RU2800127C1 - Universal nutrient medium for cultivating microorganisms - Google Patents
Universal nutrient medium for cultivating microorganisms Download PDFInfo
- Publication number
- RU2800127C1 RU2800127C1 RU2022126114A RU2022126114A RU2800127C1 RU 2800127 C1 RU2800127 C1 RU 2800127C1 RU 2022126114 A RU2022126114 A RU 2022126114A RU 2022126114 A RU2022126114 A RU 2022126114A RU 2800127 C1 RU2800127 C1 RU 2800127C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- nutrient medium
- sensitivity
- medium
- proposed
- casein
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к области биотехнологии, микробиологии, и может быть использовано при приготовлении питательных сред, предназначенных для практического применения в лечебно-профилактических учреждениях, при лабораторной диагностике возбудителей инфекции и определения их отношения к антимикробным препаратам.The invention relates to the field of biotechnology, microbiology, and can be used in the preparation of nutrient media intended for practical use in medical institutions, in the laboratory diagnosis of infectious agents and determining their relationship to antimicrobial drugs.
В настоящее время актуальной проблемой является использование в клинической микробиологии питательных сред отечественного производства, позволяющих достаточно точно проводить идентификацию микроорганизмов. Отсутствие необходимого количества отечественных питательных сред для диагностики вынуждает потребителей к повторам исследования, что отражается на качестве исследования и себестоимости анализа.At present, an urgent problem is the use of domestically produced culture media in clinical microbiology, which allows for fairly accurate identification of microorganisms. The lack of the required amount of domestic nutrient media for diagnostics forces consumers to repeat the study, which affects the quality of the study and the cost of analysis.
Известна питательная среда для культивирования микроорганизмов, содержащая основу вторичного продукта кислотного гидролизата говяжьего мяса, натрий хлористый, натрий фосфорнокислый 2-замещенный 12-водный, натрий сернистокислый, агар микробиологический и дистиллированную воду при заданном содержании компонентов (Патент РФ 2681499, МПК C12N 1/20, C12R 1/01, публ. 2019).Known nutrient medium for cultivating microorganisms containing the basis of the secondary product of acid hydrolyzate of beef meat, sodium chloride, sodium phosphate 2-substituted 12-water, sodium sulphate, microbiological agar and distilled water at a given content of components (RF Patent 2681499, IPC C12N 1/20, C12R 1/01, publ. 2019).
Недостатком этой питательной среды является высокая себестоимость, нестабильность результатов по интенсивности роста, чувствительности к антибактериальным препаратам и слабая чувствительность бактериофагам.The disadvantage of this nutrient medium is the high cost, the instability of the results in terms of growth intensity, sensitivity to antibacterial drugs and low sensitivity to bacteriophages.
Известна питательная среда для культивирования микроорганизмов, которая содержит основу вторичного продукта кислотного гидролизата говяжьего мяса, натрий хлористый, натрий фосфорнокислый 2-замещенный 12-водный, натрий сернистокислый, агар микробиологический и дистиллированную воду при заданном содержании компонентов (Мюллера-Хинтона), https://himedialabs.ru/m173-m391?).Known nutrient medium for the cultivation of microorganisms, which contains the basis of the secondary product of the acid hydrolyzate of beef meat, sodium chloride, sodium phosphate 2-substituted 12-water, sodium sulphate, microbiological agar and distilled water at a given content of components (Muller-Hinton), https://himedialabs.ru/m173-m391?).
Данная питательная среда имеет ряд недостатков: выпускается зарубежными производителями или отечественными, но из импортных компонентов, имеет высокую цену, что ограничивает широту использования. Не обеспечивает получение достоверных результатов при постановке чувствительности ряда микроорганизмов, в частности, бактериофагов.This nutrient medium has a number of disadvantages: it is produced by foreign manufacturers or domestic, but from imported components, has a high price, which limits the breadth of use. It does not provide reliable results when setting the sensitivity of a number of microorganisms, in particular, bacteriophages.
