RU2663328C1 - Method of cultivation of diatomic alkaline chaetoceros calcitrans - food for larvae of giant oysters crassostrea gigas - Google Patents
Method of cultivation of diatomic alkaline chaetoceros calcitrans - food for larvae of giant oysters crassostrea gigas Download PDFInfo
- Publication number
- RU2663328C1 RU2663328C1 RU2017121508A RU2017121508A RU2663328C1 RU 2663328 C1 RU2663328 C1 RU 2663328C1 RU 2017121508 A RU2017121508 A RU 2017121508A RU 2017121508 A RU2017121508 A RU 2017121508A RU 2663328 C1 RU2663328 C1 RU 2663328C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- larvae
- cultivation
- calcitrans
- medium
- giant
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 16
- 241000091752 Chaetoceros calcitrans Species 0.000 title claims description 20
- 241000548230 Crassostrea angulata Species 0.000 title claims description 5
- 235000013305 food Nutrition 0.000 title description 7
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims abstract description 22
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 10
- 239000013535 sea water Substances 0.000 claims abstract description 7
- 238000005273 aeration Methods 0.000 claims abstract description 5
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 claims abstract description 5
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 claims abstract description 5
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 5
- 238000005286 illumination Methods 0.000 claims description 9
- 230000001186 cumulative effect Effects 0.000 claims description 7
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- 241000195493 Cryptophyta Species 0.000 abstract description 16
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 abstract description 14
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 abstract description 4
- 230000000035 biogenic effect Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 28
- 241000237502 Ostreidae Species 0.000 description 7
- 235000020636 oyster Nutrition 0.000 description 7
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 4
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 3
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 3
- 241000091751 Chaetoceros muellerii Species 0.000 description 2
- XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N Iron Chemical compound [Fe] XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000237852 Mollusca Species 0.000 description 2
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000011550 stock solution Substances 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000380131 Ammophila arenaria Species 0.000 description 1
- 241000195633 Dunaliella salina Species 0.000 description 1
- 230000005526 G1 to G0 transition Effects 0.000 description 1
- 241000237536 Mytilus edulis Species 0.000 description 1
- OAICVXFJPJFONN-UHFFFAOYSA-N Phosphorus Chemical compound [P] OAICVXFJPJFONN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000006978 adaptation Effects 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 235000014633 carbohydrates Nutrition 0.000 description 1
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 description 1
- 230000030833 cell death Effects 0.000 description 1
- 230000034994 death Effects 0.000 description 1
- 230000037213 diet Effects 0.000 description 1
- 235000005911 diet Nutrition 0.000 description 1
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 1
- 230000005611 electricity Effects 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 description 1
- 229910052742 iron Inorganic materials 0.000 description 1
- 238000012886 linear function Methods 0.000 description 1
- 238000009364 mariculture Methods 0.000 description 1
- 230000029052 metamorphosis Effects 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 235000020638 mussel Nutrition 0.000 description 1
- 230000017066 negative regulation of growth Effects 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 235000006180 nutrition needs Nutrition 0.000 description 1
- 230000000737 periodic effect Effects 0.000 description 1
- 229910052698 phosphorus Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011574 phosphorus Substances 0.000 description 1
- 235000012239 silicon dioxide Nutrition 0.000 description 1
- 239000000377 silicon dioxide Substances 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 230000004083 survival effect Effects 0.000 description 1
- 239000012224 working solution Substances 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
- A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
- A01K61/00—Culture of aquatic animals
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A40/00—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
- Y02A40/80—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
- Y02A40/81—Aquaculture, e.g. of fish
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Environmental Sciences (AREA)
- Marine Sciences & Fisheries (AREA)
- Zoology (AREA)
- Animal Husbandry (AREA)
- Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Cultivation Of Seaweed (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к марикультуре, точнее к биотехнологии микроводорослей, и может быть использовано при полупромышленном получении биомассы диатомовой водоросли Chaetoceros calcitrans.The invention relates to mariculture, more specifically to the biotechnology of microalgae, and can be used in the semi-industrial production of biomass of diatom Chaetoceros calcitrans.
