RU2699991C1 - Substrate for culturing xylotrophic basidiomycetes and a method for production thereof using methods of chemical modification of lignocellulose material - Google Patents
Substrate for culturing xylotrophic basidiomycetes and a method for production thereof using methods of chemical modification of lignocellulose material Download PDFInfo
- Publication number
- RU2699991C1 RU2699991C1 RU2018139959A RU2018139959A RU2699991C1 RU 2699991 C1 RU2699991 C1 RU 2699991C1 RU 2018139959 A RU2018139959 A RU 2018139959A RU 2018139959 A RU2018139959 A RU 2018139959A RU 2699991 C1 RU2699991 C1 RU 2699991C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- raw materials
- basidiomycetes
- substrate
- concentration
- xylotrophic
- Prior art date
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01G—HORTICULTURE; CULTIVATION OF VEGETABLES, FLOWERS, RICE, FRUIT, VINES, HOPS OR SEAWEED; FORESTRY; WATERING
- A01G18/00—Cultivation of mushrooms
- A01G18/20—Culture media, e.g. compost
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Mycology (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Mushroom Cultivation (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии. Изобретение может быть использовано для получения плодовых тел съедобных, лекарственно-съедобных и лекарственных грибов, а также для производства субстрата для получения плодовых тел съедобных, лекарственно-съедобных и лекарственных грибов.The invention relates to biotechnology. The invention can be used to obtain fruiting bodies of edible, medicinal-edible and medicinal mushrooms, as well as to produce a substrate for producing fruiting bodies of edible, medicinal-edible and medicinal mushrooms.
Известен субстрат (патент РФ №2436283) для выращивания плодовых тел грибов состоящий из березовых опилок 96%, гипса 1% и мела 3%. Недостатком данного субстрата является использование в качестве основы только березовых опилок, т.к. это сильно ограничивает сырьевую базу производства. К тому же в описании изобретения отсутствует источник азота и урожайность плодовых тел будет сильно зависеть от времени заготовки и свежести опила.Known substrate (RF patent No. 2436283) for growing fruit bodies of mushrooms consisting of birch sawdust 96%, gypsum 1% and chalk 3%. The disadvantage of this substrate is the use of only birch sawdust as a basis, because This greatly limits the raw material base of production. In addition, in the description of the invention there is no source of nitrogen and the yield of fruiting bodies will greatly depend on the time of harvesting and freshness of the sawdust.
Известен субстрат для получения плодовых тел Ganoderma lucidum состоящий из гидролизованной разбавленной соляной кислотой ржаной соломы - 55%; дубовых опилок - 25%; ржаных отрубей - 10%; кукурузной муки - 8%; мела химически осажденного - 1%; гипса природного - 1% описанный в патенте РФ №2453105. Указанный субстрат готовят путем предварительного гидролиза ржаной соломы 0,5-1% раствором соляной кислоты, а затем смешивания гидролизованной ржаной соломы, дубовых опилок с питательными веществами - отрубями ржаными, кукурузной мукой, мелом химически осажденным, гипсом природным. Недостатком данного метода является длительность процесса кислотного гидролиза (2 ч), а также использование ценного сырья - дубовых опилок, которые находят свое применение для получения композитных строительных материалов, копчения деликатесных пищевых продуктов и др. К тому же, кислотный гидролиз, описанный в патенте РФ №2453105 приводит к увеличению доли свободных моно- и олигосахаров, что приводит к высокому риску контаминации плесневыми грибами, дрожжами и бактериями.A known substrate for producing fruiting bodies of Ganoderma lucidum consisting of hydrolyzed diluted hydrochloric acid rye straw - 55%; oak sawdust - 25%; rye bran - 10%; cornmeal - 8%; chemically precipitated chalk - 1%; natural gypsum - 1% described in the patent of the Russian Federation No. 2453105. The specified substrate is prepared by preliminary hydrolysis of rye straw with a 0.5-1% hydrochloric acid solution, and then mixing hydrolyzed rye straw, oak sawdust with nutrients - rye bran, corn flour, chemically precipitated chalk, natural gypsum. The disadvantage of this method is the duration of the acid hydrolysis process (2 hours), as well as the use of valuable raw materials - oak sawdust, which are used to produce composite building materials, smoked gourmet foods, etc. In addition, the acid hydrolysis described in the RF patent No. 2453105 leads to an increase in the proportion of free mono- and oligosugars, which leads to a high risk of contamination by mold, yeast and bacteria.
