RU2518304C2 - TWO-PHASE NUTRITIONAL MEDIUM FOR THIN LAYER CULTIVATION OF Helicobacter pylori AND METHOD OF ITS REALISATION - Google Patents
TWO-PHASE NUTRITIONAL MEDIUM FOR THIN LAYER CULTIVATION OF Helicobacter pylori AND METHOD OF ITS REALISATION Download PDFInfo
- Publication number
- RU2518304C2 RU2518304C2 RU2012125394/10A RU2012125394A RU2518304C2 RU 2518304 C2 RU2518304 C2 RU 2518304C2 RU 2012125394/10 A RU2012125394/10 A RU 2012125394/10A RU 2012125394 A RU2012125394 A RU 2012125394A RU 2518304 C2 RU2518304 C2 RU 2518304C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- agar
- helicobacter pylori
- phase
- incubator
- liquid
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к области микробиологии и может быть использовано в медицине.The invention relates to the field of microbiology and can be used in medicine.
Открытие H.pylori в 1982 году явилось отправной точкой в формировании новой концепции этиологии гастродуоденальных заболеваний. В настоящее время общепринятым фактом является роль Н. pylori в патогенезе хронического гастрита. В 1990 году эти бактерии официально включены в международную классификацию как хеликобактерный гастрит или гастрит, ассоциированный с хеликобактериозом, гастрит типа В. С инфицированием H.pylori ассоциировано около 70-80% случаев гастритов, более 70% случаев язвенной болезни желудка, 90% язвенной болезни двенадцатиперстной кишки, повышен риск развития рака желудка и B-клеточной лимфомы. В научных докладах последних лет активно обсуждается вопрос о связи H.pylori с внежелудочными проявлениями (заболеваниями кишечника, гепатобилиарной системы, поджелудочной железы), а также поражениями сердечно-сосудистой системы, опорно-двигательного аппарата, кожи и т.д.The discovery of H. pylori in 1982 was the starting point in the formation of a new concept of the etiology of gastroduodenal diseases. Currently, the generally accepted fact is the role of H. pylori in the pathogenesis of chronic gastritis. In 1990, these bacteria were officially included in the international classification as Helicobacter pylori gastritis or gastritis associated with Helicobacteriosis, type B gastritis. About 70-80% of cases of gastritis, more than 70% of cases of gastric ulcer, 90% of peptic ulcer are associated with H. pylori infection duodenum, increased risk of developing cancer of the stomach and B-cell lymphoma. Recent scientific reports actively discuss the relationship of H. pylori with extragastric manifestations (diseases of the intestine, hepatobiliary system, pancreas), as well as lesions of the cardiovascular system, musculoskeletal system, skin, etc.
Для правильной и своевременной постановки диагноза хеликобактериоза разработано множество методов, сгруппированных с использованием нескольких параметров для классификации. В зависимости от цели, материала, техники исполнения их подразделяют на скрининговые и подтверждающие; инвазивные и неинвазивные; прямые и косвенные. Одним из методов лабораторной диагностики H.pylori-инфекции является бактериологическое исследование - выделение, идентификация, изучение биологических свойств возбудителя. Трудоемкость и сложность выделения культуры H.pylori ограничивают применение этого метода в практике практического здравоохранения, но он остается единственным для фенотипического определения чувствительности штаммов к антибактериальным препаратам.For the correct and timely diagnosis of Helicobacter pylori, many methods have been developed, grouped using several parameters for classification. Depending on the purpose, material, technique, they are divided into screening and confirming; invasive and non-invasive; direct and indirect. One of the methods of laboratory diagnosis of H. pylori infection is a bacteriological study - isolation, identification, study of the biological properties of the pathogen. The complexity and complexity of isolating the H. pylori culture limit the application of this method in practical healthcare practice, but it remains the only one for the phenotypic determination of the sensitivity of strains to antibacterial drugs.
