RU2798124C9 - Method of obtaining brucellosis polystyrene latex diagnosticum - Google Patents
Method of obtaining brucellosis polystyrene latex diagnosticum Download PDFInfo
- Publication number
- RU2798124C9 RU2798124C9 RU2022129422A RU2022129422A RU2798124C9 RU 2798124 C9 RU2798124 C9 RU 2798124C9 RU 2022129422 A RU2022129422 A RU 2022129422A RU 2022129422 A RU2022129422 A RU 2022129422A RU 2798124 C9 RU2798124 C9 RU 2798124C9
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- brucellosis
- latex
- diagnosticum
- concentration
- antigen
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, микробиологии и, в частности, к способу получения латексных диагностикумов для реакции агглютинации латекса.The invention relates to biotechnology, microbiology and, in particular, to a method for producing latex diagnostics for the latex agglutination reaction.
Полимерные микросферы (латексные частицы) с адсорбированными на них молекулами антител или антигенов вступают в реакцию и агглютинируют с соответствующими антигенами микроорганизмов или антителами. Полимерные микросферы являются удобной и гибкой системой для разработки диагностических препаратов, применяемых в реакции агглютинации латекса (РАЛ). При выборе полимерных микросфер обычно учитывают диаметр и распределение частиц по размерам, состав, химические свойства поверхности (реакционные группы, функциональность, заряд) и другие более специфические свойства, такие как наличие хромофорных наполнителей (красителей), наночастиц металлов и их оксидов. Для латексной агглютинации чаще применяются микросферы (окрашенные, неокрашенные) с размером 0,2-1,0 мкм, активированные (для ковалентной сшивки) и неактивированные (для физической сорбции). Важным параметром является и состав полимерных микросфер. Обычно полимерные микросферы состоят из полиакролеина, полистирола, полиметилметакрилата. Эти материалы обладают различными физическими и оптическими свойствами, которые могут показывать преимущества или же накладывать некоторые ограничения их использования [1].Polymer microspheres (latex particles) with molecules of antibodies or antigens adsorbed on them react and agglutinate with the corresponding antigens of microorganisms or antibodies. Polymer microspheres are a convenient and flexible system for the development of diagnostic drugs used in the latex agglutination reaction (LAR). When choosing polymer microspheres, the diameter and size distribution of particles, composition, chemical properties of the surface (reactive groups, functionality, charge) and other more specific properties, such as the presence of chromophoric fillers (dyes), metal nanoparticles and their oxides are usually taken into account. For latex agglutination, microspheres (colored, uncolored) with a size of 0.2-1.0 microns, activated (for covalent cross-linking) and non-activated (for physical sorption) are most often used. The composition of polymer microspheres is also an important parameter. Typically, polymer microspheres consist of polyacrolein, polystyrene, and polymethyl methacrylate. These materials have different physical and optical properties, which may show advantages or impose some limitations on their use [1].
Для выявления антител против возбудителя бруцеллеза применяются различные серологические методы (реакция непрямой гемагглютинации - РИГА; иммуноферментный анализ - ИФА; реакция агглютинации латекса - РАЛ и т.д.), обладающие своими достоинствами и недостатками.To detect antibodies against the causative agent of brucellosis, various serological methods are used (indirect hemagglutination reaction - RIHA; enzyme-linked immunosorbent assay - ELISA; latex agglutination reaction - RAL, etc.), which have their own advantages and disadvantages.
Известен способ получения R-бруцеллезного эритроцитарного диагностикума для РИГА [2], заключающийся в приготовлении формалинизированных эритроцитов барана, с последующей их сенсибилизацией сенситином, полученным выращиванием бактериальной массы В. abortus 16/4, ее смывом, инактивацией, экстрагированием, отделением сенситина центрифугированием, воздействием на бактериальные клетки додецилсульфатом натрия.There is a known method for obtaining R-brucellosis erythrocyte diagnosticum for RIGA [2], which consists in the preparation of formalinized sheep erythrocytes, followed by their sensitization with sensitin obtained by growing the bacterial mass B. abortus 16/4, its washing, inactivation, extraction, separation of sensitin by centrifugation, exposure on bacterial cells with sodium dodecyl sulfate.
