RU2331883C1 - Method of angiopathy development risk diagnostics in arterial hypertension cases with metabolic syndrome - Google Patents

Method of angiopathy development risk diagnostics in arterial hypertension cases with metabolic syndrome Download PDF

Info

Publication number
RU2331883C1
RU2331883C1 RU2007101264/15A RU2007101264A RU2331883C1 RU 2331883 C1 RU2331883 C1 RU 2331883C1 RU 2007101264/15 A RU2007101264/15 A RU 2007101264/15A RU 2007101264 A RU2007101264 A RU 2007101264A RU 2331883 C1 RU2331883 C1 RU 2331883C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
index
activity
angiopathy
vascular
development risk
Prior art date
Application number
RU2007101264/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Иль Николаевич Медведев (RU)
Илья Николаевич Медведев
Борис Дмитриевич Беспарточный (RU)
Борис Дмитриевич Беспарточный
Original Assignee
Илья Николаевич Медведев
Борис Дмитриевич Беспарточный
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Илья Николаевич Медведев, Борис Дмитриевич Беспарточный filed Critical Илья Николаевич Медведев
Priority to RU2007101264/15A priority Critical patent/RU2331883C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2331883C1 publication Critical patent/RU2331883C1/en

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention can be applied to angiopathy development risk diagnostics in arterial hypertension (AH) cases with metabolic syndrome (MS). Essentially, thrombocyte aggregative activity with collagen, antithrombin III level, euglobuline lysis time, and nitrate level in patient blood are determined, before and during temporal venous occlusion. Then vascular wall antiaggregatory activity index (VWAAI), vascular antithrombin III synthesis index (VASI), vascular wall fibrinolytic activity index (VWFAI), and nitrate index (NI) are calculated. After this, vascular antithrombotic index (VATI) by formula: VATI = (VWAAI + VASI + VWFAI + NI)/4 is calculated. If the value achieves 2.27 and more, angiopathy development risk is eliminated; if 2.26-2.10, the patients are included in angiopathy development risk group; if 2.09 and less, angiopathy develops.
EFFECT: increase in prediction accuracy of the disease development risk, possibility to administer adequate treatment in good time.
2 tbl, 3 ex, 1 dwg

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к кардиологии и ангиологии.The invention relates to medicine, namely to cardiology and angiology.

Известны методы исследования сосудистых функций (Баркаган З.С., Момот А.П. Основы диагностики нарушений гемостаза. М., 1999. - 214 с.), однако способ раннего выявления ослабления антитромботической активности сосудов в целом не разработан.Known methods for the study of vascular functions (Barkagan Z.S., Momot A.P. Basics for the diagnosis of hemostatic disorders. M., 1999. - 214 p.), However, a method for early detection of attenuation of antithrombotic activity of blood vessels in general has not been developed.

В клинической лабораторной диагностике применяется метод исследования антиагрегационной активности сосудистой стенки, оценивается уровень антитромбина III (AT III), активность плазминногена до и после временной венозной окклюзии и содержание оксида азота (NO) в плазме крови по уровню нитратов.In clinical laboratory diagnostics, a method for studying the antiplatelet activity of the vascular wall is used, the level of antithrombin III (AT III), the activity of plasminogen before and after temporary venous occlusion, and the content of nitric oxide (NO) in plasma by the level of nitrates are estimated.

Однако никогда ранее данные методы не объединяли в единый диагностический комплекс, а полученные результаты не обрабатывали статистически с расчетом противотромботического индекса сосудов (ПТИС).However, never before have these methods been combined into a single diagnostic complex, and the results obtained have not been statistically processed with the calculation of the antithrombotic vascular index (PTIS).

Целью изобретения является повышение эффективности ранней диагностики риска развития вазопатии у больных артериальной гипертонией с метаболическим синдромом.The aim of the invention is to increase the effectiveness of early diagnosis of the risk of developing vasopathy in patients with arterial hypertension with metabolic syndrome.

Сущность заявляемого способа заключается в том, что для ранней диагностики риска развития вазопатии у больных артериальной гипертонией с метаболическим синдромом проводится следующий диагностический комплекс исследований: определяется индекс антиагрегационной активности сосудов, активность антитромбина III и эуглобулиновый лизис до и после временной венозной окклюзии с вычислением индекса синтеза AT III в сосудах и индекса фибринолитической активности сосудистой стенки, а также содержание в крови нитратов до и после временной ишемии венозной стенки, указывающее на уровень синтеза NO в стенках сосудов с вычислением нитратного индекса (НИ). Полученные результаты обрабатываются статистически с вычислением противотромботического индекса сосудов.The essence of the proposed method lies in the fact that for the early diagnosis of the risk of developing vasopathy in patients with arterial hypertension with metabolic syndrome, the following diagnostic complex of studies is carried out: the index of antiplatelet activity of blood vessels, the activity of antithrombin III and euglobulin lysis before and after temporary venous occlusion with the calculation of the AT synthesis index are determined III in the vessels and the index of fibrinolytic activity of the vascular wall, as well as the content of nitrates in the blood before and after temporary ischemia enoznoy wall, indicating the level of NO synthesis in the vessel wall with the calculation of the index of nitrate (NO). The results are processed statistically with the calculation of the antithrombotic index of blood vessels.

Способ позволяет своевременно диагносцировать риск развития вазопатии по снижению ПТИС у пациентов с АГ и МС, что дает возможность своевременно назначать соответствующее лечение, переводящее ПТИС на уровень, близкий к таковому для здоровых людей. При регулярном обследовании в последующем согласно заявляемому способу возможен контроль поддержания ПТИС в оптимальном режиме функционирования, что позволит существенно снизить риск тромботических осложнений, уменьшить число случаев временной нетрудоспособности, выходов на инвалидность и снизить смертность среди сосудистых больных.The method allows to timely diagnose the risk of developing vasopathy to reduce PTIS in patients with hypertension and MS, which makes it possible to prescribe the appropriate treatment in a timely manner, translating the PTIS to a level close to that for healthy people. With regular examination in the subsequent according to the claimed method, it is possible to control the maintenance of PTIS in the optimal mode of operation, which will significantly reduce the risk of thrombotic complications, reduce the number of cases of temporary disability, exit to disability and reduce mortality among vascular patients.

