RU2249433C2 - Method for diagnosing chronic pancreatitis cases developed on the background of duodenal peptic ulcer disease - Google Patents

Method for diagnosing chronic pancreatitis cases developed on the background of duodenal peptic ulcer disease Download PDF

Info

Publication number
RU2249433C2
RU2249433C2 RU2002109858/14A RU2002109858A RU2249433C2 RU 2249433 C2 RU2249433 C2 RU 2249433C2 RU 2002109858/14 A RU2002109858/14 A RU 2002109858/14A RU 2002109858 A RU2002109858 A RU 2002109858A RU 2249433 C2 RU2249433 C2 RU 2249433C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
solution
blood
activity
chronic pancreatitis
level
Prior art date
Application number
RU2002109858/14A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
О.В. Кокуева (RU)
О.В. Кокуева
Ж.Л. Романова (RU)
Ж.Л. Романова
Е.В. Михайлошина (RU)
Е.В. Михайлошина
Ю.М. Цымбалюк (RU)
Ю.М. Цымбалюк
Original Assignee
Россйский центр функциональной хирургической гастроэнтерологии
Кокуева Ольга Васильевна
Романова Жанна Леонидовна
Михайлошина Елена Владимировна
Цымбалюк Юрий Михайлович
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Россйский центр функциональной хирургической гастроэнтерологии, Кокуева Ольга Васильевна, Романова Жанна Леонидовна, Михайлошина Елена Владимировна, Цымбалюк Юрий Михайлович filed Critical Россйский центр функциональной хирургической гастроэнтерологии
Priority to RU2002109858/14A priority Critical patent/RU2249433C2/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2249433C2 publication Critical patent/RU2249433C2/en

Links

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: method involves determining clinical symptoms and pancreatic enzymes blood level. Enzyme level being in norm in blood serum, chronic pancreatitis is diagnosed by additionally determining deviations from reference level after intramuscularly introducing Immunophane 5 times and by detecting specific changes in patient immunity status.
EFFECT: high accuracy of diagnosis.
5 tbl

Description

Предлагаемое изобретение относится к медицине, в частности к гастроэнтерологии и иммунологии, и может найти применение в диагностике хронического панкреатита (ХП).The present invention relates to medicine, in particular to gastroenterology and immunology, and may find application in the diagnosis of chronic pancreatitis (CP).

Статистический анализ показывает, что язвенной болезнью двенадцатиперстной кишки (ЯБ ДПК) болеют около 10% населения в мире. Длительное, часто рецидивирующее течение ЯБ ДПК в 63-100% случаев приводит к необратимым изменениям структуры и функции поджелудочной железы, способствуя развитию вторичного ХП (Сухова Н.А., 1992, Кокуева О.В., 1998). Поражение поджелудочной железы происходит с участием иммунокомпетентных клеток в результате истощения резервов иммунного ответа и срыва иммунологической толерантности у больных ЯБ ДПК. Развившийся на фоне ЯБ ДПК хронический панкреатит формирует качественно новый симптомокомплекс, изменяющий и утяжеляющий течение основного заболевания. Предотвратить развитие ХП у больных ЯБ ДПК возможно при диагностировании его на самом раннем этапе, задолго до манифестации функциональных расстройств.Statistical analysis shows that about 10% of the world's population suffers from peptic ulcer of the duodenum (ulcer of duodenal ulcer). The long, often recurring course of ulcerous duodenal ulcer in 63-100% of cases leads to irreversible changes in the structure and function of the pancreas, contributing to the development of secondary CP (Sukhova N.A., 1992, Kokueva O.V., 1998). Damage to the pancreas occurs with the participation of immunocompetent cells as a result of depletion of the reserves of the immune response and disruption of immunological tolerance in patients with ulcerous duodenum. The chronic pancreatitis that developed against the background of ulcer disease is forming a qualitatively new symptom complex that changes and aggravates the course of the underlying disease. It is possible to prevent the development of CP in patients with pulmonary ulcer disease when diagnosing it at a very early stage, long before the manifestation of functional disorders.

В диагностике ХП важную роль играет выявление гиперферментемии, которую исследуют путем количественного определения содержания в сыворотке крови амилазы, липазы, трипсина (Справочник “Медицинские лабораторные технологии”, С.-Петербург, 1999, т.2, стр.19-20, 39-41, 20-21. Биохимические методы исследования в клинике. М., 1969, стр.186-191, 206-208. Богер М.М., Методы исследования поджелудочной железы, Новосибирск: Наука, 1982, стр.80-94).In the diagnosis of CP, an important role is played by the detection of hyperfermentemia, which is investigated by quantifying the content of amylase, lipase, and trypsin in the blood serum (Reference Medical Laboratory Technologies, St. Petersburg, 1999, v. 2, pp. 19-20, 39- 41, 20-21. Biochemical research methods in the clinic. M., 1969, pp. 186-191, 206-208. Boger MM, Methods for the study of the pancreas, Novosibirsk: Nauka, 1982, pp. 80-94) .

В клинической практике чаще всего исследуют активность амилазы, поскольку для этого фермента имеется специфический субстрат и методы определения его несложны. Существуют три основные группы способов исследования амилазы в биологических жидкостях:In clinical practice, the activity of amylase is most often investigated, since there is a specific substrate for this enzyme and its determination methods are simple. There are three main groups of methods for studying amylase in biological fluids:

1) редуктометрические, основанные на определении образующихся из крахмала сахаров;1) reductometric, based on the determination of sugars formed from starch;

2) амилокластические, основанные на определении количества нерасщепленного крахмала по его реакции с йодом;2) amyloclastic, based on the determination of the amount of unsplit starch by its reaction with iodine;

3) хромолитические, основанные на использовании комплексов субстрат-краситель, которые под действием амилазы распадаются с образованием водорастворимого красителя.3) chromolytic, based on the use of substrate-dye complexes, which decompose under the action of amylase to form a water-soluble dye.

Активность липазы определяют в большинстве способов на основании титрометрического определения количества освободившихся под действием фермента жирных кислот. Эти способы отличаются используемым субстратом: оливковое масло, твин, тербутирин. Фотометрический способ определения липазы связан с введением в реакционную смесь особых реактивов. В качестве унифицированного способа используют турбидиметрический, в котором в качестве субстрата используют оливковое масло.Lipase activity is determined in most methods based on titrometric determination of the amount of fatty acids released by the enzyme. These methods differ in the substrate used: olive oil, tween, terbutyrin. The photometric method for determining lipase involves the introduction of special reagents into the reaction mixture. A turbidimetric method is used as a unified method, in which olive oil is used as a substrate.

Трипсин определяют в сыворотке крови путем исследования его активности по Эрлангеру с сотр. в модификации В.А. Шорникова. Способ основан на расщеплении трипсином синтетического бесцветного субстрата-бензоиларгинин-р-нитроанилид с образованием окрашенного р-нитроанилина, количество которого определяют калибриметрически.Trypsin is determined in blood serum by examining its activity according to Erlanger et al. in the modification of V.A. Shornikova. The method is based on trypsin cleavage of a colorless synthetic substrate-benzoylarginine-p-nitroanilide with the formation of colored p-nitroaniline, the amount of which is determined calimetrically.

