RU2575797C2 - Биодобавка в питательную среду для культивирования клеток животных и репродукции на них вирусов - Google Patents

Биодобавка в питательную среду для культивирования клеток животных и репродукции на них вирусов Download PDF

Info

Publication number
RU2575797C2
RU2575797C2 RU2014100291/10A RU2014100291A RU2575797C2 RU 2575797 C2 RU2575797 C2 RU 2575797C2 RU 2014100291/10 A RU2014100291/10 A RU 2014100291/10A RU 2014100291 A RU2014100291 A RU 2014100291A RU 2575797 C2 RU2575797 C2 RU 2575797C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
viruses
temperature
pike
reproduction
extract
Prior art date
Application number
RU2014100291/10A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2014100291A (ru
Inventor
Аркадий Васильевич Иванов
Эдие Миначетдиновна Плотникова
Николай Иванович Гурьянов
Ленар Ринатович Хазиев
Андрей Иванович Самсонов
Равиль Галиахметович Фазлиахметов
Ирина Сергеевна Глаголева
Диана Идрисовна Нигьматуллина
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности" (ФГУ "ФЦТРБ-ВНИВИ")
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности" (ФГУ "ФЦТРБ-ВНИВИ") filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр токсикологической, радиационной и биологической безопасности" (ФГУ "ФЦТРБ-ВНИВИ")
Priority to RU2014100291/10A priority Critical patent/RU2575797C2/ru
Publication of RU2014100291A publication Critical patent/RU2014100291A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2575797C2 publication Critical patent/RU2575797C2/ru

Links

Abstract

Изобретение относится к биотехнологии. Предложена биодобавка в питательную среду для культивирования клеток животных и репродукции на них вирусов, представляющая собой экстракт из кабачков и мышц щуки. Указанный экстракт получают экстрагированием измельченных гомогенизатором тканей кабачков и мышц щуки раствором Хэнкса в соотношении 1:3 при температуре 1-2°С в течение 24 ч, центрифугированием и сбором супернатантов. Осуществляют замораживание супернатантов при температуре -20°С в течение 5-7 суток, оттаивание при температуре 4-20°С, очистку. Смешивают полученные экстракты растительного и животного происхождения в соотношении 1:1 и стерилизуют фильтрацией. Полученный экстракт характеризуется следующими показателями: оптической плотностью 0,081±0,004 ед. опт. пл., рН 7,26±0,04, содержанием общего белка 9,1±0,04 г/л, свободного гемоглобина 0 г/л, общих липидов 0,15±0,07 г/л, общего холестерина 0,02±0,01 ммоль/л. Изобретение обеспечивает повышение роста клеток животных и репродукции на них вирусов. 6 табл., 5 пр.

