RU2237712C2 - Среда для криоконсервации клеток человека и животных - Google Patents
Среда для криоконсервации клеток человека и животных Download PDFInfo
- Publication number
- RU2237712C2 RU2237712C2 RU2002112214/13A RU2002112214A RU2237712C2 RU 2237712 C2 RU2237712 C2 RU 2237712C2 RU 2002112214/13 A RU2002112214/13 A RU 2002112214/13A RU 2002112214 A RU2002112214 A RU 2002112214A RU 2237712 C2 RU2237712 C2 RU 2237712C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- medium
- rpmi
- fetal calf
- calf serum
- dimethyl sulfoxide
- Prior art date
Links
Landscapes
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Изобретение относится к биотехнологии и медицине, конкретно к средам для криоконсервации клеток человека и животных. Среда содержит эмбриональную телячью сыворотку, диметилсульфоксид, среду RPMI-1640, антибиотики, ацетоамид, D-глюкуроновую кислоту, лецитин, холестерин, линолевую кислоту в заданном соотношении компонентов. Изобретение обеспечивает повышение выживаемости клеток за счет усиления их устойчивости к криоконсервации и снижение токсического действия криопротектора. 2 табл.
Description
Изобретение относится к биологии и медицине, конкретно к средам для криконсервации клеток человека и животных.
Известны среды для криоконсервации клеток человека и животных, содержащие солевую основу, криопротектор, пируват, лактат, глюкозу, антибиотики, сульфаниламиды, бычий сывороточный альбумин, феноловый красный, хепес-буфер, например модифицированные среды М 1 и М 2 [1]. Однако данные среды не содержат аминокислоты, витамины, сыворотку, которые необходимы для адаптации и защиты клеток при проведении процедуры криоконсервации. Это приводит к нежелательному повреждению и гибели клеток в процессе криоконсервации при замораживании и оттаивании.
Наиболее близкой по составу к предлагаемой среде является среда, которая наряду с солевой основой, криопротектором, пируватом, лактатом, глюкозой, антибиотиками и сульфаниламидами, дополнительно содержит аминокислоты, витамины и сыворотку, например среда RPMI-1640 с добавлением 10-20% эмбриональной телячьей сыворотки, 5-10% диметилсульфоксида, 100 МЕ/мл пенициллина натриевой соли и 100 мкг/мд стрептомицина сульфата [6]. Данная среда благодаря наличию аминокислот, витаминов и сыворотки способствует защите и адаптации клеток к условиям криоконсервации. Однако она не содержит стабилизаторы клеточных мембран и коллоидных структур, которые повышают устойчивость клетки к замораживанию. В ней отсутствуют вещества, снижающие токсическое действие криопротектора (диметилсульфоксида) на клетки.
Новая техническая задача - повышение выживаемости клеток за счет усиления устойчивости клеток к криоконсервации и снижение токсического действия криопротектора.
Поставленную задачу решают применением новой среды, содержащей среду RPMI-1640, эмбриональную телячью сыворотку, диметилсульфоксид, антибиотики и сульфаниламиды, причем она дополнительно содержит ацетамид, D-глюкуроновую кислоту, лецитин, холестерин и линолевую кислоту при следующем соотношении компонентов, об.%:
Эмбриональная телячья сыворотка 10-20
Диметилсульфоксид 5-15
Ацетоамид 10-30
D-глюкуроновая кислота 0,01-0,03
Лецитин 0,05-0,15
Холестерин 0,05-0,15
Линолевая кислота 0,025-0,075
Сульфаниламиды и антибиотики 0,1-1,5
Среда RPMI-1640 До 100
Отличие прилагаемого изобретения от известных аналогов заключается в том, что среда дополнительно содержит ацетоамид, D-глюкуроновую кислоту, лецитин, холестерин, линолевую кислоту при следующем соотношении компонентов, об.%:
Эмбриональная телячья сыворотка 10-20
Диметилсульфоксид 5-15
Ацетоамид 10-30
D-глюкуроновая кислота 0,01-0,03
Лецитин 0,05-0,15
Холестерин 0,05-0,15
Линолевая кислота 0,025-0,075
Сульфаниламиды и антибиотики 0,1-1,5
Среда RPMI-1640 До 100
Сравнение заявляемого технического решения с другими показывает, что предлагается композиция ингредиентов среды для криоконсервации клеток человека и животных, позволяющая повысить выживаемость клеток при криоконсервации, описание состава которой не обнаружено в литературных источниках.
С учетом изложенного, следует считать заявляемое решение соответствующее критерию “существенные отличия”. Применение данной среды в эксперименте на клетках животных и человека показало, что она “промышленно применима” при проведении процедуры криоконсервации.
Технология приготовления среды включает следующие операции:
- приготовление липосом с помощью ультразвука по стандартной методике из 1 части (по весу) холестерина, 5 частей линолевой кислоты, 10 частей лецитина [4];
- смешивание липосом со средой RPMI-1640, эмбриональной телячьей сывороткой, D-глюкуроновой кислотой, пенициллином и стрептомицином до полного растворения веществ;
- добавление (непосредственно перед употреблением) в среду диметилсульфоксида и охлаждение ее до комнатной температуры.
Полученная среда содержит, об.%:
Эмбриональная телячья сыворотка 10-20
Диметилсульфоксид 5-15
Ацетоамид 10-30
D-глюкуро новая кислота 0,01-0,03
Лецитин 0,05-0,15
Холестерин 0,05-0,15
Линолевая кислота 0,025-0,075
Сульфаниламиды и антибиотики 0,1-1,5
Среда RPMI-1640 До 100
Концентрации компонентов в предлагаемой среде для криоконсервации клеток человека и животных подобраны на основании интерпретации данных экспериментальных исследований.
В связи с тем, что основное повреждающее действие на клетки при криоконсервации оказывает криопротектор диметилсульфоксид было решено, чтобы в среде для сравнения (прототип) концентрация криопротектора и эмбриональной телячьей сыворотки (стабилизатора клеточных мембран) в каждом из экспериментов соответствовала их содержанию в предлагаемой среде. Поэтому концентрации указанных компонентов в среде-прототипе соответственно находились в пределах, об.%: диметисульфоксид 5-15, эмбриональная телячья сыворотка 10-20.
Антибиотики и сульфаниламиды применяли в общепринятых дозировках (пенициллин натриевая соль 100 МЕ/мл, стрептомицина сульфат 100 мкг/мл), составляло 0,1-1,5 об.%.
Пример 1
Кардиомиоциты выделяли из сердца новорожденных крысят породы “Вистар” с помощью ферментов [8]. Жизнеспособность (выживаемость), клеточность и морфологию клеток определяли по общепринятьм методам с использованием трипанового синего, гемоцитометра и окраски азур-II эозином соответственно [3, 5]. Доводили концентрацию клеток до 1×107/мл средой следующего состава: среда RPMI-1640 - 80%, эмбриональная телячья сыворотка - 20%). К 1 мл клеточной суспензии по каплям добавляли среду для криоконсервации содержащую, об.%:
Эмбриональная телячья сыворотка - 10
Диметилсульфоксид 5
Ацетоамид 10
D-глюкуроповая кислота 0,01
Лецитин 0,05
Холестерин 0,05
Линолевая кислота 0,025
Пенициллин натриевая соль 100 МЕ/мл
Стрептомицина сульфат 100 мкг/мл
Среда RPMI-1640 До 100
Материал перемешивали и помещали в контейнеры для криоконсервации по 1,5 мл и замораживали по двухступенчатой схеме. Первоначально охлаждали до -40°С со скоростью 1-2°С/мин. А затем переносили в жидкий азот (-196°С) и хранили в течение 1 и 5 лет [1]. После размораживания оценивали количество выживших клеток, клеточность и морфологию кариоцитов, как было описано выше.
В контроле использовали среду-прототип, содержащую, об.%:
Среда RPMI-1640 85
Эмбриональная телячья сыворотка 10
Диметилсульфоксид 5
Результаты представлены в таблице 1. Анализ показал, что количество жизнеспособных клеток (выживаемость) после размораживания в представленной среде через 1 год (опыт 54,7±2,2, прототип 42,5±0,9, Рu<0,05) и 5 лет (опыт 53,1±1,3, прототип 40,3±1,2, Pu<0,05) достоверно выше, чем у прототипа.
Пример 2
Кардиомиоциты выделяли из сердца новорожденных крысят породы “Вистар” с помощью ферментов [8]. Жизнеспособность (выживаемость), клеточность и морфологию клеток определяли по общепринятым методам с использованием трипанового синего, гемоцитометра и окраски азур-II эозином соответственно [3, 5]. Доводили концентрацию клеток до 1×107/мл средой следующего состава: среда RPMI-1640 - 80%, эмбриональная телячья сыворотка - 20%). К 1 мл клеточной суспензии по каплям добавляли среду для криоконсервации, содержащую, об.%:
Эмбриональная телячья сыворотка 15
Диметилсульфоксид 10
Ацетоамид 20
D-глюкуроновая кислота 0,02
Лецитин 0,1
Холестерин 0,01
Линолевая кислота 0,05
Пенициллин натриевая соль 100 МЕ/мл
Стрептомицина сульфат 100 мкг/мл
Среда RPMI-1640 До 100
Материал перемешивали и помещали в контейнеры для криоконсервации по 1,5 мл и замораживали по двухступенчатой схеме. Первоначально охлаждали до -40°С со скоростью 1-2°С/мин. А затем переносили в жидкий азот (-196°С) и хранили в течение 1 и 5 лет [1]. После размораживания оценивали количество выживших клеток, клеточность и морфологию кариоцитов, как было описано выше. В контроле использовали среду-прототип, содержащую, об.%:
Среда RPMI-1640 75
Эмбриональная телячья сыворотка 15
Диметилсульфоксид 10
Пенициллин натриевая соль 100 МЕ/мл
Стрептомицина сульфат 100 мкг/мл
Результаты представлены в таблице 1. Анализ показал, что количество жизнеспособных клеток (выживаемость) после размораживания в представленной среде через 1 год (опыт 67,1±3,3, прототип 48,1±1,7, Рu<0,05) и 5 лет (опыт 60,2±1,9, прототип 45,5±2,2, Pu<0,05) достоверно выше, чем у прототипа.
Пример 3
Кардиомиоциты выделяли из сердца новорожденных крысят породы “Вистар” с помощью ферментов [8]. Жизнеспособность (выживаемость), клеточность и морфологию клеток определяли по общепринятым методам с использованием трипанового синего, гемоцитометра и окраски азур-II эозином соответственно [3, 5]. Доводили концентрацию клеток до 1×107мл средой следующего состава: среда RPMI-1640 - 80%, эмбриональная телячья сыворотка - 20%). К 1 мл клеточной суспензии по каплям добавляли среду для криоконсервации, содержащую, об.%:
Эмбриональная телячья сыворотка 20
Диметилсульфоксид 15
Ацетоамид 30
D-глюкуроновая кислота 0,03
Лецитин 0,15
Холестерин 0,015
Линолевая кислота 0,075
Пенициллин натриевая соль 100 МЕ/мл
Стрептомицина сульфат 100 мкг/мл
Среда RPMI-1640 До 100
Материал перемешивали и помещали в контейнеры для криоконсервации по 1,5 мл и замораживали по двухступенчатой схеме. Первоначально охлаждали до -40°С со скоростью 1-2°С/мин. А затем переносили в жидкий азот (-196°С) и хранили в течение 1 и 5 лет [1]. После размораживания оценивали количество выживших клеток, клеточность и морфологию кариоцитов как было описано выше. В контроле используют среду-прототип, содержащую, об.%:
Среда RPMI-1640 75
Эмбриональная телячья сыворотка 20
Диметилсульфоксид 15
Пенициллин натриевая соль 100 МЕ/мл
Стрептомицина сульфат 100 мкг/мл
Результаты представлены в таблице 1. Анализ показал, что количество жизнеспособных клеток (выживаемость) после размораживания в представленной среде через 1 год (опыт 56,1±1,3, прототип 49,9±2,4, Pu<0,05) и 5 лет (опыт 53,7±2,4, прототип 42,1±4,4, Pu<0,05) достоверно выше, чем у прототипа.
