RU2430376C1 - Method of obtaining pseudotuberculosis antigen polymer diagnosticum - Google Patents

Method of obtaining pseudotuberculosis antigen polymer diagnosticum Download PDF

Info

Publication number
RU2430376C1
RU2430376C1 RU2010133423/15A RU2010133423A RU2430376C1 RU 2430376 C1 RU2430376 C1 RU 2430376C1 RU 2010133423/15 A RU2010133423/15 A RU 2010133423/15A RU 2010133423 A RU2010133423 A RU 2010133423A RU 2430376 C1 RU2430376 C1 RU 2430376C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
pseudotuberculosis
sensitin
suspension
rpm
diagnosticum
Prior art date
Application number
RU2010133423/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Диана Игоревна Симакова (RU)
Диана Игоревна Симакова
Людмила Владимировна Ларионова (RU)
Людмила Владимировна Ларионова
Гериард Львович Карбышев (RU)
Гериард Львович Карбышев
Александр Николаевич Терентьев (RU)
Александр Николаевич Терентьев
Людмила Константиновна Лысова (RU)
Людмила Константиновна Лысова
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority to RU2010133423/15A priority Critical patent/RU2430376C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2430376C1 publication Critical patent/RU2430376C1/en

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

FIELD: medicine. ^ SUBSTANCE: claimed is method of obtaining antigen diagnosticum with application of species-specific membrane proteins of Y. Pseudotuberculosis, sensibilised on acrolein polymer spheres, for detection of antibodies to causative agent of pseudotuberculosis of the most epidemically essunsial serovars, spread among people. As sensitin used is pool from 10 protein antigens with molecular weight within 28-80 kDa and total protein concentration 0.9-1.3 mg/ml, isolated from coarse protein membranes. As sensitin carrier used are spherical polymer particles with diameter 1.5 mcm, which contain 1.3 mM/g of aldehide groups. ^ EFFECT: method improvement. ^ 5 cl, 6 ex, 1 tbl

Description

Предлагаемое изобретение относится к области медицины, а именно к клинической лабораторной диагностике опасных инфекций при выявлении антител к возбудителю псевдотуберкулеза наиболее эпидемически значимых сероваров, распространенных среди людей, с использованием видоспецифических мембранных белков Yersinia pseudotuberculosis, сенсибилизированных на акролеиновых полимерных сферах.The present invention relates to medicine, namely to clinical laboratory diagnosis of dangerous infections in the detection of antibodies to the causative agent of pseudotuberculosis of the most epidemiologically significant serovars, common among people, using species-specific membrane proteins Yersinia pseudotuberculosis sensitized on acrolein polymer spheres.

Несмотря на большой арсенал средств в лабораторной практике, проблема диагностики псевдотуберкулеза (ПТ) в настоящее время остается актуальной.Despite the large arsenal of tools in laboratory practice, the problem of diagnosing pseudotuberculosis (PT) currently remains relevant.

Наиболее предпочтительным в клинике является метод определения антител к антигенам возбудителя в сыворотке крови, при этом особенностью псевдотуберкулеза является многообразие его клинических проявлений, вызываемых сероварами Y. pseudotuberculosis, а именно O:1a, O:1b, O:2b, O:2с, O:3, O:4а, O:4b, O:5a, O:5b, что затрудняет диагностику и лечение, так как отсутствуют тест-системы, которые достоверно и быстро идентифицируют антитела к псевдотуберкулезному микробу.The most preferred method in the clinic is the determination of antibodies to the pathogen antigens in blood serum, while the peculiarity of pseudotuberculosis is the variety of its clinical manifestations caused by Y. pseudotuberculosis serovars, namely O: 1a, O: 1b, O: 2b, O: 2c, O : 3, O: 4a, O: 4b, O: 5a, O: 5b, which complicates the diagnosis and treatment, since there are no test systems that reliably and quickly identify antibodies to the pseudotuberculosis microbe.

Известен диагностикум псевдотуберкулезный эритроцитарный антигенный (см. Методические указания МУ 3.1.1.2438-09 «Эпидемиологический надзор и профилактика псевдотуберкулеза и кишечного иерсиниоза», Москва, 2009 г., стр.61), представляющий собой лиофилизированную взвесь формалинизированных эритроцитов барана, сенсибилизированных специфическим полисахаридом или протеинполисахаридным комплексом Y. pseudotuberculosis серовара O:1.A known diagnosticum is pseudotuberculous erythrocyte antigenic (see Guidelines MU 3.1.1.2438-09 "Epidemiological surveillance and prevention of pseudotuberculosis and intestinal yersiniosis", Moscow, 2009, p. 61), which is a lyophilized suspension of sheep’s formalin erythrocytes, or sensib protein polysaccharide complex of Y. pseudotuberculosis serovar O: 1.

Однако официальный диагностикум не позволяет выявлять антитела в крови больных, если заболевание вызвано другим сероваром возбудителя псевдотуберкулеза.However, the official diagnosticum does not allow the detection of antibodies in the blood of patients if the disease is caused by another serovar of the causative agent of pseudotuberculosis.

В результате в связи с биологической лабильностью носителя наблюдается плохая воспроизводимость серий препарата, а использование полисахарида в качестве сенситина дает большое количество перекрестных реакций с другими представителями рода Yersinia, а также с возбудителями кишечных инфекций, тем самым затрудняя дифференциацию антител к возбудителю псевдотуберкулеза.As a result, due to the biological lability of the carrier, poor reproducibility of the drug series is observed, and the use of a polysaccharide as sensitin gives a large number of cross-reactions with other representatives of the genus Yersinia, as well as with intestinal pathogens, thereby complicating the differentiation of antibodies to the pseudotuberculosis pathogen.

