RU2300560C2 - Method for preparing nutrient medium for culturing yersinia enterocolitica - Google Patents

Method for preparing nutrient medium for culturing yersinia enterocolitica Download PDF

Info

Publication number
RU2300560C2
RU2300560C2 RU2005108115/13A RU2005108115A RU2300560C2 RU 2300560 C2 RU2300560 C2 RU 2300560C2 RU 2005108115/13 A RU2005108115/13 A RU 2005108115/13A RU 2005108115 A RU2005108115 A RU 2005108115A RU 2300560 C2 RU2300560 C2 RU 2300560C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
extract
yersinia
brain
colonies
mpa
Prior art date
Application number
RU2005108115/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2005108115A (en
Inventor
Валентина Ивановна Плешакова (RU)
Валентина Ивановна Плешакова
Марина Юрьевна Налепова (RU)
Марина Юрьевна Налепова
Семен Викторович Трапезников (RU)
Семен Викторович Трапезников
Алексей Владимирович Конев (RU)
Алексей Владимирович Конев
Original Assignee
Омский государственный аграрный университет
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Омский государственный аграрный университет filed Critical Омский государственный аграрный университет
Priority to RU2005108115/13A priority Critical patent/RU2300560C2/en
Publication of RU2005108115A publication Critical patent/RU2005108115A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2300560C2 publication Critical patent/RU2300560C2/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology, microbiology.
SUBSTANCE: method involves preparing beef-extract agar, its cooling to temperature 45-50°C and addition of cattle brain extract to agar. Extract is prepared by extraction of milled cattle brain in tap water for 2 h at temperature 37°C with addition of 0.5% sodium chloride solution. Invention provides abundant growth of culture Yersinia and allows reducing culturing time. Invention can be used in culturing microorganisms, accumulation of microorganism biomass and preparing biopreparations.
EFFECT: improved preparing method.
5 tbl, 4 ex

Description

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии и может быть использовано для культивирования микроорганизмов, накопления биомассы микроорганизмов, а также приготовления биопрепаратов (антигенов для реакций агглютинации, непрямой гемагглютинации).The invention relates to veterinary microbiology and can be used for the cultivation of microorganisms, the accumulation of biomass of microorganisms, as well as the preparation of biological products (antigens for agglutination reactions, indirect hemagglutination).

Известно культивирование чистых культур микроорганизмов на обычных питательных средах, в частности - на мясопептонном агаре (МПА) (Розанов Н.И. Справочник по микробиологической технике. Москва, 1957, с.46). Данный метод основан на внесении в 1 л мясной воды 10 г пептона и 5 г поваренной соли. Компоненты питательной среды нагревают до кипения в течение 30 секунд, устанавливают рН 7,2-7,4, добавляют 30 г агар-агара, нагревают до полного растворения и проверяют рН среды, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, затем среду стерилизуют при 120°С в течение 15-20 мин. Однако известный способ имеет существенные недостатки: при выращивании чистых культур микроорганизмов рода Yersinia на поверхности МПА наблюдают скудный рост Y. enterocolitica и длительное культивирование (в течение 48-72 ч).It is known to cultivate pure cultures of microorganisms on ordinary nutrient media, in particular, on meat peptone agar (MPA) (Rozanov NI, Handbook of microbiological technology. Moscow, 1957, p. 46). This method is based on adding 10 g peptone and 5 g table salt in 1 liter of meat water. The components of the nutrient medium are heated to boiling for 30 seconds, the pH is adjusted to 7.2-7.4, 30 g of agar agar are added, heated to complete dissolution and the pH is checked, filtered through a cotton-gauze filter, then the medium is sterilized at 120 ° C for 15-20 minutes. However, the known method has significant disadvantages: when growing pure cultures of microorganisms of the genus Yersinia on the surface of MPA, there is a sparse growth of Y. enterocolitica and prolonged cultivation (for 48-72 hours).

Выделение микроорганизмов и производство бактерийных препаратов зависят от полноценного состава примененных питательных сред: это касается, прежде всего, содержания в питательной среде пластического материала для построения тела микробных клеток, а также источников энергии.Isolation of microorganisms and the production of bacterial preparations depend on the full composition of the applied nutrient media: this primarily concerns the content of plastic material in the nutrient medium for building the body of microbial cells, as well as energy sources.