Для культивирования H.pylori предложены различные питательные среды, обязательными компонентами которых являются базовый агар, ростовые добавки, а для селективных - ингибиторы роста сопутствующей микрофлоры. Большинство базовых агаров удовлетворяют требованиям, предъявляемым для культивирования H.pylori, например колумбийский агар, эритрит агар, сердечно-мозговой агар. H.pylori очень прихотливый микроорганизм, требующий дополнительных факторов роста (витаминов, микроэлементов) [1]. Обязательным компонентом среды должна быть добавка 5-10% крови или сыворотки животных (лошади, барана). Использование крови человека ограничено наличием у большинства взрослого населения защитных антител, способных ингибировать рост H.pylori [2]. При этом эритроциты могут быть лизированы, чтобы ростовые вещества могли быть использованы быстрее, что достигается при применении шоколадного агара. Разработана питательная среда, не содержащая сыворотку и ткани животных -SATFM (serum - animal tissue - free medium), которая может быть использована как для выделения чистой культуры (плотная), так и для транспортировки (полужидкая) с разницей в процентном содержании агара [3]. Н.В.Сафоновой и А.Б.Жебруном (1995) предложена среда, приготовленная на основе эритрит-агара, в которую ех tempore вносят кровь, гемин и селективную добавку [4]. М.М.Меджидовым и коллегами (2000) разработан хеликобактер-агар, содержащий селективную добавку, состоящую из антибактериальных и противогрибковых препаратов, и кровь, вносимые ex tempore [5]. А.Б.Жебрун с коллективом авторов (2002) рекомендуют использовать в качестве основы питательной среды колумбийский агар или сердечно-мозговой агар с добавлением 5-7% лошадиной сыворотки или 5-7% дефибринированной лошадиной крови и 1% раствора изовиталекса [6]. Наиболее близким к заявляемому является способ культивирования H.pylori на шоколадном агаре, приготовленном на основе среды Колумбия агар с добавлением 2,5% донорской крови. Затем к охлажденной до 50°С питательной среде авторы предлагают добавлять 2,5% гемолизированной донорской крови. Способ обеспечивает более быстрое культивирование на более дешевой среде, но не лишен ряда недостатков [7]. Недостатком прототипа на взгляд авторов является использование донорской крови, что может снижать частоту высеваемости из-за наличия в донорской крови антител к H.pylori, оказывающих ингибирующее действие. Особенно остро стоит проблема при получении чистой культуры, когда после пересева изолированных колоний для выделения чистой культуры вырастают единичные колонии, и биологического материала оказывается недостаточно для идентификации и постановки антибиотикограммы.Various culture media have been proposed for the cultivation of H. pylori, the essential components of which are basic agar, growth additives, and for selective ones, growth inhibitors of concomitant microflora. Most basic agars satisfy the requirements for cultivation of H. pylori, for example, Colombian agar, erythritol agar, cardiac cerebral agar. H. pylori is a very whimsical microorganism that requires additional growth factors (vitamins, trace elements) [1]. An obligatory component of the medium should be the addition of 5-10% of the blood or serum of animals (horses, rams). The use of human blood is limited by the presence of protective antibodies in most adults that can inhibit the growth of H. pylori [2]. In this case, red blood cells can be lysed so that growth substances can be used faster, which is achieved by using chocolate agar. A nutrient medium containing no serum and animal tissue -SATFM (serum - animal tissue - free medium) has been developed, which can be used both for isolation of a pure culture (dense) and for transportation (semi-liquid) with a difference in the percentage of agar [3 ]. N.V.Safonova and A.B.Zhebrun (1995) proposed a medium prepared on the basis of erythritol agar, into which blood, hemin and a selective additive are added ex tempore [4]. M.M. Majidov and colleagues (2000) developed Helicobacter agar containing a selective additive consisting of antibacterial and antifungal drugs and blood introduced ex tempore [5]. AB Zhebrun with a team of authors (2002) recommend using Colombian agar or cardiac cerebral agar supplemented with 5-7% horse serum or 5-7% defibrinated horse blood and 1% isovitalex solution as the basis of the nutrient medium [6]. Closest to the claimed is a method of cultivating H. pylori on chocolate agar prepared on the basis of Columbia agar medium with the addition of 2.5% donated blood. Then, to a nutrient medium cooled to 50 ° C, the authors propose adding 2.5% of hemolized donated blood. The method provides faster cultivation in a cheaper environment, but is not without a number of disadvantages [7]. The disadvantage of the prototype in the opinion of the authors is the use of donor blood, which can reduce the frequency of seeding due to the presence of antibodies to H. pylori in the donor blood, which have an inhibitory effect. Particularly acute is the problem of obtaining a pure culture, when, after reseeding isolated colonies, isolated colonies grow to isolate a pure culture, and biological material is not enough to identify and formulate an antibioticogram.
Недостатком способов культивирования на твердых питательных средах является:The disadvantage of cultivation methods on solid nutrient media is:
- невысокая эффективность высеваемости хеликобактеров при первичной изоляции,- low sowing efficiency of Helicobacter pylori during primary isolation,
- при дальнейших пересевах для получения чистых культур штаммы теряются, всхожесть ослабевает и утрачивается,- with further reseeding to obtain pure cultures, the strains are lost, germination is weakened and lost,
- скудность роста чистых культур приводит к невозможности определения чувствительности выделенного штамма к антибиотикам и химиопрепаратам.- the scarcity of growth of pure cultures leads to the inability to determine the sensitivity of the selected strain to antibiotics and chemotherapy.
