RU2282192C1 - Method of preparing diagnosticum to reveal diphtheria toxin - Google Patents
Method of preparing diagnosticum to reveal diphtheria toxin Download PDFInfo
- Publication number
- RU2282192C1 RU2282192C1 RU2004137761/15A RU2004137761A RU2282192C1 RU 2282192 C1 RU2282192 C1 RU 2282192C1 RU 2004137761/15 A RU2004137761/15 A RU 2004137761/15A RU 2004137761 A RU2004137761 A RU 2004137761A RU 2282192 C1 RU2282192 C1 RU 2282192C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- carrier
- diagnosticum
- diphtheria
- hours
- carried out
- Prior art date
Links
Landscapes
- Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Предлагаемое изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано в лабораторной диагностике при проведении экспресс-анализов в обнаружении дифтерийного токсина, продуцируемого токсигенными культурами коринебактерии дифтерии.The present invention relates to medical microbiology and can be used in laboratory diagnostics for rapid analyzes in the detection of diphtheria toxin produced by toxigenic cultures of corynebacterium diphtheria.
В настоящее время, несмотря на наметившуюся тенденцию к снижению заболеваемости, эпидемическое неблагополучие в стране сохраняется, о чем свидетельствуют высокие показатели тяжести течения дифтерии и смертности от нее.At present, despite the outlined tendency towards a decrease in the incidence rate, the country's epidemic troubles persist, as evidenced by the high severity of the course of diphtheria and mortality from it.
Лабораторная диагностика дифтерии до настоящего времени представлена традиционными бактериологическими методами - выделением возбудителя в чистой культуре, идентификацией ее по биохимическим признакам и определением токсигенности культуры в реакции преципитации в агаре. Используемые методы не отвечают современным требованиям проведения анализа в связи с трудоемкостью, низкой чувствительностью (невозможность выявления токсигенных штаммов при невысоком уровне токсинообразования) и выдачей окончательного результата исследования лишь на 4-5 сутки.Laboratory diagnosis of diphtheria to date is represented by traditional bacteriological methods - isolating the pathogen in a pure culture, identifying it by biochemical characteristics and determining the toxigenicity of the culture in the precipitation reaction in agar. The methods used do not meet the modern requirements of the analysis due to the complexity, low sensitivity (the inability to detect toxigenic strains at a low level of toxin formation) and the issuance of the final test result only for 4-5 days.
Для сокращения сроков диагностики дифтерии и повышения чувствительности метода необходима разработка препаратов и методов исследования, направленных на индикацию патогенного агента - дифтерийного токсина.To reduce the time needed to diagnose diphtheria and increase the sensitivity of the method, it is necessary to develop drugs and research methods aimed at indicating a pathogenic agent - diphtheria toxin.
В настоящее время значительное внимание уделяется получению полимерных латексных носителей антигенов и антител, которые отличаются от биологических (эритроцитарных) носителей отсутствием собственной антигенности, стабильностью при длительном хранении, постоянными физическими параметрами и химическим (ковалентным) взаимодействием с лигандами.Currently, considerable attention is paid to the production of polymer latex carriers of antigens and antibodies, which differ from biological (erythrocyte) carriers by the absence of their own antigenicity, stability during long-term storage, constant physical parameters and chemical (covalent) interaction with ligands.
Известны способы обнаружения дифтерийного токсина (см. «Лабораторная диагностики дифтерийной инфекции» Руководство. - М.: Информационно-издательский центр Госкомсанэпиднадзора России, 1995. - стр.42-61), заключающиеся в проведении ускоренных методов диагностики дифтерийной инфекции посредствам постановки иммуноферментного анализа (ИФА) и реакции непрямой гемагглютинации для выявления дифтерийного токсина (РНГА).Known methods for detecting diphtheria toxin (see "Laboratory diagnosis of diphtheria infection" Guide. - M .: Information and Publishing Center of the State Committee for Sanitary and Epidemiological Surveillance of Russia, 1995. - p. 42-61), which consist in carrying out accelerated methods for diagnosing diphtheria infection using enzyme-linked immunosorbent assay ( ELISA) and indirect hemagglutination reactions to detect diphtheria toxin (RNGA).
