RU2099432C1 - Способ биоокисления минерального сырья - Google Patents

Способ биоокисления минерального сырья Download PDF

Info

Publication number
RU2099432C1
RU2099432C1 SU915010167A SU5010167A RU2099432C1 RU 2099432 C1 RU2099432 C1 RU 2099432C1 SU 915010167 A SU915010167 A SU 915010167A SU 5010167 A SU5010167 A SU 5010167A RU 2099432 C1 RU2099432 C1 RU 2099432C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
raw materials
mineral raw
biooxidation
mineral
microorganisms
Prior art date
Application number
SU915010167A
Other languages
English (en)
Inventor
Хилда Панос Нора
Original Assignee
Личинг С.Р.Л.
Биллитон Чили С.А.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Личинг С.Р.Л., Биллитон Чили С.А. filed Critical Личинг С.Р.Л.
Application granted granted Critical
Publication of RU2099432C1 publication Critical patent/RU2099432C1/ru

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P3/00Preparation of elements or inorganic compounds except carbon dioxide
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C22METALLURGY; FERROUS OR NON-FERROUS ALLOYS; TREATMENT OF ALLOYS OR NON-FERROUS METALS
    • C22BPRODUCTION AND REFINING OF METALS; PRETREATMENT OF RAW MATERIALS
    • C22B3/00Extraction of metal compounds from ores or concentrates by wet processes
    • C22B3/18Extraction of metal compounds from ores or concentrates by wet processes with the aid of microorganisms or enzymes, e.g. bacteria or algae
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P10/00Technologies related to metal processing
    • Y02P10/20Recycling

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Environmental & Geological Engineering (AREA)
  • Materials Engineering (AREA)
  • Mechanical Engineering (AREA)
  • Metallurgy (AREA)
  • Geology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Geochemistry & Mineralogy (AREA)
  • Manufacturing & Machinery (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Manufacture And Refinement Of Metals (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Abstract

Назначение: изобретение относится к биотехнологии, а именно к способам биотехнологической обработки минеральных концентратов, угля или бедных руд. Сущность изобретения: способ включает обработку сырья кислотным реагентом и культурой микроорганизмов - биоокислителей, культивирование микроорганизмов на минеральном сырье, осушение минерального сырья и отделения продуктов биоокисления. 7 з.п. ф-лы.