Наиболее близким по технологической сущности является способ диагностики псевдотуберкулеза (см. патент RU №2153172, кл. G01N33/53, опубликовано 20.07.2000 г.), представляющий собой тест-систему на основе высокоочищенного термостабильного токсина с мол. массой 45 кДа, где в качестве антигена используют видоспецифический белок порин из внешней мембраны Y. pseudotuberculosis, за диагностический титр принимают разведение сыворотки 1:400 и 1:800, в качестве реагента для предотвращения неспецифического связывания используют 0,1%-ный раствор медицинского желатина. Результат считают положительным при соотношении значений оптической плотности специфической сыворотки к оптической плотности нормальной сыворотки больше или равно 2,1.The closest in technological essence is a method for the diagnosis of pseudotuberculosis (see patent RU No. 2153172, class G01N33 / 53, published July 20, 2000), which is a test system based on a highly purified thermostable toxin with mol. mass of 45 kDa, where a species-specific porin protein from the outer membrane of Y. pseudotuberculosis is used as an antigen, a dilution of 1: 400 and 1: 800 serum is taken as a diagnostic titer, a 0.1% solution of medical gelatin is used as a reagent to prevent nonspecific binding . The result is considered positive when the ratio of the optical density of a specific serum to the optical density of normal serum is greater than or equal to 2.1.

Недостатком прототипа можно считать то, что используемый в качестве антигена токсин продуцируется 82,6% исследуемых разработчиками штаммов Y.pseudotuberculosis, независимо от серовара возбудителя псевдотуберкулеза, что делает возможным получение ложноотрицательных результатов.The disadvantage of the prototype can be considered that the toxin used as antigen is produced by 82.6% of the Y. pseudotuberculosis strains studied by the developers, regardless of the serovar of the causative agent of pseudotuberculosis, which makes it possible to obtain false negative results.

Результаты исследования сыворотки крови больных (патент №215372) показали, что только на 3-4 неделе заболевания процент положительных реакций в ИФА при использовании тест-системы на основе порина составил 98,9% (средний показатель оптической плотности 1,34). Кроме того, в виду многостадийности, сложности и длительности проведения исследования данная тест-система не может относиться к препаратам для экспресс-диагностики псевдотуберкулеза, что делает невозможным ее использование при массовом исследовании, а также эпидемиологических угрозах.The results of the study of blood serum of patients (patent No. 215372) showed that only at 3-4 weeks of illness the percentage of positive reactions in ELISA using a porin-based test system was 98.9% (average optical density 1.34). In addition, in view of the multi-stage, complexity and duration of the study, this test system cannot be referred to as drugs for the rapid diagnosis of pseudotuberculosis, which makes it impossible to use it in a mass study, as well as epidemiological threats.

Техническая задача предлагаемого изобретения состояла в разработке препарата для экспресс-диагностики псевдотуберкулеза, обладающего высокой видоспецифичностью и чувствительностью.The technical task of the invention consisted in the development of a drug for the rapid diagnosis of pseudotuberculosis with high species specificity and sensitivity.

Поставленная задача достигается тем, что в известном способе получения псевдотуберкулезного антигенного полимерного диагностикума, включающем получение сенситина с использованием белков наружной мембраны Y. pseudotuberculosis с последующим применением их в серологической реакции, в качестве сенситина используют пул из 10 белковых антигенов с молекулярными массами в пределах 28-80 кДа, концентрацией общего белка 0,9-1,3 мг/мл, который растворяют в 1 мл 0,1 М бикарбонатного буферного раствора (рН 9,2) и проводят его иммобилизацию на носитель, представляющий собой суспензию микросфер, из расчета 1 мг белка на 100 мг носителя, при этом инкубацию проводят в течение 2-х часов при постоянном помешивании на мешалке, после чего суспензию оставляют на 16-18 часов при 4-6°С, затем блокируют свободные альдегидные группы, трижды отмывают забуференным физиологическим раствором (рН 7,2) и центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10 мин при комнатной температуре, после чего суспендируют в 3% желатозно-сахарозной среде высушивания в соотношении 1:1 и разливают в инсулиновые флаконы по 1 мл, после чего проводят лиофилизацию.This object is achieved by the fact that in the known method for producing a pseudotuberculosis antigenic polymer diagnosticum, including the production of sensitin using the outer membrane proteins of Y. pseudotuberculosis, followed by their use in a serological reaction, a pool of 10 protein antigens with molecular weights in the range of 28- 80 kDa, with a concentration of total protein of 0.9-1.3 mg / ml, which is dissolved in 1 ml of 0.1 M bicarbonate buffer solution (pH 9.2) and immobilized on a carrier, representing suspension of microspheres, at the rate of 1 mg of protein per 100 mg of carrier, while incubation is carried out for 2 hours with constant stirring on a mixer, after which the suspension is left for 16-18 hours at 4-6 ° C, then free aldehyde groups are washed three times with buffered saline (pH 7.2) and centrifuged at 3000 rpm for 10 min at room temperature, after which they are suspended in 3% gelatin-sucrose drying medium in a ratio of 1: 1 and poured into insulin vials 1 ml, after which lyophilization is carried out tion.

При этом пул белков выделяют из грубых клеточных оболочек путем добавления к ним 33% водного раствора N-лаурил-саркозина-Nа до конечной концентрации его во взвеси 2% и инкубирования в течение 16 часов при комнатной температуре, затем раствор центрифугируют при 50000 об/мин на ультрацентрифуге в течение 1 часа, полученный осадок отмывают дистиллированной водой и проводят исследование белкового спектра методом SDS-дискэлектрофореза в ПААГ по методу Laemmly.In this case, the protein pool is isolated from coarse cell membranes by adding to them a 33% aqueous solution of N-lauryl-sarcosine-Na to a final concentration of 2% in suspension and incubation for 16 hours at room temperature, then the solution is centrifuged at 50,000 rpm on an ultracentrifuge for 1 hour, the resulting precipitate was washed with distilled water and the protein spectrum was studied by SDS-disk electrophoresis in SDS page according to the Laemmly method.