Микроводоросли являются единственным полноценным кормом для личинок и спата двустворчатых моллюсков, выращиваемых в питомнике. Полупромышленное культивирование одноклеточных водорослей предусматривает получение их максимальных биомасс, используемых в качестве корма личинкам на разных стадиях развития и спата при подращивании в питомнике.Microalgae are the only complete food for the larvae and spawn of bivalves grown in the nursery. Semi-industrial cultivation of unicellular algae involves obtaining their maximum biomass used as food for larvae at different stages of development and spatha when growing in the nursery.
Диатомовая водоросль Chaetoceros calcitrans является хорошим кормовым объектом благодаря своим морфологическим и биохимическим характеристикам и поэтому широко используется в питомниках при выращивании двустворчатых моллюсков. Клетки водоросли цилиндрические, одиночные с хорошо развитыми щетинками, имеют тонкий панцирь; средняя длина клеток 9,2±0,43 мкм, ширина - 4,2±0,15 мкм, объем - 52,0±12,04 мкм3. Они легко заглатываются личинками двустворчатых моллюсков (мидий и устриц) и быстро перевариваются. Питательная ценность микроводоросли связана с высоким содержанием белка - 40,35%; липидов - 27,0%; углеводов - 21,32%.Chaetoceros calcitrans diatom is a good fodder due to its morphological and biochemical characteristics and is therefore widely used in nurseries for the cultivation of bivalve mollusks. Algal cells are cylindrical, single with well-developed setae, have a thin shell; mean cell length 9.2 ± 0.43 μm, width 4.2 ± 0.15 μm, volume 52.0 ± 12.04 μm 3 . They are easily swallowed by the larvae of bivalves (mussels and oysters) and are quickly digested. The nutritional value of microalgae is associated with a high protein content of 40.35%; lipids - 27.0%; carbohydrates - 21.32%.
Известен способ культивирования С. calcitrans [Kaspar Heinrich F., et. al. 2014], где в качестве культиваторов используют стеклянные бутыли (V=2-2,5 л), полиэтиленовые мешки (V=17 л) и резервуары больших объемов (V=100-500 л). Микроводоросль выращивают на питательной среде F/2, содержащей, г/л: NaNO3 - 75; NaH2PO4⋅2Н2O-5; Na2SiO3⋅9Н2O - 30; FeCl3⋅6Н2O - 3,5; Na2ЭДТА - 4,36; MnCl2⋅4Н2O - 1,8. При культивировании водоросли С. calcitrans в мешках (V=17 л) в полунепрерывном режиме на питательной среде F/2 при освещенности 2-5 клк максимальные концентрации клеток достигали 7,13×106 кл/мл.A known method of cultivation C. calcitrans [Kaspar Heinrich F., et. al. 2014], where glass bottles (V = 2-2.5 L), plastic bags (V = 17 L) and large-volume tanks (V = 100-500 l) are used as cultivators. The microalgae is grown on F / 2 growth medium containing, g / l: NaNO 3 - 75; NaH 2 PO 4 ⋅ 2H 2 O-5; Na 2 SiO 3 ⋅ 9Н 2 O - 30; FeCl 3 ⋅ 6Н 2 O - 3.5; Na 2 EDTA - 4.36; MnCl 2 ⋅ 4Н 2 O - 1.8. When cultivating C. calcitrans algae in bags (V = 17 L) in a semi-continuous mode on F / 2 nutrient medium at 2–5 kl illumination, maximum cell concentrations reached 7.13 × 10 6 cells / ml.
В питомнике IFREMER (Франция) [Helm et. al., 2004] при выращивании С. calcitrans в культиваторах V=2 л на среде F/2, концентрация клеток составляла 60×103 кл/мл.In the nursery IFREMER (France) [Helm et. al., 2004] when growing C. calcitrans in cultivators V = 2 L on F / 2 medium, the cell concentration was 60 × 10 3 cells / ml.
Общим недостатком приведенных способов является получение низких значений численности клеток и биомассы С. calcitrans, что существенно повлияет на темп роста личинок двустворчатых моллюсков. Личинкам необходимо будет профильтровать значительно больший объем морской воды, чтобы удовлетворить свои пищевые потребности. В результате энергетические затраты личинок увеличиваются, а темп роста и выживаемость снижаются. Вследствие этого продолжительность выращивания личинок увеличивается, что приведет к нерентабельности работы питомника (затраты человеческих ресурсов, электроэнергии, воды и т.д).A common drawback of the above methods is the obtaining of low cell numbers and C. calcitrans biomass, which will significantly affect the growth rate of bivalve larvae. Larvae will need to filter a significantly larger volume of seawater to satisfy their nutritional needs. As a result, the energy costs of the larvae increase, and the growth rate and survival rate decrease. As a result, the duration of larvae growing increases, which will lead to unprofitability of the nursery (human resources, electricity, water, etc.)
