RU2332464C1 - Method of plague and pseudotuberculosis microbe differentiation with parallel interspecies differentiation of plague microbe strains - Google Patents

Method of plague and pseudotuberculosis microbe differentiation with parallel interspecies differentiation of plague microbe strains Download PDF

Info

Publication number
RU2332464C1
RU2332464C1 RU2007131672/13A RU2007131672A RU2332464C1 RU 2332464 C1 RU2332464 C1 RU 2332464C1 RU 2007131672/13 A RU2007131672/13 A RU 2007131672/13A RU 2007131672 A RU2007131672 A RU 2007131672A RU 2332464 C1 RU2332464 C1 RU 2332464C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strains
plague
subspecies
microbe
differentiation
Prior art date
Application number
RU2007131672/13A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Елена Германовна Булгакова (RU)
Елена Германовна Булгакова
Анна В чеславовна Гаева (RU)
Анна Вячеславовна Гаева
Иль Юрьевич Сухоносов (RU)
Илья Юрьевич Сухоносов
Ярослав Михайлович Краснов (RU)
Ярослав Михайлович Краснов
Наталь Петровна Гусева (RU)
Наталья Петровна Гусева
Владимир Викторович Кутырев (RU)
Владимир Викторович Кутырев
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (РосНИПЧИ "Микроб")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (РосНИПЧИ "Микроб") filed Critical Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (РосНИПЧИ "Микроб")
Priority to RU2007131672/13A priority Critical patent/RU2332464C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2332464C1 publication Critical patent/RU2332464C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: biology.
SUBSTANCE: invention concerns medical microbiology. The method involves extraction of the analysed strain DNA, polymerase chain reaction (PCR) using synthetic TAN1 and TAN2 primers complementary to hutG - YP01967 zone and featuring the following nucleotide sequences: TAN1-5'-TGGGCTTGAATACGGATGATG-3', TAN2-5'-ACAACCATGCTGACGTGGG-3'. Species and subspecies of the analysed microbe strains are defined by comparing amplicone volume produced by the analysed strains with markers, particularly with a mix of amplicones produced with TAN1 and TAN2 primers, and reference plague and pseudotuberculosis microbe strain DNA.
EFFECT: fast and accurate differentiation of plague and pseudotuberculosis microbe strains and inter-species differentiation of plague microbe strains.
3 cl, 3 dwg, 6 ex

Description

Изобретение относится к области медицинской микробиологии, в частности к дифференциации возбудителей чумы и псевдотуберкулеза и молекулярно-генетическому типированию штаммов чумного микроба разного происхождения.The invention relates to the field of medical microbiology, in particular to the differentiation of plague and pseudotuberculosis pathogens and molecular genetic typing of plague microbe strains of different origin.

Дифференциация двух близкородственных и высокогомологичных видов рода иерсиний - чумного микроба (I группа патогенности) и значительно менее опасного возбудителя псевдотуберкулеза (III группа патогенности) важна при мониторинге природных очагов чумы. Своевременное выявление активизации природного очага позволяет с помощью противоэпидемических мероприятий предотвратить возникновение заболеваний среди людей, проживающих или работающих в зоне активного природного очага чумы. В то же время выяснение происхождения штамма чумного микроба имеет большое значение для определения его потенциальной опасности. Штаммы основного подвида относят к наиболее вирулентным и эпидемически значимым, штаммы неосновных подвидов (алтайский, гиссарский, кавказский, удэгейский) и группу таласских штаммов относят к эпидемически мало значимым с избирательной вирулентностью. Особое значение приобретает возможность быстрой идентификации и определения происхождения штамма при террористических актах с применением патогенных биологических агентов и выявлении завозных случаев этой особо опасной инфекции.The differentiation of two closely related and highly homologous species of the Yersinia genus - the plague microbe (pathogenicity group I) and the much less dangerous pseudotuberculosis pathogen (pathogenicity group III) is important in monitoring natural plague foci. Timely identification of activation of the natural focus allows using anti-epidemic measures to prevent the occurrence of diseases among people living or working in the zone of the active natural focus of plague. At the same time, elucidation of the origin of the plague microbe strain is of great importance for determining its potential danger. The strains of the main subspecies are classified as the most virulent and epidemiologically significant, strains of non-main subspecies (Altai, Hissar, Caucasian, Udege) and the group of Talas strains are considered to be of little epidemiological significance with selective virulence. Of particular importance is the ability to quickly identify and determine the origin of the strain in terrorist acts using pathogenic biological agents and detect imported cases of this especially dangerous infection.

Для дифференциации штаммов чумного микроба используются различные методы молекулярно-генетического типирования, такие как IS-типирование, риботипирование, пульс-электрофорез, мультилокусное секвенирование, VNTR-типирование. Однако методы молекулярного типирования, основанные на ДНК- или РНК- зондировании, макрорестрикционном анализе с электрофорезом в импульсном поле, секвенировании трудоемки, требуют применения радиоактивной или нерадиоактивной метки и использования дорогостоящего оборудования (вакуумный аппарат для переноса-фрагментов ДНК из геля на мембраны, аппарат для гибридизации, аппарат для электрофореза в импульсном поле, секвенатор).Various methods of molecular genetic typing are used to differentiate strains of the plague microbe, such as IS typing, ribotyping, pulse electrophoresis, multilocus sequencing, VNTR typing. However, molecular typing methods based on DNA or RNA probing, macrorestriction analysis with pulsed field electrophoresis, sequencing are laborious, require the use of a radioactive or non-radioactive label and the use of expensive equipment (a vacuum apparatus for transferring DNA fragments from gel to membranes, an apparatus for hybridization, apparatus for electrophoresis in a pulsed field, sequencer).

Широкое распространение получили методы индикации, идентификации и дифференциации возбудителей инфекционных заболеваний, основанные на ПЦР-технологии. Преимуществами этих методов являются простота исполнения, быстрое получение результатов, относительно недорогое оборудование и расходные материалы.Widespread methods for the indication, identification and differentiation of infectious pathogens based on PCR technology. The advantages of these methods are ease of execution, quick results, relatively inexpensive equipment and supplies.