Кроме того, в качестве носителя сенситина используются сферические полимерные частицы диаметром 1,5 мкм, содержащие 1,3 мМ/г альдегидных групп.In addition, spherical polymer particles with a diameter of 1.5 μm containing 1.3 mmol / g of aldehyde groups are used as a sensitin carrier.

Причем грубые клеточные оболочки получают из предварительно выделенной бактериальной массы густотой 80-100 млрд кл. /мл, которую центрифугируют при 6000 об/мин в течение 10 мин, а затем ресуспендируют в 10 мМ Hepes-буфере, содержащем 20% (в/о) сахарозы (рН 7,2), после проводят пять циклов ультразвуковой дезинтеграции продолжительностью по 45 сек с минутным интервалом, при длине волны 585 мкм, после лизированные клетки обрабатывают ДНК-азой и РНК-азой из расчета 10 мкг фермента на 1 мл микробной взвеси в течение 10 мин, удаляют неразрушенные клетки центрифугированием при 50000 об/мин на ультрацентрифуге в течение 30 мин и полученный скпернатант разводят двумя объемами Hepes-буфера с последующим центрифугированием при 50000 об/мин на ультрацентрифуге в течение 1 часа, получают осадок, который отмывают дистиллированной водой, а затем ресуспендируют для получения препарата белков наружной мембраны.Moreover, coarse cell membranes are obtained from previously isolated bacterial mass with a density of 80-100 billion cells. / ml, which is centrifuged at 6000 rpm for 10 min, and then resuspended in 10 mM Hepes buffer containing 20% (w / v) sucrose (pH 7.2), after which five cycles of ultrasonic disintegration lasting 45 sec with a minute interval, at a wavelength of 585 μm, after lysed cells are treated with DNAase and RNAse at the rate of 10 μg of the enzyme per 1 ml of microbial suspension for 10 minutes, the undamaged cells are removed by centrifugation at 50,000 rpm in an ultracentrifuge for 30 min and the obtained scernatant was diluted with two volumes of Hepes-buffer and followed by centrifugation at 50,000 rev / min in the ultracentrifuge during 1 hour a precipitate was obtained, which is washed with distilled water and then resuspended to obtain a preparation of outer membrane proteins.

При этом блокирование свободных альдегидных групп проводят путем добавления к суспензии носителя с сенситином 2 мл 0,5% раствора желатозы в забуференном физиологическом растворе (рН 7,2) и оставляют при постоянном перемешивании на мешалке в течение 2-х часов при комнатной температуре.At the same time, free aldehyde groups are blocked by adding 2 ml of a 0.5% gelatose solution in buffered saline solution (pH 7.2) to a suspension of a carrier with sensitin and leaving the mixture under constant stirring for 2 hours at room temperature.

Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.

- На первом этапе получают бактериальную массу. Для этого бесплазмидный штамм Н 141/84 Y. pseudotuberculosis высевают на чашку Петри с 2% агаром Хоттингера и культивируют в течение 2-х суток при комнатной температуре. Затем двухсуточную культуру пересевают в бульон Хоттингера (рН 7,2). Через двое суток культивирования при температуре 24°С бактериальную взвесь пересевают на чашки Петри с 2% агаром Хоттингера. Далее через 2-е суток бактериальную массу Y. pseudotuberculosis в S-форме смывают забуференным физиологическим раствором (рН 7,2) и инактивируют 30 минут на водяной бане при 80°С. Затем проводят проверку полученной бактериальной массы на специфическую стерильность.- At the first stage, a bacterial mass is obtained. For this, the non-plasmid strain H 141/84 Y. pseudotuberculosis is seeded on a Petri dish with 2% Hottinger agar and cultured for 2 days at room temperature. Then the two-day culture is subcultured into the Hottinger broth (pH 7.2). After two days of cultivation at a temperature of 24 ° C, the bacterial suspension is subcultured on Petri dishes with 2% Hottinger agar. Then, after 2 days, the bacterial mass of Y. pseudotuberculosis in S-form is washed off with buffered saline (pH 7.2) and inactivated for 30 minutes in a water bath at 80 ° C. Then, the resulting bacterial mass is checked for specific sterility.

- Вторым этапом способа является получение грубых клеточных оболочек, которые получают из бактериальной массы густотой 80-100 млрд м.кл./мл. Для этого бактериальную массу центрифугируют при 6000 об/мин в течение 10 минут, а затем ресуспендируют в 10 мМ Hepes-буфере, содержащем 20% (в/о) сахарозы (рН 7,0). Далее проводят пять циклов ультразвуковой дезинтеграции продолжительностью по 45 секунд с минутным интервалом, при длине волны 585 мкм. Затем лизированные клетки обрабатывают ДНК-азой и РНК-азой из рассчета 10 мкг фермента на 1 мл микробной взвеси в течение 10 минут. После этого удаляют неразрушенные клетки центрифугированием при 10 тыс. об/мин. в течение 30 минут. Полученный супернатант разводят двумя объемами Hepes-буфера и центрифугируют при 50000 об/мин на ультрацентрифуге в течение 1 часа. Полученный осадок отмывают дистиллированной водой для удаления Hepes-буфера, ресуспендируют в дистиллированной воде и используют для получения препарата белков наружной мембраны.- The second step of the method is to obtain coarse cell membranes, which are obtained from the bacterial mass with a density of 80-100 billion mcl / ml. For this, the bacterial mass is centrifuged at 6000 rpm for 10 minutes, and then resuspended in 10 mM Hepes buffer containing 20% (w / v) sucrose (pH 7.0). Next, five cycles of ultrasonic disintegration are carried out for a duration of 45 seconds with a minute interval, at a wavelength of 585 microns. Then the lysed cells are treated with DNAase and RNAse at the rate of 10 μg of the enzyme per 1 ml of microbial suspension for 10 minutes. After that, the undamaged cells are removed by centrifugation at 10 thousand rpm. within 30 minutes. The resulting supernatant was diluted with two volumes of Hepes buffer and centrifuged at 50,000 rpm in an ultracentrifuge for 1 hour. The resulting precipitate is washed with distilled water to remove the Hepes buffer, resuspended in distilled water and used to produce the outer membrane protein preparation.