Наиболее близким к заявленному изобретению является способ получения субстрата (патент РФ 2140145 С1) для выращивания съедобных грибов, включающий измельчение растительного сырья, увлажнение его и стерилизацию, отличающийся тем, что увлажнение сырья осуществляют раствором уксусной кислоты для одновременного осуществления гидролиза сырья, где в качестве растительного сырья используют смесь соломы злаковых культур и отходы хвойных пород в количестве, соответственно равном 35-60 и 40-65 мас. %, а концентрация уксусной кислоты 1,5-2%.Closest to the claimed invention is a method of obtaining a substrate (RF patent 2140145 C1) for growing edible mushrooms, including grinding vegetable raw materials, moistening them and sterilizing, characterized in that the raw materials are moistened with a solution of acetic acid to simultaneously hydrolyze the raw materials, where as vegetable raw materials use a mixture of cereal straw and coniferous waste in an amount respectively 35-60 and 40-65 wt. %, and the concentration of acetic acid is 1.5-2%.
Недостатком такого метода является повышенное содержание свободных Сахаров, которые образуются в процессе частичного гидролиза растительного сырья, что приводит к значительному повышению риска контаминации.The disadvantage of this method is the high content of free Sugars that are formed during the partial hydrolysis of plant materials, which leads to a significant increase in the risk of contamination.
Заявляемый способ получения субстратов для культивирования ксилотрофных базидиомицетов с использованием методов кислотной модификации лигноцеллюлозного сырья и субстраты, полученные предлагаемым способом, включает этап модификации лигноцеллюлозных отходов сельского хозяйства и лесопереработки кислотами. Для этого в кислотоустойчивые емкости, футерованных фторопластом, загружают лигноцеллюлозное сырье (моно- или многокомпонентное) и добавляют раствор кислот в концентрации 0,5-5%. Предобработку осуществляют при температуре 80-135°C, соотношении сырья к раствору кислоты от 1:2 до 1:8 и длительности процесса 0,5-1 ч. После завершения процесса полученную пульпу промывают 1-4 объемами воды для удаления сахаров и смолистых веществ, а также остатков непрореагировавшей кислоты. Далее вносят дополнительный источник азота, а также мел и известь. Кислотная предобработка снижает количество Сахаров в субстрате, увеличивает содержание лигнина, делая такой субстрат селективным для ксилотрофных грибов «белой гнили», в том числе съедобных, лекарственно-съедобных и лекарственных.The inventive method for producing substrates for the cultivation of xylotrophic basidiomycetes using methods of acid modification of lignocellulosic raw materials and substrates obtained by the proposed method includes the step of modifying lignocellulosic agricultural wastes and timber processing with acids. For this, lignocellulosic raw materials (mono- or multicomponent) are loaded into acid-resistant containers lined with fluoroplastic and acid solution is added in a concentration of 0.5-5%. Pretreatment is carried out at a temperature of 80-135 ° C, the ratio of raw materials to acid solution from 1: 2 to 1: 8 and the duration of the process is 0.5-1 hours. After completion of the process, the resulting pulp is washed with 1-4 volumes of water to remove sugars and tar as well as residues of unreacted acid. Next, an additional source of nitrogen is introduced, as well as chalk and lime. Acid pretreatment reduces the amount of sugars in the substrate, increases the lignin content, making such a substrate selective for “white rot” xylotrophic fungi, including edible, edible, and medicinal.
Для предобработки лигноцеллюлозного сырья можно использовать как органические, так и минеральные кислоты.For the pretreatment of lignocellulosic raw materials, both organic and mineral acids can be used.
Предлагаемый субстрат может содержать лигноцеллюлозное сырье из перечня, включающего отходы деревоперерабатывающей промышленности и сельского хозяйства, такие как опилки лиственных пород деревьев, опилки хвойных пород деревьев, кора, листья, хвоя, солома злаков, кукурузная кочерыжка, костра льна, рисовая шелуха и др. Настоящий перечень не ограничивает виды лигноцеллюлозного сырья, которые можно использовать в заявленном способе.The proposed substrate may contain lignocellulosic raw materials from the list including waste from the wood processing industry and agriculture, such as sawdust of deciduous trees, sawdust of conifers, bark, leaves, needles, cereal straw, corn cob, flax bonfire, rice husk, etc. the list does not limit the types of lignocellulosic raw materials that can be used in the claimed method.
