RU2576197C1 - Способ получения композиции для выращивания растений - Google Patents

Способ получения композиции для выращивания растений Download PDF

Info

Publication number
RU2576197C1
RU2576197C1 RU2014152869/13A RU2014152869A RU2576197C1 RU 2576197 C1 RU2576197 C1 RU 2576197C1 RU 2014152869/13 A RU2014152869/13 A RU 2014152869/13A RU 2014152869 A RU2014152869 A RU 2014152869A RU 2576197 C1 RU2576197 C1 RU 2576197C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
composition
strain
culture
fermenter
days
Prior art date
Application number
RU2014152869/13A
Other languages
English (en)
Inventor
Евгений Владимирович Халтурин
Вячеслав Павлович Марков
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "Научно-производственное объединение АРГО ЭМ-1"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "Научно-производственное объединение АРГО ЭМ-1" filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "Научно-производственное объединение АРГО ЭМ-1"
Priority to RU2014152869/13A priority Critical patent/RU2576197C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2576197C1 publication Critical patent/RU2576197C1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к сельскому хозяйству. Способ получения композиции для выращивания растений включает раздельную активизацию штаммов биомассабактерий Lactobacillus casei, Lactococcus lactis, Rhodopseudomonas palustris и Saccharomices cerevisiae, глубинное культивирование в ферментере консорциума штаммов биомассабактерий Lactobacillus casei, Lactococcus lactis, Rhodopseudomonas palustris и Saccharomices cerevisiae в культуральной жидкости, в которую вводится патока сахарной свеклы в качестве питательной среды размножения бактерий в массовой доле преимущественно 1,5% от объема культуральной жидкости с наличием посторонней микрофлоры не более 5%, культуры вносятся в культуральную жидкость в соотношении 1:100 и культивируются 3-5 дней при температуре 30 градусов до достижения значений рН 5,5-8,5, затем в подготовленный микробиологический препарат добавляют взятый в виде размолотого порошка в массовой доле около 10% - цеолиты кристаллические NaA, NaX, где Na - преобладающий в данном цеолите металл, а А и X - тип кристаллической решетки, полученная смесь далее ферментируется в течение 5 суток в ферментере при температуре 32-35 градусов Цельсия и постоянном перемешивании не менее чем 60 дисками диаметром 5 см, изготовленными из керамики, обработанной и выдержанной в микробиологическом растворе в течение 2-3 лет с последующим обжигом, собранными на металлические стрежни по 10 штук на каждом, которые прикреплены в виде колонн к крышке ферментера. Изобретение позволяет повысить активность композиции для выращивания растений по защите от болезней, повысить урожайную стабильность. 3 табл.