- Третий этап заключается в выделении пула белков наружной мембраны Y. pseudotuberculosis. К одной взвеси грубых клеточных оболочек добавляют 33% водный раствор N-лаурил-саркозина-Nа до конечной концентрации его во взвеси 2% и инкубируют в течение 16 часов при комнатной температуре. После этого раствор центрифугируют при 50000 об/мин на ультрацентрифуге в течение 1 часа. Полученный осадок отмывают дстиллированной водой, а затем ресуспендируют в дистиллированной воде.- The third stage is the allocation of a pool of proteins of the outer membrane of Y. pseudotuberculosis. To one suspension of coarse cell membranes add a 33% aqueous solution of N-lauryl-sarcosine-Na to a final concentration of 2% in suspension and incubate for 16 hours at room temperature. After that, the solution is centrifuged at 50,000 rpm in an ultracentrifuge for 1 hour. The resulting precipitate is washed with distilled water, and then resuspended in distilled water.

Содержание общего белка в полученном препарате белковой наружной мембраны определяют по методу Лоури. Концентрация белка составляет 0,9-1,3 мг/мл.The total protein content of the resulting protein outer membrane preparation was determined by the Lowry method. The protein concentration is 0.9-1.3 mg / ml.

Исследование белкового спектра полученного препарата проводят методом SDS-диск-электрофореза в ПААГ по методу Laemmly. Результаты исследования подтверждают присутствие в препарате блока из 10 белковых антигенов с молекулярной массой 28-80 кДа.The study of the protein spectrum of the obtained preparation is carried out by SDS-disk electrophoresis in SDS page according to the Laemmly method. The results of the study confirm the presence in the preparation of a block of 10 protein antigens with a molecular weight of 28-80 kDa.

Таким образом, полученный сенситин представляет собой пул белков, кодируемых хромосомными генами, порины наружной мембраны, а также термостабильный токсин. Данные белки обладают выраженными видоспецифическими свойствами и присутствуют даже у штаммов Y. pseudotuberculosis, лишенных плазмиды вирулентности pYV.Thus, the resulting sensitin is a pool of proteins encoded by chromosomal genes, porins of the outer membrane, as well as a thermostable toxin. These proteins have pronounced species-specific properties and are even present in strains of Y. pseudotuberculosis lacking the plasmid virulence pYV.

Оценка иммунохимической специфичности проводили по методу Western blot.Assessment of immunochemical specificity was carried out according to the Western blot method.

- Четвертый этап заключается в иммобилизации сенситина на носитель. В качестве носителя используют сферические полимерные частицы диаметром 1,5 мкм, содержащие 1,3 мМ/г альдегидных групп. Носитель был получен путем анионной полимеризации акролеина в водно-щелочной среде. Окрашивание частиц производят добавлением красителя в полимеризационную смесь в процессе синтеза.- The fourth step is to immobilize sensitin to the carrier. As a carrier, spherical polymer particles with a diameter of 1.5 μm containing 1.3 mmol / g of aldehyde groups are used. The carrier was obtained by anionic polymerization of acrolein in an aqueous alkaline medium. Particle staining is done by adding dye to the polymerization mixture during the synthesis process.

Суспензию микросфер в количестве 100 мг, что соответствует 2 мл суспензии микросфер, отмывают дважды 0,1 М бикарбонатным буферным раствором в объеме 5 мл (рН 9,2) центрифугированием при 3000 об/мин в течение 10 минут при температуре 20°С. Отмытый носитель суспендируют в 2 мл бикарбонатного буфера и при постоянном перемешивании на магнитной мешалке соединяют с сенситином из расчета 1 мг белка/ 100 мг носителя, оставляя для контакта в течение 2 часов при комнатной температуре. Далее иммобилизация проводится при 4-6°С в течение 16-18 часов.A suspension of microspheres in an amount of 100 mg, which corresponds to 2 ml of a suspension of microspheres, is washed twice with 0.1 M bicarbonate buffer solution in a volume of 5 ml (pH 9.2) by centrifugation at 3000 rpm for 10 minutes at a temperature of 20 ° C. The washed carrier is suspended in 2 ml of bicarbonate buffer, and with constant stirring on a magnetic stirrer, it is combined with sensitin at the rate of 1 mg protein / 100 mg of the carrier, leaving it to contact for 2 hours at room temperature. Further, immobilization is carried out at 4-6 ° C for 16-18 hours.

Для блокирования свободных альдегидных групп к суспензии носителя с сенситином добавляют 2 мл 0,5% раствора желатозы в забуференном физиологическом растворе (рН 7,2) и оставляют при постоянном перемешивании на магнитной мешалке в течение 2 часов при комнатной температуре.To block free aldehyde groups, 2 ml of a 0.5% gelatose solution in buffered saline (pH 7.2) are added to a suspension of a carrier with sensitin and left under constant stirring on a magnetic stirrer for 2 hours at room temperature.