Известен способ подготовки кормов из микроводорослей для личинок дальневосточного трепанга (Патент RU 2 566672 С1), где в качестве корма используют микроводоросли Dunaliella salina и Chaetoceros muelleri. Способ заключается в одновременном культивировании микроводорослей на модифицированной питательной среде Уолна и Гольдберга при освещенности 30 клк, фотопериоде 18:6, температуре 22°C и периодическом перемешивании. Максимальная концентрации клеток диатомовой водоросли С. muelleri составляла 5,68×106 кл/мл.A known method of preparing feed from microalgae for larvae of the Far Eastern trepang (Patent RU 2 566672 C1), where the microalgae Dunaliella salina and Chaetoceros muelleri are used as feed. The method consists in the simultaneous cultivation of microalgae on a modified nutrient medium of Walne and Goldberg at an illumination of 30 klx, a photoperiod of 18: 6, a temperature of 22 ° C, and periodic stirring. The maximum concentration of C. muelleri diatom cells was 5.68 × 10 6 cells / ml.
Недостатком данного способа является культивирование микроводорослей на питательных средах обедненных биогенными элементами и при высокой интенсивности света. При таких условиях культивирования адаптационный период культур значительно увеличивается, что экономически не целесообразно. Освещенность 30 клк способствует ингибированию ростовых процессов и частичной гибели клеток, что провоцирует развитие бактериоплактона в культуре, а такой корм, внесенный в выростные емкости, может привести к гибели личинок.The disadvantage of this method is the cultivation of microalgae on nutrient media depleted in biogenic elements and at high light intensity. Under such cultivation conditions, the adaptation period of crops increases significantly, which is not economically feasible. Illumination of 30 klx contributes to the inhibition of growth processes and partial cell death, which provokes the development of bacterioplactone in culture, and such food, introduced into outgrowth containers, can lead to the death of larvae.
Наиболее близким к заявляемому по достигаемому техническому результату является способ [Krichnavaruk, et. al., 2005] выращивания микроводоросли в накопительном режиме в полиэтиленовых мешках (V=17 л) и колбах (V=2 л) на модифицированный питательной среде F/2 с двукратным увеличением концентраций диоксида кремния и фосфора, при интенсивности света 400 мкмоль фотонов м-2 сек-1 (≈56 клк). При таких условиях культивирования получены максимальные концентрации клеток 5,8×106 кл/мл в колбах и 8,88×106 кл./мл - в мешках.Closest to the claimed achieved technical result is the method [Krichnavaruk, et. al., 2005] growing microalgae in a cumulative mode in plastic bags (V = 17 L) and flasks (V = 2 L) on a modified F / 2 nutrient medium with a twofold increase in the concentration of silicon dioxide and phosphorus, at a light intensity of 400 μmol photons m -2 sec -1 (≈56 klx). Under such cultivation conditions, maximum cell concentrations of 5.8 × 10 6 cells / ml in flasks and 8.88 × 10 6 cells / ml in bags were obtained.
Недостатками известного способа культивирования является получение низких значений численности клеток С. calcitrans при высокой интенсивности света (≈56 клк), что является экономически нерентабельно для питомников по выращиванию личинок гигантской устрицы.The disadvantages of this method of cultivation is to obtain low values of the number of C. calcitrans cells at high light intensity (≈56 cells), which is economically unprofitable for nurseries for growing giant oyster larvae.
Задачей изобретения Способ культивирования диатомовой водоросли Chaetoceros calcitrans - корма для личинок гигантской устрицы Crassostrea gigas является увеличение выхода биомассы водоросли путем модификации питательной среды и оптимизации условий культивирования.Object of the invention A method of cultivating a diatom alga Chaetoceros calcitrans - feed for the larvae of the giant oyster Crassostrea gigas is to increase the yield of algae biomass by modifying the nutrient medium and optimizing cultivation conditions.
