RU2203944C2 - Nutrient medium for culturing and isolation of bifidobacteria - Google Patents
Nutrient medium for culturing and isolation of bifidobacteria Download PDFInfo
- Publication number
- RU2203944C2 RU2203944C2 RU2001121411/13A RU2001121411A RU2203944C2 RU 2203944 C2 RU2203944 C2 RU 2203944C2 RU 2001121411/13 A RU2001121411/13 A RU 2001121411/13A RU 2001121411 A RU2001121411 A RU 2001121411A RU 2203944 C2 RU2203944 C2 RU 2203944C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- source
- medium
- extract
- glucose
- bifidobacteria
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно микробиологии, и может быть использовано для выращивания бифидобактерий и количественного определения их при диагностике дисбактериоза кишечника. The invention relates to medicine, namely microbiology, and can be used for growing bifidobacteria and quantifying them in the diagnosis of intestinal dysbiosis.
Известно использование для выращивания бифидобактерий казеиново-дрожжевой среды и гидролизованного молока (1, 2), среды Блаурокка (в модификации Гончаровой) (3). It is known to use casein-yeast medium and hydrolyzed milk (1, 2), Blaurock medium (modified by Goncharova) for growing bifidobacteria (3).
Недостатком этих сред является трудоемкость в их приготовлении в лабораторных условиях. The disadvantage of these environments is the complexity in their preparation in the laboratory.
Наиболее близким решением задачи того же назначения к заявляемому изобретению по совокупности признаков является питательная среда для накопления биомассы, содержащая источник азотистого питания - ферментативный гидролизат обезжиренного молока, глюкозу, источник витаминов группы В - кормовой концентрат витаминов группы В, кукурузный экстракт, натрий лимоннокислый трехзамещенный, железо сернокислое 7-водное, трилон Б, маннит, агар-агар (4). The closest solution to the problem of the same purpose to the claimed invention in terms of features is a nutrient medium for biomass accumulation, containing a source of nitrogen nutrition - an enzymatic hydrolyzate of skim milk, glucose, a source of group B vitamins - a feed concentrate of group B vitamins, corn extract, sodium tri-substituted citrate, iron sulfate 7-water, Trilon B, mannitol, agar-agar (4).
Задача предлагаемого изобретения - повышение вегетирующих свойств среды и упрощение технологии ее изготовления. The objective of the invention is to increase the vegetative properties of the environment and simplify the technology of its manufacture.
Указанный технический результат при осуществлении изобретения достигается тем, что предлагаемая среда дополнительно содержит воду дистиллированную, соду кальцинированную, в качестве источника азотистого питания - питательный бульон сухой, в качестве источника витаминов группы В - экстракт кормовых или хлебных дрожжей, при следующем соотношении компонентов, г/л дистиллированной воды:
Питательный бульон сухой - 20,0-30,0
Д (+) глюкоза - 15,0-25,0
Экстракт кормовых или хлебных дрожжей, сухой - 5,0-8,0
Цистеин - 0,45-0,7
Железо сернокислое 7-водное - 0,13-0,18
Агар микробиологический - 1,5-2,0
Натрий лимоннокислый трехзамещенный - 0,8-1,2
Сода кальцинированная - 0,8-1,2
Среду получают следующим образом.The specified technical result during the implementation of the invention is achieved by the fact that the proposed medium additionally contains distilled water, soda ash, as a source of nitrogen nutrition - dry broth, as a source of B vitamins - extract of feed or bread yeast, in the following ratio, g / l distilled water:
Dry nutrient broth - 20.0-30.0
D (+) glucose - 15.0-25.0
Extract of feed or bread yeast, dry - 5.0-8.0
Cysteine - 0.45-0.7
Iron sulfate 7-water - 0.13-0.18
Microbiological agar - 1.5-2.0
Sodium citrate trisubstituted - 0.8-1.2
Soda ash - 0.8-1.2
The medium is prepared as follows.
Пример 1. В 1 л дистиллированной воды последовательно растворяют 20,0 г питательного бульона, 15,0 г Д (+) глюкозы, 5,0 г экстракта кормовых дрожжей, 0,45 г цистеина, 0,13 г железа сернокислого 7-водного, 0,8 г натрия лимоннокислого трехзамещенного, 1,5 г агара микробиологического, 0,8 г соды кальцинированной. Смесь нагревают, кипятят 2 мин до полного расплавления агара, фильтруют через ватный фильтр, разливают по 9 мл в стерильные пробирки и во флаконы по 50,0 мл, 100 мл, стерилизуют 30 мин при 112oС.Example 1. In 1 l of distilled water, 20.0 g of nutrient broth, 15.0 g of D (+) glucose, 5.0 g of fodder yeast extract, 0.45 g of cysteine, 0.13 g of 7% aqueous iron sulfate are successively dissolved. , 0.8 g of trisubstituted sodium citrate, 1.5 g of microbiological agar, 0.8 g of soda ash. The mixture is heated, boiled for 2 minutes until the agar is completely melted, filtered through a cotton filter, poured into 9 ml sterile tubes and into 50.0 ml, 100 ml vials, sterilized for 30 minutes at 112 o C.
