RU2777091C1

RU2777091C1 - Method for pre-implantation genetic testing of breast and ovarian cancer

Info

Publication number: RU2777091C1
Application number: RU2021108378A
Authority: RU
Inventors: Артур Александрович Исаев; Екатерина Алексеевна Померанцева; Светлана Олеговна Жикривецкая; Елизавета Валерьевна Мусатова; Яна Владиславовна Софронова; Арина Леонидовна Кушнир
Original assignee: Акционерное общество "Центр Генетики и Репродуктивной Медицины "ГЕНЕТИКО"
Filing date: 2021-03-29
Publication date: 2022-08-01

Abstract

FIELD: biotechnology.

SUBSTANCE: described is a method for diagnosing the monogenic disease familial breast cancer in settings of pre-implantation genetic testing (PGT). For this purpose, the presence of the pathogenic variant NC_000017.10:g.41209082dup (NM_007294.4:c.5266dupC, p.GIn1756fs) is diagnosed in the BRCA1 gene for use within the PGT of the monogenic disease familial breast cancer with the possibility of direct and indirect diagnosis.

EFFECT: high specificity and effectiveness were revealed within the framework of the method, as well as versatility with respect to various biological samples: single cells, product of genome-wide amplification, total DNA isolated from different tissues.

1 cl, 1 ex

Description

Изобретение относится к преимплантационному генетическому тестированию моногенных заболеваний. В настоящее время в мире насчитывается более 350 миллионов людей, страдающих редким заболеванием (по данным RARE Project). Общее количество таких заболеваний по подсчетам European Organization for Rare Diseases (EURORDIS) варьируется от 5 до 7 тысяч. При этом около 80% редких заболеваний имеют генетическую причину. Известная генетическая основа заболевания позволяет с высокой точностью предсказать не только здоровье уже родившегося ребенка, но и оценить риск рождения такого ребенка при анализе генотипов родителей, а также провести генетическую диагностику на самых ранних этапах. Преимплантационное генетическое тестирование (ПГТ) моногенного заболевания становится мощным инструментом для профилактики таких заболеваний.The invention relates to preimplantation genetic testing of monogenic diseases. Currently, there are more than 350 million people in the world suffering from a rare disease (according to the RARE Project). The total number of such diseases, according to the estimates of the European Organization for Rare Diseases (EURORDIS), varies from 5 to 7 thousand. At the same time, about 80% of rare diseases have a genetic cause. The known genetic basis of the disease makes it possible to predict with high accuracy not only the health of an already born child, but also to assess the risk of having such a child by analyzing the genotypes of the parents, as well as to conduct genetic diagnostics at the earliest stages. Preimplantation genetic testing (PGT) of a monogenic disease is becoming a powerful tool for the prevention of such diseases.

Настоящее изобретение относится к способу преимплантационного генетического тестирования рака молочной железы и яичников. Семейная форма рака груди - это мультифакториальное заболевание с высоким риском развития рака молочной железы (до 90%) и рака яичников (до 50%) в молодом возрасте у носителей мутации. Семейная форма рака молочной железы встречается с частотой 5-10 на 100 случаев рака молочной железы. Это заболевание приводит к развитию рака молочной железы и/или яичников. При аутосомно-доминантном типе наследования заболевания вероятность рождения ребенка с этим заболеванием в семье составляет 50%.The present invention relates to a method for preimplantation genetic testing of breast and ovarian cancer. Familial breast cancer is a multifactorial disease with a high risk of developing breast cancer (up to 90%) and ovarian cancer (up to 50%) at a young age in mutation carriers. The familial form of breast cancer occurs with a frequency of 5-10 per 100 cases of breast cancer. This disease leads to the development of breast and/or ovarian cancer. With an autosomal dominant type of inheritance of the disease, the probability of having a child with this disease in the family is 50%.

К заболеванию семейная форма рака груди могут приводить патогенные генетические варианты в гене BRCA1, располагающемся на хромосоме 17 [T.R. Rebbeck et al. JAMA. 2015 Apr 7;313(13): 1347-61]. Этот ген кодирует белок ядерный фосфопротеин, который играет важную роль в поддержании стабильности генома, а также действует как супрессор опухоли. Кодируемый белок объединяется с другими опухолевыми супрессорами, датчиками повреждения ДНК и сигнальными преобразователями, образуя большой мультисубъединый белковый комплекс, известный как BRCA1-ассоциированный геномный комплекс наблюдения (BASC). Этот продукт гена связывается с РНК-полимеразой II и через с-концевой домен также взаимодействует с гистоновыми деацетилазными комплексами. Таким образом, этот белок играет определенную роль в транскрипции, репарации ДНК двухцепочечных разрывов и рекомбинации.The familial form of breast cancer can be caused by pathogenic genetic variants in the BRCA1 gene located on chromosome 17 [T.R. Rebbeck et al. JAMA. 2015 Apr 7;313(13): 1347-61]. This gene encodes the nuclear phosphoprotein, which plays an important role in maintaining genome stability and also acts as a tumor suppressor. The encoded protein combines with other tumor suppressors, DNA damage sensors, and signal transducers to form a large multi-subunit protein complex known as the BRCA1-associated genomic surveillance complex (BASC). This gene product binds to RNA polymerase II and also interacts with histone deacetylase complexes through the c-terminal domain. Thus, this protein plays a role in transcription, DNA double-strand break repair, and recombination.