После этого диагностикум трижды отмывают забуференным физиологическим раствором (рН 7,2) и центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10 минут при комнатной температуре. Конечный осадок суспендируют в 8 мл 0,1% раствора желатозы в забуференном физиологическом растворе (рН 7,2). После этого определяют активность и специфичность жидкого антигенного диагностикума.After that, the diagnosticum is washed three times with buffered saline (pH 7.2) and centrifuged at 3000 rpm for 10 minutes at room temperature. The final precipitate is suspended in 8 ml of a 0.1% gelatose solution in buffered saline (pH 7.2). After that, determine the activity and specificity of the liquid antigenic diagnosticum.

Готовый препарат суспендируют в 3% желатозо-сахарозной среде высушивания в соотношении 1:1 и разливают в инсулиновые флаконы по 1 мл. Лиофилизацию проводят в течение 15 часов.The finished product is suspended in 3% gelatin-sucrose drying medium in a ratio of 1: 1 and poured into 1 ml insulin vials. Lyophilization is carried out for 15 hours.

Активность и специфичность диагностикума определяют в реакции агломерации объемной (РАО). Для ее проведения используют контрольную псевдотуберкулезную кроличью сыворотку против белков наружной мембраны, кроличью сыворотку против Y. pestis, кроличью сыворотку против Y. enterocolitica и гипериммунные сыворотки против возбудителей, ассоциированных с группой кишечных инфекций: эшерихиозная, сальмонеллезная, шигеллезная.The activity and specificity of the diagnosticum is determined in the volumetric agglomeration (RAO) reaction. For its use, a control pseudotuberculosis rabbit serum against the outer membrane proteins, rabbit serum against Y. pestis, rabbit serum against Y. enterocolitica and hyperimmune serum against pathogens associated with the group of intestinal infections: escherichiosis, salmonella, shigellosis.

Для постановки реакции агломерации объемной в каждую лунку 96-луночного планшета для иммунологических реакций вносят по 50 мкл нормальной кроличьей сыворотки в разведении 1:50. Для определения специфической активности в первую лунку пипеткой-дозатором вносят по 50 мкл контрольной псевдотуберкулезной сыворотки в разведении 1:10 и двукратно титровали до конца ряда, до 1:2560. Из последней лунки 50 мкл удаляют.To set up a bulk agglomeration reaction, 50 μl of normal rabbit serum at a 1:50 dilution are added to each well of a 96-well immunological reaction plate. To determine the specific activity, 50 μl of control pseudotuberculosis serum at a dilution of 1:10 was pipetted into the first well with a pipette and titrated twice to the end of the row, to 1: 2560. From the last well, 50 μl is removed.

Для определения специфичности в лунки каждого ряда после внесения нормальной кроличьей сыворотки вносят по 50 мкл гетерологичных сывороток в разведении 1:10 и делают последовательно двукратные разведения до 1:2560. Из последней лунки удаляют 50 мкл.To determine the specificity, 50 μl of heterologous sera at a dilution of 1:10 are added to the wells of each row after normal rabbit serum is added and two-fold dilutions are sequentially made up to 1: 2560. 50 μl is removed from the last well.

Затем во все лунки пипеткой-дозатором вносят по 25 мкл диагностикума в рабочем разведении. Для проверки диагностикума на спонтанную агглютинацию в две любые лунки вносят по 50 мкл нормальной кроличьей сыворотки и 25 мкл разведенного диагностикума. После добавления диагностикума содержимое лунок перемешивают покачиванием планшета в течение 1 минуты и оставляют при комнатной температуре на 2-2,5 часа.Then, 25 μl of diagnosticum in working dilution are pipetted into all wells with a pipette-dispenser. To test the diagnosticum for spontaneous agglutination, 50 μl of normal rabbit serum and 25 μl of diluted diagnosticum are added to any two wells. After adding a diagnosticum, the contents of the wells are mixed by shaking the tablet for 1 minute and left at room temperature for 2-2.5 hours.

За положительный результат принимали цветной розовый агломерат, выстилающий все дно лунки равномерно или агломерат, выстилающий дно лунки с четко очерченными краями. В отрицательных случаях и в контроле образовывалось компактное колечко или «точка» в центре лунки.A colored pink agglomerate, lining the entire bottom of the well evenly, or agglomerate, lining the bottom of the well with clearly defined edges, was taken as a positive result. In negative cases and in the control, a compact ring or “dot” was formed in the center of the well.

Для определения чувствительности диагностикума использовали серии кроличьей иммунной сыворотки (контрольной) в объемной реакции агломерации (РАО) с титрами 1:2560.To determine the sensitivity of the diagnosticum, a series of rabbit immune serum (control) was used in the volumetric agglomeration reaction (RAO) with titers of 1: 2560.

После лиофильного высушивания активность диагностикума не менялась.After freeze drying, the activity of the diagnosticum did not change.

Применение полученного псевдотуберкулезного антигенного полимерного диагностикума подтверждено примерами (см. таблицу).The use of the obtained pseudotuberculosis antigenic polymer diagnosticum is confirmed by examples (see table).

Проведен ряд исследований сывороток крови больных с кишечными инфекциями в реакции агломерации объемной (РАО) с применением антигенного псевдотуберкулезного диагностикума. Диагностический титр препарата 1:80.A series of studies of blood serum of patients with intestinal infections in the reaction of agglomeration of volumetric (RAO) using antigenic pseudotuberculosis diagnosticum. The diagnostic titer of the drug is 1:80.

Для постановки РАО проводят подготовку исследуемых сывороток. Исследуемую сыворотку человека перед исследованием разводят забуференным физиологическим раствором (рН 7,1) 1:10. Разведенную сыворотку прогревают в течение 30 мин при 56°С. После этого оставляют при комнатной температуре на 10 мин и затем исследуют в РАО.For the production of radioactive waste, the studied sera are prepared. The test human serum is diluted with buffered saline (pH 7.1) 1:10 before the study. The diluted serum is heated for 30 minutes at 56 ° C. After that, leave at room temperature for 10 minutes and then examined in the RAW.

