RU2204599C1 - Foot-and-mouth virus strain "primorsky-2000" 1734 of type o1 for diagnostic and vaccine preparation preparing - Google Patents
Foot-and-mouth virus strain "primorsky-2000" 1734 of type o1 for diagnostic and vaccine preparation preparing Download PDFInfo
- Publication number
- RU2204599C1 RU2204599C1 RU2001129664/13A RU2001129664A RU2204599C1 RU 2204599 C1 RU2204599 C1 RU 2204599C1 RU 2001129664/13 A RU2001129664/13 A RU 2001129664/13A RU 2001129664 A RU2001129664 A RU 2001129664A RU 2204599 C1 RU2204599 C1 RU 2204599C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- virus
- strain
- foot
- primorsky
- type
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области ветеринарной вирусологии и биотехнологии и может быть использовано при изготовлении средств для специфической профилактики и диагностики ящура типа О. The invention relates to the field of veterinary virology and biotechnology and can be used in the manufacture of agents for specific prophylaxis and diagnosis of foot and mouth disease type O.
Ящур - это острое высококонтагиозное вирусное заболевание парнокопытных животных, проявляющееся лихорадкой, везикулярными (афтозными) поражениями слизистой оболочки ротовой полости, бесшерстных участков кожи головы, вымени, венчика, межкопытной щели и сопровождающееся нарушением движения. Для этого заболевание характерна тенденция к широкому распространению и эпизоотическому течению. Эта болезнь сопровождается большими потерями молока, мяса и других видов животноводческой продукции, тем самым затрудняет коммерческие операции и хозяйственную деятельность. Foot and mouth disease is an acute highly contagious viral disease of artiodactyl animals, manifested by fever, vesicular (aphthous) lesions of the mucous membrane of the oral cavity, hairless areas of the scalp, udder, corolla, inter-hoof gap and accompanied by impaired movement. For this disease, a tendency to widespread and epizootic course is characteristic. This disease is accompanied by large losses of milk, meat and other types of livestock products, thereby complicating commercial operations and economic activity.
Многолетний опыт показывает, что наличие эндемичного ящура снижает доходы в молочном и мясном животноводстве на 35-40%. Years of experience show that the presence of endemic foot and mouth disease reduces income in dairy and beef cattle breeding by 35-40%.
Вирус ящура относится к роду афтовирусов, семейству пикорнавирусов. Он включает 7 иммунологических типов и большое количество подтипов [1, 2]. The foot and mouth disease virus belongs to the genus of aphthoviruses, the family of picornaviruses. It includes 7 immunological types and a large number of subtypes [1, 2].
Известной особенностью возбудителя ящура является антигенная изменчивость штаммов в пределах одного серотипа, происходящая в различные временные промежутки, на разных территориях, зависящая от видового состава восприимчивого поголовья, его иммунного статуса и множества других факторов. Известно, что основной причиной антигенной изменчивости является изменение аминокислотной последовательности в полипептидах вирусных белков, составляющих капсид вириона. Такие антигенные изменения могут выражаться как в незначительных отличиях между штаммами, улавливаемых только с помощью тонких методов молекулярного анализа, так и в появлении совершенно отличающихся штаммов, требующих использования новых средств для серологической диагностики и специфической профилактики болезни, вызываемой этими штаммами [2, 3]. A well-known feature of the causative agent of foot and mouth disease is the antigenic variation of strains within the same serotype, occurring at different time intervals, in different territories, depending on the species composition of the susceptible population, its immune status and many other factors. It is known that the main cause of antigenic variation is a change in the amino acid sequence in the polypeptides of the viral proteins that make up the virion capsid. Such antigenic changes can be expressed both in insignificant differences between the strains, captured only using subtle molecular analysis methods, and in the appearance of completely different strains requiring the use of new tools for serological diagnostics and specific prophylaxis of the disease caused by these strains [2, 3].
Известны штаммы вируса ящура типа О, которые используются на территории России в течение последних 34-35 лет. К ним относятся следующие штаммы: O1 1618 "Чечено-Ингушский", выделенный в 1966 году в Чечено-Ингушской АССР; O1 194, выделенный в 1967 году в Волгоградской области и O1 1182/83, выделенный в 1983 году на территории Армении [4, 5].Type O foot and mouth disease virus strains are known that have been used in Russia for the past 34-35 years. These include the following strains: O 1 1618 "Chechen-Ingush", isolated in 1966 in the Chechen-Ingush ASSR; O 1 194, allocated in 1967 in the Volgograd region and O 1 1182/83, allocated in 1983 in the territory of Armenia [4, 5].
Вакцины из этих производственных штаммов ранее обеспечивали довольно напряженный иммунитет у привитых животных в отношении гомологичных либо близких им в антигенном отношении возбудителей. Vaccines from these production strains previously provided fairly intense immunity in vaccinated animals against pathogens that are homologous or antigenically related to them.
Однако в последние годы было зарегистрировано несколько вспышек ящура, которые в ряде случаев не удалось ликвидировать в первичных очагах, несмотря на энергичные ветеринарно-санитарные мероприятия общего и специального характера. However, in recent years, several outbreaks of foot and mouth disease have been recorded, which in some cases could not be eliminated in the primary foci, despite vigorous veterinary and sanitary measures of a general and special nature.
Это было обусловлено недостаточной эффективностью вакцин, применяемых в отношении эпизоотического вируса, вызывающего прорывы иммунитета даже у многократно вакцинированных животных. Поэтому назрела необходимость подготовить новый производственный штамм вируса для успешной специфической профилактики с/х животных от вновь выделенного вируса ящура типа О. This was due to the lack of effectiveness of the vaccines used against the epizootic virus, causing breakthroughs of immunity even in repeatedly vaccinated animals. Therefore, there is a need to prepare a new production strain of the virus for successful specific prophylaxis of agricultural animals from the newly isolated foot-and-mouth disease virus of type O.
Наиболее близким к предлагаемому изобретению по совокупности существенных признаков является штамм О1 194 "Волгоградский", выделенный в 1967 году и используемый в Российской Федерации в качестве производственного при изготовлении диагностических и вакцинных препаратов, применяемых на территории России и стран-членов СНГ [6].The closest to the proposed invention in terms of essential features is strain O 1 194 "Volgogradsky", isolated in 1967 and used in the Russian Federation as an industrial one in the manufacture of diagnostic and vaccine preparations used in Russia and the CIS countries [6].
Штамм 194 вируса ящура О1 имеет следующие характеристики, представленные в таблице 1.Strain 194 of the virus of foot and mouth disease O 1 has the following characteristics, are presented in table 1.
Недостатки данного штамма состоят в его низкой биологической, антигенной и иммуногенной активности. The disadvantages of this strain are its low biological, antigenic and immunogenic activity.
Об этом свидетельствует тот факт, что в 2000 году в России (Приморский край) и странах Закавказья (Грузия) были отмечены очаги заболевания ящуром типа О крупного рогатого скота и свиней, иммунизированных бивалентной вакциной АО, в состав которой входит антиген из производственного штамма О1 194. Однако вакцина не обеспечила удовлетворительной защиты иммунизированных животных. Лабораторными исследованиями во ВНИИЗЖ афтозного материала, выделенного от больных свиней, был установлен вирус ящура типа О, имеющий антигенные отличия от штамма О1 194 и O1 1618 в реакции связывания комплемента (РСК) и реакции иммуноферментного анализа (ИФА). Это свидетельствовало о несоответствии используемых средств специфической профилактики и диагностики ящура типа О, используемых Россией и странами СНГ, эпизоотическому вирусу, циркулирующему в 2000 году в России (Приморский край) и странах Закавказья (Грузия).This is evidenced by the fact that in 2000 in Russia (Primorsky Krai) and the countries of Transcaucasia (Georgia), foci of FMD type O were detected in cattle and pigs immunized with a bivalent AO vaccine, which includes antigen from the production strain O 1 194. However, the vaccine did not provide satisfactory protection for the immunized animals. Laboratory studies at ARRIAH of aphthous material isolated from sick pigs revealed the type O foot and mouth disease virus having antigenic differences from strain O 1 194 and O 1 1618 in the complement binding reaction (CSC) and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). This testified to the inconsistency of the means used for specific prophylaxis and diagnosis of foot and mouth disease type O used by Russia and the CIS countries, the epizootic virus circulating in 2000 in Russia (Primorsky Territory) and the countries of the South Caucasus (Georgia).