Недостатком данного способа является использование биологического сырья - эритроцитов барана, сложно поддающихся стандартизации, чьи параметры зависят от таких факторов, как пол, возраст животного, время взятия крови. Кроме того, для получения качественных эритроцитарных диагностикумов формалинизированные эритроциты для стабилизации необходимо выдерживать в течение года.The disadvantage of this method is the use of biological raw materials - sheep erythrocytes, which are difficult to standardize, whose parameters depend on factors such as gender, age of the animal, and time of blood collection. In addition, to obtain high-quality erythrocyte diagnostics, formalinized erythrocytes must be kept for a year for stabilization.
Известен способ получения иммуноферментных тест-систем на основе моноклональных антител против S-ЛПС (S-липополисахарид) и R-ЛПС (R-липополисахарид), меченных пероксидазой хрена, для дифференциальной диагностики бруцеллеза [3].There is a known method for producing enzyme-linked immunosorbent test systems based on monoclonal antibodies against S-LPS (S-lipopolysaccharide) and R-LPS (R-lipopolysaccharide), labeled with horseradish peroxidase, for the differential diagnosis of brucellosis [3].
Недостатком данного способа является сравнительная сложность получения тест-системы и постановки анализа, возможность ложноположительных результатов, необходимость использования химически чистой посуды. Помимо этого, обязательным условием является наличие в лаборатории фотометра для учета результатов.The disadvantage of this method is the relative complexity of obtaining a test system and performing an analysis, the possibility of false positive results, and the need to use chemically clean glassware. In addition, a prerequisite is the presence of a photometer in the laboratory to record the results.
Наиболее близким к заявляемому способу является способ получения иммунодиагностикума на основе полистирольного латекса [4]. Для получения иммунодиагностикума в соответствии с предлагаемым изобретением к 2% суспензии сферических частиц полистирольного карбоксилированного латекса с иммобилизованным на их поверхности специфическим к данному заболеванию белком в 0,1 М глициновом буфере рН 8,2 (буфер) прибавляют равный объем раствора α-казеина (10 мг/мл) в буфере, приготовленного следующим образом: α-казеин растворяют в рассчитанном количестве буфера, прогревают 30 мин при 37°С, раствор осветляют центрифугированием в течение 15 мин при 5000 об/мин. Оптимальная концентрация раствора α-казеина для насыщения свободных центров связывания - 0,4 мг/мл. Смесь латексной суспензии с раствором α-казеина тщательно встряхивают и оставляют при комнатной температуре на 30 мин, после чего помещают в холодильник (4°С) на 24 ч. Описанный общий подход позволяет получать широкий спектр диагностикумов, отличающихся только специфическим белком, иммобилизованным на поверхности полимера, однако наличие казеина в составе препарата значительно сокращает срок его годности из-за возможности бактериального пророста. Недостатком данного способа является и то, что диагностикумы, полученные описанным методом, не являются достаточно чувствительными: максимальное разведение сыворотки, которое позволяет обнаружить данный препарат, составляет 1:320.The closest to the claimed method is a method for producing an immunodiagnosticum based on polystyrene latex [4]. To obtain an immunodiagnosticum in accordance with the present invention, an equal volume of α-casein solution (10 mg/ml) in a buffer prepared as follows: α-casein is dissolved in the calculated amount of buffer, heated for 30 minutes at 37°C, the solution is clarified by centrifugation for 15 minutes at 5000 rpm. The optimal concentration of α-casein solution to saturate free binding sites is 0.4 mg/ml. The mixture of the latex suspension with the α-casein solution is thoroughly shaken and left at room temperature for 30 minutes, after which it is placed in the refrigerator (4°C) for 24 hours. The described general approach makes it possible to obtain a wide range of diagnostics, differing only in the specific protein immobilized on the surface polymer, however, the presence of casein in the composition of the drug significantly reduces its shelf life due to the possibility of bacterial growth. The disadvantage of this method is that the diagnostics obtained by the described method are not sensitive enough: the maximum dilution of serum that allows the detection of this drug is 1:320.
Цель изобретения - разработка способа получения активного и специфичного бруцеллезного полистирольного латексного диагностикума для выявления антител в реакции агглютинации латекса.The purpose of the invention is to develop a method for producing an active and specific brucellosis polystyrene latex diagnosticum for detecting antibodies in the latex agglutination reaction.