Перед употреблением среду регенерируют (кипятят на водяной бане в течение 45 мин). Before use, the medium is regenerated (boiled in a water bath for 45 minutes).
Перед употреблением среду регинирируют (кипятят на водяной бане в течение 10 мин и остужают под струей холодной воды). Before use, the medium is regionalized (boiled in a water bath for 10 minutes and cooled under a stream of cold water).
Для контроля качества среды использовали культуру второй генерации лиофилизированного тест-штамма Bifidobacterium bifidum-I, полученного из ГИСК им. Л. А. Тарасевича. To control the quality of the environment used the culture of the second generation of the lyophilized test strain of Bifidobacterium bifidum-I, obtained from GISK them. L.A. Tarasevich.
При получении первой генерации маточной культуры тест-штамм стерильно вскрывали и в ампулу пастерованной пипеткой вносили 5 мл стерильного 0,85 % раствора хлористого натрия. Upon receipt of the first generation of the uterine culture, the test strain was sterilely opened and 5 ml of a sterile 0.85% sodium chloride solution was introduced into the ampoule with a pasteurized pipette.
По 1,0 мл микробной взвеси пересевали в пробирки с 9 мл предлагаемой и контрольной средами и титровали каждую среду до разведения 10-5 для определения жизнеспособности культуры В.bifidum- 1. Пипетку с культурой опускали на дно пробирки со средой и постепенно освобождали культуру, перемешивая содержимое пробирки, не аэрируя. В процессе разведения перенос микробной взвеси в следующую пробирку производили новой стерильной пипеткой вместимостью 1 мл.1.0 ml of the microbial suspension was transferred to test tubes with 9 ml of the proposed and control media and titrated each medium to a dilution of 10 -5 to determine the viability of the B. bifidum-1 culture. The culture pipette was lowered to the bottom of the test tube with medium and the culture was gradually released, mixing the contents of the tube without aerating. During the dilution process, the microbial suspension was transferred to the next test tube using a new sterile pipette with a capacity of 1 ml.
Через 48-72 ч инкубации при (37±1)oС учитывали рост культуры по 4-бальной системе. Затем производили титрование каждой культуры до разведения 10-5 из первых пробирок в соответствующих средах. Дополнительно выращивали культуры (2-я генерация) при той же температуре при инкубации (48±1) ч. После инкубации определяли визуально характер роста культуры В. bifidum-1, учитывали их количество в разведениях с изолированным ростом колоний.After 48-72 h of incubation at (37 ± 1) o С, the growth of the culture according to the 4-point system was taken into account. Then titration of each culture was carried out before dilution of 10 -5 from the first tubes in the respective media. Additionally, cultures were grown (2nd generation) at the same temperature during incubation (48 ± 1) h. After incubation, the growth pattern of B. bifidum-1 culture was visually determined, and their number in dilutions with isolated colony growth was taken into account.
Для культуры бифидобактерий характерен рост колоний в полужидкой среде в виде штрихов размером от 3 и более мм. The culture of bifidobacteria is characterized by the growth of colonies in a semi-liquid medium in the form of strokes from 3 mm or more in size.
Пример 2. Отличается от примера 1 тем, что в 1 л воды растворяют экстракт хлебных дрожжей в таком же (5,0) г количестве вместо экстракта кормовых дрожжей. Далее согласно примеру 1. Example 2. It differs from example 1 in that the extract of bread yeast in the same (5.0) g amount is dissolved in 1 liter of water instead of the extract of feed yeast. Further according to example 1.
Пример 3. Отличается от примера 1,2 тем, что в 1,0 л воды растворяют 25,0 г питательного бульона, 20,0 Д (+) глюкозы, 6,5 г экстракта кормовых дрожжей, 0,55 г цистеина, 0,15 г железа сернокислого 7-водного, 1,7 г агара микробиологического, 1,0 г натрия лимоннокислого трехзамещенного, 1,0 г соды кальцинированной. Далее согласно примеру 1. Example 3. It differs from example 1.2 in that 25.0 g of nutrient broth, 20.0 D (+) glucose, 6.5 g of feed yeast extract, 0.55 g of cysteine, 0 are dissolved in 1.0 l of water. 15 g of iron sulfate 7-aqueous, 1.7 g of microbiological agar, 1.0 g of sodium trisodium citrate, 1.0 g of soda ash. Further according to example 1.