Заявляемый способ осуществляется следующим образом.The inventive method is as follows.

Антиагрегационная активность сосудистой стенки определялась по методу (Балуда В.П., Лукьянова Т.И., Балуда М.В. Метод определения антиагрегационной активности стенки сосудов человека. // Лабор. дело, 1983. - № 6. - с.17-20). В основе этого метода лежит вычисление степени торможения агрегации тромбоцитов в плазме, полученной из крови после временной венозной окклюзии.The anti-aggregation activity of the vascular wall was determined by the method (Baluda V.P., Lukyanova T.I., Baluda M.V. Method for determining the anti-aggregation activity of the wall of human blood vessels. // Labor. Delo, 1983. - No. 6. - p.17- twenty). The basis of this method is the calculation of the degree of inhibition of platelet aggregation in plasma obtained from blood after temporary venous occlusion.

На плечо руки, из сосудов которой не производился забор крови, накладывается манжетка сфигмоманометра и создается давление на 10 мм рт.ст. выше систолического. Через 3 минуты производилось взятие 9 мл крови в 1 мл 3,8% раствора цитрата натрия. Ее немедленно центрифугировали 5 минут при 1000 об/мин для получения богатой тромбоцитами плазмы. Плазму отсасывали пипеткой и сразу же помещали в тающий лед, где хранили до начала исследований. Повторно пробу центрифугировали 20 минут при 3000 об/мин для получения бестромбоцитной плазмы. После подсчета количества тромбоцитов в богатой тромбоцитами плазме, полученной до венозного застоя (подробно описано ниже), ее разводили бедной тромбоцитами плазмой (БеТП), взятой до (1 проба) и после (2 проба) венозного застоя до концентрации 200000 тромбоцитов/мкл. Полученную смесь встряхивали и инкубировали 10 минут при 20-22°С. Затем проводили агрегацию тромбоцитов (AT) с коллагеном (разведение 1:2 основной суспензии) на стекле.A cuff of the sphygmomanometer is applied to the shoulder of the arm, from the blood vessels of which blood was not taken, and a pressure of 10 mm Hg is created. higher than systolic. After 3 minutes, 9 ml of blood was taken in 1 ml of a 3.8% sodium citrate solution. It was immediately centrifuged for 5 minutes at 1000 rpm to obtain platelet-rich plasma. The plasma was aspirated with a pipette and immediately placed in melting ice, where it was stored until research began. The sample was centrifuged again for 20 minutes at 3000 rpm to obtain platelet-free plasma. After counting the platelet count in platelet-rich plasma obtained before venous stasis (described in detail below), it was diluted with platelet-poor plasma (BeTP) taken before (1 test) and after (2 test) venous stasis to a concentration of 200,000 platelets / μl. The resulting mixture was shaken and incubated for 10 minutes at 20-22 ° C. Then platelets (AT) were aggregated with collagen (1: 2 dilution of the main suspension) on glass.

Оценка AT для проведения данного исследования осуществляется следующим способом (Шитикова А.С. Гемостаз. Физиологические механизмы, принципы диагностики основных форм геморрагических заболеваний. Под ред. Н.Н.Петрищева, Л.П.Папаян. СПб, 1999. С.49-52).Assessment of AT for this study is carried out in the following way (A. Shitikova, Hemostasis. Physiological mechanisms, principles of diagnosis of the main forms of hemorrhagic diseases. Edited by N. N. Petrishchev, L. P. Papayan. St. Petersburg, 1999. P. 49- 52).

Кровь забирают с цитратом натрия 3,8% в соотношении 9:1, центрифугируют 5 мин при 1000 об/мин для получения богатой тромбоцитами плазмы (БТП). Часть плазмы отбирают, а оставшуюся центрифугируют при 3000 об/мин в течение 20 мин, получая бедную тромбоцитами плазму. БТП стандартизируют по числу тромбоцитов путем разбавления исходной БТП аутологичным образцом БеТП (полученной до венозного застоя - 1-я проба или после него - 2-я проба) до 200·109/л. Концентрация кровяных пластинок в исходной БТП подсчитывается в камере Горяева (в 50 больших квадратах). Объемы смешиваемых БТП и БеТП определяют по формуле:Blood is taken with sodium citrate 3.8% in a 9: 1 ratio, centrifuged for 5 minutes at 1000 rpm to obtain platelet-rich plasma (BTP). Part of the plasma is taken, and the remaining is centrifuged at 3000 rpm for 20 min, receiving a platelet-poor plasma. BTP is standardized by the number of platelets by diluting the original BTP with an autologous BeTP sample (obtained before venous stasis - 1st test or after it - 2nd test) to 200 · 10 9 / L. The concentration of blood platelets in the initial BTP is calculated in the Goryaev's chamber (in 50 large squares). The volumes of mixed BTP and BeTP are determined by the formula:

VБеТП=VБТП·[(N/200000)-1],V BeTP = V BTP · [(N / 200000) -1],

VБеТП - объем бедной тромбоцитами плазмы,V BeTP - volume of platelet-poor plasma,

VБТП - объем богатой тромбоцитами плазмы,V BTP - the volume of platelet-rich plasma,

N - счетная концентрация тромбоцитов в исходной БТП (клеток/мкл).N is the counted platelet concentration in the original BTP (cells / μl).