Description

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для культивирования линий клеток животных тканей и репродукции на них вирусов.
Из практики культивирования клеток известно, что для этой цели используют сыворотку крови разных видов животных (крупного рогатого скота, лошадей, кроликов, свиней, кур и др.). Известно, что сыворотка крови плодов коров и сыворотка молодых животных обладает более высокой ростостимулирующей активностью, чем сыворотка взрослых животных (Дьяконов Л.П., 2009 // Животная клетка в культуре / Методы применения в биотехнологии. - Изд-во «Спутник», М, 2009. - 656 с. ), но чаще всего клетки выращиваются на среде с сывороткой крови взрослого крупного рогатого скота. Оптимальная концентрация сыворотки в культуральной питательной среде составляет 10% (Голубев Д.Б. и др., 1976 // Руководство по применению клеточных культур в вирусологии. - Л.: Медицина, 1976 с. 222).
Кроме сывороток крови в состав культуральных питательных сред включают гидролизаты как растительного, так и животного происхождения: ферментативные гидролизаты белков гороха и сои (Гизитдинов Н.Н. и др. // Разработка паточного способа изготовления сухих белковых гидролизатов гороха и сои / Н.Н. Гизитдинов, Ю.Х. Бахтахунов, М.Т. Велямов / Вестник с/х. науки Казахстана. - №1. - 1984. - С. 62-64.; Патент 2103360 РФ, МКИ6 C12N 5/09, 1998, Бюл. №3; Онищенко Г.Г. и др., 2007); предложено значительное число белковых гидролизатов животного происхождения (казеина, молока, цельной крови, сыворотки крови, эмбрионов, внутренних органов, мышечной ткани), а также пептон Витте, бактопептон. Наибольшее распространение в практике культур клеток получила среда с гидролизатом лактальбумина - ГЛА (Melnik J., Riordan J., 1952).
Из всех аналогов, применяемых в качестве биодобавок в культуральные среды при выращивании клеток животных и репродукции на них вирусов, в качестве прототипа мы использовали сыворотку крови плодов коров, так как она оказывает минимальное негативное воздействие, как на рост клеток, так и на накопление в них вирусной массы (Патент RU №2455015 С1, 2012). Но данная биодобавка имеет ряд недостатков:
1. По некоторым оценкам, 55% общей стоимости работ на культурах клеток приходится на сывороточный компонент, хотя он составляет всего 10% от общего объема питательной среды.
2. В связи с резким снижением поголовья КРС возникли большой дефицит в данной сыворотке крови и дороговизна. Поиск замены сыворотки крови животных в культуральной среде более дешевыми биологически активными веществами является перспективным направлением.
Цель предлагаемого изобретения - возможность введения в практику культивирования клеток в качестве ростстимулирующего фактора в питательные среды биодобавки, состоящей из экстрактов кабачков и мышц щуки. Основополагающей позитивной стороной использования данного комбинированного экстракта, является то обстоятельство, что он заведомо не может содержать антител и вирусов против инфекционных заболеваний сельскохозяйственных животных, а также содержит в себе биологически активные вещества как животного, так и растительного происхождения.
Химический состав полученного продукта характеризуется следующими показателями (табл. 1) www.mosbiotehworld.ru.
Figure 00000001
Figure 00000002
Figure 00000003
Схема получения фито-зооэкстратов из кабачков и мышц щуки:
1. Мацерация тканей гомогенизатором;
2. Экстрагирование измельченных тканей раствором Хэнкса в соотношении 1:3 в полиэтиленовые канистры при температуре +1-2ºC в течение 24 часов;
3. Центрифугирование и сбор супернатантов;
4. Замораживание экстрактов при температуре -20ºC в течение 5-7 суток;
5. Оттаивание экстрактов при температуре +4-20ºC;
6. Предварительная очистка экстрактов через марлю, а затем глубинный фильтр EKS;
7. Смешивание экстрактов растительного и животного происхождения в соотношении 1:1;
8. Стерилизующая фильтрация комбинированного экстракта мембранными фильтрами фирм «Millipore», «Владисарт»;
9. Контроль профильтрованных экстрактов на возможное присутствие в них контаминантов путем посева их на бактериологические среды: МПА, МПБ, Китт-Тароцци, ТПС-агар, ТПС-бульон, Сабуро, Чапека.
Пример 1. Изучение состава сыворотки крови плодов коров и комбинированного экстракта из кабачков и мышц щуки (ЭК+ЭМЩ).
Для опытов было приготовлено по 3 серии сыворотки крови плодов коров и комбинированного экстракта из кабачков и мышц щуки, результаты приведены в табл. 2.