Однако, несмотря на достаточно высокую чувствительность, эти способы имеют недостатки, а именно:However, despite the relatively high sensitivity, these methods have disadvantages, namely:
- для проведения ИФА требуется дорогостоящие реагенты и аппаратурное оснащение;- for the conduct of ELISA requires expensive reagents and hardware;
- при РНГА характерна нестабильность и нестандартность свойств эритроцитарного биологического носителя, а также отсутствие лиофилизированного эритроцитарного диагностического препарата, срок хранения выпускаемого жидкого эритроцитарного диагностикума один год.- RNGA is characterized by instability and non-standard properties of the erythrocyte biological carrier, as well as the absence of a lyophilized erythrocyte diagnostic product, the shelf life of the produced liquid erythrocyte diagnosticum is one year.
За прототип выбран способ получения препарата для индикации токсина возбудителя дифтерии в жидкой питательной среде (см. пат. RU №2104714, 20.02.98 г.), включающий обработку глицино-солевым буферным раствором с молярностью 0,05, рН 8,2 гамма глобулина, иммунного к дифтерийному токсину с последующей его иммобилизацией на смесь полистирольного латекса с дисперсностью 1,1-1,2 мкм, активированного метакрилатом цинка при объемном включении, и карбоксилированного полистирольного латекса с дисперсностью 0,2-0,25 мкм, а для стабилизации диагностикума в него добавляют 20 мл 0,1% раствора бычьего сывороточного альбумина в 0,05 М глицино-солевом буферном растворе с рН 8,2, содержащего 12% полиэтиленгликоля - 6000.For the prototype, a method was selected for producing a preparation for indicating the toxin of the diphtheria pathogen in a liquid nutrient medium (see US Pat. RU No. 2104714, 02.20.98), including treatment with a glycine-saline buffer solution with a molarity of 0.05, pH 8.2 gamma globulin immune to diphtheria toxin with its subsequent immobilization on a mixture of polystyrene latex with a dispersion of 1.1-1.2 microns, activated by zinc methacrylate with volume inclusion, and a carboxylated polystyrene latex with a dispersion of 0.2-0.25 microns, and to stabilize the diagnosticum in it doba 20 ml of a 0.1% solution of bovine serum albumin in a 0.05 M glycine-saline buffer solution with a pH of 8.2 containing 12% polyethylene glycol - 6000 are added.
Однако известный способ имеет ряд недостатков:However, the known method has several disadvantages:
- во-первых, в качестве носителя используют смесь латексов разной дисперсности и требующих дополнительного активирования метакрилатом цинка и метакриловой кислотой для создания реакционно-способных групп для взаимодействия с белковыми молекулами дифтерийного иммуноглобулина, что усложняет технологию диагностикума;- firstly, a mixture of latexes of different dispersion and requiring additional activation by zinc methacrylate and methacrylic acid to create reactive groups for interaction with protein molecules of diphtheria immunoglobulin is used as a carrier, which complicates the diagnosticum technology;
- во вторых, серологическую реакцию выполняют на стекле, результаты в виде неокрашенных агглютинантов (частиц) указывают на отсутствие какой-либо демонстративности реакции, при этом чувствительность (РЛА) составляет 10-3-10-4 Lf/мл.- secondly, the serological reaction is performed on glass, the results in the form of unpainted agglutinants (particles) indicate the absence of any demonstrative reaction, while the sensitivity (RLA) is 10 -3 -10 -4 Lf / ml.
Техническая задача предлагаемого изобретения состояла в разработке диагностикума для обнаружения дифтерийного токсина с высокой чувствительностью, стабильностью свойств и высокой демонстративностью.The technical task of the invention consisted in the development of a diagnosticum for the detection of diphtheria toxin with high sensitivity, stability of properties and high demonstrativity.