Из отобранного объема стандартизированной плазмы на предметное стекло наносят 0,02 мл плазмы и другой пипеткой 0,02 мл р-ра индуктора коллагена в стандартной концентрации (разведение 1:2 основной суспензии). Стеклянной палочкой смешивают плазму с индукторами и включают секундомер. Смесь перемешивают так, чтобы жидкость занимала окружность диаметром около 2 см.From a selected volume of standardized plasma, 0.02 ml of plasma is applied to a glass slide and 0.02 ml of a collagen inducer solution at a standard concentration with another pipette (1: 2 dilution of the main suspension). Plasma is mixed with inducers with a glass rod and the stopwatch is turned on. The mixture is stirred so that the liquid occupies a circle with a diameter of about 2 cm.

Покачивая стекло круговыми движениями в проходящем свете осветителя, на черном фоне следят через лупу за возникновением агрегатов. При появлении отчетливых агрегатов, просветлении раствора и прилипании части агрегатов к стеклу секундомер отключают, фиксируя время агрегации тромбоцитов.Shaking the glass in a circular motion in the transmitted light of the illuminator, on a black background they monitor the occurrence of aggregates through a magnifying glass. When distinct aggregates appear, the solution becomes clear and some of the aggregates adhere to the glass, the stopwatch is turned off, fixing the time of platelet aggregation.

Реакцию повторяют по 2-3 раза, находя среднее арифметическое значение.The reaction is repeated 2-3 times, finding the arithmetic mean value.

По степени торможения агрегации тромбоцитов после временного венозного застоя судят об антиагрегационной активности плазмы крови, обусловленной поступлением в кровоток простациклина из сосудистой стенки. Индекс антиагрегационной активности сосудистой стенки (ИААСС) при исследовании AT на стекле рассчитывали по формуле:The degree of inhibition of platelet aggregation after temporary venous stasis is used to judge the anti-aggregation activity of blood plasma due to the entry of prostacyclin into the bloodstream from the vascular wall. The index of antiaggregatory activity of the vascular wall (IAASC) in the study of AT on glass was calculated by the formula:

Figure 00000002
Figure 00000002

Нормальными значениями для коллагена можно считать ИААСС 1,50-1,60.The normal values for collagen can be considered IAASC 1.50-1.60.

Определение противосвертывающих свойств сосудистой стенки, зависящих от выделения из нее антитромбина III, оценивая его базальный уровнь до- и послевременной дозированной ишемии стенки вены приведены ниже (Баркаган З.С., Момот А.П. Основы диагностики нарушений гемостаза. М. 1999 - 214 с.).Determination of the anticoagulant properties of the vascular wall, depending on the release of antithrombin III from it, evaluating its basal level of pre- and post-time dosed ischemia of the vein wall are given below (Barkagan Z.S., Momot A.P. Basics of the diagnosis of hemostasis disorders. M. 1999 - 214 from.).

Принцип метода основан на выявлении снижения активности (в отсутствие гепарина) в плазме антитромбина III, которую определяют по способности исследуемой плазмы инактивировать тромбин, для чего ее предварительно обрабатывают сорбентом гепарина, затем подвергают тепловой дефибринации и смешивают со стандартным количеством тромбина. После инкубации смеси в ней определяют остаточную коагуляционную активность тромбина. По уровню снижения активности тромбина в процентах от нормы оценивают активность AT III в исследуемой плазме.The principle of the method is based on the detection of a decrease in activity (in the absence of heparin) in antithrombin III plasma, which is determined by the ability of the studied plasma to inactivate thrombin, for which it is pre-treated with a heparin sorbent, then subjected to thermal defibrination and mixed with a standard amount of thrombin. After incubation of the mixture, the residual coagulation activity of thrombin is determined in it. The level of decrease in thrombin activity as a percentage of the norm assesses the activity of AT III in the studied plasma.

Используются следующие реактивы. 1. Трис-HCl буфер 0,05 М, рН 7,4. 2. Раствор тромбина в буфере: 0,2 мл раствора должны свертывать 0,3 мл 0,4% раствора фибриногена за 15-16 сек. Рабочий раствор тромбина готовят в пластиковой или силиконированной пробирке, хранят при комнатной температуре и используют в тесте в день исследования. 3. Сорбент гепарина Гепасорб-1 (фирма "Технология-Стандарт"). 4. Свежеприготовленный раствор фибриногена в концентрации 3,5-4,0 г/л, который применяют для тестирования остаточной активности тромбина. Допускается замена раствора фибриногена нормальной бедной тромбоцитами цитратной плазмой, разведенной буфером в 2 раза; 5. Свежая цитратная бедная тромбоцитами плазма, полученная от 6-8 здоровых людей, или лиофилизированная фирменная с известной активностью AT III, которую используют для построения калибровочного графика (см. чертеж 1).The following reagents are used. 1. Tris-HCl buffer 0.05 M, pH 7.4. 2. Thrombin solution in buffer: 0.2 ml of the solution should coagulate with 0.3 ml of 0.4% fibrinogen solution for 15-16 seconds. The thrombin working solution is prepared in a plastic or silicone tube, stored at room temperature and used in the test on the day of the study. 3. Heparin sorbent Hepasorb-1 (company "Technology-Standard"). 4. Freshly prepared solution of fibrinogen at a concentration of 3.5-4.0 g / l, which is used to test the residual activity of thrombin. It is allowed to replace the fibrinogen solution with a normal platelet-poor citrate plasma diluted in buffer 2 times; 5. Fresh plasma platelet-poor plasma obtained from 6-8 healthy people, or proprietary lyophilized with known AT III activity, which is used to construct a calibration graph (see Figure 1).

Материалом для исследования служит цитратная бедная тромбоцитами плазма.The material for the study is a citrate platelet-poor plasma.