Figure 00000004
Из таблицы 1 следует, что сыворотка крови плодов коров по физико-химическим показателям соответствует требованиям, предъявляемым к ним Минздравом РФ. Что касается фито-зооэкстракта, то он имеет сравнительно низкие оптическую плотность, концентрации общего белка, общих липидов, в том числе холестерина, а свободный гемоглобин в нем отсутствует. Несмотря на низкое содержание общего белка в экстракте, как показано в дальнейших исследованиях, он является хорошей биодобавкой в питательные среды при культивировании клеток и репродукции на них вирусов, так как лишь небольшая часть биологически активных веществ используется клетками.
Пример 2. Рост культур клеток LEK, MDBK, РК-15, Vero на среде Игла MEM с 10% сыворотки крови плодов коров и фито-зооэкстрактом при посевной концентрации 40 тыс кл/мл.
В качестве контроля в опытах использовали сыворотку крови плодов коров. Монослой маточной культуры снимали со стекла раствором трипсина-версена (1:3), далее получали клеточную суспензию и в концентрации 40 тысяч кл/мл рассевали по 2 см3 во флаконы емкостью 10 см3 с посевной площадью 3 см3.
Пролиферативная активность культур клеток MDBK, LEK, РК-15 и Vero исследовалась после 72-часовой инкубации в средах с фито-зооэкстрактом, а также с сывороткой крови плодов коров. Клетки снимали со стекла раствором трипсина-версена (1:3), наливая в каждый флакон по 3 см3, и подсчитывали в камере Горяева. Для дифференциации живых и мертвых клеток использовали 1%-ный раствор метиленового синего. Количество живых клеток подсчитывали в 4-х камерах. Определяли среднее значение и рассчитывали концентрацию клеток в 1 мл по формуле:
Figure 00000005
где 1000 - количество кубических миллиметров в 1 см3;
а - количество клеток в камере;
н - разведение клеточной суспензии;
0,9 - объем камеры Горяева в мм3.
С сывороткой крови плодов коров и комбинированным экстрактом из кабачков и мышц щуки было проведено по 5 серий опытов. Индекс пролиферации клеток, как показатель ростстимулирующей активности, рассчитывали общепринятым методом по Антонову Б.И. (1986).
Более детально ростстимулирующую активность биодобавок на перечисленных выше перевиваемых культурах клеток приведена в табл. 3.
Figure 00000006
Figure 00000007
Из таблицы 2 следует, при культивировании перевиваемых клеток LEK, MDBK, РК-15, Vero, что лучшую пролиферацию их обеспечивает сыворотка крови плодов коров как контрольная (ИП 6,06-7,02), хотя комбинированная биодобавка из экстрактов кабачков и мышц щуки обеспечивает рост клеток почти на том же уровне (ИП 5,65-6,85).
Пример 3. Рост культур клеток РК-15 и Vero при плотности посева 20 тыс кл/см2 на среде Игла MEM с 10% сыворотки крови плодов коров и фито-зооэкстрактом. Результаты исследований отражены в табл. 4.
Figure 00000008
Из таблицы 3 видно, что комбинированный экстракт из кабачков и мышц щуки хорошо стимулирует рост клеток РК-15 и Vero даже при сравнительно низкой плотности их посева (20 тыс. кл/см2).
Пример 4. Изучение репродукции вирусов инфекционного ринотрахеита (ИРТ), парагриппа-3 (ПГ-3) на перевиваемых культурах клеток MDBK, LEK, соответственно.
В ходе эксперимента было проведено 5 последовательных пассажей каждого вируса. Результаты исследований приведены в табл. 5.
Figure 00000009
Из таблицы 4 следует, что репродукция вируса инфекционного ринотрахеита в культуре клеток MDBK выше, когда в ростовой среде находилась сыворотка крови плодов коров (титр = 7,1º0,2 lg ТЦД50/см3), но на 0,5 lg ТЦД50/мл меньше в случае использования комбинированной биодобавки из кабачков и мышц щуки (6,6º0,2 lg ТЦД50/см3). Титр вируса парагриппа-3 в культуре клеток LEK, выращенной на среде с фито-зооэкстрактом, был незначительно ниже (6,4º0,3 lg ТЦД50/см3), по сравнению с тем, когда в ростовой среде находилась сыворотка крови плодов коров (6,8º0,3 lg ТЦД50/см3).
Пример 5. Изучение репродукции реовируса тип I штамм «Lang» на перевиваемой культуре клеток Vero. Результаты исследований отражены в табл. 6.
Figure 00000010
Как видно из таблицы 5, репродукция реовируса на культуре клеток Vero, с добавлением в культуральную среду комбинированного экстракта из кабачков и мышц щуки совпадала по значению, когда клетки культивировались в среде с сывороткой крови плодов коров (1:64 в РГА, 1 n
Figure 00000011
). Полученные результаты свидетельствуют о беспрепятственном накоплении массы реовируса в культуре клеток Vero, выращиваемой на среде Игла MEM с 10% фито-зооэкстракта.