Задачей изобретения является повышение эффективности культивирования микроорганизмов рода Yersinia, способ осуществляется путем приготовления мясопептонного агара, его стерилизации и охлаждения, причем охлаждают до 45-50°С, добавляют в него экстракт головного мозга крупного рогатого скота в количестве 5-10 мас.%, полученный путем экстрагирования измельченного головного мозга крупного рогатого скота в водопроводной воде в течение двух часов при 37°С, добавлением в него 0,5%-ного раствора хлорида натрия и стерилизации в автоклаве в течение 15-20 минут при 121°С, полученную питательную среду взбалтывают.The objective of the invention is to increase the efficiency of the cultivation of microorganisms of the genus Yersinia, the method is carried out by preparing meat peptone agar, sterilizing and cooling it, and it is cooled to 45-50 ° C, cattle brain extract is added to it in an amount of 5-10 wt.%, Obtained by extracting the crushed cattle brain in tap water for two hours at 37 ° C, adding a 0.5% sodium chloride solution to it and sterilizing it in an autoclave for 15-20 mi ut at 121 ° C, the resulting culture medium is agitated.

Предлагаемый метод позволяет сократить сроки культивирования микроорганизмов в 2-2,5 раза и обеспечивает обильный рост культуры Yersinia.The proposed method allows to reduce the time of cultivation of microorganisms in 2-2.5 times and provides abundant growth of Yersinia culture.

Экстракт головного мозга крупного рогатого скота стимулирует рост бактерий за счет содержания разнообразных веществ: белков, углеводов, липидов, минеральных и экстрактивных веществ.Cattle brain extract stimulates the growth of bacteria due to the content of various substances: proteins, carbohydrates, lipids, mineral and extractive substances.

Химический состав нервной ткани очень сложный. В сером и белом веществе головного мозга содержится вода - 74,0-82,7; белки - 33,0-51,0; общий азот 2,06-3,19 и липиды - 25,0-40,0 (Чечеткин А.В. и др. Биохимия животных, М., 1982, с.493).The chemical composition of the nervous tissue is very complex. The gray and white matter of the brain contains water - 74.0-82.7; proteins - 33.0-51.0; total nitrogen 2.06-3.19 and lipids 25.0-40.0 (Chechetkin A.V. et al. Animal Biochemistry, M., 1982, p. 493).

В сером веществе мозга присутствуют белки нейроглобулины и нейростромин, в составе которых содержится до 0,5% фосфора. Около 20-45% всех органических веществ ядер серого и белого вещества приходится на долю нуклеиновых кислот. В нервной ткани содержатся гликоген (100-150 мг%), глюкоза 150 мг%, пентозы, гликолипиды, которые состоят из остатков глюкозы, галактозы, сфингозина, высших жирных кислот и нейраминовой кислоты. Состав липидных веществ головного мозга отличается от их состава в других органах и тканях большим количеством фосфолипидов, холестерола и холестеридов, цереброзидов и в небольшом количестве - глицеридов. Минеральные вещества нервной ткани распределены в разных отделах нервной системы равномерно. В массе головного мозга присутствуют К, Na, Са, Mg, Cu, Fe, Al, Zn, Mn, Co, P, Cl, I, S. В нервной ткани содержатся азотистые и безазотистые низкомолекулярные вещества. Из азотистых экстрактивных веществ присутствуют креатин, фосфокреатин, АТФ и АДФ, свободные аминокислоты, холин, ацетилхолин, серотонин, аминомасляная кислота, мочевая кислота, глютамин, гистамин, аспарагин и др. К безазотистым экстрактивным веществам относят глюкозу, инозит, лактат, пируват, триозо- и гексозофосфаты.The gray matter of the brain contains proteins neuroglobulins and neurostromin, which contain up to 0.5% phosphorus. About 20-45% of all organic substances of the nuclei of gray and white matter account for nucleic acids. The nervous tissue contains glycogen (100-150 mg%), glucose 150 mg%, pentoses, glycolipids, which consist of glucose, galactose, sphingosine, higher fatty acids and neuraminic acid residues. The composition of the lipid substances of the brain differs from their composition in other organs and tissues by a large number of phospholipids, cholesterol and cholesterides, cerebrosides and, in a small amount, glycerides. Mineral substances of the nervous tissue are distributed in different parts of the nervous system evenly. In the mass of the brain there are K, Na, Ca, Mg, Cu, Fe, Al, Zn, Mn, Co, P, Cl, I, S. Nitrogen and nitrogen-free low-molecular substances are contained in the nervous tissue. Of the nitrogenous extractives, there are creatine, phosphocreatine, ATP and ADP, free amino acids, choline, acetylcholine, serotonin, aminobutyric acid, uric acid, glutamine, histamine, asparagine and others. Nitrous extractives include glucose, inositol, lactate - and hexose phosphates.