Однако по активности панкреатических ферментов в крови зачастую трудно судить о наличии и выраженности ХП, поскольку заболевание в сочетании с ЯБ ДПК часто не сопровождается повышением активности ферментов. В этих случаях применяемые методы не имеют существенной ценности и ХП может быть вовремя не диагностирован, что повлечет прогрессирование воспалительно-дегенеративного процесса в поджелудочной железе с нарушением ее функциональной активности, манифестацию заболевания и развитие осложнений вследствие отсутствия своевременного патогенетического лечения.However, it is often difficult to judge the presence and severity of CP by the activity of pancreatic enzymes in the blood, since the disease in combination with YAB DPK is often not accompanied by an increase in the activity of enzymes. In these cases, the methods used are not significant and CP may not be diagnosed in time, which will lead to the progression of the inflammatory and degenerative process in the pancreas with a violation of its functional activity, the manifestation of the disease and the development of complications due to the lack of timely pathogenetic treatment.

В качестве вспомогательного метода для выявления ХП используют иммунологическое исследование периферической крови. Применяемые иммунологические методы делят на 3 группы (Велбри С.К. Иммунологическая диагностика заболеваний поджелудочной железы, М., 1985):As an auxiliary method for the detection of CP, an immunological study of peripheral blood is used. The applied immunological methods are divided into 3 groups (Velbri S.K. Immunological diagnosis of pancreatic diseases, M., 1985):

1) определение нормальных и измененных антигенов ткани и отдельных составных компонентов поджелудочной железы в крови и биологических жидкостях как признака повреждения или нарушения функции поджелудочной железы;1) the definition of normal and altered tissue antigens and individual constituent components of the pancreas in the blood and biological fluids as a sign of damage or impaired pancreatic function;

2) определение антител или сенсибилизированных лимфоцитов против антигенов поджелудочной железы или ее отдельных компонентов, комплексов антиген-антитело как показателей иммунного ответа. Эти показатели могут быть диагностическими критериями течения заболевания;2) the determination of antibodies or sensitized lymphocytes against pancreatic antigens or its individual components, antigen-antibody complexes as indicators of the immune response. These indicators may be diagnostic criteria for the course of the disease;

3) определение иммунологических показателей, не указывающих прямо на поражение поджелудочной железы, но характеризующих состояние иммунной системы в целом, степень ее реактивности как способности организма противостоять развитию основного патологического процесса, так и его резистентности к осложнениям.3) determination of immunological parameters that do not directly indicate damage to the pancreas, but characterize the state of the immune system as a whole, the degree of its reactivity as the body's ability to withstand the development of the main pathological process, and its resistance to complications.

Важен тот факт, что при ХП уровень панкреатических ферментов в крови и моче обычно повышается позже и нормализуется раньше, чем исчезает антиген поджелудочной железы из крови. Поэтому выявление последнего в сыворотке крови является высокоспецифическим методом диагностики ХП. Но при сочетании ХП с ЯБ ДПК результативность метода может быть неудовлетворительной, т.к. антиген поджелудочной железы у данной категории больных выявляется только в 1 из 7 случаев. Наличие антипанкреатических антител не является специфичным для ХП, т.к. они могут циркулировать в крови при раке, кистозном фиброзе поджелудочной железы и отсутствовать при тяжелой форме ХП и сниженной реактивности больного, что, естественно, снижает их диагностическую ценность.It is important that in CP, the level of pancreatic enzymes in the blood and urine usually rises later and normalizes before the pancreas antigen disappears from the blood. Therefore, the detection of the latter in blood serum is a highly specific method for the diagnosis of CP. But with a combination of CP with YAB DPK, the effectiveness of the method may be unsatisfactory, pancreatic antigen in this category of patients is detected only in 1 of 7 cases. The presence of antipancreatic antibodies is not specific for CP, because they can circulate in the blood with cancer, cystic fibrosis of the pancreas and be absent in severe CP and reduced patient reactivity, which, of course, reduces their diagnostic value.

В работе нами использовано комплексное исследование иммунного статуса II уровня с оценкой состояния клеточного, гуморального, фагоцитарного звеньев иммунной системы.In the work, we used a comprehensive study of the immune status of level II with an assessment of the state of the cellular, humoral, phagocytic parts of the immune system.

Исследуемый материал: периферическая венозная кровь. Взятие крови производят в асептических условиях из вены локтевого сгиба в стерильные силиконизированные пробирки. В одну из них предварительно вносят раствор гепарина из расчета 10 ЕД/мл крови, затем добавляют 5 мл венозной крови. В другую (сухую) пробирку вносят 3 мл крови.Test material: peripheral venous blood. Blood sampling is carried out under aseptic conditions from the vein of the elbow bend into sterile silicone tubes. In one of them, a heparin solution is preliminarily added at the rate of 10 PIECES / ml of blood, then 5 ml of venous blood is added. In another (dry) tube make 3 ml of blood.

Оценку состояния клеточного звена производят с применением моноклональных антител к CD3-, CD4-, CD8-, CD16-, СD19-рецепторам лимфоцитов.Assessment of the state of the cell link is carried out using monoclonal antibodies to CD3, CD4, CD8, CD16, CD19 lymphocyte receptors.

Ход исследования.The course of the study.

Гепаринизированную кровь смешивают в объемном соотношении 2:1 с 3% раствором желатина на среде 199, перемешивают и помещают на 20-25 минут в термостат при температуре +37°С. После расслаивания верхний слой осторожно переносят пастеровской пипеткой в центрифужные пробирки и центрифугируют 10 минут при 1000 об/мин на холоде. Для удаления эритроцитов осадок ресуспендируют в 1 мл в 1 мл гемолитического буфера или в 0,5 мл дистиллированной воды (время воздействия 20-30 с) с последующим разбавлением 20-кратным объемом забуференного фосфатами физиологического раствора (ЗФР). Клетки осаждают центрифугированием при 400-430 об/мин в течение 20 минут на холоде и собирают в интерфазу, содержащую лимфоциты, при помощи пастеровской пипетки. Полученную суспензию лимфоцитов трижды отмывают в ЗФР.Heparinized blood is mixed in a volume ratio of 2: 1 with a 3% gelatin solution on medium 199, mixed and placed for 20-25 minutes in a thermostat at a temperature of + 37 ° C. After delamination, the top layer is carefully transferred with a Pasteur pipette to centrifuge tubes and centrifuged for 10 minutes at 1000 rpm in the cold. To remove red blood cells, the precipitate is resuspended in 1 ml in 1 ml of hemolytic buffer or in 0.5 ml of distilled water (exposure time 20-30 s), followed by dilution with a 20-fold volume of phosphate-buffered saline (PBS). Cells are pelleted by centrifugation at 400-430 rpm for 20 minutes in the cold and collected in an interphase containing lymphocytes using a Pasteur pipette. The resulting suspension of lymphocytes is washed three times in PBS.