Для индикации возбудителя чумы в методах, основанных на полимеразной цепной реакции, в качестве ДНК-мишени используют отдельные хромосомные или плазмидные гены, чаще всего pla, caf. lcrV или сочетание двух-трех генов (Hinnebusch B.J., 1998; Leal N.C., Almedia A.M., 1999; Neubauer H. et al., 2000; Rahalison L. et al., 2000; Hongwei Z.J.L., 2000; Балахонов С.В. с соавт. 1999, 2000; Гаранина С.Б., 2001, Сучков И.Ю. с соавт., 2001). Данные методы позволяют выявлять чумной микроб в любом биологическом материале без выделения чистой культуры и в ряде случаев дают представление о потенциальной вирулентности штамма. Однако для типирования, определения подвидовой принадлежности они не пригодны.To indicate the causative agent of the plague in methods based on the polymerase chain reaction, individual chromosomal or plasmid genes are used as the target DNA, most often pla, caf. lcrV or a combination of two or three genes (Hinnebusch BJ, 1998; Leal NC, Almedia AM, 1999; Neubauer H. et al., 2000; Rahalison L. et al., 2000; Hongwei ZJL, 2000; Balakhonov S.V. et al. 1999, 2000; Garanina, S. B., 2001, I. Suchkov et al., 2001). These methods make it possible to identify the plague microbe in any biological material without isolating a pure culture and in some cases give an idea of the potential virulence of the strain. However, for typing, determining subspecies affiliation, they are not suitable.

Наиболее близким к предлагаемому изобретению по совокупности существенных признаков является способ дифференциации авирулентных вследствие потери области пигментации и вирулентных штаммов чумного микроба (RU 2288275 С1, 27.11.2006), включающий выделение тотальной ДНК, проведение ПЦР с праймерами IH 1-5'ТТТ-ACC-GCA-ACA-ACA-TCA-TCC-3', IY 4-5'GGG-CTG-AAA-CCA-CTG-AGA-TG-3', выявление и последующий анализ специфичных ампликонов. Однако в этом случае решается узкая задача - дифференциация вирулентных и авирулентных штаммов чумного микроба. Способ не позволяет проводить подвидовую дифференциацию и дифференциацию с близкородственными штаммами псевдотуберкулезного микроба.Closest to the proposed invention in terms of essential features is a method for differentiating avirulent due to loss of pigmentation region and virulent plague microbe strains (RU 2288275 C1, 11.27.2006), including isolation of total DNA, PCR with primers IH 1-5'TTT-ACC- GCA-ACA-ACA-TCA-TCC-3 ', IY 4-5'GGG-CTG-AAA-CCA-CTG-AGA-TG-3', identification and subsequent analysis of specific amplicons. However, in this case, a narrow problem is solved - the differentiation of virulent and avirulent strains of the plague microbe. The method does not allow for subspecies differentiation and differentiation with closely related strains of the pseudotuberculosis microbe.

Техническим результатом изобретения является обеспечение возможности быстрой, простой в исполнении и интерпретации результатов дифференциации штаммов чумного и псевдотуберкулезного микробов и одновременной внутривидовой дифференциации штаммов чумного микроба.The technical result of the invention is the ability to quickly, easily execute and interpret the results of differentiation of strains of plague and pseudotuberculosis microbes and simultaneous intraspecific differentiation of strains of plague microbe.

Сущность изобретения заключается в том, что из исследуемого материала выделяют тотальную ДНК, проводят при определенных условиях и режиме амплификации ПЦР с праймерами TAN1 и TAN2, комплементарными hutG - YP01967 области, выявляют методом электрофореза в агарозном или полиакриламидном геле ампликоны определенного размера, специфичные для псевдотуберкулезного микроба и каждого из подвидов чумного микроба, при этом праймеры имеют следующие нуклеотидные последовательности:The essence of the invention lies in the fact that total DNA is isolated from the test material, carried out under certain conditions and PCR amplification mode with TAN1 and TAN2 primers complementary to the hutG - YP01967 region, amplicons of a certain size specific for pseudotuberculosis are detected by agarose or polyacrylamide gel electrophoresis and each of the subspecies of the plague microbe, with the primers having the following nucleotide sequences:

TAN1-5'-TGGGCTTGAATACGGATGATG-3'TAN1-5'-TGGGCTTGAATACGGATGATG-3 '

TAN2-5'-ACAACCATGCTGACGTGGG-3',TAN2-5'-ACAACCATGCTGACGTGGG-3 ',

дифференциацию (видовую и внутривидовую) осуществляют путем сравнения ампликонов исследуемых штаммов с маркерами. В качестве маркеров возможно использование стандартных маркеров или смесь ампликонов, образованных с праймерами TAN1-TAN2 и ДНК референтных штаммов чумного и псевдотуберкулезного микробов. В качестве стандартного маркера возможно использование ДНК pUC 19, обработанной рестриктазой MspI.differentiation (species and intraspecific) is carried out by comparing the amplicons of the studied strains with markers. As markers, it is possible to use standard markers or a mixture of amplicons formed with TAN1-TAN2 primers and DNA of reference strains of plague and pseudotuberculosis microbes. As a standard marker, it is possible to use pUC 19 DNA treated with MspI restrictase.

В качестве референтных штаммов чумного микроба используют следующие штаммы:The following strains are used as reference strains of the plague microbe:

- для основного подвида - штаммы 231 из Аксайского высокогорного очага, А 1822 из Кызылкумского пустынного очага, А 1270 из Забайкальского степного очага, 805 из Приараксинского низкогорного очага;- for the main subspecies — strains 231 from the Aksay highland center, A 1822 from the Kyzylkum desert center, A 1270 from the Transbaikal steppe center, 805 from the Priaraksinsky low mountain center;

- для удэгейского подвида - штаммы из Монголии: И3069 из аймака Убурхангай и И2422 из Баян-Улэгейского аймака.- for the Udege subspecies - strains from Mongolia: I3069 from the aimak Uburkhangai and I2422 from the Bayan-Ulgeey aimag.

- для алтайского подвида - штаммы Алтайского высокогорного очага: И2183 из Уландрика и И2359 из Кош-Агачского района;- for the Altai subspecies - strains of the Altai hotbed: I2183 from Ulandrik and I2359 from the Kosh-Agach region;

- для гиссарского подвида - штамм А 1249 из Гиссарского высокогорного очага;- for the Hissar subspecies - strain A 1249 from the Hissar highland focus;

- для таласской группы штамм А1802 из Таласского высокогорного очага;- for the Talas group, strain A1802 from the Talas high mountain center;

- для кавказского подвида - штамм 1146 из Зангезуро-Карабахского горного очага.- for the Caucasian subspecies - strain 1146 from the Zangezuro-Karabakh mountain center.