Проблему накопления культуры можно решить с помощью использования жидких сред. Сходный с твердыми средами состав (основы, ростовые и селективные добавки) используется и в жидких средах, хотя процесс культивирования более трудоемок и в практических лабораториях не нашел широкого применения [8]. Предложены различные основы жидких сред: Brucella - бульон, сердечно-мозговой бульон, соевый бульон с ростовыми добавками (сыворотка, дрожжевой экстракт, циклодекстрин и другие) и антимикробными препаратами (ванкомицин, налидиксовая кислота, амфотери[9; 10]. Предложена среда, имеющая постоянный состав витаминов и микроэлементов без добавления сыворотки - serum - free Ham's F-12 [11]. При росте на жидких питательных средах бактерии имеют типичную извитую форму, подвижны и биохимически активны, полноценны в антигенном отношении [12]. H.pylori растет в микроаэрофильной атмосфере, состоящей из 5% О2, 5-10% СО2, 85-90% N2. Различные системы могут быть использованы для создания микроаэрофильных условий. Среди них - микроаэробный бокс или инкубатор, в котором адекватная атмосфера поддерживается автоматически. Такую атмосферу можно создать в микроанаэростате типа GasPac 100 или GasPac 150 Anaerobic Systems фирмы BBL с использованием газогенераторных пакетов типа СатруРас фирмы BBL или Oxoid, которые начинают продуцировать газовые смеси при добавлении воды, которая также создает необходимую для роста H.pylori влажность. Но при культивировании в жидкой среде сложность может представлять создание и поддержание микроаэрофильных условий. Эта задача может быть решена постоянным контролированием микроаэробной атмосферы в пробирках путем перемешивания на специальных платформах под углом 20° со скоростью вращения 120 оборотов в минуту [13] или культивирования во флаконах с отверстиями для доступа газов, для чего разработаны мини-биореакторы для принудительного введения в атмосферу культивирования углекислого газа через трубки, погруженные во флаконы с жидкой питательной средой [14].The problem of culture accumulation can be solved by using liquid media. A composition similar to solid media (foundations, growth and selective additives) is also used in liquid media, although the cultivation process is more time-consuming and has not been widely used in practical laboratories [8]. Various bases of liquid media have been proposed: Brucella - broth, cardiac broth, soy broth with growth additives (serum, yeast extract, cyclodextrin and others) and antimicrobial agents (vancomycin, nalidixic acid, amphoterium [9, 10]. A medium having the constant composition of vitamins and minerals without the addition of serum is serum-free Ham's F-12 [11]. When grown on liquid nutrient media, bacteria have a typical tortuous shape, are mobile and biochemically active, are fully antigenic [12]. H. pylori grows in microaerophile atmosphere consisting of 5% O 2 , 5-10% CO 2 , 85-90% N 2. Various systems can be used to create microaerophilic conditions, among them a microaerobic box or an incubator in which an adequate atmosphere is maintained automatically. the atmosphere can be created in a BBL type GasPac 100 or GasPac 150 Anaerobic Systems microanaerostat using BBL or Oxoid type gas generator bags, which begin to produce gas mixtures when water is added, which also creates the humidity needed for H. pylori growth. But when cultured in a liquid medium, the creation and maintenance of microaerophilic conditions can be difficult. This problem can be solved by constant monitoring of the microaerobic atmosphere in test tubes by mixing on special platforms at an angle of 20 ° with a rotation speed of 120 revolutions per minute [13] or culturing in bottles with openings for accessing gases, for which mini-bioreactors for forced injection into the atmosphere of carbon dioxide cultivation through tubes immersed in bottles with a liquid nutrient medium [14].
Недостатки способов культивирования на жидких питательных средах:The disadvantages of the methods of cultivation in liquid nutrient media:
- сложность создания и поддержания микроаэрофильных условий в жидких питательных средах,- the complexity of creating and maintaining microaerophilic conditions in liquid nutrient media,
- необходимость использования дополнительного оборудования (шейкеров, вращательных платформ, биореакторов и т.д.) для принудительного введения углекислого газа.- the need to use additional equipment (shakers, rotary platforms, bioreactors, etc.) for the forced introduction of carbon dioxide.
Задачей изобретения является разработка способа тонкослойного культивирования Helicobacter pylori с использованием двухфазной питательной среды, доступного для бактериологических лабораторий, не оснащенных специальным оборудованием. Достигаемый технический результат заключается в отсутствии необходимости использования дополнительного оборудования для поддержания микроаэрофильных условий в жидкой фазе среды, использовании стандартных питательных сред (Колумбия агара и бульона Шедлера) и в том, что происходит накопление чистой культуры H.pylori в количестве, достаточном для морфологической, биохимической идентификации и постановки антибиотикограммы.The objective of the invention is to develop a method for thin-layer cultivation of Helicobacter pylori using a two-phase nutrient medium available for bacteriological laboratories that are not equipped with special equipment. The technical result achieved is the absence of the need to use additional equipment to maintain microaerophilic conditions in the liquid phase of the medium, the use of standard nutrient media (Colombia agar and Shedler broth) and the accumulation of pure H. pylori culture in an amount sufficient for morphological, biochemical identification and formulation of antibiograms.