Технический результат изобретения заключается в том, что полимерную суспензию центрифугируют, доводят 0,9% раствором натрия хлорида до концентрации 2% по сухому остатку полимера и смешивают в равных объемах с разрушенным на ультразвуковом дезинтеграторе антигеном бруцеллезного микроба из штамма Brucella (В.) abortus 19 ВА в концентрации 2×109 м.к./мл на 12% растворе натрия хлорида, окрашенным бриллиантовым зеленым (0,004%) и генцианвиолетом (0,002%); инкубируют при температуре 37°С в течение 2 ч и 12-16 ч в холодильнике при температуре 4°С; дважды отмывают от несвязавшегося антигена 0,1 М фосфатно-солевым буфером, рН 7,2-7,4 путем центрифугирования при 5000 об/мин, в течение 10 мин; осадок ресуспендируют в 0,1% растворе желатина до 0,2% концентрации и стабилизируют формалином до 0,1%.The technical result of the invention is that the polymer suspension is centrifuged, adjusted with a 0.9% sodium chloride solution to a concentration of 2% based on the dry residue of the polymer and mixed in equal volumes with the brucellosis microbe antigen from the Brucella (B.) abortus 19 strain destroyed on an ultrasonic disintegrator VA at a concentration of 2×10 9 mc/ml in a 12% sodium chloride solution, colored with brilliant green (0.004%) and gentian violet (0.002%); incubate at a temperature of 37°C for 2 hours and 12-16 hours in a refrigerator at a temperature of 4°C; washed twice from unbound antigen with 0.1 M phosphate-buffered saline, pH 7.2-7.4 by centrifugation at 5000 rpm for 10 minutes; the sediment is resuspended in a 0.1% gelatin solution to 0.2% concentration and stabilized with formaldehyde to 0.1%.
Для получения бруцеллезного латексного диагностикума для выявления антител в РАЛ использовали латекс для агглютинации (ООО «Диаэм», Москва) с размером частиц 0,8 мкм, содержанием полистирола по сухому остатку - 10% и додецилсульфата натрия - 0,01%. В качестве лиганда применяли взвесь бруцеллезного микроба В. abortus 19 ВА, выращенного на агаре Альбими при температуре (37±1)°С в течение (48±1) ч. Смыв бакмассы проводили 12% раствором натрия хлорида. Далее бакмассу прогревали при 100°С в течение 60 мин. После контроля общей и специфической стерильности бакмассы, разводили взвесь до концентрации 2×109 м.к./мл 12% раствором натрия хлорида с 0,5% фенола. Добавляли анилиновые красители трифенилметанового ряда: бриллиантовый зеленый до 0,004% концентрации и генцианвиолет до 0,002% концентрации. Антиген разрушали на гомогенизаторе ультразвуковом (Sonicator Q125, Qsonica LLC) в течение 2 мин (частота 20 Гц).To obtain a brucellosis latex diagnosticum for detecting antibodies in RAL, we used latex for agglutination (Diaem LLC, Moscow) with a particle size of 0.8 microns, a polystyrene content of dry residue - 10% and sodium dodecyl sulfate - 0.01%. A suspension of the brucellosis microbe B. abortus 19 BA, grown on Albimi agar at a temperature of (37±1)°C for (48±1) hours, was used as a ligand. The bacterium was washed off with a 12% sodium chloride solution. Next, the bakmass was heated at 100°C for 60 minutes. After monitoring the general and specific sterility of the bacmass, the suspension was diluted to a concentration of 2×10 9 mc/ml with a 12% sodium chloride solution with 0.5% phenol. Aniline dyes of the triphenylmethane series were added: brilliant green to 0.004% concentration and gentian violet to 0.002% concentration. The antigen was destroyed using an ultrasonic homogenizer (Sonicator Q125, Qsonica LLC) for 2 min (frequency 20 Hz).
Контроль чувствительности и специфичности разработанных экспериментальных серий препарата проводили с гомологичными и гетерологичными сыворотками. РАЛ ставили в U-образных (круглодонных) микропланшетах.The sensitivity and specificity of the developed experimental series of the drug were monitored with homologous and heterologous sera. RAL was placed in U-shaped (round-bottomed) microplates.
Для контроля чувствительности РАЛ использованы бруцеллезные сыворотки: иммунная кроличья сыворотка, полученная в ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Роспотребнадзора (экспериментальная серия) и сыворотка диагностическая поливалентная бруцеллезная сухая для реакции агглютинации (ФКУЗ Иркутский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора).To control the sensitivity of RAL, brucellosis sera were used: immune rabbit serum obtained at the Stavropol Anti-Plague Institute of Rospotrebnadzor (experimental series) and diagnostic polyvalent brucellosis dry serum for the agglutination reaction (FKUI Irkutsk Research Anti-Plague Institute of Rospotrebnadzor).