Выделенные лимфоциты ресуспендируют в необходимом объеме ЗФР, доводя их концентрацию до 1-2 млн/мл, и вносят по 100 мл клеточных суспензий в U-образные лунки 96-луночного планшета. Планшеты центрифугируют на холоде в течение 2 минут при 1000 об/мин, супернатант удаляют, а осадок ресуспендируют в 100 мкл моноклональных антител требуемого разведения на забуференном фосфатами изотоническом растворе с 0,5% бычьего сывороточного альбумина и 0,02% азида натрия. Клетки инкубируют с антителами при +4°С в течение 30 минут с периодическим осторожным встряхиванием. После окончания срока инкубации клетки центрифугируют при +4°С в течение 2 минут, осадок ресуспендируют в 150-200 мкл ЗФР или среды 199, осаждают, подвергают повторной отмывке.The isolated lymphocytes are resuspended in the required volume of PBS, bringing their concentration to 1-2 million / ml, and 100 ml of cell suspensions are introduced into the U-shaped wells of a 96-well plate. The plates are centrifuged in the cold for 2 minutes at 1000 rpm, the supernatant is removed, and the pellet is resuspended in 100 μl of the required dilution monoclonal antibodies in phosphate buffered isotonic solution with 0.5% bovine serum albumin and 0.02% sodium azide. Cells are incubated with antibodies at + 4 ° C for 30 minutes with occasional gentle shaking. After the end of the incubation period, the cells are centrifuged at + 4 ° C for 2 minutes, the pellet is resuspended in 150-200 μl PBS or medium 199, precipitated, and subjected to repeated washing.

Полученные фиксированные пробы анализируют под микроскопом в ультрафиолетовом свете. Для оценки результатов реакции с достаточной степенью достоверности необходимо подсчитать не менее 200-300 клеток в каждой пробе.The obtained fixed samples are analyzed under a microscope in ultraviolet light. To evaluate the results of the reaction with a sufficient degree of reliability, it is necessary to count at least 200-300 cells in each sample.

Физиологические нормы относительного содержания лимфоцитов, принятые в лаборатории:Physiological standards for the relative content of lymphocytes accepted in the laboratory:

- CD3- 54-77%;- CD3- 54-77%;

- CD4- 35-50%;- CD4- 35-50%;

- CD8- 18-25%;- CD8 - 18-25%;

- CD16- 5-15%;- CD16-5-15%;

- CD19- 3-13%.- CD19-3-13%.

Титр иммуноглобулинов классов А, М, G вычисляют математически на основе данных радиальной иммунодиффузии в агаровом геле по методу Манчини.The titer of immunoglobulins of classes A, M, G is calculated mathematically based on the data of radial immunodiffusion in agar gel according to the Mancini method.

Ход исследования.The course of the study.

При температуре 55-56°С смешивают агар с соответствующей антисывороткой в соотношении 3:1. Быстро выливают смесь в стеклянную чашку Петри, лежащую на горизонтальном столе. После застывания агара в нем по трафарету пробойником выбивают 33 лунки, в каждую лунку пастеровской пипеткой вносят по 5 мл испытуемой сыворотки, в средние четыре лунки добавляют в 4-кратных разведениях тест-сыворотку с известным содержанием иммуноглобулинов. После этого чашки помещают во влажную среду в строго горизонтальном положении на 24-48 часов при 4°С (для JgA и JgG - 24 часа, для JgM - 48 часов). Через 24-48 часов реакцию учитывают. При косом освещении кольцо преципитации становится видимым и измеряется линейкой. По диаметру кольца вокруг лунок с тест-сывороткой строят калибровочную кривую на полулогарифмической бумаге. При ее построении учитывают то обстоятельство, что в определенном интервале концентрации иммуноглобулинов диаметр кольца прямо пропорционален логарифму концентрации иммуноглобулинов.At a temperature of 55-56 ° C, agar is mixed with the corresponding antiserum in a ratio of 3: 1. Quickly pour the mixture into a glass Petri dish lying on a horizontal table. After the agar has solidified in it, 33 holes are knocked out using a punch, 5 ml of the test serum are added to each well with a Pasteur pipette, test serum with a known content of immunoglobulins is added in 4-fold dilutions. After this, the plates are placed in a moist environment in a strictly horizontal position for 24-48 hours at 4 ° C (for JgA and JgG - 24 hours, for JgM - 48 hours). After 24-48 hours, the reaction is taken into account. Under oblique illumination, the precipitation ring becomes visible and is measured with a ruler. According to the diameter of the ring around the wells with test serum, a calibration curve is built on semilogarithmic paper. When constructing it, the fact that in a certain range of concentration of immunoglobulins the diameter of the ring is directly proportional to the logarithm of the concentration of immunoglobulins is taken into account.

После измерения диаметра кольца в испытуемых пробах по калибровочной кривой оценивают концентрацию иммуноглобулина соответствующего класса в исследуемых образцах.After measuring the diameter of the ring in the test samples, the concentration of immunoglobulin of the corresponding class in the test samples is estimated from the calibration curve.

Концентрацию выражают в ME или в мг белка на 100 мл (мг%) или г/л (система СИ).The concentration is expressed in ME or in mg protein per 100 ml (mg%) or g / l (SI system).

Физиологически нормальное содержание иммуноглобулинов:Physiologically normal content of immunoglobulins:

- JgA - 0,7-3,0 г/л;- JgA - 0.7-3.0 g / l;

- JgG - 8,0-16,0 г/л;- JgG - 8.0-16.0 g / l;

- JgM - 0,8-2,5 г/л.- JgM - 0.8-2.5 g / l.

Уровень содержания в сыворотке крови общей фракции циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК) оценивают методом преципитации 3,5% раствором полиэтиленгликоля (ПЭГ).The serum level of the total fraction of circulating immune complexes (CEC) is estimated by the precipitation method with a 3.5% solution of polyethylene glycol (PEG).

Необходимые материалы и оборудование:Necessary materials and equipment:

- изотонический раствор натрия хлорида;- isotonic sodium chloride solution;

- 7% раствор ПЭГ;- 7% PEG solution;

- 0,1 н. раствор едкого натрия;- 0.1 n sodium hydroxide solution;

- центрифуга;- centrifuge;

- спектрофотометр;- spectrophotometer;

- центрифужные пробирки;- centrifuge tubes;

- пипетки емкостью 1 мл и 5 мл.- pipettes with a capacity of 1 ml and 5 ml.

Реактивы.Reagents

7% раствор ПЭГ: 7 г ПЭГ растворяют 100 мл боратного буфера (рН 8,4). Боратный буфер готовят путем смешивания 55 мл 1,24% раствора борной кислоты и 45 мл 1,9% раствора буры, доводят до 200 мл дистиллированной водой. 3,5% раствор ПЭГ: 20 мл 7% раствора ПЭГ и 20 мл боратного буфера. 0,1 н. раствора едкого натрия: 4 г NaOH разводят в 1 мл дистиллированной воды.7% PEG solution: 7 g of PEG are dissolved in 100 ml of borate buffer (pH 8.4). Borate buffer is prepared by mixing 55 ml of a 1.24% solution of boric acid and 45 ml of a 1.9% solution of borax, adjusted to 200 ml with distilled water. 3.5% PEG solution: 20 ml of a 7% PEG solution and 20 ml of borate buffer. 0.1 n sodium hydroxide solution: 4 g of NaOH are diluted in 1 ml of distilled water.

Постановка метода.Statement of the method.

