RU2798124C1 - Method of obtaining brucellosis polystyrene latex diagnosticum - Google Patents

Method of obtaining brucellosis polystyrene latex diagnosticum Download PDF

Info

Publication number
RU2798124C1
RU2798124C1 RU2022129422A RU2022129422A RU2798124C1 RU 2798124 C1 RU2798124 C1 RU 2798124C1 RU 2022129422 A RU2022129422 A RU 2022129422A RU 2022129422 A RU2022129422 A RU 2022129422A RU 2798124 C1 RU2798124 C1 RU 2798124C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
brucellosis
latex
diagnosticum
concentration
obtaining
Prior art date
Application number
RU2022129422A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2798124C9 (en
Inventor
Мария Михайловна Курноскина
Ирина Викторовна Жарникова
Диана Владимировна Русанова
Светлана Александровна Курчева
Александра Геннадьевна Кошкидько
Алина Викторовна Даурова
Дмитрий Григорьевич Пономаренко
Елена Владимировна Жданова
Татьяна Владимировна Жарникова
Артём Викторович Беседин
Original Assignee
Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Application granted granted Critical
Publication of RU2798124C1 publication Critical patent/RU2798124C1/en
Publication of RU2798124C9 publication Critical patent/RU2798124C9/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: method of obtaining a brucellosis polystyrene latex diagnosticum is proposed, including mixing in equal volumes of a 2% solution of polystyrene latex and an antigen of a brucellosis microbe from a strain of Brucella (B.) abortus 19 BA at a concentration of 2×109 mc/ml in 12% sodium chloride solution, stained with brilliant green — 0.004%, gentian violet — 0.002%; incubation 2 h at 37°C and 12–16 hours in the refrigerator at 4°C; then washed twice from unbound antigen with 0.1 M phosphate-buffered saline pH 7.2–7.4 by centrifugation at 5000 rpm for 10 min; the precipitate is resuspended in 0.1% gelatin solution to 0.2% concentration with formalin to 0.1%.
EFFECT: invention provides an extension of the arsenal of methods of obtaining a specific brucellosis latex diagnosticum for the detection of antibodies in the reaction of latex agglutination.
1 cl, 2 ex

Description

Изобретение относится к биотехнологии, микробиологии и, в частности, к способу получения латексных диагностикумов для реакции агглютинации латекса.The invention relates to biotechnology, microbiology and, in particular, to a method for producing latex diagnosticums for latex agglutination reaction.

Полимерные микросферы (латексные частицы) с адсорбированными на них молекулами антител или антигенов вступают в реакцию и агглютинируют с соответствующими антигенами микроорганизмов или антителами. Полимерные микросферы являются удобной и гибкой системой для разработки диагностических препаратов, применяемых в реакции агглютинации латекса (РАЛ). При выборе полимерных микросфер обычно учитывают диаметр и распределение частиц по размерам, состав, химические свойства поверхности (реакционные группы, функциональность, заряд) и другие более специфические свойства, такие как наличие хромофорных наполнителей (красителей), наночастиц металлов и их оксидов. Для латексной агглютинации чаще применяются микросферы (окрашенные, неокрашенные) с размером 0,2-1,0 мкм, активированные (для ковалентной сшивки) и неактивированные (для физической сорбции). Важным параметром является и состав полимерных микросфер. Обычно полимерные микросферы состоят из полиакролеина, полистирола, полиметилметакрилата. Эти материалы обладают различными физическими и оптическими свойствами, которые могут показывать преимущества или же накладывать некоторые ограничения их использования [1].Polymeric microspheres (latex particles) with adsorbed molecules of antibodies or antigens react and agglutinate with the corresponding antigens of microorganisms or antibodies. Polymer microspheres are a convenient and flexible system for the development of diagnostic preparations used in the latex agglutination test (RAL). When choosing polymer microspheres, one usually takes into account the diameter and size distribution of particles, composition, chemical properties of the surface (reaction groups, functionality, charge), and other more specific properties, such as the presence of chromophore fillers (dyes), nanoparticles of metals and their oxides. For latex agglutination, microspheres (colored, unpainted) with a size of 0.2-1.0 microns, activated (for covalent crosslinking) and non-activated (for physical sorption) are more often used. An important parameter is the composition of polymeric microspheres. Typically, polymer microspheres consist of polyacrolein, polystyrene, polymethyl methacrylate. These materials have different physical and optical properties, which may show advantages or impose some restrictions on their use [1].

