RU2393217C1 - Питательная среда для культивирования каллусной культуры artemisia annua l. - Google Patents

Питательная среда для культивирования каллусной культуры artemisia annua l. Download PDF

Info

Publication number
RU2393217C1
RU2393217C1 RU2009100365/13A RU2009100365A RU2393217C1 RU 2393217 C1 RU2393217 C1 RU 2393217C1 RU 2009100365/13 A RU2009100365/13 A RU 2009100365/13A RU 2009100365 A RU2009100365 A RU 2009100365A RU 2393217 C1 RU2393217 C1 RU 2393217C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
tylosis
culturing
artemisia annua
culture
cell culture
Prior art date
Application number
RU2009100365/13A
Other languages
English (en)
Inventor
Раиса Александровна Карначук (RU)
Раиса Александровна Карначук
Юлия Валерьевна Медведева (RU)
Юлия Валерьевна Медведева
Вячеслав Юрьевич Дорофеев (RU)
Вячеслав Юрьевич Дорофеев
Сергей Владимирович Песяк (RU)
Сергей Владимирович Песяк
Original Assignee
Государственное образовательное учреждение Высшего профессионального образования "Томский государственный университет"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное образовательное учреждение Высшего профессионального образования "Томский государственный университет" filed Critical Государственное образовательное учреждение Высшего профессионального образования "Томский государственный университет"
Priority to RU2009100365/13A priority Critical patent/RU2393217C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2393217C1 publication Critical patent/RU2393217C1/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к культивированию клеточных культур лекарственных растений. Питательная среда для культивирования каллусной культуры Artemisia annua L. содержит, мг/л: KNO3 - 1900, NH4NO3 - 1650, CaCl2·6H2O - 332, MgSO4·7H2O - 370, KH2PO4 - 170, FeSO4·7H2O - 27,85, Na2ЭДТА - 37,25, Н3ВО3 - 6,2, MnSO4·5H2O - 24,1, ZnSO4·7H2O - 8,6, Na2MoO4 - 0,25, KI - 0,83, CuSO4·5H2O - 0,025, CoCl2·6H2O - 0,025, пиридоксин - 1,0, тиамин хлорид - 1,0, никотинамид - 1,0, 6-БАП - 0,2, НУК - 0,5-1,0, сахароза - 30000, агар - 9000 и воду - до 1 л. Это обеспечивает ускорение роста каллусной ткани, увеличение выхода биомассы и расширение арсенала питательных сред для культивирования каллусной культуры Artemisia annua L. 1 табл.