Техническим результатом изобретения является получение полноценного корма и в достаточном количестве для личинок и спата моллюсков, выращиваемых в питомнике.The technical result of the invention is to obtain complete feed and in sufficient quantities for the larvae and spat of mollusks grown in the nursery.
Поставленная задача и заявленный технический результат достигаются тем, что в способе культивирования диатомовой водоросли Chaetoceros calcitrans - корма для личинок гигантской устрицы Crassostrea gigas, включающем культивирование микроводоросли в накопительном режиме на питательной среде F/2, предусмотрены следующие отличия. Водоросль культивируют в течение 11 сут. при температуре 22-24°C, освещенности 10 клк, аэрации смесью воздуха и углекислого газа (2%). Кроме того, питательная среда F/2, приготовленная на стерильной морской воде соленостью 
Изобретения поясняется иллюстрациями:The invention is illustrated by illustrations:
на Фиг. 1 - Динамика накопления биомассы микроводоросли Chaetoceros calcitrans на модифицированных питательных средах: 1 - среда 4F; 2 - среда Конвея;in FIG. 1 - Dynamics of biomass accumulation of microalgae Chaetoceros calcitrans on modified nutrient media: 1 - medium 4F; 2 - environment of Conway;
на Фиг. 2 - Динамика роста личинок устрицы Crassostrea gigas при использовании в качестве корма микроводоросли Chaetoceros calcitrans, культивируемой на среде 4F (1) и среде Конвея (2).in FIG. 2 - Growth dynamics of oyster larvae Crassostrea gigas when using microalgae Chaetoceros calcitrans cultivated on 4F medium (1) and Conway medium (2).
В питомнике ИМБИ РАН в экспериментах для определения оптимальных условий культивирования микроводоросли С calcitrans использовались модифицированные питательные среды Конвея и Guillard F/2. Питательная среда F/2 является обедненной по многим биогенным элементам, поэтому их содержание было пропорционально увеличено до получения среды 4F. В среде Конвея увеличили концентрацию железа, т.к. его потребности в стандартной среде занижены и не достаточны для биосинтеза, что подтверждается низкими значениями биомассы водорослей (табл. 1).In the nursery of the IMBI RAS, in experiments, to determine the optimal cultivation conditions for microalgae C calcitrans, modified nutrient media of Conway and Guillard F / 2 were used. The nutrient medium F / 2 is depleted in many nutrients, therefore, their content was proportionally increased to obtain medium 4F. In the environment of Conway, increased the concentration of iron, because its needs in a standard medium are underestimated and not sufficient for biosynthesis, as evidenced by the low algal biomass values (Table 1).
Маточные растворы питательных сред готовили на дистиллированной воде. Рабочий раствор (т.е. питательная среда, на которой впоследствии культивировали водоросли) готовили на стерильной морской воде соленостью
Микроводоросль культивировали в накопительном режиме в колбах (V=2 л) при температуре 24°C, круглосуточном освещении 6 клк и постоянном барботаже воздухом. Максимальная концентрация клеток 18,41×106 кл/мл получена на среде 4F, что почти в 18 раз больше, чем на модифицированной среде Конвея (табл. 2) и значительно больше, чем в других известных способах. Среднесуточный прирост клеток водоросли на среде 4 F и Конвея составлял 1,72 млн. кл.мл-1сут-1 и 0,03 млн. кл.мл-1сут-1 соответственно.The microalgae was cultivated in an accumulative mode in flasks (V = 2 L) at a temperature of 24 ° C, round-the-clock illumination of 6 cells and constant sparging with air. The maximum cell concentration of 18.41 × 10 6 cells / ml was obtained on 4F medium, which is almost 18 times higher than on modified Conway medium (Table 2) and significantly higher than in other known methods. The average daily growth of algae cells on 4 F and Conway medium was 1.72 million cells / ml -1 days -1 and 0.03 million cells / ml -1 days -1, respectively.