Для выявления антител против возбудителя бруцеллеза применяются различные серологические методы (реакция непрямой гемагглютинации - РИГА; иммуноферментный анализ - ИФА; реакция агглютинации латекса - РАЛ и т.д.), обладающие своими достоинствами и недостатками.To detect antibodies against the causative agent of brucellosis, various serological methods are used (indirect hemagglutination reaction - RIGA; enzyme immunoassay - ELISA; latex agglutination reaction - RAL, etc.), which have their own advantages and disadvantages.

Известен способ получения R-бруцеллезного эритроцитарного диагностикума для РИГА [2], заключающийся в приготовлении формалинизированных эритроцитов барана, с последующей их сенсибилизацией сенситином, полученным выращиванием бактериальной массы В. abortus 16/4, ее смывом, инактивацией, экстрагированием, отделением сенситина центрифугированием, воздействием на бактериальные клетки додецилсульфатом натрия.A known method of obtaining R-brucella erythrocyte diagnosticum for RIGA [2], which consists in the preparation of formalized sheep erythrocytes, followed by their sensitization with sensitin obtained by growing the bacterial mass of B. abortus 16/4, its washing, inactivation, extraction, separation of sensitin by centrifugation, exposure on bacterial cells with sodium dodecyl sulfate.

Недостатком данного способа является использование биологического сырья - эритроцитов барана, сложно поддающихся стандартизации, чьи параметры зависят от таких факторов, как пол, возраст животного, время взятия крови. Кроме того, для получения качественных эритроцитарных диагностикумов формалинизированные эритроциты для стабилизации необходимо выдерживать в течение года.The disadvantage of this method is the use of biological raw materials - sheep erythrocytes, difficult to standardize, whose parameters depend on factors such as sex, age of the animal, time of blood sampling. In addition, to obtain high-quality erythrocyte diagnosticums, formalized erythrocytes must be kept for a year for stabilization.

Известен способ получения иммуноферментных тест-систем на основе моноклональных антител против S-ЛПС (S-липополисахарид) и R-ЛПС (R-липополисахарид), меченных пероксидазой хрена, для дифференциальной диагностики бруцеллеза [3].A known method of obtaining enzyme immunoassay test systems based on monoclonal antibodies against S-LPS (S-lipopolysaccharide) and R-LPS (R-lipopolysaccharide), labeled with horseradish peroxidase, for the differential diagnosis of brucellosis [3].

Недостатком данного способа является сравнительная сложность получения тест-системы и постановки анализа, возможность ложноположительных результатов, необходимость использования химически чистой посуды. Помимо этого, обязательным условием является наличие в лаборатории фотометра для учета результатов.The disadvantage of this method is the relative complexity of obtaining a test system and analysis, the possibility of false positive results, the need to use chemically clean glassware. In addition, a prerequisite is the availability of a photometer in the laboratory to record the results.