Сыворотку крови разводят изотоническим раствором хлорида натрия в соотношении 1:25 (0,1 мл + 2,5 мл). Разведенную сыворотку смешивают с 7% раствором ПЭГ в соотношении 1:1 (0,5 мл + 0,5 мл). Для проведения реакции преципитации пробирки помещают в холодильник при 4°С на 18 часов. Пробирки центрифугируют 15 минут при 1500 об/мин и удаляют надосадочную жидкость. Далее осадок растворяют в 2,5 мл 0,1 н. раствора NaOH, очень тщательно перемешивают и оставляют при комнатной температуре не менее чем на 30 минут. Пробы замеряют на спектрофотометре, длина волны 280 нм против 0,1 н. раствора NaOH. Уровни ЦИК выражают в единицах оптической плотности. Уровни ЦИК, определенные методом преципитации 3,5% раствором ПЭГ, в норме не должны превышать 0,110 единиц оптической плотности.Blood serum is diluted with isotonic sodium chloride in a ratio of 1:25 (0.1 ml + 2.5 ml). Diluted serum is mixed with 7% PEG in a ratio of 1: 1 (0.5 ml + 0.5 ml). For the precipitation reaction, the tubes are placed in a refrigerator at 4 ° C for 18 hours. The tubes are centrifuged for 15 minutes at 1500 rpm and the supernatant is removed. Next, the precipitate is dissolved in 2.5 ml of 0.1 N. NaOH solution, mix very carefully and leave at room temperature for at least 30 minutes. Samples are measured on a spectrophotometer, wavelength 280 nm against 0.1 N. NaOH solution. CEC levels are expressed in units of optical density. CEC levels determined by precipitation with a 3.5% PEG solution should normally not exceed 0.110 optical density units.

Поглотительную активность нейтрофильных гранулоцитов и степень завершенности фагоцитоза исследуют с помощью реакции с живой культурой золотистого стафилококка (штамм 209).The absorption activity of neutrophilic granulocytes and the degree of completion of phagocytosis are investigated by reaction with a live culture of Staphylococcus aureus (strain 209).

Ход исследования.The course of the study.

Каплю венозной крови в количестве 0,1 мл помещают на чистое обезжиренное покровное стекло. Его выдерживают во влажной камере при 37°С 45 минут, после чего образовавшийся сгусток осторожно удаляют пинцетом. Покровное стекло с прикрепленными нейтрофилами промывают в растворе Хенкса, наносят расчетную дозу суточной культуры Staf. aureus и снова помещают во влажную камеру при 37°С на 30 минут. После инкубации стекло промывают в растворе Хенкса для удаления непоглощенных частиц и высушивают. Высушенный препарат фиксируют и красят по Романовскому-Гимзе.A drop of venous blood in an amount of 0.1 ml is placed on a clean fat-free coverslip. It is kept in a humid chamber at 37 ° C for 45 minutes, after which the resulting clot is carefully removed with tweezers. The coverslip with attached neutrophils is washed in a Hanks solution and the calculated dose of the daily Staf culture is applied. aureus and again placed in a humid chamber at 37 ° C for 30 minutes. After incubation, the glass is washed in a Hanks solution to remove unabsorbed particles and dried. The dried preparation is fixed and stained according to Romanovsky-Giemsa.

Учет фагоцитарной активности проводят, определяя процент нейтрофилов с фагоцитарным материалом - фагоцитарное число - и количество поглощенных частиц из расчета на один нейтрофил - фагоцитарный индекс. В каждом препарате подсчитывают не менее 200 клеток. Физиологические нормы по лаборатории:Accounting for phagocytic activity is carried out by determining the percentage of neutrophils with phagocytic material - phagocytic number - and the number of particles absorbed per one neutrophil - phagocytic index. In each preparation, at least 200 cells are counted. Physiological standards in the laboratory:

- поглотительная активность - 50-70%;- absorption activity - 50-70%;

- фагоцитарное число - 2,2-4,3;- phagocytic number - 2.2-4.3;

- фагоцитарный индекс - 1,4-2,5;- phagocytic index - 1.4-2.5;

- переваривающая активность - 70-94%;- digesting activity - 70-94%;

- индекс переваривания - 1,3-2,0.- digestion index - 1.3-2.0.

С целью диагностики уровня ферментемии нами использованы:In order to diagnose the level of enzyme, we used:

I. Спектрофотометрическое определение изменения мутности суспензии оливкового масла под действием липазы (Справочник “Медицинские лабораторные технологии”, т.2, С.-Петербург, 1999, с.39-41).I. Spectrophotometric determination of the change in turbidity of a suspension of olive oil under the action of lipase (Reference “Medical laboratory technology”, v.2, St. Petersburg, 1999, S. 39-41).

Наиболее специфичным субстратом для липазы является триомин (оливковое масло).The most specific substrate for lipase is triomine (olive oil).

Определение активности липазы по Титцу.Determination of lipase activity according to Titz.

Под влиянием липазы оливковое масло расщепляется с образованием жирных кислот, которые титруются щелочью. По количеству ушедшей на титрование щелочи судят об активности липазы.Under the influence of lipase, olive oil breaks down to form fatty acids, which are titrated with alkali. The amount of alkali spent on titration is used to judge lipase activity.

Реактивы:Reagents:

1. Эмульсия оливкового масла: 93 мл дистиллированной воды; 0,2 г бензоата натрия и 7 мл гуммиарабика хорошо смешивают. К этой смеси добавляют 93 мг оливкового масла (медленно). Затем смесь эмульгируют в течение 10-15 минут сначала на малых, а затем на больших оборотах.1. Olive oil emulsion: 93 ml of distilled water; 0.2 g of sodium benzoate and 7 ml of gum arabic are mixed well. To this mixture was added 93 mg of olive oil (slow). Then the mixture is emulsified for 10-15 minutes, first at low and then at high speeds.

2. 0,2 М трис-буфера с рН 8,0: 50 мл 0,4 М раствора трис-гидроксиметиламинометана (48,4 г/л) смешивают с 26,8 мл 0,4 н. соляной кислоты и доводят объем до 100 мл дистиллированной водой.2. 0.2 M Tris buffer with pH 8.0: 50 ml of a 0.4 M Tris-hydroxymethylaminomethane solution (48.4 g / L) was mixed with 26.8 ml of 0.4 N hydrochloric acid and bring the volume to 100 ml with distilled water.

3. Индикатор: 1 г тимолфталеина растворяют в 100 мл этанола.3. Indicator: 1 g of thymolphthalein is dissolved in 100 ml of ethanol.

4. 0,05 н. раствор едкого натрия, не содержащий карбонаты, титруют до появления голубой окраски. Разница в объеме 0,05 н. едкого натрия, израсходованного на опыт и контроль, составляет активность липазы в единицах Титца.4. 0.05 n. a carbonate-free sodium hydroxide solution is titrated until a blue color appears. The difference in volume is 0.05 n. sodium hydroxide, spent on experience and control, is the activity of lipase in units of Titz.

Таблица 1Table 1 ход исследованияstudy progress опытexperience контрольthe control буферный растворbuffer solution 1,01,0 1,01,0 эмульсия оливкового маслаolive oil emulsion 0,50.5 0,50.5 дистиллированная водаdistilled water 2,52,5 2,52,5 сыворотка кровиblood serum 1,01,0 -- смешивать, затем инкубировать в термостате в течение 2 часов при 37°Сmix, then incubate in a thermostat for 2 hours at 37 ° C переносить содержимое всех пробирок в эрленмейеровские колбы 50 млtransfer the contents of all tubes to Erlenmeyer flasks 50 ml этанолethanol 3,03.0 3,03.0 сыворотка кровиblood serum -- 1,01,0 1% раствор тимолфталеина1% thymolphthalein solution 4 капли4 drops 4 капли4 drops титрование 0,05 н. едкого натрияtitration of 0.05 N. sodium hydroxide

II. Определение уровня содержания трипсина фотометрическим способом. В основе метода лежит способность трипсина гидролизировать хромогенный субстрат N-α-тозил-L-аргинин-4-нитроанилид. Образовавшийся 4-нитроанилид определяют фотометрически.II. Determination of trypsin levels by photometric method. The method is based on the ability of trypsin to hydrolyze the chromogenic substrate N-α-tosyl-L-arginine-4-nitroanilide. The resulting 4-nitroanilide is determined photometrically.