Для приготовления сорбированной и дефибринированной плазмы в пробирке смешивают 10 мг сорбента гепарина с 1,0 мл исследуемой плазмы. Постоянно встряхивая пробирку, перемешивают ее содержимое при комнатной температуре в течение 8 мин, исключая образование пены и осадка на ее дне. После этого смесь центрифугируют в течение 2 мин при 1000-1500 об/мин. Плазму в надосадке переносят в чистую пробирку и дефибринируют на водяной бане при 56°С в течение 6 мин, после чего вновь центрифугируют при 3000 об/мин в течение 10 мин, снимают надосадочную часть и исследуют в течение первых 2 ч.To prepare sorbed and defibrinated plasma in a test tube, 10 mg of heparin sorbent is mixed with 1.0 ml of the studied plasma. Constantly shaking the tube, mix its contents at room temperature for 8 minutes, excluding the formation of foam and sediment at its bottom. After that, the mixture is centrifuged for 2 minutes at 1000-1500 rpm. The plasma in the supernatant was transferred to a clean tube and defibrated in a water bath at 56 ° C for 6 min, after which it was again centrifuged at 3000 rpm for 10 min, the supernatant was removed and examined for the first 2 hours.

Ход определения. В пробирку вносят 0,4 мл рабочего раствора тромбина и прогревают его на водяной бане при 37°С в течение 2 мин. Затем добавляют 0,1 мл исследуемой адсорбированной и дефибринированной плазмы, включают секундомер. Через 2 мин (точно!) 0,2 мл смеси переносят в пробирку с 0,3 мл раствора фибриногена (или разведенной нормальной плазмы), предварительно подогретой до 37°С. Немедленно включают секундомер и регистрируют время свертывания.The course of determination. 0.4 ml of the thrombin working solution is added to the test tube and heated in a water bath at 37 ° C for 2 minutes. Then add 0.1 ml of the studied adsorbed and defibrified plasma, include a stopwatch. After 2 minutes (exactly!) 0.2 ml of the mixture was transferred to a test tube with 0.3 ml of fibrinogen solution (or diluted normal plasma), preheated to 37 ° C. Immediately turn on the stopwatch and record the clotting time.

По калибровочной кривой находят активность AT III в процентах.From the calibration curve, AT III activity is found in percent.

Построение калибровочной кривой проводят следующим образом. Плазму здоровых людей подвергают дефибринированию, как указано выше. Затем из нее готовят разведения для построения калибровочной кривой в соответствии с табл.1.The construction of the calibration curve is as follows. The plasma of healthy people is defibrated as described above. Then, dilutions are prepared from it for constructing a calibration curve in accordance with Table 1.

Таблица 1Table 1 Схема приготовления разведений плазмы для построения калибровочной кривой при определении активности AT IIIScheme for preparing plasma dilutions for constructing a calibration curve in determining the activity of AT III Номер разведенияBreeding number Плазма + буферPlasma + buffer Активность AT III, %Activity AT III,% 1one Плазма без буфераBuffer free plasma 100one hundred 22 0,2 мл + 0,2 мл0.2 ml + 0.2 ml 50fifty 33 0,1 мл + 0,3 мл0.1 ml + 0.3 ml 2525

С каждым из разведений определяют время свертывания по указанной выше методике. Все измерения проводят трижды, рассчитывают средний результат. При построении калибровочной кривой по логарифмической оси ординат откладывают время свертывания в секундах, по оси абсцисс - активность AT III в % в соответствии с указанными выше разведениями. Примерная калибровочная кривая приведена на чертеже.With each of the dilutions, the clotting time is determined by the above procedure. All measurements are carried out three times, the average result is calculated. When constructing a calibration curve along the logarithmic axis of ordinates, the clotting time in seconds is plotted, along the abscissa, the activity of AT III in% in accordance with the above dilutions. An approximate calibration curve is shown in the drawing.

Калибровочную кривую для одной серии тромбина и буфера строят однократно. Периодически контролируют лишь активность рабочего раствора тромбина.A calibration curve for one series of thrombin and buffer is built once. Only the activity of the thrombin working solution is periodically monitored.

В норме без венозной окклюзии активность AT III составляет 85-115%. При взятии крови после временной венозной окклюзии, как описано в методе по оценке антиагрегационной активности сосудов, и определении в ней AT III возможно косвенно оценить уровень выделения из стенки сосуда AT III. На фоне временной венозной окклюзии активность AT III повышается и находится в границах 120-143%. Рассчитывается индекс синтеза AT III в сосудах (ИСАС) путем деления величины активности AT III на фоне венозной окклюзии на величину AT III без нее. В норме он равен 1,20-1,45.Normally, without venous occlusion, AT III activity is 85-115%. When taking blood after temporary venous occlusion, as described in the method for assessing the antiplatelet activity of blood vessels and determining AT III in it, it is possible to indirectly assess the level of excretion of AT III from the vessel wall. Against the background of temporary venous occlusion, the activity of AT III increases and is within 120-143%. The index of AT III synthesis in blood vessels (ISAS) is calculated by dividing the value of AT III activity against venous occlusion by the value of AT III without it. Normally, it is 1.20-1.45.

Активность синтеза тканевых активаторов плазминогена по времени лизиса эуглобулинового сгустка до- и послевременной венозной окклюзии оценивали следующим образом.The synthesis activity of tissue plasminogen activators by the time of lysis of the euglobulin clot of pre- and post-temporal venous occlusion was evaluated as follows.

Принцип метода заключается в осаждении эуглобулиновой фракции плазмы, при этом основные ингибиторы фибринолиза, в частности α2-антиплазмином, остаются в надосадочной части и удаляются. Поэтому эуглобулиновый лизис отражает активность фибринолиза в условиях исключения ингибирующего действия антиплазминов. Его скорость отражает в основном количество плазминогена в плазме и степень его активации. Определяют время спонтанного лизиса сгустка, получаемого из эуглобулиновой фракции плазмы при добавлении к ней раствора хлорида кальция.The principle of the method is to precipitate the euglobulin fraction of plasma, while the main inhibitors of fibrinolysis, in particular α 2 -antiplasmin, remain in the supernatant and are removed. Therefore, euglobulin lysis reflects the activity of fibrinolysis under conditions of exclusion of the inhibitory effect of antiplasmin. Its speed mainly reflects the amount of plasminogen in the plasma and the degree of its activation. The time of spontaneous lysis of the clot obtained from the euglobulin fraction of plasma is determined by adding a solution of calcium chloride to it.