Некоторые микроорганизмы с трудом удается выращивать на твердых или жидких питательных средах, но они гораздо более активно растут и размножаются в двухфазных питательных средах, состоящих из комбинации твердой и жидкой фаз. Возможным объяснением может быть то, что подобные питательный среды создают условия роста и размножения, приближенные к естественным, когда часть жизненного цикла микроба требует твердой питательной среды, а другие стадии жизненного цикла проходят в жидкой питательной среде. Это, в частности, свойственно эпителиальным патогенам, к которым относится H.pylori, частично размножающимся к клетках слизистых оболочек, а частично - на поверхности слизистой в просвете органа. При этом состав компонентов жидкой и твердой фазы питательной среды определяется особенностями биологии конкретного микроорганизма.Some microorganisms can hardly be grown on solid or liquid nutrient media, but they grow and multiply much more actively in two-phase nutrient media consisting of a combination of solid and liquid phases. A possible explanation may be that such nutrient media create conditions of growth and reproduction that are close to natural, when part of the microbial life cycle requires a solid nutrient medium, and other stages of the life cycle take place in a liquid nutrient medium. This, in particular, is characteristic of epithelial pathogens, which include H. pylori, which partially reproduce to the cells of the mucous membranes, and partially - on the surface of the mucosa in the lumen of the organ. Moreover, the composition of the components of the liquid and solid phases of the nutrient medium is determined by the biology of a particular microorganism.
Так, патентом РФ №2272834 (15) защищена питательная двухфазная среда для выделения одноклеточных микроорганизмов - трихомонад. Патентом РФ №2412991(16) защищена двухфазная питательная среда для культивирования криптоспоридий, а патент РФ №2346052 (17) предлагает двухфазную питательную среду для выделения бруцелл.So, RF patent No. 2272834 (15) protects a nutrient two-phase medium for isolation of unicellular microorganisms - Trichomonas. RF patent No. 2412991 (16) protects a two-phase nutrient medium for the cultivation of cryptosporidia, and RF patent No. 2346052 (17) provides a two-phase nutrient medium for the isolation of brucella.
Авторы заявляемого изобретения предлагают следующий состав питательной среды. Двухфазная питательная среда состоит из двух фаз: твердой и жидкой. Твердая фаза представляет собой шоколадный агар, приготовленный на основе Колумбия агара с 5% крови барана.The authors of the claimed invention offer the following composition of the nutrient medium. A two-phase nutrient medium consists of two phases: solid and liquid. The solid phase is chocolate agar prepared on the basis of Columbia agar with 5% ram blood.
Состав Колумбия агара:Composition of Colombia agar:
Приготовление:Cooking:
Размешать 44,0 г порошка в 1000 мл дистиллированной воды. Прокипятить для полного растворения частиц. Стерилизовать автоклавированием при 1,1 атм (121°С) в течение 15 мин. Остудить до 50°С и асептично внести стерильную дефибринированную кровь барана (5% от общего объема). Агар слегка подогревают на слабом огне, не доводя до кипения. Тщательно перемешать и разлить среду в стерильные чашки Петри по 14 мл. При приготовлении шоколадного агара следует обратить особое внимание на правильный подогрев: правильно приготовленный агар имеет светло-коричневую окраску схожую с цветом молочного шоколада. При слишком слабом подогреве агар будет иметь кирпично-красный цвет, а при сильном - темно-коричневый.Stir 44.0 g of powder in 1000 ml of distilled water. Boil to completely dissolve the particles. Sterilize by autoclaving at 1.1 atm (121 ° C) for 15 minutes. Cool to 50 ° C and aseptically introduce sterile defibrinated sheep blood (5% of the total volume). The agar is slightly heated over low heat, not boiling. Mix thoroughly and pour the medium into sterile 14 ml Petri dishes. When preparing chocolate agar, special attention should be paid to proper heating: correctly prepared agar has a light brown color similar to the color of milk chocolate. If the heating is too weak, the agar will have a brick red color, and if it is strong, it will be dark brown.