Предлагаемый субстрат может содержать источник азота, выбранный из пшеничных, ржаных или овсяных отрубей, кукурузной, соевой или рыбной муки, разными по источнику получения жмыхами и жомами. Настоящий перечень не ограничивает виды источников азота, которые можно использовать в заявленном способе.The proposed substrate may contain a nitrogen source selected from wheat, rye or oat bran, corn, soy or fish flour, different in source for the production of meal and bagasse. This list does not limit the types of nitrogen sources that can be used in the claimed method.
Заявляемый способ предназначен для культивирования лекарственных и съедобных ксилотрофных грибов из перечня, включающего следующие виды: Agrocybe aegerita, Flammulina velutipes, Ganoderma lucidum, Grifola frondosa, Hericium erinaceus, Hypsizygus marmoreus, H. ulmarius, Lentinus edodes, Pholiota nameko, Pleurotus citrinopileatus, P. eringii, P. djamor, P. ostreatus, P. pulmonarius, P. sajor-caju, Trametes versicolor. Настоящий перечень не ограничивает виды ксилотрофных грибов, которые можно использовать в заявленном способе.The inventive method is intended for the cultivation of medicinal and edible xylotrophic fungi from a list that includes the following species: Agrocybe aegerita, Flammulina velutipes, Ganoderma lucidum, Grifola frondosa, Hericium erinaceus, Hypsizygus marmoreus, H. ulmarius, Lentinususo citrin, eringii, P. djamor, P. ostreatus, P. pulmonarius, P. sajor-caju, Trametes versicolor. This list does not limit the types of xylotrophic fungi that can be used in the claimed method.
Пример 1Example 1
Предобработку производили в стерилизующем автоклаве. Для этого в хемостойкие емкости загружали лигноцеллюлозное сырье, смачивали советующим раствором минеральной или органической кислоты согласно таблице 1 и нагревали до соответствующей температуры в течении 1 часа. Содержание целлюлозы, гемицеллюлоз и лигнина определяли методами, описанными в NREL LAB-002, LAB-003.Pretreatment was carried out in a sterilizing autoclave. To do this, lignocellulosic raw materials were loaded into chemically resistant containers, moistened with a counseling solution of mineral or organic acid according to Table 1, and heated to the appropriate temperature for 1 hour. The content of cellulose, hemicelluloses and lignin was determined by the methods described in NREL LAB-002, LAB-003.
Проведение кислотной предобработки способствовало удалению легкогидролизуемых полисахаридов (гемицеллюлоз и аморфную часть целлюлозы), частично разрушило межмолекулярные связи между молекулами лигнина и целлюлозы.Carrying out the acid pretreatment helped to remove the easily hydrolyzable polysaccharides (hemicelluloses and the amorphous part of cellulose), partially destroyed the intermolecular bonds between the lignin and cellulose molecules.
Пример 2Example 2
Скорость освоения модифицированных субстратов определяли следующим методом: в чашки Петри помещали смесь лигноцеллюлозного субстрата, отрубей пшеницы и мела взятых в соотношении 7,8:2:0,2, увлажняли до 80% водой и стерилизовали. Засев культурой гриба проводили с использованием агаровых блоков с культурой гриба размером 2*2*2 мм. Размер колонии гриба измеряли на 8 сутки.The rate of development of modified substrates was determined by the following method: a mixture of lignocellulosic substrate, wheat bran and chalk taken in the ratio of 7.8: 2: 0.2 was placed in Petri dishes, moistened with 80% water and sterilized. Inoculation with a fungal culture was carried out using agar blocks with a fungal culture of 2 * 2 * 2 mm in size. The size of the fungal colony was measured on day 8.
Кислотная модификация лигноцеллюлозного сырья привела к увеличению скорости роста ксилотрофных базидиомицетов на 20-50%, что позволило существенно сократить время освоения блоков грибом при культивировании. Увеличение скорости роста не только сокращает врем технологических циклов, но и снижает вероятность контаминации другими микроорганизмами - конкурентов за субстрат.Acid modification of lignocellulosic raw materials led to an increase in the growth rate of xylotrophic basidiomycetes by 20-50%, which significantly reduced the time for the development of blocks by the fungus during cultivation. An increase in the growth rate not only reduces the time of technological cycles, but also reduces the likelihood of contamination by other microorganisms - competitors for the substrate.
Пример 3Example 3
Получение субстратов для твердофазного культивирования.Obtaining substrates for solid-phase cultivation.