Определение активности трипсина по Хэвербеку-Эрлангеру.Determination of trypsin activity according to Haverbeck-Erlanger.

Оборудование:Equipment:

- спектрофотометр, термостат. Базисные реактивы:- spectrophotometer, thermostat. Base reagents:

- трис;- tris;

- хлористый кальций;- calcium chloride;

- диметилформамид;- dimethylformamide;

- 0,001 н. раствор соляной кислоты;- 0.001 n. hydrochloric acid solution;

- нитроанилин 0,1 мкМ: 13,8 г нитроаналина разводят в 1 л дистиллированной воды;- nitroaniline 0.1 μM: 13.8 g of nitroanaline are diluted in 1 l of distilled water;

- хлористый калий 0,14 н.;- potassium chloride 0.14 n .;

- бензоил-аргинин-пара-нитроаналин (БАПНА);- benzoyl-arginine-para-nitroanaline (DAPNA);

- уксусная кислота, 30% раствор.- acetic acid, 30% solution.

Рабочие растворы:Working solutions:

1. Трис-буфер 0,2 М раствор с рН 7,8: 24,23 г триса и 3,67 г хлористого кальция разводят в 800 мл дистиллированной воды, рН устанавливают 7,8 с помощью 2 н. раствора соляной кислоты. Затем объем доводят до 1000 мл дистиллированной водой.1. Tris buffer 0.2 M solution with a pH of 7.8: 24.23 g of Tris and 3.67 g of calcium chloride are diluted in 800 ml of distilled water, the pH is adjusted to 7.8 with 2 N. hydrochloric acid solution. Then the volume was adjusted to 1000 ml with distilled water.

2. Раствор субстрата (20 мг%): 2 мг БАПНА растворяют при легком нагревании в 0,1 мл диметилформамида, затем добавляют трис-буфера до 10 мл.2. Substrate solution (20 mg%): 2 mg of BAPNA are dissolved by gentle heating in 0.1 ml of dimethylformamide, then Tris buffer up to 10 ml is added.

3. 30% раствор уксусной кислоты.3. 30% acetic acid solution.

Сыворотку крови разводят 1:2 0,14 н. раствором хлористого натрия. Оптическую плотность жидкости определяют на спектрофотометре при длине волны 410 нм.Blood serum is diluted 1: 2 0.14 N. sodium chloride solution. The optical density of the liquid is determined on a spectrophotometer at a wavelength of 410 nm.

Для расчета концентрации пара-нитроанилина следует построить калибровочную кривую. За единицу активности трипсина принимают такую активность, при которой расщепляется 1 мкМ субстрата в минуту. Активность трипсина определяется по разнице концентрации паранитроанилина в опытной и контрольной пробирках. С учетом времени инкубации и разведения активность трипсина в сыворотке крови подсчитывается по формуле:To calculate the concentration of para-nitroaniline, a calibration curve should be constructed. For a unit of activity of trypsin, one takes such activity in which 1 μM substrate per minute is cleaved. Trypsin activity is determined by the difference in the concentration of paranitroaniline in the experimental and control tubes. Given the time of incubation and dilution, the activity of trypsin in serum is calculated by the formula:

Figure 00000001
Figure 00000001

Ео - экстинкция опыта;Eo is the extinction of experience;

Ек - экстинкция контроля;Ek - extinction control;

А - оптическая плотность фактора, получаемого от разделения концентрации крови в пробирках калибровочной кривой на их оптическую плотность.And - the optical density of the factor obtained from the separation of the concentration of blood in the tubes of the calibration curve by their optical density.

Таблица 2table 2 ход исследованияstudy progress опытexperience контрольthe control сыворотка крови в разведенииdiluted blood serum 0,50.5 0,50.5 субстратsubstrate 4,04.0 4,04.0 раствор уксусной кислотыacetic acid solution -- 11 термостирование 30 минут при 37°Сthermostating for 30 minutes at 37 ° C раствор уксусной кислотыacetic acid solution 11 -- фотометрияphotometry

У здоровых людей активность трипсина в крови находится в пределах 0-4 мед./мл.In healthy people, the trypsin activity in the blood is in the range of 0-4 honey / ml.

III. Для исследования активности амилазы в качестве прототипа нами использован унифицированный амилокластический способ со стойким крахмальным субстратом (способ Каравея) (Справочник “Медицинские лабораторные технологии”, С.-Петербург, 1999, т.2, с.20-21). Принцип метода заключается в том, что амилаза гидролизует расщепление крахмала с образованием конечных продуктов, не дающих цветной реакции с йодом. Об активности амилазы судят по снижению интенсивности окраски.III. To study the activity of amylase as a prototype, we used a unified amyloclastic method with persistent starch substrate (Karavei method) (Reference Medical Laboratory Technologies, St. Petersburg, 1999, v.2, p.20-21). The principle of the method is that amylase hydrolyzes the degradation of starch with the formation of end products that do not give a color reaction with iodine. Amylase activity is judged by a decrease in color intensity.

Оборудование:Equipment:

- фотоэлектроколоримерт, водяная баня.- photoelectric colorimeter, water bath.

Реактивы:Reagents:

1. 2% раствор крахмала: к 1 мл холодной дистиллированной воды добавляют 200 мг крахмала, размешивают его, затем доливают 6-7 мл горячей дистиллированной воды и ставят на кипящую водяную баню до полного растворения. После этого объем дистиллированной воды доводят до 10 мл. Субстрат должен быть прозрачным.1. 2% starch solution: to 1 ml of cold distilled water add 200 mg of starch, stir it, then add 6-7 ml of hot distilled water and put in a boiling water bath until completely dissolved. After that, the volume of distilled water is adjusted to 10 ml. The substrate must be transparent.

2. Фосфатный буферный раствор с рН 7,1. Для его приготовления смешивают 7,62 г. кислого фосфорнокислого калия (KP2PO4) и 20,45 г двузамещенного фосфорнокислого натрия (Na2HPO4), доводят объем дистиллированной водой до 1000 мл.2. Phosphate buffer solution with a pH of 7.1. To prepare it, 7.62 g of potassium hydrogen phosphate (KP 2 PO 4 ) and 20.45 g of sodium disodium phosphate (Na 2 HPO 4 ) are mixed, the volume is made up to 1000 ml with distilled water.

3. 3% раствор поваренной соли.3. 3% solution of sodium chloride.

4. 0,1 н. раствор йода: 3 г йодистого калия вносят в 2,5 мл дистиллированной воды, добавляют 1,2 г кристаллического йода и доводят объем дистиллированной водой до 10 мл.4. 0.1 n. iodine solution: 3 g of potassium iodide are added to 2.5 ml of distilled water, 1.2 g of crystalline iodine is added and the volume is adjusted with distilled water to 10 ml.

5. 1 н. раствор соляной кислоты.5.1 n. hydrochloric acid solution.