Наиболее близким к заявляемому способу является способ получения иммунодиагностикума на основе полистирольного латекса [4]. Для получения иммунодиагностикума в соответствии с предлагаемым изобретением к 2% суспензии сферических частиц полистирольного карбоксилированного латекса с иммобилизованным на их поверхности специфическим к данному заболеванию белком в 0,1 М глициновом буфере рН 8,2 (буфер) прибавляют равный объем раствора α-казеина (10 мг/мл) в буфере, приготовленного следующим образом: α-казеин растворяют в рассчитанном количестве буфера, прогревают 30 мин при 37°С, раствор осветляют центрифугированием в течение 15 мин при 5000 об/мин. Оптимальная концентрация раствора α-казеина для насыщения свободных центров связывания - 0,4 мг/мл. Смесь латексной суспензии с раствором α-казеина тщательно встряхивают и оставляют при комнатной температуре на 30 мин, после чего помещают в холодильник (4°С) на 24 ч. Описанный общий подход позволяет получать широкий спектр диагностикумов, отличающихся только специфическим белком, иммобилизованным на поверхности полимера, однако наличие казеина в составе препарата значительно сокращает срок его годности из-за возможности бактериального пророста. Недостатком данного способа является и то, что диагностикумы, полученные описанным методом, не являются достаточно чувствительными: максимальное разведение сыворотки, которое позволяет обнаружить данный препарат, составляет 1:320.Closest to the claimed method is a method of obtaining immunodiagnosticum based on polystyrene latex [4]. To obtain an immunodiagnosticum in accordance with the invention, an equal volume of α-casein solution (10 mg/ml) in buffer prepared as follows: α-casein is dissolved in the calculated amount of buffer, heated for 30 minutes at 37°C, the solution is clarified by centrifugation for 15 minutes at 5000 rpm. The optimal concentration of α-casein solution to saturate free binding sites is 0.4 mg/ml. The mixture of latex suspension with α-casein solution is thoroughly shaken and left at room temperature for 30 min, after which it is placed in a refrigerator (4°С) for 24 h. polymer, however, the presence of casein in the composition of the drug significantly reduces its shelf life due to the possibility of bacterial growth. The disadvantage of this method is that the diagnosticums obtained by the described method are not sensitive enough: the maximum serum dilution that this drug can detect is 1:320.

Цель изобретения - разработка способа получения активного и специфичного бруцеллезного полистирольного латексного диагностикума для выявления антител в реакции агглютинации латекса.The purpose of the invention is to develop a method for producing an active and specific brucellosis polystyrene latex diagnosticum for the detection of antibodies in the reaction of latex agglutination.

Технический результат изобретения заключается в том, что полимерную суспензию центрифугируют, доводят 0,9% раствором натрия хлорида до концентрации 2% по сухому остатку полимера и смешивают в равных объемах с разрушенным на ультразвуковом дезинтеграторе антигеном бруцеллезного микроба из штамма Brucella (В.) abortus 19 ВА в концентрации 2×109 м.к./мл на 12% растворе натрия хлорида, окрашенным бриллиантовым зеленым (0,004%) и генцианвиолетом (0,002%); инкубируют при температуре 37°С в течение 2 ч и 12-16 ч в холодильнике при температуре 4°С; дважды отмывают от несвязавшегося антигена 0,1 М фосфатно-солевым буфером, рН 7,2-7,4 путем центрифугирования при 5000 об/мин, в течение 10 мин; осадок ресуспендируют в 0,1% растворе желатина до 0,2% концентрации и стабилизируют формалином до 0,1%.The technical result of the invention lies in the fact that the polymer suspension is centrifuged, adjusted with 0.9% sodium chloride solution to a concentration of 2% by dry residue of the polymer and mixed in equal volumes with the antigen of the brucellosis microbe from the strain Brucella (B.) abortus 19 destroyed on an ultrasonic disintegrator VA at a concentration of 2×10 9 mc/ml in 12% sodium chloride solution, stained with brilliant green (0.004%) and gentian violet (0.002%); incubated at 37°C for 2 hours and 12-16 hours in a refrigerator at 4°C; twice washed from unbound antigen with 0.1 M phosphate-buffered saline, pH 7.2-7.4 by centrifugation at 5000 rpm for 10 min; the precipitate is resuspended in 0.1% gelatin solution to 0.2% concentration and stabilized with formalin to 0.1%.

