RU2750894C1 - Вакцина для защиты свиней от actinobacillus pleuropneumoniae - Google Patents

Вакцина для защиты свиней от actinobacillus pleuropneumoniae Download PDF

Info

Publication number
RU2750894C1
RU2750894C1 RU2020123741A RU2020123741A RU2750894C1 RU 2750894 C1 RU2750894 C1 RU 2750894C1 RU 2020123741 A RU2020123741 A RU 2020123741A RU 2020123741 A RU2020123741 A RU 2020123741A RU 2750894 C1 RU2750894 C1 RU 2750894C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
vaccine
actinobacillus pleuropneumoniae
infection
baculovirus
toxin
Prior art date
Application number
RU2020123741A
Other languages
English (en)
Inventor
Мартен Хендрик ВИТВЛИТ
Йоханна Якоба Элизабет БЕЙЛСМА
Original Assignee
Интервет Интернэшнл Б.В.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Интервет Интернэшнл Б.В. filed Critical Интервет Интернэшнл Б.В.
Application granted granted Critical
Publication of RU2750894C1 publication Critical patent/RU2750894C1/ru

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/02Bacterial antigens
    • A61K39/102Pasteurellales, e.g. Actinobacillus, Pasteurella; Haemophilus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/285Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Pasteurellaceae (F), e.g. Haemophilus influenza
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • C12N15/866Baculoviral vectors
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/54Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the route of administration
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/55Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by the host/recipient, e.g. newborn with maternal antibodies
    • A61K2039/552Veterinary vaccine
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/555Medicinal preparations containing antigens or antibodies characterised by a specific combination antigen/adjuvant
    • A61K2039/55511Organic adjuvants
    • A61K2039/55544Bacterial toxins

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Группа изобретений относится к области ветеринарии, а именно к инфектологиии и иммунологии, и предназначенна для защиты свиньи против инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae. Вакцина для защиты свиньи против инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae содержит токсин RTX Actinobacillus pleuropneumoniae, рекомбинантно экспрессируемый бакуловирусом, адъювант и фармацевтически приемлемый носитель, причем токсин RTX представляет собой ApxI. В других воплощениях представлены применения токсина RTX Actinobacillus pleuropneumoniae, рекомбинантно экспрессируемого бакуловирусом, и способ защиты свиньи от инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae. Использование группы изобретений позволяет повысить эффективность защиты свиньи против инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae. 4 н. и 2 з.п. ф-лы, 2 табл., 2 пр.