Поставленная задача достигается тем, что в известном способе получения диагностикума для обнаружения дифтерийного токсина, включающем отмывание полимерного носителя буферным раствором, иммобилизацию иммуноглобулина к дифтерийному токсину на частицах упомянутого носителя и последующую стабилизацию, в качестве носителя используют полимерный носитель, полученный методом анионной полимеризации мономера-акрилового альдегида в присутствии инициатора полимеризации - едкого натрия и представляющий окрашенные монодисперсные частицы сферической формы диаметром 2±0,5 мкм с реакционными альдегидными группами на поверхности частиц в количестве 1,3-1,6 мкмоль/г носителя, отмывают носитель 0,1 М карбонатным буферным раствором с рН 9,0-9,2, центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10 минут и иммобилизацию проводят суспензированием отмытого носителя в 0,1 М карбонатном буфере, рН 9,0-9,2 и добавлением к нему дифтерийного антитоксического иммуноглобулина, оставляют для контакта в течение 2-х часов при 20°С, охлаждают до 7°С и выдерживают 16-18 часов, стабилизацию проводят введением в суспензию 1% раствора желатозы на 0,9% растворе хлорида натрия, оставляют при перемешивании при 20°С в течение 2-х часов, проводят лиофилизацию диагностикума, а обнаружение дифтерийного токсина осуществляют в реакции агломерации объемной.This object is achieved in that in the known method for producing a diagnosticum for detecting diphtheria toxin, including washing the polymer carrier with a buffer solution, immobilizing the immunoglobulin to diphtheria toxin on the particles of the carrier and then stabilizing, the carrier is a polymer carrier obtained by the anionic polymerization of monomer-acrylic aldehyde in the presence of a polymerization initiator - sodium hydroxide and representing colored monodisperse particles of sph of a trimeric form with a diameter of 2 ± 0.5 μm with reactive aldehyde groups on the particle surface in an amount of 1.3-1.6 μmol / g of support, the support is washed with a 0.1 M carbonate buffer solution with a pH of 9.0-9.2, centrifuged at 3000 rpm for 10 minutes and immobilization is carried out by suspending the washed carrier in 0.1 M carbonate buffer, pH 9.0-9.2 and adding diphtheria antitoxic immunoglobulin to it, left for contact for 2 hours at 20 ° C, cooled to 7 ° C and incubated for 16-18 hours, stabilization is carried out by introducing into the suspension 1% ra creates zhelatozy 0.9% sodium chloride solution, left under stirring at 20 ° C for 2 hours, conduct lyophilization diagnosticum, diphtheria toxin and detection reaction is carried out in bulk agglomeration.
Кроме того, лиофилизацию осуществляют путем введения в осадок диагностикума до (20-22) мл 3% желатозно-сахарозной среды, затем розливом в ампулы и последующим высушиванием при конечной температуре 22°С в течение суток.In addition, lyophilization is carried out by introducing into the precipitate a diagnosticum up to (20-22) ml of 3% gelatin-sucrose medium, then pouring into ampoules and then drying at a final temperature of 22 ° C for a day.
Реакцию агломерации объемную осуществляют в планшетах путем внесения в лунки 50 мкл 1,0% нормальной кроличьей сыворотки, 50 мкл взвеси исследуемой культуры и 25 мкл диагностикума с последующим перемешиванием в течение 1 минуты и контактированием при температуре (20-22)°С в течение 1,5-2 часов.The volumetric agglomeration reaction is carried out in tablets by adding 50 μl of 1.0% normal rabbit serum, 50 μl of suspension of the test culture and 25 μl of diagnosticum to the wells, followed by stirring for 1 minute and contacting at a temperature of (20-22) ° С for 1 5-2 hours.
Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.