Для получения бруцеллезного латексного диагностикума для выявления антител в РАЛ использовали латекс для агглютинации (ООО «Диаэм», Москва) с размером частиц 0,8 мкм, содержанием полистирола по сухому остатку - 10% и додецилсульфата натрия - 0,01%. В качестве лиганда применяли взвесь бруцеллезного микроба В. abortus 19 ВА, выращенного на агаре Альбими при температуре (37±1)°С в течение (48±1) ч. Смыв бакмассы проводили 12% раствором натрия хлорида. Далее бакмассу прогревали при 100°С в течение 60 мин. После контроля общей и специфической стерильности бакмассы, разводили взвесь до концентрации 2×109 м.к./мл 12% раствором натрия хлорида с 0,5% фенола. Добавляли анилиновые красители трифенилметанового ряда: бриллиантовый зеленый до 0,004% концентрации и генцианвиолет до 0,002% концентрации. Антиген разрушали на гомогенизаторе ультразвуковом (Sonicator Q125, Qsonica LLC) в течение 2 мин (частота 20 Гц).To obtain a brucellosis latex diagnosticum for the detection of antibodies in RAL, latex for agglutination (OOO Diaem, Moscow) with a particle size of 0.8 μm, a dry residue content of polystyrene of 10% and sodium dodecyl sulfate of 0.01% was used. A suspension of the brucellosis microbe B. abortus 19 VA grown on Albimi agar at a temperature of (37±1)°C for (48±1) hours was used as a ligand. The backmass was washed out with 12% sodium chloride solution. Next, the backmass was heated at 100°С for 60 min. After controlling the general and specific sterility of the back mass, the suspension was diluted to a concentration of 2×10 9 mc/ml with 12% sodium chloride solution with 0.5% phenol. Aniline dyes of the triphenylmethane series were added: brilliant green up to 0.004% concentration and gentian violet up to 0.002% concentration. The antigen was destroyed on an ultrasonic homogenizer (Sonicator Q125, Qsonica LLC) for 2 min (frequency 20 Hz).

Контроль чувствительности и специфичности разработанных экспериментальных серий препарата проводили с гомологичными и гетерологичными сыворотками. РАЛ ставили в U-образных (круглодонных) микропланшетах.Control of sensitivity and specificity of the developed experimental series of the drug was carried out with homologous and heterologous sera. RAL was placed in U-shaped (round-bottom) microplates.

Для контроля чувствительности РАЛ использованы бруцеллезные сыворотки: иммунная кроличья сыворотка, полученная в ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Роспотребнадзора (экспериментальная серия) и сыворотка диагностическая поливалентная бруцеллезная сухая для реакции агглютинации (ФКУЗ Иркутский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора).To control the sensitivity of RAL, brucellosis sera were used: immune rabbit serum obtained at the FKUZ Stavropol Anti-Plague Institute of Rospotrebnadzor (experimental series) and diagnostic polyvalent brucellosis dry serum for the agglutination test (FKUZ Irkutsk Research Anti-Plague Institute of Rospotrebnadzor).

Для контроля специфичности использованы следующие сыворотки: диагностическую холерную O1 адсорбированную сухую для РА (ФКУН «Российский научно-исследовательский противочумный институт «Микроб»); диагностическую сальмонеллезную адсорбированную О-поливалентную для РА (ЗАО «Эколаб»); диагностическую туляремийную сухую для РА (ФКУЗ Иркутский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора).To control the specificity, the following sera were used: diagnostic cholera O1 adsorbed dry for RA (FKUN Russian Research Anti-Plague Institute Microb); diagnostic Salmonella adsorbed O-polyvalent for RA (CJSC "Ecolab"); diagnostic dry tularemia for RA (FKUZ Irkutsk Research Anti-Plague Institute of Rospotrebnadzor).

Постановку РАЛ (микрометод) осуществляли следующим образом: во все лунки (8 рядов) планшета вносили по 25 мкл разводящей жидкости твин-80 в разведении 1:25 тыс. Далее, в первые лунки рядов по 25 мкл гомологичных и гетерологичных сывороток в разведении 1:100, титровали с шагом 2, получая разведения в лунках от 1:200 до 1:12800, восьмые ряды - отрицательные контроли (в них сыворотки не вносили). Затем во все лунки капали по 25 мкл разработанного диагностикума бруцеллезного латексного. Чувствительность РАЛ составила 1:800-1:1600, что соответствует чувствительности бруцеллезного эритроцитарного диагностикума. При контроле специфичности установлено, что с сальмонеллезной, холерной сыворотками отсутствовала перекрестная реакция, а с туляремийной - наблюдалась перекрестная реакция до ¼ титра диагностикума, что соответствует требованиям нормативных документов, предъявляемых к данным видам диагностикумов. Возможность практического применения изобретения иллюстрируется примерами его конкретного выполнения с использованием совокупности заявляемых признаков.The RAL setting (micromethod) was carried out as follows: 25 µl of dilution liquid Tween-80 at a dilution of 1:25 thousand was added to all wells (8 rows) of the plate. Further, in the first wells of the rows, 25 µl of homologous and heterologous sera at dilution 1: 100, titrated in steps of 2, getting dilutions in the wells from 1:200 to 1:12800, the eighth rows are negative controls (serum was not added to them). Then, 25 µl of the developed brucellosis latex diagnosticum was dripped into all wells. The sensitivity of RAL was 1:800-1:1600, which corresponds to the sensitivity of the brucellosis erythrocyte diagnosticum. In the control of specificity, it was found that there was no cross-reaction with salmonella, cholera sera, and with tularemia, a cross-reaction up to ¼ titer of diagnosticum was observed, which meets the requirements of regulatory documents for these types of diagnosticums. The possibility of practical application of the invention is illustrated by examples of its specific implementation using the totality of the claimed features.