В качестве референтных штаммов псевдотуберкулезного микроба используют штаммы I серотипа А2526 (Алма-Атинская область) и MollaretI.As reference strains of the pseudotuberculosis microbe, strains I of serotype A2526 (Alma-Ata region) and MollaretI are used.

Дифференциацию чумного и псевдотуберкулезного микробов, а также определение подвидовой принадлежности осуществляют по размерам образовавшихся ампликонов. Для точного определения размера ампликонов, образованных с ДНК референтных штаммов, и используемых в качестве маркера, проведено их секвенирование.The differentiation of plague and pseudotuberculosis microbes, as well as the determination of subspecies belonging to the size of the formed amplicons. To accurately determine the size of the amplicons formed from the DNA of the reference strains and used as a marker, they were sequenced.

При секвенировании установлено, что штаммы псевдотуберкулезного микроба I серотипа, выделенные в Алма-Атинской области и во Франции, образуют ампликоны размером 692 п.н. и 711 п.н. соответственно. Штаммы чумного микроба основного подвида по размеру образованных ампликонов разделяются на три группы: первая группа представлена штаммом из Аксайского высокогорногой очага - размер ампликона 364 п.н., вторая группа представлена штаммами из Забайкальского степного. Тувинского горного очагов и Монголии - размер ампликона 356 п.н., третья группа представлена штаммами из Кызылкумского пустынного, Приараксинского низкогорного очагов - размер ампликона 348 п.н.. Штаммы улэгейского подвида по размеру ампликонов разделяются на две группы: первая группа представлена штаммами из Монголии, аймака Убурхангай - размер ампликона 416 п.н, вторая группа - штаммами из Монголии, Баян-Улэгейского аймака - размер ампликона 348 п.н. Третья группа основного подвида и вторая группа улэгейского подвида имеют ампликоны одинакового размера, но различаются по нуклеотидному составу. При обнаружении ампликонов размером 348 п.н. рекомендуется проведение секвенирования ампликонов для дифференциации штаммов из указанных очагов основного и удэгейского подвидов. Штаммы алтайского подвида делятся на две группы: первая группа представлена штаммом из Алтайского горного очага, Кош-Агачского района - размер ампликона 396 п.н, вторая группа представлена штаммами из Алтайского горного очага, из Уландрика - размер ампликона 405 п.н. Штаммы гиссарского подвида циркулируют только в Гиссарском высокогорном очаге и образуют ампликоны размером 456 п.н. Штаммы таласской группы циркулируют только в Таласском высокогорном очаге и образуют ампликоны размером 380 п.н. Штаммы кавказского подвида из Зангезуро-Карабахского горного очага образуют ампликоны размером 1819 п.н., из Присеванского горного очага 1807 п.н., из Приараксинского низкогорного очага 1831 п.н., из Ленинаканского горного и Терско-Сунженского низкогорного очагов - 1803 п.н. Различия на 10-30 п.н у фрагментов такой величины при разделении методом гель-электрофореза не улавливаются. В связи с этим в качестве референтного штамма кавказского подвида используется только один штамм из Зангезуро-Карабахского горного очага. Данные, позволяющие соотнести размер ампликонов исследуемых штаммов с определенным видом, подвидом микроорганизмов и местом его персистенции, представлены в таблице (см. фиг. 3).During sequencing, it was found that strains of the pseudotuberculosis microbe of I serotype isolated in the Alma-Ata region and in France form amplicons of 692 bp in size. and 711 bp respectively. The strains of the plague microbe of the main subspecies are divided into three groups according to the size of the formed amplicons: the first group is represented by a strain from the Aksai high-mountainous outbreak - the amplicon size is 364 bp, the second group is represented by strains from the Transbaikal steppe. Tuva mountain foci and Mongolia - the size of the amplicon is 356 bp, the third group is represented by strains from the Kyzylkum desert, Priaraksinsky low mountain foci - the size of the amplicon is 348 bp. The strains of the Ulege subspecies are divided into two groups according to the size of amplicons: the first group is represented by strains from Mongolia, aimak Uburkhangay - amplicon size 416 bp, the second group - strains from Mongolia, Bayan-Ulgey aimag - amplicon size 348 bp The third group of the main subspecies and the second group of the Ulgean subspecies have amplicons of the same size, but differ in nucleotide composition. Upon detection of amplicons of 348 bp in size amplicon sequencing is recommended to differentiate strains from the indicated foci of the main and Udege subspecies. The strains of the Altai subspecies are divided into two groups: the first group is represented by a strain from the Altai mountain center, the Kosh-Agach region - the amplicon size is 396 bp, the second group is represented by strains from the Altai mountain center, from Ulandrik - the size of the amplicon is 405 bp. The strains of the Hissar subspecies circulate only in the Gissar highland focus and form amplicons of 456 bp in size. Strains of the Talas group circulate only in the Talas high mountain center and form amplicons of 380 bp in size. The strains of the Caucasian subspecies from the Zangezuro-Karabakh mountain center form amplicons 1819 bp in size, from the Prissevan mountain center 1807 bp, from the Priaraksinsky low-mountain center 1831 bp, from the Leninakan mountain and Tersko-Sunzhensky low-mountain center - 1803 p .n. Differences of 10-30 bp in fragments of this magnitude are not detected upon separation by gel electrophoresis. In this regard, only one strain from the Zangezuro-Karabakh mountain center is used as a reference strain of the Caucasian subspecies. Data allowing to correlate the size of the amplicons of the studied strains with a certain type, subspecies of microorganisms and the place of its persistence are presented in the table (see Fig. 3).

Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.