Claims (1)

  1. Биодобавка в питательную среду для культивирования клеток животных и репродукции на них вирусов, представляющая собой экстракт из кабачков и мышц щуки, полученный путем экстрагирования измельченных гомогенизатором тканей кабачков и мышц щуки раствором Хэнкса в соотношении 1:3 при температуре 1-2°C в течение 24 ч, центрифугирования и сбора, полученных супернатантов, замораживания при температуре -20°C в течение 5-7 суток, оттаивания при температуре 4-20°C, очистки, смешивания экстрактов растительного и животного происхождения в соотношении 1:1, стерилизующей фильтрации полученного экстракта, характеризующегося следующими показателями: оптической плотностью 0,081±0,004 ед. опт. пл., pH 7,26±0,04, содержанием общего белка 9,1±0,04 г/л, свободного гемоглобина 0 г/л, общих липидов 0,15±0,07 г/л, общего холестерина 0,02±0,01 ммоль/л.
RU2014100291/10A 2014-01-09 Биодобавка в питательную среду для культивирования клеток животных и репродукции на них вирусов RU2575797C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014100291/10A RU2575797C2 (ru) 2014-01-09 Биодобавка в питательную среду для культивирования клеток животных и репродукции на них вирусов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014100291/10A RU2575797C2 (ru) 2014-01-09 Биодобавка в питательную среду для культивирования клеток животных и репродукции на них вирусов

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2014100291A RU2014100291A (ru) 2015-07-20
RU2575797C2 true RU2575797C2 (ru) 2016-02-20

Family

ID=

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1700053A1 (ru) * 1990-02-23 1991-12-23 Институт биохимии АН ЛитССР Способ культивировани вируса лейкоза крупного рогатого скота
RU2377295C1 (ru) * 2008-06-11 2009-12-27 Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) Питательная среда для культивирования клеток млекопитающих

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1700053A1 (ru) * 1990-02-23 1991-12-23 Институт биохимии АН ЛитССР Способ культивировани вируса лейкоза крупного рогатого скота
RU2377295C1 (ru) * 2008-06-11 2009-12-27 Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФГУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) Питательная среда для культивирования клеток млекопитающих

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Методы культивирования клеток. Под редакцией Г.П. Пинаева. Л.: "Наука", 1988, с. 47-54. *
ХАЗИЕВ Л.Р. Способ оптимизации состава и свойств культуральной среды для репродукции вирусов // Ученые записки Казанской Государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э.Баумана, Казань, 2012, том 211, с. 183-187. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gibor Some ecological relationships between phyto-and zooplankton
KR101950245B1 (ko) 남조류 스피룰리나 추출물을 함유하는 세포 배양액, 이의 제조방법, 및 이를 이용한 세포의 배양방법
CN102492623B (zh) 海水盾纤毛虫体外活体培养培养基的制备及培养方法
CN109097298A (zh) 一种富集培养法制备噬菌蛭弧菌制剂的方法
CN105664150B (zh) 一种鸡新城疫病毒、禽流感病毒和禽腺病毒三联灭活疫苗
CN106222131B (zh) 一种羔羊睾丸支持细胞自然传代细胞系及其在羊痘病毒分离培养和增殖中的用途
CN105582533A (zh) 一种禽流感病毒、禽腺病毒二联灭活疫苗
CN108048327A (zh) 一种高效分离硅藻的新方法
CN105535958A (zh) 一种鸡新城疫病毒、传染性支气管炎、禽腺病毒三联灭活疫苗
CN102886043B (zh) 猪乙型脑炎病毒与猪细小病毒二联灭活疫苗及其制备方法
CN101481679A (zh) 鱼卵细胞提取物及其在诱导人成体细胞分化为多能干细胞中的应用
RU2575797C2 (ru) Биодобавка в питательную среду для культивирования клеток животных и репродукции на них вирусов
CN103484425B (zh) 一种大黄鱼头肾细胞系及其构建方法
CN104830665A (zh) 螺旋藻的培育方法及专用装置
RU2414227C1 (ru) Иммуномодулятор для выращивания бройлеров и способ его применения
CN104450630A (zh) 用鹅胚成纤维细胞系培养小鹅瘟病毒的方法
RU2588666C1 (ru) Компонент питательной среды для культивирования клеток млекопитающих
CN110684718B (zh) 一种暗纹东方鲀原代肝细胞高效分离及培养方法
CN106636261A (zh) 一种间充质干细胞分泌素的培养方法
RU2804076C1 (ru) Питательная среда для культивирования перевиваемых культур клеток
CN105969739A (zh) 一株适应于Vero细胞培养的赤羽病病毒疫苗株及其用途
Bbockelman et al. Rhabditis maupasi: occurrence in food snails and cultivation
CN105770885B (zh) 一种鸡新城疫病毒、禽腺病毒二联灭活疫苗
CN103611156A (zh) 一种禽用五联疫苗及其制备方法
KR102494136B1 (ko) 배양육 생산용 근육세포 배양용 배지 조성물, 이의 제조방법 및 세포 생산 방법