Кроличью сыворотку гипериммунную псевдотуберкулезную также разводят 1:10 забуференным физиологическим раствором (рН 7,2).Hyperimmune pseudotuberculosis rabbit serum is also diluted 1:10 with buffered saline (pH 7.2).

Пример 1.Example 1

Ряд А - исследуют сыворотку больного (1) с подозрением на псевдотуберкулез. Предварительный диагноз поставлен на основе клинических проявлений. Симптомы заболевания наблюдают около 14 дней. Титр сыворотки в РА с живой культурой Y. pseudotuberculosis составил 1:320. Положительная реакция (+), наблюдаемая в 1-4 лунках (цветной ярко-розовый агломерат), указывает на содержание антител к возбудителю псевдотуберкулеза в титре 1:160. Полученные результаты подтверждают предварительный диагноз псевдотуберкулеза.Row A - examine the patient's serum (1) with suspected pseudotuberculosis. A preliminary diagnosis is made on the basis of clinical manifestations. Symptoms of the disease are observed for about 14 days. The serum titer in RA with a live culture of Y. pseudotuberculosis was 1: 320. A positive reaction (+) observed in 1-4 wells (color bright pink agglomerate) indicates the content of antibodies to the causative agent of pseudotuberculosis in a titer of 1: 160. The results confirm the preliminary diagnosis of pseudotuberculosis.

Пример 2.Example 2

Ряд В - сыворотка крови больного (2) с клиническим диагнозом псевдотуберкулез. Титр сыворотки в РА 1:1280. Положительная реакция (+) в 1-5 лунках соответствует титру 1:640, что согласуется с клиническим диагнозом.Row B - patient's blood serum (2) with a clinical diagnosis of pseudotuberculosis. Serum titer in RA 1: 1280. A positive reaction (+) in 1-5 holes corresponds to a titer of 1: 640, which is consistent with the clinical diagnosis.

Пример 3.Example 3

Ряд С - сыворотка крови больного (3) с диагнозом кишечный иерсиниоз. Титр в РА с живой культурой Y.enterocolitica 1:640. Отрицательная реакция (-), наблюдаемая во всех лунках, указывает на отсутствие антител к возбудителю псевдотуберкулеза.Row C - patient's blood serum (3) with a diagnosis of intestinal yersiniosis. Caption in RA with live culture Y.enterocolitica 1: 640. A negative reaction (-) observed in all wells indicates the absence of antibodies to the causative agent of pseudotuberculosis.

Пример 4.Example 4

Ряд Д - сыворотка больного (4) с диагнозом сальмонеллез. Титр в РНГА с коммерческим сальмонеллезным диагностикумом 1:640. В РАО с псевдотуберкулезным антигенным диагностикумом наблюдается отрицательная реакция (-) во всех лунках.Row D - patient serum (4) with a diagnosis of salmonellosis. Title in RNGA with commercial salmonella diagnosticum 1: 640. In RAO with pseudotuberculosis antigenic diagnosticum, a negative reaction (-) is observed in all wells.

Пример 5.Example 5

Ряд Е - сыворотка кроличья гипериммунная к возбудителю чумы. Рабочий титр сыворотки 1:1280. В реакции с псевдотуберкулезным антигенным диагностикумом во всех лунках ряда наблюдается отрицательный результат (-).Series E - rabbit hyperimmune serum to the plague pathogen. Working titer of serum 1: 1280. In a reaction with a pseudotuberculosis antigenic diagnosticum, a negative result (-) is observed in all wells of the series.

Пример 6.Example 6

Ряд F - сыворотка кроличья гипериммунная псевдотуберкулезная (позитивный контроль). В 8-ми лунках наблюдается положительная реакция (+), титр составляет 1:2560, что свидетельствует о высокой активности и специфичности предлагаемого диагностикума.Series F - rabbit hyperimmune pseudotuberculous serum (positive control). In 8 holes a positive reaction (+) is observed, the titer is 1: 2560, which indicates the high activity and specificity of the proposed diagnosticum.

Ряд G - контроль диагностикума на спонтанную агглютинацию. В двух используемых лунках результат отрицательный (-).Series G - control of the diagnosticum for spontaneous agglutination. In the two wells used, the result is negative (-).

Следовательно, разработанный диагностический препарат в РАО позволяет выявлять антитела к возбудителю псевдотуберкулеза, дифференцировать данное заболевание от чумы, кишечного иерсиниоза и прочих кишечных инфекций. Полученные результаты совпадают с данными дополнительных исследований и клиническим диагнозом. Таким образом, предлагаемый диагностикум перспективен для использования в клинической лабораторной диагностике, включая ранние сроки заболевания, а также проведения мониторинга в полевых условиях и научно-исследовательской работе.Therefore, the developed diagnostic drug in the RAO allows to detect antibodies to the causative agent of pseudotuberculosis, to differentiate this disease from plague, intestinal yersiniosis and other intestinal infections. The results obtained are consistent with additional studies and a clinical diagnosis. Thus, the proposed diagnosticum is promising for use in clinical laboratory diagnostics, including early stages of the disease, as well as conducting monitoring in the field and research work.

Использование предлагаемого изобретения позволяет за счет уникального сенситина, представленного в виде пула мембранных белков, кодируемых хромосомными генами, поринов наружной мембраны, а также термостабильного токсина выявлять антитела к возбудителю псевдотуберкулеза независимо от серовара Y. pseudotuberculosis, при этом не давая перекрестных реакций с другими представителями рода Yersinia, a также возбудителями кишечных заболеваний.Using the present invention, due to the unique sensitin, presented in the form of a pool of membrane proteins encoded by chromosomal genes, porins of the outer membrane, as well as thermostable toxin, antibodies to the causative agent of pseudotuberculosis can be detected regardless of serovar Y. pseudotuberculosis, while not giving cross-reactions with other representatives of the genus Yersinia, as well as intestinal pathogens.

Преимуществом диагностикума является возможность проведения исследования в один этап с последующим визуальным учетом цветной реакции. Получение результата исследования в течение 2-х часов позволяет отнести предлагаемый диагностикум к средствам экспресс-диагностики, а отсутствие необходимости использования специального оборудования и подготовки персонала делают возможным его использование в полевых условиях.The advantage of the diagnosticum is the possibility of conducting a study in one stage, followed by visual consideration of the color reaction. Obtaining the result of the study within 2 hours allows us to attribute the proposed diagnosticum to the means of express diagnostics, and the absence of the need to use special equipment and training personnel makes it possible to use it in the field.

ТаблицаTable РядRow Разведение исследуемых сывороток в планшетеDilution of test sera in a tablet 1one 22 33 4four 55 66 77 88 99 1010 11eleven 1:201:20 1:401:40 1:801:80 1:1601: 160 1:3201: 320 1:6401: 640 1:12801: 1280 1:25501: 2550 1:51201: 5120 АBUT ++ ++ ++ ++ -- -- -- -- -- ВAT ++ ++ ++ ++ ++ ++ -- -- -- СFROM -- -- -- -- -- -- -- -- -- ДD -- -- -- -- -- -- -- -- -- ЕE -- -- -- -- -- -- -- -- -- FF ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ -- GG -- --

Claims (5)

1. Способ получения псевдотуберкулезного антигенного полимерного диагностикума, включающий получение сенситина с использованием белков наружной мембраны Y. pseudotuberculosis с последующим применением их в серологической реакции, отличающийся тем, что в качестве сенситина используют пул из 10 белковых антигенов с молекулярными массами в пределах 28-80 кДа, концентрацией общего белка 0,9-1,3 мг/мл, который растворяют в 1 мл 0,1 М бикарбонатного буферного раствора (рН 9,2) и проводят его иммобилизацию на носитель, представляющий собой суспензию микросфер, из расчета 1 мг белка на 100 мг носителя, при этом инкубацию проводят в течение 2 ч при постоянном помешивании на мешалке, после чего суспензию оставляют на 16-18 ч при 4-6°С, затем блокируют свободные альдегидные группы, трижды отмывают забуференным физиологическим раствором (рН 7,2) и центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10 мин при комнатной температуре, после суспендируют в 3% желатозно-сахарозной среде высушивания в соотношении 1:1 и разливают в инсулиновые флаконы по 1 мл, после чего проводят лиофилизацию.1. A method of obtaining a pseudotuberculosis antigenic polymer diagnosticum, including the production of sensitin using proteins of the outer membrane of Y. pseudotuberculosis, followed by their use in a serological reaction, characterized in that a pool of 10 protein antigens with molecular weights in the range of 28-80 kDa is used as sensitin , the concentration of the total protein of 0.9-1.3 mg / ml, which is dissolved in 1 ml of 0.1 M bicarbonate buffer solution (pH 9.2) and immobilized on a carrier, which is a suspension of microspheres, and calculation of 1 mg of protein per 100 mg of carrier, while incubation is carried out for 2 hours with constant stirring on a mixer, after which the suspension is left for 16-18 hours at 4-6 ° C, then free aldehyde groups are blocked, washed three times with buffered saline (pH 7.2) and centrifuged at 3000 rpm for 10 min at room temperature, then suspended in a 3% gelatin-sucrose drying medium in a ratio of 1: 1 and poured into 1 ml insulin vials, after which lyophilization is carried out. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что пул белков выделяют из грубых клеточных оболочек путем добавления к ним 33% водного раствора N-лаурил-саркозина-Na до конечной концентрации его во взвеси 2% и инкубирования в течение 16 ч при комнатной температуре, затем раствор центрифугируют при 50000 об/мин на ультрацентрифуге в течение 1 ч, полученный осадок отмывают дистиллированной водой и проводят исследование белкового спектра методом SDS-дискэлектрофореза в ПААГ по методу Laemmly.2. The method according to claim 1, characterized in that the pool of proteins is isolated from coarse cell membranes by adding to them a 33% aqueous solution of N-lauryl-sarcosine-Na to a final concentration of 2% in suspension and incubation for 16 hours at room temperature, then the solution is centrifuged at 50,000 rpm in an ultracentrifuge for 1 h, the resulting precipitate is washed with distilled water and the protein spectrum is studied by SDS-disk electrophoresis in SDS page using the Laemmly method. 3. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве носителя сенситина используются сферические полимерные частицы диаметром 1,5 мкм, содержащие 1,3 мМ/г альдегидных групп.3. The method according to claim 1, characterized in that spherical polymer particles with a diameter of 1.5 μm containing 1.3 mmol / g of aldehyde groups are used as a sensitin carrier. 4. Способ по п.2, отличающийся тем, что грубые клеточные оболочки получают из предварительно выделенной бактериальной массы густотой 80-100 млрд кл./мл, которую центрифугируют при 6000 об/мин в течение 10 мин а затем ресуспендируют в 10 мМ Hepes-буфере, содержащем 20% (в/о) сахарозы (рН 7,2), после проводят пять циклов ультразвуковой дезинтеграции продолжительностью по 45 с с минутным интервалом, при длине волны 585 мкм, после лизированные клетки обрабатывают ДНК-азой и РНК-азой из расчета 10 мкг фермента на 1 мл микробной взвеси в течение 10 мин, удаляют неразрушенные клетки центрифугированием при 50000 об/мин на ультрацентрифуге в течение 30 мин и полученный супернатант разводят двумя объемами Hepes-буфера с последующим центрифугированием при 50000 об/мин на ультрацентифуге в течение 1 ч, получают осадок, который отмывают дистиллированной водой, а затем ресуспендируют для получения препарата белков наружной мембраны.4. The method according to claim 2, characterized in that the coarse cell membranes are obtained from pre-isolated bacterial mass with a density of 80-100 billion cells / ml, which is centrifuged at 6000 rpm for 10 minutes and then resuspended in 10 mm Hepes- a buffer containing 20% (w / v) sucrose (pH 7.2), after which five cycles of ultrasonic disintegration are carried out for a duration of 45 s with a minute interval, at a wavelength of 585 μm, after lysed cells are treated with DNAase and RNAse from calculating 10 μg of the enzyme per 1 ml of microbial suspension for 10 min, remove indestructible The cells were centrifuged at 50,000 rpm in an ultracentrifuge for 30 minutes and the resulting supernatant was diluted with two volumes of Hepes buffer, followed by centrifugation at 50,000 rpm in an ultracentrifuge for 1 h, a precipitate was obtained, which was washed with distilled water, and then resuspended obtaining the preparation of proteins of the outer membrane. 5. Способ по п.3, отличающийся тем, что блокирование свободных альдегидных групп проводят путем добавления к суспензии носителя с сенситином 2 мл 0,5% раствора желатозы в забуференном физиологическом растворе (рН 7,2) и оставляют при постоянном перемешивании на мешалке в течение 2 ч при комнатной температуре. 5. The method according to claim 3, characterized in that the blocking of free aldehyde groups is carried out by adding to the suspension of the carrier with sensitin 2 ml of a 0.5% gelatose solution in buffered saline (pH 7.2) and left with constant stirring on a stirrer in for 2 hours at room temperature.
RU2010133423/15A 2010-08-09 2010-08-09 Method of obtaining pseudotuberculosis antigen polymer diagnosticum RU2430376C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010133423/15A RU2430376C1 (en) 2010-08-09 2010-08-09 Method of obtaining pseudotuberculosis antigen polymer diagnosticum