Преимущества используемой твердой фазыThe advantages of the used solid phase
Колумбия агар отличается разнообразием включенных в рецептуру среды источников белкового питания. Комбинация пептонов обеспечивает на ней быстрый и обильный рост очень прихотливых микроорганизмов. В результате приготовления шоколадного агара из эритроцитов экстрагируются гемин, НАД, и ростовые факторы гемофильными и прихотливыми бактериями, в том числе и H.pylori, используются быстрее.Colombia agar is characterized by a variety of protein nutrition sources included in the formulation of the medium. The combination of peptones provides fast and plentiful growth of very fastidious microorganisms on it. As a result of the preparation of chocolate agar, hemin, NAD are extracted from red blood cells, and growth factors are used faster by hemophilic and whimsical bacteria, including H. pylori.
Жидкая фаза представляет собой бульон Шедлера, обогащенный 10% сывороткой крупного рогатого скота.The liquid phase is a Shedler broth enriched with 10% cattle serum.
Состав бульона Шедлера:The composition of the Shedler broth:
Приготовление:Cooking:
Размешать 28,41 г порошка в 1000 мл дистиллированной воды. Прокипятить с частым помешиванием для полного растворения частиц. Стерилизовать автоклавированием при 1,1 атм (121°С) в течение 15 мин. Остудить и асептично добавить до 10% от общего объема стерильной сыворотки крупного рогатого скота. Перед розливом среду тщательно перемешать. Избегать перегревания среды или ее окисления на свету, так как это приводит к задержке роста бактерий.Stir 28.41 g of powder in 1000 ml of distilled water. Boil with frequent stirring to completely dissolve the particles. Sterilize by autoclaving at 1.1 atm (121 ° C) for 15 minutes. Cool and aseptically add up to 10% of the total volume of sterile cattle serum. Stir the medium thoroughly before bottling. Avoid overheating of the medium or its oxidation in the light, as this leads to a delay in the growth of bacteria.
Преимущества используемой жидкой фазы:The advantages of the used liquid phase:
Данная среда является прекрасной основой, в которую для выделения прихотливых анаэробных, в том числе и капнофильных бактерий, можно добавлять кровь или другие обогатительные добавки. Комбинация гидролизата казеина, протеозопептона, папаинового перевара соевой муки, дрожжевого экстракта и L-цистина обеспечивает присутствие азотистых питательных веществ, витаминов и других факторов, необходимых для роста микроорганизмов. Глюкоза является источником энергии. Гемин и витамин К стимулируют рост прихотливых микроорганизмов.This medium is an excellent basis for adding blood or other enrichment supplements to the selection of fastidious anaerobic bacteria, including capnophilic bacteria. The combination of casein hydrolyzate, proteozopeptone, papain digest of soy flour, yeast extract and L-cystine provides the presence of nitrogenous nutrients, vitamins and other factors necessary for the growth of microorganisms. Glucose is a source of energy. Gemin and vitamin K stimulate the growth of whimsical microorganisms.
Авторы предлагают следующий способ тонкослойного культивирования H.pylori на двухфазной питательной среде.The authors propose the following method of thin-layer cultivation of H. pylori on a two-phase nutrient medium.
1 этап. Первичный посев исследуемого материла (биоптаты слизистой оболочки желудка) производят на колумбийский агар с добавлением 5% крови барана. Термостатирование в микроаэрофильных условиях (СО2-инкубаторе) при 37°С в течение 3-5 дней при повышенной влажности.Stage 1. The primary inoculation of the test material (biopsy specimens of the gastric mucosa) is performed on Colombian agar with the addition of 5% ram blood. Thermostating under microaerophilic conditions (CO 2 incubator) at 37 ° C for 3-5 days at high humidity.
2 этап. Оценка результатов посева. Выявление подозрительных колоний (мелкие, прозрачные диаметром 1-2 мм сходные с «капельками росы»). Пересев отобранной колонии на шоколадный агар для получения чистой культуры. Инкубирование в микроаэрофильных условиях при 37°С в течение 3-5 дней.2 stage. Assessment of the results of sowing. Detection of suspicious colonies (small, transparent with a diameter of 1-2 mm similar to "dew drops"). Reseeding the selected colony on chocolate agar to obtain a pure culture. Incubation under microaerophilic conditions at 37 ° C for 3-5 days.
3 этап. Накопление чистой культуры. В случае скудного роста единичные колонии рассеивают петлей по поверхности плотной среды и заливают жидкой питательной средой, приготовленной на основе бульона Шедлера, обогащенным 10% сывороткой крупного рогатого скота. Оптимальное количество жидкой среды, наливаемой в чашку Петри диаметром 90 мм, составляет 3,5 мл (соотношение твердой и жидкой фаз 4:1). Инкубирование в микроаэрофильных условиях 37°С в течение 3 дней.3 stage. The accumulation of pure culture. In the case of sparse growth, single colonies are scattered by a loop on the surface of a dense medium and poured with a liquid nutrient medium prepared on the basis of Shedler broth enriched with 10% cattle serum. The optimal amount of liquid medium poured into a Petri dish with a diameter of 90 mm is 3.5 ml (the ratio of solid and liquid phases is 4: 1). Incubation under microaerophilic conditions of 37 ° C for 3 days.