Для увеличения выхода биомассы микроводоросли С. calcitrans в питомнике ИМБИ РАН в качестве культиваторов использовали одноразовые полиэтиленовые мешки (V=20 л). Водоросль наращивали в накопительном режиме при температуре 22-24°C, освещенности 10 клк. и аэрации смесью воздуха и углекислого газа (2%) на питательной среде 4F и на среде Конвея. Динамика накопления биомассы микроводоросли С. calcitrans на модифицированных питательных средах показана на Фиг. 1. При таком режиме культивирования максимальная численность клеток и биомасса на питательной среде 4F также были значительно больше, чем на среде Конвея, и составляли соответственно 11,22×106 кл/мл и 4,93 г/л (табл. 3). Максимальная продуктивность водоросли на модифицированной среде 4F наблюдалась на 5-6 сутки культивирования и составляла 3,9 г⋅л-1⋅сут-1.To increase the biomass yield of the microalga C. calcitrans in the nursery of the IMBI RAS, disposable plastic bags (V = 20 L) were used as cultivators. Algae was growing in the cumulative mode at a temperature of 22-24 ° C, illumination of 10 cells. and aeration with a mixture of air and carbon dioxide (2%) on a 4F growth medium and on a Conway medium. The dynamics of biomass accumulation of C. calcitrans microalgae on modified nutrient media is shown in FIG. 1. Under this cultivation regime, the maximum number of cells and biomass on 4F nutrient medium were also significantly larger than on Conway medium, and amounted to 11.22 × 10 6 cells / ml and 4.93 g / l, respectively (Table 3). The maximum productivity of algae on the modified 4F medium was observed on the 5-6th day of cultivation and amounted to 3.9 g⋅l -1 ⋅ day -1 .
Зависимость биомассы микроводоросли от содержания биогенов в среде 4F и Конвея определялась линейной функцией, при этом коэффициент детерминации R2 составлял: 0,92 и 0,88 соответственно (Фиг. 1).The dependence of the microalgae biomass on the biogen content in 4F and Conway medium was determined by a linear function, while the determination coefficient R 2 was: 0.92 and 0.88, respectively (Fig. 1).
Накопительный режим культивирования позволил получить биомассу водоросли с максимальным содержанием липидов, необходимых личинкам на поздних стадиях развития и успешному прохождению метаморфоза.The cumulative cultivation regime allowed us to obtain algae biomass with the maximum lipid content required by the larvae in the late stages of development and the successful passage of metamorphosis.
Пример реализации способаAn example implementation of the method
В питомнике ИМБИ РАН диатомовую водоросль С. calcitrans культивировали в полиэтиленовых мешках (V=20 л) в накопительном режиме на питательной среде 4F, приготовленной на стерильной морской воде соленостью
Водоросль культивировали при оптимальных условиях: температура 22-24°C, освещенность 10 клк, аэрация смесью воздуха и углекислого газа (2%). Максимальная численность клеток и биомасса получены на 11 сутки и составляли соответственно 11,22×106 кл/мл и 4,93 г/л. Культура находилась на стационарной фазе роста и содержала максимальное количество липидов - 27,0%. Таким образом, продолжительность культивирования водоросли С. calcitrans в накопительном режиме составляла 11 суток.Algae was cultivated under optimal conditions: temperature 22-24 ° C,
При выращивании личинок и спата гигантской устрицы в питомнике микроводоросль С. calcitrans является основным кормом и входит в состав рациона на всех стадиях развития. Среднесуточный темп роста личинок гигантской устрицы, в рацион которых входила водоросль, культивируемая на среде 4F, был значительно выше (43,6 мкм сут-1), чем на среде Конвея (25,2 мкм сут-1). При этом личинки достигали максимальных размеров 385 мкм уже на 19 сутки выращивания. Когда личинок устриц кормили водорослью С. calcitrans, культивируемой на среде Конвея, максимального размера 392 мкм они достигали только на 23 сутки выращивания (Фиг. 2).When growing giant oyster larvae and spats in the nursery, the microalga C. calcitrans is the main food and is part of the diet at all stages of development. The average daily growth rate of giant oyster larvae, which included algae cultivated on 4F medium, was significantly higher (43.6 μm day -1 ) than on Conway medium (25.2 μm day -1 ). Moreover, the larvae reached a maximum size of 385 μm already on the 19th day of growing. When oyster larvae were fed with C. calcitrans algae cultured on Conway medium, they reached a maximum size of 392 μm only on the 23rd day of growing (Fig. 2).