Для проведения способа необходим полимерный носитель, который в соответствии с регламентом производства (РП) №979-00 от 20.06.2000 г. получают методом анионной полимеризации мономера - акрилового альдегида (акролина) в присутствии инициатора полимеризации - едкого натра. В результате синтеза получают монодисперсные частицы сферической формы одинакового диаметра в пределах от (2±0,5) мкм с реакционными альдегидными группами на поверхности сферических частиц (микросфер). Количество альдегидных групп составляет 1,3-1,6 мкмоль/г носителя и определяют их по специальной методике с помощью фотоэлектроколориметра по изменено оптической плотности. При этом на стадии полимеризации добавляют краситель - сафранин, который окрашивает микросферы в сиреневато-розовый цвет.To carry out the method, a polymer carrier is required, which, in accordance with the production schedule (RP) No. 979-00 of June 20, 2000, is obtained by the method of anionic polymerization of a monomer — acrylic aldehyde (acroline) in the presence of a polymerization initiator — sodium hydroxide. As a result of synthesis, monodisperse particles of a spherical shape of the same diameter ranging from (2 ± 0.5) μm with reaction aldehyde groups on the surface of spherical particles (microspheres) are obtained. The number of aldehyde groups is 1.3-1.6 μmol / g of the carrier and they are determined by a special method using a photoelectric colorimeter by changing the optical density. At the same time, at the polymerization stage, dye is added - safranin, which stains the microspheres in a lilac-pink color.
Пример получения диагностикума.An example of obtaining a diagnosticum.
Первоначально 100 мг носителя помещают в центрифужный стакан и дважды отмывают 0,1 М карбонатным буферным раствором по 10 мл, рН 9,0-9,2 при (3000±100) об/мин в течение 10 минут. Отмытый носитель суспендируют в 1,5 мл 0,1 М карбонатного буферного раствора. Затем к суспензии микросфер для проведения иммобилизации добавляют 1,5 мл буферного раствора и 450 мкг/мл дифтерийного антитоксического иммуноглобулина и, перемешивая, оставляют для контакта в течение 2 часов при температуре 20°С, в результате альдегидные реакционные группы на поверхности частиц специфически взаимодействуют с аминогруппами белковых молекул дифтерийного иммуноглобулина.Initially, 100 mg of the carrier was placed in a centrifuge cup and washed twice with 0.1 M 10 ml carbonate buffer solution, pH 9.0-9.2 at (3000 ± 100) rpm for 10 minutes. The washed carrier is suspended in 1.5 ml of 0.1 M carbonate buffer solution. Then, 1.5 ml of a buffer solution and 450 μg / ml of diphtheria antitoxic immunoglobulin are added to the suspension of microspheres for immobilization and, while stirring, they are left in contact for 2 hours at a temperature of 20 ° С, as a result, the aldehyde reaction groups on the particle surface interact specifically amino groups of protein molecules of diphtheria immunoglobulin.
После этого суспензию охлаждают до 7°С и выдерживают 16-18 часов.After that, the suspension is cooled to 7 ° C and incubated for 16-18 hours.
Следующий этап получения диагностикума заключается в стабилизации полученной суспензии, для этого в нее добавляют 2 мл 1,0%-ного раствора желатозы на 0,9%-ном растворе хлорида натрия и оставляют при постоянном перемешивании в течение 2 часов при температуре 20°С.The next step in obtaining a diagnosticum is to stabilize the suspension obtained. To do this, add 2 ml of a 1.0% gelatose solution to a 0.9% sodium chloride solution and leave it under constant stirring for 2 hours at a temperature of 20 ° C.
В результате стабилизации желатоза позволяет блокировать реакционные группы на частицах, не связавшиеся с раствором специфического антитоксического иммуноглобулина в процессе иммобилизации.As a result of stabilization of gelatose, it allows blocking reaction groups on particles that did not bind to a solution of a specific antitoxic immunoglobulin during immobilization.
Затем суспензию диагностикума центрифугируют и трижды отмывают 0,9%-ным раствором хлорида натрия при 3000 об/мин по 5 минут, получая осадок.Then the suspension of the diagnosticum is centrifuged and washed three times with 0.9% sodium chloride solution at 3000 rpm for 5 minutes, obtaining a precipitate.
Заключительным этапом в получении диагностикума является лиофилизация, при которой осадок препарата доводят до 20 мл 3%-ной желатозно-сахарозной средой высушивания, и разливают шприцем в ампулы по 1 мл. Лиофилизацию проводят в течение 23 часов при конечной температуре (22±2)°С.The final step in obtaining a diagnosticum is lyophilization, in which the sediment is adjusted to 20 ml with a 3% gelatin-sucrose drying medium and poured into 1 ml ampoules with a syringe. Lyophilization is carried out for 23 hours at a final temperature of (22 ± 2) ° C.