Description

Изобретение относится к области биотехнологии, в частности к культивированию клеточных культур лекарственных растений. Область применения - медицинская промышленность, получение нового вида сырья биологически активных веществ растительного происхождения для получения новых высокоэффективных лекарственных препаратов.
Известна питательная среда для выращивания ткани CILYCCYNILA URALENSIS - продуцента сапонинов (заявка РФ №94026958, А01Н 4/00, публ. 1996.06.10). В известном изобретении для выращивания каллусной ткани CILYCCYNILA URALENSIS используют среду Линсмайера-Скуга с добавлением фитогормонов НУК и 6-БАП.
Известна питательная среда для культивирования каллусной ткани SILENE VULGARIS (MOENCH) GARCKE (патент РФ №2169769, C12N 5/04, публ. 2001/06/27). В известном изобретении агаризованную среду, содержащую макро- и микросоли по Мурасиге и Скугу, витамины и гормоны роста, модифицируют гормональным составом 6-БАП и 2,4-Д. Среда дополнительно содержит фолиевую кислоту, рибофлавин, биотин, Сапантотенат и никотинамид как источник PP. Установление концентраций используемых солей и витаминов позволяет получить каллусную ткань с периодом субкультивирования 21 сутки и с выходом биомассы 7,14-12,77 г/л. Недостатками известных аналогов является их направленность на культивирование определенных видов растений: cilyccynila uralensis, silene vulgaris, следовательно, оптимизированная среда для выращивания этих видов не подойдет для выращивания Artemisia annua L. Вторым недостатком является использование большого количества различных регуляторов роста, таких как фолиевая кислота, биотин и др. Их использование требует значительного капиталовложения.
Известна питательная среда для культивирования каллусной ткани Artemisia annua L. (Ashish Baldi, V.K. Dixit Yeild enhancement strategies for Artemisinin production by suspension cultures of Artemisia annua L. Bioresource technology 99 (2008) 4609-4614), выбранная в качестве прототипа. В указанном изобретении для культивирования каллусной и суспензионной культур Artemisia annua L. применяют среду Мурасиге-Скуга, модифицированную добавлением фитогормонов НУК и кинетина и стимуляторов роста: элиситоров (таких, как метилжасмонат), и предшественников артемизинина (таких, как лактон мевалоновой кислоты).
Недостатками известной питательной среды для культивирования клеточной культуры Artemisia annua L. является то, что в качестве одного из гормонов роста используется кинетин, который может влиять на размеры клеток в сторону их уменьшения и отрицательно влиять на накопление вторичных метаболитов, а также то, что для интенсификации роста суспензионной культуры используют дорогие элиситоры и предшественники артемизинина.
Задачей настоящего изобретения является разработка состава питательной среды для культивирования каллусной ткани Artemisia annua L. с целью ускорение роста каллусной ткани и высокого выхода биомассы. Поставленная задача решается тем, что питательная среда для культивирования каллусной ткани Artemisia annua L. содержит агаризованную среду с макро- и микросолями по Мурасиге и Скугу, фитогормоны, витамины, сахарозу, но в отличие от прототипа в качестве гормона дополнительно добавляют бензоаминопурин (6-БАП) при следующем соотношении компонентов, мг/л:
KNO3 - 1900
NH4NO3 - 1650
CaCl2·6H2O - 332
MgSO4·7H2O - 370
KH2PO4 - 170
FeSO4·7H2O - 27,85
2ЭДТА - 37,25
Н3ВО3 - 6,2
MnSO4·5H2O - 24,1
ZnSO4·7H2O - 8,6
Na2MoO4 - 0,25
KI - 0,83
CuSO4·5H2O - 0,025
CoCl2·6H2O - 0,025
Пиридоксин - 1,0
Тиамин хлорид - 1,0
Никотинамид - 1,0
6-БАП - 0,2
НУК - 0,5-1,0
Сахароза - 30000
Агар - 9000
Вода - До 1 л
Для приготовления питательной среды готовят концентрат макросолей, при этом каждая из макросолей растворяется последовательно в небольшом количестве воды, а затем объем доводится до 1 л. Аналогично готовятся концентраты микросолей, Fe-хелата, витаминов. Макро- и микросоли, Fe-хелат, витамины в виде концентратов смешивают в небольшом количестве воды. Затем к полученной смеси добавляют 6-БАП (6-бензиламинопурин), НУК
Figure 00000001