Таблица 1
Сравнительные показатели минерального состава тканей скелетной мускулатуры и головного мозга
Table 1
Comparative indicators of the mineral composition of skeletal muscle tissue and the brain
Содержание химических элементов, мг% к сырой массеThe content of chemical elements, mg% to fresh weight Скелетная мускулатураSkeletal muscle Головной мозгBrain NaNa 65-15065-150 150-220150-220 КTO 250-400250-400 290-340290-340 СаSa 4-94-9 8-108-10 MgMg 2,2-2,82.2-2.8 14-1714-17 ClCl 60-7060-70 108-222108-222 РR 18eighteen 77 SS 66 1010

Таким образом, вышесказанное свидетельствует о том, что головной мозг крупного рогатого скота содержит больше разнообразных минеральных, экстрактивных веществ, белков, углеводов и липидов, чем скелетная мускулатура.Thus, the foregoing indicates that the brain of cattle contains more diverse mineral, extractive substances, proteins, carbohydrates and lipids than skeletal muscle.

Описание опытаDescription of experience

Культуры Y. enterocolitica серовариантов 0:3 и 0:9 выращивали в чашках Петри на поверхности питательного агара, содержащего 10% экстракта головного мозга крупного рогатого скота, инкубировали аэробно при +28°С.Cultures of Y. enterocolitica serovariants 0: 3 and 0: 9 were grown in Petri dishes on the surface of nutrient agar containing 10% cattle brain extract, incubated aerobically at + 28 ° C.

Питательный агар готовили согласно инструкции, указанной на флаконе (дата изготовления 06.2002. Партия №103. Ярославская обл., г.Углич, OOO «БиоКомпас-С». ТУ 10-02-02-789-176-94).Nutrient agar was prepared according to the instructions indicated on the bottle (production date 06.2002. Lot No. 103. Yaroslavl region, Uglich, OOO BioKompas-S. TU 10-02-02-789-176-94).

Экстракт головного мозга готовили по следующей методике: свежий, очищенный от оболочек головной мозг крупного рогатого скота массой 200 г нарезали кубиками и пропускали через насадку (диаметр отверстий 5 мм) бытовой мясорубки, смешивали с двукратным объемом водопроводной воды. С целью экстрагирования в течение двух часов полученную кашицу инкубировали при +37°С.Brain extract was prepared according to the following method: a fresh, cleaned shell of a cattle brain weighing 200 g was diced and passed through a nozzle (hole diameter 5 mm) of a household meat grinder, mixed with a double volume of tap water. In order to extract for two hours, the resulting slurry was incubated at + 37 ° C.

Экстракт фильтровали через ватно-марлевый фильтр в чистый флакон и добавляли в качестве буфера 0,5%-ный раствор хлорида натрия до 400 мл (рН 7,0-7,2). После чего флакон с экстрактом головного мозга помещали в автоклав при 121°С на 15-20 мин.The extract was filtered through a cotton-gauze filter into a clean bottle and a 0.5% sodium chloride solution up to 400 ml (pH 7.0-7.2) was added as a buffer. After that, a bottle with brain extract was placed in an autoclave at 121 ° C for 15-20 minutes.

Соединение компонентов экспериментальной питательной среды осуществляли с соблюдением асептики в стерильном боксе: 100 мл питательного агара охлаждали до 45-50°С, после чего стерильной пипеткой вносили 10 мл экстракта головного мозга.The components of the experimental nutrient medium were combined aseptically in a sterile box: 100 ml of nutrient agar was cooled to 45-50 ° C, after which 10 ml of brain extract was added with a sterile pipette.

На экспериментальную среду высевали взвеси Y. enterocolitica серовариантов 0:3 и 0:9 в разведении 105 с исходной концентрацией 1 млрд. м.т., приготовленные на 0,5-0,55%-ном растворе хлорида натрия. На поверхность агаровой пластинки наносили взвесь иерсиний в объеме 0,4 мл и растирали по поверхности шпателем.Suspensions of 0: 3 and 0: 9 serovariants Y. enterocolitica were sown on the experimental medium at a dilution of 10 5 with an initial concentration of 1 billion bw, prepared in a 0.5-0.55% sodium chloride solution. A suspension of Yersinia in a volume of 0.4 ml was applied to the surface of the agar plate and triturated with a spatula.

Результаты роста учитывали после инкубирования посевов при температуре 28°С в течение 24 ч, сравнивая образовавшиеся колонии иерсиний в опытных и контрольных чашках Петри (МПА без экстракта мозга).The growth results were taken into account after incubation of crops at a temperature of 28 ° С for 24 h, comparing the formed yersinia colonies in experimental and control Petri dishes (MPA without brain extract).

Биохимические свойства культур Y. enterocolitica серовариантов 0:3 и 0:9, выращенные на опытной и контрольной средах, сравнивали, используя набор биохимических тестов (Энтеробактерии. Руководство для врачей, под ред. Покровского В.И. Москва, 1985, с.226).Biochemical properties of cultures of Y. enterocolitica serovariants 0: 3 and 0: 9, grown on experimental and control media, were compared using a set of biochemical tests (Enterobacteria. A guide for doctors, edited by Pokrovsky V.I. Moscow, 1985, p. 226 )

Пример 1. Подбор оптимальной температуры МПАExample 1. The selection of the optimal temperature MPA

МПА готовили согласно инструкции, после чего в среду вносили экстракт головного мозга при различных температурных режимах.MPA was prepared according to the instructions, after which a brain extract was introduced into the medium at various temperature conditions.