Содержимое ампул замораживают спиртовым охлаждением при температуре (-45)°С в течение 10 минут. Замороженный диагностикум помещают в низкотемпературный шкаф при температуре (-50)°С и выдерживают в течение 17 часов, после чего ампулы с замороженным диагностикумом помещают в камеру вакуум-сушильного аппарата.The contents of the ampoules are frozen by alcohol cooling at a temperature of (-45) ° C for 10 minutes. Frozen diagnosticum is placed in a low-temperature cabinet at a temperature of (-50) ° C and maintained for 17 hours, after which ampoules with frozen diagnosticum are placed in the chamber of a vacuum-drying apparatus.
Методика постановки реакцииReaction Procedure
Пример 1Example 1
Исследование материала с плотной питательной среды в реакции агломерации объемной (РАО). Для проведения реакции предварительно проводят подготовку исследуемого материала, для этого патологический материал из ротоглотки, миндалин, носа, взятый сухим тампоном, засевают на чашку с кровяно-теллуритовым агаром, инкубируют в термостате при 37°С в течение 24 часов, из подозрительных колоний готовят взвесь в пробирке добавлением 1-2 мл 0,9% раствора хлорида натрия.The study of material with a dense nutrient medium in the reaction of bulk agglomeration (RAW). For the reaction, the test material is preliminarily prepared; for this, pathological material from the oropharynx, tonsils, and nose, taken with a dry swab, is seeded on a plate with blood-tellurite agar, incubated in a thermostat at 37 ° C for 24 hours, a suspension is prepared from suspicious colonies in vitro by adding 1-2 ml of 0.9% sodium chloride solution.
Параллельно исследуют микробную взвесь контрольного токсигенного штамма коринебактерий дифтерии с концентрацией 109 мк/мл. Для проведения РАО в лунки планшета для иммунологических реакций (см. таблицу 1) в ряды А, В, С, Д вносят по 50 мкл 1% раствора нормальной кроличьей сыворотки (НКС). Затем в две первые лунки ряда А вносят пипеткой-дозатором по 50 мкл коммерческого дифтерийного анатоксина (в разведении 1:1000 или 0,3 Lf в 1 мл) и, начиная со второй лунки, титруют, т.е. делают последовательные двукратные разведения по 12 лунку. После этого переносят на ряд В и титруют до 11 лунки. В ряд С в первые две лунки вносят по 50 мкл микробной взвеси контрольного токсигенного штамма С. diphtheria mitis 1092 (tox+) (109 мк/мл) и титруют двукратным шагом по 12ю лунку.In parallel, microbial suspension of the control toxigenic strain of corynebacteria diphtheria with a concentration of 10 9 μ / ml is examined. To conduct RAO in the wells of the tablet for immunological reactions (see table 1) in rows A, B, C, D make 50 μl of 1% solution of normal rabbit serum (NCC). Then, 50 μl of a commercial diphtheria toxoid (diluted 1: 1000 or 0.3 Lf per 1 ml) is pipetted into the first two wells of row A and titrated, i.e. make serial two-fold dilutions of 12 wells. Then transferred to row B and titrated to 11 wells. In series with the first two wells of making .mu.l of 50 C. diphtheria mitis 1092 (tox +) bacterial suspension control toxigenic strain (September 10 mg / ml) and titrate with twofold increments of 12 th well.
Затем в 2 первые лунки ряда Д вносят по 50 мкл взвеси исследуемой культуры и титруют двукратно до 12ой лунки.Then, in the first two wells of row A Pipette 50 ul of suspension culture under study and titrated twice to 12 th wells.
После этого в каждую лунку (рядов А, В, С, Д) добавляют пипеткой по 1 капле (25 мкл) диагностикума.After that, in each well (rows A, B, C, D), 1 drop (25 μl) of diagnosticum is pipetted.