Субстрат 1. Хвойные и лиственные опилки в соотношении 2:1 помещали в хемостойкие емкости и смешивали с раствором соляной кислоты с концентрацией 1,5% в соотношении 1:2 и помещали в автоклав. Время обработки 0,5 час, температура 135°C. Сырье охлаждали до комнатной температуры, переносили на фильтр и промывали однократно водой и давали стечь избытку влаги. В полученную основу вносили 15% масс. отрубей пшеницы, 2% мела и тщательно перемешивали. Полученный субстрат расфасовывали по мешкам из полипропилена с вклеенными фильтрами и пастеризовали.Substrate 1. Coniferous and deciduous sawdust in a ratio of 2: 1 was placed in chemically resistant containers and mixed with a solution of hydrochloric acid with a concentration of 1.5% in a ratio of 1: 2 and placed in an autoclave. Processing time 0.5 hours, temperature 135 ° C. The feed was cooled to room temperature, transferred to a filter and washed once with water and allowed to drain excess moisture. In the resulting base was made 15% of the mass. wheat bran, 2% chalk and thoroughly mixed. The resulting substrate was packaged in polypropylene bags with glued filters and pasteurized.
Субстрат 2. Кора деревьев и солома пшеницы в соотношении 1:4 помещали в хемостойкие емкости и смешивали с раствором серной кислоты концентрацией 2% в соотношении 1:3 и помещали в автоклав. Время обработки 1 час, температура 121°C. Сырье охлаждали до комнатной температуры, переносили на фильтр и промывали однократно водой и давали стечь избытку влаги. В полученную основу вносили 10% масс, отрубей ржи, 2% мела и тщательно перемешивали. Полученный субстрат расфасовывали по мешкам из полипропилена с вклеенными фильтрами и пастеризовали.Substrate 2. Tree bark and wheat straw in a 1: 4 ratio were placed in chemically resistant containers and mixed with a 2% sulfuric acid solution in a 1: 3 ratio and placed in an autoclave. Processing time 1 hour, temperature 121 ° C. The feed was cooled to room temperature, transferred to a filter and washed once with water and allowed to drain excess moisture. 10% of the mass, rye bran, 2% of chalk were added to the resulting base and mixed thoroughly. The resulting substrate was packaged in polypropylene bags with glued filters and pasteurized.
Субстрат 3. Хвоя и костру льна в соотношении 1:8 помещали в хемостойкие емкости и смешивали с раствором фосфорной кислоты с концентрацией 2,5% в соотношении 1:4 и помещали в автоклав. Время обработки 1 час, температура 135°C. Сырье охлаждали до комнатной температуры, переносили на фильтр и промывали однократно водой и давали стечь избытку влаги. В полученную основу вносили 20% масс. кукурузной муки, 2% мела и тщательно перемешивали. Полученный субстрат расфасовывали по мешкам из полипропилена с вклеенными фильтрами и пастеризовали.Substrate 3. Needles and flax bonfire in a ratio of 1: 8 were placed in chemically resistant containers and mixed with a solution of phosphoric acid with a concentration of 2.5% in a ratio of 1: 4 and placed in an autoclave. Processing time 1 hour, temperature 135 ° C. The feed was cooled to room temperature, transferred to a filter and washed once with water and allowed to drain excess moisture. In the resulting base was made 20% of the mass. cornmeal, 2% chalk and thoroughly mixed. The resulting substrate was packaged in polypropylene bags with glued filters and pasteurized.
Субстрат 4. Кукурузную кочерыжку и хвойные опилки в соотношении 1:5 помещали в хемостойкие емкости и смешивали с раствором уксусной кислоты с концентрацией 5% соотношением 1:6 и помещали в автоклав. Время обработки 0,5 час, температура 110°C. Сырье охлаждали до комнатной температуры, переносили на фильтр и промывали однократно водой и давали стечь избытку влаги. В полученную основу вносили 10% масс, рыбной муки, 2% мела и тщательно перемешивали. Полученный субстрат расфасовывали по мешкам из полипропилена с вклеенными фильтрами и стерилизовали.Substrate 4. Corn cob and pine sawdust in a ratio of 1: 5 were placed in chemically resistant containers and mixed with a solution of acetic acid with a concentration of 5% in a ratio of 1: 6 and placed in an autoclave. Processing time 0.5 hours, temperature 110 ° C. The feed was cooled to room temperature, transferred to a filter and washed once with water and allowed to drain excess moisture. 10% of the mass of fish meal, 2% of chalk were mixed into the resulting base and mixed thoroughly. The resulting substrate was packaged in bags of polypropylene with glued filters and sterilized.