Наиболее близкой по составу является питательная среда, содержащая кислотный гидролизат казеина, мясной экстракт, бактериологический агар, соль двухвалентного металла. Кроме того, в состав питательной среды входят - дефибринированная лошадиная кровь, никотинамидадениндинуклеотид, дрожжевой экстракт и гемоглобин. В качестве соли двухвалентных металлов предложены: кальций D-глюконат, хлорид магния, хлорид марганца и сульфат цинка (Косилова И.С. «Питательная среда для определения чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам». Диссер. на соискание уч. ст. к.б.н., Оболенск - 2021 с. 48-49).The closest in composition is a nutrient medium containing acid casein hydrolyzate, meat extract, bacteriological agar, divalent metal salt. In addition, the composition of the nutrient medium includes defibrinated horse blood, nicotinamide adenine dinucleotide, yeast extract and hemoglobin. As a salt of divalent metals, the following are proposed: calcium D-gluconate, magnesium chloride, manganese chloride and zinc sulfate (Kosilova I.S. "Nutrient medium for determining the sensitivity of microorganisms to antimicrobial drugs." Dissertation for the competition of an academic senior Ph.D., Obolensk - 2021 p. 48-49).
Недостатком этой питательной среды является многокомпонентность, значительно увеличивающая стоимость питательной среды, возможность использования преимущественно только при постановке антибиотикочувствительности.The disadvantage of this nutrient medium is its multicomponent nature, which significantly increases the cost of the nutrient medium, the possibility of using it mainly only when setting up antibiotic sensitivity.
Задачей предлагаемого изобретения является устранение указанных недостатков, создание отечественной питательной среды, предназначенной для выделения широкого спектра микроорганизмов, обеспечение постановки антибиотико- и фагочувствительности с высокой степенью достоверности результатов, доступная стоимость.The objective of the invention is to eliminate these shortcomings, the creation of a domestic nutrient medium designed to isolate a wide range of microorganisms, ensuring the setting of antibiotic and phage sensitivity with a high degree of reliability of the results, affordable cost.
Предлагаемая питательная среда для определения чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам, содержит кислотный гидролизат казеина, мясной экстракт, бактериологический агар, хлорид натрия, соль двухвалентного магния, в качестве которой используют сульфат магния при следующем соотношении компонентов в гР:The proposed nutrient medium for determining the sensitivity of microorganisms to antibacterial drugs contains acid hydrolyzate of casein, meat extract, bacteriological agar, sodium chloride, divalent magnesium salt, which is magnesium sulfate, in the following ratio of components in grP:
То, что в составе питательной среды используют предложенные прописи среды, позволяет посредством отработки рационального качественного и количественного состава, повысить качество питательной среды, а именно: повысить бактериочувствительность, фагочувствительность. Также предлагаемая питательная среда имеет широки спектр применения для выделения любого вида микроорганизмов. Особенно эффективно ее использования для постановки антибиотикочувствительности и чувствительности к бактериофагам за счет сбалансированностью компонентного состава среды.The fact that the proposed formulations of the medium are used as part of the nutrient medium allows, through the development of a rational qualitative and quantitative composition, to improve the quality of the nutrient medium, namely: to increase bacteriosensitivity, phage sensitivity. Also, the proposed nutrient medium has a wide range of applications for the isolation of any kind of microorganisms. Its use is especially effective for setting antibiotic sensitivity and sensitivity to bacteriophages due to the balance of the component composition of the medium.
Предлагаемую питательную среду готовят следующим образом.The proposed nutrient medium is prepared as follows.
Взвешивают солянокислотный гидролизат казеина, мясной экстракт, агар бактериологический и сульфат магния в заданных соотношениях в сухом виде, перемешивают, и по стандарту помещают в герметично закрытую упаковку и хранят в сухом, защищенном от света месте при температуре от 2 до 25°С в течение всего срока годности (2 года).The hydrochloric acid hydrolyzate of casein, meat extract, bacteriological agar and magnesium sulfate are weighed in the specified ratios in dry form, mixed, and according to the standard they are placed in a hermetically sealed package and stored in a dry, dark place at a temperature of 2 to 25 ° C for the entire shelf life (2 years).