Выделение тотальной ДНК из исследуемого материала, подозрительного на зараженность чумным или псевдотуберкулезным микробом, осуществляют по стандартной методике для Y.pestis. (Организация работы при исследованиях методом ПЦР материала, инфицированного микроорганизмами I-II групп патогенности (МУ 1.3.1794-03). Полимеразную цепную реакцию проводят по стандартной методике с использованием пары праймеров TAN1 - 5'-TGGGCTTGAATACGGATGATG-3' и TAN2-5'-ACAACCATGCTGACGTGGG-3', комплементарных hutG - YP01967 области. Отжиг праймеров осуществляют при температуре 63°С в течение 30 с при числе циклов амплификации, равных 35.Isolation of total DNA from the test material suspected of being infected with a plague or pseudotuberculosis microbe is carried out according to the standard method for Y. pestis. (Organization of work during PCR studies of a material infected with microorganisms of pathogenicity groups I-II (MU 1.3.1794-03). The polymerase chain reaction is carried out according to a standard method using a pair of primers TAN1 - 5'-TGGGCTTGAATACGGATGATG-3 'and TAN2-5' -ACAACCATGCTGACGTGGG-3 ', complementary to the hutG — YP01967 region. Primers were annealed at 63 ° C. for 30 s with an amplification cycle of 35.

Продукты ПЦР анализируют в 3,5% агарозном или 5% полиакриламидном геле с использованием буфера ТВЕ по общепринятой методике. Видовую, подвидовую и очаговую принадлежность микроорганизма определяют путем сравнения размера образовавшегося ампликона исследуемых штаммов с маркерами.PCR products are analyzed on a 3.5% agarose or 5% polyacrylamide gel using TBE buffer according to a standard technique. The species, subspecies and focal affiliation of the microorganism is determined by comparing the size of the formed amplicon of the studied strains with markers.

Отличительной особенностью заявляемого способа является использование одной пары праймеров TAN1 и TAN2, позволяющей одновременно определять видовую и подвидовую принадлежности исследуемых штаммов патогенных иерсиний.A distinctive feature of the proposed method is the use of one pair of primers TAN1 and TAN2, which allows to simultaneously determine the species and subspecies of the studied strains of pathogenic Yersinia.

Заявленный способ успешно апробирован на семидесяти двух штаммах разных подвидов, в том числе на типовых штаммах Y.pestis 231 (708), А 1822 - основного, Y.pestis 1146 - кавказского, Y.pestis A-1249 - гиссарского, Y.pestis КМ683 (И2359) - алтайского, Y.pestis И-3069, И2422 улегейского подвидов, Y.pestis A-1802 (21/10) - таласской группы и шестидесяти восьми штаммах псевдотуберкулезного микроба.The claimed method has been successfully tested on seventy-two strains of different subspecies, including type strains Y. pestis 231 (708), A 1822 - main, Y. pestis 1146 - Caucasian, Y. pestis A-1249 - Hissar, Y.pestis KM683 (I2359) - Altai, Y. pestis I-3069, I2422 Ulegei subspecies, Y. pestis A-1802 (21/10) - the Talas group and sixty-eight strains of the pseudotuberculosis microbe.

Изобретение иллюстрируется электрофореграммами ампликонов исследуемых штаммов со стандартными маркерами и маркерами, созданными на основе ампликонов референтных штаммов.The invention is illustrated by electrophoregrams of amplicons of the studied strains with standard markers and markers based on amplicons of reference strains.

Результаты анализа представлены на фиг. 1 и 2.The analysis results are presented in FIG. 1 and 2.

На фиг. 1 приведена электрофореграмма ампликонов, полученных при ПЦР-анализе референтных штаммов чумного и псевдотуберкулезного микробов с помощью праймеров TAN1 и TAN2, где показано положение ампликонов относительно стандартного маркера в 5% полиакриламидном геле, характеризующее видовую, подвидовую и очаговую принадлежности.In FIG. Figure 1 shows the electrophoregram of amplicons obtained by PCR analysis of reference strains of plague and pseudotuberculosis microbes using TAN1 and TAN2 primers, which shows the position of the amplicons relative to the standard marker in 5% polyacrylamide gel, which characterizes the species, subspecies, and focal accessory.

1. Стандартный маркер ДНК pUC 19, обработанная рестриктазой MspI1. Standard pUC 19 DNA marker treated with MspI restrictase

2. Y.pestis 231 - основной подвид (Аксайский высокогорный очаг)2. Y.pestis 231 - the main subspecies (Aksai mountain center)

3. Y.pestis A 1822 - основной подвид (Кызылкумский пустынный очаг)3. Y.pestis A 1822 - the main subspecies (Kyzylkum desert center)

4. Y.pestis A1270 основной подвид (Забайкальский степной очаг)4. Y.pestis A1270 main subspecies (Transbaikal steppe outbreak)

5. Y.pestis 805 основной подвид (Приараксинский низкогорный очаг)5. Y. pestis 805 main subspecies (Priaraksinsky low mountain center)

6. Y.pestis A1249 - гиссарский подвид (Гиссарский высокогорный очаг)6. Y.pestis A1249 - Hissar subspecies (Gissar highland)

7. Y.pestis A1802 - таласская группа (Таласский высокогорный очаг)7. Y.pestis A1802 - Talas group (Talas highland hearth)

8. Y.pestis И2359 - алтайский подвид (Алтайский высокогорный очаг)8. Y.pestis I2359 - Altai subspecies (Altai highland focus)

9. Y.pestis И3069 - удэгейский подвид (Монголия, аймак Убурхангай)9. Y.pestis I3069 - Udege subspecies (Mongolia, aimak Uburkhangai)

10. Y.pestis И2422, удэгейский подвид (Монголия, Баян-Улэгейский аймак)10. Y.pestis I2422, Udege subspecies (Mongolia, Bayan-Ulgei aimak)

11. Y.pestis И2183 - алтайский подвид (Алтайский высокогорный очаг)11. Y.pestis I2183 - Altai subspecies (Altai high mountain center)

12. Y.pestis 1146 - кавказский подвид (Зангезуро-Карабахский очаг)12. Y.pestis 1146 - Caucasian subspecies (Zangezuro-Karabakh outbreak)

13. Y.pseudotuberculosis A2526 (Алма-Ата) (I серотип)13. Y.pseudotuberculosis A2526 (Alma-Ata) (I serotype)

14. Y.pseudotuberculosis Mollaret I (I серотип)14. Y. pseudotuberculosis Mollaret I (I serotype)

На фиг. 2 приведена электрофореграмма ампликонов, полученных при ПЦР-анализе штаммов чумного и псевдотуберкулезного микробов разного происхождения с помощью праймеров TAN1 и TAN2, где показано положение ампликонов относительно маркера из ампликонов референтных штаммов чумного и псевдотуберкулезного микроба в 3,5% агарозном геле, характеризующее видовую, подвидовую и очаговую принадлежности.In FIG. Figure 2 shows the electrophoregram of amplicons obtained by PCR analysis of strains of plague and pseudotuberculosis microbes of different origin using primers TAN1 and TAN2, which shows the position of amplicons relative to the marker from amplicons of reference strains of plague and pseudotuberculosis microbe in 3.5% agarose gel, characterizing a species of 3.5% agarose gel and focal accessories.