сахарозу и все тщательно перемешивают. Раствор доводят дистиллированной водой до 1 л и разливают по 150 мл в колбы на 250 мл, добавляя по 1,35 г агара, с последующей стерилизацией в автоклаве 20 мин при 1,2-1,4 атм. Каллусную ткань высаживают в возрасте 15-20 суток, инокулюм - 100-200 мг. Культивирование каллусной ткани проводится при 26±1°С в условиях непрерывной темноты или на белом свету интенсивностью 2000-4000 лк. Основное количество биомассы накапливается к 15 суткам культивирования, затем ткань переходит к фазе замедленного роста и к 20 суткам ее рост практически прекращается. Ниже приведены примеры конкретного осуществления изобретения.
Пример 1
Для приготовления питательной среды готовят концентрат макросолей (KNO3 - 1900 мг/л, NH4NO3 - 1650 мг/л, MgSO4·7H2O - 370 мг/л, КН2РO4 - 170 мг/л), при этом каждая из макросолей растворяется последовательно в небольшом количестве воды, а затем объем доводится до 1 л. Аналогично готовятся концентраты микросолей (Н3ВО3 - 6,2 мг/л, MnSO4·5H2O - 24,1 мг/л, ZnSO4·7H20 - 8,6 мг/л, Na2MoO4·2Н2O - 0,25 мг/л, KI - 0,83 мг/л, CuSO4·5H2O - 0,025 мг/л, CaCl2·6H2O - 0,025 мг/л), Fe-хелата (FeSO4·7H2O - 27,85 мг/л, Nа2ЭДТА - 37,25 мг/л), СаСl2 (СаCl·6Н2O - 332 мг/л), витаминов (Пиридоксин - 1,0 мг/л, Тиамин хлорид - 1,0 мг/л, Никотинамид - 1,0 мг/л). Макро- и микросоли, Fe-хелат, CaCl2, витамины в виде концентратов смешивают в небольшом количестве воды. Затем к полученной смеси добавляют 6-БАП (0,2 мг/л), НУК (0,5 мг/л), сахарозу (30000 мг/л) и все тщательно перемешивают. Раствор доводят дистиллированной водой до 1 л и разливают по 150 мл в колбы на 250 мл, добавляя по 1,35 г агара, с последующей стерилизацией в автоклаве 20 мин при 1,2-1,4 атм. Пробирки стерилизуют в сухожаровом шкафу при 160°С. Затем в асептических условиях в них разливают питательную среду. Каллусную ткань высаживают в возрасте 15-20 суток, инокулюм - 100-200 мг. Культивирование каллусной ткани проводится при 26±1°С в условиях непрерывной темноты или на белом свету интенсивностью 2000-4000 лк.
Пример 2
Для приготовления питательной среды готовят концентрат макросолей (КNО3 - 1900 мг/л, NH4NO3 - 1650 мг/л, MgSO4·7H2O - 370 мг/л, КН2PO4 - 170 мг/л), при этом каждая из макросолей растворяется последовательно в небольшом количестве воды, а затем объем доводится до 1 л. Аналогично готовятся концентраты микросолей (Н3ВО3 - 6,2 мг/л, MnSO4·5H2O - 24,1 мг/л, ZnSO4·7H2O - 8,6 мг/л, Na2MoO4·2H2O - 0,25 мг/л, KI-0,83 мг/л, CuSO4·5H20 - 0,025 мг/л, CoCl2·6H2O - 0,025 мг/л), Fe-хелата (FeSO4·7H2O - 27,85 мг/л, Na2ЭДТА - 37,25 мг/л), СаСl2 (CaCl2O - 332 мг/л), витаминов (Пиридоксин - 1,0 мг/л, Тиамин хлорид - 1,0 мг/л, Никотинамид - 1,0 мг/л). Макро- и микросоли, Fe-хелат, CaCl2, витамины в виде концентратов смешивают в небольшом количестве воды. Затем к полученной смеси добавляют 6-БАП (0,2 мг/л), НУК (1 мг/л), сахарозу (30000 мг/л) и все тщательно перемешивают. Раствор доводят дистиллированной водой до 1 л и разливают по 150 мл в колбы на 250 мл, добавляя по 1,35 г агара, с последующей стерилизацией в автоклаве 20 мин при 1,2-1,4 атм. Пробирки стерилизуют в сухожаровом шкафу при 160°С. Затем в асептических условиях в них разливают питательную среду. Каллусную ткань высаживают в возрасте 15-20 суток, инокулюм - 100-200 мг. Культивирование каллусной ткани проводится при 26±1°С в условиях непрерывной темноты или на белом свету интенсивностью 2000-4000 лк.
Ростовые характеристики каллусной культуры Artemisia annua L., выращенной на средах с различным содержанием фитогормонов, представлены в Таблице 1.
Таким образом, настоящее изобретения позволяет культивировать каллусную культуру Artemisia annua L. с максимальным выходом биомассы за короткий период времени по сравнению с прототипом.
Таблица 1.
Ростовые характеристики каллусной культуры Artemisia annua L., выращенной на средах с различным содержанием фитогормонов.
Состав питательной среды Индекс роста каллусной культуры (по сырой биомассе) Воздушно-сухой вес ткани, г на 1 л среды
0,5 мг/л НУК 0,2 мг/л БАП 7,3±1,25 23,8000±3,25
1 мг/л НУК 0,2 мг/л БАП 6,76±2,05 25,2000±2,91