Пример 4
10 мл Периферической крови человека, стабилизированной гепарином (100 ЕД/мл), осторожно наслаивали на 5 мл раствора фиколлгипака с плотностью 1,077 г/см3. Центрифугировали при 3000 об/мин в течение 15-20 мин. Интерфазный слой содержащий моноциты и лимфоциты собирали и отмывали от фиколлгипака свежей порцией среды RPMI-1640 с 10% эмбриональной телячьей сывороткой. Клеточность жизнеспособных мононуклеаров доводили до 1×107/ мл и [2]. 1 Часть суспензии кариоцитов смешивали со средой для криоконсервации следующего состава, об.%:
Эмбриональная телячья сыворотка 15
Диметилсульфоксид 10
Ацетоамид 20
D-глюкуроновая кислота 0,02
Лецитин 0,1
Холестерин 0,01
Линолевая кислота 0,05
Пенициллин натриевая соль 100 МЕ/мл
Стрептомицина сульфат 100 мкг/мл
Среда RPMI-1640 До 100
И замораживали в жидком азоте, как было описано выше. В контроле использовали среду прототипа, состоящую, об.%:
Среда RPMI-1640 75
Эмбриональная телячья сыворотка 15
Диметилсульфоксид 10
Пенициллин натриевая соль 100 МЕ/мл
Стрептомицина сульфат 100 мкг/мл
Через год клетки размораживали и оценивали их выживаемость (жизнеспособность) с помощью трипанового синего, с последующим морфологическим анализом. Результаты представлены и таблице 1. Анализ показал, что количество жизнеспособных клеток (выживаемость) после размораживания в представленной среде через 1 год (опыт 85,7±2,28, прототип 76±1,3, Рu<0,05) достоверно выше, чем у прототипа.
Обоснование выбора ингредиентов
Повреждение и гибель клеток при консервации происходит главным образом за счет интрацеллюлярного образования кристаллов льда, которые разрывают мембраны клеток, а также токсического действия криопротектора (диметилсульфоксида) [5].
Диетилсульфоксид по своей эффективности в настоящее время считается одним из лучших крипротекторов среди известных аналогов (глицерин, метанол, сахароза, пропиленгликоль, полиэтиленгликоль и др.). Для снижения его токсического действия в среду вводят ацетоамид, применение которого основано на способности некоторых амидов снижать химическую активность растворов диметилсульфоксида [5].
С целью повышения устойчивости клеточных мембран к криоконсервации в нее добавляют: d-глукуроновую кислоту, лецитин, холестерин и линолевую кислоту.
D-глукуроновая кислота входит в состав гликозаминогликанов, образующих внутриклеточные коллоиды, связывающих воду, а также трансмембранные белки. Линолевая кислота и холестерин являются частью липидного, а лецитин - белкового слоев клеточных мембран. Эти вещества выполняют защитную, пластическую и антиоксидантную функции, которые страдают в процессе проведения криоконсервации [5, 7, 9].
Таким образом, применение предлагаемой среды для криоконсервации клеток человека и животных позволяет увеличить выживаемость клеток за счет усиления их устойчивости к криоконсервации и снижения токсического действия криопротектора (диметилсульфоксида).
Список используемой литературы
1. Биология развития млекопитающих. Методы/ М.Манк. - М.: Мир, 1990.
2. Гольдберг Е.Д., Дыгай А.М., Шахов В.П. Методы культуры ткани в гематологии, Томск, ТГУ, 1992.
3. Иммунологические методы/ Г.Фримель. - М.: Медицина, 1987.
4. Иммунологические методы исследований/ И.Мерковится, Б.Перниса. - М.: Мир, 1988.
5. Культура животных клеток. Методы/ Р.Фрешни. - М.: Мир. - 1989.
6. Лимфоциты: Методы/Дж.Клаус. - М.: Мир. - 1990, с.239-242.
7. Серов В.В., Шехтер А.Б. Соединительная ткань. - М.: Медицина. - 1981.
8. Физиология и патология сердца/ Н.Сперелаксис. - М.: Медицина. - В2, т.2. - 1990.
9. Юшков Б.Г., Попов Г.К., Северин М.В., Ястребов А.П. Гликопротеины и гемопоэз. - Екатеринбург. - 1994.