Description

ОБЛАСТИ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Изобретение, главным образом, относится к вакцине для защиты свиней от инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae.
УРОВЕНЬ ТЕХНИКИ
Настоящее изобретение относится к вакцине, направленной против плевропневмонии свиней - распространенного по всему миру заболевания, вызывающего значительные экономические потери в свиноводстве. Этиологическим фактором плевропневмонии свиней является Actinobacillus pleuropneumoniae (APP) - грамотрицательная бактерия, принадлежащая семейству Pasteurellaceae. Заболевание передается капельным путем или посредством прямого контакта с инфицированной свиньей и характеризуется геморрагическими, фибринозными и некротическими очагами в легких. Клиническая картина может находиться в диапазоне от молниеносной до хронической, и бессимптомные свиньи-переносчики могут передавать заболевание при поступлении в неинфицированные стада. Исходя из капсульных полисахаридов и компонентов O-цепи липополисахарида (LPS), было описано 15 сероваров. Серотипирование и другие способы генетического типирования для Actinobacillus pleuropneumoniae внесли значительный вклад в мониторинговые и эпидемиологические исследования. Эти инструменты предоставили важную информацию для принятия решения в программах контроля, нацеленных на устранение вирулентных типов этих бактерий. В Северной Америке серовары 1, 5 и 7 описаны как наиболее распространенные, в то время как серовары 2 и 9 наиболее часто выделяются в Европе, и серовар 15 является преобладающим изолятом австралийских свиней.
Факторы вирулулентности, описанные для Actinobacillus pleuropneumoniae, включают LPS, капсульные полисахариды, токсины Apx I-IV (также называемые повторами в токсинах или токсинами RTX), наружные мембранные белки (OMP) и различные системы усвоения железа. Токсины RTX Actinobacillus pleuropneumoniae (токсины Apx I, II и III) описаны Frey в Trends in Microbiology 257, Vol. 3, No. 7, July 1995. Позднее был обнаружен четвертый RTX-токсин APP (названный Apx IV) (см. Dreyfus et al. in Veterinary Microbiology, 2004, April 19; 99 (3-4): 227-238). Однако общий вклад каждого компонента в процесс инфицирования остается неясным, также как и механизмы патогенеза бактерий. Практически все из доступных в настоящее время вакцин против A. pleuropneumoniae представляют собой либо инактивированные цельноклеточные бактерины, либо комбинации субъединиц токсинов и белков Apx, необязательно в комбинации с фракциями наружной мембраны. В любом случае стало хорошо понятно, что для достижения достаточной защиты в вакцине должен присутствовать липополисахарид (LPS) (Julien Gouré et al., BMC Genomics 2009, 10:88, опубликованная 24 февраля 2009 года; Dubreuil et al., Animal Health Research Reviews 1(2): 73-93, декабрь 2000 года). Действительно, известно, что специфическое связывание между LPS и токсинами Apx играет основную роль в повышении иммуногенности токсинов (см., среди прочего, Ramjeet et al. in Molecular Biology, 2008, 70(1), pp 221-235), которая может объяснять достаточную защиту комбинированной субъединичной вакцины, где присутствует токсин Apx в комплексе с LPS.
Серьезным недостатком липополисахарида является его эндотоксическая природа, и, таким образом, он ассоциирован с множеством нежелательных побочных эффектов, таких как выраженная вялость, диарея, рвота, потеря аппетита или даже смерть. На первый взгляд, это, таким образом, наводит на мысль о снижении количества LPS в вакцине или об обезвреживании LPS. Однако достаточная вакцина против APP зависит от присутствия LPS и, таким образом, как широко известно, снижение количества LPS имманентно снижает эффективность вакцин. Альтернативно, негативное влияние LPS может быть устранено добавлением в вакцину антибиотика полимиксина, как известно из WO2011/015614. Однако с нормативной точки зрения добавление антибиотика в вакцину строго ограничено. Таким образом, это решение не может быть использовано ввиду юрисдикции в области регулирования.
Действительно, в настоящее время понятно, что для достижения такого высокого уровня защиты в вакцине должен присутствовать по меньшей мере один токсин Apx, причем токсин присутствует в иммунологическом комплексе с гетеромолекулой, такой как LPS. Хотя известно, что очищенные токсины Apx могут обеспечить некоторый уровень защиты (см., среди прочего, Bhatia et al. в Veterinary Microbiology, 29, 1991, 147- 158), понятно, что для достижения достаточной защиты использования очищенного токсина Apx в качестве антигена в вакцине недостаточно. Известны многие примеры токсина Apx, экспрессируемого в грамотрицательных бактериях E. coli. Хотя иногда его называют "очищенным" рекомбинантным токсином Apx при продуцировании в E. coli, в каждом из этих случаев токсин находится в комплексе с LPS в результате контакта с LPS, содержащимися в клеточной стенке бактерий E. coli. Также в данной области известны более экзотические экспрессирующие системы для получения действительно очищенного токсина Apx не в комплексе с LPS или другим гетеротоксином. Kyung-Yeol Lee et al. описали в FEMS Immunol Med Microbiol 48, 2006, 381-389, индукцию защитного иммунного ответа против инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae посредством рекомбинантного токсина Apx, продуцированного в трансгенном растении табака. Однако не было показано защиты у свиней. Также вакцину необходимо было вводить посредством четырех последовательных доз, вводимых перорально. Для практики вакцинации свиней это не является реалистичной возможностью. Соответственно, Mi-Young Kim et al. показали в Protein Expression and Purification 132, 2017, 116-123, что токсин Apx мог экспрессироваться в трансгенном каллюсе риса, и что очищенный токсин при введении интраназально мог обеспечить по меньшей мере некоторую защиту против инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae у мышей. Однако защита у свиней не была показана, не говоря уже о защите на уровне, сравнимом с коммерчески доступными вакцинами для защиты против APP.