Claims (1)

  1. Питательная среда для культивирования каллусной культуры Artemisia annua L., характеризующаяся тем, что она содержит компоненты в следующем количественном соотношении, мг/л:
    KNO3 1900 NH4NO3 1650 CaCl2·6Н2О 332 MgSO4·7H2O 370 КН2РО4 170 FeSO4·7Н2О 27,85 Na2ЭДTA 37,25 Н3ВО3 6,2 MnSO4·5H2O 24,1 ZnSO4·7H2O 8,6 Na2MoO4 0,25 KI 0,83 CuSO4·5H2O 0,025 CoCl2·6H2O 0,025 Пиридоксин 1,0 Тиамин хлорид 1,0 Никотинамид 1,0 6-БАП 0,2 НУК 0,5-1,0 Сахароза 30000 Агар 9000 Вода до 1 л
RU2009100365/13A 2009-01-11 2009-01-11 Питательная среда для культивирования каллусной культуры artemisia annua l. RU2393217C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009100365/13A RU2393217C1 (ru) 2009-01-11 2009-01-11 Питательная среда для культивирования каллусной культуры artemisia annua l.

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009100365/13A RU2393217C1 (ru) 2009-01-11 2009-01-11 Питательная среда для культивирования каллусной культуры artemisia annua l.

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2393217C1 true RU2393217C1 (ru) 2010-06-27

Family

ID=42683607

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2009100365/13A RU2393217C1 (ru) 2009-01-11 2009-01-11 Питательная среда для культивирования каллусной культуры artemisia annua l.

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2393217C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2718254C1 (ru) * 2019-10-09 2020-03-31 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Северо-Восточный федеральный университет имени М.К.Аммосова" Способ культивирования каллусной культуры полыни обыкновенной (Artemisia vulgaris L.)

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Ashish Baldi, V.K. Dixit Yeild enhancement strategies for Artemisinin production by suspension cultures of Artemisia annua L. Bioresurs technologi, 2008, т.99, с.4609-4614. *
Биотехнология растений: культура клеток /Под ред. Р.Г.Бутенко. - М.: Агропромиздат, 1989, с.267, 272. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2718254C1 (ru) * 2019-10-09 2020-03-31 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Северо-Восточный федеральный университет имени М.К.Аммосова" Способ культивирования каллусной культуры полыни обыкновенной (Artemisia vulgaris L.)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Deamici et al. Static magnetic fields in culture of Chlorella fusca: Bioeffects on growth and biomass composition
KR20160045149A (ko) 액체 배양에서 수지상체 균근 곰팡이의 연속 번식 및 대량 생산을 위한 시스템 및 방법
RU2010101310A (ru) Золотистые водоросли и способ производства
US6713303B2 (en) Method for the mass propagation of adventitious roots of ginseng, camphor ginseng and wild ginseng by tissue culture and the improvement of their saponin content
RU2757318C1 (ru) Способ получения микрорастений лекарственного растения Stephania glabra (Roxb.) Miers
RU2393217C1 (ru) Питательная среда для культивирования каллусной культуры artemisia annua l.
RU2360964C1 (ru) КУЛЬТУРА КОРНЯ Hed.th. (Hedysarum theinum Krasnob.) - ПРОДУЦЕНТ ИЗОФЛАВОНОВ
RU2458121C1 (ru) СПОСОБ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КАЛЛУСНОЙ ТКАНИ Centaurea scabiosa l
CN113455502B (zh) 水溶性萘乙酸与吲哚丁酸在卵囊藻培养中的应用
RU2422515C1 (ru) ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КЛЕТОЧНОЙ КУЛЬТУРЫ Atragene speciosa Weinm
KR20020057882A (ko) 미세조류 옥외대량 배양방법 및 배양장치
KR20110132368A (ko) 마비성 조류독소를 생산하는 단리된 시아노박테리아 종의 대량 취득 및 생산 방법
Mishchenko et al. Possibility of reproduction of Linum usitatissimum L. from seeds with low germination and viability in vitro conditions
RU2542481C2 (ru) Способ получения бактериологически чистых культур морских сине- зеленых микроводорослей
RU2718253C1 (ru) Способ получения каллусной культуры змееголовника дланевидного (Dracocephalum palmatum Steph.) в условиях in vitro
RU2596402C1 (ru) ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ КАЛЛУСНОЙ КУЛЬТУРЫ БОЛИГОЛОВА ПЯТНИСТОГО (Conium maculatum L)
Mahmud et al. Selection of cell source and the effect of pH and MS macronutrients on biomass production in cell cultures of tongkat ali (Eurycoma longifolia Jack)
Md Setamam Effects of different concentration of both naphthaleneacetic acid and 6-benzylaminopurine in callus induction of capsicum frutescens/Nursuria Md. Setamam
RU2169769C1 (ru) Питательная среда для культивирования каллусной ткани silene vulgaris (moench) garcke
KR101188165B1 (ko) 2단 생물학적 반응기와 유도물질 처리를 이용한 참당귀세포배양에서의 이차대사산물의 생산성 증대방법
KR20200121524A (ko) 규조류 배양 시 보조색소인 후코산틴의 함량 향상방법
CN110241158B (zh) 一种促进裸藻蛋白合成的方法
EA202092144A3 (ru) Способ получения каллусной культуры клеток artemisia vulgaris l.
RU2429290C1 (ru) Способ получения каллусной ткани лотоса орехоносного
CN115449485B (zh) 一种养殖海水小球藻的方法

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20170112