Перед началом использования питательной среды в нее добавляют 1 литр дистиллированной воды, тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов. Полученную среду нагреваю до кипения, а затем стерилизуют методом автоклавирования и разливают по чашкам Петри.Before using the nutrient medium, add 1 liter of distilled water to it, mix thoroughly until the ingredients are completely dissolved. The resulting medium is heated to a boil, and then sterilized by autoclaving and poured into Petri dishes.
На предлагаемой питательной среде, состоящей из солянокислотный гидролизат казеина - 11 г, мясной экстракт - 11 г, агар бактериологический - 12 г, сульфат магния - 1,2 г, были проверены ростовые, морфологические свойства, чувствительность к антибиотикам и бактериофагам, с использованием, следующих тест-штаммов: Staphylococcus aureus ATCC® 25923 Esherichia coli ATCC® 25922, Enterococcus faecalis ATCC® 29212, Pseudomonas aeruginosa ATCC® 27853, при посеве инокулята 10-100 КОЕ после аэробной инкубации при 37±2°С в течение 20 часов. Выросшую на питательной среде культуру каждого тест-штамма проверяют визуально на чистоту роста и отсутствие диссоциации, а затем проводят постановку на антибиотикочувствительность и фагочувствительность.On the proposed nutrient medium, consisting of hydrochloric acid hydrolyzate of casein - 11 g, meat extract - 11 g, bacteriological agar - 12 g, magnesium sulfate - 1.2 g, growth, morphological properties, sensitivity to antibiotics and bacteriophages were tested using the following test strains: Staphylococcus aureus ATCC® 25923 Esherichia coli AT CC® 25922, Enterococcus faecalis ATCC® 29212, Pseudomonas aeruginosa ATCC® 27853, when inoculated with 10-100 CFU inoculum after aerobic incubation at 37±2°C for 20 hours. The culture of each test strain grown on a nutrient medium is checked visually for the purity of growth and the absence of dissociation, and then the antibiotic sensitivity and phagosensitivity are tested.
Для контроля качества испытуемой среды проводился посев на универсальную среду Мюллера-Хинтона производства Испания, разрешенную к применению на территории РФ (среда сравнения). Результаты экспериментальной работы представлены в таблице №1 и №2To control the quality of the test medium, inoculation was carried out on the universal Muller-Hinton medium produced in Spain, approved for use in the territory of the Russian Federation (comparison medium). The results of the experimental work are presented in tables No. 1 and No. 2
Использование предлагаемой питательной среды показано на конкретных примерах.The use of the proposed nutrient medium is shown in specific examples.
Пример 1.Example 1
Для приготовления предлагаемой питательной среды взяли солянокислотный гидролизат казеина - 10 г, мясной экстракт - 11 г, агар бактериологический - 12 г, сульфат магния - 1,2 г, добавили 1 литр дистиллированной воды, тщательно перемешали до полного растворения ингредиентов. Полученную среду стерилизовали методом автоклавирования и разлили по чашкам ПетриTo prepare the proposed nutrient medium, hydrochloric acid hydrolyzate of casein was taken - 10 g, meat extract - 11 g, bacteriological agar - 12 g, magnesium sulfate - 1.2 g, 1 liter of distilled water was added, thoroughly mixed until the ingredients were completely dissolved. The resulting medium was sterilized by autoclaving and poured into Petri dishes.
Для проверки качества среды на предлагаемую среду был проведен посев клинического материала, полученный из раневого отделяемого пациента.To check the quality of the environment on the proposed environment was carried out inoculation of clinical material obtained from the wound discharge of the patient.
Посев проводился стандартным методом. После термостатирования засеянных чашек через 18 часов был проведен анализ результатов. На чашках с посевом клинического материала была выделена культура Pseudomonas aeruginosa с типичными морфологическими признаками (колонии желто-зеленого цвета). При постановке чувствительности к антибиотикам были получены значения диаметров зон подавления роста, соответствующие установленной нормы производителей дисков. При постановке чувствительности клинических штаммов к соответствующим бактериофагам были получены зоны лизиса с единичными колониями вторичного роста.Sowing was carried out by the standard method. After incubation of the seeded cups after 18 hours, the analysis of the results was carried out. A Pseudomonas aeruginosa culture with typical morphological features (yellow-green colonies) was isolated on plates with clinical material inoculation. When setting the sensitivity to antibiotics, the values of the diameters of the growth inhibition zones were obtained, corresponding to the established norm of the disc manufacturers. When setting the sensitivity of clinical strains to the corresponding bacteriophages, zones of lysis with single colonies of secondary growth were obtained.