Экспериментально установлено, что при температуре ниже 45-50°С МПА приобретает плотную консистенцию и не смешивается с экстрактом, а при 50-55°С и 55-60°С МПА сохраняет жидкую консистенцию и при внесении в среду экстракта образуются серо-белые хлопья вследствие свертывания белков.It was experimentally established that at temperatures below 45-50 ° С MPA acquires a dense texture and does not mix with the extract, and at 50-55 ° С and 55-60 ° С MPA retains a liquid consistency and gray-white flakes form when the extract is introduced into the medium due to coagulation of proteins.

Поэтому считаем, что оптимальная температура МПА для смешивания с экстрактом головного мозга является 45-50°С.Therefore, we believe that the optimal MPA temperature for mixing with brain extract is 45-50 ° C.

Пример 2. Соотношение компонентов питательной средыExample 2. The ratio of the components of the nutrient medium

Изучение характера роста иерсиний на питательной среде проводили при следующих соотношениях экстракта к МПА: 1/100, 5/100, 10/100, 15/100, 20/100 и 0/100 (контроль).The study of the growth pattern of Yersinia on a nutrient medium was carried out at the following ratios of the extract to MPA: 1/100, 5/100, 10/100, 15/100, 20/100 and 0/100 (control).

Таблица 2
Подбор количества экстракта головного мозга в МПА
table 2
Selection of the amount of brain extract in MPA
Содержание экстракта головного мозга, %The content of the brain extract,% Компоненты питательной средыNutrient components Морфологическая характеристика колоний Y. EnterocoliticaMorphological characteristics of the colonies of Y. Enterocolitica МПА, млMPA, ml Экстракт головного мозга, млBrain extract, ml 1one 100one hundred 1one мелкие (0.3-0,5 мм), серо-белые, непрозрачные, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностьюsmall (0.3-0.5 mm), gray-white, opaque, with smooth edges and a shiny, smooth surface 55 100one hundred 55 сочные, выпуклые, непрозрачные, серо-белые колонии, диаметром 2-6 мм, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностьюjuicy, convex, opaque, gray-white colonies, with a diameter of 2-6 mm, with smooth edges and a shiny, smooth surface 1010 100one hundred 1010 сочные, выпуклые, непрозрачные, серо-белые колонии, диаметром 2-6 мм, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностьюjuicy, convex, opaque, gray-white colonies, with a diameter of 2-6 mm, with smooth edges and a shiny, smooth surface 15fifteen 100one hundred 15fifteen сочные, выпуклые, непрозрачные, серо-белые колонии, диаметром 2-6 мм, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностьюjuicy, convex, opaque, gray-white colonies, with a diameter of 2-6 mm, with smooth edges and a shiny, smooth surface 20twenty 100one hundred 20twenty сочные, выпуклые, непрозрачные, серо-белые колонии, диаметром 2-6 мм, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностьюjuicy, convex, opaque, gray-white colonies, with a diameter of 2-6 mm, with smooth edges and a shiny, smooth surface 0 (контроль)0 (control) 100one hundred -- мелкие (0.3-0,5 мм), серо-белые, непрозрачные, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностьюsmall (0.3-0.5 mm), gray-white, opaque, with smooth edges and a shiny, smooth surface

Из таблицы 2 видно, что при внесении 1 мл (1 мас.%) экстракта в 100 мл МПА скорость и характер роста микроорганизмов существенно не отличались от контроля. Так, через 48 часов на поверхности МПА с экстрактом иерсиний формировали мелкие (0,3-0,5 мм), серо-белые, непрозрачные колонии округлой формы с блестящей, гладкой поверхностью и ровными краями.From table 2 it is seen that when making 1 ml (1 wt.%) Of the extract in 100 ml of MPA, the rate and nature of the growth of microorganisms did not differ significantly from the control. So, after 48 hours, small (0.3-0.5 mm), gray-white, opaque colonies of rounded shape with a shiny, smooth surface and even edges were formed on the surface of the MPA with Yersinia extract.

При внесении в 100 мл МПА 5-10 мл (5-10 мас.%) экстракта наблюдали обильный рост иерсиний через 20-24 часа инкубации. Иерсинии формировали сочные, выпуклые, непрозрачные, серо-белые колонии, диаметром от 2 до 6 мм, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностью. В дальнейшем при увеличении содержания экстракта в МПА до 20 мл (20 мас.%) скорость и характер роста иерсиний не отличались от показателей предыдущего варианта (табл.2).When 100 ml of MPA was added to 5-10 ml (5-10 wt.%) Of the extract, abundant growth of yersinia was observed after 20-24 hours of incubation. Yersinia formed juicy, convex, opaque, gray-white colonies, with a diameter of 2 to 6 mm, with smooth edges and a shiny, smooth surface. Subsequently, with an increase in the content of the extract in MPA to 20 ml (20 wt.%), The rate and nature of the growth of Yersinia did not differ from the indicators of the previous version (Table 2).