Таблица 3Table 3 ход исследованияstudy progress опытexperience контрольthe control раствор крахмалаstarch solution 55 55 буферный растворbuffer solution 33 33 раствор поваренной солиsalt solution 11 11 смешивать и 10 минут подогревать при 37°Сmix and heat for 10 minutes at 37 ° C сыворотка кровиblood serum 11 11 1 н. раствор соляной кислоты1 n hydrochloric acid solution -- 22 смешивать и термостатировать в течение 30 минут при 37°Сmix and thermostat for 30 minutes at 37 ° C 1 н. раствор соляной кислоты1 n hydrochloric acid solution 22 -- по 0,2 мл из каждого опыта и контроля вносят в колбу с раствором иода, смешивают0.2 ml from each experiment and control are added to the flask with iodine solution, mixed фотометрияphotometry

Для приготовления рабочего раствора йода в колбы 50 мл вносят 40 мл дистиллированной воды, 0,5 мл 1 н. раствора соляной кислоты и 0,1 н. раствора йода. Количество колб должно соответствовать количеству пробирок с опытом и контролем. Фотометрия производится в кювете емкостью 1 мл при красном светофильтре (длина волны 630-69 нмк) против воды.To prepare a working solution of iodine in a flask of 50 ml make 40 ml of distilled water, 0.5 ml of 1 N. hydrochloric acid solution and 0.1 N. iodine solution. The number of flasks should correspond to the number of tubes with experience and control. Photometry is performed in a 1 ml cuvette with a red light filter (wavelength 630-69 nmk) against water.

Figure 00000002
Figure 00000002

Ек - экстинкция контроля;Ek - extinction control;

Ео - экстинкция опыта;Eo is the extinction of experience;

А - оптическая плотность фактора, получаемого от разделения концентрации крови в пробирках калибровочной кривой на их оптическую плотность. Этот фактор отражает концентрацию пара-нитроанилина, соответствующую единице оптической плотности.And - the optical density of the factor obtained from the separation of the concentration of blood in the tubes of the calibration curve by their optical density. This factor reflects the concentration of para-nitroaniline corresponding to the unit of optical density.

Единица активности амилазы соответствует 10 мг расщепленного крахмала при условии инкубации в течение 30 минут при 37°С. В норме активность амилазы в сыворотке крови составляет 80-120 ед.A unit of amylase activity corresponds to 10 mg of split starch, subject to incubation for 30 minutes at 37 ° C. Normally, serum amylase activity is 80-120 units.

Основной недостаток используемых способов исследования ферментемии заключен в малой их информативности у пациентов с ЯБ ДПК, осложненной ХП, когда уровень содержания ферментов соответствует нормальным показателям.The main disadvantage of the methods used to study fermentemia lies in their low information content in patients with ulcerative duodenal ulcer complicated by CP, when the level of enzyme content corresponds to normal values.

Задача изобретения состоит в повышении точности и своевременности диагностики ХП, развившегося на фоне ЯБ ДПК.The objective of the invention is to improve the accuracy and timeliness of the diagnosis of CP, which developed against the background of YAB duodenum.

Сущность изобретения состоит в том, что при нормальном содержании панкреатических ферментов в периферической крови ХП диагностируют путем дополнительного определения отклонения их уровня от физиологических значений и по характерным изменениям показателей иммунограммы больного после пятикратного внутримышечного введения пациенту иммунотропного препарата имунофана 0,005% по 1 мл через день.The essence of the invention lies in the fact that with a normal content of pancreatic enzymes in the peripheral blood, CP is diagnosed by further determining the deviation of their level from physiological values and by the characteristic changes in the patient’s immunogram after five times intramuscular injection of 0.005% immunotropic drug 1 ml every other day into the patient.

Способ осуществляют следующим образом. У больного, страдающего ЯБ ДПК, выявляют характерные жалобы на боли в левом подреберье, эпигастрии, иррадиирующие в спину, снижение массы тела, неустойчивый стул, тошноту. Объективным исследованием обнаруживают болезненность при пальпации в панкреатодуоденальной зоне, положительные симптомы Мейо-Робсона и Кача. Производят инструментальное исследование, подтверждающее наличие ЯБ ДПК и признаков ХП: эзофагогастродуоденоскопия, ультразвуковое исследование. Из вены больного осуществляют забор крови и определяют уровень содержания амилазы, липазы и трипсина, выполняют комплексное исследование иммунного статуса. При исследовании периферической крови данных за гиперферментемию не получено, показатели иммунного статуса соответствуют физиологическим значениям, то есть диагностических признаков обострения ХП не выявлено. Пациенту вводят имунофан 0,005% по 1 мл внутримышечно через день № 5. Препарат обладает иммуностимулирующим эффектом, способен в первые 2-3 дня после введения увеличивать продукцию антител и за счет повышенной опсонизирующей способности сыворотки крови стимулировать фагоцитарную функцию нейтрофилов. У пациентов с аутоиммунными заболеваниями независимо от активности процесса введение препарата вызывает кратковременное обострение иммунного воспаления. Через 3-4 дня у больного повторно берут кровь из периферической вены для исследования уровня содержания ферментов и комплексной оценки иммунного статуса в динамике. При выявлении гиперферментемии относительно нормы и гипосупрессорного типа работы иммунной системы (дисбаланс субпопуляций Т-лимфоцитов с превалированием содержания клеток-хелперов, дефицитом СД3 и СД8-лимфоцитов и повышением иммунорегуляторного индекса; гипериммуноглобулинемия всех основных или отдельных классов иммуноглобулинов и повышение уровня циркуляции иммунных комплексов; истощение функциональной активности фагоцитов и незавершенность фагоцитоза) диагностируют ХП, развившийся на фоне ЯБ ДПК.The method is as follows. In a patient suffering from ulcerous duodenal ulcer, characteristic complaints of pain in the left hypochondrium, epigastrium, radiating to the back, weight loss, unstable stool, and nausea are revealed. An objective study reveals pain on palpation in the pancreatoduodenal zone, positive symptoms of Mayo-Robson and Kach. An instrumental study is performed, confirming the presence of ulcerative duodenum and signs of CP: esophagogastroduodenoscopy, ultrasound. Blood is taken from the patient's vein and the level of amylase, lipase and trypsin is determined, a comprehensive study of the immune status is performed. In the study of peripheral blood, data for hyperfermentemia were not obtained, indicators of the immune status correspond to physiological values, that is, there were no diagnostic signs of exacerbation of CP. Immunofan of 0.005% 1 ml intramuscularly is administered to the patient every other day No. 5. The drug has an immunostimulating effect, is able to increase antibody production in the first 2-3 days after administration and, due to the increased opsonizing ability of blood serum, stimulate the phagocytic function of neutrophils. In patients with autoimmune diseases, regardless of the activity of the process, the administration of the drug causes a short-term aggravation of immune inflammation. After 3-4 days, the patient is repeatedly taken blood from a peripheral vein to study the level of enzyme content and a comprehensive assessment of the immune status in dynamics. When hyperfermentemia is detected with respect to the normal and hyposuppressive type of the immune system (imbalance of T-lymphocyte subpopulations with prevailing helper cell content, deficiency of CD3 and CD8-lymphocytes and an increase in the immunoregulatory index; hyperimmunoglobulinemia of all major or individual classes of immunoglobulins and an increase in the level of circulation of immune systems functional activity of phagocytes and incomplete phagocytosis) are diagnosed with CP, which developed against the background of ulcerative duodenum.

Пример 1.Example 1

Больная Ш., история болезни № 4731.Patient S., medical history No. 4731.

Поступила в гастроэнтерологическое терапевтическое отделение Краснодарской краевой клинической больницы с жалобами на боли в эпигастрии, тошноту после приема пищи, слабость.She was admitted to the gastroenterological therapeutic department of the Krasnodar Regional Clinical Hospital with complaints of epigastric pain, nausea after eating, weakness.