ПГТ рака молочной железы и яичников проводится для семей, имеющих подтвержденную молекулярно-генетическую природу заболевания. Важно отметить, что обоснование патогенности и каузативности генетических вариантов происходит до проведения ПГТ моногенного заболевания и не входит ни цели и задачи ПГТ моногенного заболевания, ни в комплекс мероприятий по проведению ПГТ моногенного заболевания. Оценку патогенности проводят по международному стандарту - по критериям, описанным в 2015 году Американским Колледжем Медицинской генетики и Геномики (American College of Medical Genetics and Genomics-Association for Molecular Pathology (ACMG-AMP)) в ходе поиска молекулярно-генетической причины заболевания. ПГТ рекомендуется семьям с высоким риском рождения ребенка с тяжелым (неизлечимым) наследственным заболеванием с установленным патогенными вариантом, обуславливающим этот риск. ПГТ позволяет выбрать из всех эмбрионов, полученных при ЭКО (экстракорпоральном оплодотворении), эмбрионы без патогенного варианта и, следовательно, без риска развития заболевания.PGT for breast and ovarian cancer is performed for families with a confirmed molecular genetic nature of the disease. It is important to note that the substantiation of the pathogenicity and causation of genetic variants occurs before the PGT of a monogenic disease and is not included either in the goals and objectives of the PGT of a monogenic disease, or in the complex of measures for conducting PGT of a monogenic disease. Pathogenicity is assessed according to the international standard - according to the criteria described in 2015 by the American College of Medical Genetics and Genomics-Association for Molecular Pathology (ACMG-AMP) in the search for the molecular genetic cause of the disease. PGT is recommended for families at high risk of having a child with a severe (incurable) hereditary disease with an established pathogenic variant that causes this risk. PGT allows you to choose from all embryos obtained by IVF (in vitro fertilization) embryos without a pathogenic variant and, therefore, without the risk of developing a disease.

Основной проблемой при генетической диагностике эмбрионов является малое исходное количество биоматериала, так как биоптат содержит от одной до трех клеток. В этом случае для повышения эффективности и точности анализа важно как полностью исключить возможность контаминации, так и нивелировать возможный эффект неравномерной и/или неполной амплификации, а также деградации биоматериала. Это требует разработки тест-системы с особыми характеристиками. При этом тест-система разрабатывается с учетом возможности использовать биоматериал разного типа - тотальную дезоксирибонуклеиновую кислоту (ДНК), выделенную из разных тканей, продукт полногеномной амплификации (Whole Genome Amplification, WGA), а также единичные клетки. Сочетание универсальности по отношению к биоматериалу с поэтапной амплификацией целевых фрагментов позволяет проводить анализ нескольких патогенных вариантов для одного образца, в том числе на единичных клетках, а также выявить ситуацию неполной амплификации, контаминации или деградации образца. Еще одной особенностью ПГТ является отсутствие информации о биологических особенностях эмбриона: в отличие от взрослого человека, у эмбриона могут быть любые хромосомные аномалии, которые усложняют задачу оценки статуса эмбриона по конкретному генетическому варианту. Поэтому тест-система для ПГТ моногенного заболевания должна давать возможность выявить такие случаи и оценить их влияние на достоверность результата диагностики.The main problem in the genetic diagnosis of embryos is the small initial amount of biomaterial, since the biopsy contains from one to three cells. In this case, to improve the efficiency and accuracy of the analysis, it is important both to completely exclude the possibility of contamination and to neutralize the possible effect of uneven and/or incomplete amplification, as well as degradation of the biomaterial. This requires the development of a test system with special characteristics. At the same time, the test system is being developed taking into account the possibility of using different types of biomaterial - total deoxyribonucleic acid (DNA) isolated from different tissues, the product of Whole Genome Amplification (WGA), as well as single cells. The combination of versatility with respect to the biomaterial with stepwise amplification of target fragments makes it possible to analyze several pathogenic variants for a single sample, including on single cells, and also to identify the situation of incomplete amplification, contamination, or sample degradation. Another feature of PGT is the lack of information about the biological characteristics of the embryo: unlike an adult, an embryo can have any chromosomal abnormalities that complicate the task of assessing the status of an embryo for a specific genetic variant. Therefore, a test system for PGT of a monogenic disease should make it possible to identify such cases and evaluate their impact on the reliability of the diagnostic result.