Таким образом, оптимальное содержание экстракта головного мозга в МПА составляет 5-10 мас.% или 5-10 мл в 100 мл МПА.Thus, the optimal content of the brain extract in MPA is 5-10 wt.% Or 5-10 ml in 100 ml of MPA.

Пример 3. Экспозиция и температурный режим экстрагирования головного мозгаExample 3. Exposure and temperature extraction of the brain

Экстрагирование измельченного головного мозга крупного рогатого скота проводили при температуре 25, 37 и 45°С в термостате в течение 1, 2 и 4 часов. Затем профильтрованный экстракт вносили в МПА, после чего сравнивали количество колоний иерсиний, образовавшихся через 20-24 часа инкубирования в термостате при 28°С на поверхности известной (контроль) и предлагаемой (с экстрактом мозга) питательной среды (табл.3).Extraction of the crushed cattle brain was carried out at a temperature of 25, 37, and 45 ° C in a thermostat for 1, 2, and 4 hours. Then, the filtered extract was introduced into MPA, after which the number of yersinia colonies formed after 20-24 hours of incubation in a thermostat at 28 ° C on the surface of a known (control) and proposed (with brain extract) nutrient medium was compared (Table 3).

Таблица 3
Количество колоний иерсиний на экспериментальной среде при различных режимах
Table 3
The number of yersinia colonies on the experimental medium under various conditions
Температура экстрагирования, °СThe temperature of extraction, ° C Экспозиция, часExposition, hour 1one 22 4four 2525 9898 119119 127127 3737 135135 Сплошной ростSolid growth Сплошной ростSolid growth 4545 141141 123123 117117

В контрольных чашках Петри (без экстракта) образовалось 84 колоний Y. enterocolitica.In control Petri dishes (without extract) 84 colonies of Y. enterocolitica were formed.

Экспериментально установлено, что количество колоний иерсиний, образовавшихся на поверхности питательной среды с экстрактом головного мозга, полученного при экстрагировании в течение 1-4 часов при 25°С, существенно не отличалось от контроля и составляло 98, 119 и 127 колоний соответственно.It was experimentally established that the number of yersinia colonies formed on the surface of the nutrient medium with brain extract obtained by extraction for 1-4 hours at 25 ° C did not differ significantly from the control and amounted to 98, 119 and 127 colonies, respectively.

На поверхности экспериментальной среды с экстрактом головного мозга, полученного путем экстрагирования при 37°С в течение часа, образовалось 135 колоний, а при экстрагировании в течение 2-4 часов отмечали сплошной рост Y. enterocolitica.135 colonies formed on the surface of the experimental medium with a brain extract obtained by extraction at 37 ° C for one hour, and continuous extraction of Y. enterocolitica was observed upon extraction for 2-4 hours.

В дальнейшем при увеличении температуры экстрагирования до 45°С в течение 1, 2 и 4 часов количество колоний иерсиний, образовавшихся на поверхности питательной среды с экстрактом головного мозга, уменьшалось до 141, 123 и 117 соответственно.Subsequently, with an increase in the extraction temperature to 45 ° C for 1, 2, and 4 hours, the number of Yersinia colonies formed on the surface of the nutrient medium with brain extract decreased to 141, 123, and 117, respectively.

Таким образом, оптимальный режим для получения экстракта головного мозга крупного рогатого скота является экспозиция 2 часа при 37°С.Thus, the optimal mode for obtaining the extract of the brain of cattle is an exposure of 2 hours at 37 ° C.

Пример 4. Сравнение культурально-биохимических свойств иерсиний при известном и предлагаемом способеExample 4. Comparison of the cultural and biochemical properties of Yersinia with a known and proposed method

На поверхности МПА с экстрактом головного мозга через 18 ч инкубирования отмечали формирование единичных колоний, через 20-24 ч культуры иерсиний образовывали сочные, выпуклые, непрозрачные, серо-белые колонии с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностью, диаметром до 6 мм. При этом колонии иерсиний сероварианта 0:9 были крупнее (4-6 мм), чем колонии иерсиний сероварианта 0:3 (2-4 мм). Через 36 ч культивирования края колоний иерсиний соединялись, образуя сплошной рост на поверхности экспериментальной среды (табл.4, 5).On the surface of MPA with brain extract after 18 h of incubation, the formation of single colonies was noted, after 20-24 h, Yersinia cultures formed juicy, convex, opaque, gray-white colonies with smooth edges and a shiny, smooth surface, up to 6 mm in diameter. In this case, colonies of Yersinia serovariant 0: 9 were larger (4-6 mm) than colonies of Yersinia serovariant 0: 3 (2-4 mm). After 36 h of cultivation, the edges of the yersinia colonies were combined, forming a continuous growth on the surface of the experimental medium (Tables 4, 5).