4 этап. Идентификация выделенной культуры, выросшей в жидкой фазе.4th stage. Identification of isolated culture grown in the liquid phase.
Изучение морфологических свойств. Из культуральной жидкости готовят фиксированные мазки, окрашивают по Граму и препарат «раздавленная» или «висячая капля» для определения подвижности.The study of morphological properties. Fixed smears are prepared from the culture fluid, stained according to Gram and the drug “crushed” or “hanging drop” to determine mobility.
Изучение биохимических свойств. Постановка тестов на каталазу, оксидазу, уреазу.The study of biochemical properties. Testing for catalase, oxidase, urease.
Постановка антибиотикограммы.Setting antibiogram.
Таким образом, заявляемый авторами изобретения способ тонкослойного культивирования Helicobacter pylori предполагает использование преимущества жидкой фазы по сравнению с твердой фазой для накопления культуры, а ее тонкослойное распределение поддерживает микроаэрофильные условия в толще жидкости без дополнительного оборудования.Thus, the inventive method of thin-layer cultivation of Helicobacter pylori involves the advantage of the liquid phase compared with the solid phase for culture accumulation, and its thin-layer distribution supports microaerophilic conditions in the thickness of the liquid without additional equipment.
ЛитератураLiterature
1. Jiang X., Doyle M.P. Growth supplements for Helicobacter pylori. // J Clin Microbiol. - 2000. - Vol.38. - P.1984-1987.1. Jiang X., Doyle M.P. Growth supplements for Helicobacter pylori. // J Clin Microbiol. - 2000. - Vol. 38. - P.1984-1987.
2. Westblom T.U., Madan E., Riff B.R. Improved growth of Helicobacter pylori using a liquid medium supplemented with human serum. // Ital. J. Gastroenterol. - 1991. - Vol.29(Suppl. 2). - P.48.2. Westblom T.U., Madan E., Riff B.R. Improved growth of Helicobacter pylori using a liquid medium supplemented with human serum. // Ital. J. Gastroenterol. - 1991 .-- Vol.29 (Suppl. 2). - P. 48.
3. Dierikx C.M., Martodihardjo J., Kuipers E.J. et al. Serum and animal tissue free medium for transport and growth of Helicobacter pylori. // Immunol. Med. Microbiol. - 2007. - Vol.50. - P.239-243.3. Dierikx C. M., Martodihardjo J., Kuipers E.J. et al. Serum and animal tissue free medium for transport and growth of Helicobacter pylori. // Immunol. Med. Microbiol. - 2007. - Vol.50. - P.239-243.
4. Сафонова Н.В., Жебрун А.Б. Гастрит, язвенная болезнь и хеликобактериоз. - Реком. для врачей. - Спб. - 1995.4. Safonova N.V., Zhebrun A.B. Gastritis, peptic ulcer and helicobacteriosis. - Recom. for doctors. - SPb. - 1995.
5. Меджидов М.М., Темирханова З.У., Алиева Х.М. и др. Оценка питательной среды для выделения и культивирования Helicobacter pylori. // Журн. микробиол., эпидемиол., иммунол. - 2000. - №2. - С.25-29.5. Mejidov M.M., Temirkhanova Z.U., Aliyeva H.M. et al. Assessment of culture medium for isolation and cultivation of Helicobacter pylori. // Journal. microbiol., epidemiol., immunol. - 2000. - No. 2. - S.25-29.
6. Жебрун А.Б., Александрова В.А., Гончарова Л.Б. др. Диагностика, профилактика и лечение заболеваний, ассоциированных с Helicobacter pylori-инфекцией. (Пособие для врачей). Спб., 2002.6. Zhebrun A.B., Aleksandrova V.A., Goncharova L.B. Diagnosis, prevention and treatment of diseases associated with Helicobacter pylori infection. (Manual for doctors). St. Petersburg, 2002.
7. Червинец В.М., Червинец Л.Ф. Патент на изобретение РФ №2145975 «Способ культивирования Helicobacter pylori». - 2000.7. Chervynets V.M., Chervinets L.F. Patent for the invention of the Russian Federation No. 2145975 "Method for the cultivation of Helicobacter pylori". - 2000.
8. Shahamat M., Mai U.E., Paszko-Kolva С. et al. Evaluation of liquid media for growth of Helicobacter pylori. // J. Clin. Microbiol. - 1991. - Vol.29. - P.2835-2837.8. Shahamat M., Mai U.E., Paszko-Kolva C. et al. Evaluation of liquid media for growth of Helicobacter pylori. // J. Clin. Microbiol. - 1991 .-- Vol.29. - P.2835-2837.
9. Morshed M.G., Karita M., Konishi H. et al. Growth medium containing cyclodextrin and low concentration of horse serum for cultivation of Helicobacter pylori. // Microbiol. Immunol. - 1994. - Vol.38(11). - P.897-900.9. Morshed M.G., Karita M., Konishi H. et al. Growth medium containing cyclodextrin and low concentration of horse serum for cultivation of Helicobacter pylori. // Microbiol. Immunol. - 1994 .-- Vol. 38 (11). - P.897-900.
10. Murano A., Miyake M., Kato J. et al. Enhancement of the growth of Helicobacter pylori in Brucella broth by hydrogen peroxide. // Microbiol. Immunol. - 1999. - 43(11). - P.1009-15.10. Murano A., Miyake M., Kato J. et al. Enhancement of the growth of Helicobacter pylori in Brucella broth by hydrogen peroxide. // Microbiol. Immunol. - 1999 .-- 43 (11). - P.1009-15.
11. Testerman T.L., McGee D.J., Mobley H.L.T. Helicobacter pylori growth and urease detection in the chemically defined medium Ham's F-12 nutrient mixture. // J. Clin. Microbiol. - 2001. - Vol.39. - P.3842-3850.11. Testerman T.L., McGee D.J., Mobley H.L.T. Helicobacter pylori growth and urease detection in the chemically defined medium Ham's F-12 nutrient mixture. // J. Clin. Microbiol. - 2001. - Vol. 39. - P.3842-3850.
12. Lin Y.L., Lee N., Chan E.C. Determination of optimal liquid medium for enzyme expression by Helicobacter pylori. // J. Clin. Pathol. - 1996. - Vol.49. - P.818-820.12. Lin Y. L., Lee N., Chan E.C. Determination of optimal liquid medium for enzyme expression by Helicobacter pylori. // J. Clin. Pathol. - 1996. - Vol. 49. - P.818-820.
13. Xia H.X, English L., Keane C.T. et al. Enhanced cultivation of Helicobacter pylori in liquid media. // J. Clin. Pathol. - 1993. - Vol.46(8). - P.750-753.13. Xia H.X, English L., Keane C.T. et al. Enhanced cultivation of Helicobacter pylori in liquid media. // J. Clin. Pathol. - 1993 .-- Vol. 46 (8). - P.750-753.
14. Secker D.A., Tompkins D.S., Alderson G. Gas-permeable life cell tissue culture flasks give improved growth of Helicobacter pylori in a liquid medium. // J. Clin. Microbiol. - 1991. - Vol.29. - P.1060-1061.14. Secker D.A., Tompkins D.S., Alderson G. Gas-permeable life cell tissue culture flasks give improved growth of Helicobacter pylori in a liquid medium. // J. Clin. Microbiol. - 1991 .-- Vol.29. - P.1060-1061.
15. Патент РФ №2272834.15. RF patent No. 2272834.
16. Патентом РФ №2412991.16. RF patent No. 2412991.
17. Патент РФ №2346052.17. RF patent No. 2346052.
Claims (4)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012125394/10A RU2518304C2 (en) | 2012-06-20 | 2012-06-20 | TWO-PHASE NUTRITIONAL MEDIUM FOR THIN LAYER CULTIVATION OF Helicobacter pylori AND METHOD OF ITS REALISATION |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2012125394/10A RU2518304C2 (en) | 2012-06-20 | 2012-06-20 | TWO-PHASE NUTRITIONAL MEDIUM FOR THIN LAYER CULTIVATION OF Helicobacter pylori AND METHOD OF ITS REALISATION |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2012125394A RU2012125394A (en) | 2013-12-27 |
RU2518304C2 true RU2518304C2 (en) | 2014-06-10 |
Family
ID=49785766
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2012125394/10A RU2518304C2 (en) | 2012-06-20 | 2012-06-20 | TWO-PHASE NUTRITIONAL MEDIUM FOR THIN LAYER CULTIVATION OF Helicobacter pylori AND METHOD OF ITS REALISATION |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2518304C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2678123C1 (en) * | 2017-10-13 | 2019-01-23 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Уральского отделения Российской академии наук | Nutrient environment for restoring number of anaerobic bacteria after low-temperature storage |
Families Citing this family (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN108424867B (en) * | 2018-04-18 | 2021-11-26 | 深圳市伯劳特生物制品有限公司 | Composition and culture medium containing same |
CN114958954A (en) * | 2018-04-18 | 2022-08-30 | 深圳市伯劳特生物制品有限公司 | Helicobacter pylori drug sensitivity detection kit and detection method |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2145975C1 (en) * | 1999-07-19 | 2000-02-27 | Тверская медакадемия | Method of culturing helicobacter pilori |
US20020026035A1 (en) * | 1997-04-01 | 2002-02-28 | Harold Kleanthous | Helicobacter ghpo 1360 and ghpo 750 polypeptides and corresponding polynucleotide molecules |
-
2012
- 2012-06-20 RU RU2012125394/10A patent/RU2518304C2/en active
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US20020026035A1 (en) * | 1997-04-01 | 2002-02-28 | Harold Kleanthous | Helicobacter ghpo 1360 and ghpo 750 polypeptides and corresponding polynucleotide molecules |
RU2145975C1 (en) * | 1999-07-19 | 2000-02-27 | Тверская медакадемия | Method of culturing helicobacter pilori |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
(параграф 0111). SCHAEDLER BROTH (7154), Rev 06, Nov. 2010, Acumedia. [найдено онлайн] [найдено 13.02.2013 по адресу http://www.neogen.com/Acumedia/pdf/ProdInfo/7154 PI.pdf] (весь документ). NEDENSKOV P: "Nutritional requirements for growth of Helicobacter pylori", Appl Environ Microbiol. 1994 Sep;60(9):3450-3. (стр.3452). Микробиологическая диагностика дисбактериоза кишечника. Методические рекомендации. ГУ НИИЭМ им. Н.Ф.Гамалеи РАМН. Москва-2007. [найдено онлайн] [найдено 13.02.2013 по адресу http://www.himedialabs.ru/download/%C4%E8%F1%E1%E0%EA%F2%E5%F0%E8%EE%E7.%20%D0%E5%EA%EE%EC%E5%ED%E4%E0%F6%E8%E8%20%CD%C8%C8%DD%CC%20%E8%EC.%C3%E0%EC%E0%EB%E5%E8.pdf] (стр.52). * |
(цитирован в описании изобретения) * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2678123C1 (en) * | 2017-10-13 | 2019-01-23 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Уральского отделения Российской академии наук | Nutrient environment for restoring number of anaerobic bacteria after low-temperature storage |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2012125394A (en) | 2013-12-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN105567669B (en) | Probiotic microcapsule preparation and preparation method thereof | |
CN105062933A (en) | Lactobacillus reuteri and application thereof | |
CN104651268A (en) | Lactobacillus plantarum and application thereof | |
CN109321505A (en) | A kind of complex microorganism preparations adjusting aquatic livestock enteron aisle | |
Rouf et al. | An overview of microbial cell culture | |
RU2518304C2 (en) | TWO-PHASE NUTRITIONAL MEDIUM FOR THIN LAYER CULTIVATION OF Helicobacter pylori AND METHOD OF ITS REALISATION | |
CN101153316B (en) | Method for detecting lactobacillus casei in probiotic bacteria milk product | |
CN110004096A (en) | One lactobacillus plantarum and its application | |
RU2441907C1 (en) | Method for preparation of therapeutic product out of living microbial strains of lactic bacteria and bifidus bacteria lb-complex l | |
WO2023273019A1 (en) | Culture medium, preparation method therefor, and method for culturing bacteroides fragilis therewith | |
CN113862196B (en) | Bacillus subtilis SD-KC-001 and application thereof | |
RU2660708C1 (en) | Method for obtaining nutrient medium for isolation of blood culture in the diagnosis of a bloodstream infection | |
RU2540022C2 (en) | Method of obtaining bacterial concentrate of bifidobacteria in liquid form | |
RU2678123C1 (en) | Nutrient environment for restoring number of anaerobic bacteria after low-temperature storage | |
CN112481188A (en) | Preparation method of mixed bacterium agent for efficiently producing beta-glucuronidase | |
CN107998153A (en) | Probiotics and production method based on lactic acid bacteria and photosynthetic bacteria synbiosis | |
CN109355226A (en) | Zengjing Granule for Legionella and the biphasic culture and preparation method thereof that is separately cultured | |
Siddhi et al. | Studies on Lactic Acid Bacteria Isolate Sr 13 From Bali Cattle Gastric | |
CN117487664B (en) | Bifidobacterium separation culture method | |
CN110904006B (en) | Chicken-derived enterococcus lactis AR and screening method and application thereof | |
CN110734861B (en) | In-vitro preservation method of pig intestinal chyme microbe group | |
RU2350648C1 (en) | Method of estimation of probiotics opposing activity on basis of lyophilised biomass of anaerobic bacteria in relation to pathogenic micobacteria | |
Ng | Effects of different oven drying methods on the nutritional value and lactic acid bacteria load of eudrilus eugeniae | |
RU2300560C2 (en) | Method for preparing nutrient medium for culturing yersinia enterocolitica | |
Karima et al. | Isolation and Identification of the Dominant Flora of the Intestinal Microbiota of Rattus norvegicus from an Algerian West Farm |