Содержимое лунок перемешивают покачиванием планшета в течение 1 минуты и оставляют при температуре (20-22)°С на 1,5-2 часа. Для контроля диагностикума на отсутствие спонтанной агломерации в ряд В лунки 11-12 вносят только НКС и диагностический препарат.The contents of the wells are mixed by rocking the tablet for 1 minute and left at a temperature of (20-22) ° C for 1.5-2 hours. To control the diagnosticum for the absence of spontaneous agglomeration, only NKS and the diagnostic preparation are added to the B wells 11-12 in a row.
За положительный результат (+) принимают цветной ярко-розовый агломерат, выстилающий все дно лунки равномерно. В отрицательных (-) случаях и в контроле образуется компактное колечко или «точка» в центре лунки.For a positive result (+) take a color bright pink agglomerate, lining the entire bottom of the hole evenly. In negative (-) cases and in the control, a compact ring or “point” is formed in the center of the well.
Таким образом из таблицы 1 видно:Thus, from table 1 shows:
- ряд А - указывает на наличие дифтерийного токсина в пробе (+) (розовый агломерат);- row A - indicates the presence of diphtheria toxin in the sample (+) (pink agglomerate);
- ряд В - до 7 лунки реакция положительна, а с 7 по 10 лунки указывают на отрицательный результат (розовые колечки);- row B - up to 7 holes the reaction is positive, and from 7 to 10 holes indicate a negative result (pink rings);
- ряд С - 6 лунок положительны с контрольным штаммом (токсигенным) (+), а с 7 лунки (-), т.е. содержание токсина в контрольном токсигенном штамме соответствует 1,9×10-4 Lf/мл;- row C - 6 holes are positive with the control strain (toxigenic) (+), and with 7 holes (-), i.e. the toxin content in the control toxigenic strain corresponds to 1.9 × 10 -4 Lf / ml;
- ряд Д - исследуемая культура с дифтерийным токсином подтверждается до 6 лунки (+), а с 6 лунки (-).- row D - the test culture with diphtheria toxin is confirmed up to 6 holes (+), and from 6 holes (-).
Чувствительность реакции с коммерческим дифтерийным анатоксином составляет 3×10-6 Lf/мл (ряд В) - минимальная выявляемая концентрация анатоксина. Чувствительность с контрольным токсигенным штаммом С. diphtheria mitis 1092 составила 1,9×10-4 Lf/мл (ряд С), т.е. содержание токсина в контрольном токсигенном штамме соответствует 1,9×10-4 Lf/мл. Положительная реакция (РАО) с исследуемой культурой (ряд Д) свидетельствует о том, что культура токсигенная, а продукция токсина в культуре в количественном отношении соответствует 3,8×10-4 Lf/мл (5 лунок).The sensitivity of the reaction with a commercial diphtheria toxoid is 3 × 10 -6 Lf / ml (row B) - the minimum detectable concentration of toxoid. The sensitivity with the control toxigenic strain C. diphtheria mitis 1092 was 1.9 × 10 -4 Lf / ml (row C), i.e. the toxin content in the control toxigenic strain corresponds to 1.9 × 10 -4 Lf / ml. A positive reaction (RAO) with the studied culture (row D) indicates that the culture is toxigenic, and the production of toxin in the culture quantitatively corresponds to 3.8 × 10 -4 Lf / ml (5 holes).
Пример 2Example 2
Отличается от примера 1 тем, что исследуемый патологический материал засевают в жидкую питательную среду (бульон Хоттингера, теллурит калия, КРС) и через 18 часов инкубации в термостате при 37°С исследуют надосадочную жидкость среды культивирования (см. таблицу 2, ряд С). Ряды А и В - положительный контроль РАО с коммерческим дифтерийным анатоксином, как в примере 1. Ряд С - бульонная культура исследуемого возбудителя. Ряд Д - бульонная питательная среда без возбудителя - контроль среды культивирования.It differs from Example 1 in that the pathological material under investigation is seeded in a liquid nutrient medium (Hottinger broth, potassium tellurite, cattle) and after 18 hours of incubation in a thermostat at 37 ° C, the supernatant of the culture medium is examined (see table 2, row C). Rows A and B - positive control of radioactive waste with a commercial diphtheria toxoid, as in example 1. Row C - broth culture of the studied pathogen. Row D - broth nutrient medium without a pathogen - control of the culture medium.