Используются следующие реактивы: 1. 1% раствор уксусной кислоты. 2. 0,277% раствор хлорида кальция. 3. Буфер Михаэлиса или трис-HCl буфер, 0.05М, рН 7,3-7,4.The following reagents are used: 1. 1% solution of acetic acid. 2.2.277% solution of calcium chloride. 3. Michaelis buffer or Tris-HCl buffer, 0.05M, pH 7.3-7.4.

Материалом для исследования служит цитратная бедная тромбоцитами плазма до и после временной венозной окклюзии.The material for the study is a citrate platelet-poor plasma before and after temporary venous occlusion.

Ход определения. Для получения эуглобулиновой фракции к 8,0 мл дистиллированной воды добавляют 0,15 мл 1% уксусной кислоты и 0,5 мл исследуемой плазмы. После 30-минутного охлаждения смеси в холодильнике при +2-8°С эуглобулины осаждают центрифугированием при 1500 об/мин в течение 7 мин. Надосадочную жидкость сливают, пробирку осушают опрокидыванием на фильтровальную бумагу. Осадок эуглобулинов разводят в 0,5 мл буфера и помещают на водяную баню (37°С). Затем, не вынимая пробирку из бани, добавляют 0,5 мл раствора хлорида кальция, осторожно перемешивают покачиванием пробирки (не встряхивая!), включают секундомер и инкубируют на водяной бане при 37°С. Регистрируют время с момента добавления хлорида кальция до полного растворения сгустка.The course of determination. To obtain the euglobulin fraction, 0.15 ml of 1% acetic acid and 0.5 ml of the test plasma are added to 8.0 ml of distilled water. After 30 minutes of cooling the mixture in the refrigerator at + 2-8 ° C, the euglobulins are precipitated by centrifugation at 1500 rpm for 7 minutes. The supernatant is drained, the tube is dried by tipping over onto filter paper. The precipitate of euglobulins is diluted in 0.5 ml of buffer and placed in a water bath (37 ° C). Then, without removing the tube from the bath, add 0.5 ml of calcium chloride solution, mix gently by shaking the tubes (without shaking!), Turn on the stopwatch and incubate in a water bath at 37 ° C. Record the time from the moment of adding calcium chloride to the complete dissolution of the clot.

Результат выражают в минутах. В норме время спонтанного лизиса эуглобулинового сгустка составляет 180-240 мин. После временной венозной окклюзии время лизиса снижается, находясь в границах 126-170 мин. При делении величины длительности спонтанного лизиса эуглобулинового сгустка до окклюзии на величину после рассчитан индекс фибринолитической активности сосудистой стенки (ИФАСС), в норме равный 1,40-1,50.The result is expressed in minutes. Normally, the time of spontaneous lysis of the euglobulin clot is 180-240 minutes. After temporary venous occlusion, the lysis time decreases, being in the range of 126-170 minutes. When dividing the duration of spontaneous lysis of the euglobulin clot before occlusion by the value after, the index of fibrinolytic activity of the vascular wall (IFASS) was calculated, normally equal to 1.40-1.50.

Нитраты в крови определяли по методу (Емченко Н.Л., Цыганенко О.И., Ковалевская Т.В. Универсальный метод определения нитратов в биосредах организма.// Клиническая лабораторная диагностика. 1994. - № 5, - с.19-20).Blood nitrates were determined by the method (Emchenko N.L., Tsyganenko O.I., Kovalevskaya T.V. Universal method for the determination of nitrates in the biological environment of an organism.// Clinical laboratory diagnostics. 1994. - No. 5, - p.19-20 )

Ход определения. В центрифужные пробирки вместимостью 10 мл помещают 0,25-1,50 мл 50% раствора сульфата цинка, 0,25-1,50 мл 17% раствора феррицианида железа, 1-5 мл анализируемой пробы (пипетку для отбора крови предварительно смачивают раствором цитрата натрия). Затем прибавляют 0,5-2 мл аммиачно-хлоридного буфера (рН 9,6±0,05) и от 1 до 8 мл дистиллированной воды для анализа плазмы крови.The course of determination. 0.25-1.50 ml of a 50% zinc sulfate solution, 0.25-1.50 ml of a 17% iron ferricyanide solution, 1-5 ml of an analyzed sample are placed in 10 ml centrifuge tubes (a pipette for blood sampling is pre-moistened with a citrate solution sodium). Then add 0.5-2 ml of ammonium chloride buffer (pH 9.6 ± 0.05) and from 1 to 8 ml of distilled water for analysis of blood plasma.

Объемы анализируемой пробы и применяемых для ее депротеинизации реактивов представлены в табл.2.The volumes of the analyzed sample and the reagents used for its deproteinization are presented in Table 2.

Таблица 2table 2 Объемы (в мл) анализируемых проб и реактивов, прибавляемых для их депротеинизацииVolumes (in ml) of the analyzed samples and reagents added for their deproteinization БиосубстратBiosubstrate ПробаTry ZnSO4 ZnSO 4 K2Fe(CN)6 K 2 Fe (CN) 6 БуферBuffer Дистиллированная водаDistilled water КровьBlood 1,001.00 1,001.00 1,001.00 2,002.00 5,005.00

Общий объем смеси должен составлять 10 мл.The total volume of the mixture should be 10 ml.

Полученную смесь перемешивают и центрифугируют в течение 20 мин при 2500 об/мин. Параллельно проводят холостой опыт.The resulting mixture was stirred and centrifuged for 20 minutes at 2500 rpm. In parallel, they conduct a blank experiment.