16. Маркер из ампликонов референтных штаммов чумного и псевдотуберкулезного микроба16. A marker from amplicons of reference strains of the plague and pseudotuberculosis microbe

2. Y.pestis 231 - основной подвид (Аксайский высокогорный очаг)2. Y.pestis 231 - the main subspecies (Aksai mountain center)

17. Y.pestis A1824 - основной подвид (Кызылкумский пустынный очаг)17. Y.pestis A1824 - main subspecies (Kyzylkum desert center)

18 Y.pestis A1252 - основной подвид (Забайкальский степной очаг)18 Y.pestis A1252 - main subspecies (Transbaikal steppe outbreak)

19. Y.pestis 813 - основной подвид (Приараксинский низкогорный очаг)19. Y.pestis 813 - main subspecies (Priaraksinsky low-mountain center)

20. Y.pestis A 1723 - гиссарский подвид (Гиссарский высокогорный очаг)20. Y. pestis A 1723 - Hissar subspecies (Gissar highland)

21. Y.pestis A1814 - таласская группа (Таласский высокогорный очаг)21. Y.pestis A1814 - Talas group (Talas highland hearth)

8. Y.pestis И2359 - алтайский подвид (Алтайский высокогорный очаг)8. Y.pestis I2359 - Altai subspecies (Altai highland focus)

22. Y.pestis И3086 - удэгейский подвид (Монголия, аймак Убурхангай)22. Y.pestis I3086 - Udege subspecies (Mongolia, aimak Uburkhangai)

23. Y.pestis И3068 - улэгейский подвид (Монголия, аймак Убурхангай)23. Y.pestis I3068 - Ulgean subspecies (Mongolia, aimak Uburkhangai)

24. Y.pestis И3071 - улэгейский подвид (Монголия, аймак Хурмен Сом)24. Y.pestis I3071 - Ulgean subspecies (Mongolia, aimak Hurmen Som)

25. Y.pestis И2817 - алтайский подвид (Алтайский высокогорный очаг)25. Y.pestis I2817 - Altai subspecies (Altai highland focus)

26. Y.pestis 542 Аз. - кавказский подвид (Зангезуро-Карабахский очаг)26. Y. pestis 542 Az. - Caucasian subspecies (Zangezuro-Karabakh outbreak)

13. Y.pseudotuberculosis A2526 (Алма-Ата) (I серотип)13. Y.pseudotuberculosis A2526 (Alma-Ata) (I serotype)

14. Y.pseudotuberculosis Mollaret I (I серотип)14. Y. pseudotuberculosis Mollaret I (I serotype)

Маркер 16 содержит ампликоны, полученные в результате амплификации ДНК референтных штаммов чумного и псевдотуберкулезного микробов с предложенными праймерами TAN1 и TAN2.Marker 16 contains amplicons obtained by amplification of DNA of reference strains of plague and pseudotuberculosis microbes with the proposed primers TAN1 and TAN2.

Для получения маркера проводят ПЦР с референтными штаммами по схеме, описанной в примере 1. Среди референтных штаммов, образующих ампликоны одинаковых размеров, выбирают один из штаммов. Затем реакционные смеси, содержащие ампликоны, объединяют и осаждают ДНК путем добавления этилового спирта и центрифугирования. Осадок подсушивают и растворяют в деионизованной воде. Полученный раствор содержит набор ампликонов, характерных для всех референтных штаммов, и используется в качестве маркера при дифференциации штаммов. В высушенном виде маркерные ампликоны могут храниться при комнатной температуре в течение длительного времени.To obtain a marker, PCR is carried out with reference strains according to the scheme described in Example 1. Among the reference strains forming amplicons of the same size, one of the strains is selected. Then the reaction mixtures containing amplicons are combined and precipitated with DNA by adding ethanol and centrifugation. The precipitate is dried and dissolved in deionized water. The resulting solution contains a set of amplicons characteristic of all reference strains, and is used as a marker for differentiation of strains. When dried, marker amplicons can be stored at room temperature for a long time.

Наличие фрагмента ДНК определенного размера на электрофореграмме позволяет отнести исследуемый штамм к конкретному виду и для чумного микроба определить подвидовую принадлежность.The presence of a DNA fragment of a certain size on the electrophoregram allows you to attribute the studied strain to a specific species and to determine the plague microbe to determine the subspecies affiliation.

Изобретение иллюстрируется следующими примерами.The invention is illustrated by the following examples.

Пример 1. Идентификация штамма Y.pestis 231 (708) основного подвида из Аксайского высокогорного очага. (Модельный эксперимент).Example 1. Identification of the strain Y. pestis 231 (708) of the main subspecies from the Aksai mountain center. (Model experiment).

Подготовка препарата ДНКDNA preparation

В модельном эксперименте штамм Y.pestis 231 (708) высевают на агар LB и выращивают в течение ночи при температуре 28°С. Осуществляют выделение тотальной ДНК из исследуемого материала, содержащего штамм Y.pestis 231 (708) основного подвида.In a model experiment, strain Y. pestis 231 (708) was plated on LB agar and grown overnight at 28 ° C. Total DNA is extracted from the test material containing the Y. pestis 231 (708) strain of the main subspecies.

По стандарту мутности готовят взвесь микроорганизмов в дистиллированной воде в концентрации 1,0×107-1,0×109 м.к./мл (микробных клеток в 1 мл).According to the turbidity standard, a suspension of microorganisms is prepared in distilled water at a concentration of 1.0 × 10 7 -1.0 × 10 9 m.k. / ml (microbial cells in 1 ml).