Таблица 4
Морфологическая характеристика колоний и биохимические свойства Y. Enterocolitica серовариантов 0:3 и 0:9
Table 4
Morphological characteristics of colonies and biochemical properties of Y. Enterocolitica serovariants 0: 3 and 0: 9
Прототип (культивирование иерсиний на питательном агаре)Prototype (cultivation of Yersinia on nutrient agar) Предлагаемый способ (культивирование иерсиний на питательном агаре с экстрактом головного мозга)The proposed method (cultivation of Yersinia on nutrient agar with brain extract) Y. enterocoliticaY. enterocolitica Y. enterocoliticaY. enterocolitica 0:30: 3 0:90: 9 0:30: 3 0:90: 9 Морфология колонийColony morphology мелкие (0,3-0,5 мм), серо-белые, непрозрачные, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностьюsmall (0.3-0.5 mm), gray-white, opaque, with smooth edges and a shiny, smooth surface мелкие (0,3-0,5 мм), серо-белые, непрозрачные, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностьюsmall (0.3-0.5 mm), gray-white, opaque, with smooth edges and a shiny, smooth surface сочные, выпуклые, непрозрачные, серо-белые колонии, диаметром 2-4 мм, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностьюjuicy, convex, opaque, gray-white colonies, 2-4 mm in diameter, with smooth edges and a shiny, smooth surface сочные, выпуклые, непрозрачные, серо-белые колонии, диаметром 4-6 мм, с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностьюjuicy, convex, opaque, gray-white colonies, with a diameter of 4-6 mm, with smooth edges and a shiny, smooth surface Биохимические тестыBiochemical tests ГлюкозаGlucose ++ ++ ++ ++ СахарозаSucrose ++ ++ ++ ++ ЛактозаLactose -- -- -- -- СорбитSorbitol ++ ++ ++ ++ ГалактозаGalactose ++ ++ ++ ++ МальтозаMaltose ++ ++ ++ ++ РамнозаRamnose -- -- -- -- РаффинозаRaffinose -- -- -- -- D-арабинозаD-arabinose -- -- -- -- ЖелатинGelatin -- -- -- -- МаннитMannitol ++ ++ ++ ++ ЦитохромоксидазаCytochrome oxidase -- -- -- -- НитратредуктазаNitrate reductase ++ ++ ++ ++ КаталазаCatalase ++ ++ ++ ++ ПодвижностьMobility ++ ++ ++ ++ ФенилаланиндезаминазаPhenylalanine desaminase -- -- -- -- АргениндегидролазаArgenine dehydrolase -- -- -- -- ЛизиндекарбоксилазаLysine decarboxylase -- -- -- -- ИндолIndole -- -- -- -- СероводородHydrogen sulfide -- -- -- -- УреазаUrease ++ ++ ++ ++ Цитрат СиммонсаSimmons Citrate -- -- -- -- Ацетат натрияSodium Acetate -- ++ -- ++ Реакция Фогеса-ПроскауэраVoges-Proskauer reaction ++ ++ ++ ++ Реакция с метиловым краснымMethyl Red Reaction ++ ++ ++ ++

В контроле (МПА без экстракта головного мозга) формирование мелких (0,3-0,5 мм), серо-белых, непрозрачных колоний Y. enterocolitica с ровными краями и блестящей, гладкой поверхностью наблюдали через 48 ч (табл.5).In the control (MPA without brain extract), the formation of small (0.3-0.5 mm), gray-white, opaque colonies of Y. enterocolitica with smooth edges and a shiny, smooth surface was observed after 48 hours (Table 5).

В окрашенных по Граму мазках, приготовленных из колоний иерсиний, выросших на экспериментальной и контрольной среде, Yersinia enterocolitica представляли мелкие грамотрицательные палочки с закругленными концами.In Gram stained smears prepared from Yersinia colonies grown on experimental and control media, Yersinia enterocolitica represented small gram-negative bacilli with rounded ends.