Наиболее близким техническим решением является проведение ПГТ рака молочной железы и яичников, предложенное Sagi М. и коллегами [Sagi М. Et al. Prenat Diagn. 2009 Мау; 29(5):508-13] для детекции мутаций в гене BRCA1 и анализа наследования аллелей 4-х полиморфных маркеров, сцепленных с патогенным вариантом, с помощью мультплексной полимеразной цепной реакции (ПЦР) на единичных клетках. Важным отличием предлагаемого нами подхода является использование большего числа полиморфных маркеров (14), что позволяет повысить достоверность результата ПГТ моногенных заболеваний (ПГТ-М) за счет увеличения вероятности выявления случая ADO при непосредственном тесте на наличие патогенного варианта у эмбриона.The closest technical solution is to conduct PGT for breast and ovarian cancer, proposed by Sagi M. and colleagues [Sagi M. Et al. Prenat Diagn. 2009 Mau; 29(5):508-13] to detect mutations in the BRCA1 gene and analyze the inheritance of alleles of 4 polymorphic markers linked to a pathogenic variant using multiplex polymerase chain reaction (PCR) on single cells. An important difference of our approach is the use of a larger number of polymorphic markers (14), which makes it possible to increase the reliability of the result of PGT for monogenic diseases (PGT-M) by increasing the probability of detecting an ADO case during a direct test for the presence of a pathogenic variant in an embryo.

Представленный нами метод ПГТ рака молочной железы и яичников решает задачу разработки более точного способа преимплантационного генетического тестирования этого моногенного заболевания без использования дорогостоящих приборов и реагентов, который можно было бы применять на биоматериале различного типа: ДНК, выделенную из разных тканей, продукт полногеномной амплификации (WGA), единичные клетки.The PGT method presented by us for breast and ovarian cancer solves the problem of developing a more accurate method for preimplantation genetic testing of this monogenic disease without the use of expensive instruments and reagents, which could be used on various types of biomaterial: DNA isolated from different tissues, a product of whole genome amplification (WGA ), single cells.

Техническим результатом стало создание тест-системы для диагностики патогенного варианта (номер нуклеотида в референсной последовательности геномной ДНК обозначен префиксом NC, номер нуклеотида в референсной последовательности кодирующего транскрипта обозначен префиксом NM): NC_000017.10:g.41209082dup (NM_007294.4:c.5266dupC, p.GIn1756fs) в гене BRCA1 с двойной системой детекции - прямой и косвенной. Такая система необходима при работе с малым количеством биоматериала, так как нестабильная амплификация может привести к потере информации или сниженной точности анализа. Прямая диагностика подразумевает анализ непосредственно наличия-отсутствия патогенного варианта. В данном случае для генетического варианта NC_000017.10:g.41209082dup (NM_007294.4:c.5266dupC, p.GIn1756fs). Связь этого варианта с развитием рака молочной железы и яичников подтверждается множеством исследований [T.R. Rebbeck et al. JAMA. 2015 Apr 7;313(13): 1347-61]. Косвенная диагностика заключается в анализе наследования молекулярно-генетических маркеров, сцепленных с мутацией, т.е. наследуемых вместе с ней. Для этого на расстоянии не более 3 мБ (что соответствует 3% кроссинговера в среднем) от гена BRCA1 в каждую сторону были выбраны полиморфные локусы, называемые STR (short tandem repeat - короткий тандемный повтор), с гетерозиготностью не менее 0,70 для обеспечения максимальной информативности косвенной диагностики. STR представляют собой повторы 2х и более нуклеотидов расположенные друг за другом (например пара аденин-цитозин (АЦ), повторяющаяся несколько раз подряд: АЦАЦАЦАЦ) и в большом количестве присутствуют в геноме человека. Количество повторов в каждом из них может варьироваться от индивидуума к индивидууму, а также может быть разным у одного и того же человека на 2х гомологичных хромосомах. Гетерозиготность выше 0,70 означает, что высока вероятность того, что у одного и того же человека количество повторов нуклеотидов в данном STR на одной хромосоме будет отличаться от количества повторов в этом же STR на гомологичной хромосоме, другими словами, аллели данного маркера у этого человека будут отличаться между собой по длине. При амплификации фрагмента, содержащего такой маркер, будут получены ампликоны двух разных длин. Проанализировав количество повторов в нескольких маркерах, окружающих патогенный вариант, и изучив то, как они наследуются в тестируемой семье, можно установить сцепление между аллелями маркеров и патогенным вариантом. Диагностическая ценность исследования количества повторов в данных маркерах у эмбрионов состоит в том, что по тому, какой аллель каждого из маркеров был унаследован эмбрионом, можно судить о том, унаследовал ли эмбрион ген BRCA1, несущий патогенный вариант, или же он унаследовал ген BRCA1 с другой, гомологичной хромосомы, не содержащий патогенный вариант. Для каждого из этих локусов были подобраны праймеры для амплификации по типу гнездовой или полугнездовой ПЦР в 2 раунда, позволяющей повысить точность и эффективность амплификации. В тест-систему были включены 14 STR локусов для гена BRCA1: D17S3911, D17S3972, D17S3994, D17S4018, D17S4021, D17S4035, D17S932, D17S4132, D17S4160, D17S4162, D17S4171, D17S4175, D17S1861, D17S4310. Праймеры для амплификации находятся на 17 хромосоме в районе координат 39110024-43101707 (в соответствии с hg19). Важно отметить, что при подборе праймеров соблюдали ряд особенных требований: длина продукта с внешними праймерами для первого раунда ПЦР не должна превышать 500 п. н. (для наработки с фрагментов, получаемых при полногеномной амплификации), длина продукта с внутренних праймеров для второго раунда ПЦР от 120 до 350 п.н., высокая специфичность внешних праймеров, температура отжига не отличается более чем на 1°С.The technical result was the creation of a test system for diagnosing a pathogenic variant (the nucleotide number in the reference genomic DNA sequence is indicated by the prefix NC, the nucleotide number in the reference sequence of the coding transcript is indicated by the prefix NM): NC_000017.10:g.41209082dup (NM_007294.4:c.5266dupC , p.GIn1756fs) in the BRCA1 gene with a dual detection system - direct and indirect. Such a system is necessary when working with a small amount of biomaterial, since unstable amplification can lead to loss of information or reduced accuracy of the analysis. Direct diagnosis involves the analysis of the direct presence-absence of a pathogenic variant. In this case, for the genetic variant NC_000017.10:g.41209082dup (NM_007294.4:c.5266dupC, p.GIn1756fs). The connection of this variant with the development of breast and ovarian cancer is confirmed by many studies [T.R. Rebbeck et al. JAMA. 2015 Apr 7;313(13): 1347-61]. Indirect diagnosis consists in the analysis of the inheritance of molecular genetic markers linked to a mutation, i.e. inherited with it. To do this, at a distance of no more than 3 mB (which corresponds to 3% crossover on average) from the BRCA1 gene, polymorphic loci called STR (short tandem repeat - short tandem repeat) were selected in each direction with a heterozygosity of at least 0.70 to ensure maximum informativity of indirect diagnostics. STRs are repeats of 2 or more nucleotides located one after another (for example, an adenine-cytosine (AC) pair repeated several times in a row: ACACACACA) and are present in large numbers in the human genome. The number of repeats in each of them may vary from individual to individual, and may also be different in the same person on 2 homologous chromosomes. Heterozygosity above 0.70 means that there is a high probability that in the same person the number of nucleotide repeats in a given STR on one chromosome will differ from the number of repeats in the same STR on a homologous chromosome, in other words, the alleles of this marker in this person will differ in length. When amplifying a fragment containing such a marker, amplicons of two different lengths will be obtained. By analyzing the number of repeats in several markers surrounding the pathogenic variant and examining how they are inherited in the tested family, linkage between the alleles of the markers and the pathogenic variant can be established. The diagnostic value of studying the number of repeats in these markers in embryos is that by which allele of each of the markers was inherited by the embryo, it can be judged whether the embryo inherited the BRCA1 gene carrying the pathogenic variant, or whether it inherited the BRCA1 gene from another , a homologous chromosome that does not contain a pathogenic variant. For each of these loci, primers were selected for amplification by the type of nested or semi-nested PCR in 2 rounds, which makes it possible to increase the accuracy and efficiency of amplification. В тест-систему были включены 14 STR локусов для гена BRCA1: D17S3911, D17S3972, D17S3994, D17S4018, D17S4021, D17S4035, D17S932, D17S4132, D17S4160, D17S4162, D17S4171, D17S4175, D17S1861, D17S4310. Primers for amplification are located on the 17th chromosome in the region of coordinates 39110024-43101707 (according to hg19). It is important to note that during the selection of primers, a number of special requirements were observed: the length of the product with external primers for the first round of PCR should not exceed 500 bp. (for production from fragments obtained by whole genome amplification), product length from internal primers for the second round of PCR from 120 to 350 bp, high specificity of external primers, annealing temperature does not differ by more than 1°C.