Пример 2.Example 2
Для приготовления предлагаемой питательной среды брали солянокислотный гидролизат казеина - 11 г, мясной экстракт - 12 г, агар бактериологический - 13 г, сульфат магния - 1,3 г, добавляют 1 литр дистиллированной воды, тщательно перемешивали до полного растворения ингредиентов. Провели стерилизацию полученную среду методом автоклавирования и разлили по чашкам ПетриTo prepare the proposed nutrient medium, hydrochloric acid hydrolyzate of casein was taken - 11 g, meat extract - 12 g, bacteriological agar - 13 g, magnesium sulfate - 1.3 g, 1 liter of distilled water was added, thoroughly mixed until the ingredients were completely dissolved. The resulting medium was sterilized by autoclaving and poured into Petri dishes
На предлагаемую среду был проведен посев клинического материала, полученный из отделяемого брюшной полости пациента. Посев проводился стандартным методом. После термостатирования засеянных чашек через 18 часов был проведен анализ результатов. На чашках с посевом клинического материала были выделены культуры Escherichia coli, и Enterococcus faecalis с типичными морфологическими признаками.On the proposed environment was carried out inoculation of clinical material obtained from the discharge of the patient's abdominal cavity. Sowing was carried out by the standard method. After incubation of the seeded cups after 18 hours, the analysis of the results was carried out. Escherichia coli and Enterococcus faecalis cultures with typical morphological features were isolated on plates with inoculation of clinical material.
При постановке чувствительности к антибиотикам были получены значения диаметров зон подавления роста соответствующие установленной нормы производителей дисков. При постановке чувствительности клинических штаммов к соответствующим бактериофагам были получены зоны лизиса с единичными колониями вторичного роста.When setting the sensitivity to antibiotics, the values of the diameters of the zones of growth suppression were obtained corresponding to the established norm of the disc manufacturers. When setting the sensitivity of clinical strains to the corresponding bacteriophages, zones of lysis with single colonies of secondary growth were obtained.
Пример 3.Example 3
Для приготовления предлагаемой питательной среды взяли солянокислотный гидролизат казеина - 12 г, мясной экстракт - 13 г агар бактериологический - 15 г, сульфат магния - 1,4 г, добавили 1 литр дистиллированной воды, тщательно перемешали до полного растворения ингредиентов. Полученную среду стерилизовали методом автоклавирования и разлили по чашкам ПетриTo prepare the proposed nutrient medium, hydrochloric acid hydrolyzate of casein was taken - 12 g, meat extract - 13 g, bacteriological agar - 15 g, magnesium sulfate - 1.4 g, 1 liter of distilled water was added, thoroughly mixed until the ingredients were completely dissolved. The resulting medium was sterilized by autoclaving and poured into Petri dishes.
На предлагаемую среду был проведен посев клинического материала, полученный из отделяемого гайморовой полости пациента. Посев проводился стандартным методом. После термостатирования засеянных чашек через 18 часов был проведен анализ результатов. На чашках с посевом клинического материала были выделена культура Staphylococcus aureus с типичными морфологическими признаками. При постановке чувствительности к антибиотикам были получены значения диаметров зон подавления роста соответствующие установленной нормы производителей дисков. При постановке чувствительности клинических штаммов к соответствующим бактериофагам были получены зоны лизиса с единичными колониями вторичного роста.On the proposed environment was carried out inoculation of clinical material obtained from the discharge of the maxillary cavity of the patient. Sowing was carried out by the standard method. After incubation of the seeded cups after 18 hours, the analysis of the results was carried out. A culture of Staphylococcus aureus with typical morphological features was isolated on plates with inoculation of clinical material. When setting the sensitivity to antibiotics, the values of the diameters of the zones of growth suppression were obtained corresponding to the established norm of the disc manufacturers. When setting the sensitivity of clinical strains to the corresponding bacteriophages, zones of lysis with single colonies of secondary growth were obtained.