Отбирают аликвоту центрифугата объемом 5 мл в колбу вместимостью 50 мл, прибавляют 2,5 мл аммиачно-хлоридного буфера, 2,5 мл дистиллированной воды, перемешивают и пропускают через колонку с губчатым кадмием вначале холостую пробу, затем испытуемую. Перед пропусканием каждой из проб колонку промывают последовательно 5 мл 1 н. HCl, 50 мл дистиллированной воды и 25 мл аммиачно-хлоридного буфера, разбавленного в соотношении 1:9. Элюат собирают в ту же мерную колбу, колонку промывают дистиллированной водой, не доводя объем раствора в колбе до метки примерно на 10 мл. Затем в колбу прибавляют 5 мл 0,25% раствора стрептоцида, 1 мл HCl (1:2) и через 5 мин - 1 мл 0,1% раствора N-нафтилэтилендиаминдигидрохлорида. Раствор доводят до метки дистиллированной водой, перемешивают и оставляют на 10 мин. По истечении этого времени пробы фотометрируют на фотоэлектроколориметре при длине волны 540 нм (зеленый светофильтр) в кювете с длиной оптического пути 5 см против холостой пробы.An aliquot of a 5 ml centrifugate was taken into a 50 ml flask, 2.5 ml of ammonia-chloride buffer, 2.5 ml of distilled water were added, stirred and a blank sample was passed through a sponge cadmium column, first a blank sample, then the test one. Before passing each of the samples, the column is washed sequentially with 5 ml of 1 N. HCl, 50 ml of distilled water and 25 ml of ammonium chloride buffer diluted in a ratio of 1: 9. The eluate is collected in the same volumetric flask, the column is washed with distilled water, not bringing the volume of solution in the flask to the mark of about 10 ml. Then, 5 ml of a 0.25% streptocide solution, 1 ml of HCl (1: 2) are added to the flask, and after 5 minutes, 1 ml of a 0.1% solution of N-naphthylethylenediamine dihydrochloride. The solution was adjusted to the mark with distilled water, stirred and left for 10 minutes. After this time, the samples are photometered on a photoelectric colorimeter at a wavelength of 540 nm (green filter) in a cuvette with an optical path length of 5 cm against a blank sample.

Концентрацию нитратов определяют по градуированному графику, строящемуся в каждой лаборатории отдельно и самостоятельно. Для его построения в мерные колбы вместимостью 50 мл вносят 0,25, 0,5, 1, 2,5 и 5 мл раствора нитрата калия с концентрацией нитрат-иона, равной 10 мкг/мл, добавляют по 10 мл дистиллированной воды и по 5 мл аммиачно-хлоридного буфера и элюируют через кадмиевую колонку. Цветную реакцию и фотометрирование проводят, как описано выше. Оптическую плотность измеряют против нулевого раствора.The concentration of nitrates is determined by the graded schedule, which is built in each laboratory separately and independently. To build it, 0.25, 0.5, 1, 2.5 and 5 ml of potassium nitrate solution with a concentration of nitrate ion equal to 10 μg / ml are added to volumetric flasks with a capacity of 50 ml, 10 ml of distilled water are added and 5 ml of ammonium chloride buffer and elute through a cadmium column. The color reaction and photometry is carried out as described above. The optical density is measured against a zero solution.

Содержание нитратов (X, мг/л) в анализируемых образцах биосред рассчитывают по формуле:The nitrate content (X, mg / l) in the analyzed samples of biological media is calculated by the formula:

Figure 00000003
Figure 00000003

где C1 - концентрация нитрат-ионов в фотометрируемом растворе, найденная по градуировочному графику (мкг/мл); V1 - общий объем безбелкового экстракта (мл); V2 - общий объем фотометрируемого раствора (мл); V3 - объем образца, взятого для анализа (мл); V4 - объем безбелкового экстракта, взятого для анализа (в мл). В норме у здоровых людей концентрация нитритов в крови составляет 1,20-2,2 мг/л. При временном наложении жгута на плечо и создании временной ишемии стенки сосуда по описанной выше схеме отмечается усиленное выделение в кровь из сосуда оксида азота с ростом содержания в крови нитратов от 6,0 до 13,0 мг/л. Возможен расчет нитратного индекса по формуле:where C 1 is the concentration of nitrate ions in the photometric solution, found according to the calibration graph (μg / ml); V 1 - the total volume of protein-free extract (ml); V 2 - the total volume of photometric solution (ml); V 3 - the volume of the sample taken for analysis (ml); V 4 - the volume of protein-free extract taken for analysis (in ml). Normally, in healthy people, the concentration of nitrites in the blood is 1.20-2.2 mg / L. With temporary application of a tourniquet on the shoulder and the creation of temporary ischemia of the vessel wall according to the scheme described above, increased release of nitric oxide into the blood from the vessel with an increase in the nitrate content in the blood from 6.0 to 13.0 mg / L is noted. It is possible to calculate the nitrate index by the formula:

Figure 00000004
Figure 00000004

В норме НИ находится в границах от 5,0 до 5,9.Normally, NI is in the range from 5.0 to 5.9.

ПТИС рассчитывается по формуле:PTIS is calculated by the formula:

Figure 00000005
Figure 00000005

Нормальными значениями ПТИС являются значения не ниже 2,27. При ПТИС в границах 2,26-2,10 имеет место риск развития вазопатии, а при значении ПТИС 2,09 и ниже отмечается клиническая манифестация вазопатии.Normal PTIS values are values not lower than 2.27. With PTIS within 2.26-2.10, there is a risk of developing vasopathy, and with a PTIS of 2.09 or lower, clinical manifestation of vasopathy is noted.

