RU2525937C1 - Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации рнк вируса мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени - Google Patents

Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации рнк вируса мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени Download PDF

Info

Publication number
RU2525937C1
RU2525937C1 RU2013135815/10A RU2013135815A RU2525937C1 RU 2525937 C1 RU2525937 C1 RU 2525937C1 RU 2013135815/10 A RU2013135815/10 A RU 2013135815/10A RU 2013135815 A RU2013135815 A RU 2013135815A RU 2525937 C1 RU2525937 C1 RU 2525937C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
machupo virus
species
rna
virus
polymerase chain
Prior art date
Application number
RU2013135815/10A
Other languages
English (en)
Inventor
Владимир Александрович Терновой
Андрей Николаевич Шиков
Александра Олеговна Семенцова
Александр Петрович Агафонов
Александр Николаевич Сергеев
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"" (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"" (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор") filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"" (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор")
Priority to RU2013135815/10A priority Critical patent/RU2525937C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2525937C1 publication Critical patent/RU2525937C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение касается набора олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченного зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации РНК вируса Мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени. Представленный набор включает последовательности олигонуклеотидов, видоспецифичные для вируса Мачупо и имеющие следующую структуру:
внешний: 5΄→3΄ 5΄ TCCTCYTCACCCCTTTTGTTCTTTCT 3΄
внутренний: 5΄→3΄ 5΄ CGCACAGTGGATCCTAGGCA 3΄
зонд: R6G - TGAGTCCACCGRAAGCTGGGRATYTCYTT - BHQ1. Охарактеризованное решение может быть использовано в медицинской практике для выявления генетического материала вируса Мачупо в клинических или секционных образцах. 2 ил., 1 табл., 2 пр.