Description

Изобретение относится к биотехнологии, а именно к способу, при котором минеральные соединения, содержащиеся в минеральных рудах или концентратах и представляющие собой субстраты для микроорганизмов, подвергают биоокислению для обеспечения возможности растворения и отделения указанных соединений.
К настоящему времени доказано, что при помощи бактериальной обработки имеется возможность окисления следующих сульфидов пирита и марказита, пирротита, халькопирита, борнита, ковеллита, халькоцита, тетрагидрита, энаргита, молибденита, сфалерита, арсенопирита, реальгара, аурипигмента, кобальтита, пентландита, виоларита, бравоита, миллерита, плидимита, антимонита, марматита, галенита, геокронита.
Известно (патент США 4729778, кл.C 22 B 3/00, 1988), что микробные культуры окисляют нерастворимые сульфаты либо прямо, либо косвенно. В случае прямого окисления разрушение кристаллической структуры сульфидного минерала происходит за счет ферментативных систем из живых микроорганизмов. Косвенное окисление сульфидных минералов связано с действием иона железа /Fe3+/, который в свою очередь является продуктом микробного (бактериального) окисления соединения двухвалентного железа и железосодержащих сульфидных минералов.
В настоящее время микробное выщелачивание металлов происходит в виде различных процессов, которые зависят от масштаба и свойств используемого минерала.
В данном случае микробное выщелачивание можно рассматривать как специализированную систему для подземной экстракции, заключающуюся в микробиологически усиленном растворении ценных металлов из разрабатываемых руд с сортами, находящимися в диапазоне от сверхкускового сорта до так называемого субмаргинального и субизмельченного сортов. Выщелачивающие растворы инжектируют в массу горной породы и фильтруют сквозь нее. По достижении растворения требуемых ценных металлов растворы собирают и перекачивают в установку для измельчения металлов.
Следует отметить, что хотя различные способы выщелачивания, разработанные и внедренные в практику, обладают отличительными свойствами, все имеют один общий признак: руды или концентраты суспендируют, заливают и/или подвергают перколяции водным растворами таким образом, что микроорганизмы ограничивают водной окружающей обстановкой.
Уголь содержит элементарную серу в различных количествах, главным образом в виде пирита. Сжигание угля приводит к превращению существующей серы в диоксид серы, который загрязняет атмосферу, вызывая кислотные дожди с последующим повреждением растительности и здоровья животных и человека. Для поддержания соответствующих уровней двуокиси серы в атмосфере в местах, где уголь сжигают в крупных масштабах, необходимо разрабатывать угли с низким содержанием серы в основном с общим содержанием серы ниже 1-1,5%
Микробное выщелачивание сернистых соединений из угля до настоящего времени осуществлялось на практике вместе с аналогичными направлениями и с учетом критерия, принятого для микробного выщелачивания металлов, то есть микроорганизмы должны действовать в водной окружающей среде.
Было доказано, что согласно известной технологии при десульфуризации угля эффективны несколько микроорганизмов. Однако при таких условиях этот процесс нельзя осуществить на практике в промышленном масштабе из-за продолжительного времени обработки и больших объемов обработки как сульфат низкой микробной активности.
В настоящее время известно, что концентраты, содержащие пирит, арсенопирит и тонко диспергированное золото, в результате биовыщелачивания перед цианидированием растворяют большую часть сульфидных минералов и выход золота существенно увеличивается в результате последующего цианидирования.
Предлагаемый способ включает сортировку минеральной руды или концентрата посредством количества кислоты, которое заранее определено как наиболее удобное для нейтрализации минеральной руды или концентрата, предотвращения уплотнения и обеспечения надлежащей кислотности для микроорганизмов, причем это количество кислоты предпочтительно содержится в минимально возможном объеме раствора (или концентрирование минеральной руды или концентрата в виде кислотных паров) с тем, чтобы гомогенно подкислить субстрат с одновременным введением минимально возможного количества воды в систему. Способ также включает добавление микробного прививочного материала, способного к окислению соответствующего минерального соединения (или обогащение собственной микробной флоры минеральной руды либо одновременно, либо независимо), предоставление возможности для спонтанной или вынужденной потери воды, которая может присутствовать в системе в результате испарения или сушки проходящим воздухом до тех пор, пока термодинамически доступная вода достаточно неблагоприятна для получения продуктов биоокисления в твердом состоянии, которые в свою очередь состоят из микробных колоний, и разделение продуктов биоокисления.
Первая стадия взаимодействия биовыщелачивающих микроорганизмов с твердым минеральным субстратом (питательной средой) состоит в их соединении с поверхностью, после чего окисляемый субстрат подвергают биохимическому воздействию. Сцепление является характерным для минеральных соединений, которые представляют собой источник энергии, но такое сцепление не является частным и не всегда происходит в системах, пока еще используемых. Условия, которые позволяют или облегчают стабильное и эффективное сцепление, позволяют бактериям трансформировать субстрат и быстро размножаться, до этого не были объяснены.