Субстрат 5. Костру льна и лиственные опилки в соотношении 1:6 помещали в хемостойкие емкости и смешивали с раствором соляной кислоты с концентрацией 2% в соотношении 1:8 и помещали в автоклав. Время обработки 0,5 час, температура 121°C. Сырье охлаждали до комнатной температуры, переносили на фильтр и промывали однократно водой и давали стечь избытку влаги. В полученную основу вносили 20% масс. жмыха подсолнечника, 2% мела и тщательно перемешивали. Полученный субстрат расфасовывали по мешкам из полипропилена с вклеенными фильтрами и стерилизовали.Substrate 5. Flax campfire and hardwood sawdust in a ratio of 1: 6 were placed in chemically resistant containers and mixed with a solution of hydrochloric acid with a concentration of 2% in a ratio of 1: 8 and placed in an autoclave. Processing time 0.5 hours, temperature 121 ° C. The feed was cooled to room temperature, transferred to a filter and washed once with water and allowed to drain excess moisture. In the resulting base was made 20% of the mass. sunflower meal, 2% chalk and thoroughly mixed. The resulting substrate was packaged in bags of polypropylene with glued filters and sterilized.
Субстрат 6. Солому пшеницы и кору деревьев в соотношении 4:1 помещали в хемостойкие емкости и смешивали с раствором соляной кислоты с концентрацией 1,5% в соотношении 1:8 и помещали в автоклав. Время обработки 1 час, температура 80°C. Сырье охлаждали до комнатной температуры, переносили на фильтр и промывали однократно водой и давали стечь избытку влаги. В полученную основу вносили 20% масс, свекловичного жома, 2% мела и тщательно перемешивали. Полученный субстрат расфасовывали по мешкам из полипропилена с вклеенными фильтрами и стерилизовали.Substrate 6. Wheat straw and tree bark in a ratio of 4: 1 were placed in chemically resistant containers and mixed with a solution of hydrochloric acid with a concentration of 1.5% in a ratio of 1: 8 and placed in an autoclave. Processing time 1 hour, temperature 80 ° C. The feed was cooled to room temperature, transferred to a filter and washed once with water and allowed to drain excess moisture. 20% of the mass, beet pulp, 2% of chalk were added to the obtained base, and thoroughly mixed. The resulting substrate was packaged in bags of polypropylene with glued filters and sterilized.
Пример 4Example 4
Культивирование P. ostreatus, G. lucidum, Н. erinaceus на субстратах, полученных по примеру 3. В качестве контроля выступал следующий субстрат: лиственные опилки 80%, 20% масс. отрубей пшеницы, 2% мела и тщательно перемешивали и смачивали водой до 80% влажности. Полученный субстрат расфасовывали по мешкам из полипропилена с вклеенными фильтрами и пастеризовали.The cultivation of P. ostreatus, G. lucidum, H. erinaceus on the substrates obtained according to example 3. The following substrate served as control: hardwood sawdust 80%, 20% of the mass. wheat bran, 2% chalk and thoroughly mixed and wetted with water to 80% humidity. The resulting substrate was packaged in polypropylene bags with glued filters and pasteurized.
Из результатов, приведенных в примерах, следует, что поставленная техническая задача решена - созданы селективные условия для развития съедобных и лекарственных ксилотрофных грибов «белой гнили» за счет повышения содержания лигнина в субстрате, что обеспечило увеличение скорости освоения субстрата, сокращение срока достижения плодовыми телами товарной зрелости и повышение урожайности.From the results given in the examples, it follows that the technical task has been solved - selective conditions have been created for the development of edible and medicinal xylotrophic mushrooms “white rot” by increasing the lignin content in the substrate, which increased the rate of substrate development, reducing the time for fruit bodies to reach marketable maturity and yield increase.