Description

Изобретение относится к наборам олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации РНК вируса Мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени и может быть использовано в медицинской практике для выявления генетического материала вируса Мачупо в клинических или секционных образцах для уточнения диагноза, а также для решения научно-исследовательских задач по изучению свойств вируса Мачупо, созданию диагностических, профилактических или лечебных препаратов против вируса Мачупо. Использование специфичных праймеров и зондов позволяет выявлять генетический материал вируса Мачупо в исследуемых образцах методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме реального времени.
Вирус Мачупо является представителем рода Arenavirus семейства Arenaviridae (http://www.ictvonline.org/virusTaxonomy.asp?version=2011). Вирусный геном сегментирован (L- и S-сегменты) и представлен одноцепочечной РНК.
Вирус Мачупо является возбудителем Боливийской геморрагической лихорадки - острого инфекционного заболевания, характеризующегося природной очаговостью; аспирационным (воздушно-пылевой путь), фекально-оральным и контактным механизмами передачи возбудителя; тяжелым течением с общеинтоксикационным синдромом, экзантемой, геморрагическим синдромом, поражением сердечно-сосудистой и нервной системы.
Эндемичной территорией для вируса Мачупо являются сельскохозяйственные районы на северо-востоке Боливии и севере Парагвая. Вспышки заболевания регистрируются с 1959 года с интервалом в несколько лет. Последняя крупная вспышка (более 200 заболевших) произошла в 2008 году [Aguilar P.V., Camargo W., Vargas J. et al. Reemergence of Bolivian hemorrhagic fever, 2007-2008. // Emerg. Infect. Dis. - 2009. - 15(9). - P.1526-28]. Переносчиком вируса Мачупо и источником заражения для человека являются грызуны Calomys callosus. Люди инфицируются в результате контактов с инфицированными животными, их экскрементами и мочой, содержащими вирус. Заболевание регистрируется чаще у жителей сельских районов. Кроме этого возможна вторичная передача вируса Мачупо от человека человеку [Charrel R.N., Lamballerie X. Arenaviruses other than Lassa virus. // Antiviral Research. - 2003. - 57(1-2). - P.89-100].
Летальность при заболевании боливийской геморрагической лихорадкой составляет примерно 20 % [Bradfute S.B., Stuthman K.S., Shurtleff A.C., Bavari S. A STAT-1 knockout mouse model for Machupo virus pathogenesis. // Virol. J. - 2011. - 8:300. - doi: 10.1186/1743-422X-8-300].
Актуальность своевременной диагностики лихорадки Мачупо в странах, не являющихся эндемичными территориями, связана с возможностью завоза этой инфекции из Южной Америки.
Известна тест-система для раннего выявления заболевания, вызываемого вирусом Мачупо, на основе метода ИФА с возможностью определения наличия специфических иммуноглобулинов класса М [ S., H., T. et al. Serological Assays Based on Recombinant Viral Proteins for the Diagnosis of Arenavirus Hemorrhagic Fevers // Viruses. - 2012. - 4(10). - P.2097-114].
Однако иммуноглобулины класса М появляются на 10-20 сут после заражения, что приводит к поздней диагностики заболевания.
Известны наборы праймеров для флуоресцентной количественной ПЦР-диагностики вируса Мачупо (патент Китая № CN101805802, МПК C12Q1/68; C12Q1/70; G01N21/64, опубл. 2010-08-18). Полимеразная цепная реакция (ПЦР) является методом ранней диагностики аренавирусных инфекций и позволяет обнаруживать РНК вируса Мачупо с первых дней появления клинических признаков.
Наиболее близким аналогом (прототипом) является ПЦР тест-система для выявления РНК вируса Мачупо методом обратной транскрипции в режиме реального времени. [Vieth S., Drosten Ch., Charrel R., et al. Establishment of conventional and fluorescence resonance energy transfer-based real-time PCR assays for detection of pathogenic New World arenaviruses // J. Clin. Virol. - 2005. - 32. - P.229-35].
Однако чувствительность тест-систем выше приведенного аналога и прототипа составляла около 50 ТЦД50/реакцию, а аналитическая чувствительность - около 100 геномных эквивалентов/реакцию.
Техническим результатом изобретения является разработка более чувствительного набора специфичных олигонуклеотидных праймеров и зонда для выявления генетического материала вируса Мачупо в клинических образцах и биологических жидкостях, образцах внешней среды и других вируссодержащих пробах (культуральная вируссодержащая жидкость и др.) методом ОТ-ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией в режиме реального времени.
Указанный технический результат достигается тем, что набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации РНК вируса Мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени включает последовательности олигонуклеотидов, видоспецифичные для вируса Мачупо и имеющие следующую структуру:
внешний:
5΄→3΄ 5΄ TCCTCYTCACCCCTTTTGTTCTTTCT 3΄
внутренний:
5΄→3΄ 5΄ CGCACAGTGGATCCTAGGCA 3΄
зонд:
R6G - TGAGTCCACCGRAAGCTGGGRATYTCYTT - BHQ1
Изобретение иллюстрируется следующими графическими материалами. На фиг.1 и 2 представлены кривые флуоресценции на канале R6G/Yellow (530 nm/555 nm) амплификатора Rotor Gene 6000.
В приложении приведены олигонуклеотидные последовательности, видоспецифичные РНК вируса Мачупо.
Методика получения набора праймеров и зонда. Диагностические праймеры и флуоресцентно-меченый зонд конструировались для участка S-сегмента генома вируса Мачупо и оптимизации концентраций компонентов реакционной смеси и условий проведения ПЦР. Для контроля амплификации были получены рекомбинантные плазмиды, несущие вирусспецифический участок ДНК-матрицы.