Исходя из таблицы 2:Based on table 2:
- ряд А - указывает на наличие дифтерийного токсина проба (+) - разовые агломераты;- row A - indicates the presence of diphtheria toxin sample (+) - single agglomerates;
- ряд В - с 7-10 лунки указывают на (-) отрицательный результат (розовые «колечки»);- row B - from 7-10 holes indicate a (-) negative result (pink “rings”);
- ряд С - указывают на наличие токсина в 6 лунках в разведении (1:64), чувствительность РАО с исследуемой культурой составила 1,9×10-4 Lf/MA;- row C - indicate the presence of toxin in 6 wells at a dilution (1:64), the sensitivity of the RAW with the studied culture was 1.9 × 10 -4 Lf / MA;
- ряд Д - отрицательные результаты, т.к. со средой культивирования без возбудителя диагностикум не реагирует.- row D - negative results, because with a culture medium without a pathogen, the diagnosticum does not respond.
Пример 3Example 3
Отличается от примера 1 тем, что в качестве исследуемой культуры используют дифтероиды, не продуцирующие токсин: С. xerosis 127 (ряд С) (см. таблицу 3), С. hofmanii «Алешин» (ряд Д). Ряды А и В положительный контроль РАО с коммерческим дифтерийным анатоксином.It differs from Example 1 in that diphtheroids that do not produce toxin are used as the test culture: C. xerosis 127 (row C) (see table 3), C. hofmanii Aleshin (row D). Rows A and B positive RAW control with commercial diphtheria toxoid.
Анализ реакции показал, что с дифтероидами, а именно С. xerosis 127 (ряд С) и С. hofmanii «Алешин» (ряд Д) наблюдается четкая отрицательная реакция РАО, так как дифтероиды не продуцируют дифтерийный токсин.Analysis of the reaction showed that with diphtheroids, namely C. xerosis 127 (row C) and C. hofmanii "Aleshin" (row D), a clear negative reaction of RAO is observed, since diphtheroids do not produce diphtheria toxin.
Исходя из приведенных примеров, можно сделать вывод, что разработанный специалистами Ростовского НИПЧИ диагностикум применяют для исследования культур, выращенных как на плотных, так и на жидких питательных средах, что обеспечивает более широкий спектр его использования в лабораторной диагностике дифтерии.Based on the above examples, we can conclude that the diagnosticum developed by the Rostov NIPCH specialists is used to study cultures grown on both solid and liquid nutrient media, which provides a wider range of its use in laboratory diagnosis of diphtheria.
Кроме того, в примерах наблюдается специфичность диагностикума, так как отсутствуют перекрестные реакции с атоксигенными штаммами коринебакгерий близкородственными дифтероидами (С. xerosis, С. hofmanii).In addition, the examples show the specificity of the diagnosticum, since there are no cross-reactions with atoxigenic strains of corynebacteria closely related diphtheroids (C. xerosis, C. hofmanii).
Предлагаемый способ получения диагностикума позволяет ковалентно взаимодействовать реакционным альдегидным группам, находящимся на сферической поверхности частиц носителя, с аминогруппами белковых молекул дифтерийного иммуноглобулина, что обеспечивает диагностикуму высокую чувствительность (10-5-10-6 Lf/мл) и специфичность.The proposed method for producing a diagnosticum allows covalent interaction of the reaction aldehyde groups located on the spherical surface of the carrier particles with the amino groups of the diphtheria immunoglobulin protein molecules, which provides the diagnosticum with high sensitivity (10 -5 -10 -6 Lf / ml) and specificity.
Диагностикум в лиофилизированном виде имеет стабильные свойства, так как в течение 4 лет сохраняет первичную активность.The lyophilized diagnosticum has stable properties, since it retains primary activity for 4 years.