В задачу создания настоящего изобретения входило получение нового производственного штамма вируса ящура типа О, обладающего высокой биологической, антигенной и иммуногенной активностью в нативном виде и после инактивации и обеспечивающего изготовление диагностических и вакцинных препаратов, гомологичных эпизоотическому вирусу, появившемуся в России и странах Закавказья. The task of creating the present invention was to obtain a new production strain of foot and mouth disease virus type O, which has high biological, antigenic and immunogenic activity in its native form and after inactivation and provides for the production of diagnostic and vaccine preparations homologous to the epizootic virus that appeared in Russia and the countries of the Caucasus.
Технический результат от использования предлагаемого изобретения заключается в получении нового производственного штамма вируса ящура типа О, обладающего высокой биологической, антигенной и иммуногенной активностью и пригодного для изготовления диагностических и вакцинных препаратов против ящура типа О, гомологичных эпизоотическому вирусу, циркулирующему в России (Приморский край) и странах Закавказья (Грузия). The technical result from the use of the present invention is to obtain a new production strain of foot and mouth disease virus type O with high biological, antigenic and immunogenic activity and suitable for the manufacture of diagnostic and vaccine preparations against foot and mouth disease type O, homologous to the epizootic virus circulating in Russia (Primorsky Territory) and countries of the Caucasus (Georgia).
Указанный технический результат достигнут получением штамма 1734 "Приморский-2000" вируса ящура типа О. Штамм O1 1734 "Приморский-2000" является новым, ранее неизвестным. Исходный вирус для получения штамма 01 1734 "Приморский-2000" выделен 13.04.2000 г. от больных свиней в хозяйстве ОПХ "Степное" (с. Элитное) Уссурийского района Приморского края. Производственный штамм O1 1734 "Приморский-2000" получен путем многократных последовательных пассажей на чувствительных гетеро- и гомологичных культурах клеток.The specified technical result was achieved by obtaining strain 1734 "Seaside-2000" of the virus of foot and mouth disease type O. Strain O 1 1734 "Seaside-2000" is new, previously unknown. The initial virus for obtaining
Полученный штамм депонирован в Коллекции микроорганизмов Всероссийского научно-исследовательского института контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов Министерства сельского хозяйства Российской Федерации (ВГНКИ) 22.03.2000 г. под регистрационным номером 1734 "Приморский-2000"-ДЕП. The resulting strain was deposited in the Collection of microorganisms of the All-Russian Research Institute for Control, Standardization and Certification of Veterinary Medicines of the Ministry of Agriculture of the Russian Federation (VGNKI) on March 22, 2000 under registration number 1734 "Primorsky-2000" -DEP.
По сравнению с прототипом штамм O1 1734 "Приморский-2000" обладает более высокой биологической, антигенной и иммуногенной активностью в нативном виде и после инактивации. Экспериментально подтверждена его возможность использования для приготовления диагностических препаратов и инактивированной вакцины. Штамм 1734 "Приморский-2000" вируса типа О обеспечивает получение диагностических препаратов, позволяющих производить серологическую диагностику изолятов вируса ящура типа О, вызвавшего вспышки заболевания в 2000 году в России (Приморский край) и странах Закавказья (Грузия), и противоящурной инактивированной вакцины, создающей защиту восприимчивых животных против указанного возбудителя заболевания.Compared with the prototype strain O 1 1734 "Primorsky-2000" has a higher biological, antigenic and immunogenic activity in its native form and after inactivation. It has been experimentally confirmed that it can be used to prepare diagnostic products and inactivated vaccines. Strain 1734 "Primorsky-2000" of type O virus provides diagnostic preparations that allow for serological diagnosis of FMD virus isolates of type O, which caused an outbreak in 2000 in Russia (Primorsky Krai) and the countries of Transcaucasia (Georgia), and an inactivated FMD vaccine that creates protection of susceptible animals against the specified pathogen.
Сущность изобретения пояснена на графических материалах, где на:
фиг. 1 представлена аминокислотная последовательность белка VP1 штамма 1734 "Приморский-2000" вируса ящура типа О;
фиг. 2 изображена дендрограмма, отражающая филогенетические взаимоотношения штамма 1734 "Приморский-2000" с эпизоотическими и вакцинными штаммами вируса ящура типа О. Дендрограмма основана на сравнении полных нуклеотидных последовательностей гена VP1.The invention is illustrated in the graphic materials, where:
FIG. 1 shows the amino acid sequence of VP1 protein of strain 1734 "Primorsky-2000" of type O FMD virus;
FIG. Figure 2 shows a dendrogram reflecting the phylogenetic relationships of strain 1734 "Primorsky-2000" with epizootic and vaccine strains of FMD virus type O. The dendrogram is based on a comparison of the complete nucleotide sequences of the VP1 gene.
Штамм O1 1734 "Приморский-2000" вируса ящура характеризуется следующими признаками и свойствами.Strain O 1 1734 "Seaside-2000" of the FMD virus is characterized by the following features and properties.
Морфологические свойства
Штамм O1 1734 "Приморский-2000" относится к семейству Picornaviridae, роду Aphtovirus, серотипу О и обладает морфологическими признаками, характерными для возбудителя ящура: форма вириона икосаэдрическая, размер 23-25 нм. Вирион состоит из молекулы РНК, заключенной в белковую оболочку. Белковая оболочка состоит из 32 капсомеров, расположенных в кубической симметрии.Morphological properties
Strain O 1 1734 "Primorsky-2000" belongs to the family Picornaviridae, genus Aphtovirus, serotype O and has morphological characteristics characteristic of the causative agent of foot and mouth disease: the form of the virion is icosahedral, size 23-25 nm. Virion consists of an RNA molecule enclosed in a protein coat. The protein shell consists of 32 capsomeres arranged in cubic symmetry.
Антигенные свойства
По своим антигенным свойствам штамм относится к серотипу О. Вирус стабильно нейтрализуется гомологичной антисывороткой. Вирус не проявляет гемагглютинирующей активности. У переболевших животных в сыворотке крови образуются антитела, выявляемые в РДП, ИФА и РН. При вакцинации КРС и свиней вакциной из инактивированного вируса индуцирует образование специфических антител, выявляемых в ИФА, РДП и РН. При гипериммунизации морских свинок концентрированным инактивированным вирусом индуцирует образование вирусспецифических антител, выявляемых в РСК в разведении 1:40-1:80, в ИФА в разведении 1: 3000-1: 4000. При определении антигенного родства штамм О1 1734 "Приморский-2000" с производственными штаммами О1 194, O1 1618, а также с другими штаммами, выделенными в странах Закавказья и других зарубежных стран в 1997-2000 годах, было проведено сравнительное исследование первичной структуры гена и белка VP1.Antigenic properties
By its antigenic properties, the strain belongs to the O serotype. The virus is stably neutralized by homologous antiserum. The virus does not exhibit hemagglutinating activity. In sick animals, antibodies are formed in the blood serum that are detected in RDP, ELISA and pH. When vaccinating cattle and pigs with a vaccine from an inactivated virus, it induces the formation of specific antibodies detected in ELISA, RDP and pH. During hyperimmunization of guinea pigs with a concentrated inactivated virus, it induces the formation of virus-specific antibodies detected in CSC at a dilution of 1: 40-1: 80, in ELISA at a dilution of 1: 3000-1: 4000. When determining antigenic affinity, strain O 1 1734 "Primorsky-2000" With production strains O 1 194, O 1 1618, as well as with other strains isolated in the countries of the Caucasus and other foreign countries in 1997-2000, a comparative study of the primary structure of the gene and protein VP1 was carried out.