Пример 4.Example 4
Для приготовления предлагаемой питательной среды в смесь солянокислотного гидролизата казеина - 12 г, мясного экстракта - 11 г, агара бактериологического - 12 г, сульфат магния - 1,2 г, добавили 1 литр дистиллированной воды, тщательно перемешали до полного растворения ингредиентов. Полученную среду простерилизовали и разлили по чашкам ПетриTo prepare the proposed nutrient medium in a mixture of hydrochloric acid hydrolyzate of casein - 12 g, meat extract - 11 g, bacteriological agar - 12 g, magnesium sulfate - 1.2 g, 1 liter of distilled water was added, thoroughly mixed until the ingredients were completely dissolved. The resulting medium was sterilized and poured into Petri dishes.
Для проверки качества среды на предлагаемую среду был проведен посев клинического материала, полученный из отделяемого прямой кишки пациента. Посев проводился стандартным методом. После термостатирования засеянных чашек через 18 часов был проведен анализ результатов. На чашках с посевом клинического материала были выделены культуры Esherichia coli, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus с типичными морфологическими признаками. При постановке чувствительности к антибиотикам были получены значения диаметров зон подавления роста соответствующие установленной нормы производителей дисков. При постановке чувствительности клинических штаммов к соответствующим бактериофагам были получены зоны лизиса с единичными колониями вторичного роста.To check the quality of the environment on the proposed environment was carried out inoculation of clinical material obtained from the detachable rectum of the patient. Sowing was carried out by the standard method. After incubation of the seeded cups after 18 hours, the analysis of the results was carried out. Cultures of Esherichia coli, Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus with typical morphological features were isolated on plates with inoculation of clinical material. When setting the sensitivity to antibiotics, the values of the diameters of the zones of growth suppression were obtained corresponding to the established norm of the disc manufacturers. When setting the sensitivity of clinical strains to the corresponding bacteriophages, zones of lysis with single colonies of secondary growth were obtained.
Пример 5.Example 5
Для приготовления предлагаемой питательной среды взяли солянокислотный гидролизат казеина - 10 г, мясной экстракт - 14 г, агар бактериологический - 14 г, сульфат магния - 1,4 г, добавляют 1 литр дистиллированной воды, тщательно перемешали до полного растворения ингредиентов. Полученную среду стерилизовали и разлили по чашкам Петри.To prepare the proposed nutrient medium, hydrochloric acid hydrolyzate of casein was taken - 10 g, meat extract - 14 g, bacteriological agar - 14 g, magnesium sulfate - 1.4 g, 1 liter of distilled water was added, thoroughly mixed until the ingredients were completely dissolved. The resulting medium was sterilized and poured into Petri dishes.
Для проверки качества среды на предлагаемую среду был проведен посев клинического материала, полученный из отделяемого прямой кишки пациента. Посев проводился стандартным методом. После термостатирования засеянных чашек через 18 часов был проведен анализ результатов. На чашках с посевом клинического материала были выделены культуры Esherichia coli, Enterococcus faecalis, с типичными морфологическими признаками. При постановке чувствительности к антибиотикам были получены значения диаметров зон подавления роста соответствующие установленной нормы производителей дисков. При постановке чувствительности клинических штаммов к соответствующим бактериофагам были получены зоны лизиса отражающие высокую чувствительность.To check the quality of the environment on the proposed environment was carried out inoculation of clinical material obtained from the detachable rectum of the patient. Sowing was carried out by the standard method. After incubation of the seeded cups after 18 hours, the analysis of the results was carried out. Cultures of Esherichia coli, Enterococcus faecalis, with typical morphological features, were isolated on plates with inoculation of clinical material. When setting the sensitivity to antibiotics, the values of the diameters of the zones of growth suppression were obtained corresponding to the established norm of the disc manufacturers. When setting the sensitivity of clinical strains to the corresponding bacteriophages, lysis zones were obtained reflecting high sensitivity.