Из анамнеза: больна ЯБ ДПК около 20 лет.From the anamnesis: I have ulcerative duodenal ulcer for about 20 years.

Объективно при поступлении: живот болезненный при пальпации в области эпигастрия, обоих подреберьях, по ходу проекции поджелудочной железы, положительные симптомы Мейо-Робсона и Кача.Objective upon admission: the abdomen is painful on palpation in the epigastrium, both hypochondria, along the projection of the pancreas, positive symptoms of Mayo-Robson and Kacha.

При инструментальном и лабораторном исследованиях было выявлено: на эзофагогастродуоденоскопии рубцово-язвенная деформация луковицы ДПК, катаральный гастрит, бульбит; косвенные признаки патологии панктреато-билиарной зоны (слизистая постбульбарных отделов с телелимфоангиоэктазиями).During instrumental and laboratory studies, it was revealed: on esophagogastroduodenoscopy, scar-ulcerative deformity of the duodenal bulb, catarrhal gastritis, bulbitis; indirect signs of the pathology of the pancreatic-biliary zone (the mucosa of the post-bulbar sections with teleimphoangioectasias).

Ультразвуковое исследование: размеры поджелудочной железы в пределах нормы, контуры ее неровные, ЭХО-генность повышена, структура диффузно неоднородная. Заключение: ультразвуковые признаки ХП.Ultrasound examination: the size of the pancreas is within normal limits, its contours are uneven, ECHO genesis is increased, the structure is diffusely heterogeneous. Conclusion: ultrasound signs of CP.

При исследовании ферментативной активности поджелудочной железы показатели не выходили за пределы верхней границы нормы.In the study of the enzymatic activity of the pancreas, the indicators did not go beyond the upper limit of the norm.

В иммунограмме умеренный Т-клеточный дефицит за счет СД4-лимфоцитов, депрессия поглотительной активности нейтрофилов. Содержание иммуноглобулинов и ЦИК - в пределах нормы.In the immunogram, moderate T-cell deficiency due to CD4 lymphocytes, depression of the absorption activity of neutrophils. The content of immunoglobulins and CEC is within normal limits.

Пятикратно больной производилось внутримышечное введение 1 мл 0,005% раствора имунофана через день. Через 3 дня после последнего введения уровень амилазы, липазы, трипсина и иммунограмма были исследованы вновь. Показатели выразились в следующих цифрах по сравнению с исходными данными.Five times the patient was administered intramuscularly 1 ml of a 0.005% solution of immunofan every other day. 3 days after the last injection, the levels of amylase, lipase, trypsin and the immunogram were examined again. The indicators are expressed in the following figures compared to the source data.

Таблица 4Table 4 исследуемая величинаtest value исходный уровеньbaseline уровень после введения имунофанаlevel after administration of immunofan АмилазаAmylase 25,0 г-л/ч25.0 g / l 35,9 г-л/ч35.9 g l / h ТрипсинTrypsin 175,4 ммоль/л175.4 mmol / l 290 ммоль/л290 mmol / l ЛипазаLipase 1,2 ед.1.2 units 1,8 ед.1.8 units СД3-лимфоцитыCD3 lymphocytes 52%52% 49%49% СД4-лимфоцитыCD4 lymphocytes 28%28% 35%35% СД8-лимфоцитыSD8 lymphocytes 20%20% 14%14% иммуноглобулин Аimmunoglobulin A 0,6 мг/мл0.6 mg / ml 0,9 мг/мл0.9 mg / ml иммуноглобулин Мimmunoglobulin M 1,2 мг/мл1.2 mg / ml 2,8 мг/мл2.8 mg / ml иммуноглобулин Gimmunoglobulin G 9,3 мг/мл9.3 mg / ml 20 мг/мл20 mg / ml ЦИКCEC 0,06 ед.опт.пл.0.06 units 0,201 ед.опт.пл.0.201 units % фагоцитоза% phagocytosis 43%43% 54%54% % переваривания% digestion 69%69% 51%51%

Полученные данные позволили поставить клинический диагноз: ХП, болевая форма, рецидивирующее течение в стадии обострения.The data obtained made it possible to make a clinical diagnosis: CP, pain, recurrent course in the acute stage.

Рубцово-язвенная деформация луковицы ДПК, гастрит, бульбит.Cicatricial-ulcerative deformity of the duodenal bulb, gastritis, bulbitis.

Проведенное исследование подтвердило факт присоединения ХП к ЯБ ДПК и дало возможность своевременно провести адекватную патогенетическую терапию.The study confirmed the fact of the attachment of CP to ulcer of duodenum and made it possible to conduct adequate pathogenetic therapy in a timely manner.

Пример 2.Example 2

Больная М., история болезни № 1625.Patient M., medical history No. 1625.

Поступила в гастроэнтерологическое терапевтическое отделение Краснодарской краевой клинической больницы с жалобами на боли в эпигастрии, левом подреберье, иррадиирующие в спину, носящие приступообразный характер, изжогу, снижение массы тела на 6 кг в течение 2-х месяцев.I entered the gastroenterological therapeutic department of the Krasnodar Regional Clinical Hospital with complaints of pain in the epigastrium, left hypochondrium, radiating to the back, having a paroxysmal nature, heartburn, weight loss of 6 kg for 2 months.

Из анамнеза: страдает ЯБ ДПК в течение 10 лет. Неоднократно лечилась в стационаре. Госпитализирована в клинику с диагнозом: ЯБ ДПК в стадии затухающего обострения.From the anamnesis: YP duodenal ulcer suffers for 10 years. Repeatedly treated in a hospital. She was hospitalized in the clinic with a diagnosis of YAB duodenal ulcer in the stage of decaying exacerbation.

Объективные данные при поступлении: живот болезненный в эпигастрии, панкреато-дуоденальной зоне при пальпации, положительные симптомы Мейо-Робсона и Кача.Objective data on admission: the abdomen is painful in the epigastrium, pancreatic-duodenal zone during palpation, positive symptoms of Mayo-Robson and Kacha.

При обследовании выявлены следующие патологические изменения: на эзофагогастродуоденоскопии рубцово-язвенная деформация луковицы ДПК, хронический папиллит.The examination revealed the following pathological changes: on esophagogastroduodenoscopy, scar-ulcerative deformity of the duodenal bulb, chronic papillitis.

По данным ультразвукового исследования неоднородная, гиперэхогенная структура поджелудочной железы. Заключение: ультразвуковые признаки ХП.According to ultrasound, the heterogeneous, hyperechoic structure of the pancreas. Conclusion: ultrasound signs of CP.

Уровень содержания панкреатических ферментов - в пределах нормы.The content of pancreatic enzymes is within normal limits.

В иммунограмме дисбаланс субпопуляций Т-лимфоцитов с преобладанием супрессоров, снижение индекса супрессоры, гипериммуноглобулинемия А, умеренное повышение поглотительной активности нейтрофилов и содержания ЦИК.In the immunogram, an imbalance of subpopulations of T-lymphocytes with a predominance of suppressors, a decrease in the suppressor index, hyperimmunoglobulinemia A, a moderate increase in the absorption activity of neutrophils and the content of the CEC.