Для контроля специфичности использованы следующие сыворотки: диагностическую холерную O1 адсорбированную сухую для РА (ФКУН «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»); диагностическую сальмонеллезную адсорбированную О-поливалентную для РА (ЗАО «Эколаб»); диагностическую туляремийную сухую для РА (ФКУЗ Иркутский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора).To control specificity, the following sera were used: diagnostic cholera O1 adsorbed dry sera for RA (FKUN “Russian Research Antiplague Institute “Microbe”); diagnostic salmonella adsorbed O-polyvalent for RA (JSC "Ekolab"); diagnostic dry tularemia for RA (FKUZ Irkutsk Research Antiplague Institute of Rospotrebnadzor).
Постановку РАЛ (микрометод) осуществляли следующим образом: во все лунки (8 рядов) планшета вносили по 25 мкл разводящей жидкости твин-80 в разведении 1:25 тыс. Далее, в первые лунки рядов по 25 мкл гомологичных и гетерологичных сывороток в разведении 1:100, титровали с шагом 2, получая разведения в лунках от 1:200 до 1:12800, восьмые ряды - отрицательные контроли (в них сыворотки не вносили). Затем во все лунки капали по 25 мкл разработанного диагностикума бруцеллезного латексного. Чувствительность РАЛ составила 1:800-1:1600, что соответствует чувствительности бруцеллезного эритроцитарного диагностикума. При контроле специфичности установлено, что с сальмонеллезной, холерной сыворотками отсутствовала перекрестная реакция, а с туляремийной - наблюдалась перекрестная реакция до ¼ титра диагностикума, что соответствует требованиям нормативных документов, предъявляемых к данным видам диагностикумов. Возможность практического применения изобретения иллюстрируется примерами его конкретного выполнения с использованием совокупности заявляемых признаков.The RAL setup (micromethod) was carried out as follows: 25 μl of Tween-80 dilution liquid at a dilution of 1:25 thousand was added to all wells (8 rows) of the plate. Next, 25 μl of homologous and heterologous sera at a dilution of 1 were added to the first wells of the rows: 100, titrated in steps of 2, obtaining dilutions in wells from 1:200 to 1:12800, the eighth rows are negative controls (no serum was added to them). Then 25 μl of the developed brucellosis latex diagnosticum was dropped into all wells. The sensitivity of RAL was 1:800-1:1600, which corresponds to the sensitivity of the brucellosis erythrocyte diagnosticum. When monitoring specificity, it was found that there was no cross-reaction with salmonella and cholera sera, and with tularemia, a cross-reaction of up to ¼ titer of the diagnosticum was observed, which meets the requirements of regulatory documents for these types of diagnosticums. The possibility of practical application of the invention is illustrated by examples of its specific implementation using the set of claimed features.
Пример 1. Разработка способа получения бруцеллезного латексного диагностикума для реакции агглютинации с бруцеллезным антигеном В. abortus 19 ВА в соотношении 1:2.Example 1. Development of a method for producing brucellosis latex diagnosticum for an agglutination reaction with the brucellosis antigen B. abortus 19 BA in a ratio of 1:2.