Таким образом заявленная питательная среда удовлетворяет требованиям на основании стабильности основных биологических свойств, скорости роста, чувствительности, антибиотико- и фагочувствительности.Thus, the claimed nutrient medium satisfies the requirements on the basis of the stability of the main biological properties, growth rate, sensitivity, antibiotic and phage sensitivity.
Указанные характеристики предлагаемой среды в совокупности ее компонентов повышают эффективность диагностики клинических исследований. Универсальность среды обеспечивает как рост микроорганизмов, так и постановку антибиотико- и фагочувствительность.These characteristics of the proposed environment in the aggregate of its components increase the efficiency of diagnostics of clinical trials. The versatility of the medium ensures both the growth of microorganisms and the setting of antibiotic and phage sensitivity.
Claims (3)
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2800127C1 true RU2800127C1 (en) | 2023-07-18 |
Family
ID=
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2681499C1 (en) * | 2017-12-04 | 2019-03-06 | Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" | Nutrient medium on basis of secondary product of beef hydrolyzate for cultivation of microorganisms |
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2681499C1 (en) * | 2017-12-04 | 2019-03-06 | Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" | Nutrient medium on basis of secondary product of beef hydrolyzate for cultivation of microorganisms |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| Клинические рекомендации, Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам, Версия 2018.03, с. 13-40, file:///C:/Users/otd1357/Downloads/clrec-dsma2018-1.pdf. Deutsches Institut fur Normung, Medical Microbiology - Susceptibility Testing of Pathogens to Antimicrobial Agents, Berlin: DIN., 1999. p. 58940-58944. * |
| КОСИЛОВА И.С., Питательная среда для определения чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам", диссертация, Оболенск, 2021, весь документ. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Parveen et al. | Detection of uropathogens by using chromogenic media (Hicrome UTI agar), CLED agar and other conventional media | |
| CN100392096C (en) | Two phase Roe's culture medium and preparation method thereof | |
| Balamuth et al. | Simple, Standardized Culture Medium for Physiological Studies on Entamoeba histolytica. | |
| RU2800127C1 (en) | Universal nutrient medium for cultivating microorganisms | |
| RU2626568C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of plague microbe of ypestis ev vaccine strain | |
| RU2681285C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of brucella neotomae species cultivation | |
| Graham-Smith | Some Factors influencing the Actions of Dyes and Allied Compounds on Bacteria1 | |
| RU2759831C1 (en) | Nutrient medium for cultivating microorganisms from burkholderia cepacia complex | |
| JP2010075145A (en) | Culture medium for measuring number of general living bacteria | |
| RU2688335C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation of brucellosis agent | |
| RU2702174C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of vaccine strain of plague microbe yersinia pestis ev | |
| RU2681499C1 (en) | Nutrient medium on basis of secondary product of beef hydrolyzate for cultivation of microorganisms | |
| RU2748808C1 (en) | Dense universal nutrient medium for growing brucella biomass | |
| RU2648160C2 (en) | Nutrient medium for the isolation of bacteria yersinia enterocolitica | |
| RU2711914C1 (en) | Nutrient medium for separation and identification of para-hemolytic vibrios (embodiments) and method for production thereof (embodiments) | |
| RU2510416C1 (en) | Nutritive medium for extraction of lactobacteria | |
| RU2264455C2 (en) | Broth for selective accumulation yersinia enterocolitica and yersinia pseudotuberculosis | |
| RU2041947C1 (en) | Culture medium for isolation of diphtheritic microbe | |
| RU2247775C1 (en) | Liquid nutrient transporting medium for collection, culturing and transportation of patient blood with suspicion for brucellosis | |
| RU2529364C1 (en) | Biphasic transport nutrient medium for isolation and growing brucellar microbe | |
| RU2729389C1 (en) | Method of producing a nutrient base of media for extracting and cultivating legionella | |
| RU2767782C1 (en) | Nutrient medium for obtaining listeria biomass | |
| RU2266956C2 (en) | Broth for brucelle isolation | |
| RU2580227C1 (en) | Medium for isolation of legionella pneumophila | |
| RU2710160C1 (en) | Nutrient medium for extracting pseudomonas aeruginosa from water bodies |