На начальном этапе был проведен анализ нуклеотидных последовательностей геномов вируса Мачупо, имеющихся в базе данных NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/), и определены консервативные участки. В качестве мишени для диагностических праймеров и зонда был выбран находящийся в S-сегменте вирусного генома участок гена N, кодирующего нуклеокапсидный белок.
Анализ свойств олигонуклеотидных праймеров и зондов проводился с использованием программы Vector NTI 9.0.0 (InforMax).
Для идентификации генетического материала вируса Мачупо методом ПЦР в реальном времени были подобраны праймеры и зонд, представленные ниже:
F/MACHV TCCTCYTCACCCCTTTTGTTCTTTCT
R/MACHV CGCACAGTGGATCCTAGGCA
Z/MACHV (R6G)-TGAGTCCACCGRAAGCTGGGRATYTCYTT-(BHQ1)
Пример 1. Проверка аналитической чувствительности набора праймеров и зондов.
Для контроля амплификации были получены положительные контрольные образцы (ПКО), представляющие собой рекомбинантные плазмиды, несущие вирусспецифические вставки, являющиеся матрицей для амплификации вирусспецефических ДНК-фрагментов.
Для проведения ПЦР в режиме реального времени, в качестве анализируемых образцов использовали рекомбинантную плазмидную ДНК, включающую вставку ДНК, соответствующую детектируемому участку генома вируса Мачупо.
Условия проведения амплификации оптимизировались по следующим параметрам: концентрация ионов магния в реакционной смеси; концентрация праймеров и зонда в реакционной смеси; температура отжига праймеров.
Для определения аналитической чувствительности из концентрированного раствора плазмидной ДНК были приготовлены последовательные 10-кратные разведения. Определение концентрации ДНК осуществляли при помощи флуориметра QUBIT (Invitrogen, США) и наборов реагентов того же производителя.
ПЦР в режиме реального времени для детекции генетического материала вируса Мачупо проводили в приборе Rotor Gene 6000 (Corbett Research, Австралия), детекцию результатов амплификации (рисунок 1) осуществляли по каналу R6G/Yellow (530 nm/555 nm).
Минимальное количество ДНК-матриц, детектируемое в ПЦР после оптимизации условий проведения реакции, выраженное в ГЭ (геномных эквивалентах), составило 10 ГЭ в образце.
На фиг.1 представлены кривые флуоресценции на канале R6G/Yellow (530 nm/555 nm) амплификатора Rotor Gene 6000 (Corbett Research, Австралия). Стрелкой обозначена кривая флуоресценции, соответствующая ПКО. Обозанчение образцов, содержащих разные концентрации ДНК-матрицы: 1 - 1010 ГЭ; 2 - 109 ГЭ; 3 - 108 ГЭ; 4 - 107 ГЭ; 5 - 106 ГЭ; 6 - 105 ГЭ; 7 - 104 ГЭ; 8 - 103 ГЭ; 9 - 102 ГЭ; 10 - 10 ГЭ в образце.
Пример 2. Определение РНК вируса Мачупо в вируссодержащих образцах.
Для проверки специфичности использовали культуральную вируссодержащую жидкость (КВЖ) с титром вируса Мачупо 4,2 × 105 БОЕ/мл. Для проведения реакции использовали 20 мкл КВЖ.
Инактивацию образцов и выделение РНК проводили в условиях, регламентированных Методическими указаниями МУ 1.3. 2569 -09 «Организация работы лабораторий, использующих методы амплификации нуклеиновых кислот при работе с материалом, содержащим микроорганизмы I - IV групп патогенности».
Процедуру выделения РНК из исследуемого материала проводили с использованием набора реагентов «Рибо-сорб» (ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора) в соответствии с инструкцией по применению.
Реакцию обратной транскрипции проводили с использованием набора реагентов «Реверта-L» (ФГУН ЦНИИЭ Роспотребнадзора) в соответствии с инструкцией по применению.
ПЦР в режиме реального времени проводили в реакционной смеси следующего состава (на 1 исследование):
кДНК 5 мкл
10×Taq буфер без Mg2+ 3 мкл
100 mM раствор MgCl2 1 мкл
5 mM раствор dNTP 1 мкл
Смесь праймеров и зондов (по 2 о.е. каждого) по 1 мкл каждого
Smart Taq DNA-Полимераза 5 ед/ мкл 0,3 мкл
Вода для ПЦР до 30 мкл общего объема
ПЦР в режиме реального времени и регистрацию результатов проводили в приборе Rotor Gene 6000 (Corbett Research, Австралия) по следующей программе, представленной в таблице 1.
Таблица 1. Программа проведения ПЦР
Температура (оС) Время (минуты:секунды) Количество циклов
95 05:00 1
95 00:10 45
54 00:20
72 00:20
Измерение флуоресценции осуществляли при температуре 54 С на канале R6G/Yellow.
Результаты интерпретировали на основании наличия (или отсутствия) пересечения кривой флуоресценции с установленной на соответствующем уровне пороговой линией, что соответствует наличию (или отсутствию) значения порогового цикла Ct в соответствующей графе в таблице результатов.
На фиг 2 приведены кривые флуоресценции образцов, содержащих вирус Мачупо, на канале R6G/Yellow (530 nm/555 nm) амплификатора Rotor Gene 6000 (Corbett Research, Австралия), из которых видно, что используемые праймеры и зонд выявляли РНК вируса Мачупо в образце, кривая накопления флуоресценции имела характерную «сигмовидную» форму и пересекала пороговую линию при значение Ct не больше 10.
Таким образом, минимальное количество РНК вируса, детектируемое в ПЦР после оптимизации условий проведения реакции, выраженное в ГЭ (геномных эквивалентах), составило 10 ГЭ в образце, вследствие чего чувствительность заявляемых праймеров значительно выше прототипа.
Приложение
<110> Федеральное бюджетное учреждение науки «Государственный
научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"» (ФБУН
ГНЦ ВБ "Вектор")
<120> Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации РНК вируса Мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени
<210> 1
<223> Последовательности олигонуклеотидов видоспецифические к вирусу Мачупо,
<400> 1 для выявленя РНК вируса Мачупо:
внешний:
5΄→3΄ 5΄ TCCTCYTCACCCCTTTTGTTCTTTCT 3΄ (26 н)
внутренний:
5΄→3΄ 5΄ CGCACAGTGGATCCTAGGCA 3΄ (20 н)
зонд:
R6G - TGAGTCCACCGRAAGCTGGGRATYTCYTT - BHQ1 (29 н)

