RU2817391C1 - Рекомбинантная плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIM1, обеспечивающая экспрессию иммуноглобулинового домена гена TIM-1/HAVCR-1 человека в клетках E. coli для диагностических и научных исследований - Google Patents

Рекомбинантная плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIM1, обеспечивающая экспрессию иммуноглобулинового домена гена TIM-1/HAVCR-1 человека в клетках E. coli для диагностических и научных исследований Download PDF

Info

Publication number
RU2817391C1
RU2817391C1 RU2023105237A RU2023105237A RU2817391C1 RU 2817391 C1 RU2817391 C1 RU 2817391C1 RU 2023105237 A RU2023105237 A RU 2023105237A RU 2023105237 A RU2023105237 A RU 2023105237A RU 2817391 C1 RU2817391 C1 RU 2817391C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
tim1
coordinates
protein
pqe30
gene
Prior art date
Application number
RU2023105237A
Other languages
English (en)
Inventor
Татьяна Юрьевна Бондаренко
Елена Викторовна Протопопова
Екатерина Ильинична Кривошеина
Виктор Александрович Святченко
Владимир Александрович Терновой
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора)
Application granted granted Critical
Publication of RU2817391C1 publication Critical patent/RU2817391C1/ru

Links

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии. Предложена рекомбинантная плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIM1, имеющая размер 3740 п.н. и обеспечивающая экспрессию белка protIg-TIM1 с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 2 - аналога рецептора TIM-1/HAVCR-1/KIM-1/CD365 Т-клеточного иммуноглобулинового муцинового домена человека, кодируемого фрагментом гена TIM-1/HAVCR-1, в прокариотических клетках Е. coli для диагностических и научных исследований. Указанная рекомбинантная плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIM1 содержит промотор фага Т5, имеющий координаты 10-54 п.н., RBS-сайт связывания рибосом, имеющий координаты 102-104 п.н., 6xHis-tag с координатами 127-144 п.н., сайты узнавания эндонуклеаз рестрикции BamHI с координатами 146-150 п.н. и Hind III 467-472 п.н., целевую нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 1 плазмиды pQE30-Ig-TIM1, имеющую координаты 151-466 п.н., ColE1 - ориджин репликации, с координатами 790-979 п.н., AmpR - ген β-лактамазы, с координатами 3536-2685 п.н. Изобретение обеспечивает эффективную экспрессию белка protIg-TIM1 в клетках Е. coli. 6 ил., 1 табл., 4 пр.

Description

Изобретение относится к рекомбинантной плазмидной ДНК pQE30-Ig-TIM1, обеспечивающей синтез рекомбинантного белка protIg-TIM1 аналога рецептора TIM-1/HAVCR-1 человека в клетках Е. Coli, и может быть использовано для диагностических и научных исследований в медицине, биотехнологии и белковой инженерии.
Рецептор Т-клеточный-иммуноглобулиновый-муциновый домен (TIM-1/HAVCR-1/KIM-1/CD365) играет значимую роль в регулировании активности иммунных клеток, при вирусных инфекциях и при социально-значимых заболеваниях [3-7, 9, 10]. HAVCR-1 был впервые открыт для вируса гепатита А [1]. KIM-1/TIM-1 (молекула повреждения почки) используется в качестве маркера повреждения при почечных заболеваниях [2]. Известно, что TIM-1 у людей опосредует проникновение в клетки вирусов гепатитов А и С, вирусов Эбола и Марбург, вируса денге, вируса клещевого энцефалита, SARS-CoV-2 [3-7]. Для проникновения в клетку вирусы используют способность иммуноглобулинового домена белка TIM-1/HAVCR-1 связывать фосфатидилсерин [8]. Значимость рецептора TIM-1 показана не только при вирусных инвазиях, но и в регуляции иммунного ответа, и при аутоиммунных и онкологических заболеваниях [9, 10].
Существуют коммерческие зарубежные препараты белков, кодируемые как частями гена TIM-1 человека, полноразмерным геном, так и синтетическими пептидами (https://www.sinobiological.com/category/tim-1-kim-1/proteins). Недостатком этих препаратов является дороговизна и возникшая недоступность препаратов для использования в России.
Наиболее близким аналогом (прототипом) является способ получения рекомбинантного белка, кодируемого последовательностью внеклеточной части гена TIM-1 человека с сигналом секреции IgK мыши (патент Китая, CN №101798351, МПК С07K 19/00, опубл. 11.08.2010 г.) [12]. Для повышения растворимости белка авторы конъюгировали его с фрагментом Fc иммуноглобулина человека, содержащим домены СН2 и СН3. Белок был получен в эукариотических клетках СНО после клонирования сначала в Е. Соli. К сожалению, нет подробностей конструирования плазмиды и в работе был использован синтетический ген TIM-1. Усложнение конструкции белка за счет сигнальной последовательности IgK мыши и фрагмента Fc приводит к повышению трудоемкости и удорожанию препарата.
Поиск по источникам научно-технической и патентной информации не выявил технических решений, раскрывающих генетические конструкции, обеспечивающие экспрессию иммуноглобулинового домена гена TIM-1/HAVCR-1 человека и технологии наработки рекомбинантных продуктов на его основе. Важно отметить, что на территории Российской Федерации подобных работ в настоящее время не выявлено.
В этой связи получение искусственного аналога рецептора, кодируемого геном TIM-1/HAVCR-1 человека, может быть актуально для решения проблемы импортозамещения и быть использовано для диагностических и научных исследований.
Техническим результатом настоящего изобретения является получение рекомбинантной плазмидной ДНК pQE30-Ig-TIM1, обеспечивающей экспрессию белка protIg-TIM1 аналога рецептора - TIM-1/HAVCR-1/KIM-1/CD365 (Т-клеточного иммуноглобулинового муцинового домена), кодируемого фрагментом гена TIM-1/HAVCR-1 человека, а именно иммуноглобулиновым доменом.
Указанный технический результат достигается тем, что создана рекомбинантная плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIMl, имеющая размер 3740 п. н., обеспечивающая экспрессию белка protIg-TIM1 с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 2 - аналога рецептора TIM-1/HAVCR- 1/KIM-1/CD365 Т-клеточного иммуноглобулинового муцинового домена человека, кодируемого фрагментом гена TIM-1/HAVCR-1, в прокариотических клетках Е. Coli, используемого для диагностических и научных исследований, и содержащая:
- промотор фага Т5, имеющий координаты 10-54 п. н.;
RBS-сайт связывания рибосом, имеющий координаты 102-104 п. н.;
6xHis-tag с координатами 127-144 п. н.; сайты узнавания эндонуклеаз рестрикции BamHI с координатами 146-150 п. н. и Hind III 467-472 п. н.;
целевую нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 1 плазмиды pQE30-Ig-TIM1, имеющую координаты 151-466 п. н.,
ColE1 - ориджин репликации, с координатами 790-979 п. н.; AmpR - ген β-лактамазы, с координатами 3536-2685 п. н.
Сконструированной рекомбинантной плазмидной ДНК pQE30-Ig-TIMl, содержащей последовательность иммуноглобулинового домена гена TIM-1/HAVCR-1 человека, трансформируют клетки Е. Coli штамма JM103 для обеспечения экспрессии рекомбинантного белка protIg-TIM1 - аналога рецептора.
Предлагаемое изобретение позволило получить высокоочищенный препарат белка protIg-TIM1 с чистотой 98%. Выход составил 5 мг из литра культуральной жидкости. Затем была проведена трехкратная иммунизация мышей белком protIg-TIM1 и получены поликлональные антитела, которые были протестированы наряду с коммерческими поликлональными антителами. Была показана специфичность полученных антител к белку, кодируемому иммуноглобулиновым доменом гена TIM-1 человека.
Изобретение иллюстрируется следующими графическими материалами. На фиг. 1 представлена физическая карта плазмиды pQE30-Ig-TIM1 с указанием генетических маркеров. Основные генетические элементы: промотор фага Т5 (10-54 п. н.); RBS - сайт связывания рибосом (102-104 п. н.); 5'-кодирующая последовательность в область клонирования 6xHis-tag (127- 144 п. н.); сайты узнавания эндонуклеаз рестрикции BamHI (146-150 п. н.) и Hind III (467-472 п. н.) в районе множественных сайтов клонирования; целевая последовательность Ig-TIM1 (151-466 п.н., координаты соответствуют 280-592 п.н. по последовательности HAVCR-1 ХМ_024446022.1); ColE1 - ориджин репликации (790-979 п.н.); AmpR - ген β-лактамазы (3536-2685 п.н.). Полная нуклеотидная последовательность вектора pQE30 приведена на сайте www.qiagen.com. На фиг.2 представлена целевая нуклеотидная последовательность рекомбинантной плазмидной ДНК pQE30-Ig-TIM1, кодирующая иммуноглобулиновый домен. На фиг.3 приведена аминокислотная последовательность белка protIg-TIM1. На Фиг. 4 представлена электрофореграмма 15% ПААГ ДСН. Осветленные лизаты культуры клеток до индукции - 2 дорожка и после индукции - 3 дорожка; 4 дорожка - белок protIg-TIM1 после очистки. Маркеры молекулярных весов: 6 дорожка - M3913-1VL (6.5; 14.2; 20; 24; 29; 36; 45; 66 кДа) (Sigma, США); 1, 5 дорожки - #26610 (14.4; 18.4; 25; 35; 45; 66.2; 116 кДа) (Thermo Scientific, Литва). Фиг. 5 приведен график взаимодействия препарата очищенного рекомбинантного белка protIg-TIM1 (антиген) с антителами, полученными после иммунизации мышей данным белком в ИФА. Оптическую плотность ОП450 образцов определяли на спектрофотометре «Multiskan» (Thermo Scientific):
1 - protIg-TIM1 двухкратные разведения, начиная с 500 нг;
2 - лизат культуры клеток, трансформированный pQE30 (отрицательный контроль).
Примечания: антиген - protIg-TIM1 титровали антителами, полученными после иммунизации мышей, в разведении 1:1000.
На фиг.6 представлен график взаимодействия препарата очищенного рекомбинантного белка protIg-TIM1 (антиген) с коммерческими анти-TIM1 человека антителами козы (Invitrogen, США) в ИФА. Оптическую плотность ОП450 образцов определяли на спектрофотометре "Multiskan" (Thermo Scientific).
1. protIg-TIM1 двухкратные разведения, начиная с 1000 нг;
2. лизат культуры клеток, трансформированный pQE30 (отрицательный контроль).
Примечания: антиген - protIg-TIM1 титровали поликлональными анти-TIM1 человека антителами козы (Invitrogen, США), которые были использованы в концентрации 2 мкг/мл или 200 нг/лунка.
Для лучшего понимания сущности предлагаемого изобретения ниже представлены примеры его осуществления.
Пример 1. Получение рекомбинантной плазмидной ДНК pQE30-Ig-TIM1, кодирующей иммуноглобулиновый домен гена TIM-1/HAVCR-1 человека.
1.1. Дизайн и получение плазмидной ДНК pQE30-Ig-TIM1.
Плазмида pQE30-Ig-TIM1 была получена посредством встраивания ДНК иммуноглобулинового домена гена TIM-1 (третий экзон) по сайтам узнавания эндонуклеаз рестрикции BamHI и Hind III в векторную плазмиду pQE30 (Qiagen, Германия).
Так как известно, что экспрессия гена TIM-1 высока в культуре клеток А549 (клетки карциномы легкого человека) (10), исходя из этого источником РНК в данной работе была культура клеток А549, которая была получена из коллекции клеточных культур ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор». Клетки отбирали в фазе логарифмического роста. В отличии от прототипного патента, где был использован синтетический фрагмент внеклеточной области гена TIM-1 человека, нами для встройки был использован ПНР фрагмент, кодирующий только иммуноглобулиновый домен гена TIM1 человека и полученный на основе РНК из культуры клеток А549.
Тотальная РНК была выделена с помощью комплекта для выделения ДНК/РНК (Евроген, РФ) и являлась матрицей для синтеза кДНК, построение которой проводили с использованием комплекта реагентов «PEBEPTA-L» (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, РФ).
Амплификацию кДНК проводили с помощью олигодезоксирибонуклеотидов (в дальнейшем - праймеры) (1,2 таблица 1), в последовательность которых были заложены сайты узнавания эндонуклеаз рестрикции BamHI и Hind III и последовательности, фланкирующие третий экзон гена TIM1 человека, кодирующие иммуноглобулиновый домен (координаты по последовательности HAVCR-1 ХМ_024446022.1 из базы GenBank), так называемая целевая вставка/последовательность.
Продукты реакции амплификации были идентифицированы в 2% агарозном геле. Фрагменты ДНК необходимого размера были выделены/очищены с использованием набора diaGene (ДиаМ, РФ) для элюции ДНК из агарозного геля.
1.2. Получение рекомбинантной плазмидной ДНК pQE30-Ig-TIM1, кодирующей иммуноглобулиновый домен гена TIM-1/HAVCR-1 человека.
Полученный фрагмент, кодирующий иммуноглобулиновый домен гена TIM-1 человека, был клонирован в вектор pQE30 (Qiagen). Вектор предварительно был обработан эндонуклеазами рестрикции BamHI и Hind III, находящимися в районе множественных сайтов клонирования. Лигирование вектора и целевой вставки проводили с помощью T4DNA Ligase (Invitrogen). Соотношение генома вставки к вектору было 0.09. На фиг.1 представлена физическая карта плазмиды pQE30-Ig-TIM1 с указанием генетических маркеров, а на фиг.2 приведена нуклеотидная последовательность целевой вставки плазмиды pQE30-Ig-TIM1 SEQ ID NO: 1.
Пример 2. Получение рекомбинантного штамма E.coli JM103-Ig-TIM1, трансформированного плазмидой pQE30-Ig-TIM1 и получение целевого белка.
2.1. Трансформация компетентных клеток. Компетентные клетки E.coli штамма JM103, приготовленные с использованием CaCl2, были трансформированы «тепловым шоком» лигазной смесью из примера 1 пункт 1.2, и затем культивировались на твердом агаре в чашках Петри с ампициллином в качестве селективного маркера. Был отобран клон, содержащий плазмиду с целевой вставкой, которую выявляли с помощью ПЦР, используя праймеры, комплементарные нуклеотидной последовательности вектора pQE30 и последовательности HAVCR-1 ХМ_024446022.1 (табл.1).
Из отобранного клона была выделена плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIM1. Достоверность вставки и векторной системы была подтверждена секвенированием методом Сэнгера на приборе ABI 3130x1 Genetic Analyzer (Applied Biosystems, Япония) с помощью набора BigDye v3.1 согласно инструкции производителя с помощью праймеров комплементарных последовательностям HAVCR-1 (3,4, табл.1) и вектора pQE30 (5, 6 табл.1). На фиг.1 представлена физическая карта плазмиды pQE30-Ig-TIM1 с указанием генетических маркеров, а на фиг.2 - нуклеотидная последовательность целевой вставки плазмиды pQE30-Ig-TIM1 SEQ ID NO:l.
2.2. Культивирование рекомбинантного штамма E.coli JM103-Ig-TIM1, трансформированного плазмидой pQE30-Ig-TIM1 и синтез рекомбинантного белка protIg-TIM1, кодируемого иммуноглобулиновым доменом гена TIM-1 человека.
Компетентные клетки E.coli штамм JM103 были трансформированы плазмидой pQE30-Ig-TIM1 и культивировались на среде LB с ампициллином в качестве селективного маркера. Был отобран клон, несущий плазмиду pQE30-Ig-TIM1, и таким образом был получен штамм E.coli JM103-Ig-TIM1, обеспечивающий экспрессию рекомбинантного белка, кодируемого иммуноглобулиновым доменом гена TIM-1 человека. Штамм хранился на твердом агаре в чашках Петри и был также помещен с глицерином (1:3) на минус 70°С.
Рекомбинантный штамм бактерий E.coli JM103-Ig-TIM1, обеспечивал при культивировании на жидких питательных средах биосинтез белка protIg-TIM1 (целевой белок) с уровнем экспрессии не ниже 5 мг рекомбинантного белка в одном литре культуральной жидкости.
Пример 3. Наработка и очистка рекомбинантного белка protIg-TIM1.
3.1. Наработка белка. Штамм E.coli JM103-Ig-TIM1 из аликвоты, замороженной с глицерином, растили в 500 мл среды LB с 50 мкг/мл ампициллина при 37°С до ОП600 - 0,6-0,7. Экспрессия рекомбинатного белка была индуцирована изопропил-D-тио-галактопиранозидом (ИПТГ, Медиген, РФ) в концентрации 0.2 мМ и продолжалась в течение 12 часов. Биомассу осаждали центрифугированием 20 мин при 4000 об/мин, ресуспендировали в 8М мочевине (рН 8,8) и после обработки на ультразвуковом дезинтеграторе LABSONIC 2000 (Германия) вновь центрифугировали 20 мин при 10000 об/мин. Полученный супернатант осветленного лизата клеток анализировали электрофорезом в ПААГ ДСН. На фиг.4 представлены образцы осветленных лизатов клеток до индукции (дорожка 2) и после индукции (дорожка 3), а также белок после очистки, с визуализацией полосы белка предсказанного размера 13.5 кДа (дорожка 4). Выход белка составил 5 мг/л индуцированной культуры клеток.
3.2. Очистка белка. Проводили очистку белка от примесей никельхелатной хроматографией смолой Ni-NTA-Superflow (Qiagen, Германия). Элюцию белка со смолы проводили в 8 М мочевине (Amresco, США) с 300 мМ имидазолом (ICN Biomedicals Inc., США), рН 6.0. Расчетная молекулярная масса белка protIg-TIM1 составила 13,5 кДа. Белок был растворим в 8М и 4М мочевине рН 8,8. Концентрация очищенного препарата белка была определена с помощью Protein Assay Kit (Invitrogen, USA) на приборе Qubit fluorimeter (Invitrogen, Сингапур) и составила 2.24 мг/мл.
Рекомбинантный белок имел минимальный размер рекомбинантной части из 13 аминокислотных остатков (а.о.) на N-конце, включающий шестигистидиновую последовательность, позволяющую проводить одностадийную очистку белка никельхелатной хроматографией. Причем фактически открытая рамка считывания после шестигистидинового тракта включала аминокислоты комплементарные целевому белку с 20 а.о. (координаты по последовательности протеина HAVCR-1 ХР_024301790.1), из которых два первых а.о. (GS) совпали с а.о., транслируемых с последовательности сайта эндонуклеазы рестрикции BamHI. На С-конце белок заканчивался 124 а.о. (координаты по последовательности протеина HAVCR-1 ХР_024301790.1) и в добавок трех аминокислот от векторной конструкции pQE30 и стоп ко дона. Таким образом, рекомбинантный белок protIg-TIM1 (20-124 а.о., координаты по последовательности протеина HAVCR-1 ХР_024301790.1), кодируемый иммуноглобулиновым доменом гена TIM-1 человека, имел 104 а.о. и в добавок 16 а.о. от pQE30. Итого белок protIg-TIM1 содержал 120 а.о.
Очищенный препарат белка расфасовывали по пробиркам, замораживали и хранили при минус 20°С. Чистоту белковых препаратов оценивали электрофорезом в 15%-ном ПААГ в присутствии ДСН.
Указанный технический результат достигается тем, что получен рекомбинантный белок protIg-TIM1, характеризующийся аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 2, представленной на фиг.3. Пример 4. Получение поликлональных мышиных антител к белку protIg-TIM1 и исследование их продукции иммуноферментным анализом.
Гипериммунные мышиные сыворотки получали трехкратной иммунизацией животных. Работа с животными проводилась в соответствии с принципами гуманной экспериментальной практики, сформулированной в Европейской директиве 2010/63/EU. Все эксперименты с животными были одобрены комитетом по биоэтике ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор», Кольцово, Россия.
Иммунизацию самок мышей линии BALB/C (питомник ФБУН ГНЦ ВБ ГНЦ ВБ «Вектор»), массой 16-18 г., с интервалом в две недели, проводили подкожным введением 5 мкг/мышь очищенного белка protIg-TIM1 в смеси с полным адъювантом Фрейнда («Sigma», США) в объеме 200 мкл при первой инъекции, и в смеси с неполным адъювантом Фрейнда при второй и третьей инъекции. Кровь собирали после декапитации. Сыворотку выделяли после образования сгустка центрифугированием. Образцы инкубировали 30 мин при 56°С для инактивации комплемента.
Предварительно перед иммунизацией из группы мышей часть животных использовали для получения контрольной сыворотки. Температура хранения сыворотки от минус 15°С до минус 25°С.
4.1. Наработка антител. Наработку антител к белку protIg-TIM1 человека в сыворотке, полученной после иммунизации мышей, исследовали методом иммуноферментного анализа (ИФА).
ИФА проводили следующим образом: в полистероловые планшеты наносили 100 мкл антигена в лунку и сорбировали при 4°С в течение ночи. Места неспецифического связывания насыщали 0,5% раствором казеина в ЗФР-Твин, содержащем 0.1% Tween-20 («Serva», Германия), рН-7.4 при 37°С 60 минут. Затем инкубировали со специфической сывороткой ночь при 4°С. Специфическое связывание выявляли антивидовыми, мечеными пероксидазой антителами против IgG. Хромоген - раствор ТМВ (1 мг/мл tetramethylbiphenyl, 0.03% перекиси водорода) в цитратно-фосфатном буфере (0.2М лимонной кислоты, 0.5М Na2HPO4, рН 5.0). По окончании инкубации содержимое лунок удаляли с помощью вошера и промывали 0,01 М ФСБ-Т. Выдерживали 20 мин. в темноте, останавливали реакцию добавлением 100 мкл на лунку IN HCl и измеряли оптическую плотность образцов на спектрофотометре «Multiskan» (Thermo Scientific) с использованием светофильтра с максимумом пропускания 450 нм. В качестве отрицательного контроля использовали антиген, осветленный лизат бактерий, трансформированных векторной плазмидой pQE30 не содержащей целевой вставки. Результаты ИФА представлены на фиг.4-5.
Для титрования антигена очищенного рекомбинантного белка protIg-TIM1 готовили его 2-х кратные разведения. Первая точка соответствовала концентрации 500 нг белка protIg-TIM1 человека, при этом сыворотка мышей была разведена в 1000 раз. При титровании коммерческой поликлональной сывороткой козы антиТ1М-1 человека (Invitrogen, США) рекомбинантного белка первая точка соответствовала концентрации 1000 нг белка protIg-TIM1.
Препарат сыворотки козы был использован в концентрации 2 мкг/мл или 200 нг/лунка.
4.2. Исследование продукции антител иммуноферментным анализом. Полученный рекомбинантный белок protIg-TIM1 (20-126 а.о., координаты по последовательности протеина HAVCR-1 ХР024301790.1), кодируемый иммуноглобулиновым доменом гена TIM-1 человека взаимодействовал с антителами, полученными после иммунизации мышей (первая точка соответствовала 500 нг белка) (фиг.5). Параллельно белок protIg-TIM1 анализировали в ИФА (первая точка соответствовала 1000 нг) с анти-TIM1 человека антителами козы (коммерческий препарат - #РА5-46914 Invitrogen, США), полученной на белок, кодируемый внеклеточным фрагментом гена TIM-1 человека с координатами «Ser21-Thr288 п.н.» и полученным в культуре клеток миеломы мыши NS0 (фиг.6). Оптическую плотность образцов определяли на спектрофотометре "Multiskan" (Thermo Scientific) с использованием светофильтра с максимумом пропускания 450 нм. Графики взаимодействия препарата очищенного рекомбинантного protIg-TIM1 с антителами, полученными после иммунизации мышей данным белком и с коммерческими анти-TIM1 человека антителами козы (Invitrogen) на белок, полученный в культуре клеток миеломы мыши NS0, были аналогичны по характеру распределения, что доказывает специфичность рекомбинантного белка protIg-TIM1, полученного в прокариотической системе, и по свойствам сравнимым с коммерческим протеином, полученным в культуре клеток эукариот и кодируемым внеклеточным фрагментом гена TIM-1 человека.
Таким образом, была подтверждена специфичность полученных антител к рецептору TIM-1 человека.
Полученная плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIM1, содержащая район иммуноглобулинового домена гена TIM-1 человека, предполагается к использованию в качестве положительного контроля при разработке ПЦР-систем для выявления ДНК иммуноглобулинового домена гена TIM-1 человека, что было предпринято нами ранее [11].
Штамм продуцент E.coli JM103-Ig-TIM1 может быть использован для продукции белка protIg-TIM1 аналога рецептора TIM-1. Белок protIg-TIM1 может быть применим как самостоятельно в тест системах для ИФА, так и для наработки антител. Возможно использование антител к белку protIg-TIM1 как в тест системах для ИФА, так и для блокирования рецептора при научных исследованиях.
Здесь представлена открытая, поэтапная и детальная процедура получения плазмидной ДНК pQE30-Ig-TIM1. На наш взгляд это даст специалистам в данной области воспроизвести данную процедуру. Синтез белков в прокариотической системе позволяет получать относительно недорогие, нетрудоемкие и большие количества препарата.
Специфичность антител к рекомбинантному белку protIg-TIM1, полученному в прокариотических культуре клеток и кодируемому иммуноглобулиновым доменом гена TIM-1 человека, была показана в сравнении с коммерческими антителами к протеину, наработанному в эукариотической культуре клеток и кодируемому внеклеточным фрагментом гена TIM-1 человека, что является доказательством сохранения желаемой биологической активности белка наработанного в прокариотической системе.
Источники научно-технической и патентной информации.
1. Kaplan G., Totsuka A., Thompson P., Akatsuka Т., Moritsugu Y., Feinstone S. M. Identification of a surface glycoprotein on African green monkey kidney cells as a receptor for hepatitis A virus. Embo j 1996 15, 4282-4296.
2. Moresco R. N., Bochi G. V., Stein C. S., De Carvalho J. A. M., Cembranel B. M., Bollick Y. S. Urinary kidney injury molecule-1 in renal disease. Clin Chim Acta. 2018 Dec; 487:15-21.
3. Wang J, Qiao L, Hou Z, Luo G. TIM-1 promotes hepatitis С virus cell attachment and infection. J Virol 2017 91: eO 1583-16.
4. Kondratowicz A. S., Lennemann N J., Sinn P. L., Davey R. A., Hunt C. L., Moller-Tank S., Meyerholz D. K., Rennert P., Mullins R. F., Brindley
M., Sandersfeld L. M., Quinn K., Weller M., McCray P. В., Jr., Chiorini J., Maury W. T-cell immunoglobulin and mucin domain 1 (TIM-1) is a receptor for Zaire Ebolavirus and Lake Victoria Marburgvirus. Proc Natl Acad Sci U S A. 2011 108, 8426-8431,42.
5. ChuL-W., YangC.-J., Peng K.-J., ChenP.-L., Wang S.-J., PingY.-H. TIM-1 As a Signal Receptor Triggers Dengue Virus-Induced Autophagy. Int J Mol Sci. 2019 Oct 2;20(19):4893.
6. Zhang X., Liang C, WangH., Guo Z., RongH., Pan J., Li W., Pei R., Chen X., Zhang Z., Zhang X.-E., CuimBio Z. T-Cell Immunoglobulin and Mucin Domain 1 (TIM-1) Is a Functional Entry Factor for Tick-Borne Encephalitis Virus 2022 Jan-Feb; 13(1): e02860-21.
7. YangC, Zhang Y., ZengX., ChenH., Chen Y., Yang D., Shen Z., Wang X., LiuX., XiongM., ChenH., HuangK. Kidney injury molecule-1 is a potential receptor for SARS-CoV-2. Journal of Molecular Cell Biology, 2021 Vol 13, Is 3, March, P. 185-196.
8. Freeman G. J., Casasnovas J. M., Umetsu D. Т., De Kruyff R. H. TIM genes: a family of cell surface phosphatidylserine receptors that regulate innate and adaptive immunity. Immunol Rev 2010 May; 235:172-189.
9. Khademi M., Illes Z., Gielen A. W., Marta M., Takazawa N., Baecher-Allan C, Brundin L., Hannerz Jan, Martin C, Harris R. A., Hafler D. A., Kuchroo V. K., Olsson Т., Piehl F., Wallstrom E. T Cell Ig- and Mucin-Domain-Containing Molecule-3 (TIM-3) and TIM-1 Molecules Are Differentially Expressed on Human Th1 and Th2 Cells and in Cerebrospinal Fluid-Derived Mononuclear Cells in Multiple Sclerosis. J Immunol June 1, 2004, 172 (11) 7169-7176.
10. Zheng, X., Xu, K., Chen, L., Zhou, Y. & Jiang, J. Prognostic value of TIM-1 expression in human non-small cell lung cancer. J Transl Med 2019 17, 178.
11. Бондаренко Т. Ю., Святченко В.А., Терновой В.А. Анализ уровня экспрессии гена человека TIM-1 методом количественной ПЦР в реальном времени // Российский иммунологический журнал. - 2019. - Т. 22. - №2-2. - С.722-724.
12. Патент Китая, CN, №101798351, МПК С07K 19/00, опубл. 11.08.2010. Recombinant expression of human TIM-1-Fc fusion protein (прототип).
--->
<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing
1.3//EN" "ST26SequenceListing_V1_3.dtd">
<ST26SequenceListing dtdVersion="V1_3" fileName="Приложение
Рекомбинантная плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIM1.xml" softwareName="WIPO
Sequence" softwareVersion="2.2.0" productionDate="2022-10-19">
<ApplicationIdentification>
<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>
<ApplicationNumberText>1</ApplicationNumberText>
<FilingDate>2022-10-19</FilingDate>
</ApplicationIdentification>
<ApplicantFileReference>1</ApplicantFileReference>
<EarliestPriorityApplicationIdentification>
<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>
<ApplicationNumberText>1</ApplicationNumberText>
<FilingDate>2022-10-19</FilingDate>
</EarliestPriorityApplicationIdentification>
<ApplicantName languageCode="ru">Федеральное бюджетное учреждение
науки «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии
«Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав
потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор»
Роспотребнадзора)</ApplicantName>
<ApplicantNameLatin>State Research Center of Virology and
Biotechnology &quot;Vector&quot;</ApplicantNameLatin>
<InventionTitle languageCode="ru">Рекомбинантная плазмидная ДНК
pQE30-Ig-TIM1 обеспечивающая экспрессию иммуноглобулинового домена
гена TIM-1/HAVCR-1 человека в прокариотической системе E.
Coli</InventionTitle>
<SequenceTotalQuantity>2</SequenceTotalQuantity>
<SequenceData sequenceIDNumber="1">
<INSDSeq>
<INSDSeq_length>363</INSDSeq_length>
<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>
<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>
<INSDSeq_feature-table>
<INSDFeature>
<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>
<INSDFeature_location>1..363</INSDFeature_location>
<INSDFeature_quals>
<INSDQualifier>
<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>other DNA</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
<INSDQualifier id="q2">
<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
</INSDFeature_quals>
</INSDFeature>
</INSDSeq_feature-table>
<INSDSeq_sequence>atgagaggatcgcatcaccatcaccatcacggatccgtaaaggttggtg
gagaggcaggtccatctgtcacactaccctgccactacagtggagctgtcacatccatgtgctggaatag
aggctcatgttctctattcacatgccaaaatggcattgtctggaccaatggaacccacgtcacctatcgg
aaggacacacgctataagctattgggggacctttcaagaagggatgtctctttgaccatagaaaatacag
ctgtgtctgacagtggcgtatattgttgccgtgttgagcaccgtgggtggttcaatgacatgaaaatcac
cgtatcattggagattgtgccaaagcttaattag</INSDSeq_sequence>
</INSDSeq>
</SequenceData>
<SequenceData sequenceIDNumber="2">
<INSDSeq>
<INSDSeq_length>120</INSDSeq_length>
<INSDSeq_moltype>AA</INSDSeq_moltype>
<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>
<INSDSeq_feature-table>
<INSDFeature>
<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>
<INSDFeature_location>1..120</INSDFeature_location>
<INSDFeature_quals>
<INSDQualifier>
<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>protein</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
<INSDQualifier id="q4">
<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>
<INSDQualifier_value>synthetic construct</INSDQualifier_value>
</INSDQualifier>
</INSDFeature_quals>
</INSDFeature>
</INSDSeq_feature-table>
<INSDSeq_sequence>MRGSHHHHHHGSVKVGGEAGPSVTLPCHYSGAVTSMCWNRGSCSLFTCQ
NGIVWTNGTHVTYRKDTRYKLLGDLSRRDVSLTIENTAVSDSGVYCCRVEHRGWFNDMKITVSLEIVPKL
N</INSDSeq_sequence>
</INSDSeq>
</SequenceData>
</ST26SequenceListing>
<---

Claims (8)

  1. Рекомбинантная плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIM1, имеющая размер 3740 п.н., обеспечивающая экспрессию белка protIg-TIM1 с аминокислотной последовательностью SEQ ID NO: 2 - аналога рецептора TIM-1/HAVCR-1/KIM-1/CD365 Т-клеточного иммуноглобулинового муцинового домена человека, кодируемого фрагментом гена TIM-1/HAVCR-1, в прокариотических клетках Е. coli для диагностических и научных исследований и содержащая:
  2. - промотор фага Т5, имеющий координаты 10-54 п.н.;
  3. - RBS-сайт связывания рибосом, имеющий координаты 102-104 п.н.;
  4. - 6xHis-tag с координатами 127-144 п.н.;
  5. - сайты узнавания эндонуклеаз рестрикции BamHI с координатами 146-150 п.н. и Hind III 467-472 п.н.;
  6. - целевую нуклеотидную последовательность SEQ ID NO: 1 плазмиды pQE30-Ig-TIM1, имеющую координаты 151-466 п.н.;
  7. - ColE1 - ориджин репликации, с координатами 790-979 п.н.;
  8. - AmpR - ген β-лактамазы, с координатами 3536-2685 п.н.
RU2023105237A 2023-03-06 Рекомбинантная плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIM1, обеспечивающая экспрессию иммуноглобулинового домена гена TIM-1/HAVCR-1 человека в клетках E. coli для диагностических и научных исследований RU2817391C1 (ru)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2817391C1 true RU2817391C1 (ru) 2024-04-15

Family

ID=

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101603047A (zh) * 2009-06-10 2009-12-16 武汉华美生物工程有限公司 重组人肾脏损伤分子1(kim-1)的原核表达、纯化及其检测方法的建立
CN101798351A (zh) * 2010-03-09 2010-08-11 中国人民解放军第二军医大学 人TIM-1-Fc融合蛋白的重组表达

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101603047A (zh) * 2009-06-10 2009-12-16 武汉华美生物工程有限公司 重组人肾脏损伤分子1(kim-1)的原核表达、纯化及其检测方法的建立
CN101798351A (zh) * 2010-03-09 2010-08-11 中国人民解放军第二军医大学 人TIM-1-Fc融合蛋白的重组表达

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
БОНДАРЕНКО Т.Ю. И ДР. Анализ уровня экспрессии гена человека TIM-1 методом количественной ПЦР в реальном времени. Российский иммунологический журнал, 2019, Т. 13, N 2-2 (22), С. 722-724. MINA EBRAHIMI ET AL. Development of a Stable Cell Line, Overexpressing Human T-cell Immunoglobulin Mucin 1. Iranian Journal of Biotechnology, Volume 13, Issue 4 - Serial Number 4, December 2015, Pages 25-31. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN107298713B (zh) 一种抗pd-l1抗体及应用、制备方法、试剂盒和药物
CA2827618C (en) Compositions and methods of use for the determination of he4a
JP6105474B2 (ja) 抗ヒトノロウイルスgii抗体
JPH05502228A (ja) インテグリン―リガンド結合を阻害するペプチドおよび抗体
CA2539562A1 (en) Methods, kits, and compositions for the development and use of monoclonal antibodies specific to antigens of low immunogenicity
CN111848750B (zh) 一种快速富集和检测2019-nCoV的方法及试剂盒
KR101241667B1 (ko) 신규한 펩타이드 태그 및 그의 용도
Apostolopoulos et al. The isolation and purification of biologically active recombinant and native autoantigens for the study of autoimmune disease
RU2817391C1 (ru) Рекомбинантная плазмидная ДНК pQE30-Ig-TIM1, обеспечивающая экспрессию иммуноглобулинового домена гена TIM-1/HAVCR-1 человека в клетках E. coli для диагностических и научных исследований
JP3847257B2 (ja) Hbvの検出又は測定方法
JP4651495B2 (ja) Isg15タンパク質と特異的に反応するモノクローナル抗体及びそれを産生するハイブリドーマ並びに癌およびウイルス感染の検出方法
CN110894236B (zh) 一种抗曲霉菌半乳甘露聚糖的单克隆抗体及其应用
CN109504667B (zh) Irak-m多克隆抗体及其制备方法
JP2002020399A (ja) ノルウォークウイルス(nv)を認識するモノクローナル抗体
CN103450358A (zh) 一种猪gapdh蛋白抗体及其制备方法与应用
EP1130030A1 (en) Human erythroid differentiation related factor
JP4838436B2 (ja) 抗ヒト肝性トリグリセリドリパーゼ抗体
Cheng et al. Development of a cell marker ELISA for the detection of goose T cell surface CD8α molecules
JP5330294B2 (ja) 抗lcat抗体及びlcatの測定方法
JPH06125784A (ja) モノクローナル抗体,ハイブリドーマ,その製造法および用途
CN115594757A (zh) 抗新型冠状病毒的中和抗体及其制备方法、制剂和用途
Nikolaiev et al. Polyclonal antibodies against the human cell surface CD34 marker
WO2023121506A1 (ru) Средство и способ терапии заболеваний, вызываемых вирусом sars-cov-2
JPH04169195A (ja) 抗ed―bモノクローナル抗体
JP3336775B2 (ja) 抗フコシルトランスフェラーゼ抗体、抗フコシルトランスフェラーゼモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマ及び該抗体を用いたフコシルトランスフェラーゼの測定方法