При изучении подвижности Y. enterocolitica выделенные культуры засевали в полужидкий агар и культивировали при 28°С в течение 48 часов. О наличии подвижности иерсиний свидетельствовало помутнение среды в пробирках. Культуры иерсиний уже в первые сутки ферментировали глюкозу, сахарозу, сорбит, галактозу, мальтозу, маннит; обладали ферментами нитратредуктазой, каталазой и не расщепляли D-арабинозу, рамнозу, раффинозу, лактозу, не разжижали желатин; не обладали энзимами оксидазой, аргининдегидролазой, фенилаланиндезаминазой, триптофандезаминазой, лизиндекарбоксилазой; не продуцировали сероводород. Мочевину ферментировали в течение 24 часов при 28°С. Y. enterocolitica не утилизировали натрия цитрат, а ацетат натрия использовали микроорганизмы сероварианта 0:9. Реакция Фогеса-Проскауэра и с метиловым красным при 28°С положительна.When studying the motility of Y. enterocolitica, the isolated cultures were seeded in semi-liquid agar and cultured at 28 ° C for 48 hours. The turbidity of the medium in test tubes was evidence of the mobility of Yersinia. Yersinia cultures fermented glucose, sucrose, sorbitol, galactose, maltose, mannitol already in the first day; possessed enzymes nitrate reductase, catalase and did not cleave D-arabinose, ramnose, raffinose, lactose, did not thin the gelatin; did not possess enzymes oxidase, arginine dehydrolase, phenylalanine deaminase, tryptophandesaminase, lysine decarboxylase; did not produce hydrogen sulfide. Urea was fermented for 24 hours at 28 ° C. Y. enterocolitica did not utilize sodium citrate, and the sodium acetate microorganisms of the 0: 9 serovariant were used. The Voges-Proskauer reaction with methyl red at 28 ° C is positive.

Экспериментально установлено, что иерсинии, выращенные на МПА и МПА с экстрактом головного мозга не отличаются по биохимическим свойствам, что позволяет рекомендовать предлагаемую среду для накопления биомассы иерсиний.It was experimentally established that yersinia grown on MPA and MPA with brain extract do not differ in biochemical properties, which allows us to recommend the proposed environment for the accumulation of Yersinia biomass.

Таблица 5 Сравнительная таблица сроков культивирования Y. enterocoliticaTable 5 Comparative table of the cultivation dates of Y. enterocolitica Время культивирования, часCultivation time, hour СпособWay Известный (МПА), кол-во колонийKnown (MPA), number of colonies Предлагаемый (МПА с экстрактом головного мозга), кол-во колонийOffered (MPA with brain extract), the number of colonies 1212 -- -- 1616 -- -- 18eighteen -- 77 20twenty -- 145145 2424 -- 254254 3636 66 Сплошной ростSolid growth 4848 9999 Сплошной ростSolid growth

Данные таблицы 5 доказывают, что количество колоний иерсиний на предлагаемой питательной среде увеличивается, а срок появления колоний Y. enterocolitica сокращается в 2-2,5 разаThe data in table 5 prove that the number of colonies of yersinia on the proposed nutrient medium increases, and the period of appearance of colonies Y. enterocolitica is reduced by 2-2.5 times

Таким образом, предлагаемая питательная среда для накопления биомассы микроорганизмов позволяет:Thus, the proposed nutrient medium for the accumulation of biomass of microorganisms allows you to:

1) выращивать микроорганизмы;1) to grow microorganisms;

2) получать обильный рост культур микроорганизмов;2) receive abundant growth of cultures of microorganisms;

3) выделять чистые культуры микроорганизмов посевом на МПА с добавлением 5-10 мас.% экстракта головного мозга крупного рогатого скота;3) isolate pure cultures of microorganisms by inoculation on MPA with the addition of 5-10 wt.% Extract of the brain of cattle;

4) использовать полученную биомассу микроорганизмов для приготовления биопрепаратов;4) use the resulting biomass of microorganisms for the preparation of biological products;

5) длительно сохранять свежевыделенные и производственные культуры;5) to preserve freshly allocated and industrial crops for a long time;

6) сократить сроки культивирования в 2-2,5 раза.6) reduce the cultivation time by 2-2.5 times.

Claims (1)

Способ получения питательной среды для культивирования Yersinia enterocolitica, предусматривающий приготовление мясопептонного агара, его стерилизацию и охлаждение, отличающийся тем, что мясопептонный агар охлаждают до 45-50°С, добавляют в него экстракт головного мозга крупного рогатого скота в количестве 5-10 мас.%, полученный путем экстрагирования измельченного головного мозга крупного рогатого скота в водопроводной воде в течение двух часов при 37°С добавлением в него 0,5%-ного раствора хлорида натрия и стерилизации в автоклаве в течение 15-20 мин при 121°С полученную питательную среду взбалтывают.A method of obtaining a culture medium for the cultivation of Yersinia enterocolitica, involving the preparation of meat peptone agar, its sterilization and cooling, characterized in that the meat peptone agar is cooled to 45-50 ° C., cattle brain extract is added to it in an amount of 5-10 wt.% obtained by extracting the crushed cattle brain in tap water for two hours at 37 ° C by adding a 0.5% sodium chloride solution to it and sterilizing it in an autoclave for 15-20 minutes at 121 ° C, the resulting nutrient medium is shaken.
RU2005108115/13A 2005-03-22 2005-03-22 Method for preparing nutrient medium for culturing yersinia enterocolitica RU2300560C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005108115/13A RU2300560C2 (en) 2005-03-22 2005-03-22 Method for preparing nutrient medium for culturing yersinia enterocolitica