Обеззараживание осуществляют добавлением мертиолята натрия до концентрации 1:10000 с последующим прогреванием при температуре 56°С в течение 30 мин. После обработки мертиолятом натрия 100 мкл образца переносят в микроцентрифужные пробирки 1,5 мл и добавляют лизирующий раствор на основе 6 М гуанидинизотиоцианата в объеме 300 мкл и инкубируют при температуре 65°С в течение 15 минут. После проведения данного этапа материал считается обеззараженным (п.1.1. МУ 1.3.1794-03).Disinfection is carried out by adding sodium thiolate to a concentration of 1: 10000, followed by heating at 56 ° C for 30 minutes. After treatment with sodium thiomethylate, 100 μl of the sample was transferred to 1.5 ml microcentrifuge tubes and a lysing solution based on 6 M guanidine isothiocyanate was added in a volume of 300 μl and incubated at 65 ° C for 15 minutes. After this stage, the material is considered disinfected (Clause 1.1. MU 1.3.1794-03).

По окончании инкубирования и снижения температуры пробы до комнатной в пробирку вносят 30 мкл нуклеосорбента, встряхивают и выдерживают 10 минут, периодически перемешивая сорбент до гомогенного состояния 3-4 раза.At the end of incubation and lowering the temperature of the sample to room temperature, 30 μl of the nucleosorbent are introduced into the test tube, shaken and incubated for 10 minutes, periodically mixing the sorbent to a homogeneous state 3-4 times.

Пробирку центрифугируют 30 с на микроцентрифуге, супернатант удаляют.The tube is centrifuged for 30 s on a microcentrifuge, the supernatant is removed.

К осадку добавляют 300 мкл раствора на основе 4 М гуанидинизотиоцианата и встряхивают пробирку на вортексе, после чего пробу центрифугируют в течение 30 с, супернатант удаляют.300 μl of a solution based on 4 M guanidine isothiocyanate is added to the precipitate and the tube is shaken on a vortex, after which the sample is centrifuged for 30 s, the supernatant is removed.

К осадку добавляют 1 мл отмывочного буфера, пробирку встряхивают до гомогенного состояния суспензии, центрифугируют в течение 40 с и, как можно более аккуратно, удаляют надосадок, используя наконечник дозатора.1 ml of washing buffer is added to the precipitate, the tube is shaken until the suspension is homogeneous, centrifuged for 40 s and, as accurately as possible, the supernatant is removed using the tip of the dispenser.

Пробирки помещают в твердотельный термостат при температуре 55-65°С на 15-20 минут, оставляя их открытыми для выпаривания остатков спирта, содержащегося в отмывочном буфере. Следует стремиться как можно тщательнее высушивать нуклеосорбент, поскольку с этим связана более полноценная десорбция ДНК и, кроме того, присутствие спирта может вызвать ингибирование ПЦР.The tubes are placed in a solid state thermostat at a temperature of 55-65 ° C for 15-20 minutes, leaving them open to evaporate the residual alcohol contained in the wash buffer. One should strive to dry the nucleosorbent as thoroughly as possible, since more complete desorption of DNA is associated with this and, in addition, the presence of alcohol can cause inhibition of PCR.

В пробирки с высушенным сорбентом добавляют 25-50 мкл бидистиллированной воды, закрывают их, перемешивают на вортексе до гомогенного состояния сорбента и инкубируют в течение 8-10 минут при температуре 55-65°С, встряхивая 2-3 раза.25-50 μl bidistilled water is added to test tubes with a dried sorbent, they are closed, vortexed until a sorbent is homogeneous and incubated for 8-10 minutes at a temperature of 55-65 ° C, shaking 2-3 times.

Пробы центрифугируют в течение 1 минуты. Надосадок используют в качестве исследуемого материала для постановки ПЦР. Подготовленные образцы можно хранить при температуре 4°С в течение недели или при температуре минус 20°С до 6 месяцев.Samples are centrifuged for 1 minute. The supernatant is used as a test material for PCR. Prepared samples can be stored at 4 ° C for a week or at minus 20 ° C for up to 6 months.

Проведение ПЦР.Carrying out PCR.

Полимеразная цепная реакция проводится в 0,5 мл пробирках.The polymerase chain reaction is carried out in 0.5 ml tubes.

Реакционная смесь в объеме 25 мкл содержит 1·ПЦР-буфер (10·ПЦР-буфер - 2,5 мкл), MgCl2 - 2,0 mM, dNTPmix - 0,3 mM, праймер TAN1-2 pmol, праймер TAN2 - 2 pmol, Taq DNA полимераза - 0,1 ед., исследуемой ДНК - 10 мкл.The reaction mixture in a volume of 25 μl contains 1 · PCR buffer (10 · PCR buffer - 2.5 μl), MgCl 2 - 2.0 mM, dNTPmix - 0.3 mM, primer TAN1-2 pmol, primer TAN2 - 2 pmol, Taq DNA polymerase - 0.1 units, test DNA - 10 μl.

Режим амплификации: начальная денатурация 94°С - 2 мин, далее проводят 35 циклов: денатурации при 94°С - 30 с, отжиг при 63°С - 30 с, элонгации при 72°С - 40 с.Amplification mode: initial denaturation of 94 ° C for 2 min, then 35 cycles are carried out: denaturation at 94 ° C for 30 s, annealing at 63 ° C for 30 s, elongation at 72 ° C for 40 s.

Продукты амплификации анализируются в 3,5% агарозном геле. На гель наносится 3 мкл реакционной смеси, в качестве маркера используется ДНК фага λ, обработанного рестриктазой PstI, ДНК pUC 19, обработанной рестриктазой MspI.Amplification products are analyzed on a 3.5% agarose gel. 3 μl of the reaction mixture is applied to the gel; phage λ DNA treated with PstI restriction enzyme, pUC 19 DNA treated with MspI restriction enzyme is used as a marker.

Агарозный гель прокрашивается бромистым этидием и просматривается под ультрафиолетовым излучением путем сравнения полученного ампликона с маркером определяют размер фрагмента. Наличие фрагмента размером 364 п.н. свидетельствует о принадлежности данного штамма к основному подвиду из Аксайского высокогорного очага.The agarose gel is stained with ethidium bromide and viewed under ultraviolet radiation by comparing the resulting amplicon with a marker to determine the size of the fragment. The presence of a 364 bp fragment indicates the belonging of this strain to the main subspecies from the Aksai highland focus.