Методом нуклеотидного секвенирования была определена первичная структура гена VP1 штамма 1734 "Приморский-2000". Из нее была выведена первичная структура белка VP1 (фиг.1). Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей показал, что штамм 1734 "Приморский-2000" принадлежит к Паназиатской генетической линии вируса ящура типа О (фиг.2). Паназиатский вирус вызвал пандемию ящура в 1999-2000 годах в большинстве стран Азии, в том числе во Вьетнаме, Китае, Тайване, Японии, Корее, Монголии, Армении, Грузии. Опустошительная эпизоотия ящура в Великобритании в 2001 году также была вызвана Паназиатским вирусом. Using the method of nucleotide sequencing, the primary structure of the VP1 gene of strain 1734 "Primorsky-2000" was determined. The primary structure of the VP1 protein was derived from it (Fig. 1). A comparative analysis of the nucleotide sequences showed that strain 1734 "Primorsky-2000" belongs to the pan-Asian genetic line of the virus of foot and mouth disease type O (figure 2). The pan-Asian virus caused a pandemic of foot-and-mouth disease in 1999-2000 in most countries of Asia, including Vietnam, China, Taiwan, Japan, Korea, Mongolia, Armenia, and Georgia. The devastating epidemic of foot and mouth disease in the UK in 2001 was also caused by the Pan-Asian virus.
Исследуемый вирус имеет наиболее высокий уровень гомологии (98,74%) с изолятами О1-Вьетнам-1999 и О1-Тайвань-1999 (фиг.2).The studied virus has the highest level of homology (98.74%) with isolates O 1 -Vietnam-1999 and O 1 -Taiwan-1999 (figure 2).
Филогенетические взаимоотношения исследованных изолятов с ранее изученными штаммами, выделенными в разных странах мира за три последние десятилетия, указаны на дендрограмме (фиг.2). Установлено, что исследованные изоляты отличаются от всех выделенных ранее изолятов, в том числе и от штаммов O1 194 и O1 1618, используемых в настоящее время для изготовления средств диагностики и специфической профилактики ящура типа О.Phylogenetic relationships of the studied isolates with previously studied strains isolated in different countries of the world over the past three decades are indicated on the dendrogram (figure 2). It was established that the studied isolates differ from all previously isolated isolates, including from strains O 1 194 and O 1 1618, which are currently used for the manufacture of diagnostics and specific prophylaxis of foot and mouth disease type O.
Антигенное родство вируса ящура O1 1734 "Приморский-2000" с соответствующими производственными и ранее выделенными штаммами на территории Армении, Тайваня, Монголии и Вьетнама изучено в РСК. Полученные результаты представлены в таблице 2.The antigenic affinity of the foot and mouth disease virus O 1 1734 "Primorsky-2000" with the corresponding production and previously isolated strains in the territory of Armenia, Taiwan, Mongolia and Vietnam was studied in the RSK. The results are presented in table 2.
Данные, представленные в таблице 2, свидетельствуют о том, что эпизоотический штамм O1 1734 отличается от производственных штаммов O1 194 и O1 1618, но в то же время близко родственен штаммам О1-Тайвань-1999, O1 1704-Армения-1997, О1-Вьетнам-1999 и О1-Монголия-2000. Аналогичные результаты получены и в реакции ИФА.The data presented in table 2 indicate that the epizootic strain O 1 1734 differs from the production strains O 1 194 and O 1 1618, but at the same time is closely related to the strains O 1 -Taiwan-1999, O 1 1704-Armenia- 1997, O 1 Vietnam 1999 and O 1 Mongolia 2000. Similar results were obtained in the ELISA reaction.
Биологические характеристики
Штамм O1 1734 "Приморский-2000" проявляет высокую биологическую, антигенную и иммуногенную активность как в нативном виде, так и после инактивации. Штамм предназначен для использования в качестве сырья для получения диагностических препаратов, а также изготовления инактивированной противоящурной вакцины. Вирус штамма O1 1734 репродуцируется в монослойной первично-трипсинизированной культуре клеток почки свиньи (СП), перевиваемых культурах клеток почки сибирского горного козерога (ПСГК-30), IB-RS-2, ВНК-21 и в течение 20-24 часов инкубирования накапливается до 6,5-7,5 Ig ТЦД50/мл. При массированном заражении вызывает ЦПД через 4 часа.Biological characteristics
Strain O 1 1734 "Primorsky-2000" exhibits high biological, antigenic and immunogenic activity both in its native form and after inactivation. The strain is intended for use as a raw material for diagnostic preparations, as well as the manufacture of inactivated FMD vaccine. The virus of strain O 1 1734 is reproduced in a monolayer primary trypsinized culture of pig kidney cells (SP), transplanted cultures of kidney cells of the Siberian mountain ibex (PSGK-30), IB-RS-2, BHK-21 and accumulates over 20-24 hours of incubation up to 6.5-7.5 Ig TCD 50 / ml . With massive infection, it causes a CPD after 4 hours.
После 3-5 пассажей инкубирования накапливается до 6,5-7,5 1д ТЦД50/мл. Сохраняет исходные характеристики при пассировании в чувствительных биологических системах в течение 10 пассажей.After 3-5 passages of incubation, up to 6.5-7.5 1d TCD 50 / ml is accumulated. It retains its original characteristics when passaged in sensitive biological systems for 10 passages.
Хемо- и генотаксономическая характеристика
Штамм O1 1734 "Приморский-2000" является РНК-содержащим вирусом с мол. массой 7•106 Д.Chemo- and genotaxonomic characterization
Strain O 1 1734 "Primorsky-2000" is an RNA-containing virus with mol. weighing 7 • 10 6 D.
Нуклеиновая кислота представлена одноцепочечной линейной молекулой с мол. массой 2,8•108 МД. Вирион имеет белковую оболочку, состоящую из четырех основных белков VP1, VP2, VP3 и VP4. Липопротеидная оболочка отсутствует. Основным антигенным белком является VP1. В вирионе содержатся приблизительно 31,5% РНК и 68,5% белка. Вирионная РНК является инфекционной и участвует в образовании белков-предшественников в инфицированных клетках. Предшественники в свою очередь расщепляются с образованием более стабильных структурных и неструктурных полипептидов вируса. Из 6 неструктурных полипептидов, накапливающихся в инфицированных клетках, один (VP66a) является РНК-зависимой РНК-полимеразой, участвующей в репликации РНК новых вирионов.Nucleic acid is represented by a single-chain linear molecule with a mol. weighing 2.8 • 10 8 MD. The virion has a protein shell consisting of four basic proteins VP 1 , VP 2 , VP 3 and VP 4 . The lipoprotein membrane is absent. The main antigenic protein is VP 1 . The virion contains approximately 31.5% RNA and 68.5% protein. Virionic RNA is infectious and is involved in the formation of precursor proteins in infected cells. The precursors, in turn, cleave to form more stable structural and non-structural virus polypeptides. Of the 6 non-structural polypeptides that accumulate in infected cells, one (VP66a) is an RNA-dependent RNA polymerase involved in RNA replication of new virions.
Проведено определение первичной структуры участка генома вируса с помощью ПЦР и сиквенса. Результаты исследований представлены на фиг.1 и 2. Сравнительный анализ показал, что данный изолят принадлежит к новой генетической линии вируса ящура типа О. Представителей этой линии выделяли в последние годы в различных регионах азиатского континента, включая Юго-Восточную и Среднюю Азию и Дальний Восток. Исследуемый вирус ящура O1 1734 имел наиболее высокий уровень гомологии (98,74%) с изолятами О1-Вьетнам-1999 и О1-Тайвань-1999.The primary structure of the virus genome region was determined using PCR and sequencing. The results of the studies are presented in figures 1 and 2. A comparative analysis showed that this isolate belongs to the new genetic line of the FMD virus type O. Representatives of this line have been isolated in recent years in various regions of the Asian continent, including Southeast and Central Asia and the Far East . The studied foot and mouth disease virus O 1 1734 had the highest homology level (98.74%) with isolates O 1 -Vietnam-1999 and O 1 -Taiwan-1999.
В то же время его гомология с представителями других генетических линий вируса ящура типа О составляла всего лишь 80-90% (фиг.2). At the same time, its homology with representatives of other genetic lines of the FMD virus type O was only 80-90% (figure 2).
Широкое географическое распространение генетической линии вируса ящура, к которой принадлежит штамм О1 1734, позволяет говорить о возможной панзоотии.The wide geographical distribution of the genetic line of the foot and mouth disease virus, to which strain O 1 1734 belongs, suggests a possible panzootia.
Физические свойства
Масса вириона - 8,4•10-18 г. Коэффициент сентиментации - 146S в градиенте сахарозы. Плавучая плотность - 1,45 г/мл.Physical properties
The mass of the virion is 8.4 • 10 -18 g. The sentimentation coefficient is 146S in the sucrose gradient. The floating density is 1.45 g / ml.
Устойчивость к внешним факторам
Вирус штамма O1 1734 "Приморский-2000" устойчив к эфиру, хлороформу, фреону, ацетону и др. органическим растворителям и детергентам. Наиболее стабилен при рН 7,2-7,6. Сдвиги рН как в кислую, так и в щелочную сторону ведут к инактивации вируса. Чувствителен к формальдегиду, УФ-облучению, γ-облучению и высоким температурам.Resistance to external factors
The virus of strain O 1 1734 "Primorsky-2000" is resistant to ether, chloroform, freon, acetone and other organic solvents and detergents. Most stable at pH 7.2-7.6. PH shifts to both the acidic and alkaline sides lead to inactivation of the virus. It is sensitive to formaldehyde, UV radiation, γ radiation and high temperatures.
Дополнительные признаки и свойства
Иммуногенная активность - иммуногенен в составе инактивированной вакцины.Additional features and properties
Immunogenic activity - immunogen in the composition of an inactivated vaccine.
Реактогенность - реактогенными свойствами не обладает. Reactogenicity - does not have reactogenic properties.
Патогенность - патогенен для парнокопытных животных, новорожденных мышат, крольчат и морских свинок. Pathogenicity - pathogenic for artiodactyl animals, newborn mice, rabbits and guinea pigs.
Вирулентность - вирулентен для естественно-восприимчивых животных при контактном аэрозольном и парентеральном заражении. Virulence - virulence for naturally susceptible animals with contact aerosol and parenteral infection.
Стабильность - сохраняет исходные биологические свойства при пассировании в чувствительных биологических системах в течение 10 пассажей. Stability - preserves the original biological properties when passaged in sensitive biological systems for 10 passages.
Исходя из полученных данных, можно утверждать, что штамм O1 1734 "Приморский-2000" по антигенному и иммунологическому спектрам является оригинальным, в таксономическом отношении новым, ранее неизвестным вариантом вируса ящура типа О.Based on the obtained data, it can be argued that strain O 1 1734 "Primorsky-2000" in terms of antigenic and immunological spectra is an original, taxonomically new, previously unknown variant of foot-and-mouth disease virus type O.
Для снижения его эпизоотической опасности необходимо обеспечить своевременную лабораторную диагностику и вакцинопрофилактику вновь возникающих очагов болезни, для чего необходимы высокоактивные и специфичные антительные и антигенные диагностикумы и вакцина, полученные с использованием данного штамма в качестве производственного. To reduce its epizootic danger, it is necessary to ensure timely laboratory diagnosis and vaccination of newly emerging foci of the disease, which requires highly active and specific antibody and antigenic diagnostics and a vaccine obtained using this strain as a production one.
По мнению заявителя, предлагаемый штамм соответствует условиям патентоспособности "новизна" и "изобретательский уровень". According to the applicant, the proposed strain meets the conditions of patentability "novelty" and "inventive step".
Сущность предлагаемого изобретения пояснена примерами его исполнения. The essence of the invention is illustrated by examples of its implementation.
Пример 1
Штамм вируса ящура 01 1734 "Приморский-2000" был изолирован из полевого материала, поступившего во ВНИИЗЖ в виде эпителия афт от свиней, подозреваемых в заболевании ящуром, при проведении лабораторной диагностики этого заболевания и дифференциации его от других везикулярных болезней. При изоляции вируса использован комплекс биологических, вирусологических и биохимических методов, предусмотренных [7].Example 1
The foot and mouth
Биологические и вирусологические методы включали адаптацию исходного вируса к культурам первично-трипсинизированных и перевиваемых линий клеток. Были использованы культуры клеток СП, ПСГК-30, IB-RS-2 и ВНК-21. Для постановки биопробы первичные и перевиваемые культуры клеток выращивали на соответствующих питательных средах во флаконах емкостью 50-100 мл, отмывали от ростовой среды и заражали 10%-ной суспензией афтозного материала (множественность заражения составляла 1-10 ТЦД50 на клетку), приготовленной в растворе Игла с антибиотиками по стандартной рецептуре. Для удаления микрофлоры и балластных клеточных компонентов суспензию обрабатывали хлороформом в отношении 1: 10. После 30-минутного инкубирования при 37-38oС во флаконы вносили по 5-10 мл поддерживающей питательной среды и инкубировали при 37-38oС до появления ЦПД вируса. При наличии ЦПД (округление клеток, повышение их оптической плотности, дегенерация и отделение клеток от стекла) флаконы подвергали замораживанию-оттаиванию, очистке клеточной взвеси хлороформом и центрифугированию при 3000g в течение 15-20 мин. Полученный вируссодержащий материал использовали для последующих пассажей и исследования в РСК и ИФА на наличие вирусного антигена, при этом использовали набор коммерческих типоспецифических сывороток и сыворотки, хранящиеся в музее штаммов ВНИИЗЖ.Biological and virological methods included adaptation of the original virus to cultures of primary trypsinized and transplanted cell lines. Cell cultures of SP, PSGK-30, IB-RS-2 and BHK-21 were used. For staging a bioassay, primary and transplantable cell cultures were grown on appropriate nutrient media in 50-100 ml vials, washed from the growth medium and infected with a 10% suspension of aphthous material (infection multiplicity was 1-10 TCD 50 per cell) prepared in solution Needle with antibiotics according to the standard formulation. To remove microflora and ballast cellular components, the suspension was treated with chloroform in a ratio of 1: 10. After 30 minutes of incubation at 37-38 o C, 5-10 ml of maintenance medium was introduced into the vials and incubated at 37-38 o C until the virus CPD appeared . In the presence of CPD (rounding of cells, increasing their optical density, degeneration and separation of cells from glass), the bottles were subjected to freezing, thawing, purification of the cell suspension with chloroform, and centrifugation at 3000 g for 15-20 min. The obtained virus-containing material was used for subsequent passages and studies in CSC and ELISA for the presence of a viral antigen, and a set of commercial type-specific sera and serums were used, which were stored in the Museum of VNIIZH strains.
Результаты адаптации вируса к различным клеточным культурам представлены в таблице 3. The results of the adaptation of the virus to various cell cultures are presented in table 3.
Результаты, приведенные в таблице 3, свидетельствуют о хорошей адаптационной активности штамма O1 1734 к использованным клеточным культурам.The results are shown in table 3, indicate good adaptive activity of strain O 1 1734 to the used cell cultures.
Изолированный с помощью перечисленных методов вирус был исследован в РСК с набором диагностикумов на все типы вируса ящура, везикулярной экзантемы, везикулярной болезни свиней и везикулярного стоматита с целью идентификации типовой принадлежности и контроля на чистоту. Результаты типирования вируса в РСК представлены в таблице 4. The virus isolated using the methods listed above was examined in CSCs with a set of diagnostics for all types of foot-and-mouth disease virus, vesicular exanthema, porcine vesicular disease and vesicular stomatitis in order to identify the type of accessory and control for purity. The results of virus typing in CSCs are presented in table 4.
Приведенные в таблице 4 результаты свидетельствуют о том, что выделенный вирус относится к типу О; со всеми остальными сыворотками был получен отрицательный результат. The results in table 4 indicate that the selected virus is of type O; with all other sera, a negative result was obtained.
Пример 2
Для гипериммунизации морских свинок используют антиген из вируса ящура, штамм O1 1734 "Приморский-2000", репродуцированный в суспензионной культуре клеток ВНК-21. Вируссодержащую суспензию очищают от балластных белков добавлением 0,05% полигуанидина. Очищенный вирус концентрируют в 100 раз с помощью ПЭГ-6000 (10% по объему) и инактивируют аминоэтилэтиленимином (АЭЭИ) в концентрации 0,01-0,05% и рН 7,8-8,0.Example 2
For hyperimmunization of guinea pigs, an antigen from foot and mouth disease virus, strain O 1 1734 "Primorsky-2000", reproduced in a suspension cell culture of BHK-21, is used. The virus-containing suspension is purified from ballast proteins by the addition of 0.05% polyguanidine. The purified virus is concentrated 100 times with PEG-6000 (10% by volume) and inactivated with aminoethylethyleneimine (AEEI) at a concentration of 0.01-0.05% and a pH of 7.8-8.0.
Инактивированный концентрат антигена в смеси с равным объемом масляного адъюванта вводят морским свинкам внутримышечно в дозе 1,0 см3. Через 21 день иммунизацию дважды повторяют (интервал 7 дней) и через 10 дней животных обескровливают. Индивидуальные пробы сывороток крови проверяют на типовую специфичность и активность в РСК согласно [7].Inactivated antigen concentrate in a mixture with an equal volume of oil adjuvant is administered to guinea pigs intramuscularly at a dose of 1.0 cm 3 . After 21 days, immunization is repeated twice (interval of 7 days) and after 10 days the animals are bled. Individual serum samples are checked for type specificity and activity in CSCs according to [7].
После этого готовят серию путем смешивания типоспецифичных индивидуальных проб одинаковой активности. Штаммовую специфичность серийного препарата определяют в одно- и двухсторонних реакциях с гомо- и гетерологичными антигенами. After that, prepare a series by mixing type-specific individual samples of the same activity. The strain specificity of a serial preparation is determined in one- and two-sided reactions with homo- and heterologous antigens.
После консервирования азидом натрия (1:5000) и выдерживания при 4oС в течение 30 дней полученную сыворотку фасуют в ампулы по 0,5-1,0 см3 и лиофилизируют.After preservation with sodium azide (1: 5000) and holding at 4 o C for 30 days, the resulting serum is Packed in ampoules of 0.5-1.0 cm 3 and lyophilized.
Способом, описанным в примере 2, было приготовлено 2 серии гипериммунных сывороток, характеристики которых представлены в таблице 5. By the method described in example 2, 2 series of hyperimmune sera were prepared, the characteristics of which are presented in table 5.
Данные таблицы 5 свидетельствуют, что получены диагностические сыворотки, по специфической активности отвечающие требованиям [7]. The data in table 5 indicate that diagnostic sera have been obtained that meet the requirements for specific activity [7].
Пример 3
Для получения антигена для иммунохимических реакций используют вирус ящура, штамм O1 1734 "Приморский-2000", адаптированный к культурам клеток перевиваемых сублиний ПСГК-30 и IB-RS-2. Для адаптации используют вируссодержащий материал в виде 10%-ной суспензии из стенок афт свиней. Адаптацию проводят в течение 4-5 последовательных пассажей. Полученную матричную расплодку вируса используют для наработки вирусного сырья. Заражение клеточных культур и сбор вирусного материала проводят по общепринятой методике. Полученную вируссодержащую жидкость концентрируют в 100 раз с помощью 10% ПЭГ-6000. Полученный концентрат инактивируют прогреванием при 58oС в течение 40 минут, фасуют в ампулы по 1 см3 и высушивают методом сублимации под вакуумом.Example 3
To obtain the antigen for immunochemical reactions, a foot and mouth disease virus, strain O 1 1734 "Primorsky-2000", adapted to PSGK-30 and IB-RS-2 transplanted subline cell cultures, is used. For adaptation, virus-containing material is used in the form of a 10% suspension from the walls of pig aphthae. Adaptation is carried out for 4-5 consecutive passages. The resulting matrix virus seed is used to produce viral raw materials. Infection of cell cultures and the collection of viral material is carried out according to standard methods. The resulting virus-containing liquid was concentrated 100 times with 10% PEG-6000. The resulting concentrate is inactivated by heating at 58 o C for 40 minutes, Packed in ampoules of 1 cm 3 and dried by freeze-drying under vacuum.
Указанным способом было приготовлено 2 серии диагностического антигена, характеристики которых приведены в таблице 6. The specified method was prepared 2 series of diagnostic antigen, the characteristics of which are given in table 6.
Результаты исследований, приведенные в таблице 6, свидетельствуют, что получены диагностические антигены, специфическая активность которых соответствует требованиям [7]. The research results shown in table 6 indicate that diagnostic antigens were obtained, the specific activity of which meets the requirements [7].
Пример 4
Для изготовления адсорбат-вакцины вирус ящура О1 1784 "Приморский-2000" репродуцируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21. В качестве поддерживающей среды используют раствор Эрла без сыворотки с добавлением ФГМС, ГБКС и антибиотиков при рН 7,2-7,4. Культуру клеток заражают вирусом из расчета 0,005-0,1 ТЦД50 на клетку. Культивирование вируса ведут при температуре 36-37oС. Через 8-10 часов инкубирования при достижении количества мертвых клеток 90-95% культивирование прекращают и вируссодержащую суспензию контролируют на стерильность и содержание 146S+75S компонентов. Количество 146S+75S компонентов суспензии должно соответствовать не менее 0,5 мкг/мл. Сразу по окончании цикла репродукции вируса, не прекращая термостатирования, в вируссодержащую суспензию добавляют 15-20% раствор АЭЭИ, подкисленный ледяной уксусной кислотой до рН 8,0-8,5. Конечная концентрация АЭЭИ в вируссодержащей суспензии должна быть равной 0,025-0,05%. Инактивацию инфекционности вируса проводят в течение 12-24 часов при 36-37oС и рН 7,2-7,6 с перемешиванием через 5-6 часов в течение 3-5 минут. По окончании инактивации суспензию антигена охлаждают до 4-8oС. В охлажденную супензию добавляют 10% раствор полигексаметиленгуанидина (ПГМГ) до концентрации 0,005-0,007% для флокуляции балластных примесей и инактивации возможных контаминантов. Флокулированные балластные примеси подвергают седиментации с последующей декантацией. Полученный антиген контролируют на авирулентность, содержание вируссодержащего белка и 146S+75S компонентов вируса и стерильность. Необходимую концентрацию 146S+75S компонентов в прививной дозе адсорбированной вакцины получают путем концентрирования антигена гелем гидрата окиси алюминия (ГОА). Для этого в охлажденную суспензию антигена добавляют расчетный объем геля ГОА 3% концентрации.Example 4
For the manufacture of an adsorbate vaccine, foot and mouth disease virus O 1 1784 "Primorsky-2000" is reproduced in a suspension culture of BHK-21 cells. As a supporting medium, an Earle solution without serum is used with the addition of FGMS, GBKS and antibiotics at a pH of 7.2-7.4. The cell culture is infected with a virus at the rate of 0.005-0.1 TCD 50 per cell. The cultivation of the virus is carried out at a temperature of 36-37 o C. After 8-10 hours of incubation, when the number of dead cells reaches 90-95%, the cultivation is stopped and the virus-containing suspension is controlled for sterility and the content of 146S + 75S components. The amount of 146S + 75S components of the suspension should correspond to at least 0.5 μg / ml. Immediately after the end of the virus reproduction cycle, without stopping thermostating, a 15–20% AEEI solution, acidified with glacial acetic acid to pH 8.0–8.5, is added to the virus-containing suspension. The final concentration of AEEI in the virus-containing suspension should be equal to 0.025-0.05%. Inactivation of the infectiousness of the virus is carried out for 12-24 hours at 36-37 o C and a pH of 7.2-7.6 with stirring after 5-6 hours for 3-5 minutes. At the end of inactivation, the antigen suspension is cooled to 4-8 ° C. A 10% solution of polyhexamethylene guanidine (PHMG) is added to the cooled suspension to a concentration of 0.005-0.007% for flocculation of ballast impurities and inactivation of possible contaminants. Flocculated ballast impurities are subjected to sedimentation followed by decantation. The resulting antigen is monitored for avirulence, virus-containing protein content and 146S + 75S virus components and sterility. The required concentration of 146S + 75S components in the vaccine dose of the adsorbed vaccine is obtained by concentration of the antigen with gel of aluminum oxide hydrate (GOA). For this, the calculated volume of GOA gel of 3% concentration is added to the cooled antigen suspension.
После седиментации ГОА сливают расчетный объем надосадочной жидкости или измеряют объем оставшейся суспензии. Конечная концентрация ГОА должна быть в пределах 1,62-0,488 Р<0,01 мг/мл n=10, а концентрация 146S+75S компонентов вируса ящура, по меньшей мере, 6,0 мкг/мл. Затем в суспензию добавляют дополнительно 10% раствор сапонина до конечной концентрации, по меньшей мере, 0,075%. Полученную вакцину расфасовывают в стеклянные флаконы и подвергают контролю на стерильность по [8]. After sedimentation of GOA, the calculated volume of the supernatant is drained or the volume of the remaining suspension is measured. The final concentration of GOA should be in the range of 1.62-0.488 P <0.01 mg / ml n = 10, and the concentration of 146S + 75S components of the FMD virus is at least 6.0 μg / ml. An additional 10% saponin solution is then added to the suspension to a final concentration of at least 0.075%. The resulting vaccine is packaged in glass bottles and subjected to sterility control according to [8].
Авирулентность и безвредность вакцины проверяют на 5 головах КРС, вводя вакцину сначала под слизистую языка в дозе 2,0 мл, а затем подкожно в дозе 10 мл. Наблюдение за клиническим состоянием животных ведут 10 суток. Авирулентную, безвредную и стерильную вакцину проверяют на иммуногенную активность на КРС или морских свинках. The virulence and safety of the vaccine is checked on 5 heads of cattle, introducing the vaccine first under the mucous membrane of the tongue in a dose of 2.0 ml, and then subcutaneously in a dose of 10 ml Monitoring the clinical condition of animals is 10 days. An avirulent, harmless and sterile vaccine is tested for immunogenic activity in cattle or guinea pigs.
Результаты контроля иммуногенной активности полученной вакцины на КРС приведены в таблице 7. Приведенные в таблице 7 результаты показали, что все шесть голов КРС были защищены от генерализации процесса после контрольного заражения через 21 день. The results of the control of the immunogenic activity of the obtained vaccine for cattle are shown in table 7. The results shown in table 7 showed that all six heads of cattle were protected from the generalization of the process after control infection after 21 days.
Иммунный ответ КРС на введение адсорбат-вакцины из ящурного антигена O1 1734 проверили также на 5 головах КРС массой 200-300 кг. Результаты исследований представлены в таблице 8. Приведенные в таблице 8 данные свидетельствуют о том, что противоящурная адсорбат-вакцина из штамма О1 1734 индуцирует хороший иммунный ответ, начиная с 21 дня после вакцинации. Уровень вируснейтрализующих антител (ВНА) к 61 дню увеличился на 5,07 лог2 по сравнению с 21 днем после вакцинации.The immune response of cattle to the administration of an adsorbate vaccine from FMD antigen O 1 1734 was also tested on 5 heads of cattle weighing 200-300 kg. The research results are presented in table 8. The data in table 8 indicate that the FMD vaccine from strain O 1 1734 induces a good immune response, starting from 21 days after vaccination. The level of virus-neutralizing antibodies (VNA) by 61 days increased by 5.07 log 2 compared with 21 days after vaccination.
Полученная вакцина представляет собой жидкость светло-желтого цвета с рыхлым белым осадком сорбента, который образуется на дне флакона при хранении и легко разбивается в гомогенную взвесь при встряхивании. The resulting vaccine is a light yellow liquid with a loose white precipitate of sorbent, which is formed at the bottom of the vial during storage and is easily broken into a homogeneous suspension with shaking.
Оптимальный компонентный состав полученной адсорбат-вакцины против ящура типа О приведен в таблице 9. The optimal component composition of the obtained adsorbate vaccine against foot and mouth disease type O are shown in table 9.
Пример 5
Для изготовления эмульсионной вакцины вирус ящура типа О, штамм 1774 "Приморский-2000", репродуцируют в суспензионной культуре клеток ВНК-21, инактивируют и очищают от балластных примесей и возможных контаминантов, подвергают контролю на авирулентность, содержание вирусспецифического белка, иммуногенных компонентов (146S+75S) и стерильность так, как описано в примере 4. Необходимую концентрацию 146S+75S компонентов в прививной дозе эмульсионной вакцины получают путем концентрирования антигена проточной ультрафильтрацией или полиэтиленгликолем. Полученный концентрат антигена хранят при 4-6oС до момента использования в вакцине. Эмульсионную вакцину получают путем диспергирования концентрата антигена и масляного адъюванта на коллоидных мельницах в соотношении 3:7-1:1 соответственно.Example 5
For the manufacture of an emulsion vaccine, FMD virus type O, strain 1774 "Primorsky-2000", is reproduced in a suspension culture of BHK-21 cells, inactivated and purified from ballast impurities and possible contaminants, subjected to control for avirulence, the content of virus-specific protein, immunogenic components (146S + 75S) and sterility as described in example 4. The required concentration of 146S + 75S components in the vaccine dose of the emulsion vaccine is obtained by concentration of the antigen by flow ultrafiltration or polyethylene glycol. The resulting antigen concentrate is stored at 4-6 ° C. until used in the vaccine. An emulsion vaccine is obtained by dispersing an antigen concentrate and an oil adjuvant in colloidal mills in a ratio of 3: 7-1: 1, respectively.
В результате получают инактивированную эмульсионную вакцину против ящура типа О, которая представляет собой молокоподобную жидкость, нерастворимую в воде. Вакцина имеет жидкую консистенцию, легко рассасывается в месте введения, не вызывает образования абсцессов, не вызывает общей реакции в виде подъема температуры и обладает выраженной иммуногенностью для свиней в дозе 2 мл через 1-21 день после вакцинации, для КРС - в дозе 5 мл через 3-21 день после вакцинации и для овец - в дозе 1 мл через 3-21 день после введения. Вакцину вводят свиньям внутримышечно, а КРС и овцам - подкожно. В прививном объеме должно содержаться не менее 4 мкг 146S+75S компонентов. Оптимальный компонентный состав полученной эмульсионной вакцины против ящура типа О приведен в таблице 10. The result is an inactivated emulsion vaccine against foot and mouth disease type O, which is a milk-like liquid insoluble in water. The vaccine has a liquid consistency, easily dissolves at the injection site, does not cause abscesses, does not cause a general reaction in the form of a temperature rise and has pronounced immunogenicity for pigs at a dose of 2 ml 1-21 days after vaccination, for cattle at a dose of 5 ml after 3-21 days after vaccination and for sheep - in a dose of 1 ml 3-21 days after administration. The vaccine is administered intramuscularly to pigs, and cattle and sheep subcutaneously. Inoculated volume should contain at least 4 μg of 146S + 75S components. The optimal component composition of the resulting emulsion vaccine against foot and mouth disease type O are shown in table 10.
Иммуногенная активность эмульсионной вакцины проверена на свиньях массой 35-40 кг. Результаты исследований представлены в таблицах 11 и 12. ИмД50= 0,18 мл. В прививном объеме 2 мл содержится 11,2 ИмД5о для свиней. В таблице 11 показано, что вакцина из вируса ящура O1 194 индуцирует в организме подсвинков в 2-3 раза меньшее количество ВНА против гетерологичного штамма вируса O1 1784 "Приморский-2000" по сравнению с гомологичным штаммом.The immunogenic activity of the emulsion vaccine was tested on pigs weighing 35-40 kg. The research results are presented in tables 11 and 12. ImD 50 = 0.18 ml. A graft volume of 2 ml contains 11.2 ImD5o for pigs. Table 11 shows that the vaccine from foot and mouth disease virus O 1 194 induces in the body of
Представленные в таблице 12 данные демонстрируют уровень гуморального иммунитета у подсвинков, привитых противоящурными эмульсионными вакцинами с разным содержанием иммуногенного компонента. The data presented in table 12 show the level of humoral immunity in gilts vaccinated with FMD vaccines with different contents of the immunogenic component.
Таким образом, приведенная выше информация свидетельствует о выполнении при использовании предлагаемого изобретения следующей совокупности условий:
- штамм 1734 "Приморский-2000" вируса ящура типа О, воплощающий предлагаемое изобретение, предназначен для использования в сельском хозяйстве, а именно в ветеринарной вирусологии и биотехнологии;
- для предлагаемого изобретения в том виде, как оно охарактеризовано в независимом пункте формулы изобретения, подтверждена возможность его осуществления с помощью описанных в заявке или известных до даты приоритета средств и методов;
- штамм 1734 "Приморский-2000" вируса ящура типа О, полученный в соответствии с предлагаемым изобретением, обладает высокой биологической, антигенной и иммуногенной активностью в нативном виде и после инактивации и пригоден для изготовления диагностических и вакцинных препаратов.Thus, the above information indicates the fulfillment when using the invention of the following set of conditions:
- strain 1734 "Seaside-2000" of the FMD virus type O, embodying the invention, is intended for use in agriculture, namely in veterinary virology and biotechnology;
- for the proposed invention in the form described in the independent claim, the possibility of its implementation using the means and methods described in the application or known prior to the priority date has been confirmed;
- strain 1734 "Seaside-2000" of the FMD virus type O, obtained in accordance with the invention, has a high biological, antigenic and immunogenic activity in its native form and after inactivation and is suitable for the manufacture of diagnostic and vaccine preparations.
Следовательно, предлагаемое изобретение соответствует условию патентоспособности "промышленная применимость". Therefore, the present invention meets the condition of patentability "industrial applicability".
Источники информации
1. Ререр Х. Ящур. Пер. с нем. Г.А.Сурковой. Под ред. и с предисл. канд. вет. наук. П.В.Малярца, М., Колос, 1971, 432с.Sources of information
1. Rerer H. Foot and mouth disease. Per. with him. G.A. Surkova. Ed. and with the foreword. Cand. vet. sciences. P.V. Malaria, M., Kolos, 1971, 432s.
2. Бурдов А.Н., Дудников А.И., Малярец П.В. и др. Ящур. Под ред. А.Н.Бурдова.-М., Агропромиздат, 1990, 320с. 2. Burdov A.N., Dudnikov A.I., Malyarets P.V. and other foot and mouth disease. Ed. A.N. Burdova.-M., Agropromizdat, 1990, 320s.
3. Сюрин и др. Вирусные болезни животных.-М., ВНИТИБП, 1998.-c.532-548. 3. Syurin and other viral diseases of animals.-M., VNITIBP, 1998.-c.532-548.
4. Кругликов Б. А., Штефан М.К. и Тарасенко Т.Я. Изучение инфекционных свойств штаммов вируса ящура типа О, выделенных в разные периоды эпизоотии. - В кн.: Акт. пробл. вет. вирусол. - Владимир, 1988. -ч. 1. -с. 77-78. 4. Kruglikov B. A., Stefan M.K. and Tarasenko T.Ya. Study of the infectious properties of foot and mouth disease virus type O strains isolated at different periods of epizootic. - In the book: Act. prob. vet. virusol. - Vladimir, 1988. 1.-s. 77-78.
5. Авт. свид. СССР 1739559, А 61 К 39/135, 10.04.2000 г. 5. Auth. testimonial. USSR 1739559, A 61 K 39/135, 10.04.2000
6. Инструкция по изготовлению и контролю вакцины моновалентной эмульсионной против ящура типа А, типа О, типа С, типа Азия-1 (из вируса, выращенного в клетках ВНК-21). Утверждена ГУВ Госкомиссии CM CCP по продовольствию и закупкам 24.01.91 г. (прототип). 6. Instructions for the manufacture and control of a monovalent emulsion vaccine against foot and mouth disease type A, type O, type C, type Asia-1 (from a virus grown in BHK-21 cells). Approved by the GUV of the State Commission CM CCP for food and procurement on 01.24.91 (prototype).
7. ГОСТ 25384-82 "Методические указания по выделению идентификации штаммов вируса ящура". М., Колос.-1974. 7. GOST 25384-82 "Guidelines for the identification of identification of FMD virus strains." M., Kolos. 1974.
8. ГОСТ 28085-89. 8. GOST 28085-89.