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005108115/13A RU2300560C2 (en) 2005-03-22 2005-03-22 Method for preparing nutrient medium for culturing yersinia enterocolitica

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2005108115A RU2005108115A (en) 2006-10-10
RU2300560C2 true RU2300560C2 (en) 2007-06-10

Family

ID=37435290

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2005108115/13A RU2300560C2 (en) 2005-03-22 2005-03-22 Method for preparing nutrient medium for culturing yersinia enterocolitica

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2300560C2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2648160C2 (en) * 2016-06-29 2018-03-22 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение"Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной санитарии, гигиены и экологии" (ФГБНУ "ВНИИВСГЭ") Nutrient medium for the isolation of bacteria yersinia enterocolitica

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
РОЗАНОВ Н.И. Справочник по микробиологической технике. - М.: 1957, с.46. КОЗЛОВ Ю.А. Питательные среды в медицинской микробиологии. - М.: МЕДГИЗ, 1950, с.199-202. СИДОРОВ М.А., СКОРОДУМОВ Д.И., ФЕДОТОВ В.Б. Определитель зоопатогенных микроорганизмов. - М.: КОЛОС, 1995, с.153-157. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2648160C2 (en) * 2016-06-29 2018-03-22 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение"Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной санитарии, гигиены и экологии" (ФГБНУ "ВНИИВСГЭ") Nutrient medium for the isolation of bacteria yersinia enterocolitica

Also Published As

Publication number Publication date
RU2005108115A (en) 2006-10-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101950245B1 (en) Blue-Green Alga Spirulina Animal Cell Culture Solution, Method for Preparing the Same, and Method for Culturing Cells Using the Same
Khojanazarova et al. Investigating the cultural-morphological features of rhizobacteria and allocating it from the cotton plant (Gossýpium hirsútum): in the example of irrigated meadow soils of Uzbekistan
Sullivan Synthetic culture media and the biochemistry of bacterial pigments
JP2019103491A (en) Isolation method of hay bacillus, hay bacillus thereof, microbe formulation including hay bacillus, and medium set for isolation of hay bacillus
CN101485300B (en) Method for cultivating Acrobeloides nanus
RU2300560C2 (en) Method for preparing nutrient medium for culturing yersinia enterocolitica
RU2415923C1 (en) Method for production of fermentative hydrolysate of fresh white cabbage and nutritive medium for cultivation lactobacteria based thereon
CN100371437C (en) Process for preparing lichem bacillus strain for producing composite amino acid and culture amino acid liquid fertilizer
RU2518304C2 (en) TWO-PHASE NUTRITIONAL MEDIUM FOR THIN LAYER CULTIVATION OF Helicobacter pylori AND METHOD OF ITS REALISATION
CN105820974A (en) Fermenting method of biocontrol actinomycetes and application
RU2518282C1 (en) Nutrient medium for submerged cultivation of tularemia microbe
Sidorenko et al. The effect of soil properties on the preservation and reproduction of Listeria and Yersinia
JP3957132B2 (en) Separation medium for low turbidity soy sauce lactic acid bacteria, separation method for low turbidity soy sauce lactic acid bacteria using the same medium, and method for producing highly clear soy sauce using the same lactic acid bacteria
US20220389476A1 (en) Animal product-free culture of streptococcus bacteria
Ningrum et al. Comparative test on bacteria in the digestive tract of vannamei shrimp (Litopenaeus vannamei) at intensive and extensive ponds in Ujungpangkah, Gresik
RU2084233C1 (en) Method of probiotic preparing for veterinary science
SU863639A1 (en) Bifidobacterium adoescentis ms-42 strain employed for production of sour-milk productts and method of preparing leaven of bifidobacteria for sour-milk products
RU2788920C2 (en) Method for production of bacterial concentrate
RU2301256C1 (en) Liquid nutrient medium for culturing cholera vibrio
RU2350648C1 (en) Method of estimation of probiotics opposing activity on basis of lyophilised biomass of anaerobic bacteria in relation to pathogenic micobacteria
RU2525637C2 (en) Nutrient medium for cultivation of listeriosis causative agent
Wahyuni et al. ISOLATION AND CHARACTERIZATION OF AMYLASE-PRODUCING MICROBES FROM THE DIGESTIVE TRACT OF TILAPIA
RU2111245C1 (en) Nutrient medium for yeast-like fungi of genus candida culturing
RU2158302C2 (en) Nutrient medium for bifidobacterium and lactobacterium culturing
RU2348686C2 (en) Nutrient medium for microorganism cultivation

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20070323