Пример 1. Разработка способа получения бруцеллезного латексного диагностикума для реакции агглютинации с бруцеллезным антигеном В. abortus 19 ВА в соотношении 1:2.Example 1. Development of a method for obtaining a brucellosis latex diagnosticum for the agglutination reaction with B. abortus 19 BA brucella antigen in a ratio of 1:2.

Для получения бруцеллезного антигенного латексного диагностикума использован полистирольный латекс для агглютинации с размером частиц 0,8 мкм. В качестве лиганда для иммобилизации применяли взвесь В. abortus 19 ВА в концентрации 2×109 м.к./мл на 12% растворе натрия хлорида, инактивированную прогреванием при 100°С в течение 60 мин с добавлением 0,5% фенола и разрушенную на гомогенизаторе ультразвуковом в течение 2 мин. В качестве антисептиков и красителей использованы бриллиантовый зеленый - до 0,004%, генцианвиолет - до 0,002% концентрации. Латекс (2%) и антиген смешивали в объемном соотношении 1:2. Смесь инкубировали при перемешивании и температуре 37°С в течение 2 час и 12-16 час в холодильнике, при температуре 4°С. Далее центрифугировали при 5000 об/мин в течение 10 мин, дважды отмывали от несвязавшегося антигена 0,1 М ФСБ, рН 7,2-7,4 и последний осадок ресуспендировали в 0,1% растворе желатина до 0,2% концентрации. Для стабилизации и возможности хранения длительное время вносили формалин до 0,1% концентрации. При постановке РАЛ в микропланшете чувствительность составила 1:1600, при отсутствии перекрестных реакций с холерной и сальмонеллезной сыворотками и до ¼ титра диагностикума с туляремийной, что соответствует нормативной документации на данные препараты и может быть использовано в работе.To obtain a brucellosis antigenic latex diagnosticum, polystyrene latex was used for agglutination with a particle size of 0.8 μm. As a ligand for immobilization, a suspension of B. abortus 19 VA was used at a concentration of 2 × 10 9 mc/ml in 12% sodium chloride solution, inactivated by heating at 100°C for 60 min with the addition of 0.5% phenol and destroyed on an ultrasonic homogenizer for 2 min. Brilliant green - up to 0.004%, gentian violet - up to 0.002% concentration were used as antiseptics and dyes. Latex (2%) and antigen were mixed in a 1:2 volume ratio. The mixture was incubated with stirring and a temperature of 37°C for 2 hours and 12-16 hours in a refrigerator at a temperature of 4°C. Then it was centrifuged at 5000 rpm for 10 min, washed twice from unbound antigen with 0.1 M PBS, pH 7.2-7.4, and the last precipitate was resuspended in 0.1% gelatin solution to 0.2% concentration. To stabilize and store for a long time, formalin was added to a concentration of 0.1%. When setting up RAL in a microplate, the sensitivity was 1:1600, in the absence of cross-reactions with cholera and salmonella sera and up to ¼ titer of diagnosticum with tularemia, which corresponds to the regulatory documentation for these drugs and can be used in the work.

Пример 2. Разработка способа получения бруцеллезного латексного диагностикума для реакции агглютинации с бруцеллезным антигеном В. abortus 19 ВА в соотношении 1:1.Example 2. Development of a method for obtaining a brucellosis latex diagnosticum for the agglutination reaction with B. abortus 19 BA brucella antigen in a ratio of 1:1.

Получали диагностикум аналогично примеру 1, только с одним отличием -латекс иммобилизовали с бруцеллезным антигеном в соотношении 1:1. При этом чувствительность составила 1:1600.Received diagnosticum analogously to example 1, with only one difference - latex was immobilized with brucellosis antigen in a ratio of 1:1. The sensitivity was 1:1600.

Таким образом, целесообразней использовать приготовление диагностикума по примеру 2, исключая излишний перерасход антигена.Thus, it is more expedient to use the preparation of the diagnosticum according to example 2, excluding unnecessary overspending of the antigen.

Используемая литератураUsed Books

1. G&T Polymer Technologies [Электронный ресурс]: URL http://gtpt.ru (дата обращения: 24.05.2021).1. G&T Polymer Technologies [Electronic resource]: URL http://gtpt.ru (date of access: 05/24/2021).

2. Способ изготовления R-бруцеллезного эритроцитарного антигена для реакции непрямой гемагглютинации (РИГА): пат. 2491553 Рос. Федерация. №2011140108/15 / Карлова М.Ю., Дегтяренко Л.В.; заявл. 03.10.2011; опубл. 27.08.2013, Бюл. №24. 7 с.2. A method of manufacturing R-brucella erythrocyte antigen for the reaction of indirect hemagglutination (RIGA): US Pat. 2491553 Ros. Federation. No. 2011140108/15 / Karlova M.Yu., Degtyarenko L.V.; dec. 03.10.2011; publ. 27.08.2013, Bull. No. 24. 7 s.

3. Способ дифференциальной диагностики бруцеллеза: пат. 2490647 Рос. Федерация. №2009144376/10 / Юдин В.И., Козлов В.Е., Безгин В.М., Скляров О.Д.; заявл. 30.11.2009; опубл. 20.08.2013, Бюл. №23. 9 с.3. Method for the differential diagnosis of brucellosis: Pat. 2490647 Ros. Federation. No. 2009144376/10 / Yudin V.I., Kozlov V.E., Bezgin V.M., Sklyarov O.D.; dec. 11/30/2009; publ. 20.08.2013, Bull. No. 23. 9 p.

4. Иммунодиагностикум на основе полистирольного латекса: пат. 2231366 Рос. Федерация. №2002113997/14 / Леонова В.Б., Розенфельд М.А.; заявл. 29.05.2002; опубл. 27.06.2004, Бюл. №18. 8 с.4. Immunodiagnosticum based on polystyrene latex: Pat. 2231366 Ros. Federation. No. 2002113997/14 / Leonova V.B., Rosenfeld M.A.; dec. May 29, 2002; publ. 06/27/2004, Bull. No. 18. 8 s.

Claims (1)

Способ получения бруцеллезного полистирольного латексного диагностикума, отличающийся тем, что смешивают в равных объемах 2% раствор полистирольного латекса и разрушенный на ультразвуковом дезинтеграторе в течение 2 мин антиген бруцеллезного микроба из штамма Brucella (В.) abortus 19 ВА в концентрации 2×109 м.к./мл на 12% растворе натрия хлорида, окрашенный бриллиантовым зеленым - 0,004%, генцианвиолетом - 0,002%; инкубируют при температуре 37°С в течение 2 ч и 12-16 ч в холодильнике при температуре 4°С; дважды отмывают от несвязавшегося антигена 0,1 М фосфатно-солевым буфером рН 7,2-7,4 путем центрифугирования при 5000 об/мин в течение 10 мин; осадок ресуспендируют в 0,1% растворе желатина до 0,2% концентрации с формалином до 0,1%.A method for producing a brucellosis polystyrene latex diagnosticum, characterized in that a 2% solution of polystyrene latex is mixed in equal volumes and an antigen of a brucellosis microbe from a strain of Brucella (B.) abortus 19 BA at a concentration of 2 × 10 9 m, destroyed on an ultrasonic disintegrator for 2 minutes. k./ml in 12% sodium chloride solution, stained with brilliant green - 0.004%, gentian violet - 0.002%; incubated at 37°C for 2 hours and 12-16 hours in a refrigerator at 4°C; washed twice from unbound antigen with 0.1 M phosphate-buffered saline pH 7.2-7.4 by centrifugation at 5000 rpm for 10 min; the precipitate is resuspended in 0.1% gelatin solution to 0.2% concentration with formalin to 0.1%.
RU2022129422A 2022-11-11 Method of obtaining brucellosis polystyrene latex diagnosticum RU2798124C9 (en)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2798124C1 true RU2798124C1 (en) 2023-06-15
RU2798124C9 RU2798124C9 (en) 2023-09-08