Claims (1)

  1. Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации РНК вируса Мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени, включающий последовательности олигонуклеотидов, видоспецифичные для вируса Мачупо и имеющие следующую структуру:
    внешний:
    5΄→3΄ 5΄ TCCTCYTCACCCCTTTTGTTCTTTCT 3΄
    внутренний:
    5΄→3΄ 5΄ CGCACAGTGGATCCTAGGCA 3΄
    зонд:
    R6G - TGAGTCCACCGRAAGCTGGGRATYTCYTT - BHQ1
RU2013135815/10A 2013-07-30 2013-07-30 Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации рнк вируса мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени RU2525937C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013135815/10A RU2525937C1 (ru) 2013-07-30 2013-07-30 Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации рнк вируса мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2013135815/10A RU2525937C1 (ru) 2013-07-30 2013-07-30 Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации рнк вируса мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2525937C1 true RU2525937C1 (ru) 2014-08-20

Family

ID=51384673

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2013135815/10A RU2525937C1 (ru) 2013-07-30 2013-07-30 Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации рнк вируса мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2525937C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2699525C2 (ru) * 2017-07-17 2019-09-05 Федеральное государственное бюджетное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт" Министерства обороны Российской Федерации Штамм С/2014 вируса Мачупо - возбудителя Боливийской геморрагической лихорадки, предназначенный для лабораторной оценки эффективности медицинских средств защиты в отношении данного возбудителя

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101805802A (zh) * 2010-04-12 2010-08-18 中国检验检疫科学研究院 荧光定量pcr检测马秋波病毒的方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101805802A (zh) * 2010-04-12 2010-08-18 中国检验检疫科学研究院 荧光定量pcr检测马秋波病毒的方法