Кроме того, полученный диагностикум экономичен, так как 1 ампулы достаточно для проведения 50 анализов, прост в постановке, не требует специальной подготовки медицинского персонала и отличается высокой воспроизводимостью и демонстративностью результатов реакции за счет яркой окраски.In addition, the diagnosticum obtained is economical, since 1 ampoule is enough for 50 tests, it is simple to set up, it does not require special training of medical personnel, and it is highly reproducible and demonstrative of the reaction results due to its bright color.
-TO
-
-TO
-
-TO
-
-TO
-
-TO
-
-TO
-
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004137761/15A RU2282192C1 (en) | 2004-12-23 | 2004-12-23 | Method of preparing diagnosticum to reveal diphtheria toxin |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004137761/15A RU2282192C1 (en) | 2004-12-23 | 2004-12-23 | Method of preparing diagnosticum to reveal diphtheria toxin |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2004137761A RU2004137761A (en) | 2006-06-10 |
RU2282192C1 true RU2282192C1 (en) | 2006-08-20 |
Family
ID=36712227
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2004137761/15A RU2282192C1 (en) | 2004-12-23 | 2004-12-23 | Method of preparing diagnosticum to reveal diphtheria toxin |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2282192C1 (en) |
-
2004
- 2004-12-23 RU RU2004137761/15A patent/RU2282192C1/en not_active IP Right Cessation
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2004137761A (en) | 2006-06-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US11092600B2 (en) | Method for the real-time detection of microorganisms in a liquid culture medium by agglutination | |
US20010024801A1 (en) | Noninvasive detection of colorectal cancer and other gastrointestinal pathology | |
EP0098557B1 (en) | Preparation for the diagnosis of chlamydial infections and for the production of chlamydial group-specific antibodies | |
Huang | Gold nanoparticle-based immunochromatographic assay for the detection of Staphylococcus aureus | |
Al-Saadi et al. | Phenotypic detection and antibiotics resistance pattern of local serotype of E. coli O157: H7 from children with acute diarrhea in Hilla city/Iraq | |
US4617264A (en) | Pretreatment method and composition | |
CN103760345A (en) | Kit for detecting mycobacterium tuberculosis infection by using peripheral blood and application of kit | |
RU2282192C1 (en) | Method of preparing diagnosticum to reveal diphtheria toxin | |
CA1083480A (en) | Identification of neisseria gonorrhoeae using antibodies from lps antigen | |
CN102539756A (en) | Method for testing immune microspheres of pylori helicobacter pylori in gastric mucosa samples | |
RU2703282C1 (en) | Method for producing a diagnosticum for detecting a toxin of a cholera vibrio recovered from environmental objects | |
AU4190500A (en) | Noninvasive detection of colorectal cancer and other gastro intestinal pathology | |
Arefin et al. | Development of slide agglutination test for the rapid diagnosis of Mycoplasma infection in the chicken | |
RU2798124C1 (en) | Method of obtaining brucellosis polystyrene latex diagnosticum | |
CN113624975A (en) | Time-resolved immunofluorescence chromatography reagent strip and application thereof in qualitative detection of mycoplasma and chlamydia for non-diagnosis purpose | |
RU2310852C1 (en) | EXPRESS-DIAGNOSIS METHOD FOR DIAGNOSING HEMOPHILIC INFECTION OF b TYPE IN CHILDREN | |
RU2324188C2 (en) | Method of preparation of antigenic polymeric helicobacter diagnosticum | |
CN1378084A (en) | Immunological microball method for detecting pyloric helicobacterium in stool sample | |
RU2611359C1 (en) | Method and set for determination of cholera toxin production and differentiation of epidemiologically significant strains of cholera vibrios of classical and el tor biovars | |
US4332890A (en) | Detection of neisseria gonorrhoeae | |
RU2261444C1 (en) | Method for detection of atoxigenic hemolytic strains of choleraic vibrios | |
RU2430376C1 (en) | Method of obtaining pseudotuberculosis antigen polymer diagnosticum | |
RU2200327C2 (en) | Method for diagnostics of syphilis (variants) | |
RU2737776C1 (en) | Test kit for detecting cholera toxin in cultivation medium | |
RU2113172C1 (en) | Method to conduct immunological express diagnostics of toxic types of diphtheritic infections |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20091224 |