Family

ID=

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2231366C2 (en) * 2002-05-29 2004-06-27 Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН Polystyrene latex-base immunodiagnosticum
RU2270449C1 (en) * 2004-07-15 2006-02-20 Татьяна Петровна Лобова Method for production of latex diagnosticum for latex-agglutination reaction

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2231366C2 (en) * 2002-05-29 2004-06-27 Институт биохимической физики им. Н.М. Эмануэля РАН Polystyrene latex-base immunodiagnosticum
RU2270449C1 (en) * 2004-07-15 2006-02-20 Татьяна Петровна Лобова Method for production of latex diagnosticum for latex-agglutination reaction

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ROUSHDY C.M. et al. "Latex agglutination: A rapid, specific immunoassay for diagnosis of ruminant Brucellosis"; Advances in animal and veterinary sciences, 2021, v. 9 (9), p. 1292-1301. MINGSONG ZHU et al. "A highly sensitive dual-color lateral flow immunoassay for brucellosis using one-step synthesized microspheres"; Analytical methods, 2019, N 11, p.2937-2942. ЖАРИКОВА И.В. "Методологические подходы и разработка биотехнологии иммунологических препаратов для диагностики инфекции особо опасных заболеваний и детекции их возбудителей"; Автореферат диссертации на соискание ученой степени доктора биологических наук, 2004, Ставрополь с.1-40. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN108593641B (en) Kit and method for quantitatively detecting substance to be detected in whole blood sample
JPH0717697B2 (en) Bioactive reagents made from carboxy-containing polymers, analytical elements and methods of use
JPS6223826B2 (en)
CN105717033B (en) A kind of method of flow cytometer quantitative detection of protein concentration
JP2896174B2 (en) Artificial carrier
US4659658A (en) Lectin-coated latex agglutination assay for Neisseria gonorrhoeae
RU2798124C1 (en) Method of obtaining brucellosis polystyrene latex diagnosticum
JPH0795065B2 (en) Water-insoluble reagent, element containing the same and method of using the same
RU2798124C9 (en) Method of obtaining brucellosis polystyrene latex diagnosticum
KR102505384B1 (en) Antibody measurement method using antigen-loading insoluble carrier particles in which antigens are immobilized by other methods, reagents for antibody measurement
Prathapan et al. Surface engineering of transparent cellulose nanocrystal coatings for biomedical applications
EP2126576B1 (en) Reagent for detection of analyte and processes thereof
RU2777803C1 (en) Method for obtaining latex diagnostic antigens for the detection of antibodies against pathogens of brucellosis, tularemia
WO2008136861A2 (en) Inactivated and dried biological preparations
JPS6058420B2 (en) Microcapsule group for immune reaction and discrimination method using the same
RU2464573C1 (en) Instrument-free diagnostic technique for pseudotuberculosis
RU2815784C1 (en) Method of producing polycaprolactone-based immunosorbent for isolating chlamydial immunoglobulins
RU2751881C1 (en) Method for producing monodisperse polymer microspheres with aldehyde groups
RU2282192C1 (en) Method of preparing diagnosticum to reveal diphtheria toxin
Sobanski et al. Detection of meningococcal antigen by latex agglutination
Prochetto et al. Latex particles sensitized with proteins of Leptospira interrogans for application in immunoagglutination assays
RU2113172C1 (en) Method to conduct immunological express diagnostics of toxic types of diphtheritic infections
RU2582941C1 (en) Composite plague antigen f1-diagnosticum for indication of specific antibodies
Wenz et al. Improved method for detecting hemagglutination by centrifugal analysis.
Kalyan SEROLOGICAL TESTS FOR SYPHILIS