Подготовительный этап ПГТPreparatory stage of the PGT

На подготовительном этапе проводится отработка тест-системы: подбор условий амплификации, оптимальных для работы праймеров, анализ эффективности и специфичности ПЦР-амплификации в обоих раундах, оценки универсальности тест-системы для биообразцов различного типа (ДНК, продукт WGA, единичные клетки). При отработке тест-системы были приготовлены стоковые разведения праймеров с концентрацией 100mM, и рабочие разведения комбинаций праймеров (комбинация пар праймеров для 1 и 2 раунда ПЦР) с концентрацией 10mM каждого праймера в растворе. Так как в рамках диагностики клинического материала могут быть использованы различные типы матриц, при отработке тест-системы были использованы две биопсии единичных клеток, находящихся в специальном лизирующем буфере (1×PCR Buffer, 0,1% Tween-20, 0,1% Triton X-100, 1 мкг Proteinase K), два образца продуктов полногеномной амплификации биопсий эмбриона (WGA), а также тотальной ДНК членов семьи, выделенной из крови, для составления родословной и выявления сцепления патогенного варианта с аллелями полиморфных маркеров.At the preparatory stage, the test system is being developed: selection of amplification conditions that are optimal for primers to work, analysis of the efficiency and specificity of PCR amplification in both rounds, assessment of the universality of the test system for biosamples of various types (DNA, WGA product, single cells). When testing the test system, stock dilutions of primers were prepared with a concentration of 100mM, and working dilutions of primer combinations (a combination of pairs of primers for rounds 1 and 2 of PCR) with a concentration of 10mM of each primer in solution. Since various types of matrices can be used as part of the diagnosis of clinical material, two biopsies of single cells were used in the development of the test system, which are in a special lysis buffer (1 × PCR Buffer, 0.1% Tween-20, 0.1% Triton X-100, 1 μg Proteinase K), two samples of products of whole genome amplification of embryo biopsies (WGA), as well as total DNA of family members isolated from blood, for compiling a pedigree and identifying the linkage of a pathogenic variant with alleles of polymorphic markers.

В рамках гнездовой и полугнездовой ПЦР амплификация проводится в два этапа. На первом этапе проводится мультиплексная ПЦР со всеми внешними праймерами для всех локусов, входящих в тест-систему, для обогащения образца всеми целевыми фрагментами. На втором этапе проводится индивидуальная амплификация каждого фрагмента с внутренними праймерами.In nested and semi-nested PCR, amplification is carried out in two steps. At the first stage, multiplex PCR is performed with all external primers for all loci included in the test system to enrich the sample with all target fragments. At the second stage, individual amplification of each fragment with internal primers is carried out.

Полугнездовая ПЦРSemi-nested PCR

Для первого этапа были подобраны внешние высокоспецифичные праймеры для амплификации фрагментов от 300 до 500 п. н. Для второго этапа были подобраны праймеры для амплификации фрагментов длиной не более 350 пар оснований, а также были введены метки для детекции методом фрагментного анализа. ПЦР-смесь для первого раунда амплификации содержала 1×PCR Buffer with Mg2+ (Евроген, Россия), 0.1 mM каждого деоксинуклеотида, 0.15 иМ каждого праймера, 2,5 U/μl of HsTaq DNA-polymerase (Евроген, Россия), 6% of DMSO и 1 мкл тотальной ДНК или 2,5 мкл WGA или 5 мкл лизирующего буфера с образцом в качестве матрицы. Первый этап амплификации проводился по следующему протоколу: этап денатурации 94°С в течение 2 минут, 30 циклов с понижением температуры отжига праймеров с 62 до 45°С в каждом, этап достройки всех матриц 72°С 10 минут. Далее продукты 1-ого этапа были разнесены в индивидуальные пробирки с одной парой праймеров на определенный локус.For the first stage, external highly specific primers were selected to amplify fragments from 300 to 500 bp. For the second stage, primers were selected to amplify fragments no longer than 350 base pairs, and labels were introduced for detection by fragment analysis. The PCR mixture for the first round of amplification contained 1×PCR Buffer with Mg2+ (Evrogen, Russia), 0.1 mM of each deoxynucleotide, 0.15 mM of each primer, 2.5 U/μl of HsTaq DNA-polymerase (Evrogen, Russia), 6% of DMSO and 1 µl total DNA or 2.5 µl WGA or 5 µl lysis buffer with sample as template. The first stage of amplification was carried out according to the following protocol: the stage of denaturation at 94°C for 2 minutes, 30 cycles with a decrease in the annealing temperature of the primers from 62 to 45°C in each, the stage of completion of all templates at 72°C for 10 minutes. Next, the products of the 1st stage were separated into individual tubes with one pair of primers per specific locus.

В состав ПЦР смеси для второго этапа входили 1xPCR буфер с Mg2+ (Евроген, Россия), 0.5xRediLoad™ загрузочный буфер (Thermo Fisher Scientific, USA), 0.2 mM каждого деоксинуклеотида, 0.2 цМ каждого праймера, 1 U/μl ДНК полимеразы HsTaq (Евроген, Россия), 6% диметилсульфоксида (DMSO) и 1 μl ПЦР-продукта первого этапа амплификации в качестве матрицы. Второй этап амплификации проводился по следующему протоколу: этап денатурации 95°С в течение 2 минут, 35 циклов: денатурация 95°С 30 секунд, отжиг праймеров - 57°С 30 секунд, синтез матрицы - 72°С 1 минута, этап достройки всех матриц 72°С 5 минут. Оценку эффективности и специфичности амплификации проводили с помощью электрофореза в 2% агарозном геле. Результат электрофореза в агарозном геле позволяет определить необходимую степень разведения продуктов амплификации для нанесения на фрагментный анализ (продукты амплификации ДНК членов семьи).The PCR mixture for the second stage included 1xPCR buffer with Mg2+ (Evrogen, Russia), 0.5xRediLoad™ loading buffer (Thermo Fisher Scientific, USA), 0.2 mM of each deoxynucleotide, 0.2 mM of each primer, 1 U/μl HsTaq DNA polymerase (Evrogen , Russia), 6% dimethyl sulfoxide (DMSO) and 1 μl of the PCR product of the first stage of amplification as a template. The second stage of amplification was carried out according to the following protocol: denaturation stage at 95°C for 2 minutes, 35 cycles: denaturation at 95°C for 30 seconds, primer annealing at 57°C for 30 seconds, template synthesis at 72°C for 1 minute, completion of all templates 72°C 5 minutes. Evaluation of the efficiency and specificity of amplification was performed using electrophoresis in 2% agarose gel. The result of electrophoresis in agarose gel allows you to determine the required degree of dilution of the amplification products for application to fragment analysis (amplification products of the DNA of family members).

Фрагментный анализ продуктов амплификации проводили с помощью капиллярного электрофореза на приборе 3130x1 Genetic Analyzer (Applied Biosystems, USA). По результатам фрагментного анализа составляется родословная и отмечаются информативные полиморфные STR-локусы для каждой семьи, которые в дальнейшем будут использованы в клинической диагностике. Локусы делятся на неинформативыне (носитель патогенного варианта гомозиготен по этому локусу), полуинформативные (на некоторых и родительских хромосом аллели по этому маркеру совпадают), информативные (на всех хромосомах родителей аллели этого маркера разные, что дает возможность отличить каждую из них при анализе генотипа эмбриона). Детекция патогенного варианта NC_000017.10:g.41209082dup (NM_007294.4:c.5266dupC, p.GIn1756fs) проводилась с помощью праймеров для амплификации:Fragment analysis of amplification products was performed using capillary electrophoresis on a 3130x1 Genetic Analyzer (Applied Biosystems, USA). Based on the results of fragment analysis, a pedigree is compiled and informative polymorphic STR loci for each family are noted, which will later be used in clinical diagnostics. Loci are divided into non-informative (the carrier of the pathogenic variant is homozygous for this locus), semi-informative (alleles for this marker are the same on some and parent chromosomes), informative (alleles of this marker are different on all chromosomes of the parents, which makes it possible to distinguish each of them when analyzing the genotype of the embryo ). Detection of the pathogenic variant NC_000017.10:g.41209082dup (NM_007294.4:c.5266dupC, p.GIn1756fs) was carried out using amplification primers:

Внешние праймеры:External primers:

5'-TGTGGTTGGGATGGAAGAGT-3' (Fout)5'-TGTGGTTGGGATGGAAGAGT-3' (Fout)

5'-AAATATGACGTGTCTGCTCCACT-3' (Rout)5'-AAATATGACGTGTCTGCTCCACT-3' (Rout)

Внутренние праймеры:Internal primers:

5'-TGAAGCGGCCCATCTCTG-3' (fin)5'-TGAAGCGGCCCATCTCTG-3' (fin)

5'-TGGTCAATGGAAGAAACCACC-3' (rin).5'-TGGTCAATGGAAGAAACCACC-3' (rin).

Длины продуктов амплификации так же оценивались с помощью фрагментного анализа.The lengths of the amplification products were also estimated using fragment analysis.

Пример 1Example 1

Пациенты А.Patients a.

В ЦГРМ Генетико обратилась семья А., в которой супруга страдала семейной формой рака молочной железы с гетерозиготным носительством патогенного варианта NC_000017.10:g.41209082dup (NM_007294.4:c.5266dupC, p.GIn1756fs) в гене BRCA1. Паре было рекомендовано проведение ПГТ заболевания семейная форма рака молочной железы в рамках ЭКО для отбора эмбрионов, не унаследовавших заболевание.Family A., in which the wife suffered from a familial form of breast cancer with a heterozygous carrier of the pathogenic variant NC_000017.10:g.41209082dup (NM_007294.4:c.5266dupC, p.GIn1756fs) in the BRCA1 gene, turned to Genetico Center for Disease Control and Prevention. The couple was recommended to undergo PGT for the disease familial form of breast cancer as part of IVF to select embryos that did not inherit the disease.

Гаплотипирование семьиFamily haplotyping

На первом этапе был получен биоматериал (периферическая кровь) членов семьи для детекции патогенного варианта и выявления групп сцепления аллелей полиморфных маркеров. Было проанализировано 14 STR локусов. Из них 10 оказались информативными по матери. Таким образом, образцы эмбрионов тестировались только на информативные маркеры. Полученные результаты по информативным маркерам (аллели, указанные с одной стороны от символа «/», для разных маркеров располагаются на одной хромосоме, то есть составляют группу сцепления): партнер пациентки: D17S3911 - 233/234, D17S3972 - 216/216, D17S4021 - 261/259, D17S932 - 191/188, BRCA1:5382insC - N/N, D17S4132 -237/229, D17S4160 - 212/219, D17S4162 - 177/179, D17S4171 -170/175, D17S4175 -193/208, D17S1861 - 191/183; пациентка: D17S3911 - 242/238, D17S3972 - 220/216, D17S4021 - 259/270, D17S932 - 197/195, BRCA1:5382insG - mut/N, D17S4132 229/240, D17S4160 - 219/222, D17S4162 -181/177, D17S4171 -170/166, D17S4175 -208/193, D17S1861 - 180/189; здоровый ребенок, не унаследовавший патогенный вариант: D17S3911 - 233/238, D17S3972 - 216/216, D17S4021 - 261/270, D17S932 -191/195, BRCA1:5382insC - N/N, D17S4132 - 237/240, D17S4160 - 212/222, D17S4162 -177/177, D17S4171 - 170/166, D17S4175 - 193/193, D17S1861 - 191/189.At the first stage, biomaterial (peripheral blood) of family members was obtained to detect the pathogenic variant and identify linkage groups of alleles of polymorphic markers. 14 STR loci were analyzed. Of these, 10 were informative on the mother. Thus, embryo samples were tested only for informative markers. The results obtained for informative markers (alleles indicated on one side of the "/" symbol are located on the same chromosome for different markers, that is, they form a linkage group): patient's partner: D17S3911 - 233/234, D17S3972 - 216/216, D17S4021 - 261/259 D17S932 - 191/188 191/183; patient: D17S3911 - 242/238, D17S3972 - 220/216, D17S4021 - 259/270, D17S932 - 197/195, BRCA1:5382insG - mut/N, D17S4132 229/240, D17S4160 - 217/241 - 217/242 , D17S4171 -170/166, D17S4175 -208/193, D17S1861 - 180/189; healthy child who did not inherit the pathogenic variant: D17S3911 - 233/238, D17S3972 - 216/216, D17S4021 - 261/270, D17S932 -191/195, BRCA1:5382insC - N/N, D17S4132 - 237/240, D17S4160 - 2160 222, D17S4162 - 177/177, D17S4171 - 170/166, D17S4175 - 193/193, D17S1861 - 191/189.

В результате гаплотипирования был сделан вывод, что у пациентки с патогенным вариантом были связаны следующие аллели STR-маркеров: D17S3911 - 242, D17S3972 - 220, D17S4021 - 259, D17S932 - 197, BRCA1:5382insC - mut/N, D17S4132 - 229, D17S4160 - 219, D17S4162 - 181, D17S4171 - 170, D17S4175 - 208, D17S1861 - 180.As a result of haplotyping, it was concluded that the following alleles of STR markers were associated with the pathogenic variant in the patient: D17S3911 - 242, D17S3972 - 220, D17S4021 - 259, D17S932 - 197, BRCA1: 5382insC - mut/N, D17S4132 - 229, D17S4160 - 219, D17S4162 - 181, D17S4171 - 170, D17S4175 - 208, D17S1861 - 180.

Преимплантационное генетическое тестированиеPreimplantation genetic testing

В цикле ЭКО было получено 5 эмбрионов, проведена биопсия на 5 день развития (в клинике ЭКО), биоптат в буфере для WGA (1xPBS (Invitrogen, США), 1% поливинилпирролидона (PVP) (Fertipro, Бельгия)) направлен в лабораторию «Генетико». Для контроля контаминации на разных этапах работы с образцом в лаборатории разработана система контролей: контроль контаминации буфера для биопсии, контроль контаминации при транспортировке (одна пробирка с буфером не открывается эмбриологом), контроль контаминации каждого образца (проба среды из последней отмывочной капли биопсиийного материала). Все эти контроли вместе с образцами проходят этап полногеномной амплификации, после которого будет заметно малейшее количество ДНК, контаминировавшей контроли. Полногеномную амлификацию проводили с помощью коммерческого набора SurePlex (Illumina, США).In the IVF cycle, 5 embryos were obtained, a biopsy was performed on the 5th day of development (in the IVF clinic), the biopsy in WGA buffer (1xPBS (Invitrogen, USA), 1% polyvinylpyrrolidone (PVP) (Fertipro, Belgium)) was sent to the laboratory "Genetiko ". To control contamination at different stages of working with a sample, a system of controls has been developed in the laboratory: contamination control of the biopsy buffer, contamination control during transportation (one tube with buffer is not opened by the embryologist), contamination control of each sample (a sample of the medium from the last wash drop of biopsy material). All these controls, together with the samples, go through the stage of whole genome amplification, after which the smallest amount of DNA contaminating the controls will be noticeable. Genome-wide amplification was performed using the commercial SurePlex kit (Illumina, USA).

Продукт полногеномной амплификации, а также ДНК всех членов семьи амплифицировали на 1 этапе в мультиплексной ПЦР с праймерами для детекции патогенного варианта и праймерами для информативных для семьи А полиморфных маркеров в соответствии с разработанным в рамках подготовительного этапа протоколом для тест-системы. На 2 этапе амплификацию проводили для каждого маркера отдельно в соответствии с разработанным протоколом для тест-системы. Таким образом были установлены группы сцепления, унаследованные каждым эмбрионом. Полученные результаты: эмбрион1: D17S3911 - 234/238, D17S3972 - 216D17S4021 - 259270, D17S932 -188/195BRCA1:5382insC - N, D17S4132 - 229/240D17S4160 - 219/222, D17S4162 -179/177D17S4171 - 175/166, D17S4175 - 208/193D17S1861 - 183/180; эмбрион2: D17S3911 - 234/242, D17S3972 - 216/220, D17S4021 - 259, D17S932 - FA, BRCA1:5382insC - N/mut, D17S4132 - 229, D17S4160 - 219, D17S4162 - 179/181, D17S4171 - 175/170, D17S4175 - 208, D17S1861 - 183/180; эмбрион3: D17S3911 -234/242, D17S3972 - 216/220, D17S4021 - 259, D17S932 - 188/197, BRCA1:5382insC -N/mut, D17S4132-229, D17S4160 - 219, D17S4162 - 179/181, D17S4171 - 175/170, D17S4175 - 208, D17S1861 - ADO/180; эмбрион4: D17S3911 - 233/242, D17S3972 -216/220, D17S4021 - 261/259, D17S932 - 191/197, BRCA1:5382insC - N/mut, D17S4132 - 237/229, D17S4160 - 212/219, D17S4162 - 177/181, D17S4171 - 170, D17S4175 - 193/208, D17S1861 - 191/180; эмбрион5: D17S3911 - 233/242, D17S3972 - 216/220, D17S4021 - 261/259, D17S932 - 191/197, BRCA1:5382insC -N/mut, D17S4132 - 237/229, D17S4160 - 212/219, D17S4162 - 177/181, D17S4171 -170, D17S4175- 193/208, D17S1861 - ADO/180.The product of whole genome amplification, as well as the DNA of all family members, was amplified at stage 1 in multiplex PCR with primers for the detection of the pathogenic variant and primers for polymorphic markers informative for family A in accordance with the protocol for the test system developed as part of the preparatory stage. At stage 2, amplification was performed for each marker separately in accordance with the developed protocol for the test system. In this way, the linkage groups inherited by each embryo were established. Полученные результаты: эмбрион1: D17S3911 - 234/238, D17S3972 - 216D17S4021 - 259270, D17S932 -188/195BRCA1:5382insC - N, D17S4132 - 229/240D17S4160 - 219/222, D17S4162 -179/177D17S4171 - 175/166, D17S4175 - 208 /193D17S1861 - 183/180; Embryo2: D17S3911 - 234/242, D17S3972 - 216/220, D17S4021 - 259, D17S932 - FA, BRCA1:5382insC - N/mut, D17S4132 - 229, D17S4160 - 219, D17S4162 - 179/181, D17S4162 - 179/181, D17S4162 - 179/181 D17S4175 - 208, D17S1861 - 183/180; embryo 3: D17S3911 -234/242, D17S3972 - 216/220, D17S4021 - 259, D17S932 - 188/197, BRCA1:5382insC -N/mut, D17S4132-229, D17S4160 - 219, D17S4162 - 141/18 D15.1 170, D17S4175 - 208, D17S1861 - ADO/180; embryo4: D17S3911 - 233/242, D17S3972 -216/220, D17S4021 - 261/259, D17S932 - 191/197, BRCA1:5382insC - N/mut, D17S4132 - 237/229, D17S4160 - 212/216, D17S4160 - 212/216 - 217S219 181, D17S4171 - 170, D17S4175 - 193/208, D17S1861 - 191/180; Embryo5: D17S3911 - 233/242, D17S3972 - 216/220, D17S4021 - 261/259, D17S932 - 191/197, BRCA1:5382insC -N/mut, D17S4132 - 237/229, D17S4160 - 217/216 - 217/2419 181, D17S4171-170, D17S4175- 193/208, D17S1861 - ADO/180.

По результатам прямой и косвенной диагностики 1 эмбрион (эмбрион 1) не унаследовал заболевание, у 4 эмбрионов (эмбрионы 2-5) выявлен гаплотип, соответствующий унаследованному заболеванию, т.е. они унаследовали от пациентки мутантный аллель гена BRCA1. С согласия родителей для эмбрионов, не унаследовавших заболевание, провели преимплантационный генетический скрининг хромосомных аномалий. По результатам всех проведенных анализов эмбрион 1 был рекомендован к переносу.According to the results of direct and indirect diagnostics, 1 embryo (embryo 1) did not inherit the disease; in 4 embryos (embryos 2-5), a haplotype corresponding to the inherited disease was detected, i. they inherited a mutant allele of the BRCA1 gene from the patient. With the consent of the parents, preimplantation genetic screening for chromosomal abnormalities was performed for embryos that did not inherit the disease. Based on the results of all tests carried out, embryo 1 was recommended for transfer.

Claims

A method for preimplantation genetic testing of breast and ovarian cancer, involving the detection of the inheritance of the pathogenic variant NC_000017.10:g.41209082dup (NM_007294.4:c.5266dupC, p.GIn1756fs) in the BRCA1 gene, including the use of a double detection system - direct and indirect, where direct detection is carried out using primers:

5'-TGTGGTTGGGATGGAAGAGT-3' (Fout),

5'-AAATATGACGTGTCTGCTCCACT-3' (Rout),

5'-TGAAGCGGCCCATCTCTG-3' (fin),

5'-TGGTCAATGGAAGAAACCACC-3' (rin),

indirect detection is carried out using primers to analyze the inheritance of molecular genetic polymorphic type markers (STR) linked to a pathogenic variant selected from SEQ ID No. 1-43, while using primers directed to those STRs where the marker alleles are different at all chromosomes of the parents, where the outer primers are designated as Fout (forward primer) and Rout (reverse primer), internal primers as Fin (forward primer) and Rin (reverse primer), while the diagnosis is carried out by semi-nested PCR in two stages: at the first stage, multiplex PCR with external primers for STR and the BRCA1 gene, at the second stage, individual PCR of each fragment is carried out with internal primers for STR, as well as the PCR-RFLP method to determine the pathogenic variant.