ЗАДАЧА ИЗОБРЕТЕНИЯ
Задачей изобретения является предоставление альтернативной вакцины для достаточной защиты поросят от инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae, предпочтительно на уровне, сравнимом с защитой, которой достигают при использовании коммерчески доступной вакцины против APP.
СУЩНОСТЬ ИЗОБРЕТЕНИЯ
Для выполнения задачи изобретения была разработана вакцина для защиты свиней от инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae, причем вакцина содержит токсин RTX Actinobacillus pleuropneumoniae, рекомбинантно экспрессируемый бакуловирусом, и фармацевтически приемлемый носитель.
Неожиданно, данная вакцина, содержащая выделенный токсин без LPS или другого гетеротоксина, может обеспечивать достаточную защиту даже на уровне, сравнимом с защитой, которую достигают с использованием вакцины, такой как Porcilis® APP (MSD Animal Health, Boxmeer, Нидерланды). Хотя бакуловирусная экспрессия по существу широко известна и используется многие годы для экспрессии иммуногенов либо вирусных, либо бактериальных патогенов, ее не использовали для обеспечения достаточной вакцины против APP посредством экспрессии одного или нескольких токсинов RTX. Бакуловирусы представляют собой ДНК-вирусы, способные инфицировать более 600 видов насекомых. Наиболее часто используемым бакуловирусом в биотехнологии является Autographa californica. Бакуловирус имеет кольцевую двухцепочечную ДНК (∼134 т.п.н.), которая упакована в стержневидный нуклеокапсид, и имеет оболочку, состоящую из мембраны, происходящей из клеток-хозяев. После инфицирования насекомых бакуловирус может высвобождаться из клеток в форме почек или может быть заключен в полиэдр, состоящий из экспрессируемого вирусом полиэдрина и белков p10. Полиэдрин и белки p10 экспрессируются в большом количестве, однако они не являются обязательными для репликации бакуловируса, таким образом, можно клонировать гетерологичные гены под контроль промотора полиэдрина или p10 для получения рекомбинантного бакуловируса. Полученный рекомбинантный бакуловирус можно использовать для инфицирования культивируемых клеток насекомых для устойчивой экспрессии белка, как известно с 1980-х годов. На сегодняшний день разработаны различные коммерческие системы бакуловирусных векторов (например, Bac-to-BacTM, Invitrogen; BaculoDirectTM, Invitrogen; ProEasyTM, AB Vector), позволяющие клонирование генов и конструирование рекомбинантного бакуловируса по типу "включай и работай" (см., например, Lin SY, Chen GY, Hu YC. Recent Pat Biotehnol 2011; 5:1-11). Более того, был разработан ряд сконструированных бакуловирусных векторов, таких как flashBACTM и flashBACGOLDTM (Oxford Expression Technologies Ltd) для повышения экспрессии рекомбинантных белков путем делеции определенных вирусных генов (например, chiA и v-cath) в геноме бакуловируса (например, см. Hitchman RB, Possee RD, King LA. Recent Pat Biotechnol 2009;3:46-54). Кроме того, система MultiBacTM (Geneva Biotech) позволяет быстрое и универсальное конструирование бакуловируса с множеством экспрессирующих кассет для генов путем встраивания эндонуклеазы и перестановки Cre-loxP. Напротив, система SweetBacTM на основе MultiBac разработана для решения проблем гликозилирования в клетках насекомых и экспрессии белков, преобразованных в белки млекопитающих (например, см. Palmberger D, Klausberger M, Berger I, et al. Bioengineered 2013;4:78-83).
Также изобретение обеспечило токсин RTX Actinobacillus pleuropneumoniae, рекомбинантно экспрессируемый бакуловирусом для применения в способе защиты свиней от инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae путем введения животному вакцины, содержащей токсин RTX и фармацевтически приемлемый носитель.
Далее, изобретение позволяет использовать токсин RTX Actinobacillus pleuropneumoniae, рекомбинантно экспрессируемый бакуловирусом, для получения вакцины для защиты свиньи от инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae, путем смешения токсина RTX с фармацевтически приемлемым носителем, и способа защиты свиньи против инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae, путем введения вакцины, содержащей токсин RTX Actinobacillus pleuropneumoniae, рекомбинантно экспрессируемый бакуловирусом, и фармацевтически приемлемый носитель, свинье.
ОПРЕДЕЛЕНИЯ
Вакцина представляет собой фармацевтическую композицию, которая является безопасной для введения рассматриваемому животному и способна индуцировать защитный иммунитет у этого животного против патогенного микроорганизма, т.е. индуцировать успешную защиту против инфицирования микроорганизмом. Как правило, вакцину можно составлять с использованием известных в данной области способов, которые в основном включают смешение одного или нескольких антигенов (живых или инактивированных, цельноклеточных, экстракта, очищенной фракции или субъединицы) с фармацевтически приемлемым носителем, например, жидким носителем, таким как (необязательно забуференная) вода или твердый носитель, такой как обычно используют для получения лиофилизированных вакцин. Необязательно добавляют другие вещества, такие как адъюванты, стабилизаторы, модификаторы вязкости или другие компоненты в зависимости от предполагаемого применения или требуемых свойств вакцины.