Пример 4. Отличается от примера 3 тем, что в 1,0 л воды растворяют экстракт хлебных дрожжей в таком же (6,5 г) количестве вместо экстракта кормовых дрожжей. Далее согласно примеру 1. Example 4. It differs from example 3 in that the extract of bread yeast in the same amount (6.5 g) is dissolved in 1.0 l of water instead of the extract of feed yeast. Further according to example 1.
Пример 5. Отличается от примера 1 и 3 тем, что в 1,0 л воды растворяют 30,0 г питательного бульона, 25,0 г Д (+) глюкозы, 8,0 г экстракта кормовых дрожжей, 0,7 г цистеина, 0,18 г железа сернокислого 7-водного, 2,0 г агара микробиологического, 1,2 г натрия лимоннокислого трехзамещенного, 1,2 г соды кальцинированной. Далее согласно примеру 1. Example 5. It differs from examples 1 and 3 in that 30.0 g of nutrient broth, 25.0 g of D (+) glucose, 8.0 g of fodder yeast extract, 0.7 g of cysteine are dissolved in 1.0 l of water, 0.18 g of 7-aqueous iron sulfate, 2.0 g of microbiological agar, 1.2 g of trisubstituted sodium citrate, 1.2 g of soda ash. Further according to example 1.
Пример 6. Отличается от примера 5 тем, что в 1 л воды растворяют экстракт хлебных дрожжей в таком же (8,0) г количестве вместо экстракта кормовых дрожжей. Далее согласно примеру 1. Example 6. It differs from example 5 in that the extract of bread yeast in the same (8.0) g amount is dissolved in 1 liter of water instead of the extract of feed yeast. Further according to example 1.
Результаты биологического контроля предлагаемой и контрольной сред представлены в таблице. The results of the biological control of the proposed and control environments are presented in the table.
Из таблицы видно, что предлагаемая среда обеспечивала типичный рост маточной культуры В. bifidum-1 и обладала лучшими вегетирующими свойствами по сравнению с контрольной средой. The table shows that the proposed environment provided a typical growth of the uterine culture of B. bifidum-1 and had better vegetative properties compared to the control environment.
Предлагаемая среда экономически выгодна, проста в приготовлении, не требует дополнительных затрат в приготовлении. Использование ее в практике здравоохранения будет способствовать улучшению диагностики дисбактериоза кишечника и правильной тактики его лечения. The proposed environment is economically viable, easy to prepare, does not require additional costs in the preparation. Using it in healthcare practice will help to improve the diagnosis of intestinal dysbiosis and the correct tactics of its treatment.
БИБЛИОГРАФИЧЕСКИЕ ДАННЫЕ
1. Калина Т.Э. Автореферат (Ростов-на-Дону), 1995 г.BIBLIOGRAPHIC DATA
1. Kalina T.E. Abstract (Rostov-on-Don), 1995
2. Богданов В.М. Микробиология молока и молочных продуктов. - М.: Пищевая промышленность, 1969 г., с. 296. 2. Bogdanov V.M. Microbiology of milk and dairy products. - M.: Food Industry, 1969, p. 296.