Claims (12)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2018139959A RU2699991C1 (en) | 2018-11-13 | 2018-11-13 | Substrate for culturing xylotrophic basidiomycetes and a method for production thereof using methods of chemical modification of lignocellulose material |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2018139959A RU2699991C1 (en) | 2018-11-13 | 2018-11-13 | Substrate for culturing xylotrophic basidiomycetes and a method for production thereof using methods of chemical modification of lignocellulose material |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2699991C1 true RU2699991C1 (en) | 2019-09-11 |
Family
ID=67989520
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2018139959A RU2699991C1 (en) | 2018-11-13 | 2018-11-13 | Substrate for culturing xylotrophic basidiomycetes and a method for production thereof using methods of chemical modification of lignocellulose material |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2699991C1 (en) |
Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2453105C2 (en) * | 2009-02-24 | 2012-06-20 | Федеральное государственное учреждение "Государственный научно-исследовательский институт промышленной экологии" | Substrate for growing terfas of ganoderma lucidum |
US20140173977A1 (en) * | 2011-08-01 | 2014-06-26 | Uab "Eko Invest" | Production method of the substrate for the growing of champignons and other cultivated mushrooms |
RU2655846C1 (en) * | 2017-03-30 | 2018-05-29 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Пензенский государственный аграрный университет" | Substrate for growing ganoderma lucidum fungal fruit bodies with high-yield spore production |
-
2018
- 2018-11-13 RU RU2018139959A patent/RU2699991C1/en active
Patent Citations (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2453105C2 (en) * | 2009-02-24 | 2012-06-20 | Федеральное государственное учреждение "Государственный научно-исследовательский институт промышленной экологии" | Substrate for growing terfas of ganoderma lucidum |
US20140173977A1 (en) * | 2011-08-01 | 2014-06-26 | Uab "Eko Invest" | Production method of the substrate for the growing of champignons and other cultivated mushrooms |
RU2655846C1 (en) * | 2017-03-30 | 2018-05-29 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Пензенский государственный аграрный университет" | Substrate for growing ganoderma lucidum fungal fruit bodies with high-yield spore production |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP2539141B2 (en) | Mushroom cultivation method and medium material | |
KR101284029B1 (en) | Raw Material Medium Composition for Culturing Mushroom Using Kiwi and the Mathod for Cultering Mushroom Using the Same | |
KR20100062085A (en) | Method for manufacturing mushroom mycelial grain products | |
WO2022195617A1 (en) | Process for producing a foam-like grown material using flower substrates | |
KR101018579B1 (en) | Mushroom culture medium irrediated by electron beam and preparation method thereof | |
CN110771432A (en) | Tremella aurantialba and eucalyptus wood chip cultivar and preparation method thereof | |
Nguyen et al. | Optimal culture conditions for mycelial growth and fruiting body formation of Ling Zhi mushroom Ganoderma lucidum strain GA3 | |
CN115191515A (en) | Preparation method of functional straw fermented feed | |
Landingin et al. | Optimization of culture conditions for mycelial growth and basidiocarp production of Cyclocybe cylindracea (Maire) | |
Klaus et al. | Cultivation strategies of edible and medicinal mushrooms | |
CN112673889A (en) | Method for cultivating edible fungi by using tea seed dregs | |
KR20110045866A (en) | Raw Material Medium Composition for Culturing Mushroom Using Cedar Sawdust and Mathod for Cultering Mushroom Using the Same | |
Khan et al. | Role of various supplementary materials with cotton waste substrate for production of Pleurotus ostreatus an oyster mushroom | |
RU2699991C1 (en) | Substrate for culturing xylotrophic basidiomycetes and a method for production thereof using methods of chemical modification of lignocellulose material | |
RU2655846C1 (en) | Substrate for growing ganoderma lucidum fungal fruit bodies with high-yield spore production | |
Abdullah et al. | Effect of different substrates and supplement with three types of Spawn on Letinula edodes parameters for first production in Iraq | |
Muslimin et al. | The effect of different substrates on oyster mushroom (Pleurotus ostreatus) spawn growth | |
CN106588187A (en) | Treatment method for waste fungus sticks of basswood tremella | |
Nghien et al. | Morphological characteristics, yield performance, and medicinal value of some lingzhi mushroom (Ganoderma lucidum) strains cultivated in Tam Dao, Vietnam | |
CN117551563A (en) | Composite fungus glycopeptide manufacturing process, liquid culture medium and preparation method of solid culture medium | |
CN109673381B (en) | Broad-spectrum edible fungus culture medium and culture method | |
CN113424747A (en) | Culture medium and industrial culture method for tremella | |
RU2092073C1 (en) | Method for producing protein feed from wood waste | |
CN105110947A (en) | Mushroom culture medium with modified mulberry wood chips and preparation method of mushroom culture medium | |
RU2763177C1 (en) | Method for processing dangered poplar leaves by balsamic method by bioconversion |