Description

Изобретение относится к сельскому хозяйству, в частности к растениеводству, и может быть использовано для улучшения питания сельскохозяйственных культур, защиты растений от фитопатогенных микроорганизмов, уменьшения потерь сельхозпродукции при хранении.
Известен способ получения субстрата для выращивания растений по патенту СССР №1829892 с использованием биомассы бактерий рода Псевдомонас - супрессоров фитопатогенов. По данному способу получают субстрат путем внесения в торф известковых, минеральных и бактериальных удобрений с последующим перемешиванием компонентов, а в качестве бактериального удобрения используют биомассу штамма бактерий Pseudomonas putida fluorescens ЦМПМ В-3481.
Известен способ получения биоудобрений по патенту РФ №2130005. Способ заключается в том, что штамм или сообщество микроорганизмов стерильно культивируют на питательной среде до достижения титра бактериальной массы 108-109 кл/мл. Полученную биомассу отделяют от среды, концентрируют. Концентрированную биомассу наносят на высушенный гранулированный куриный помет. Иммобилизованную таким образом биомассу высушивают.
Данный способ недостаточно обеспечивает повышение выживаемости микроорганизмов и повышение биологической активности почвы.
Известна группа изобретений: способ предпосевной обработки семян овощных культур и способ получения препарата для предпосевной обработки семян овощных культур по патенту РФ №2140138. Указанные способы осуществляются с помощью биофунгицидного препарата, содержащего штамм бактерий Bacillus subtilis Ч-13 (депонирован под регистрационным номером ВНИИСХМ Д-606 в группе эпифитных микроорганизмов). Способ получения биофунгицидного препарата заключается в смешивании культуральной жидкости, содержащей штамм B.s. Ч-13, предварительно культивированный в жидкой стерильной питательной среде с эмульсией ПВА, водным разбавителем и стерильным мелом или доломитом в определенных пропорциях. Изобретения позволяют повысить эффективность защиты овощных культур от фитопатогенных грибов путем предпосевной обработки семян.
Известен способ получения композиции для выращивания растений по патенту РФ №2264999. Этот способ заключается в активизации наряду с другими следующих штаммов биомассабактерий: Lactobacillus casei, Lactococcus lactis, Rhodopseudomonas palustris и Saccharomices cerevisiae и приготовлении суспензии. Указанный способ недостаточно эффективен для защиты растений от инфекционных болезней и повышения урожайности.
Задачей изобретения является создание композиции для выращивания растений, обеспечивающей высокую защиту от инфекционных болезней, предотвращающую использование пестицидов, фунгицидов и т.п., повышения урожайности и стабильности за счет использования цеолитов.
Вообще микробиологические препараты известны уже более ста лет, однако зачастую их эффективность оказывалась недостаточной или нестабильной, из-за чего они не смогли сыграть значительную роль в повышении продуктивности сельскохозяйственного производства.
В последнее время было открыто явление интеграции генетических систем микроорганизмов и растений в процессе их взаимодействия. Удалось показать, что как бактерии, так и растения обладают наборами симбиотических генов, которые “молчат” в отсутствии соответствующего партнера, а при наличии партнеров с определенными генотипами устанавливается симбиоз. При этом процесс установления симбиотических взаимоотношений - это экологический процесс, протекающий в почве. С помощью микроорганизмов растение обеспечивает свои потребности в элементах питания (азот, фосфор и другие), микроорганизмы способны защитить растение от фитопатогенов, причем наиболее опасных - почвенных инфекций, для борьбы с которыми пока нет эффективных средств. Такая система контролирует выработку надорганизменных признаков или адаптации, которыми не обладали ни бактерии, ни растения до взаимодействия. Данный аспект микробно-элементного взаимодействия использован в заявленном изобретении.
Технический результат заключается в повышении активности композиции для выращивания растений по защите от болезней, повышению урожайности стабильности.
Указанный технический результат достигается тем, что способ получения композиции для выращивания растений включает раздельную активизацию штаммов биомассабактерий Lactobacillus casei, Lactococcus lactis, Rhodopseudomonas palustris и Saccharomices cerevisiae, глубинное культивирование в ферментере консорциума штаммов биомассабактерий Lactobacillus casei, Lactococcus lactis, Rhodopseudomonas palustris и Saccharomices cerevisiae в культуральной жидкости, в которую вводится патока сахарной свеклы в качестве питательной среды размножения бактерий в массовой доле преимущественно 1,5% от объема культуральной жидкости с наличием посторонней микрофлоры не более 5%, культуры вносятся в культуральную жидкость в соотношении 1:100 и культивируются 3-5 дней при температуре 30 градусов до достижения значений рН 5,5-8,5, затем в подготовленный микробиологический препарат добавляют взятый в виде размолотого порошка в массовой доле около 10% - цеолиты кристаллические NaA, NaX, где Na - преобладающий в данном цеолите металл, а A и X - тип кристаллической решетки, полученная смесь далее ферментируется в течение 5 суток в ферментере при температуре 32-35 градусов Цельсия и постоянном перемешивании не менее чем 60 дисками диаметром 5 см, изготовленными из керамики, обработанной и выдержанной в микробиологическом растворе в течение 2-3 лет с последующим обжигом, собранными на металлические стрежни по 10 штук на каждом, которые прикреплены в виде колонн к крышке ферментера.
Так как биомассабактерии культивируются на патоке сахарной свеклы, то они приобретают дополнительные ценные продукты, являющиеся результатом бактериального сбраживания разжиженной биомассы из сахарной свеклы, включающие нижеследующее, но не ограничиваются только этим: органические кислоты (например, уксусная кислота, молочная кислота, фумаровая кислота, пропионовая кислота и глюкуроновая кислота), аминокислоты (например, глютаминовая кислота, лейцин, лизин, треонин, аспарагиновая кислота, фенилаланин, цистеин), капролактамы (например, альфа-аминокапролактам), антибиотики (например, блеомицин, вирджиниамицин, линкомицин, моненсин, бластицидин, тетрациклин), витамины (например, витамин В2, В12 и С), ферменты, нуклеотиды/нуклеозиды (например, НАДН, АТФ, цАМФ, ФАД, кофермент А), биополимеры (например, полигидроксибутират, полиамиды/фиброины), полисахариды (например, ксантан, декстран), аминоглюканы (например, гиалуроновая кислота), а также органические растворители и биотополива (например, ацетон, этанол, бутанол, пропандиол).
Еще дополнительные ценные продукты, являющиеся результатом дрожжевого сбраживания разжиженной биомассы из сахарной свеклы, включают нижеследующее, но не ограничиваются только этим: органические растворители (например, этанол, пропанол), нуклеотиды (например, РНК), биологические поверхностно-активные вещества (например, липиды софорозы), ферменты и биополимеры (например, спидроины), органические кислоты (лимонная кислота, фумаровая кислота), антибиотики (например, пенициллин, цефалоспорин), ферменты и полисахариды (например, хитин).
Все эти ценные продукты в дальнейшем переносятся в почву или на растения, позволяя получить высокую устойчивость к заболеваниям и высокую урожайность.
Наличие цеолитов обеспечивает высокую стабильность композиции.
Штаммы культур приобретаются в Государственном научном центре Российской Федерации (ФГУП Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов («ГосНИИгенетика»)). Культуры активизируются раздельно согласно инструкции (сведения ниже), затем составляется питательная среда.
Сведения о составе и свойствах активного ингредиента и препаративной формы (бактериальных, грибных, на основе продуктов жизнедеятельности микроорганизмов)
1. Свойства штамма-продуцента Lactobacillus casei
1. Видовое название штамма (изолята)
Lactobacillus casei
2. Номер, название штамма
№2872, Lactobacillus casei
3. Источник выделения штамма
Слюна человека
4. Культурально-морфологические и биохимические свойства, тесты и критерии идентификации (указать также организацию, проводившую идентификацию)
Короткие толстые палочки, преимущественно в коротких цепочках. Не спорообразующие, клетки не подвижны. Грамположительные. На твердых питательных средах образует круглые колонии белого цвета, полупрозрачные. Профиль колоний выпуклый, край ровный. По штриху рост умеренный, видно цепь изолированных колоний. Оптимальная температура роста 35-37°C.
Конечным продуктом метаболизма лактобацилл является D- и L-молочная кислота. У гомоферментативных лактобацилл лактат составляет 90% всех продуктов брожения. Бактерии рода Lactobacillus усиливают гидролиз белков, сбраживают углеводы, омыляют жиры, препятствуют микробному декарбоксилированию пищевого гистидина и повышению количества гистамина.
Биохимические и морфорлогические свойства являются критериями идентификации в лабораторных условиях.
Предприятие, проводившее идентификацию: Государственный научный центр Российской Федерации ФГУП Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов («ГосНИИгенетика»).
5. Патогенность и антагонизм по отношению к вредному объекту
Непатогенны, способны образовывать молочную кислоту, перекись водорода, продуцировать лизоцим и вещества с антибиотической активностью: реутерин, плантарицин, лактоцидин, лактолин.
6. Способ, условия и состав питательных сред для хранения штамма
Хранение осуществляется методом субкультивирования, он заключается в пересевах культуры на свежую питательную среду ГМС два раза в месяц. Между пересевами микроорганизмы хранят в темноте при температурах 5-8°C.
Состав ГМС: обезжиренное молоко - 1 дм3; панкреатин - 1,5 г, агар 20 г/л. Колбу закрывают корковой пробкой и выдерживают при t=30°C в течение 18-24 часов. Затем гидролизованное молоко фильтруют через бумажный фильтр и стерилизуют в автоклаве при 1 атм в течение 10 минут.
7. Способ, условия и состав питательных сред для размножения микроорганизмов.
Размножение осуществляется методом пересева активной культуры микроорганизмов на жидкую питательную среду ГМС и культивирование при температуре 40°C в течение 24 ч, при доведении рН до 6,8-7,0 через 12 ч.
Состав ГМС: для размножения обезжиренное молоко - 1 дм3; панкреатин - 1,5 г. Колбу закрывают корковой пробкой и выдерживают при t=30°C в течение 18-24 часов. Затем гидролизованное молоко фильтруют через бумажный фильтр и стерилизуют в автоклаве при 1 атм в течение 10 минут. После стерилизации добавляют аскорбиновой кислоты - 0,15 г/дм3.
8. Способ обнаружения микроорганизма в микробных ассоциациях окружающей среды и биоматериале
Для обнаружения микроорганизмов используют полутвердую питательную среду ГМС, которую разливают в чашки Петри и культивируют после засевания образца методом предельных разведений в течение 72 ч при температуре 40°C.
Состав ГМС: обезжиренное молоко - 1 дм3; панкреатин - 1,5 г, агар 10 г/л. Колбу закрывают корковой пробкой и выдерживают при t=30°C в течение 18-24 часов. Затем добавляют агар, фильтруют через бумажный фильтр и стерилизуют в автоклаве при 1 атм в течение 10 минут.
9. Продукт, синтезируемый штаммом (химический состав, структурная формула, стабильность, метод определения остатков)
Молочная кислота, формула С3Н6O3, химическое название - 2-гидроксипропионовая кислота. Для определения используется метод нейтрализации.
В колбу на 200 мл вносят 1 мл жидкого агрохимиката, добавляют 24 мл воды из бюретки по 5 мл хлористого бария, 0,1 Н (NaOH) и сернокислого цинка. Одновременно реактивы вносят в той же последовательности в холостую пробу (25 мл воды). После образования осадка растворы фильтруют через двойной бумажный складчатый фильтр. Затем от содержимого отбирают в мерную колбу на 100 мл прозрачный фильтрат, добавляя к содержимому 0,5 мл 1% раствора FeCl3 и доведя объем до 100 мл дистиллированной водой. После развития окраски колориметруют раствор в кюветах на 10 мл со светофильтром №2. Затем показатель оптической плотности переводят по предварительно построенной калибровочной кривой на % молочной кислоты.
2. Свойства штамма-продуцента Lactococcus lactis
8. Видовое название штамма (изолята)
Lactococcus lactis
9. Номер, название штамма
№4462, Lactococcus lactis
10. Источник выделения штамма
Коровье молоко
11. Культурально-морфологические и биохимические свойства, тесты и критерии идентификации (указать также организацию, проводившую идентификацию)
Диплококки в основном растут парами и в коротких цепочках по 4-6 клеток. Неспорообразующие, клетки не подвижны. Форма овальная, ближе к округлой. На твердых питательных средах образует круглые колонии белого цвета диаметром 1-2 мм. Профиль колоний конусовидный, край гладкий, колонии мягкие однородные. На жидких питательных средах образует тонкую пленку, осадка нет. Грамположительные бактерии, оптимальная температура роста 30°C. Главным конечным продуктом метаболизма лактококков является D- и L-молочная кислота. Большинство из них не обладают выраженной протеолитической активностью, не выделяют каталазы. Вызывают расщепление углеводов гомо- или гетероферментативным путем (такое деление связано с небольшим количеством получаемых при молочнокислом брожении побочных продуктов летучих кислот, спирта, диацетила и пр.). Хорошо сбраживают лактозу, не сбраживают рамнозы, сахарозы, раффинозы. Образуют антибиотик низин.
Биохимические и морфологические свойства являются критериями идентификации в лабораторных условиях.
Предприятие проводившее идентификацию: Государственный научный центр Российской Федерации ФГУП Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов («ГосНИИгенетика»).
12. Патогенность и антагонизм по отношению к вредному объекту
Непатогенны, способны образовывать молочную кислоту, перекись водорода, продуцировать низин и другие вещества с антибиотической активностью.
13. Способ, условия и состав питательных сред для хранения штамма
Хранение осуществляется методом субкультивирования, он заключается в пересевах культуры на свежую питательную среду ГМС два раза в месяц. Между пересевами микроорганизмы хранят в темноте при температурах 5-8°C.
Состав ГМС: обезжиренное молоко - 1 дм3; панкреатин - 1,5 г, агар 20 г/л. Колбу закрывают корковой пробкой и выдерживают при t=30°C в течение 18-24 часов. Затем гидролизованное молоко фильтруют через бумажный фильтр и стерилизуют в автоклаве при 1 атм в течение 10 минут.
14. Способ, условия и состав питательных сред для размножения микроорганизмов.
Размножение осуществляется методом пересева активной культуры микроорганизмов на жидкую питательную среду ГМС и культивирование при температуре 40°C в течение 24 ч, при доведении рН до 6,8-7,0 через 12 ч.
Состав ГМС: для размножения обезжиренное молоко - 1 дм3; панкреатин - 1,5 г. Колбу закрывают корковой пробкой и выдерживают при t=30°C в течение 18-24 часов. Затем гидролизованное молоко фильтруют через бумажный фильтр и стерилизуют в автоклаве при 1 атм в течение 10 минут. После стерилизации добавляют аскорбиновой кислоты - 0,15 г/дм3.
8. Способ обнаружения микроорганизма в микробных ассоциациях окружающей среды и биоматериале
Для обнаружения микроорганизмов используют полутвердую питательную среду ГМС, которую разливают в чашки Петри и культивируют после засевания образца методом предельных разведений в течение 72 ч при температуре 40°C.
Состав ГМС: обезжиренное молоко - 1 дм3; панкреатин - 1,5 г, агар 10 г/л. Колбу закрывают корковой пробкой и выдерживают при t=30°C в течение 18-24 часов. Затем добавляют агар, фильтруют через бумажный фильтр и стерилизуют в автоклаве при 1 атм в течение 10 минут.
9. Продукт, синтезируемый штаммом (химический состав, структурная формула, стабильность, метод определения остатков)
Молочная кислота, формула С3Н6O3, химическое название - 2-гидроксипропионовая кислота. Для определения используется метод нейтрализации:
В колбу на 200 мл вносят 1 мл жидкого агрохимиката, добавляют 24 мл воды из бюретки по 5 мл хлористого бария, 0,1 Н (NaOH) и сернокислого цинка. Одновременно реактивы вносят в той же последовательности в холостую пробу (25 мл воды). После образования осадка растворы фильтруют через двойной бумажный складчатый фильтр. Затем от содержимого отбирают в мерную колбу на 100 мл прозрачный фильтрат, добавляя к содержимому 0,5 мл 1% раствора FeCl3, и доведя объем до 100 мл дистиллированной водой. После развития окраски колориметруют раствор в кюветах на 10 мл со светофильтром №2. Затем показатель оптической плотности переводят по предварительно построенной калибровочной кривой на % молочной кислоты.
3. Свойства штамма-продуцента Saccharomyces cerevisiae
1. Видовое название штамма (изолята)
Saccharomyces cerevisiae
2. Номер, название штамма
№22, Saccharomyces cerevisiae
3. Источник выделения штамма
Виноград
4. Культурально-морфологические и биохимические свойства, тесты и критерии идентификации (указать также организацию, проводившую идентификацию)
Клетки дрожжей Saccharomyces cerevisiae неподвижные, крупные, размером 5/6×10/14 мкм. Форма округлая, овальная, яйцевидная или слегка удлиненная. При микроскопировании в дрожжевой клетке можно различить оболочку, протоплазму, вакуоль. Размножаются почкованием, способность к спорообразованию у них ослаблена или полностью утрачена. Грамположительные. При росте на жидкой питательной среде они вызывают ее помутнение. В результате интенсивного газообразования клетки дрожжей выносятся в верхние слои бродящей жидкости, а на поверхности образуется пена. По окончании брожения среда становится более прозрачной, дрожжи оседают на дно, образуя плотный осадок желтовато-белого цвета. Пленка на поверхности среды не развивается. Штрих на косом сусло-агаре выпуклый, с ровными краями, сочной консистенции, желтовато-белого цвета, маслянистый.
На сусло-агаре формируются колонии круглой формы диаметром 0,5-1 см с выпуклым центром и ровными краями желтовато-белого цвета.
Они сбраживают и усваивают глюкозу, галактозу, сахарозу, мальтозу, частично рафинозу и простые декстрины солодового сусла, не сбраживают и не усваивают лактозу, пентозы (ксилозу и арабинозу), крахмал, клетчатку. Источником азотного питания для них служат аминокислоты и аммонийные соли.
Оптимальная температура развития 30°C. Оптимальное значение рН в зоне 4,5-5. Добавление в питательную среду сахара (свыше 15%) или соли (свыше 1-1,5%) отрицательно влияет на жизнедеятельность дрожжей. Образуют этиловый спирт.
Биохимические и морфологические свойства являются критериями идентификации в лабораторных условиях.
Предприятие, проводившее идентификацию: Государственный научный центр Российской Федерации ФГУП Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов («ГосНИИгенетика»).
5. Патогенность и антагонизм по отношению к вредному объекту
Непатогенны, способны образовывать этиловый спирт, небольшое количество многоатомных спиртов, органические кислоты с антибактериальной активностью.
6. Способ, условия и состав питательных сред для хранения штамма
Хранение осуществляется методом субкультивирования, он заключается в пересевах культуры на твердую питательную среду Сабуро два раза в месяц. Между пересевами микроорганизмы хранят в темноте при температурах 5-8°C.
Состав среды Сабуро: глюкоза - 40 г/л; пептон - 10 г/л; вода - 1 дм3; агар-агар - 2%. Готовую среду Сабуро стерилизуют при 0,5 атм, в течение 25 минут, стерильную расплавленную среду разливают в стерильные чашки Петри.
7. Способ, условия и состав питательных сред для размножения микроорганизмов.
Размножение осуществляется методом пересева активной культуры микроорганизмов на жидкую питательную среду Сабуро и культивирование при температуре 30°C в течение 24-72 ч, при доведении рН до 4,5-5,0 через 12 ч.
Состав жидкой среды Сабуро для размножения: глюкоза - 40 г/л; пептон - 10 г/л; вода - 1 дм3; агар-агар - 0,2%. Готовую среду Сабуро стерилизуют при 0,5 атм, в течение 25 минут и охлаждают до 30°C, засевают культуру и выдерживают в течение 24-72 ч.
8. Способ обнаружения микроорганизма в микробных ассоциациях окружающей среды и биоматериале
Для обнаружения микроорганизмов используют полутвердую питательную среду Сабуро, которую разливают в чашки Петри и культивируют после засевания образца методом предельных разведений в течение 72 ч при температуре 30°C.
Состав среды Сабуро: глюкоза - 40 г/л; пептон - 10 г/л; вода - 1 дм3; агар-агар - 1%. Среду Сабуро стерилизуют при 0,5 атм, в течение 25 минут, стерильную расплавленную среду разливают в стерильные чашки Петри.
9. Продукт, синтезируемый штаммом (химический состав, структурная формула, стабильность, метод определения остатков)
Этиловый спирт, формула С2Н5ОН, химическое название спирт этиловый. Определение спирта производится по ГОСТ 3639-79 с помощью ареометра АСп-1.
5. Свойства штамма-продуцента Rhodopseudomonas palustris
1. Видовое название штамма (изолята)
Rhodopseudomonas palustris
2. Номер, название штамма
№100 И, Rhodopseudomonas palustris
3. Источник выделения штамма
Илистый грунт пресного водоема
4. Культурально-морфологические и биохимические свойства, тесты и критерии идентификации (указать также организацию, проводившую идентификацию)
Колонии на плотных средах мелкие до средних, круглые, блестящие от светло-розового до красно-пурпурного цвета, на жидких средах образуют муть и клеточная масса (осадок) имеет красно-пурпурный оттенок. Клетки палочковидные, некоторые из них имеют выраженную тенденцию к образованию изогнутых и искривленных палочек, молодые клетки короткие, активно подвижные, с полярно расположенными жгутиками, грамотрицательные, в старых культурах появляются длинные клетки, неспороносные, слизи не образуют. Фотогетеротрофные факультативные анаэробные бактерии. Хорошо развиваются при доступе света. Хемотрофный рост наблюдается в темноте в аэробных и в микроаэробных условиях. Окраска клеток одинаковая как при аэробных, так и анаэробных условиях роста. Цвет клеток определяется наличием бактериохлорофила и каратиноидов. Для оптимального развития требуется п-аминобензойная кислота. Желатину не разжижают. Характерно отсутствие роста штамма на средах с 0,2% и более моносахаридами, основными окисляемыми соединениями являются глюкоза, манноза и многоатомный спирт - сорбит. Окисляют тиосульфат, не окисляют сернистый водород. Грамотрицательные. Образуют красный пигмент. Оптимум температуры - 27-30°C. Оптимальное значение рН 7,0-7,5 ед.
Биохимические и морфологические свойства являются критериями идентификации в лабораторных условиях.
Предприятие, проводившее идентификацию: Государственный научный центр Российской Федерации ФГУП Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов («ГосНИИгенетика»).
5. Патогенность и антагонизм по отношению к вредному объекту
Непатогенны, способны к утилизации сложных углеводородов, осуществляя тем самым трансформацию нефтепродуктов при загрязнении почв, окисляют сероводород до сульфатов через образование молекулярной серы, обладающей бактерицидным действием, разлагают органические субстраты с выделением молекулярного водорода.
6. Способ, условия и состав питательных сред для хранения штамма
Хранение осуществляется методом субкультивирования, он заключается в пересевах культуры на твердую стерилизованную питательную среду Ван Ниля. Между пересевами микроорганизмы хранят в темноте при температурах 5-8°C.
Состав среды Ван Ниля, (%): NH4Cl - 0,1; MgCl2 - 0,02-0,05; KH2PO4 - 0,05-0,1; NaHCO3 - 0,5; Na2S × 9Н20 - 0,1; NaCl - 0,1-2, агар 20 г/л.
7. Способ, условия и состав питательных сред для размножения микроорганизмов.
Размножение осуществляется методом пересева активной культуры микроорганизмов на жидкую питательную среду Ван Ниля и культивирование при температуре 27-30°C в течение 24-72 ч, при доведении рН до 7,0-7,5 через 12 ч.
Состав жидкой среды Ван Ниля, (%): NH4Cl - 0,1; MgCl2 - 0,02-0,05; KH2PO4 - 0,05 - 0,1; NaHCO3 - 0,5; Na2S × 9Н2O - 0,1; NaCl - 0,1-2.
Готовую среду Ван Ниля стерилизуют при 0,5 атм, в течение 25 минут, охлаждают до 30°C, засевают культуру и выдерживают в течение 24-72 ч.
8. Способ обнаружения микроорганизма в микробных ассоциациях окружающей среды и биоматериале
Для обнаружения микроорганизмов используют полутвердую питательную среду Ван Ниля, которую разливают в чашки Петри и культивируют после засевания образца методом предельных разведений в течение 72 ч при температуре 27-30°C.
Состав жидкой среды Ван Ниля, (%): NH4Cl - 0,1; MgCl2 - 0,02-0,05; KH2РO4 - 0,05-0,1; NaHCO3 - 0,5; Na2S × 9Н2O - 0,1; NaCl - 0,1-2, агар 10 г/л.
Среду стерилизуют при 0,5 атм, в течение 25 минут, стерильную расплавленную среду разливают в стерильные чашки Петри.
9. Продукт, синтезируемый штаммом (химический состав, структурная формула, стабильность, метод определения остатков)
Культура осуществляет нитратредукцию. Для ее определения производится посев на среды Пфеннига, различающиеся по рН (от 3,0-9,0) и источнику азота: азот воздуха, либо азот нитратов (3 г/л KNO3). Через трое суток инкубации на свету и в темноте производят измерения плотности выросших культур и газохроматографический анализ. Нитратредуктазную активность оценивают по образованию закиси азота после внесения ацетилена. Нитрогеназную активность (азотфиксация) культур оценивали по восстановлению ацетилена.
Результаты раздельной активизации штаммов биомассабактерий Lactobacillus casei, Lactococcus lactis, Rhodopseudomonas palustris и Saccharomices cerevisiae, глубинного культивирования в ферментере консорциума штаммов биомассабактерий Lactobacillus casei, Lactococcus lactis, Rhodopseudomonas palustris и Saccharomices cerevisiae в культуральной жидкости, в которую вводится патока сахарной свеклы в качестве питательной среды размножения бактерий в массовой доле преимущественно 1,5% от объема культуральной жидкости с наличием посторонней микрофлоры не более 5%, культуры вносятся в культуральную жидкость в соотношении 1:100 и культивируются 3-5 дней при температуре 30 градусов до достижения значений рН 5,5-8,5 приведены в таблице 1.
Figure 00000001
Figure 00000002
Помимо консорциума микроорганизмов, которые находятся в коллекции предприятия в процессе приготовления «ЭМИКС» (препарат), используются следующие материалы:
Figure 00000003
В дальнейшем в подготовленный микробиологический препарат добавляют взятый в виде размолотого порошка в массовой доле около 10% - цеолиты кристаллические NaA, NaX, где Na - преобладающий в данном цеолите металл, а A и X - тип кристаллической решетки, полученная смесь далее ферментируется в течение 5 суток в ферментере при температуре 32-35 градусов Цельсия и постоянном перемешивании не менее чем 60 дисками диаметром 5 см, изготовленными из керамики, обработанной и выдержанной в микробиологическом растворе в течение 2-3 лет с последующим обжигом, собранными на металлические стрежни по 10 штук на каждом, которые прикреплены в виде колонн к крышке ферментера.
Из уровня техники известна керамика, состоящая из глины, замешанной на препарате и обжига ее с ЭМ полезными эффективными микроорганизмами, состоящими из ряда молочнокислых и фотосинтезирующих бактерий, дрожжей, сохраняющих свои жизнеспособность и свойства (энергетические, фунгистатические, бактерицидные) будучи внедренными в керамику (Higa Teruo. An Earth Saving Revolution. - Sunmark Publishing Inc, Tokyo Japan, 1994, стр. 311-367). Воздействие такой керамики недостаточно изучено, но уже представляет научный интерес.
Поэтому в конструкцию ферментера введены диски, изготовленные из ЭМ-керамики. ЭМ-керамика - это керамика, обработанная и выдержанная в микробиологическом растворе в течение 2-3 лет с последующим обжигом. В конструкции используются 60 дисков из ЭМ-керамики, каждый диаметром 5 см. Диски собраны на металлические стрежни по 10 штук на каждом. Стержни с дисками (6 штук) прикреплены в виде колонн к крышке ферментера.
Применение таких дисков позволяет стабилизировать процесс ферментации, ускорить его и увеличить содержание живых микроорганизмов в готовом продукте. Применение цеолита значительно обогащает минеральный состав готового средства «ЭМИКС».
По завершению процесса снимают показатели: кислотности, определяют титр микроорганизмов, готовый раствор отправляют на розлив.
По внешнему виду и физико-химическим показателям готовое удобрение «ЭМИКС» (название - товарный знак принадлежит заявителю) должно соответствовать требованиям, указанным в таблице 3.
Figure 00000004
Figure 00000005
Благодаря сочетанию всех вышеописанных факторов композиция «ЭМИКС»:
- выступает в роли накопителя и регулятора питательных элементов почвы, особенно тех которые легко вымываются: фосфор, железо, цинк, марганец и другие.
- оздоравливает почву и восстанавливает ее естественное плодородие,
- эффективно поддерживает необходимый уровень влажности,
- положительно влияет на рост и развитие растений,
- повышает урожайность,
- повышает иммунитет и невосприимчивость растений к болезням и вредителям,
- эффективна против колорадского жука,
- увеличивает устойчивость растений к неблагоприятным воздействиям внешней среды: морозу, жаре, засухе и др.,
- при высокой эффективности абсолютно безопасна для человека и домашних животных,
- позволяет проводить эффективную профилактику мест хранения урожая.
Композиция не содержит токсически значимых компонентов.
Композиция не представляет выраженной ингаляционной опасности.
В опытах на мышах и крысах при пероральном введении специфические симптомы острого отравления не выявлены.
Кожу не раздражает, слизистые оболочки глаза раздражает слабо.
Сенсибилизирующее и иммунотоксическое действие не установлено.
Нет необходимости исследовать на кумуляцию, кумулятивное действие для препаратов на основе живых бактерий нехарактерно.
Полученная согласно изобретению композиция является пожаро-взрывобезопасным веществом.
Рекомендуемые средства тушения пожаров на складах с удобрениями: вода, химическая и воздушно-механическая пена, углекислый газ.
Полученная согласно изобретению композиция может храниться в упаковке в прохладном сухом месте, отдельно от продуктов, лекарств и кормов; в местах недоступных для детей и животных, защищенных от прямых солнечных лучей. Температура хранения от 0 до 30°C. Вентиляция: не требуется. После контакта следует мыть руки в целом и лицо водой с мылом, перед тем как есть, пить или курить.
Стабильность композиции: стабильна в течение 12 месяцев при температуре от 0 до 30°C, но нужно защищать от прямого воздействия солнечных лучей. Хранится при температуре от 0 до 30°C.
Исследование показало, что полимеризация не произойдет.
Композиция несовместима с химическими пестицидами, обычно используемыми в обработки семян и посевов.
Проверка на токсичность показала:
Острая пероральная токсичность (ЛД50)
ЛД50 для мышей > 10000 мг/кг.
ЛД50 для крыс > 10000 мг/кг.
Острая дермальная токсичность (ЛД50)
ЛД50 для крыс > 2000 мг/кг.
Острая ингаляционная токсичность (ЛК50)
Микробиологические препараты не представляют выраженной ингаляционной опасности.
Клинические проявления острой интоксикации.
В опытах на мышах и крысах при пероральном введении специфические симптомы острого отравления не выявлены.
Раздражающее действие на кожу и слизистые оболочки (на крысах или кроликах)
Кожу не раздражает, слизистые оболочки глаза раздражает слабо.
Сенсибилизирующее и иммунотоксическое действие не установлено.
Нет необходимости исследовать на кумуляцию, кумулятивное действие для препаратов на основе живых бактерий нехарактерно.
Штаммы микроорганизмов непатогенны, невирулентны, не обладают токсичностью и токсикогенностью, не способны к диссеминации во внутренние органы теплокровных животных.
Штаммы микроорганизмов выделены из природных компонентов, продуктами метаболизма их при взаимодействии с почвой и растениями являются ферменты и физиологически активные вещества, аминокислоты, нуклеиновые кислоты и т.п. соединения, которые оказывают положительное влияние на рост и развитие растений.

Claims (1)

  1. Способ получения композиции для выращивания растений, включающий раздельную активизацию штаммов биомассабактерий Lactobacillus casei, Lactococcus lactis, Rhodopseudomonas palustris и Saccharomices cerevisiae, глубинное культивирование в ферментере консорциума штаммов биомассабактерий Lactobacillus casei, Lactococcus lactis, Rhodopseudomonas palustris и Saccharomices cerevisiae в культуральной жидкости, в которую вводится патока сахарной свеклы в качестве питательной среды размножения бактерий в массовой доле преимущественно 1,5% от объема культуральной жидкости с наличием посторонней микрофлоры не более 5%, культуры вносятся в культуральную жидкость в соотношении 1:100 и культивируются 3-5 дней при температуре 30 градусов до достижения значений рН 5,5-8,5, затем в подготовленный микробиологический препарат добавляют взятый в виде размолотого порошка в массовой доле около 10% - цеолиты кристаллические NaA, NaX, где Na - преобладающий в данном цеолите металл, а А и X - тип кристаллической решетки, полученная смесь далее ферментируется в течение 5 суток в ферментере при температуре 32-35 градусов Цельсия и постоянном перемешивании не менее чем 60 дисками диаметром 5 см, изготовленными из керамики, обработанной и выдержанной в микробиологическом растворе в течение 2-3 лет с последующим обжигом, собранными на металлические стрежни по 10 штук на каждом, которые прикреплены в виде колонн к крышке ферментера.
RU2014152869/13A 2014-12-25 2014-12-25 Способ получения композиции для выращивания растений RU2576197C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014152869/13A RU2576197C1 (ru) 2014-12-25 2014-12-25 Способ получения композиции для выращивания растений

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014152869/13A RU2576197C1 (ru) 2014-12-25 2014-12-25 Способ получения композиции для выращивания растений

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2576197C1 true RU2576197C1 (ru) 2016-02-27

Family

ID=55435703

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014152869/13A RU2576197C1 (ru) 2014-12-25 2014-12-25 Способ получения композиции для выращивания растений

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2576197C1 (ru)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5082488A (en) * 1990-06-20 1992-01-21 Mao Raymond L Van Soil conditioning
RU2264999C2 (ru) * 2003-02-10 2005-11-27 Нечесов Иван Александрович Биопрепарат для повышения продуктивности сельскохозяйственных культур
WO2013016361A2 (en) * 2011-07-25 2013-01-31 Synthetic Genomics, Inc. Compositions and methods for controlling head blight disease

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5082488A (en) * 1990-06-20 1992-01-21 Mao Raymond L Van Soil conditioning
RU2264999C2 (ru) * 2003-02-10 2005-11-27 Нечесов Иван Александрович Биопрепарат для повышения продуктивности сельскохозяйственных культур
WO2013016361A2 (en) * 2011-07-25 2013-01-31 Synthetic Genomics, Inc. Compositions and methods for controlling head blight disease

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101808525B (zh) Bacillus velezensis ah2菌株的纯培养物以及用于植物致病真菌的生物防治的产品
CN104498399B (zh) 沼泽红假单胞菌菌株、生防菌剂及其制备方法和应用
CN105886428A (zh) 一株微白黄链霉菌及其在微生物肥料中的应用
CN101643710B (zh) 一株枯草芽孢杆菌及其应用
CN104498386A (zh) 酸枣内生解淀粉芽孢杆菌新菌株sz23及发酵液的制备方法和应用
CN103555624B (zh) 一株固氮地衣芽孢杆菌及其用途
CN105002121B (zh) 一株简单芽孢杆菌及其应用
CN105801258A (zh) 一种枯草芽孢杆菌菌肥及其制备方法和应用
CN104152385A (zh) 一株莫哈韦芽孢杆菌菌株、微生物菌剂及其制备方法和应用
CN105062897B (zh) 一株高产厚垣孢子的绿色木霉及其应用
RU2264999C2 (ru) Биопрепарат для повышения продуктивности сельскохозяйственных культур
RU2529958C1 (ru) Штамм азотфиксирующих бактерий pseudomonas sp. для получения биопрепарата против заболеваний пшеницы, вызываемых фитопатогенными грибами, и повышения урожайности
CN107699526A (zh) 一株防治灰霉病的放线菌菌株及其应用
CN105018395B (zh) 一株短小芽孢杆菌及其在防治苹果斑点落叶病中的应用
CN111394270B (zh) 一株藤黄类诺卡氏菌及其应用
RU2576197C1 (ru) Способ получения композиции для выращивания растений
CN110331114A (zh) 一株耐盐碱抗病促生菌天牛微杆菌及其应用
CN109182189A (zh) 一株高产的氧化微杆菌及其应用
CN106190916A (zh) 一株解淀粉芽孢杆菌jnc2及其菌剂的制备方法和应用
CN108315282B (zh) 一株甲基营养型芽孢杆菌及其在防治白蜡褐斑病中的应用
RU2422511C1 (ru) ШТАММ БАКТЕРИЙ Brevibacillus laterosporus, ПРОДУЦИРУЮЩИЙ ШИРОКИЙ СПЕКТР БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ СОЕДИНЕНИЙ
CN102210329B (zh) 局限曲霉28代谢产物在防治黄瓜立枯病菌中的应用
CN108424861B (zh) 一种伊朗链霉菌及其应用
Bawazir et al. Actinomycetes from Mountains of Hadhramout–Yemen
CN103981122A (zh) 一种赣州慢生根瘤菌及其用途