Внедрение данного способа риска развития вазопатии у больных АГ с МС в практику лечебных учреждений позволит решить ряд насущных социально-экономических проблем современности. Ранняя диагностика у данной категории больных позволит своевременно начинать у них лечение вазопатии, что сократит у этих пациентов сроки временной нетрудоспособности, профилактирует инсульты и инфаркты, уменьшит число выходов на инвалидность и снизит смертность среди данного контингента больных.The introduction of this risk method for the development of vasopathy in patients with hypertension with MS in the practice of medical institutions will solve a number of pressing socio-economic problems of our time. Early diagnosis in this category of patients will allow them to start treatment of vasopathy in a timely manner, which will shorten the period of temporary disability in these patients, prevent strokes and heart attacks, reduce the number of disability exits and reduce mortality among this group of patients.

Пример 1. Больная Б. 42 года, страдающая артериальной гипертонией с метаболическим синдромом на протяжении 2 лет, ведущая здоровый образ жизни, обследована во время диспансерного осмотра по поводу артериальной гипертонии. У больной была взята кровь и исследована по изложенной выше схеме с оценкой антиагрегационной активности сосудистой стенки, содержания антитромбина III, времени эуглобулинового лизиса, уровня нитратов до и после венозной окклюзии и вычислением ИААСС, ИСАС, ИФАСС, НИ и противотромботического индекса сосудов.Example 1. Patient B. 42 years old, suffering from arterial hypertension with metabolic syndrome for 2 years, leading a healthy lifestyle, was examined during a physical examination for arterial hypertension. Blood was taken from the patient and examined according to the above scheme, with an assessment of the antiaggregatory activity of the vascular wall, antithrombin III content, euglobulin lysis time, nitrate levels before and after venous occlusion, and the calculation of IAASC, ISAS, IFASS, NR and antithrombotic vascular index.

У пациентки не было выявлено признаков угнетения ПТИС. ИААСС составлял 1,5, ИСАС, ИФАСС, НИ составляли 1,3, 1,4, и 5,1 соответственно. ПТИС составил 2,32. Больной было рекомендовано и далее контролировать артериальное давление и вести здоровый образ жизни. Исследование функций сосудистой стенки у нее через 12 нед не выявило отрицательных изменений значения ПТИС (2,34).The patient showed no signs of inhibition of PTIS. IAASC was 1.5, ISAS, IFASS, NI were 1.3, 1.4, and 5.1, respectively. PTIS amounted to 2.32. The patient was recommended to continue to monitor blood pressure and lead a healthy lifestyle. A study of the functions of the vascular wall in her after 12 weeks did not reveal negative changes in the value of PTIS (2.34).

Пример 2. Больная Л. 47 лет, страдающая артериальной гипертонией с метаболическим синдромом на протяжении 6 лет, обследована во время диспансерного осмотра по поводу артериальной гипертонии. У больной была взята кровь и исследована по изложенной выше схеме с оценкой антиагрегационной активности сосудистой стенки, содержания антитромбина III, времени эуглобулинового лизиса, уровня нитратов до- и послевенозной окклюзии и вычислением ИААСС, ИСАС, ИФАСС, НИ и расчетом ПТИС.Example 2. Patient L. 47 years old, suffering from arterial hypertension with metabolic syndrome for 6 years, was examined during a physical examination for arterial hypertension. Blood was taken from the patient and studied according to the scheme described above with an assessment of the antiplatelet activity of the vascular wall, the content of antithrombin III, the time of euglobulin lysis, the nitrate level of pre- and post-venous occlusion and the calculation of IAASC, ISAS, IFASS, NI and PTIS calculation.

ИААСС составлял 1,36. ИСАС, ИФАСС и НИ составили 1,18, 1,37 и 4,7 соответственно. ПТИС составил 2,15. У пациентки был выявлен риск развития вазопатии. Больной было рекомендовано для адекватного контроля артериального давления и нормализации состояния сосудистой стенки вести здоровый образ жизни, принимать нормодипин 10 мг 1 раз в сутки и обследоваться ежемесячно. Так, исследование функций сосудистой стенки через 12 нед не выявило отрицательных отклонений в ИААСС - 1,51, ИСАС - 1,43, ИФАСС - 1,48, НИ - 5,4. ПТИС у нее находился на уровне нормы - 2,45.IAASC was 1.36. ISAS, IFASS and NI amounted to 1.18, 1.37 and 4.7, respectively. PTIS amounted to 2.15. The patient had a risk of developing vasopathy. The patient was recommended for adequate control of blood pressure and normalization of the state of the vascular wall to lead a healthy lifestyle, take normodipine 10 mg 1 time per day and examined monthly. So, a study of the functions of the vascular wall after 12 weeks did not reveal negative deviations in IAASC - 1.51, ISAS - 1.43, IFASS - 1.48, NI - 5.4. PTIS at her level was normal - 2.45.

Claims (1)

Способ диагностики риска развития вазопатии у больных артериальной гипертонией с метаболическим синдромом, характеризующийся тем, что определяют агрегационную активность тромбоцитов с коллагеном, уровень антитромбина III, время эуглобулинового лизиса и содержание нитратов в крови пациентов до и на фоне временной венозной окклюзии, затем вычисляют индекс антиагрегационной активности стенки сосудов (ИААСС), индекс синтеза антитромбина III в сосудах (ИСАС), индекс фибринолитической активности сосудистой стенки (ИФАСС) и нитратный индекс (НИ), рассчитываемые как отношение значений соответствующих показателей на фоне и до временной венозной окклюзии, затем рассчитывают противотромботический индекс сосудов (ПТИС) по формуле ПТИС=(ИААСС+ИСАС+ИФАСС+НИ)/4, и при его значении 2,27 и выше риск развития вазопатии отсутствует; при его значении в интервале 2,26-2,10 больные входят в группу риска по развитию вазопатии; при его значении 2,09 и ниже развивается вазопатия.A method for diagnosing the risk of developing vasopathy in patients with arterial hypertension with metabolic syndrome, characterized in that the aggregation activity of platelets with collagen, the level of antithrombin III, the time of euglobulin lysis and the content of nitrates in the blood of patients before and against the background of temporary venous occlusion are determined, and then the antiaggregation activity index is calculated vascular wall (IAASS), the synthesis index of antithrombin III in the vessels (ISAS), the index of fibrinolytic activity of the vascular wall (IFASS) and the nitrate index (N I), calculated as the ratio of the values of the corresponding indicators against the background and to temporary venous occlusion, then the antithrombotic vascular index (PTIS) is calculated using the formula PTIS = (IAASS + ISAC + IFASS + NI) / 4, and with its value 2.27 and higher there is no risk of developing vasopathy; with its value in the range of 2.26-2.10, patients are at risk for the development of vasopathy; with its value of 2.09 and below, vasopathy develops.
RU2007101264/15A 2007-01-11 2007-01-11 Method of angiopathy development risk diagnostics in arterial hypertension cases with metabolic syndrome RU2331883C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007101264/15A RU2331883C1 (en) 2007-01-11 2007-01-11 Method of angiopathy development risk diagnostics in arterial hypertension cases with metabolic syndrome