Для получения бруцеллезного антигенного латексного диагностикума использован полистирольный латекс для агглютинации с размером частиц 0,8 мкм. В качестве лиганда для иммобилизации применяли взвесь В. abortus 19 ВА в концентрации 2×109 м.к./мл на 12% растворе натрия хлорида, инактивированную прогреванием при 100°С в течение 60 мин с добавлением 0,5% фенола и разрушенную на гомогенизаторе ультразвуковом в течение 2 мин. В качестве антисептиков и красителей использованы бриллиантовый зеленый - до 0,004%, генцианвиолет - до 0,002% концентрации. Латекс (2%) и антиген смешивали в объемном соотношении 1:2. Смесь инкубировали при перемешивании и температуре 37°С в течение 2 час и 12-16 час в холодильнике, при температуре 4°С. Далее центрифугировали при 5000 об/мин в течение 10 мин, дважды отмывали от несвязавшегося антигена 0,1 М ФСБ, рН 7,2-7,4 и последний осадок ресуспендировали в 0,1% растворе желатина до 0,2% концентрации. Для стабилизации и возможности хранения длительное время вносили формалин до 0,1% концентрации. При постановке РАЛ в микропланшете чувствительность составила 1:1600, при отсутствии перекрестных реакций с холерной и сальмонеллезной сыворотками и до ¼ титра диагностикума с туляремийной, что соответствует нормативной документации на данные препараты и может быть использовано в работе.To obtain a brucellosis antigenic latex diagnosticum, polystyrene latex was used for agglutination with a particle size of 0.8 microns. A suspension of B. abortus 19 BA was used as a ligand for immobilization at a concentration of 2 × 10 9 m.c./ml in a 12% sodium chloride solution, inactivated by heating at 100°C for 60 min with the addition of 0.5% phenol and destroyed on an ultrasonic homogenizer for 2 minutes. Brilliant green - up to 0.004%, gentian violet - up to 0.002% concentration were used as antiseptics and dyes. Latex (2%) and antigen were mixed in a volume ratio of 1:2. The mixture was incubated with stirring and a temperature of 37°C for 2 hours and 12-16 hours in a refrigerator at a temperature of 4°C. Next, it was centrifuged at 5000 rpm for 10 minutes, washed twice from unbound antigen with 0.1 M PBS, pH 7.2-7.4, and the last sediment was resuspended in a 0.1% gelatin solution to a 0.2% concentration. For stabilization and storage for a long time, formaldehyde was added to a concentration of 0.1%. When performing RAL in a microplate, the sensitivity was 1:1600, in the absence of cross-reactions with cholera and salmonella sera and up to ¼ titer of the diagnosticum with tularemia, which corresponds to the regulatory documentation for these drugs and can be used in work.
Пример 2. Разработка способа получения бруцеллезного латексного диагностикума для реакции агглютинации с бруцеллезным антигеном В. abortus 19 ВА в соотношении 1:1.Example 2. Development of a method for producing brucellosis latex diagnosticum for an agglutination reaction with the brucellosis antigen B. abortus 19 BA in a 1:1 ratio.
Получали диагностикум аналогично примеру 1, только с одним отличием -латекс иммобилизовали с бруцеллезным антигеном в соотношении 1:1. При этом чувствительность составила 1:1600.The diagnosticum was prepared similarly to example 1, with only one difference - the latex was immobilized with brucellosis antigen in a 1:1 ratio. In this case, the sensitivity was 1:1600.
Таким образом, целесообразней использовать приготовление диагностикума по примеру 2, исключая излишний перерасход антигена.Thus, it is more expedient to use the preparation of diagnosticum according to example 2, excluding unnecessary waste of antigen.
Используемая литератураUsed Books
1. G&T Polymer Technologies [Электронный ресурс]: URL http://gtpt.ru (дата обращения: 24.05.2021).1. G&T Polymer Technologies [Electronic resource]: URL http://gtpt.ru (access date: 05/24/2021).
2. Способ изготовления R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (РИГА): пат. 2491553 Рос. Федерация. №2011140108/15 / Карлова М.Ю., Дегтяренко Л.В.; заявл. 03.10.2011; опубл. 27.08.2013, Бюл. №24. 7 с.2. Method of manufacturing R-brucellosis erythrocyte antigen for the indirect hemagglutination reaction (RIHA): Pat. 2491553 Ross. Federation. No. 2011140108/15 / Karlova M.Yu., Degtyarenko L.V.; application 03.10.2011; publ. 08/27/2013, Bulletin. No. 24. 7 p.
3. Способ дифференциальной диагностики бруцеллеза: пат. 2490647 Рос. Федерация. №2009144376/10 / Юдин В.И., Козлов В.Е., Безгин В.М., Скляров О.Д.; заявл. 30.11.2009; опубл. 20.08.2013, Бюл. №23. 9 с.3. Method for differential diagnosis of brucellosis: Pat. 2490647 Ross. Federation. No. 2009144376/10 / Yudin V.I., Kozlov V.E., Bezgin V.M., Sklyarov O.D.; application November 30, 2009; publ. 08/20/2013, Bulletin. No. 23. 9 p.
4. Иммунодиагностикум на основе полистирольного латекса: пат. 2231366 Рос. Федерация. №2002113997/14 / Леонова В.Б., Розенфельд М.А.; заявл. 29.05.2002; опубл. 27.06.2004, Бюл. №18. 8 с.4. Immunodiagnosticum based on polystyrene latex: patent. 2231366 Ross. Federation. No. 2002113997/14 / Leonova V.B., Rosenfeld M.A.; application 05/29/2002; publ. 06/27/2004, Bulletin. No. 18. 8 p.