Таким образом, питательная среда 4F и предложенные условия выращивания при температуре 22-24°C и освещенности 10 клк. являются оптимальными при культивировании микроводоросли С. calcitrans в питомнике ИМБИ и способствуют максимальному накоплению биомассы водоросли. Использование водоросли в качестве корма для личинок гигантской устрицы способствовало их высокому темпу роста.Thus, the nutrient medium 4F and the proposed growing conditions at a temperature of 22-24 ° C and an illumination of 10 cells. are optimal for cultivation of microalga C. calcitrans in the nursery of IMBI and contribute to the maximum accumulation of algae biomass. The use of algae as food for giant oyster larvae contributed to their high growth rate.
Источники информацииInformation sources
1. Ким Г.Н., Журба Е.К., Калинина Г.Г., Советкина А.С., Азьмука Т.М. Способ подготовки кормов из микроводорослей для личинок дальневосточного трепанга (Патент RU 2566672 С1, опубл.: 27.10.2015, бюл. №30)1. Kim G.N., Zhurba E.K., Kalinina G.G., Sovetkina A.S., Azmuk T.M. The method of preparation of feed from microalgae for the larvae of the Far Eastern trepang (Patent RU 2566672 C1, publ.: 10/27/2015, bull. No. 30)
2. Kaspar Heinrich F., Keys Elizabeth F., King Nick, Smith Kirsty F., Kesarcodi-Watson Aditya, Miller Matthew R. Continuous production of Chaetoceros calcitrans in a system suitable for commercial hatcheries // Aquaculture. - 2014. - V. - 420-421. - P. 1-9.2. Kaspar Heinrich F., Keys Elizabeth F., King Nick, Smith Kirsty F., Kesarcodi-Watson Aditya, Miller Matthew R. Continuous production of Chaetoceros calcitrans in a system suitable for commercial hatcheries // Aquaculture. - 2014 .-- V. - 420-421. - P. 1-9.
3. Krichnavaruk Sontaya, Loataweesup Worapannee, Powtongsook Sorawit, Pavasant Plasert. Optimal growth conditions and the cultivation of Chaetoceros calcitrans in airlift photobioreactor // Chemical Engineering Journal. - 2005. - V. 105, №3. - P. 91-98.3. Krichnavaruk Sontaya, Loataweesup Worapannee, Powtongsook Sorawit, Pavasant Plasert. Optimal growth conditions and the cultivation of Chaetoceros calcitrans in airlift photobioreactor // Chemical Engineering Journal. - 2005. - V. 105, No. 3. - P. 91-98.
4. Helm Michael M., Bourne Neil. Hatchery culture of bivalves // A practical manual. FAO FISHERIES TECHNICAL PAPER, 2004. - 471 p.4. Helm Michael M., Bourne Neil. Hatchery culture of bivalves // A practical manual. FAO FISHERIES TECHNICAL PAPER, 2004 .-- 471 p.
Claims (2)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2017121508A RU2663328C1 (en) | 2017-06-19 | 2017-06-19 | Method of cultivation of diatomic alkaline chaetoceros calcitrans - food for larvae of giant oysters crassostrea gigas |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2017121508A RU2663328C1 (en) | 2017-06-19 | 2017-06-19 | Method of cultivation of diatomic alkaline chaetoceros calcitrans - food for larvae of giant oysters crassostrea gigas |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2663328C1 true RU2663328C1 (en) | 2018-08-03 |
Family
ID=63142579
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2017121508A RU2663328C1 (en) | 2017-06-19 | 2017-06-19 | Method of cultivation of diatomic alkaline chaetoceros calcitrans - food for larvae of giant oysters crassostrea gigas |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2663328C1 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2793471C1 (en) * | 2022-07-21 | 2023-04-04 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии" (ФГБНУ "ВНИРО") | Method for cultivation of chaetoceros muelleri and isochrysis galbana unicellular microalgae - live food for larvae of marine invertebrates |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2284105C2 (en) * | 2004-04-22 | 2006-09-27 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Тихоокеанский научно-исследовательский рыбохозяйственный центр" (ФГУП "ТИНРО-Центр") | Method for commercial cultivation of young specimens of trepang and apparatus for performing the same |
| RU2541458C1 (en) * | 2014-10-01 | 2015-02-10 | Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского | Method for culturing calanoid copepods calanus euxinus (black sea calanus) |
| RU2566672C1 (en) * | 2014-05-12 | 2015-10-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Дальневосточный государственный технический рыбохозяйственный университет" (ФГБОУ ВПО "Дальрыбвтуз") | Method of preparation of feed from microalgae for far eastern sea cucumber larvae |
-
2017
- 2017-06-19 RU RU2017121508A patent/RU2663328C1/en active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2284105C2 (en) * | 2004-04-22 | 2006-09-27 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Тихоокеанский научно-исследовательский рыбохозяйственный центр" (ФГУП "ТИНРО-Центр") | Method for commercial cultivation of young specimens of trepang and apparatus for performing the same |
| RU2566672C1 (en) * | 2014-05-12 | 2015-10-27 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Дальневосточный государственный технический рыбохозяйственный университет" (ФГБОУ ВПО "Дальрыбвтуз") | Method of preparation of feed from microalgae for far eastern sea cucumber larvae |
| RU2541458C1 (en) * | 2014-10-01 | 2015-02-10 | Институт биологии южных морей им. А.О. Ковалевского | Method for culturing calanoid copepods calanus euxinus (black sea calanus) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2793471C1 (en) * | 2022-07-21 | 2023-04-04 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии" (ФГБНУ "ВНИРО") | Method for cultivation of chaetoceros muelleri and isochrysis galbana unicellular microalgae - live food for larvae of marine invertebrates |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Guedes et al. | Nutritional value and uses of microalgae in aquaculture | |
| US8173391B2 (en) | Golden yellow algae and method of producing the same | |
| KR101413841B1 (en) | Selenium-containing unicellular microalgae for animal plankton feeds and method of culturing selenium-containing animal planktons using the same | |
| JP2006507826A (en) | Microbial feed for filtered ingested aqueous organisms | |
| CN106701583A (en) | Seawater chlorella preservation method | |
| RU2663328C1 (en) | Method of cultivation of diatomic alkaline chaetoceros calcitrans - food for larvae of giant oysters crassostrea gigas | |
| JP2007097463A (en) | Culture feed for water flea | |
| RU2613424C1 (en) | Plankton strain chlorella kessleri, intended for production of biomass | |
| CN111254080B (en) | Nanochlorum sp microalgae and application thereof as aquatic product bait | |
| JP2007006763A (en) | Aquatic animal feed and method for producing the same | |
| Trinh | Comparison of Growth of Chlorella vulgaris in Flat-Plate Photobioreactor Using Batch, Fed-Batch, and Repeated Fed-Batch Techniques with Various Concentrations of Walne Medium | |
| KR101323873B1 (en) | Novel Nannochloropsis sp. capable high growth and use thereof | |
| RU2717663C1 (en) | Method of cultivation of microalgae rhodomonas salina | |
| KR20060114836A (en) | Tintinnid, undella sp. chuuk-04 available for hatched fry feed and culturing method thereof | |
| RU2793471C1 (en) | Method for cultivation of chaetoceros muelleri and isochrysis galbana unicellular microalgae - live food for larvae of marine invertebrates | |
| CN105613367B (en) | A kind of factory culturing method of zander fingerling | |
| Kargin | Continuous Production of Rotifer Brachionus plicatilis (Müller 1786) in a Helical Tubular Photobioreactor Fed with Algae Nannochloripsis oculata | |
| Jannah et al. | Growth performance of laboratory-Scale Chaetoceros calcitrans in different containers | |
| Gopal et al. | INFLUENCE OF PHYSICAL AND NUTRITIVE PARAMETERS ON POPULATION AND SIZE VARIATION IN TWO SPECIES OF ROTIFER | |
| US20160068799A1 (en) | Medium, method and system for cultivation of chlorella pyrenoidosa or organisms derived from chlorella pyrenoidosa | |
| SU789073A1 (en) | Method of breeding trepang larvae up to degree of settling | |
| NL2008153C2 (en) | Method for culturing algae. | |
| Joseph | Microalgae Culture and Production | |
| RU2548107C1 (en) | Preparation of feed for growing of crassostrea gigas in black sea nursery | |
| Gopinathan et al. | Micro algae culture as live feed |