vaccines containing Chlamydia psittaci and method for making the same
PCT/US1997/007514 WO1997041889A1 (en) 1996-05-06 1997-04-21 Feline vaccines containing chlamydia psittaci and method for making the same

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SK149198A3 true SK149198A3 (en) 2000-02-14

Family

ID=24581818

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SK1491-98A SK149198A3 (en) 1996-05-06 1997-04-21 Feline vaccines containing chlamydia psittaci and method for making the same

Country Status (16)

Country Link
US (1) US5972350A (sk)
EP (1) EP0904106A1 (sk)
JP (1) JP2000510121A (sk)
AU (1) AU717628B2 (sk)
BG (1) BG63564B1 (sk)
BR (1) BR9708975A (sk)
CA (1) CA2203234A1 (sk)
CZ (1) CZ297848B6 (sk)
EE (1) EE04516B1 (sk)
IL (1) IL126628A (sk)
NO (1) NO320871B1 (sk)
NZ (1) NZ332620A (sk)
PL (1) PL329734A1 (sk)
SK (1) SK149198A3 (sk)
TR (1) TR199802259T2 (sk)
WO (1) WO1997041889A1 (sk)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20010048927A1 (en) * 2000-02-01 2001-12-06 Richard Stephens Porin B (PorB) as a therapeutic target for prevention and treatment of infection by chlamydia
US20030129161A1 (en) * 2001-09-17 2003-07-10 Hsien-Jue Chu Interleukin-12 as a veterinary vaccine adjuvant
US7105171B2 (en) * 2002-03-07 2006-09-12 The Regents Of The University Of California Porin B (PorB) as a therapeutic target for prevention and treatment of infection by Chlamydia
US20050202046A1 (en) * 2004-03-11 2005-09-15 Wyeth Canine vaccine for protection against ehrlichiosis
US7306807B2 (en) * 2004-09-13 2007-12-11 Wyeth Hemorrhagic feline calicivirus, calicivirus vaccine and method for preventing calicivirus infection or disease
CN100423775C (zh) * 2005-04-15 2008-10-08 中国农业科学院兰州兽医研究所 牛衣原体病灭活疫苗及其制备与检验方法
AU2008260593A1 (en) * 2007-05-30 2008-12-11 Wyeth Raccoon poxvirus expressing genes of feline antigens
FR3039406B1 (fr) * 2015-07-28 2020-09-18 Centre Nat Rech Scient Composition vaccinale contre les infections a chlamydiaceae

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5242686A (en) * 1990-11-07 1993-09-07 American Home Products Corporation Feline vaccine compositions and method for preventing chlamydia infections or diseases using the same
CA2175081A1 (en) * 1993-11-03 1995-05-11 James Evan Sandbulte Vaccine and method for treatment of chlamydial infections

Also Published As

Publication number Publication date
NO320871B1 (no) 2006-02-06
EP0904106A1 (en) 1999-03-31
CZ360498A3 (cs) 1999-03-17
TR199802259T2 (xx) 1999-02-22
CZ297848B6 (cs) 2007-04-11
AU717628B2 (en) 2000-03-30
WO1997041889A1 (en) 1997-11-13
NO985172L (no) 1999-01-06
BG63564B1 (bg) 2002-05-31
JP2000510121A (ja) 2000-08-08
CA2203234A1 (en) 1997-11-06
NO985172D0 (no) 1998-11-05
BG102890A (en) 1999-09-30
MX9703278A (es) 1998-05-31
EE04516B1 (et) 2005-08-15
BR9708975A (pt) 1999-08-03
NZ332620A (en) 2000-04-28
US5972350A (en) 1999-10-26
EE9800388A (et) 1999-06-15
AU2996297A (en) 1997-11-26
IL126628A0 (en) 1999-08-17
IL126628A (en) 2002-09-12
PL329734A1 (en) 1999-04-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP3993230B2 (ja) 改良された修飾brsv生ワクチン
EP0329264B1 (en) Veterinary vaccines
US5242686A (en) Feline vaccine compositions and method for preventing chlamydia infections or diseases using the same
CN109568573A (zh) 疫苗组合物及其制备方法和应用
US6951650B1 (en) Antigenic class of avian reoviruses
SK149198A3 (en) Feline vaccines containing chlamydia psittaci and method for making the same
KR100531491B1 (ko) 백신으로서 소 호흡 코로나바이러스
KR100302522B1 (ko) 고양이장코로나바이러스로부터의개코로나바이러스왁찐
EP0612532A2 (en) Canine coronavirus vaccine from feline enteric coronavirus
US6004563A (en) Feline vaccine compositions and method for preventing chlamydia infections or diseases using the same
US7211260B1 (en) Infectious bursitis vaccine
EP0310362B1 (en) Vaccine for protection of cats against feline infectious peritonitis
KR100556275B1 (ko) 클라미디아시타시를함유하는고양이백신및그의제조방법
US20020146425A1 (en) Feline vaccines containing chlamydia psittaci and method for making the same
MXPA97003278A (es) Vacunas felinas que contienen chlamydia psittaci y metodo para preparar las mismas
CN1223589A (zh) 包含鹦鹉热衣原体的猫疫苗及其制备方法
AU3441693A (en) Feline leukemia virus vaccines
FR2601251A1 (fr) Agent viral non pathogene pour la prevention de la gastroenterite transmissible porcine, son obtention et son utilisation comme vaccin.
MXPA99007134A (en) Infectious bursitis vaccine