Больной пятикратно вводился внутримышечно 0,005% раствор имунофана по 1 мл через день. Через 4 дня произведено повторное исследование периферической крови.The patient was injected intramuscularly five times with a 0.005% immunofan solution of 1 ml every other day. After 4 days, a repeated study of peripheral blood was performed.

Полученные данные отражены в таблице 5.The data obtained are shown in table 5.

Таблица 5Table 5 исследуемая величинаtest value исходный уровеньbaseline уровень после введения имунофанаlevel after administration of immunofan амилазаamylase 18,0 г-л/ч18.0 g / l / h 33 г-л/ч33 g l / h трипсинtrypsin 205 ммоль/л205 mmol / l 245 ммоль/л245 mmol / l липазаlipase 1,3 ед.1.3 units 1,7 ед.1.7 units СД3-лимфоцитыCD3 lymphocytes 55%55% 52%52% СД4-лимфоцитыCD4 lymphocytes 32%32% 33%33% СД8-лимфоцитыSD8 lymphocytes 29%29% 18%18% иммуноглобулин Аimmunoglobulin A 2,1 мг/мл2.1 mg / ml 1,1 мг/мл1.1 mg / ml иммуноглобулин Мimmunoglobulin M 2,0 мг/мл2.0 mg / ml 3,2 мг/мл3.2 mg / ml иммуноглобулин Gimmunoglobulin G 10,4 мг/мл10.4 mg / ml 18 мг/мл18 mg / ml ЦИКCEC 0,160 ед.опт.пл.0.160 units 0,290 ед.опт.пл.0.290 units % фагоцитоза% phagocytosis 65%65% 60%60% % переваривания% digestion 74%74% 53%53%

Поставлен диагноз: ХП, болевая форма, рецидивирующее течение в стадии обострения. ЯБ ДПК, рубцово-язвенная деформация луковицы ДПК.Diagnosed with CP, pain, recurrent course in the acute stage. YAB duodenum, cicatricial-ulcerative deformity of the duodenal bulb.

Таким образом, предполагаемый способ упрощает, облегчает и делает своевременной диагностику ХП, развившегося на фоне ЯБ ДПК, что позволит вовремя провести адекватное патогенетическое лечение, снизить частоту осложнений и обострении как ЯБ ДПК, так и ХП, уменьшить частоту повторных госпитализаций и сроки пребывания больных в стационаре.Thus, the proposed method simplifies, facilitates, and makes timely the diagnosis of CP that has developed against the background of ulcerous duodenal ulcer, which will allow timely adequate pathogenetic treatment, reduce the frequency of complications and exacerbation of both ulcerous duodenal ulcer and chronic kidney disease, reduce the frequency of repeated hospitalizations and the length of stay of patients in in a hospital.

Claims (1)

Способ диагностики хронического панкреатита, развившегося на фоне язвенной болезни двенадцатиперстной кишки, включающий определение клинических признаков и уровня содержания панкреатических ферментов в крови, отличающийся тем, что при нормальном содержании ферментов в сыворотке крови хронический панкреатит диагностируют путем дополнительного определения отклонения от нормального содержания их уровня после 5-кратного внутримышечного введения больному имунофана и по характерным изменениям показателей иммунного статуса больного.A method for the diagnosis of chronic pancreatitis that developed against the background of duodenal ulcer, including the determination of clinical signs and the level of pancreatic enzymes in the blood, characterized in that with normal serum enzymes, chronic pancreatitis is diagnosed by additionally determining deviations from the normal content of their level after 5 -fold intramuscular injection of immunofan to the patient and according to characteristic changes in the indicators of the patient's immune status.
RU2002109858/14A 2002-04-15 2002-04-15 Method for diagnosing chronic pancreatitis cases developed on the background of duodenal peptic ulcer disease RU2249433C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002109858/14A RU2249433C2 (en) 2002-04-15 2002-04-15 Method for diagnosing chronic pancreatitis cases developed on the background of duodenal peptic ulcer disease

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002109858/14A RU2249433C2 (en) 2002-04-15 2002-04-15 Method for diagnosing chronic pancreatitis cases developed on the background of duodenal peptic ulcer disease

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2249433C2 true RU2249433C2 (en) 2005-04-10

Family

ID=35611891

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2002109858/14A RU2249433C2 (en) 2002-04-15 2002-04-15 Method for diagnosing chronic pancreatitis cases developed on the background of duodenal peptic ulcer disease

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2249433C2 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2455649C1 (en) * 2011-05-18 2012-07-10 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Смоленская государственная медицинская академия федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию Diagnostic technique for severe clinical course in gastric ulcer
RU2801613C1 (en) * 2022-10-28 2023-08-11 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Московской области "Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского" (ГБУЗ МО МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского) Method of diagnostics of chronic pancreatitis in inflammatory bowel diseases

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
БОГЕР М.М. Методы исследования поджелудочной железы. - Новосибирск: Наука, 1982, с.80-94. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2455649C1 (en) * 2011-05-18 2012-07-10 Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Смоленская государственная медицинская академия федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию Diagnostic technique for severe clinical course in gastric ulcer
RU2801613C1 (en) * 2022-10-28 2023-08-11 Государственное бюджетное учреждение здравоохранения Московской области "Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского" (ГБУЗ МО МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского) Method of diagnostics of chronic pancreatitis in inflammatory bowel diseases

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Kasırga The importance of stool tests in diagnosis and follow-up of gastrointestinal disorders in children
US7195881B2 (en) Method and kit for following neurodegenerative diseases
JP2002510045A (en) Flow-based cell count calculator for analyzing common diagnostic factors in cells and body fluids
AU621310B2 (en) Immunometric assay kit and method applicable to whole cells
US6461825B1 (en) Immunometric assay kit and method applicable to whole cells
RU2249433C2 (en) Method for diagnosing chronic pancreatitis cases developed on the background of duodenal peptic ulcer disease
JPH04501003A (en) Improved method for measuring sialic acid in plasma
JPH0566548B2 (en)
US6815173B1 (en) Method for detecting syphilis using synthetic antigents
RU2018844C1 (en) Method for diagnostics anemia at children
Saifer et al. Rapid system of microchemical analysis for the clinical laboratory
US4604350A (en) Screening test for beta-thalassemia trait and a diagnostic kit for its individualization
RU2480526C2 (en) Method for early prediction of clinical outcome of antiviral therapy for chronic viral hepatitis c
US3476514A (en) Cancer cytoscreening
EP0544578B1 (en) Kit for the rapid enumeration of granulocytes and method using said kit
RU2329507C1 (en) Method of acute bacterial enteric infections express-diagnostics
RU2203491C2 (en) Method for evaluating degree of atopic dermatitis in small children
Al-Omary et al. Lymphocyte Apoptosis in Third Trimester of Pregnancy.
RU2107913C1 (en) Method for performing screening examination of women of productive age by means of eli-p test system to predict embryo/fetus development and birth of healthy or anomalous baby
RU2786802C1 (en) Method for determining the activity of lysozyme in the oral fluid
RU2736806C2 (en) Diagnostic technique for cruciferous vascular bacteriosis by dot-immunoassay
CN107345235A (en) The application of Th2 cells and cell factor IL 4 as cerebral apoplexy mark
Sato et al. Treponema pallidum specific IgM haemagglutination test for serodiagnosis of syphilis.
SU1348732A1 (en) Method of determining short-term pregnancy
RU2296335C2 (en) Set of reagents for quantitative assay of secretory immunoglobulin a in serum and human body secrets by single-step solid-phase immune enzyme analysis

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees