RU2703282C1 - Method for producing a diagnosticum for detecting a toxin of a cholera vibrio recovered from environmental objects - Google Patents

Method for producing a diagnosticum for detecting a toxin of a cholera vibrio recovered from environmental objects Download PDF

Info

Publication number
RU2703282C1
RU2703282C1 RU2019100730A RU2019100730A RU2703282C1 RU 2703282 C1 RU2703282 C1 RU 2703282C1 RU 2019100730 A RU2019100730 A RU 2019100730A RU 2019100730 A RU2019100730 A RU 2019100730A RU 2703282 C1 RU2703282 C1 RU 2703282C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
diagnosticum
cholera
toxin
wells
added
Prior art date
Application number
RU2019100730A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Руслан Вячеславович Писанов
Анатолий Николаевич Наркевич
Людмила Владимировна Ларионова
Диана Игоревна Симакова
Original Assignee
Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority to RU2019100730A priority Critical patent/RU2703282C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2703282C1 publication Critical patent/RU2703282C1/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention refers to medicine, namely to microbiology, and can be used to produce a diagnosticum for quantitative determination of toxin of cholera vibrio recovered from environmental objects. That is ensured by producing experimental antitoxic immune rabbit serum by immunizing rabbits weighing 2.5–3.0 kg by administering a pure cholera toxin preparation in dose of 100 mcg of protein subcutaneously into the inguinal lymph node and intravenously into a marginal ear vein in amount of 3 injections with interval of 14 days, then 14 days after the last injection, rabbits are bleeding, and blood is prepared with serums to determine antibody titre. Further, immunoglobulins are recovered from rabbit serums, for this purpose physiological saline is prepared in advance, buffered with disubstituted sodium phosphate and monosubstituted potassium phosphate at pH 7.2 (PBS), then preparing an aqueous solution of methanol, mixing 6 ml of methanol with 8 ml of distilled water, the mixture is cooled, after which the obtained serum in amount of 4 ml is combined with 2 ml of buffered saline (PBS), placed in centrifuge cups, put on ice and poured into them whey at temperature 0 °C, then buffered physiological solution is added, mixed, methanol water is poured in with 14 ml, while reducing the temperature to -5° C, after which sleeve with mixture is put in refrigerator for 30–40 minutes, and then centrifuged at 2,000 rpm for 20 minutes at zero temperature, obtained supernatant is drained, and the precipitate is suspended in ½ PBS from the initial volume of whey is determined by the method of Lowry, resulting in sensitin. Polymer support is prepared using an anionic polymerization method of a monomer – acrylic aldehyde – in an aqueous-alkaline medium to obtain monodisperse particles of a spherical shape with diameter of 1.0±0.1 mcm, which are stained with thianine and washed with distilled water. Polymeric carrier is then sensitized with immunoglobulins to the cholera toxin; for this purpose, the deposited carrier residue is suspended in a borate buffer (pH 8.4), immunoglobulins are added thereto and allowed to contact while stirring for 2 hours at 20 °C, as a result, aldehyde reaction groups on the surface of particles specifically interact with amino groups of protein molecules of immunoglobulins. After that, suspension is cooled to 4–5 °C and held at this temperature for 16–18 hours. Free aldehyde groups are blocked by adding 0.5 % solution of gelatase to the suspension in buffered saline (pH 7.0–7.1) and incubation for 2 hours at room temperature. Suspension of diagnosticum is centrifuged for 10 minutes at 6,000 rpm and washed three times with buffered physiological solution (pH 7.0–7.1) from excess gelatine, and final sediment is suspended in 0.1 % solution of gelatase in buffered physiologic saline (pH 7.0–7.1). Diagnosticum is lyophilized by suspending preparation in 20 ml of 3 % gelatose-sucrose medium, then the suspension is poured into ampoules of 1 ml, frozen in liquid nitrogen with subsequent vacuum drying, gradually raising temperature to 22–23 °C for a day.
EFFECT: use of the given method enables producing a diagnosticum for quantitative determination of cholera vibrio toxin, recovered from environmental objects, in order to detect epidemic dangerous toxigenic strains of cholera vibrio.
3 cl, 3 tbl, 2 ex

Description

Предполагаемое изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано в лабораторной клинической диагностике особо-опасных инфекций для количественного определения токсинопродукции холерного вибриона при его выделении из объектов окружающей среды в процессе мониторинга с последующей оценкой его эпидемического потенциала.The alleged invention relates to medical microbiology and can be used in laboratory clinical diagnostics of especially dangerous infections to quantify the toxin production of cholera vibrio when it is isolated from environmental objects during monitoring, followed by an assessment of its epidemic potential.

В настоящее время остается актуальной проблема исследований холерного токсина. Центр по контролю и профиактике заболеваний США дает перечень методов дя исследований холерного токсина. Это иммуноферментный анализ, иммунофлюоресцентный метод с использованием ганглиозид-GM1-содержащей ДАSS-системы, реакция коагглютинации с коагглютинирующими диагности-кумами, латекс агглютинация с анти-ХТ-сывороткой, полимеразная цепная реакция, ДНК-секвенирование.(1) Учеными из Тайваня разработан иммуносен-сор, основанный на комбинированном использовании GM1-липосом и антител к XT в проточной системе с регистрацией сигнала специфической фюоресцен-ции.Currently, the problem of studies of cholera toxin remains relevant. The U.S. Centers for Disease Control and Prevention provides a list of cholera toxin research methods. This is an enzyme immunoassay, an immunofluorescence method using a ganglioside-GM1-containing DASS system, a coagglutination reaction with coagglutinating diagnostics, latex agglutination with anti-XT serum, polymerase chain reaction, DNA sequencing. (1) Developed by Taiwan sor, based on the combined use of GM1 liposomes and antibodies to XT in the flow system with the registration of a specific fluorescence signal.

Известен биологический микрочип для выявления и многопараметрического анализа противохолерных антител, в том числе и к холерному токсину.(2).A biological microchip is known for detecting and multi-parameter analysis of cholera antibodies, including cholera toxin. (2).

Согласно принятой схеме лабораторной диагностики холеры для определения эпидемической значимости холерных вибрионов используется ряд методических подходов: определение гемолитической активности в пробе Грейга, чувствительности к холерным диагностическим бактериофагам ctx- и ctx+, выявление холерогенного эффекта на биологической модели (крольчата-сосунки), обнаружение ctxAB и tcpA генов методом полимеразной цепной реакции [3,].According to the adopted scheme for laboratory diagnosis of cholera, a number of methodological approaches are used to determine the epidemic significance of cholera vibrios: determining hemolytic activity in the Greig test, sensitivity to ctx- and ctx + cholera diagnostic bacteriophages, detecting a cholerogenic effect on a biological model (sucker rabbits), detection of ctxAB and tcpA genes by polymerase chain reaction [3,].

Однако постановка биологической пробы трудоемка и продолжительна по времени, применение бактериофагов затруднительно вследствие увеличения в последние годы количества штаммов вибрионов резистентных к ним. Определение генов, кодирующих синтез энтеротоксина, не всегда указывает на наличие экспрессии самого токсина. Поэтому разработка и совершенствование методов выявления холерного токсина in vitro до сих пор остается актуальной.However, staging a biological sample is time-consuming and time-consuming, the use of bacteriophages is difficult due to the increase in recent years the number of vibrio strains resistant to them. The determination of genes encoding enterotoxin synthesis does not always indicate the presence of expression of the toxin itself. Therefore, the development and improvement of methods for the detection of cholera toxin in vitro is still relevant.

В микробиологической практике чаще всего используют для оценки токси-генности холерных вибрионов иммуноферментный анализ, полимеразную цепную реакцию или биологическую пробу на модели кроликов. Использование биопробных животных дает неоднозначные результаты, так как некоторые не-токсигенные штаммы могут давать картину токсической реакции.In microbiological practice, enzyme-linked immunosorbent assay, polymerase chain reaction or biological test on a model of rabbits is most often used to assess the toxicity of cholera vibrios. The use of bioassay animals gives mixed results, since some non-toxigenic strains can give a picture of a toxic reaction.

Полимеразная цепная реакция является дорогостоящим исследованием, требует специального оборудования, зачастую импортного и специалистов с подготовкой по молекулярной биологии.Polymerase chain reaction is an expensive study, it requires special equipment, often imported, and specialists with training in molecular biology.

Иммуноферментный анализ для определения холерного токсина, включает в себя несколько стадий проведения исследования, требует специальных реагентов, оборудования и подготовленного персонала. Кроме того этот метод также требует существенных затрат, что ограничивает его использование при массовых эпидемических обследованиях.Enzyme-linked immunosorbent assay for the determination of cholera toxin, includes several stages of the study, requires special reagents, equipment and trained personnel. In addition, this method also requires significant costs, which limits its use in mass epidemiological surveys.

Лабораториями ВОЗ и CDC предложена методика определения холерного токсина в иммуноферментном анализе, где в качестве связывающего лиганда выступают GM1-ганглиозиды [4].The WHO and CDC laboratories have proposed a method for determining cholera toxin in an enzyme-linked immunosorbent assay, where GM1 gangliosides act as a binding ligand [4].

Суть метода заключается в использовании «сэндвич»-варианта иммуно-ферментного анализа, где специфическими компонентами системы являются сывороточные или моноклональные антитела к холерному токсину, моносиало-гангиозид, а также вторые моноклональные антивидовые антитела, меченные пероксидазой хрена для выявления компекса антиген-антитело.The essence of the method is to use a “sandwich” variant of enzyme-linked immunosorbent assay, where specific components of the system are serum or monoclonal antibodies to cholera toxin, monosialo-gangsiid, as well as second monoclonal antispecies antibodies labeled with horseradish peroxidase to identify the antigen-antibody complex.

Другой вариант иммуноферментного анализа для выявления холерного токсина предложен Михеевой Е.А.(5)Another variant of an enzyme immunoassay for the detection of cholera toxin was proposed by Mikheeva EA (5)

Недостатками этих способов является их многостадийность, на результатах исследования сказывается качество адсорбирования МКА или моносиалоган-гиозидов в лунках планшета, качество многоразовых отмывок, а также потребность в приборном обеспечении которое зачастую является импортным, в подготовленном персонале и финансовом обеспечении. В комплект тест-системы иммуноферментной входит 12 компонентов.The disadvantages of these methods are their multi-stage nature, the results of the study are affected by the quality of adsorption of MCA or monosialogan-hyosides in the wells of the tablet, the quality of reusable washes, and also the need for instrumentation, which is often imported, in trained personnel and financial support. The enzyme immunoassay system includes 12 components.

В то же время существуют диагностические препараты для определения биологических агентов (антигенов или антител) на основе полимерных окрашенных носителей в простой одностадийной и весьма экономичной реакции агломерации объемной. Иммуносуспензионная реакция агломерации объемная (РАО), проводимая при использовании латексных диагностикумов по сути, является аналогом РНГА, доступным и простым в техническом отношении методом, т.к. не требует наличия специального оборудования, высокой квалификации персонала и может быть использована при проведении исследований в полевых условиях.At the same time, there are diagnostic preparations for the determination of biological agents (antigens or antibodies) based on polymer colored carriers in a simple one-step and very economical bulk agglomeration reaction. The volumetric immunosuspension agglomeration reaction (RAW), carried out using latex diagnosticums, in fact, is an analogue of RNGA, an accessible and technically simple method, because It does not require special equipment, highly qualified personnel and can be used when conducting research in the field.

Наиболее близким по технической сущности является способ выявления атоксигенных гемолитических штаммов холерного вибриона (6), заключающийся в том, что проводят поэтапную иммунизацию кроликов липазой Pseudomonas spp.и получают антилипазные антитела, которые затем иммобилизуют на полмерных микросферах, а затем в реакции агломерации объемной исследуемые гемолитичные штаммы холерных вибрионов обнруживают свойство продуцировать липазу при взаимодействии с антилипазными антителами иммобилизованными на полимерном носителе и дают при этом положительную реакцию, подтверждая атоксигенность исследуемых штаммов.The closest in technical essence is the method for detecting atoxigenic hemolytic strains of cholera vibrio (6), which consists in the stage-by-stage immunization of rabbits with lipase Pseudomonas spp. strains of cholera vibrios exhibit the ability to produce lipase when interacting with antilipase antibodies immobilized on a polymer carrier and at the same time give a positive reaction, confirming the atoxigenicity of the studied strains.

Однако известный способ не позволяет выявлять токсигенные штаммы холерного вибриона, выделенные из объектов окружающей среды, определять концентрацию продуцируемого ими холерного токсина для оценки эпидемической опасности, так как используемые антитела и антигены напрямую не связаны со способностью холерного вибриона продуцировать токсин.However, the known method does not allow to detect toxigenic strains of cholera vibrio isolated from environmental objects, to determine the concentration of cholera toxin produced by them to assess the epidemic danger, since the antibodies and antigens used are not directly related to the ability of cholera vibrio to produce toxin.

Технической задачей предлагаемого изобретения является создание пре-парата-диагностикума, способного выявлять и определять количество токсина холерного вибриона в процессе его выделения из объектов окружающей среды и оценивать его эпидемическую опасность.The technical task of the invention is the creation of a diagnostic product capable of detecting and determining the amount of cholera vibrio toxin in the process of its isolation from environmental objects and assessing its epidemic hazard.

Поставленная задача достигается тем, что способ получения диагностикума для количественного определения холерного токсина из объектов окружающей среды включает следующие стадии:The problem is achieved in that the method for producing a diagnosticum for the quantitative determination of cholera toxin from environmental objects includes the following stages:

а) получают экспериментальные антитоксические иммунные кроличьи сыворотки путем иммунизации кроликов весом 2,5 - 3,0 кг с помощью введения препарата чистого холерного токсина в дозе 100 мкг белка подкожно в паховый лимфатический узел и внутривенно в краевую ушную вену в количестве Зх инъекций с интервалом в 14 дней, затем через 14 дней после последней инъекции осуществляют обескровливание кроликов, а из крови готовят сыворотки с последующим определением титра антител;a) experimental antitoxic immune rabbit serums are obtained by immunization of rabbits weighing 2.5-3.0 kg with the introduction of a preparation of pure cholera toxin in a dose of 100 μg of protein subcutaneously in the inguinal lymph node and intravenously into the marginal ear vein in the amount of 3x injections with an interval of 14 days, then 14 days after the last injection, rabbits are bled, and serum is prepared from the blood, followed by determination of antibody titer;

б) выделяют иммуноглобулины из кроличьих сывороток, для этого предварительно готовят физиологический раствор, забуференный двузамещенным фосфатом натрия и однозамещенным фосфатом калия при рН 7,2 (ЗФР), затем готовят водный раствор метанола, смешивая 6 мл метанола с 8 мл дистиллированной воды, смесь охлаждают, после чего полученную сыворотку в количестве 4 мл соединяют с 2 мл забуференного физиологического раствора (ЗФР)перемешивают, помещают в центрифужные стаканы ставят на лед добавляют метанольную воду 14 мл понижая при этом температуру до -5°С, после чего стакан со смесью ставят в холодильник на 30-40 минут, а затем центрифугируют при 2000 об./мин в течение 20 минут при нулевой температуре, полученную надосадочную жидкость сливают, а осадок суспендируют в

Figure 00000001
ЗФР от исходного объема сыворотки, определяют количество белка по методу Лоури, получая в результате сенситин;b) isolate immunoglobulins from rabbit serums, for this, physiological saline, buffered with disubstituted sodium phosphate and monosubstituted potassium phosphate at pH 7.2 (PBS), is preliminarily prepared, then an aqueous methanol solution is prepared by mixing 6 ml of methanol with 8 ml of distilled water, the mixture is cooled after which the resulting serum in an amount of 4 ml is combined with 2 ml of buffered saline (PBS) is mixed, placed in a centrifuge cups are put on ice add methanol water 14 ml while lowering the temperature about -5 ° C, after which the glass with a mixture put in a refrigerator for 30-40 minutes and then centrifuged at 2000 rev. / min for 20 minutes at zero temperature, the resulting supernatant was discarded and the pellet resuspended in
Figure 00000001
PBS from the initial serum volume, the amount of protein is determined by the Lowry method, resulting in sensitin;

в) готовят полимерный носитель, используя метод анионной полимеризации мономера-акрилового альдегида в водно-щелочной среде с получением монодисперсных частиц сферической формы диаметром 1,0 ±0,1 микрон, которые окрашивают тианином и отмывают дистиллированной водой;c) a polymer carrier is prepared using the method of anionic polymerization of an acrylic aldehyde monomer in an aqueous alkaline medium to obtain spherical monodisperse particles with a diameter of 1.0 ± 0.1 microns, which are stained with tianine and washed with distilled water;

г) сенсибилизируют полимерный носитель иммуноглобулинами к холерному токсину, для этого осадок отмытого носителя суспендируют в боратном буфере (рН8,4), добавляют к нему иммуноглобулины и оставляют для контакта при перемешивании в течение 2 часов при 20°С, в результате альдегидные реакционные группы на поверхности частиц специфически взаимодействуют с аминогруппами белковых молекул иммуноглобулинов. После этого суспензию охлаждают до 4-5°С.и выдерживают при этой температуре 16-18 часов.d) the polymer carrier is sensitized with cholera toxin by immunoglobulins, for this, the precipitate of the washed carrier is suspended in borate buffer (pH 8.4), immunoglobulins are added to it and left to contact with stirring for 2 hours at 20 ° С, as a result, the aldehyde reaction groups on particle surfaces specifically interact with the amino groups of protein molecules of immunoglobulins. After this, the suspension is cooled to 4-5 ° C. and maintained at this temperature for 16-18 hours.