Claims (1)
- Среда для криоконсервации клеток человека и животных, содержащая среду RPMI-1640, эмбриональную телячью сыворотку, диметилсульфоксид, пенициллин и стрептомицин, отличающаяся тем, что дополнительно содержит ацетоамид, D-глюкуроновую кислоту, лецитин, холестерин, линолевую кислоту при следующем соотношении компонентов об.%:Эмбриональная телячья сыворотка 10-20Диметилсульфоксид 5-15Ацетоамид 10-30D-глюкуроновая кислота 0,01-0,03Лецитин 0,05-0,15Холестерин 0,05-0,15Линолевая кислота 0,025-0,075Стрептомицин 100 мкг/млПенициллин 100 МЕ/млСреда RPMI-1640 До 100
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2002112214/13A RU2237712C2 (ru) | 2002-05-06 | 2002-05-06 | Среда для криоконсервации клеток человека и животных |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2002112214/13A RU2237712C2 (ru) | 2002-05-06 | 2002-05-06 | Среда для криоконсервации клеток человека и животных |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2002112214A RU2002112214A (ru) | 2004-04-20 |
| RU2237712C2 true RU2237712C2 (ru) | 2004-10-10 |
Family
ID=33536990
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2002112214/13A RU2237712C2 (ru) | 2002-05-06 | 2002-05-06 | Среда для криоконсервации клеток человека и животных |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2237712C2 (ru) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| MD718Z (ru) * | 2013-06-14 | 2014-08-31 | Институт Физиологии И Санокреатологии Академии Наук Молдовы | Среда для криоконсервации спермы человека |
| RU2748057C2 (ru) * | 2016-01-14 | 2021-05-19 | Депуи Синтез Продактс, Инк. | Композиция и способы криоконсервации клеток hutc |
-
2002
- 2002-05-06 RU RU2002112214/13A patent/RU2237712C2/ru not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| Д.КЛАУС. Лимфоциты. Методы. - М.: Мир, 1990, с.239-242. * |
| ЦУЦАЕВА А.А., ПЕТРЕНКО Е.Ф. Криоконсервация клеток животных. Сборник научных трудов. Методы культивирования клеток. - Л.: Наука, 1988. с.63-68. * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| MD718Z (ru) * | 2013-06-14 | 2014-08-31 | Институт Физиологии И Санокреатологии Академии Наук Молдовы | Среда для криоконсервации спермы человека |
| RU2748057C2 (ru) * | 2016-01-14 | 2021-05-19 | Депуи Синтез Продактс, Инк. | Композиция и способы криоконсервации клеток hutc |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Silliman et al. | Transfusion of the injured patient: proceed with caution | |
| RU2396748C2 (ru) | Среда для хранения клеток | |
| US4798824A (en) | Perfusate for the preservation of organs | |
| Meryman et al. | Rapid freezing and thawing of whole blood | |
| Rajan et al. | Development and application of cryoprotectants | |
| CN104663649B (zh) | 人类卵母细胞冷冻保护剂 | |
| Zhang et al. | The cryoprotective effects of soybean lecithin on boar spermatozoa quality | |
| Üstüner et al. | Effect of egg yolk and soybean lecithin on tris-based extender in post-thaw ram semen quality and in vitro fertility | |
| CN108651439A (zh) | 一种外周血单核细胞完全无血清冻存液及其方法 | |
| CN109769797B (zh) | 一种器官保存液 | |
| AU2009228141A1 (en) | Mehtod, system, and apparatus for hypothermic collection, storage, transport and banking of birth tissue | |
| US20180020658A1 (en) | Enhancement of cell cryopreservation with glycolipids | |
| WO2020207151A1 (zh) | 一种无dmso的冷冻保存液及其制备方法与应用 | |
| Stoll et al. | Membrane stability during biopreservation of blood cells | |
| US5153004A (en) | Freezing and thawing of erythrocytes | |
| Huggins | Frozen blood | |
| CN111602648B (zh) | 一种免疫细胞无血清冻存液及冻存方法 | |
| CN113854280B (zh) | 一种低温保存液及其制备方法和应用 | |
| RU2237712C2 (ru) | Среда для криоконсервации клеток человека и животных | |
| Daniel et al. | Factors influencing the survival of cell monolayers during storage at 4 degrees. | |
| WO2008127959A1 (en) | Ergothioneine and/or its derivatives as a cell preservative | |
| Rodríguez et al. | Protective effect of glutathione (GSH) over glutathione monoethyl-ester (GSH-E) on cold preservation of isolated rat liver cells | |
| JP2956998B2 (ja) | 移植器官潅流保存液および移植器官潅流保存法 | |
| Poisson | Synthesis and In Vitro Applications of Ice Recrystallization Inhibitors | |
| CN118575808A (zh) | 一种免疫细胞冻存液及冻存方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20040507 |
|
| NF4A | Reinstatement of patent | ||
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20060507 |