Фармацевтически приемлемый носитель представляет собой биологически совместимую среду, а именно, среду, которая после введения не индуцирует значительных неблагоприятных реакций у рассматриваемого животного и способна презентировать антиген иммунной системе животного-хозяина после введения вакцины. Такой фармацевтически приемлемый носитель может представлять собой, например, жидкость, содержащую воду, и/или любой другой биологический совместимый растворитель или твердый носитель, такой как носители, обычно используемые для получения лиофилизированных вакцин (на основе сахаров и/или белков), необязательно содержащий иммуностимулирующие вещества (адъюванты). Необязательно добавляют другие вещества, такие как стабилизаторы, модификаторы вязкости или другие компоненты, в зависимости от предполагаемого применения или требуемых свойств соответствующей вакцины.
Защита против инфекции микроорганизмом представляет собой способствование предупреждению, смягчению или излучению инфекции этим микроорганизмом или нарушения, возникающего в результате этой инфекции, например, предупреждению или снижению одного или нескольких клинических признаков в результате инфицирования патогеном.
Системное введение вакцины означает, что вакцина достигает кровеносной системы организма, т.е. системы, включающей сердечно-сосудистую и лимфатическую систему, таким образом, влияя на организм в целом вместо конкретного места, такого как желудочно-кишечный тракт. Системное введение можно проводить, например, посредством введения вакцины в мышечную ткань (внутримышечное), в дерму (интрадермальное), под кожу (подкожное), под определенную слизистую оболочку (подслизистое), в вены (внутривенное) и т.д.
Токсины RTX Actinobacillus pleurpneumoniae (токсины Apx) представляют собой белковые токсины, продуцируемые Actinobacillus pleurpneumoniae, которые вносят значительный вклад в патогенез плевропневмонии свиней. ApxI (приблизительно 105 кДа) является в высокой степени гемолитическим и цитотоксическим для лейкоцитов, и кодируется геном apxIA (1023 кодона), который является частью оперона apxI-CABD. ApxII (приблизительно 105 кДа) является слабо гемолитическим и умеренно цитотоксическим. Оперон apxII содержит структурный ген apxIIA (956 кодонов) и ген apxIIC. ApxIII (приблизительно 120 кДа), кодируемый геном apxIIIA (1052 кодона), является не гемолитическим, но в высокой степени цитотоксическим в отношении легочных макрофагов свиней. ApxIV кодируется геном apxIVA, длина которого варьируется от приблизительно 1382 до приблизительно 1805 в различных серотипах. ApxIV обладает значительным сходством последовательности с регулируемыми железом белками RTX Neisseria meningitidis, FrpA и FrpC. Как широко известно, рекомбинантная экспрессия токсина RTX APP может обеспечивать белок, который представляет собой только часть встречающегося в природе токсина Appx (без частей, которые не являются необходимыми для достижения достаточного иммунного ответа) и имеет идентичность последовательность в перекрывающейся области, которая составляет менее 100% с встречающимся в природе токсином, предпочтительно имеет идентичность более 70, 75, 80, 81, 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99 вплоть до 100% с любым из встречающихся в природе ApxI, ApxII, ApxIII или ApxIV. Идентичность последовательностей можно определять с использованием программы BLAST с помощью алгоритма blastp с параметрами по умолчанию. Как правило, иммуногенная фракция Apx имеет длину по меньшей мере приблизительно 35% от полноразмерного белка (см. Infection and Immunity, Vol. 70, No. 11, Nov. 2002, p 6464-6467), например, 35, 40, 45, 50, 55, 60, 65, 70, 75, 80, 85, 90, 95 вплоть до 100%, однако было показано, что даже фракции меньше 35% являются потенциально эффективными в качестве иммуногенов (см. Vaccine, 17 (1999), 441-447).
ВАРИАНТЫ ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ ИЗОБРЕТЕНИЯ
В первом варианте осуществления вакцина содержит токсин RTX ApxI. ApxI продуцируется многими сероварами APP и, таким образом, посредством наличия только этого токсина в вакцине может быть достигнута широкая защита.
В другом варианте осуществления вакцину вводят системно, например, посредством внутримышечного или внутрикожного введения.
Изобретение далее объяснено с использованием следующих неограничивающих примеров.
ПРИМЕРЫ
Пример 1: Рекомбинантная экспрессия ApxI
Конструирование вектора для переноса pFastbac-ApxIA
Ген rApxIA синтезировали на основе аминокислотной последовательности ApxIA Actinobacillus pleuropneumoniae штамма 4074, номер доступа Swiss prot: P55128. Ген подвергали оптимизации кодонов для использования вместо полиэдрина бакуловируса и включали последовательность Козак (TATAAAT) и 3’-гексагистидиновую метку. Ген rApxIA-His клонировали после промотора полиэдрина плазмиды pFastbac1 (Life Technologies, Carlsbad, США) в качестве фрагмента BamHI с получением плазмиды pFastbac-ApxIA TAT.
Получение рекомбинантного бакуловируса BacdCCApxIA-TAT
Рекомбинантный бакуловирус получали с использованием плазмиды, как описано в настоящем описании выше, в системе Bac to Bac (Life Technologies, Carlsbad, США) в соответствии с протоколом изготовителя. Клетки E. coli, использованные для трансформации, содержали родительский бакуловирус с делецией генов хитиназы и v-катепсина (Kaba SA, Salcedo AM, Wafula PO, Vlak JM, van Oers MM. J Virol Methods. 2004 Dec 1;122(1):113-8.). Бактерии E.coli выращивали в среде без животных компонентов (ACF).
ДНК BacdCCApxIA-TAT выделяли из E.coli и использовали для трансфекции в клетки Spodoptera frugiperda (Sf)9-900. Клетки Sf9-900 выращивали в среде, свободной от животных компонентов. Экспрессию белка ApxIA 110 кДа подтверждали с использованием гелей SDS-PAGE, вестерн-блоттинга и иммунофлуоресцентного анализа с использованием моноклонального антитела против гистидиновой метки. Супернатанты после трансфекции один раз амплифицировали и полученную исходную вирусную культуру использовали для всех дальнейших вирусных культур.
Очистка продуцированного бакуловирусом ApxIA с использованием His-метки
Клетками Sf9-900 инфицировали бакуловирус BacdCCApxIA-TAT с множественностью инфекции 0,1, а затем проводили культивирование в течение от 4 до 5 суток при 27,5°C. Из этих клеток очищали белок rApxIA-His с использованием системы для очистки белка AKTA Avant (GE Healthcare Life Sciences, Cleveland, США) с использованием колонки HIStrap FF. Получали лизаты из клеток насекомых, инфицированных BacdCCApxIA-TAT, с использованием лизирующего буфера Triton X114 (0,15 M NaCl, 10 мМ Tris-HCl pH8, 2,5 мМ CaCl2, 1 мМ DTT, 1% triton X114). После центрифугирования осадок ресуспендировали в промывочном буфере (50 мМ Tris pH=8, 300 мМ NaCl, 6 M мочевина, 2,5 мМ CaCl2, 1 мМ DTT) и фильтровали с использованием 0,45-мкм фильтра перед внесением в AKTA Avant. После уравновешивания колонки денатурирующим промывочным буфером образец два раза вносили в колонку со скоростью 3 мл/мин. Белок, связавшийся с колонкой, ренатурировали с использованием окислительно-восстановительного буфера (50 мМ Tris pH=8, 300 мМ NaCl, 2,5 мМ CaCl2, 0,1% окисленный глутатион, 0,01% восстановленный глутатион, 1 мМ DTT) и элюировали из колонки посредством линейного градиента имидазола с использованием элюирующего буфера (50 мМ Tis pH=8, 300 мМ NaCl, 2,5 мМ CaCl2, 1 мМ DTT, 500 мМ имидазол). Очищенный белок ApxI подвергали диализу против буфера для диализа (50 мМ Tris pH=8, 300 мМ NaCl, 2,5 мМ CaCl2) с использованием кассет Slide-A-Lyzer Dialysis Cassettes (Thermo Scientific, Waltham, США) с несколькими заменами буфера.
Пример 2: Эффективность вакцины
Вакцинный состав
Для исследования получали две различных вакцины. Первая вакцина содержала очищенный экспрессированный бакуловирусом ApxI, полученный способом, описанным в примере 1. Вторая вакцина для применения в качестве положительного контроля была сравнима с коммерчески доступной вакциной Porcilis® APP, содержащей ApxI и ApxII, очищенные из культурального супернатанта A. pleuropneumoniae (и, таким образом, в комплексе с LPS), также обозначаемые как "нативные ApxI+ApxII". Исследуемая вакцина отличалась от коммерчески доступной вакцины Porcilis® APP тем, что она не содержала токсин ApxIII. Однако для нагрузки полевым изолятом серотипа 10 это не имеет значения (серотип 10 не продуцирует ApxIII). Антигены смешивали с адъювантом, содержавшим минеральное масло (XSolve, доступный от MSD Animal Health, Boxmeer, Нидерланды) в конечной концентрации 25 мкг/мл для каждого антигена.
Протокол вакцинации
Использовали три группы по восемь поросят из стада, свободного от A. pleuropneumoniae. Эти две вакцины вводили внутримышечно в качестве дозы 2 мл в возрасте пять и девять недель. Остальным восьми поросятам инъецировали PBS, и их использовали в качестве невакцинированной группы отрицательного контроля. Проводили взятие образцов крови с регулярными интервалами для серологии.
Нагрузка путем инфицирования A. pleuropneumoniae серотипа 10
В возрасте приблизительно 12 недель всем 24 поросятам давали нагрузку путем инфицирования.
Заражение проводили посредством полевого изолята серотипа 10 (штамм HV211) A. pleuropneumoniae. Заражающую культуру получали непосредственно перед заражением. Поросят заражали A. pleuropneumoniae через аэрозоль. Аэрозоль вводили посредством небулайзера Devilbis Nebulizer (общее количество 30 мл). Заражающую дозу определяли путем подсчета бляшек, и было обнаружено, что суспензия содержала 7,0×108 б.о.е./мл.
После заражения оценивали респираторное заболевание и другие аномалии в течение периода, составляющего семь суток, после чего выживших животных умерщвляли, и проводили их вскрытие.
Использованная оценочная система была следующей:
0= нормальный
1= дрожание
2= подавленность
3= увеличенная частота дыхания
4= рвота
5= диарея
6= кашель
7= брюшное дыхание
8= диспноэ
Для соответствия гуманному обращению с животными, животных, которых считали умирающими, умерщвляли.
Свиней, которые погибли или которых умертвили исследовали в отношении типичных очагов Actinobacillus pleuropneumoniae, степень которых на долю легкого оценивали по шкале 0-5 (максимальный показатель на животное: 35). Также легкие выживших животных оценивали на седьмые сутки после заражения.
Результаты
Все свиньи были серологически негативными в начале эксперимента и во время заражения происходила сероконверсия вакцинированных животных по ApxI, при определении посредством ELISA с нативным ApxI в качестве наносимого антигена. Основные титры антител составляли log2 12,9±1,6 и 13,1±1,1 для групп Baculo-ApxI и нативных ApxI+ApxII, соответственно. В таблице 1 представлено обобщение результатов заражения и в таблице 2 представлены клинические аномалии, наблюдаемые для отдельных свиней.
Таблица 1 Защита поросят
Вакцина Смертность
[n/ntot]
Средний показатель очагов повреждения легкого
Baculo-ApxI 2/8* 1,5 ± 3,1*
Нативные ApxI+ApxII 1/8* 0,4 ± 1,1*
PBS 8/8 20,3 ± 5,7
*: значимо отличались от контролей (p<0,05,точный критерий Фишера для уровня смертности и U-критерий Манна-Уитни для показателей очагов повреждения)
Таблица 2 Клинические аномалии на группу
Baculo-ApxI Нативные ApxI+ApxII PBS
свинья Аномалия1 День смерти2 Аномалия1 День смерти2 Аномалия1 День смерти2
1 2 - 2 - 2,3,7,8 1
2 2,7 3 2,3,7 1 2,3,7,8 1
3 0 - 0 - 2,3,7,8 1
4 2,5 - 0 - 2,3,7,8 1
5 0 - 0 - 2,3,7,8 1
6 2,3,7 3 0 - 2,3,7,8 1
7 0 - 2,7 - 2,3,7,8 1
8 0 - 0 - 2,3,7,8 1
1 Наблюдаемые клинические аномалии (оцененные как описано для нагрузки путем инфицирования)
2 Умершие/умерщвленные на указанные сутки после заражения
Наблюдали значительное уменьшение клинических признаков, смертности и повреждения легких для обеих вакцинированных групп. Различие между двумя группами вакцин не были статистически значимыми. Таким образом, можно сделать заключение, что вакцина, содержащая токсин RTX, рекомбинантно экспрессируемый бакуловирусом, обеспечивает защиту, сходную с защитой, обеспечиваемой коммерческой вакциной Porcilis® APP.

Claims (6)

1. Вакцина для защиты свиньи против инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae, содержащая токсин RTX Actinobacillus pleuropneumoniae, рекомбинантно экспрессируемый бакуловирусом, адъювант и фармацевтически приемлемый носитель, причем токсин RTX представляет собой ApxI.
2. Применение токсина RTX Actinobacillus pleuropneumoniae, рекомбинантно экспрессируемого бакуловирусом, в способе защиты свиньи от инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae путем введения животному вакцины, содержащей токсин RTX, адъювант и фармацевтически приемлемый носитель, причем токсин RTX представляет собой ApxI.
3. Применение по п.2, отличающееся тем, что вакцину вводят системно.
4. Применение по п.3, отличающееся тем, что вакцину вводят либо внутримышечно, либо интрадермальным путем.
5. Применение токсина RTX Actinobacillus pleuropneumoniae, рекомбинантно экспрессируемого бакуловирусом, для получения вакцины для защиты свиньи от инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae, путем смешения токсина RTX с адъювантом и фармацевтически приемлемым носителем, причем токсин RTX представляет собой ApxI.
6. Способ защиты свиньи от инфекции Actinobacillus pleuropneumoniae путем введения свинье вакцины, содержащей токсин RTX Actinobacillus pleuropneumoniae, рекомбинантно экспрессируемый бакуловирусом, адъювант и фармацевтически приемлемый носитель, причем токсин RTX представляет собой ApxI.
RU2020123741A 2017-12-20 2018-12-19 Вакцина для защиты свиней от actinobacillus pleuropneumoniae RU2750894C1 (ru)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP17209021 2017-12-20
EP17209021.9 2017-12-20
PCT/EP2018/085752 WO2019121861A1 (en) 2017-12-20 2018-12-19 A vaccine to protect a pig against actinobacillus pleuropneumoniae

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2750894C1 true RU2750894C1 (ru) 2021-07-05

Family

ID=60702397

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020123741A RU2750894C1 (ru) 2017-12-20 2018-12-19 Вакцина для защиты свиней от actinobacillus pleuropneumoniae

Country Status (7)

Country Link
US (2) US20210077610A1 (ru)
EP (1) EP3727439A1 (ru)
JP (1) JP2021506833A (ru)
CN (1) CN111511393A (ru)
BR (1) BR112020012137A2 (ru)
RU (1) RU2750894C1 (ru)
WO (1) WO2019121861A1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2824493C1 (ru) * 2023-12-18 2024-08-08 Общество с ограниченной ответственностью "Центр биотехнологической обработки продуктов питания при институте микроэкологии" (ООО "ЦБО Микроэкологии") Штамм бактерии Actinobacillus pleuropneumoniae 8 серотипа, предназначенный для получения моно- и поливалентных иммуногенных композиций, направленных на специфическую профилактику актинобациллезной плевропневмонии свиней

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114057892B (zh) * 2021-11-04 2023-02-10 长沙爱科博生物科技有限公司 胸膜肺炎放线杆菌融合蛋白及其编码基因和应用

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0595188A2 (en) * 1992-10-27 1994-05-04 Nippon Zenyaku Kogyo Co. Ltd. Process for producing vaccine for a bacterial toxin belonging to the RTX toxin family
WO2011015614A1 (en) * 2009-08-06 2011-02-10 Intervet International B.V. A vaccine directed against porcine pleuropneumonia and a method to obtain such a vaccine
WO2016093157A1 (ja) * 2014-12-08 2016-06-16 エヌエーアイ株式会社 新規アジュバント

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AUPN631495A0 (en) * 1995-11-02 1995-11-23 Commonwealth Scientific And Industrial Research Organisation Vaccine and biological vector(I)
EP0810283A3 (en) * 1996-05-31 1997-12-10 Akzo Nobel N.V. Live attenuated RTX-procucing bacteria of the family Pasteurellaceae
US6783764B1 (en) * 1997-04-10 2004-08-31 Akzo Nobel Nv Actinobacillus pleuropneumoniae subunit vaccine

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0595188A2 (en) * 1992-10-27 1994-05-04 Nippon Zenyaku Kogyo Co. Ltd. Process for producing vaccine for a bacterial toxin belonging to the RTX toxin family
WO2011015614A1 (en) * 2009-08-06 2011-02-10 Intervet International B.V. A vaccine directed against porcine pleuropneumonia and a method to obtain such a vaccine
WO2016093157A1 (ja) * 2014-12-08 2016-06-16 エヌエーアイ株式会社 新規アジュバント

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
AHRENS U. Et al. Efficacy of the classical swine fever (CSF) marker vaccine Porcilis Pesti in pregnant sows. Vet Microbiol 2000 Nov; 77 (1-2): abstract. *
AHRENS U. Et al. Efficacy of the classical swine fever (CSF) marker vaccine Porcilis Pesti in pregnant sows. Vet Microbiol 2000 Nov; 77 (1-2): abstract. CHUNLAI WANG et al. Positive role for rApxIVN in the immune protection of pigs against infection by Actinobacillus pleuropneumoniae. Vaccine, 27, (2009): 5816-5821. MAHENDRASINGH RAMJEET et al. Mutation in the LPS outer core biosynthesis gene, galU, affects LPS interaction with the RTX toxins ApxI and ApxII and cytolytic activity of Actinobacillus pleuropneumoniae serotype 1. Mol Microbiol 2008 Oct 18; 70 (1): 221-35. *
CHUNLAI WANG et al. Positive role for rApxIVN in the immune protection of pigs against infection by Actinobacillus pleuropneumoniae. Vaccine, 27, (2009): 5816-5821. *
MAHENDRASINGH RAMJEET et al. Mutation in the LPS outer core biosynthesis gene, galU, affects LPS interaction with the RTX toxins ApxI and ApxII and cytolytic activity of Actinobacillus pleuropneumoniae serotype 1. Mol Microbiol 2008 Oct 18; 70 (1): 221-35. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2824493C1 (ru) * 2023-12-18 2024-08-08 Общество с ограниченной ответственностью "Центр биотехнологической обработки продуктов питания при институте микроэкологии" (ООО "ЦБО Микроэкологии") Штамм бактерии Actinobacillus pleuropneumoniae 8 серотипа, предназначенный для получения моно- и поливалентных иммуногенных композиций, направленных на специфическую профилактику актинобациллезной плевропневмонии свиней
RU2827226C1 (ru) * 2023-12-19 2024-09-23 Общество с ограниченной ответственностью "Центр биотехнологической обработки продуктов питания при институте микроэкологии" (ООО "ЦБО Микроэкологии") Штамм бактерий Actinobacillus pleuropneumoniae 2 серотипа, предназначенный для получения моно- и поливалентных иммуногенных композиций, направленных на специфическую профилактику актинобациллезной плевропневмонии свиней

Also Published As

Publication number Publication date
CN111511393A (zh) 2020-08-07
WO2019121861A1 (en) 2019-06-27
EP3727439A1 (en) 2020-10-28
US20220233675A1 (en) 2022-07-28
JP2021506833A (ja) 2021-02-22
US20210077610A1 (en) 2021-03-18
BR112020012137A2 (pt) 2020-11-24

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10653763B2 (en) Subunit immersion vaccines for fish
JP2024059815A (ja) ブタサーコウイルス3型免疫原性組成物、その製造方法、およびその使用方法
KR101808903B1 (ko) Pcv/마이코플라즈마 하이요뉴모니아/prrs 조합 백신
EP2992897B1 (en) Immunogenic compositions comprising lawsonia intercellularis
KR101818901B1 (ko) 돼지흉막폐렴균의 재조합 ApxIA, ApxIIA, ApxIIIA toxin의 N 또는 C 말단 분자 및 불활화 돼지흉막폐렴균을 이용한 돼지 흉막폐렴 백신 조성물
JP2022519204A (ja) 不活性化apxia、apxiiaおよびapxiiia毒素
US7201912B2 (en) Recombinant immunogenic compositions and methods for protecting against lethal infections from Bacillus anthracis
US20170246286A1 (en) Attenuated Mannheimia haemolytica Vaccines and Methods of Making and Use
RU2750894C1 (ru) Вакцина для защиты свиней от actinobacillus pleuropneumoniae
JP2011239780A (ja) フォトバクテリウム・ダムセラの蛋白質およびその使用
CN109195624B (zh) Hev疫苗
JP2023517684A (ja) ストレプトコッカス・スイス血清型9、配列型16に対する防御のためのワクチン
JP2721218B2 (ja) ブタ赤痢ワクチン
KR102336245B1 (ko) 돼지 흉막폐렴균 사균체를 포함한 돼지 흉막폐렴 백신 조성물
RU2775916C2 (ru) Вакцина для защиты от streptococcus suis
JP7349366B2 (ja) クロストリジウム類毒素を含むワクチン
JP2023543033A (ja) 弱毒化ブタ流行性下痢ウイルス
CN112891524A (zh) 猪肺炎支原体病亚单位疫苗组合物及其制备方法和应用
KR20220133632A (ko) Pedv 스파이크 단백질 s1 유래 단백질 및 페리틴 유래 단백질을 포함하는 재조합 단백질 및 이의 용도
KR20220056701A (ko) 재조합 Apx IA-C-terminal, Apx IIA-C-terminal, Apx IIIA-C-terminal 및 Apx IVA-N-terminal 톡소이드를 포함하는 돼지 흉막 폐렴 백신 조성물
JP2024527138A (ja) 様々な血清型のストレプトコッカス・スイスに対して保護するためのワクチン
Yu et al. Roles of Glyceraldehyde-3-Phosphate Dehydrogenase in Edwardsiella tarda Pathogenesis
BRPI1003753A2 (pt) composiÇÕes imunogÊnicas sinÉrgicas baseadas em antÍgenos protÉicos combinados com antÍgeno celular pertussis e toxinas inativadas