д) блокируют свободные альдегидные группы путем введения в суспензию 0,5%-ного раствора желатозы на забуференном физиологическом растворе (рН 7,0-7,1) и инкубацией в течение 2-х часов при комнатной температуре при постоянном перемешивании на электромагнитрой мешалке;e) block free aldehyde groups by introducing into suspension a 0.5% gelatose solution in buffered saline solution (pH 7.0-7.1) and incubating for 2 hours at room temperature with constant stirring on an electromagnetic stirrer;

е) суспензию диагностикума центрифугируют в течение 10 минут при 6000 об/мин. и трижды отмывают забуференным физиологическим раствором (рН 7,0-7,1) от избытка желатозы, а конечный осадок суспендируют в 0,1%-ном растворе желатозы в забуференном физиологическом растворе (рН 7,0-7,1).e) the diagnosticum suspension is centrifuged for 10 minutes at 6000 rpm. and washed three times with buffered saline (pH 7.0-7.1) from excess gelatose, and the final precipitate was suspended in a 0.1% gelatine solution in buffered saline (pH 7.0-7.1).

ж) определяют чувствительность препарата используя препарат чистого холерного токсина, для этого в лунки планшета вносят по 50 мкл нормальной кроличьей сыворотки, затем в первую лунку первого ряда вносят 50 мкл раствора холерного токсина с содержанием белка 100 мкг/мл и двукратно титруют до 12 лунки включительно, причем из последней 12 лунки удаляют 50 мкл жидкости, 13 и 14 лунки, в которые вносят только 50 мкл нормальной кроличьей сыворотки для контроля на спонтанную агглютинацию диагностикума, потом во все лунки рядов вносят по 25 мкл взвеси диагностикума, через 2,5 часа инкубации при комнатной температуре проводят учет результатов реакции проводят визуально, при этом последняя лунка, а именно 10-я, дающая положительный результат - голубой агломерат выстилающий все дно лунки, разведение которой содержит 100 нг белка /мл, что соответствует чувствительности диагностического препарата, а специфичность препарата определяют в реакции агломерации объемной (РАО);g) determine the sensitivity of the drug using a pure cholera toxin preparation, for this, 50 μl of normal rabbit serum are added to the wells of the tablet, then 50 μl of a cholera toxin solution with a protein content of 100 μg / ml is added to the first well and titrated twice to 12 wells inclusive moreover, from the last 12 wells, 50 μl of liquid are removed, 13 and 14 wells, into which only 50 μl of normal rabbit serum are added to control for spontaneous agglutination of the diagnosticum, then 25 μl of the suspension are added to all wells of the rows stickum, after 2.5 hours of incubation at room temperature, the results of the reaction are recorded visually, with the last well, namely the 10th, giving a positive result - a blue agglomerate lining the entire bottom of the hole, the dilution of which contains 100 ng protein / ml, which corresponds to the sensitivity of the diagnostic drug, and the specificity of the drug is determined in the reaction of volumetric agglomeration (RAO);

з) лиофилизацию диагностикума осуществляют путем суспендирования препарата в 20 мл 3% желатозо-сахарозной среды, затем суспензию разливают в ампулы по 1 мл, замораживают в жидком азоте, с последующим вакуумным высушиванием, постепенно поднимая температуру до 22-23 С в течение суток.h) lyophilization of the diagnosticum is carried out by suspending the drug in 20 ml of a 3% gelatin-sucrose medium, then the suspension is poured into 1 ml ampoules, frozen in liquid nitrogen, followed by vacuum drying, gradually raising the temperature to 22-23 ° C during the day.

При этом реакцию агломерации объемную осуществляют в планшетах путем внесения в лунки 50 мкл 1% нормальной кроличьей сыворотки, затем в первую лунку каждого ряда вносят 50 мкл исследуемого и двукратно титруют до конца ряда, из последней лунки 50 мкл удаляют, в две любые лунки вносят только нормальную кроличью сыворотку для контроля спонтанной агглютинации диагностикума, затем во все лунки вносят по 25 мкл диагностикума и оставляют при комнатной температуре, учет результатов РАО осуществляют через 2-2,5 часа, при положительном результате фиксируется равномерный цветной агломерат выстилающий все дно лунки, с четко очерченными краями, а в отрицательном случае и в отрицательном контроле образуется компактное колечко или точка в центре лунки.In this case, the volumetric agglomeration reaction is carried out in tablets by adding 50 μl of 1% normal rabbit serum to the wells, then 50 μl of the test substance is added to the first well of each row and titrated twice to the end of the row, 50 μl is removed from the last well, only any two wells are added normal rabbit serum to control spontaneous agglutination of the diagnosticum, then 25 μl of the diagnosticum are added to all wells and left at room temperature, RAO results are taken into account after 2-2.5 hours, with a positive result etsya uniform color sinter lining the entire bottom of the wells, with well-rounded edges, and in the negative case, and in the negative control, a compact ring or a point in the center of the hole.

Кроме того определяют концентрацию холерного токсина в жидкой питательной среде для культивирования холерного вибриона, в которую продуцируется токсин, для этого реакцию ставят по методике РАО, но в лунках планшета с разводящей жидкостью НКС двукратно титруют жидкую питательную среду после культивирования в ней возбудитея холеры, затем вносят по 25 мкл иммуноглобулинового диагностикума, при этом последняя лунка с положительной реакцией фиксирует величину последнего разведения культуральной жидкости, поэтому концентрацию холерного токсина рассчитывают по формуле:In addition, the concentration of cholera toxin in a liquid nutrient medium is determined for the cultivation of cholera vibrio, into which the toxin is produced, for this the reaction is performed according to the RAO method, but in the wells of a tablet with a diluting liquid, the NCC titrates the liquid nutrient medium twice after culturing the cholera excitance in it, then add 25 μl of immunoglobulin diagnosticum, the last well with a positive reaction fixes the value of the last dilution of the culture fluid, therefore, the concentration of cholera t Xin calculated by the formula:

С=Р×ЧC = P × H

где С - искомая концентрация холерного токсина;where C is the desired concentration of cholera toxin;

Р - последнее разведение исследуемой жидкости, в котором фиксировался положительный результат;P is the last dilution of the test fluid in which a positive result was recorded;

Ч - чувствительность диагностикума в нг/мл.H is the sensitivity of the diagnosticum in ng / ml.

Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.

На первом этапе готовят диагностический препарат по следующей технологии:At the first stage, a diagnostic preparation is prepared according to the following technology:

а) Получают экспериментальные гипериммунные кроличьи сыворотки, используя чистый препарат холерного токсина, полученный авторами из токсигенного штамма V.cholerae 569В O1 серогруппы из коллекции музея живых культур с центром патогенных для человека вибрионов Ростовского-на-Дону противочумного института.a) Experimental hyperimmune rabbit serums are obtained using a pure cholera toxin preparation obtained by the authors from the toxigenic strain V. cholerae 569B O1 of the serogroup from the collection of the Museum of Living Cultures with the center of human pathogens of the Rostov-on-Don Institute of Antiplague.

Для подбора иммунизирующих доз определяют концентрацию белка по Лоури. Затем для иммунизации отбирают самцов кроликов калифорнийской породы весом от 2,5 до 3,0 кг. Иммунизацию осуществляют путем введения препарата холерного токсина в дозе 100 мкг белка подкожно в паховый лимфатический узел и внутривенно в краевую ушную вену в количестве 3х инъекций с интервалом в 14 дней. Через 14 дней после последней инъекции осуществляют обескровливание кроликов, а из крови готовят сыворотки с последующим определением титра антител. Полученную гипериммунную сыворотку фасуют и хранят в замороженном состоянии при -30°С.To select immunizing doses, determine the protein concentration according to Lowry. Then, male Californian rabbits weighing 2.5 to 3.0 kg were selected for immunization. Immunization is carried out by administering a cholera toxin preparation in a dose of 100 μg of protein subcutaneously into the inguinal lymph node and intravenously into the marginal ear vein in the amount of 3 injections with an interval of 14 days. 14 days after the last injection, rabbits are bled, and serum is prepared from the blood, followed by determination of antibody titer. The resulting hyperimmune serum is packaged and stored frozen at -30 ° C.

б) Выделяют иммуноглобулины из кроличьих гипериммунных сывороток с помощью метанольного метода.b) Isolate immunoglobulins from rabbit hyperimmune sera using the methanol method.

Для этого предварительно готовят 0,9% раствор NaCl добавляют двузаме-щенный фосфат натрия и однозамещенный фосфат калия при рН 7,2 (ЗФР), затем готовят водный раствор метанола, смешивая 6 мл метанола с 8 мл дистиллированной воды, смесь охлаждают. После этого на лед помещают центрифужные стаканы, в них наливают 4 мл полученной сыворотки, добавляют 2 мл ЗФР, перемешивают и вливают метанольную воду 14 мл понижая при этом температуру до - 5°С.Стакан со смесью ставят в холодильник на 30-40 минут, а затем центрифугируют при 2 ООО об./мин в течение 20 минут при нулевой температуре. Полученную надосадочную жидкость сливают, а осадок суспендируют в

Figure 00000002
ЗФР от исходного объема сыворотки, определяют количество белка по методу Лоури, получая в результате сенситин;To do this, a 0.9% NaCl solution is preliminarily prepared, disubstituted sodium phosphate and monosubstituted potassium phosphate are added at pH 7.2 (PBS), then an aqueous methanol solution is prepared by mixing 6 ml of methanol with 8 ml of distilled water, the mixture is cooled. After that, centrifuge glasses are placed on ice, 4 ml of the obtained serum are poured into them, 2 ml of PBS are added, stirred and 14 ml of methanol water are poured, lowering the temperature to -5 ° C. The glass with the mixture is placed in the refrigerator for 30-40 minutes, and then centrifuged at 2 000 rpm./min for 20 minutes at zero temperature. The resulting supernatant is drained, and the precipitate is suspended in
Figure 00000002
PBS from the initial serum volume, the amount of protein is determined by the Lowry method, resulting in sensitin;

в) Готовят полимерный носитель, используя метод анионной полимеризации мономера - акрилового альдегида - в водно-щелочной среде с получением монодисперсных частиц сферической формы диаметром 1,0 ±0,1 микрон, которые окрашивают тианином и отмывают дистиллированной водой;c) A polymer carrier is prepared using the method of anionic polymerization of a monomer — acrylic aldehyde — in an aqueous alkaline medium to obtain spherical monodisperse particles with a diameter of 1.0 ± 0.1 microns, which are stained with tianine and washed with distilled water;

г) Проводят иммобилизацию сенситина на носитель.g) Immobilization of sensitin on the carrier.

Для иммобилизации сенситина осадок полиакролеинового окрашенного носителя суспендируют в боратном буфере (рН8,4), добавляют к нему холерные иммуноглобулины и оставляют для контакта при перемешивании в течение 2 часов при 20°С. В результате альдегидные реакционные группы на поверхности частиц специфически взаимодействуют с аминогруппами белковых молекул иммуноглобулинов. После этого суспензию охлаждают до 4-5°С. и выдерживают при этой температуре 16-18 часов.To immobilize sensitin, the precipitate of the polyacrolein colored carrier is suspended in borate buffer (pH 8.4), cholera immunoglobulins are added to it and left to contact with stirring for 2 hours at 20 ° C. As a result, aldehyde reaction groups on the surface of the particles specifically interact with the amino groups of protein molecules of immunoglobulins. After this, the suspension is cooled to 4-5 ° C. and incubated at this temperature for 16-18 hours.

д) Блокируют свободные альдегидные группы путем введения в суспензию 0,5%-ного раствора желатозы на забуференном физиологическом растворе (рН 7,0-7,1) и инкубацией в течение 2-х часов при комнатной температуре при постоянном перемешивании. В результате стабилизации желатоза позволяет блокировать не связавшиеся в процессе сенсибилизации с иммуноглобулинами реакционные группы на поверхности частиц.e) Block free aldehyde groups by introducing into suspension a 0.5% gelatose solution in buffered saline (pH 7.0-7.1) and incubating for 2 hours at room temperature with constant stirring. As a result of stabilization of gelatosis, it allows blocking reaction groups on the surface of particles that are not bound in the sensitization process with immunoglobulins.

е) Суспензию диагностикума центрифугируют в течение 10 минут при 6000 об/мин. и трижды отмывают забуференным физиологическим раствором (рН 7,0-7,1) от избытка желатозы, а конечный осадок суспендируют в 0,1%-ном растворе желатозы в забуференном физиологическом растворе (рН 7,0-7,1).f) The diagnosticum suspension is centrifuged for 10 minutes at 6000 rpm. and washed three times with buffered saline (pH 7.0-7.1) from excess gelatose, and the final precipitate was suspended in a 0.1% gelatine solution in buffered saline (pH 7.0-7.1).

ж) Определяют чувствительность препарата используя препарат чистого холерного токсина, для этого в лунки планшета вносят по 50 мкл нормальной кроличьей сыворотки, затем в первую лунку первого ряда вносят 50 мкл раствора холерного токсина с содержанием белка 100 мкг/мл и двукратно титруют до 12 лунки включительно, причем из последней 12 лунки удаляют 50 мкл жидкости, 13 и 14 лунки, в которые вносят только 50 мкл нормальной кроличьей сыворотки для контроля на спонтанную агглютинацию диагностикума. После этого во все лунки рядов вносят по 25 мкл взвеси диагностикума, через 2,5 часа инкубации при комнатной температуре и проводят учет результатов реакции визуально, при этом последняя лунка, а именно 10-я, дающая положительный результат - голубой агломерат, выстилающий все дно лунки, разведение которой соответствует 100 нг белка /мл, определяет чувствительность диагностического препарата, т.е. ту минимальную концентрацию холерного токсина, которую способен выявить диагностический препарат, что позволяет, используя количественное выражение чувствительности (Ч), определять концентрацию холерного токсина в исследуемых объектах после выделения токсигенного холерного вибриона.g) The sensitivity of the preparation is determined using a preparation of pure cholera toxin, for this, 50 μl of normal rabbit serum are added to the wells of the tablet, then 50 μl of a cholera toxin solution with a protein content of 100 μg / ml is added to the first well and titrated up to 12 wells twice moreover, from the last 12 wells, 50 μl of liquid, 13 and 14 wells are removed, into which only 50 μl of normal rabbit serum is added to control for spontaneous agglutination of the diagnosticum. After that, 25 μl of diagnosticum suspension is added to all wells of the rows, after 2.5 hours of incubation at room temperature, and the results of the reaction are recorded visually, while the last well, namely the 10th, giving a positive result, a blue agglomerate lining the bottom wells, the dilution of which corresponds to 100 ng protein / ml, determines the sensitivity of the diagnostic drug, i.e. the minimum concentration of cholera toxin that a diagnostic drug can detect, which allows, using a quantitative expression of sensitivity (H), to determine the concentration of cholera toxin in the studied objects after isolation of toxigenic cholera vibrio.

Специфичность препарата определяют подобным образом в реакции агломерации объемной (РАО) используя нетоксигенные штаммы холерного вибриона и гетерологичные штаммы возбудителей кишечных инфекций.The specificity of the drug is determined in a similar way in the bulk agglomeration (RAO) reaction using non-toxigenic strains of cholera vibrio and heterologous strains of intestinal pathogens.

з) Лиофилизацию диагностикума осуществляют путем суспендирования препарата в 20 мл 3% желатозо-сахарозной среды, затем суспензию разливают в ампулы по 1 мл, замораживают в жидком азоте, с последующим вакуумным высушиванием, постепенно поднимая температуру до 22-23°С в течение суток.h) Lyophilization of the diagnosticum is carried out by suspending the preparation in 20 ml of a 3% gelatin-sucrose medium, then the suspension is poured into 1 ml ampoules, frozen in liquid nitrogen, followed by vacuum drying, gradually raising the temperature to 22-23 ° C during the day.

Методика постановки реакции.Methodology for the formulation of the reaction.

Реакцию агломерации объемную осуществляют в планшетах путем внесения в лунки 50 мкл 1% нормальной кроличьей сыворотки, затем в первую лунку каждого ряда вносят 50 мкл исследуемого вещества и двукратно титруют до конца ряда, из последней лунки 50 мкл удаляют. В две любые лунки вносят только нормальную кроличью сыворотку для контроля спонтанной агглютинации диагностикума. Затем во все лунки вносят по 25 мкл диагностикума и оставляют при комнатной температуре, учет результатов РАО осуществляют через 2-2,5 часа, при положительном результате фиксируется равномерный цветной агломерат, выстилающий все дно лунки, с четко очерченными краями, а в отрицательном случае и в отрицательном контроле образуется компактное колечко или точка в центре лунки.The volumetric agglomeration reaction is carried out in tablets by adding 50 μl of 1% normal rabbit serum to the wells, then 50 μl of the test substance is added to the first well of each row and titrated twice to the end of the row, 50 μl is removed from the last well. Only normal rabbit serum is added to any two wells to control spontaneous agglutination of the diagnosticum. Then, 25 μl of the diagnosticum is added to all wells and left at room temperature, the RAO results are taken into account after 2-2.5 hours, with a positive result, a uniform colored agglomerate is fixed that lines the entire bottom of the hole with clearly defined edges, and in the negative case in the negative control, a compact ring or a dot in the center of the hole is formed.

1) Определение специфической чувствительности иммуноглобулино-вого антитоксического диагностикума в реакции агломерации объемной (РАО) по вышеприведенной технологии.1) Determination of the specific sensitivity of the immunoglobulin antitoxic diagnosticum in the reaction of bulk agglomeration (RAO) according to the above technology.

Для исследования готовят раствор холерного токсина с концентрацией белка 100 мкг/ мл, в лунки 96-луночного планшета для иммунологических реакций в ряд А вносят по 50 мкл 1%-ной нормальной кроличьей сыворотки. Затем в первую лунку ряда А вносят микропипеткой-дозатором 50 мкл раствора холерного токсина и титруют, т.е. делают двукратные последовательные разведения, по 12 лунку. В две другие лунки 1 и 2 ряда В вносят только по 50 мкл нормальной кроличьей сыворотки. Во все 14 лунок рядов А и В вносят по 25 мкл диагностикума в рабочем разведении (1 мл диагностикума+6 мл ЗФР). Две лунки ряда В содержат только НКС и диагностикум и служат отрицательным контролем на отсутствие спонтанной агломерации. Содержимое лунок перемешивают покачиванием и оставляют при комнатной температуре на 2,5 часа.For the study, a cholera toxin solution with a protein concentration of 100 μg / ml is prepared, and 50 μl of 1% normal rabbit serum are added to row A to wells of a 96-well immunological plate. Then, 50 μl of a cholera toxin solution is pipetted into the first well of row A with a micropipette-dispenser and titrated, i.e. make two serial dilutions of 12 holes. In the other two wells of rows 1 and 2 of row B, only 50 μl of normal rabbit serum was added. 25 μl of diagnosticum in working dilution (1 ml of diagnosticum + 6 ml of PBS) are added to all 14 wells of rows A and B. Two wells of row B contain only NKS and diagnosticum and serve as a negative control for the absence of spontaneous agglomeration. The contents of the wells are mixed by shaking and left at room temperature for 2.5 hours.

Учет результатов реакции осуществляют визуально по образованию голубого агломерата. За положительный результат принимают цветной голубой агломерат, равномерно выстилающий все дно лунки. В отрицательном случае и контроле диагностикума образуется компактное колечко или «точка» в центре лунки. Последняя лунка, в которой фиксируется положительный результат, соответствует уровню специфической чувствительности (Ч) исследуемого диагностикума концентрация белка в которой составляет 100нг/мл и является чувствительностью диагностикума, т.е. той минимальной концентрации холерного токсина, которую способен выявить диагностический препарат, что позволяет используя количественное выражение чувствительности определять концентрацию холерного токсина в исследуемых объектах после выделения токсигенного холерного вибриона.The reaction results are taken into account visually according to the formation of blue agglomerate. For a positive result, a colored blue agglomerate is taken, evenly lining the entire bottom of the hole. In the negative case and the control of the diagnosticum, a compact ring or “point” is formed in the center of the well. The last well, in which a positive result is recorded, corresponds to the level of specific sensitivity (H) of the investigated diagnosticum, the protein concentration in which is 100ng / ml and is the sensitivity of the diagnosticum, i.e. the minimum concentration of cholera toxin that a diagnostic drug can detect, which allows using a quantitative expression of sensitivity to determine the concentration of cholera toxin in the studied objects after isolation of toxigenic cholera vibrio.

2) Определяют концентрацию холерного токсина в жидкой питательной среде для культивирования холерного вибриона, в которую продуцируется токсин, для этого реакцию ставят по методике РАО, но в лунках планшета с разводящей жидкостью НКС двукратно титруют жидкую питательную среду после культивирования в ней возбудителя холеры, затем вносят по 25 мкл иммуноглобулинового диагностического препарата, при этом последняя лунка с положительной реакцией фиксирует величину последнего разведения культуральной жидкости, поэтому концентрацию холерного токсина рассчитывают по формуле:2) Determine the concentration of cholera toxin in a liquid nutrient medium for the cultivation of cholera vibrio, into which the toxin is produced, to do this, put the reaction according to the RAO method, but in the wells of a tablet with a diluting liquid, the NCC titrates the liquid nutrient medium twice after culturing the cholera pathogen in it, then add 25 μl of immunoglobulin diagnostic product, while the last well with a positive reaction fixes the value of the last dilution of the culture fluid, therefore, the concentration of cholerae oh toxin is calculated by the formula:

С=Р×Ч,C = P × H

где С - искомая концентрация холерного токсина;where C is the desired concentration of cholera toxin;

Р - последнее разведение исследуемой жидкости, в котором фиксировался положительный результат;P is the last dilution of the test fluid in which a positive result was recorded;

Ч - чувствительность диагностикума в нг/мл.H is the sensitivity of the diagnosticum in ng / ml.

Пример 1. Определяют количества токсина в исследуемом материале музейных бульонных культур токсигенных штаммов холерного вибриона, взятых из колекции музея живых культур с центром патогенных для человека вибрионов Ростовского-на-Дону противочумного института.Example 1. Determine the amount of toxin in the test material of museum broth cultures of toxigenic strains of cholera vibrio taken from the collection of the Museum of Living Cultures with the center of human pathogenic vibrios of the Rostov-on-Don Institute of Plague.

Ряд С - раститровывается в НКС V.cholerae 12214;Row C - is planted in the NCC V. cholerae 12214;

Ряд D - раститровывается в НКС V.cholerae 1310;Row D - planted in NCC V. cholerae 1310;

Результаты определения токсинопродукции с помощью диагностического полимерного антитоксического холерного иммуноглобулинового диагностикума в РАО.The results of the determination of toxin production using diagnostic polymer antitoxic cholera immunoglobulin diagnosticum in RAO.

Figure 00000003
Figure 00000003

Учет результатов реакции через 2,5 часа.Accounting for the results of the reaction after 2.5 hours.

V.cholerae 12214 - положительная реакция фиксируется в разведении 1:512 и количество токсина - по формуле:V.cholerae 12214 - a positive reaction is recorded at a dilution of 1: 512 and the amount of toxin is determined by the formula:

С=Р×Ч - 512×100 нг=51,2 мкг/млC = P × H - 512 × 100 ng = 51.2 μg / ml

V.cholerae 1310 - положительная реакция фиксируется в разведении 1:32 и количество токсина по формулеV.cholerae 1310 - a positive reaction is recorded at a 1:32 dilution and the amount of toxin according to the formula

С=Р×Ч составит 32×100нг=3,2 мкг/млC = P × H will be 32 × 100ng = 3.2 μg / ml

Вывод: так как штамм V.cholerae 12214 продуцирует 51,2 мкг/мл токсина, а штамм V.cholerae 1310 - 3,2 мкг/мл токсина, то штамм V.cholerae 12214 является более токсигенным и эпидемически значимым, чем штамм V.cholerae 1310.Conclusion: since strain V. cholerae 12214 produces 51.2 μg / ml of toxin, and strain V. cholerae 1310 - 3.2 μg / ml of toxin, strain V. cholerae 12214 is more toxic and epidemiologically significant than strain V. cholerae 1310.

Пример 2. Отличается от примера 1 тем, что исследуемым материалом являются бульонные культуры нетоксигенных штаммов холерного вибриона из колекции музея живых культур с центром патогенных для человека вибрионов Ростовского-на-Дону противочумного институтаExample 2. It differs from example 1 in that the studied material is broth cultures of non-toxigenic strains of cholera vibrio from the collection of the Museum of Living Cultures with the center of human pathogenic vibrios of the Rostov-on-Don Antiplague Institute

Ряд L- раститровывается в НКС V.cholerae 18963;A number of L- are parted in the NCC V. cholerae 18963;

Ряд F- раститровывается в НКС V.cholerae 15031;A number of F- are rastitrazhivaetsya in the NCC V. cholerae 15031;

Результаты определения токсинопродукции с помощью диагностического полимерного антитоксического холерного иммуноглобулинового диагностикума в РАО.The results of the determination of toxin production using diagnostic polymer antitoxic cholera immunoglobulin diagnosticum in RAO.

Figure 00000004
Figure 00000004

Figure 00000005
Figure 00000005

Учет результатов реакции через 2,5 часа.Accounting for the results of the reaction after 2.5 hours.

В этих рядах фиксировали отсутствие реакции, т.е. в центре лунки формировалась «пуговка», что говорит об отсутствии токсинопродукции этими холерными штаммами.The absence of reaction was recorded in these rows, i.e. A “button” was formed in the center of the hole, which indicates the absence of toxin production by these cholera strains.

Вывод: исследованные культуры V.cholerae 18963 и V.cholerae l5031 являются нетоксигенными, т.е. не продуцирующими холерный токсин и не представляющими эпидемической угрозы.Conclusion: the studied cultures of V.cholerae 18963 and V.cholerae l5031 are nontoxigenic, i.e. not producing cholera toxin and not representing an epidemic threat.

Пример 3.Example 3

Определяют токсинопродукцию и количество продуцируемого токсина культурами холерного вибриона с неизвестной токсигенностью выделенными из водной среды.Toxin production and the amount of toxin produced are determined by cholera vibrio cultures with unknown toxigenicity isolated from the aquatic environment.

Отличается от примера 2 тем, что исследуемым материалом являются культуры холерного вибриона выделенные из водных источников в процессе мониторинга после бактериологической идентификации.It differs from example 2 in that the studied material is a cholera vibrio culture isolated from water sources during monitoring after bacteriological identification.

Ряд G-раститровывется в НКС бульонная культура холерного вибриона №1 из водного источника;A number of G-grafted in the NQF broth culture of cholera vibrio No. 1 from a water source;

Ряд Н- раститровывется в НКС бульонная культура холерного вибриона №2 из водного источника;A number of Н- is broth culture of cholera vibrio No. 2 from a water source;

Результаты определения токсинопродукции холерных вибрионов с помощью диагностического полимерного антитоксического холерного иммуноглобулинового диагностикума в РАО.The results of determining the toxin production of cholera vibrios using a diagnostic polymer antitoxic cholera immunoglobulin diagnosticum in RAO.

Figure 00000006
Figure 00000006

Учет результатов реакции через 2,5 часа.Accounting for the results of the reaction after 2.5 hours.

В ряду G фиксируется отрицательная реакция, что говорит о том, что выделенная холерная культура не является токсигенной.A negative reaction is recorded in row G, which indicates that the selected cholera culture is not toxigenic.

. В ряду Н фиксируется положительная реакция в разведении 1:8, что говорит о невысоком уровне токсигенности данной культуры и количество токсина составит:. In the N series, a positive reaction at a dilution of 1: 8 is recorded, which indicates a low level of toxigenicity of this culture and the amount of toxin will be:

С=Р×Ч 8×100нг=0,800 мкг/мC = P × H 8 × 100ng = 0.800 μg / m

Вывод: таким образом культура холерного вибриона выделенная из водного источника №1 является нетоксигенной, безопасной в эпидемическом отношении.Conclusion: thus, the culture of cholera vibrio isolated from water source No. 1 is non-toxic, safe in the epidemic respect.

Холерный вибрион выделенный из водоисточника №2 обладает слабой токси-нопродукцией, однако за этим источником необходимо продолжить наблюдение.Vibrio cholerae isolated from water source No. 2 has a weak toxin production, however, this source must be continued to be monitored.

Таким образом приведенные примеры исследования токсинопродукции различных культур холерного вибриона, показывают эффективность использования предлагаемого метода.Thus, the above examples of the study of toxin production of various cultures of cholera vibrio show the effectiveness of the proposed method.

Использование предлагаемого способа позволяет определелять токсино-продукцию холерного вибриона в простой одностадийной реакции агломерации объемной путем разработанного авторами полимерного иммуноглобулинового диагностикума и дает возможность решать задачи не только в научных исследованиях, но и при эпидемиологическом мониторинге объектов окружающей среды, с целью выявления эпидемически опасных токсигенных штаммов холерного вибриона, значительно упрощая и сокращая сроки бактериологического анализа.Using the proposed method allows to determine the toxin production of cholera vibrio in a simple one-stage agglomeration volumetric reaction by the polymer immunoglobulin diagnosticum developed by the authors and makes it possible to solve problems not only in scientific research, but also in epidemiological monitoring of environmental objects in order to identify epidemiologically dangerous toxigenic strains of cholera vibrio, greatly simplifying and shortening the time of bacteriological analysis.

Источники информацииInformation sources

1. Detection of Cholera Toxin: Laboratory Methods for the Diagnosis of Vibrio cholerae Centers for Disease Control and Prevention Laboratory Methods for the Diagnosis of Vibrio cholerae Centers for Disease Control and Prevention. - Atlanta, JA, 1994. -P. 62-88.1. Detection of Cholera Toxin: Laboratory Methods for the Diagnosis of Vibrio cholerae Centers for Disease Control and Prevention. - Atlanta, JA, 1994. -P. 62-88.

2. Патент №2528099, кл. GO1N 33/53, 27.10.2013 г., «Биологический микрочип для выявления и многопараметрического анализа противохолерных антител»,2. Patent No. 2528099, cl. GO1N 33/53, 10.27.2013, “Biological microchip for detection and multi-parameter analysis of cholera antibodies”,

// Определение генных детерминант холерного энтеротоксина методом поли-меразной цепной реакции./ / СВ. Балахонов, B.C. Ганин, Л.Я. Урбанович, Журнал инфекционной патологии. - 1998. - N 4. - С. 52-54.// Determination of gene determinants of cholera enterotoxin by polymerase chain reaction. // SV. Balakhonov, B.C. Ganin, L.Ya. Urbanovich, Journal of Infectious Pathology. - 1998. - N 4. - S. 52-54.

4. //Практическое руководство по лаб. диагн. опасных инф. болезней. // Под ред. акад. РАМН Г.Г. Онищенко, акад. РАМН В.В. Кутырева. - Изд. 2-е. -М.:30 «Шико», 2013. -560 с. 4. // A practical guide to the lab. the diagnosis dangerous inf. diseases. // Ed. Acad. RAMS G.G. Onishchenko, Acad. RAMS V.V. Kutyreva. - Ed. 2nd. -M.: 30 “Shiko”, 2013. -560 p.

5. Михеева Е. А5. Mikheeva E. A

Конструирование диагностической иммуноферментной тест-системы для идентификации токсигенных штаммов холерного вибриона. Диссертация на соискание ученой степени кандидата медицинских наук, РосНИПЧИ « Микроб» Г. Саратов, 2017 г. Construction of a diagnostic enzyme immunoassay test system for the identification of toxigenic strains of cholera vibrio. The dissertation for the degree of candidate of medical sciences, RosNIPCHI "Microbe" G. Saratov, 2017

6. Патент №2261444, кл.G01N 35/50 от 22.03.2004 г., «Способ выявления атоксигенных гемолитичных штаммов холерных вибрионов»6. Patent No. 2261444, class G01N 35/50 of March 22, 2004, “A method for detecting atoxigenic hemolytic strains of cholera vibrios”

1.11 Холера: оценка эпидемиологической обстановки в мире и России в 2006-2015 гг.прогноз на 2016 г. / / СВ. Титова, Э.А. Москвитина, В.Д. Кругликов, А.В. Самородова.Г. Тюленева, Е.В. Монахова, Р.В. Писанов, А.С Водопьянов, нов, И.В. Архангельская, СМ. Иванова, Т.В. Ковалева, СО. Водопьянов, Пробл. особоопасн. инфекций. - 2016. - Вып. 1. - С. 20-27.1.11 Cholera: assessment of the epidemiological situation in the world and Russia in 2006-2015, forecast for 2016 / / CB. Titova, E.A. Moskvitina, V.D. Kruglikov A.V. Samorodova. G. Tyuleneva, E.V. Monakhova, R.V. Pisanov, A.S. Vodopyanov, new, I.V. Arkhangelsk, SM. Ivanova, T.V. Kovaleva, CO. Vodopyanov, Probl. especially dangerous. infections. - 2016. - Issue. 1. - S. 20-27.

8. // Конструирование псевдотуберкулезного видоспецифического полимерного диагностикума / Г.Л. Карбышев, Д.И. Симакова, Л.В. Ларионова и др. // По матер, науч.-практ. конф. «Современные аспекты эпиднадзора и профилактики особо опасных и природно-очаговых болезней», посвященной 75-летнему юбилею ФГУЗ НИПЧИ Сибири и Дальнего Востока. - Иркутск, 2009. - с. 122- 123, а также патент №),8. // Construction of a pseudotuberculosis species-specific polymer diagnosticum / G.L. Karbyshev, D.I. Simakova, L.V. Larionova et al. // By Mater, Scientific Pract. conf. “Modern Aspects of Surveillance and Prevention of Particularly Dangerous and Natural Focal Diseases”, dedicated to the 75th anniversary of the Federal State Health Institution of Research and Development of Biology and Natural Sciences of Siberia and the Far East. - Irkutsk, 2009. - p. 122-123, as well as patent No.),

9. Ларионова Л.В., Черникова А.А., Архангельская И.В., Симакова Д.И., Наркевич А.Н., Карбышев Г.Л., Терентьев А.Н. //Разработка препаратов для комплексной серологической диагностики холеры у людей // Обмен веществ при адаптации повреждений. Материалы X межвузовской конференции с международным участием. - Ростов-на-Дону. - 2011 - С 101 - 103.),9. Larionova L.V., Chernikova A.A., Arkhangelskaya I.V., Simakova D.I., Narkevich A.N., Karbyshev G.L., Terentyev A.N. // Development of drugs for the comprehensive serological diagnosis of cholera in humans // Metabolism during damage adaptation. Materials of the X interuniversity conference with international participation. - Rostov-on-Don. - 2011 - C 101 - 103.),

10. Наркевич А.Н., Карбышев Г.Л., Терентьев А.Н., Ларионова Л.В., Кочеткова А.П., Шелохович А.И., Наталич А.Н., Симакова Д.И., Сокиркина О.Г. // Конструирование набора полимерных иммуноглобулиновых диагностикумов для серологической идентификации L. pneumophila // Акт. пробл. болезней, общих для человека и животных: Матер, Всеросс. науч-практ конф. с междунар. участием. (Ставрополь, 2012. - Стр. 138-139.).10. Narkevich A.N., Karbyshev G.L., Terentyev A.N., Larionova L.V., Kochetkova A.P., Shelokhovich A.I., Natalich A.N., Simakova D.I., Sokirkina O.G. // Design of a set of polymer immunoglobulin diagnosticums for serological identification of L. pneumophila // Act. prob. diseases common to humans and animals: Mater, All-Russian. scientific-practical conf. from the international participation. (Stavropol, 2012 .-- pp. 138-139.).

Claims (15)

1. Способ получения диагностикума для определения токсина холерного вибриона, выделенного из объектов окружающей среды, включающий следующие стадии:1. A method of obtaining a diagnosticum for determining the toxin of cholera vibrio isolated from environmental objects, comprising the following stages: а) получают экспериментальные антитоксические иммунные кроличьи сыворотки путем иммунизации кроликов весом 2,5-3,0 кг с помощью введения препарата чистого холерного токсина в дозе 100 мкг белка подкожно в паховый лимфатический узел и внутривенно в краевую ушную вену в количестве 3 инъекций с интервалом в 14 дней, затем через 14 дней после последней инъекции осуществляют обескровливание кроликов, а из крови готовят сыворотки с последующим определением титра антител;a) receive experimental antitoxic immune rabbit serums by immunizing rabbits weighing 2.5-3.0 kg by administering a pure cholera toxin preparation in a dose of 100 μg of protein subcutaneously into the inguinal lymph node and intravenously into the marginal ear vein in an amount of 3 injections with an interval of 14 days, then 14 days after the last injection, rabbits are bled, and serum is prepared from the blood, followed by determination of antibody titer; б) выделяют иммуноглобулины из кроличьих сывороток, для этого предварительно готовят физиологический раствор, забуференный двузамещенным фосфатом натрия и однозамещенным фосфатом калия при рН 7,2 (ЗФР), затем готовят водный раствор метанола, смешивая 6 мл метанола с 8 мл дистиллированной воды, смесь охлаждают, после чего полученную сыворотку в количестве 4 мл соединяют с 2 мл забуференного физиологического раствора (ЗФР), перемешивают, помещают в центрифужные стаканы, ставят на лед, добавляют метанольную воду 14 мл, понижая при этом температуру до -5°С, после чего стакан со смесью ставят в холодильник на 30-40 минут, а затем центрифугируют при 2000 об/мин в течение 20 минут при нулевой температуре, полученную надосадочную жидкость сливают, а осадок суспендируют в
Figure 00000007
ЗФР от исходного обьема сыворотки, определяют количество белка по методу Лоури, получая в результате сенситин;
b) isolate immunoglobulins from rabbit serums, for this, physiological saline, buffered with disubstituted sodium phosphate and monosubstituted potassium phosphate at pH 7.2 (PBS), is preliminarily prepared, then an aqueous methanol solution is prepared by mixing 6 ml of methanol with 8 ml of distilled water, the mixture is cooled after which the resulting serum in an amount of 4 ml is combined with 2 ml of buffered saline (PBS), mixed, placed in centrifuge glasses, put on ice, 14 ml of methanol water is added, while lowering the temperature y to -5 ° C, after which the glass with a mixture put in a refrigerator for 30-40 minutes and then centrifuged at 2000 rev / min for 20 minutes at zero temperature, the resulting supernatant was discarded and the pellet resuspended in
Figure 00000007
PBS from the initial volume of serum, the amount of protein is determined by the Lowry method, resulting in sensitin;
в) готовят полимерный носитель, используя метод анионной полимеризации мономера - акрилового альдегида - в водно-щелочной среде с получением монодисперсных частиц сферической формы диаметром 1,0 +0,1 микрон, которые окрашивают тианином и отмывают дистиллированной водой;c) a polymer carrier is prepared using the method of anionic polymerization of a monomer — acrylic aldehyde — in an aqueous alkaline medium to obtain monodisperse spherical particles with a diameter of 1.0 + 0.1 microns, which are stained with tianine and washed with distilled water; г) сенсибилизируют полимерный носитель иммуноглобулинами к холерному токсину, для этого осадок отмытого носителя суспендируют в боратном буфере (рН8,4), добавляют к нему иммуноглобулины и оставляют для контакта при перемешивании в течение 2 часов при 20°С, в результате альдегидные реакционные группы на поверхности частиц специфически взаимодействуют с аминогруппами белковых молекул иммуноглобулинов, после этого суспензию охлаждают до 4-5°С и выдерживают при этой температуре 16-18 часов;d) the polymer carrier is sensitized with cholera toxin by immunoglobulins, for this, the precipitate of the washed carrier is suspended in borate buffer (pH 8.4), immunoglobulins are added to it and left to contact with stirring for 2 hours at 20 ° С, as a result, the aldehyde reaction groups on particle surfaces interact specifically with the amino groups of protein molecules of immunoglobulins, after which the suspension is cooled to 4-5 ° C and kept at this temperature for 16-18 hours; д) блокируют свободные альдегидные группы путем введения в суспензию 0,5%-ного раствора желатозы на забуференном физиологическом растворе (рН 7,0-7,1) и инкубацией в течение 2 часов при комнатной температуре при постоянном перемешивании на электромагнитрой мешалке;e) block free aldehyde groups by introducing into suspension a 0.5% gelatose solution in buffered saline (pH 7.0-7.1) and incubating for 2 hours at room temperature with constant stirring on an electromagnetic stirrer; е) суспензию диагностикума центрифугируют в течение 10 минут при 6000 об/мин и трижды отмывают забуференным физиологическим раствором (рН 7,0-7,1) от избытка желатозы, а конечный осадок суспендируют в 0,1%-ном растворе желатозы в забуференном физиологическом растворе (рН 7,0-7,1);f) the diagnosticum suspension is centrifuged for 10 minutes at 6000 rpm and washed three times with buffered saline (pH 7.0-7.1) from excess gelatose, and the final precipitate is suspended in a 0.1% gelatine solution in physiologically buffered saline solution (pH 7.0-7.1); ж) определяют чувствительность препарата, используя препарат чистого холерного токсина, для этого в лунки планшета вносят по 50 мкл нормальной кроличьей сыворотки, затем в первую лунку первого ряда вносят 50 мкл раствора холерного токсина с содержанием белка 100 мкг/мл и двукратно титруют до 12 лунки включительно, причем из последней 12 лунки удаляют 50 мкл жидкости, 13 и 14 лунки, в которые вносят только 50 мкл нормальной кроличьей сыворотки для контроля на спонтанную агглютинацию диагностикума, потом во все лунки рядов вносят по 25 мкл взвеси диагностикума, через 2,5 часа инкубации при комнатной температуре проводят учет результатов реакции визуально, при этом последняя лунка, а именно 10-я, дающая положительный результат, - голубой агломерат, выстилающий все дно лунки, разведение которой содержит 100 нг белка/мл, что соответствует чувствительности диагностического препарата, а специфичность препарата определяют в реакции агломерации объемной (РАО);g) determine the sensitivity of the drug using a pure cholera toxin preparation, for this, 50 μl of normal rabbit serum are added to the wells of the tablet, then 50 μl of cholera toxin solution with a protein content of 100 μg / ml is added to the first well of the first row and titrated twice to 12 wells inclusive, moreover, from the last 12 wells, 50 μl of liquid are removed, 13 and 14 wells into which only 50 μl of normal rabbit serum are added to control for spontaneous agglutination of the diagnosticum, then 25 μl of the diagnosis suspension is added to all wells of the rows stickum, after 2.5 hours of incubation at room temperature, the results of the reaction are recorded visually, while the last well, namely the 10th, giving a positive result, is a blue agglomerate lining the entire bottom of the well, the dilution of which contains 100 ng protein / ml, which corresponds to the sensitivity of the diagnostic drug, and the specificity of the drug is determined in the bulk agglomeration reaction (RAW); з) лиофилизацию диагностикума осуществляют путем суспендирования препарата в 20 мл 3% желатозо-сахарозной среды, затем суспензию разливают в ампулы по 1 мл, замораживают в жидком азоте, с последующим вакуумным высушиванием, постепенно поднимая температуру до 22-23°С в течение суток.h) lyophilization of the diagnosticum is carried out by suspending the drug in 20 ml of a 3% gelatin-sucrose medium, then the suspension is poured into 1 ml ampoules, frozen in liquid nitrogen, followed by vacuum drying, gradually raising the temperature to 22-23 ° C during the day. 2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что реакцию агломерации объемную осуществляют в планшетах путем внесения в лунки 50 мкл 1% нормальной кроличьей сыворотки, затем в первую лунку каждого ряда вносят 50 мкл исследуемого вещества и двукратно титруют до конца ряда, из последней лунки 50 мкл удаляют, в две любые лунки вносят только нормальную кроличью сыворотку для контроля спонтанной агглютинации диагностикума, затем во все лунки вносят по 25 мкл диагностикума и оставляют при комнатной температуре, учет результатов РАО осуществляют через 2-2,5 часа, при положительном результате фиксируется равномерный цветной агломерат, выстилающий все дно лунки, с четко очерченными краями, а в отрицательном случае и в отрицательном контроле образуется компактное колечко или точка в центре лунки.2. The method according to p. 1, characterized in that the volumetric agglomeration reaction is carried out in tablets by adding 50 μl of 1% normal rabbit serum to the wells, then 50 μl of the test substance are added to the first well of each row and titrated twice to the end of the row, from the last 50 μl wells are removed, only normal rabbit serum is added to any two wells to control spontaneous agglutination of the diagnosticum, then 25 μl of the diagnosticum are added to all wells and left at room temperature, RAO results are taken into account after 2-2.5 hours, with a positive result, a uniform colored agglomerate is fixed, lining the entire bottom of the well, with clearly defined edges, and in the negative case and in the negative control, a compact ring or a dot in the center of the well is formed. 3. Способ по п. 2 отличающийся тем, что определяют концентрацию холерного токсина в жидкой питательной среде для культивирования холерного вибриона, в которую продуцируется токсин, для этого реакцию ставят по методике РАО, но в лунках планшета с разводящей жидкостью НКС двукратно титруют жидкую питательную среду после культивирования в ней возбудителя холеры, затем вносят по 25 мкл иммуноглобулинового диагностикума, при этом последняя лунка с положительной реакцией фиксирует величину последнего разведения культуральной жидкости, поэтому концентрацию холерного токсина рассчитывают по формуле:3. The method according to p. 2, characterized in that the concentration of cholera toxin in the liquid nutrient medium is determined for culturing the cholera vibrio into which the toxin is produced. For this, the reaction is performed according to the RAO method, but in the wells of the dilution liquid plate, the NKS is twice titrated with the liquid nutrient medium after culturing the cholera pathogen in it, then 25 μl of immunoglobulin diagnosticum is added, and the last well with a positive reaction fixes the value of the last dilution of the culture fluid, therefore cholera toxin concentration is calculated by the formula: С=Р×Ч,C = P × H где С - искомая концентрация холерного токсина;where C is the desired concentration of cholera toxin; Р - последнее разведение исследуемой жидкости, в котором фиксировался положительный результат;P is the last dilution of the test fluid in which a positive result was recorded; Ч - чувствительность диагностикума в нг/мл.H is the sensitivity of the diagnosticum in ng / ml.
RU2019100730A 2019-01-10 2019-01-10 Method for producing a diagnosticum for detecting a toxin of a cholera vibrio recovered from environmental objects RU2703282C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019100730A RU2703282C1 (en) 2019-01-10 2019-01-10 Method for producing a diagnosticum for detecting a toxin of a cholera vibrio recovered from environmental objects

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019100730A RU2703282C1 (en) 2019-01-10 2019-01-10 Method for producing a diagnosticum for detecting a toxin of a cholera vibrio recovered from environmental objects

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2703282C1 true RU2703282C1 (en) 2019-10-16

Family

ID=68280195

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019100730A RU2703282C1 (en) 2019-01-10 2019-01-10 Method for producing a diagnosticum for detecting a toxin of a cholera vibrio recovered from environmental objects

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2703282C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2737776C1 (en) * 2020-02-12 2020-12-02 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФКУЗ "РосНИПЧИ "Микроб" Роспотребнадзора) Test kit for detecting cholera toxin in cultivation medium

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1521770A1 (en) * 1987-09-03 1989-11-15 Ростовский-На-Дону Государственный Научно-Исследовательский Противочумный Институт Method of producing toxin-generating subcultures of cholera vibrions
RU1835848C (en) * 1990-12-19 1995-07-20 Институт иммунологии МЗ РФ Strain of hybrid cultured mammalian cells mus musculus l - a producer of monoclonal antibodies to choleraic enterotoxin
RU2324740C2 (en) * 2006-07-11 2008-05-20 Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (РосНИПЧИ "Микроб") MODE OF ISOLATING PROTEINS OF TOXIN-COREGULATED ADHESION PILI AND OmpU OF COMMA BACILLUS OF CLASSIC BIOVAR
RU2456996C1 (en) * 2011-06-07 2012-07-27 Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере зищиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") Method for preparing purified cholera toxin b subunit from recombinant strain vibrio cholerae
RU2665542C1 (en) * 2017-08-01 2018-08-30 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of identification of non-oxygenic stamps of chiller vibrions of o1 serogrupp by pcr for obtaining the genetic determinants

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1521770A1 (en) * 1987-09-03 1989-11-15 Ростовский-На-Дону Государственный Научно-Исследовательский Противочумный Институт Method of producing toxin-generating subcultures of cholera vibrions
RU1835848C (en) * 1990-12-19 1995-07-20 Институт иммунологии МЗ РФ Strain of hybrid cultured mammalian cells mus musculus l - a producer of monoclonal antibodies to choleraic enterotoxin
RU2324740C2 (en) * 2006-07-11 2008-05-20 Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (РосНИПЧИ "Микроб") MODE OF ISOLATING PROTEINS OF TOXIN-COREGULATED ADHESION PILI AND OmpU OF COMMA BACILLUS OF CLASSIC BIOVAR
RU2456996C1 (en) * 2011-06-07 2012-07-27 Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере зищиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") Method for preparing purified cholera toxin b subunit from recombinant strain vibrio cholerae
RU2665542C1 (en) * 2017-08-01 2018-08-30 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of identification of non-oxygenic stamps of chiller vibrions of o1 serogrupp by pcr for obtaining the genetic determinants

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2737776C1 (en) * 2020-02-12 2020-12-02 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФКУЗ "РосНИПЧИ "Микроб" Роспотребнадзора) Test kit for detecting cholera toxin in cultivation medium

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN104628833B (en) A kind of tuberculosis infection cellular immunization detectable antigens composition and application thereof
WO2023186189A2 (en) Hybridoma cell strain secreting acta monoclonal antibody, and use thereof
Flaherty et al. Multilaboratory comparison of three immunodiffusion methods used for the detection of precipitating antibodies in hypersensitivity pneumonitis
US6630316B1 (en) Method for measurement of lymphocyte function
CN103760345B (en) A kind of kit and application thereof utilizing peripheral blood detection m tuberculosis infection
Barbuddhe et al. Immunodetection of bacteria causing brucellosis
RU2703282C1 (en) Method for producing a diagnosticum for detecting a toxin of a cholera vibrio recovered from environmental objects
CN109112113B (en) Anti-human IgG monoclonal antibody, hybridoma cell strain, kit and application thereof
CN106939035A (en) A kind of mycobacterium tuberculosis T cell antigen epitope polypeptide and its application
JPS60259966A (en) Method of rapidly detecting microbe and fungi infection
CN106442983B (en) The application of antigen of mycobacterium tuberculosis albumen Rv3793 and its t cell epitope peptide
CN100519759C (en) A process for preparation of an agglutination reagent for rapid detection of typhoid
CN104628834A (en) Antigen used for immunodetection of tuberculosis infected T cell and application thereof
US7169571B2 (en) Methods for measurement of lymphocyte function
CN105759054A (en) ELISPOT detection kit for detecting bovine brucellosis
RU2611359C1 (en) Method and set for determination of cholera toxin production and differentiation of epidemiologically significant strains of cholera vibrios of classical and el tor biovars
RU2769578C1 (en) Method for producing a fluorescent immunoglobulin diagnostic agent for detecting pathogens of rickettsioses and coxielloses, fluorescent immunoglobulin diagnostic agent and application thereof
EA027858B1 (en) Agent for diagnostics of bovine leukaemia and method of its application
RU2728340C1 (en) Method for producing a set of fluorescent rickettsial and query fever diagnosticums and use thereof for serological diagnosis of rickettsiosis and query fever, a serological diagnostic technique
RU2430376C1 (en) Method of obtaining pseudotuberculosis antigen polymer diagnosticum
RU2324188C2 (en) Method of preparation of antigenic polymeric helicobacter diagnosticum
RU2113172C1 (en) Method to conduct immunological express diagnostics of toxic types of diphtheritic infections
US6689571B1 (en) Assay method and kit for pythium insidiosum antibodies
RU2737776C1 (en) Test kit for detecting cholera toxin in cultivation medium
RU2305842C1 (en) Recombinant antigen-based hemagglutination test for lues orodiagnosis