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010133423/15A RU2430376C1 (en) 2010-08-09 2010-08-09 Method of obtaining pseudotuberculosis antigen polymer diagnosticum

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2430376C1 true RU2430376C1 (en) 2011-09-27

Family

ID=44804241

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2010133423/15A RU2430376C1 (en) 2010-08-09 2010-08-09 Method of obtaining pseudotuberculosis antigen polymer diagnosticum

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2430376C1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US9671411B2 (en) Monocyte activation test better able to detect non-endotoxin pyrogenic contaminants in medical products
SG184103A1 (en) In vitro process for the quick determination of a patient's status relating to infection with mycobacterium tuberculosis
Shainhouse et al. Complement fixation antibody test for human nocardiosis
CN109991417A (en) A kind of immunological marker object lungy and application
CN103760345A (en) Kit for detecting mycobacterium tuberculosis infection by using peripheral blood and application of kit
RU2430376C1 (en) Method of obtaining pseudotuberculosis antigen polymer diagnosticum
RU2703282C1 (en) Method for producing a diagnosticum for detecting a toxin of a cholera vibrio recovered from environmental objects
CN106939035A (en) A kind of mycobacterium tuberculosis T cell antigen epitope polypeptide and its application
RU2341288C1 (en) MEDICINE FORMING CELLULAR IMMUNITY FOR MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS H37 Rv, METHOD OF PRODUCTION THEREOF (VERSIONS), RECOMBINANT STRAIN AND TUBERCULOSIS DIAGNOSTIC AGENT
CN106248936B (en) The application of antigen of mycobacterium tuberculosis albumen Rv2201 and its t cell epitope peptide
CN106248935B (en) Antigen of mycobacterium tuberculosis albumen Rv1798 and its t cell epitope peptide application
RU2542475C2 (en) Method for preparing diagnosticum for detecting hepatitis c antigen in reaction of volumetric agglomeration (rva)
RU2324188C2 (en) Method of preparation of antigenic polymeric helicobacter diagnosticum
RU2728340C1 (en) Method for producing a set of fluorescent rickettsial and query fever diagnosticums and use thereof for serological diagnosis of rickettsiosis and query fever, a serological diagnostic technique
RU2663133C1 (en) Method of differentiating strains of yersinia pestis into toxically active and inactive ones
RU2177617C1 (en) Method of preparing leptospirosis diagnosticum for reaction latex-agglutination carrying out
RU2261444C1 (en) Method for detection of atoxigenic hemolytic strains of choleraic vibrios
RU2295564C2 (en) BACTERIUM STRAIN Borrelia garinii BgVir-1 FOR PREPARATION OF DRUGS FOR DIAGNOSIS AND PROPHYLAXIS OF IXODIC MITE-BORN BORRELIOSIS AND FOR EVALUATION OF PROTECTIVE AND SPECIFIC ACTIVITY OF PROPHYLAXIS AND THERAPEUTIC AGENTS
CN106397553B (en) The application of antigen of mycobacterium tuberculosis albumen Rv0585c and its t cell epitope peptide
RU2621303C1 (en) Method for selection of substances for directed immune response modulation after vaccination against plague
RU2584595C1 (en) Method of producing liquid stable whey
Fedorchenko et al. Medical microbiology: guide for preparing for the licensed integrated exam “Krok 1
RU2505819C1 (en) METHOD FOR POLYMER IMMUNOGLOBULIN DIAGNOSTICUM ENGINEERING FOR DETECTING SEROGROUP 1, 3 AND 6 Legionella pneumophila (VERSIONS)
RU2282192C1 (en) Method of preparing diagnosticum to reveal diphtheria toxin
US20180120330A1 (en) Pre-symptomatic diagnosis of a viral illness

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20170810