9. Шажко Ж.А., Фомина Т.А. и др. Некоторые характеристики эпизоотических штаммов вируса ящура, изолированных в СССР. Ящур (К новой стратегии борьбы с ящуром), Владимир, 1992.-ч. 1.-с. 82-96. 9. Shazhko Zh.A., Fomina T.A. et al. Some characteristics of epizootic strains of foot and mouth disease virus isolated in the USSR. Foot and mouth disease (Towards a new strategy for fighting foot and mouth disease), Vladimir, 1992. 1.-s. 82-96.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001129664/13A RU2204599C1 (en) | 2001-11-01 | 2001-11-01 | Foot-and-mouth virus strain "primorsky-2000" 1734 of type o1 for diagnostic and vaccine preparation preparing |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001129664/13A RU2204599C1 (en) | 2001-11-01 | 2001-11-01 | Foot-and-mouth virus strain "primorsky-2000" 1734 of type o1 for diagnostic and vaccine preparation preparing |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2204599C1 true RU2204599C1 (en) | 2003-05-20 |
Family
ID=20254104
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2001129664/13A RU2204599C1 (en) | 2001-11-01 | 2001-11-01 | Foot-and-mouth virus strain "primorsky-2000" 1734 of type o1 for diagnostic and vaccine preparation preparing |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2204599C1 (en) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2563522C1 (en) * | 2014-08-06 | 2015-09-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | STRAIN O №2102/Zabaikalsky/2010 FMD VIRUS Aphtae epizooticae OF TYPE O FOR CONTROL OF ANTIGENIC AND IMMUNOGENIC ACTIVITY OF FMD VACCINES AND FOR PRODUCTION OF BIOLOGICAL PRODUCTS FOR DIAGNOSTICS AND SPECIFIC PROPHYLAXIS OF FMD OF TYPE O |
RU2575801C1 (en) * | 2014-11-18 | 2016-02-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | STRAIN O №2108/ZABAIKALSKY/2010 OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE VIRUS Aphtae epizooticae OF TYPE O FOR MANUFACTURING BIOLOGICAL PREPARATIONS FOR DIAGNOSTICS OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE VIRUS OF TYPE O |
RU2650768C1 (en) * | 2016-10-14 | 2018-04-17 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | Strain o no_2212/prymorsky/2014 of aphtae epizooticae foot and mouth disease virus of o type for the control of the antigenic and immunogenic activity of foot-mouth disease vaccines and for the manufacture of biologic drugs for diagnostics and specific prevention of foot and mouth disease of o type |
RU2682876C1 (en) * | 2017-12-18 | 2019-03-22 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | Inactivated emulsion vaccine for o-type aphthous fever |
-
2001
- 2001-11-01 RU RU2001129664/13A patent/RU2204599C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Инструкция по изготовлению и контролю вакцины моновалентной эмульсионной против ящура типа А, типа О, типа С, типа Азия-1 (из вируса, выращенного в клетках ВНК-21). Утверждено ГУВ Госкомиссии СМ СССР по продовольствию и закупкам 24.01.1991. * |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2563522C1 (en) * | 2014-08-06 | 2015-09-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | STRAIN O №2102/Zabaikalsky/2010 FMD VIRUS Aphtae epizooticae OF TYPE O FOR CONTROL OF ANTIGENIC AND IMMUNOGENIC ACTIVITY OF FMD VACCINES AND FOR PRODUCTION OF BIOLOGICAL PRODUCTS FOR DIAGNOSTICS AND SPECIFIC PROPHYLAXIS OF FMD OF TYPE O |
RU2575801C1 (en) * | 2014-11-18 | 2016-02-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | STRAIN O №2108/ZABAIKALSKY/2010 OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE VIRUS Aphtae epizooticae OF TYPE O FOR MANUFACTURING BIOLOGICAL PREPARATIONS FOR DIAGNOSTICS OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE VIRUS OF TYPE O |
RU2650768C1 (en) * | 2016-10-14 | 2018-04-17 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | Strain o no_2212/prymorsky/2014 of aphtae epizooticae foot and mouth disease virus of o type for the control of the antigenic and immunogenic activity of foot-mouth disease vaccines and for the manufacture of biologic drugs for diagnostics and specific prevention of foot and mouth disease of o type |
RU2682876C1 (en) * | 2017-12-18 | 2019-03-22 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | Inactivated emulsion vaccine for o-type aphthous fever |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP1129723B1 (en) | Combined vaccine against both hav and measle virus and method of producing it | |
RU2593718C1 (en) | Inactivated emulsion vaccine against foot-and-mouth disease types a, o, asia-1 | |
RU2451745C2 (en) | A 2045/KYRGYZSTAN/ 2007 STRAIN OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE VIRUS Aphtae epizooticae TYPE A FOR ANTIGENIC AND IMMUNOGENIC PERFORMANCE CONTROL OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE VACCINES AND FOR PRODUCTION OF BIOPREPARATIONS FOR DIAGNOSIS AND SPECIFIC PREVENTION OF FOOT-AND-MOUTH DISEASE TYPE A | |
RU2603003C1 (en) | Inactivated sorptive vaccine to fmd types a, o, asia-1 | |
RU2699671C1 (en) | Vaccine for early protection against foot-and-mouth disease of type o inactivated emulsion | |
RU2665849C1 (en) | Inactivated emulsion vaccine against foot-and-mouth disease type o | |
RU2143921C1 (en) | Vaccine against foot and mouth of type a and method of its preparing | |
RU2242513C1 (en) | Foot and mouth disease virus strain a(georgia)1999/ 1721 type a for preparing diagnostic and vaccine preparations | |
RU2204599C1 (en) | Foot-and-mouth virus strain "primorsky-2000" 1734 of type o1 for diagnostic and vaccine preparation preparing | |
RU2563522C1 (en) | STRAIN O №2102/Zabaikalsky/2010 FMD VIRUS Aphtae epizooticae OF TYPE O FOR CONTROL OF ANTIGENIC AND IMMUNOGENIC ACTIVITY OF FMD VACCINES AND FOR PRODUCTION OF BIOLOGICAL PRODUCTS FOR DIAGNOSTICS AND SPECIFIC PROPHYLAXIS OF FMD OF TYPE O | |
RU2212895C2 (en) | Vaccine against o-type foot-and-mouth disease and method for its preparing | |
RU2682876C1 (en) | Inactivated emulsion vaccine for o-type aphthous fever | |
RU2140452C1 (en) | Foot and mouth virus disease type a strain n 1707 "armenia-98" used for preparing diagnostic and vaccine preparations | |
RU2220744C1 (en) | Vaccine against foot-and-mouth asia-1 type and method for it preparing | |
RU2297452C2 (en) | Asia-1-type foot-and-mouth disease virus strain for producing of diagnostic and/or vaccine preparations | |
RU2603255C9 (en) | Strain a №2155/baikal/2013 of murrain virus aphtae epizooticae type a for control of antigenic and immunogenic activity and to produce biopreparations for diagnostics and specific prevention of murrain type a | |
RU2294760C2 (en) | Sorbed inactivated vaccine against foot-and-mouth disease of type a | |
RU2348690C2 (en) | Amur strain no 1987 of asia-1 type murrain virus for antigenic and immunogenic performance control of vaccines and for production of medicines for diagnostics and specific prevention of asia-1 type murrain | |
RU2294759C2 (en) | Inactivated emulsion vaccine against foot-and-mouth disease of type a | |
RU2526570C2 (en) | Inactivated sorbent type a foot-and-mouth disease vaccine | |
RU2665850C1 (en) | Inactivated emulsion vaccine against foot-and-mouth disease type a | |
RU2658608C1 (en) | Strain o n 2311/zabaikalsky/2016 foot and mouth disease virus type aphtae epizooticae type o for manufacturing of biologics for diagnosis and specific prevention of foot and mouth disease of type o | |
RU2681815C1 (en) | Inactivated sorptive foot-and-mouth disease type a vaccine | |
RU2563345C1 (en) | Inactivated sorbed vaccine against fmd of type a | |
RU2218397C1 (en) | Foot-and-mouth virus strain = 1737/georgia/2000 of type asia-1 for preparing diagnostic and vaccine preparations |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20061102 |