Пример 2. Идентификацию штамма Y.pestis KM683 (И2359) - алтайского подвида из Алтайского горного очага осуществляют аналогично примеру 1.Example 2. The identification of the strain Y. pestis KM683 (I2359) - Altai subspecies from the Altai mountain center is carried out analogously to example 1.

При анализе продуктов амплификации длина синтезированного ампликона составила 396 п.н., что говорит о принадлежности данного штамма к алтайскому подвиду из Алтайского горного очага.In the analysis of amplification products, the length of the synthesized amplicon was 396 bp, which indicates that this strain belongs to the Altai subspecies from the Altai mountain center.

Пример 3. Идентификацию штамма Y.pestis А-1249 - гиссарского подвида осуществляют аналогично примеру 1.Example 3. The identification of strain Y. pestis A-1249 - Hissar subspecies is carried out analogously to example 1.

При анализе продуктов амплификации длина синтезированного ампликона составила 456 п.н., что говорит о принадлежности данного штамма к гиссарскому подвиду из Гиссарского высокогорного очага.In the analysis of amplification products, the length of the synthesized amplicon was 456 bp, which indicates that this strain belongs to the Hissar subspecies from the Hissar highland focus.

Пример 4. Идентификацию штамма Y.pestis И-3069 - удэгейского подвида осуществляют аналогично примеру 1.Example 4. The identification of the strain Y. pestis I-3069 - Udege subspecies is carried out analogously to example 1.

При анализе продуктов амплификации длина синтезированного ампликона составила 416 п.н., что говорит о принадлежности данного штамма к улэгейскому подвиду из Монголии аймака Убурхангай.In the analysis of amplification products, the length of the synthesized amplicon was 416 bp, which indicates that this strain belongs to the Ulgean subspecies from Aimak Uburkhangai from Mongolia.

Пример 5. Идентификацию штамма Y.pestis A-1802(21/10) - таласской группы осуществляют аналогично примеру 1.Example 5. The identification of strain Y. pestis A-1802 (21/10) - Talas group is carried out analogously to example 1.

При анализе продуктов амплификации длина синтезированного ампликона составила 380 п.н., что говорит о принадлежности данного штамма к таласской группе из Таласского высокогорного очага.In the analysis of amplification products, the length of the synthesized amplicon was 380 bp, which indicates that this strain belongs to the Talas group from the Talas highland focus.

Пример 6. Идентификацию штамма Y.pestis 1146 - кавказского подвида осуществляют аналогично примеру 1.Example 6. The identification of strain Y. pestis 1146 - Caucasian subspecies is carried out analogously to example 1.

При анализе продуктов амплификации длина синтезированного ампликона составила 1819 п.н., что говорит о принадлежности данного штамма к кавказскому подвиду из Зангезуро-Карабахского очага.In the analysis of amplification products, the length of the synthesized amplicon was 1819 bp, which indicates that this strain belongs to the Caucasian subspecies from the Zangezuro-Karabakh outbreak.

Пример 7. Идентификацию штамма Y.pseudotuberculosis A-2526 осуществляют аналогично примеру 1.Example 7. The identification of the strain Y. pseudotuberculosis A-2526 is carried out analogously to example 1.

При анализе продуктов амплификации длина синтезированного ампликона составила 692 п.н., что говорит о принадлежности данного штамма к виду Y.pseudotuberculosis (I серотип), выделенного в Алма-Атинской области.When analyzing amplification products, the length of the synthesized amplicon was 692 bp, which indicates that this strain belongs to the species Y. pseudotuberculosis (serotype I) isolated in the Almaty region.

Проведенный заявителем анализ уровня техники, включающий поиск по патентным и научно-техническим источникам информации и выявление источников, содержащих сведения об аналогах предлагаемого изобретения, позволил установить, что не обнаружены источники, характеризующиеся признаками, тождественными всем существенным признакам предлагаемого изобретения.The analysis of the prior art by the applicant, including a search by patent and scientific and technical sources of information and identification of sources containing information about analogues of the invention, made it possible to establish that no sources were found that are characterized by signs that are identical to all the essential features of the invention.

Таким образом, заявленный способ, основанный на полимеразной цепной реакции с использованием подобранной пары праймеров, позволяет в короткие сроки с соблюдением правил работы с особо опасными инфекциями выявлять штаммы чумного и псевдотуберкулезного микроба с одновременной подвидовой дифференциацией штаммов чумного микроба, что делает возможным использование данного способа в научно-исследовательских учреждениях, противочумных станциях и в работе Специализированных противоэпидемических бригад.Thus, the claimed method, based on a polymerase chain reaction using a selected pair of primers, allows you to quickly identify plague and pseudotuberculosis microbe strains with the same subspecies differentiation of plague microbe strains in compliance with the rules for working with especially dangerous infections, which makes it possible to use this method in research institutions, anti-plague stations and in the work of Specialized Anti-Epidemic Brigades.

Claims (3)

1. Способ дифференциации чумного и псевдотуберкулезного микробов с одновременной внутривидовой дифференциацией штаммов чумного микроба, включающий выделение тотальной ДНК исследуемого штамма, проведение полимеразной цепной реакции с использованием синтезированных праймеров с последующим анализом специфичных ампликонов, отличающийся тем, что при постановке полимеразной цепной реакции используют праймеры TAN1 и TAN2, комплементарные hutG-YP01967 области следующей нуклеотидной последовательности:1. A method for differentiating plague and pseudotuberculosis microbes with simultaneous intraspecific differentiation of plague microbe strains, including isolation of total DNA of the studied strain, polymerase chain reaction using synthesized primers, followed by analysis of specific amplicons, characterized in that TAN1 primers are used for setting up the polymerase chain reaction TAN2 complementary to the hutG-YP01967 region of the following nucleotide sequence: TAN1-5'-TGGGCTTGAATACGGATGATG-3'TAN1-5'-TGGGCTTGAATACGGATGATG-3 ' TAN2-5'-ACAACCATGCTGACGTGGG-3',TAN2-5'-ACAACCATGCTGACGTGGG-3 ', дифференциацию штаммов проводят путем сравнения размера ампликона исследуемого штамма с маркером.differentiation of strains is carried out by comparing the amplicon size of the test strain with a marker. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве маркера используют стандартные маркеры.2. The method according to claim 1, characterized in that standard markers are used as a marker. 3. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве маркера используют смесь ампликонов, образованных с праймерами TAN1-TAN2 и ДНК референтных штаммов чумного и псевдотуберкулезного микробов.3. The method according to claim 1, characterized in that as a marker a mixture of amplicons formed with TAN1-TAN2 primers and DNA of reference strains of plague and pseudotuberculosis microbes is used.
RU2007131672/13A 2007-08-20 2007-08-20 Method of plague and pseudotuberculosis microbe differentiation with parallel interspecies differentiation of plague microbe strains RU2332464C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007131672/13A RU2332464C1 (en) 2007-08-20 2007-08-20 Method of plague and pseudotuberculosis microbe differentiation with parallel interspecies differentiation of plague microbe strains

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007131672/13A RU2332464C1 (en) 2007-08-20 2007-08-20 Method of plague and pseudotuberculosis microbe differentiation with parallel interspecies differentiation of plague microbe strains

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2332464C1 true RU2332464C1 (en) 2008-08-27

Family

ID=46274499

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2007131672/13A RU2332464C1 (en) 2007-08-20 2007-08-20 Method of plague and pseudotuberculosis microbe differentiation with parallel interspecies differentiation of plague microbe strains

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2332464C1 (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2473701C1 (en) * 2011-07-19 2013-01-27 Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" ("РосНИПЧИ "Микроб") Set and method for accelerated plague microbe identification and simultaneous differentiation of virulent and avirulent strains of ypestis by plasmid profiling thereof
RU2518302C1 (en) * 2013-01-09 2014-06-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of identification and evaluation of amount of plague pathogen microbial cells in test samples by pcr in real time
RU2552611C2 (en) * 2014-01-09 2015-06-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФКУЗ "РосНИПЧИ "Микроб") Method of subspecies differentiation of plague agent strains using polymerase chain reaction method
RU2566559C1 (en) * 2014-04-07 2015-10-27 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of differentiation of plague and pseudotuberculosis pathogens as per n-acetyl-beta-d-glucosaminidase activity

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2473701C1 (en) * 2011-07-19 2013-01-27 Федеральное государственное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека" ("РосНИПЧИ "Микроб") Set and method for accelerated plague microbe identification and simultaneous differentiation of virulent and avirulent strains of ypestis by plasmid profiling thereof
RU2518302C1 (en) * 2013-01-09 2014-06-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of identification and evaluation of amount of plague pathogen microbial cells in test samples by pcr in real time
RU2552611C2 (en) * 2014-01-09 2015-06-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФКУЗ "РосНИПЧИ "Микроб") Method of subspecies differentiation of plague agent strains using polymerase chain reaction method
RU2566559C1 (en) * 2014-04-07 2015-10-27 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Ростовский-на-Дону ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method of differentiation of plague and pseudotuberculosis pathogens as per n-acetyl-beta-d-glucosaminidase activity

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ikryannikova et al. Misidentification of alpha-hemolytic streptococci by routine tests in clinical practice
Amita et al. Qualitative evaluation of mycobacterial DNA extraction protocols for polymerase chain reaction
CN107164479B (en) Primer pair combination and kit for detecting and identifying human tissue hydatid pathogen
Fatima et al. Microbial DNA extraction from soil by different methods and its PCR amplification
RU2332464C1 (en) Method of plague and pseudotuberculosis microbe differentiation with parallel interspecies differentiation of plague microbe strains
JP4469338B2 (en) Method for detecting pathogenic mycobacteria in clinical specimens
Li et al. Development and clinical implications of a novel CRISPR-based diagnostic test for pulmonary Aspergillus fumigatus infection
CN107400736A (en) The type adenovirus ring mediated isothermal amplification detection primer group of duck 2 and kit
Ksiczyk et al. Application of routine diagnostic procedure, VITEK 2 compact, MALDI-TOF MS, and PCR assays in identification procedure of bacterial strain with ambiguous phenotype
RU2471872C1 (en) Method for differentiating yersinia pestis strains of various subspecies and biovars by polymerase chain reaction and multilocus sequence typing
CN109762910B (en) Primer and kit for simultaneously detecting two types of echinococcosis
RU2550257C2 (en) METHOD OF DIFFERENTIATING TYPICAL AND ATYPICAL STRAINS Yersinia pestis OF MEDIEVAL BIOVAR BY PCR METHOD WITH HYBRIDISATION-FLUORESCENT RECORDING RESULTS
RU2404251C1 (en) Method of identification and intrageneric differentiation of strains of species yersinia pestis
RU2736649C1 (en) Method for genetic differentiation of yersinia pseudotuberculosis strains by molecular-genetic typing
CN108060244A (en) A kind of nucleotide sequence and application for mycobacterium tuberculosis complex detection
CN113584221A (en) Kit for rapidly and specifically detecting influenza A virus and use method thereof
RU2455364C2 (en) Method of identifying mycobacteria by polymerase chain reaction
CN112342317A (en) Nucleic acid sequence combination, kit and detection method for LAMP-CRISPR (loop-mediated isothermal amplification-CRISPR) isothermal detection of IHHNV (infectious bronchitis Virus)
RU2404256C1 (en) Method of subspecific differentiation of plague causative agent strains by sequencing method
CN105420353B (en) DPO primers, method and the kit of real-time fluorescence PCR detection enterococcus faecium based on DPO primers
RU2552611C2 (en) Method of subspecies differentiation of plague agent strains using polymerase chain reaction method
ES2839874T3 (en) Method to detect the presence of a hypervirulent strain of Clostridium difficile
CN109609668B (en) Detection primer group and kit for MLVA typing of salmonella typhimurium and application of detection primer group and kit
RU2560280C2 (en) Method of simultaneous identification of toxigenic strains of genovariants of el tor cholera causative agent and their differentiation on epidemic potential by method of multiplex polymerase chain reaction
RU2705813C1 (en) Method for identification of yersinia pestis strains of a medieval biovar with subsequent differentiation by phylogenetic affiliation by polymerase chain reaction with hybridization-fluorescent account of results

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20090821