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007101264/15A RU2331883C1 (en) 2007-01-11 2007-01-11 Method of angiopathy development risk diagnostics in arterial hypertension cases with metabolic syndrome

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2331883C1 true RU2331883C1 (en) 2008-08-20

Family

ID=39748115

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2007101264/15A RU2331883C1 (en) 2007-01-11 2007-01-11 Method of angiopathy development risk diagnostics in arterial hypertension cases with metabolic syndrome

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2331883C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2506901C1 (en) * 2012-08-03 2014-02-20 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СамГМУ Минздрава России) Method of predicting development of vascular disorders in patients with influenza
RU2741365C1 (en) * 2019-12-06 2021-01-25 Александр Юрьевич Расческов Method for non-invasive diagnosing of retinal venous occlusion of ischemic type

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
КОСТИНА Н.Э. Прогнозирование риска развития острого инфаркта миокарда и острого нарушения мозгового кровообращения у больных гипертонической болезнью: Автореф. дис. к.м.н. - Воронеж, 2003, 18 с. реф. Найдено из БД VINITI.RU. [найдено 11.09.2007]. [он-лайн]. ШУБИНА А.Т. Метаболический синдром X. предпосылки к развитию артериальной гипертонии и атеросклероза. - Клиническая фармакология и терапия, 2001, Ч.1., Т.10, №4, с.44-47. ГРИГОРИЧЕВА Е.А. и др. Метаболические и гемодинамические факторы риска поражения органов-мишеней у больных артериальной гипертензией. 5-й Российский форум Кардиология 2003. Найдено из БД Интернет, http://medafarm.ru/news/2003/tes.shtml. [найдено 10.09.2007] [он-лайн] SCHILLACI G. et al. Prognostic value of the metabolic syndrome in essential hypertension. J. Am. Coll. Cardiol. 2004, May. 19; 43(10), 1817-1822. реф. Найдено из БД PubMed, PMID: 15145106. [найдено 03.09.2007] [он-лайн]. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2506901C1 (en) * 2012-08-03 2014-02-20 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СамГМУ Минздрава России) Method of predicting development of vascular disorders in patients with influenza
RU2741365C1 (en) * 2019-12-06 2021-01-25 Александр Юрьевич Расческов Method for non-invasive diagnosing of retinal venous occlusion of ischemic type
RU2741365C9 (en) * 2019-12-06 2021-05-25 Александр Юрьевич Расческов Method for non-invasive diagnosing of retinal venous occlusion of ischemic type

Similar Documents

Publication Publication Date Title
D'erasmo et al. Platelet count, mean platelet volume and their relation to prognosis in cerebral infarction
Utsch et al. Urinalysis in children and adolescents
Andersen et al. Platelet aggregation and fibrinolytic activity in transient cerebral ischemia
RU2331883C1 (en) Method of angiopathy development risk diagnostics in arterial hypertension cases with metabolic syndrome
Yameny D-dimer levels in COVID-19 out-hospitalized patients in Egypt
RU2525437C1 (en) Method for determining oxidative protein modification in substance pool of average molecular weight in blood serum, plasma, erythrocyte, and in urine
RU2322941C1 (en) Early diagnosis method for recognizing blood vessel wall antiaggregation activity reduction
RU2379684C2 (en) Method of determining anti-thrombotic effect of acetylsalicylic acid
RU2538219C2 (en) Method of determining platelet resistance to acetylsalicylic acid
RU2517069C1 (en) Method for prediction of risk of developing recurrent inflammatory intestinal diseases
RU2316765C1 (en) Method for detecting antithrombotic blood vessel activity weakening at early stage
RU2408289C1 (en) Method of differential diagnostics of hepatic fibrosis in case of chronic viral hepatitis c
US20220412960A1 (en) Method and means for diagnosing a human sepsis
Fiebig et al. Clinically relevant differences in prothrombin time and INR values related to blood sample collection in plastic vs glass tubes
CN111521815A (en) Application of LRG1 as serological marker for diagnosing thromboangiitis obliterans
Roberts et al. Haemorrhagic smallpox: 1. Preliminary haematological studies
RU2393475C1 (en) Method of blood rheology assessment
RU2358265C1 (en) Method of inflammation process activity diagnostics for chronic pyelonephritis
RU2339042C1 (en) Method of diagnostics of form of acute pancreatitis
RU2275640C1 (en) Method for selecting thrombocytopathy treatment approach in metabolic syndrome cases
RU2222019C2 (en) Method for controlling therapy with indirect anticoagulants
RU2813952C1 (en) Method for selecting individuals working in conditions of exposure to silicon-containing aerosols for subsequent monitoring of state of bronchopulmonary system
RU2257574C2 (en) Method for predicting disseminated intravascular clotting (dic)at burn disease
Rudin et al. Total body potassium, skeletal muscle potassium and magnesium in patients with Bartter's syndrome
RU2286580C1 (en) Method for diagnosing beginning blood platelets aggregation disorders

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20110112