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Simon Vieth et al., Establishment of conventional and fluorescence resonance energy transfer-based real-time PCR assays for detection of pathogenic New World arenaviruses, Journal of Clinical Virology, 2005, Vol.32,p.p.229–235. О.В.Мельникова и др., Санитарная охрана территории от завоза и распространения особо опасных вирусных инфекций. Сообщение 6. Аргентинская и Боливийская геморрагические лихорадки, ЭПИДЕМИОЛОГИЯ, Проблемы особо опасных инфекций, 2010, вып. 104, стр.29-34 *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2699525C2 (ru) * 2017-07-17 2019-09-05 Федеральное государственное бюджетное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт" Министерства обороны Российской Федерации Штамм С/2014 вируса Мачупо - возбудителя Боливийской геморрагической лихорадки, предназначенный для лабораторной оценки эффективности медицинских средств защиты в отношении данного возбудителя

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Yapar et al. Rapid and quantitative detection of Crimean-Congo hemorrhagic fever virus by one-step real-time reverse transcriptase-PCR
RU2629604C1 (ru) Набор олигонуклеотидных праймеров и зондов для идентификации вируса клещевого энцефалита, вируса лихорадки Западного Нила, боррелий и риккетсий методом мультиплексной ПЦР в режиме реального времени
Borm et al. A universal avian endogenous real-time reverse transcriptase–polymerase chain reaction control and its application to avian influenza diagnosis and quantification
CN111286559B (zh) 检测非洲猪瘟病毒的引物、探针及试剂盒
RU2473702C1 (ru) Набор олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно меченых зондов для идентификации рнк коронавирусов видов 229е, nl63, ос43, hku1 методом гибридизационно-флуоресцентной обратно-транскриптазной полимеразной цепной реакции
JP4950656B2 (ja) 核酸検出
CN102676697B (zh) 检测小反刍兽疫病毒的引物和探针及试剂盒
Orlowska et al. Comparison of real-time PCR and heminested RT-PCR methods in the detection of rabies virus infection in bats and terrestrial animals
RU2525937C1 (ru) Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации рнк вируса мачупо методом полимеразной цепной реакции в реальном времени
RU2515911C1 (ru) Набор олигодезоксирибонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченых зондов для идентификации рнк и дифференциации вируса парагриппа человека 1, 2, 3 и 4 типов
RU2586527C1 (ru) Олигонуклеотидные праймеры, флюоресцентный зонд и способ для выявления генома вируса эпизоотической диареи свиней методом обратной транскрипции - полимеразной цепной реакции
CN108411042A (zh) 一种检测乙型脑炎病毒的荧光定量pcr引物及试剂盒
JP2010252659A (ja) 鳥インフルエンザウイルスのna亜型判定用プライマーセット
Suarez Molecular diagnostic techniques: can we identify influenza viruses, differentiate subtypes and determine pathogenicity potential of viruses by RT-PCR?
RU2525938C1 (ru) Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентномеченого зонда для видоспецифичной экспресс-идентификации рнк вируса хунин методом полимеразной цепной реакции в реальном времени
CN206768111U (zh) 一种检测杯状病毒的巢式pcr检测试剂盒
Wu et al. Development of Taqman RT-nested PCR system for clinical SARS-CoV detection
CN111363849A (zh) 一种新型冠状病毒核酸检测试剂盒及检测方法
RU2822161C1 (ru) Способ выявления РНК вируса Хендра вида Hendra henipavirus методом ОТ-ПЦР в реальном времени
KR20150066859A (ko) 에볼라 및 마버그 바이러스 검출용 프로브 및 프라이머 세트를 이용한 원 스텝 실시간 역전사 중합효소 연쇄반응 방법
Nemoto et al. Evaluation of cobas Influenza A/B & RSV Test for Diagnosis of Equine Influenza
RU2552795C1 (ru) Набор олигонуклеотидных праймеров и флуоресцентно-меченого зонда для идентификации рнк вируса лихорадки долины рифт методом от пцр в реальном времени
RU2761481C1 (ru) Тест-система для выявления SARS-CoV-2, Influenza virus A, Influenza virus B методом одношаговой полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией
CN102559924B (zh) 手足口病EV71病毒real-time RT-PCR检测试剂盒及其非诊断检测方法
RU2816270C2 (ru) Способ выявления вируса Nipah методом ОТ-ПЦР в реальном времени