3. Эпштейн-Литвак Р. В. Методические рекомендации. Вильшанская Ф.Л. (Бактериологическая диагностика дисбактериоза кишечника). - М., 1977 г. 3. Epstein-Litvak R. V. Methodical recommendations. Vilshanskaya F.L. (Bacteriological diagnosis of intestinal dysbiosis). - M., 1977
4. Эрвольд Т.М., Перфильев Г.Д., Гудков А.В., Белова Г.А. Автор.свид-во 789580, кл. С 12 N 1/20, 23.12.80.0 4. Ervold T. M., Perfiliev G. D., Gudkov A. V., Belova G. A. Author: certificate 789580, class C 12 N 1/20, 12.23.80.0
Claims (1)
Питательный бульон сухой - 20,0-30,0
Д(+) глюкоза - 15,0-25,0
Экстракт кормовых или хлебных дрожжей сухой - 5,0-8,0
Цистеин - 0,45-0,7
Железо сернокислое 7-водное - 0,13-0,18
Натрий лимоннокислый трехзамещенный - 0,8-1,2
Агар микробиологический - 1,5-2,0
Сода кальцинированная - 0,8-1,2Culture medium for the cultivation and isolation of bifidobacteria, containing a source of nitrogenous nutrition, a source of B vitamins, D (+) glucose, cysteine, trisubstituted sodium citrate, 7-hydrous iron sulfate, microbiological agar, characterized in that it additionally contains distilled water, soda calcined, as a source of nitrogen nutrition - dry nutrient broth, as a source of B vitamins - extract of feed or bread yeast in the following ratio of components, g / l distill th e water:
Dry nutrient broth - 20.0-30.0
D (+) glucose - 15.0-25.0
Dry or fodder yeast extract - 5.0-8.0
Cysteine - 0.45-0.7
Iron sulfate 7-water - 0.13-0.18
Sodium citrate trisubstituted - 0.8-1.2
Microbiological agar - 1.5-2.0
Soda ash - 0.8-1.2
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001121411/13A RU2203944C2 (en) | 2001-07-30 | 2001-07-30 | Nutrient medium for culturing and isolation of bifidobacteria |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001121411/13A RU2203944C2 (en) | 2001-07-30 | 2001-07-30 | Nutrient medium for culturing and isolation of bifidobacteria |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2001121411A RU2001121411A (en) | 2003-04-10 |
RU2203944C2 true RU2203944C2 (en) | 2003-05-10 |
Family
ID=20252221
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2001121411/13A RU2203944C2 (en) | 2001-07-30 | 2001-07-30 | Nutrient medium for culturing and isolation of bifidobacteria |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2203944C2 (en) |
-
2001
- 2001-07-30 RU RU2001121411/13A patent/RU2203944C2/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Бифидобактерии и их использование в клинике, медицинской промышленности и сельском хозяйстве. Сборник научных трудов МНИИЭМ им. Г.Н.Габричевского. - М., 1986, с.49, 79-82. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN106754470A (en) | The Lactobacillus rhamnosus in one plant of lacto source and its application | |
CN1387564A (en) | Lactobacillus helvetius producing antihypertensive di- and tripeptides | |
JP5963389B2 (en) | Method for preparing highly active lactic acid bacteria starter and method for producing fermented milk using the starter | |
CN101153316B (en) | Method for detecting lactobacillus casei in probiotic bacteria milk product | |
RU2580028C1 (en) | Heavy nutrient medium for the cultivation of brucella | |
RU2518304C2 (en) | TWO-PHASE NUTRITIONAL MEDIUM FOR THIN LAYER CULTIVATION OF Helicobacter pylori AND METHOD OF ITS REALISATION | |
RU2203944C2 (en) | Nutrient medium for culturing and isolation of bifidobacteria | |
JP2015126741A (en) | Method for producing fermented milk | |
AU616242B2 (en) | Method for making sour-milk products | |
Ramadhan et al. | Isolation and selection of proteolytic lactic acid bacteria from colostrum of dairy cattle | |
RU2309767C1 (en) | Method for manufacturing vaccine against pseudomonosis in swine | |
RU2540022C2 (en) | Method of obtaining bacterial concentrate of bifidobacteria in liquid form | |
RU2213779C2 (en) | Nutrient medium for isolation of lactobacilli | |
KR910007851B1 (en) | New character & use for lactobacillus spp | |
RU2100936C1 (en) | Method of preparing the ferment for making the curative-prophylactic lactic acid product and a method of its making | |
RU2366699C2 (en) | Method for making bifidus bacteria biomass | |
CN109355226A (en) | Zengjing Granule for Legionella and the biphasic culture and preparation method thereof that is separately cultured | |
RU2158302C2 (en) | Nutrient medium for bifidobacterium and lactobacterium culturing | |
Sahu et al. | Isolation and characterization of Probiotic from Fermented Rice, Idly and Dosa batter and screening of antimicrobial activity | |
RU2100029C1 (en) | Medium for culturing bacterium-symbiont bacillus pulvifaciens or bacillus subtilis - a producer of probiotic | |
SU863639A1 (en) | Bifidobacterium adoescentis ms-42 strain employed for production of sour-milk productts and method of preparing leaven of bifidobacteria for sour-milk products | |
RU2748808C1 (en) | Dense universal nutrient medium for growing brucella biomass | |
RU1549227C (en) | Method for producing a complex of lytic enzymes | |
RU2300560C2 (en) | Method for preparing nutrient medium for culturing yersinia enterocolitica | |
RU2299237C2 (en) | Nutrient medium for isolation of fungi of genus candida |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PC43 | Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions |
Effective date: 20180716 |
|
PD4A | Correction of name of patent owner |