Claims (1)
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2798124C1 RU2798124C1 (en) | 2023-06-15 |
RU2798124C9 true RU2798124C9 (en) | 2023-09-08 |
Family
ID=
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2231366C2 (en) * | 2002-05-29 | 2004-06-27 | Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН | Polystyrene latex-base immunodiagnosticum |
RU2270449C1 (en) * | 2004-07-15 | 2006-02-20 | Татьяна Петровна Лобова | Method for production of latex diagnosticum for latex-agglutination reaction |
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2231366C2 (en) * | 2002-05-29 | 2004-06-27 | Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН | Polystyrene latex-base immunodiagnosticum |
RU2270449C1 (en) * | 2004-07-15 | 2006-02-20 | Татьяна Петровна Лобова | Method for production of latex diagnosticum for latex-agglutination reaction |
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ROUSHDY C.M. et al. "Latex agglutination: A rapid, specific immunoassay for diagnosis of ruminant Brucellosis"; Advances in animal and veterinary sciences, 2021, v. 9 (9), p. 1292-1301. MINGSONG ZHU et al. "A highly sensitive dual-color lateral flow immunoassay for brucellosis using one-step synthesized microspheres"; Analytical methods, 2019, N 11, p.2937-2942. ЖАРИКОВА И.В. "Методологические подходы и разработка биотехнологии иммунологических препаратов для диагностики инфекции особо опасных заболеваний и детекции их возбудителей"; Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук, 2004, Ставрополь с.1-40. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US3915805A (en) | Quantitative detection of endotoxin in biological fluids | |
CN108593641B (en) | Kit and method for quantitatively detecting substance to be detected in whole blood sample | |
US4711841A (en) | Method for determining one or more antigens in a sample | |
AU2017321642B2 (en) | Antibody measurement method using antigen-carrying insoluble carrier particles on which antigen is immobilized by different methods, and reagent for antibody measurement | |
Ellis et al. | Diagnostic particle agglutination using ultrasound: a new technology to rejuvenate old microbiological methods | |
RU2798124C9 (en) | Method of obtaining brucellosis polystyrene latex diagnosticum | |
JPH0795065B2 (en) | Water-insoluble reagent, element containing the same and method of using the same | |
RU2798124C1 (en) | Method of obtaining brucellosis polystyrene latex diagnosticum | |
Prathapan et al. | Surface engineering of transparent cellulose nanocrystal coatings for biomedical applications | |
EP2126576B1 (en) | Reagent for detection of analyte and processes thereof | |
US5093235A (en) | Immuno-dye reagent and assay for detection of endotoxin | |
EP0134868A1 (en) | Unicellular organisms activated by glutaraldehyde as solid carriers for sensitizing agents and uses of sensitized unicellular organisms | |
RU2777803C1 (en) | Method for obtaining latex diagnostic antigens for the detection of antibodies against pathogens of brucellosis, tularemia | |
JP2000088854A (en) | High sensitive immunological detection measuring method for microorganism (bacteria, fungus, virus, producing substance) and quantitative method | |
Nielsen et al. | Haemolysis in gel test for detecting bovine antibodies to Brucella abortus lipopolysaccharide | |
RU2815784C1 (en) | Method of producing polycaprolactone-based immunosorbent for isolating chlamydial immunoglobulins | |
JP3618797B2 (en) | Immunoassay | |
Sobanski et al. | Detection of meningococcal antigen by latex agglutination | |
JPH07270423A (en) | Production of immunologically diagnosing medicine | |
RU2200327C2 (en) | Method for diagnostics of syphilis (variants) | |
RU2282192C1 (en) | Method of preparing diagnosticum to reveal diphtheria toxin | |
Kalyan | SEROLOGICAL TESTS FOR SYPHILIS | |
RU2582941C1 (en) | Composite plague antigen f1-diagnosticum for indication of specific antibodies | |
RU2113172C1 (en) | Method to conduct immunological express diagnostics of toxic types of diphtheritic infections | |
Suwannin et al. | Pathogenic Leptospira Detection in Environmental Contaminant Water Sources by Highly Performance Antibody Absorption Polystyrene Agglutinating Particles |