Из условий физиологических характеристик и развития, описанных ниже, ясно, что эти микроорганизмы обладают определенным гидрофобным характером. Другими словами, вода или по меньшей мере уровни содержания воды в обычных системах делают затруднительным стабильное соединение клеток к субстратам.
Явления, которые имеют место при взаимодействии клеток и поверхности минеральных соединений или механизм разрушения решетки сульфидного минерала, не ясны. Хотя существуют различные теории, обычно полагают, что в этом взаимодействии действуют ферментативные механизмы. В таком случае препятствующие ферменты не следует разбавлять или смывать с реакционной поверхности.
Способ реализуется следующим образом.
Взвешенное и стерильное количество каждого имеющего отношения концентрата было помещено на чашки Петри и равномерно распределено по всей поверхности. После этого субстрат подвергли увлажнению раствором серной кислоты, наиболее подходящие объем и концентрация которого были определены для каждого конкретного случая, с принятием в расчет следующего критерия.
Наиболее подходящий объем на единицу массы субстрата при рассмотрении представляет собой минимальный объем, который обеспечивает полное и гомогенное подкисление субстрата.
Этот объем будет зависеть от физических и химических свойств каждого конкретного субстрата, а в случае пористых минералов может быть обеспечено подкисление через поры. Тем не менее объем должен быть как можно меньшим с тем, чтобы снизить потери времени, присущие дальнейшему обезвоживанию субстрата.
Наиболее подходящая концентрация кислоты отвечает количеству кислоты, которое в наиболее подходящем объеме обеспечивает нейтрализацию минерала, предотвращает уплотнение, обеспечивает количество кислоты для эффективного размножения бактерий и предполагает возможные потери кислоты в результате испарения.
Посевы были подвергнуты затравке штаммами и затем подвергнуты выдерживанию в термостате таким образом, чтобы облегчить быструю потерю за счет испарения воды, введенной в процессе подкисления. Во всех случаях, когда субстрат достигает сухого состояния по внешнему виду, размножение микробов, связанное с соответствующим биоокисленным твердым продуктом, было достигнуто в течение нескольких часов.
Примеры I и 2 иллюстрируют количественные отличия биологической активности окисления металлического соединения в жидкой среде и в условиях низкого содержания воды.
Пример I. Образец из натурального пирита с высокой степенью чистоты, содержащий, железо 43,5; сера 49,67; примеси 6,83 измельчали до размера частиц 100 меш и подвергали стерилизации в течение трех последующих дней с помощью пропускания водяного пара с использованием в качестве субстрата питательной среды.
Был использован прививочный материал, соответствующий СМ штамму, предварительно приспособленный для размножения в пирите. Во всех случаях одновременно проводились соответствующие стерильные контроли.
Биологическое окисление было исследовано в обычной жидкой смеси с добавлением аммиака или без его добавления в системе с низким содержанием воды в соответствии с основами данного изобретения.
Биологическую активность определяли путем измерения содержания растворимого железа путем абсорбционной спектрофотометрии. Количество клеток было определено путем пересчета в посеве в агаризованной железистой среде.
В жидкой среде опыт проводили в колбах Эрленмейера емкостью 300 мл, содержащих 5 г пирита, 95 мл раствора серной кислоты, с добавлением или без добавления 0,3 сульфата аммония, доведенного до pH 1,7. Содержимое подвергли затравке с помощью 5 мл культуры СМ штамма, содержащей 2•108 клеток/мл. В стерильных контрольных опытах вместо 95 мл добавили 100 мл раствора. Колбы Эрленмейера подвергали выдержке при 30oC в вибраторе.
Кинетика растворения железа сменялась периодическими определениями концентрации растворимого железа в аликвотах, взятых из выщелачивающего раствора.
Скорость извлечения железа была оценена по линейной части графической зависимости, представляющей полное биологически растворенное количество железа как функцию времени и относящей это значение к каждой подвергнутой затравке клетке и системе.
Скорость растворения железа была выражена в виде миллиграммов растворенного в 1 ч железа на одну затравленную клетку. В опыте без аммиачного азота не было в основном никакого различия со стерильным контрольным опытом.
Для опыта в обезвоженной твердой среде были предварительно определены наиболее подходящие объем и концентрация кислоты. Наилучшим объемом был объем, соответствующий весовому отношению пирита в граммах к объему раствора кислоты в миллилитрах, равному 1oC1. Наиболее подходящей концентрацией кислоты была 0,45 N.
Для того, чтобы довести до конца кинетический механизм по отношению к растворимому железу, были использованы чашки Петри из полистирола диаметром 5,5 см, в каждой из которых содержалось 0,5 г пирита и 0,5 микролитра 0,45N раствора серной кислоты. За счет вращательных движений тонкая пленка была распределена по всей поверхности. Каждая чашка Петри была подвергнута затравке с помощью 360 клеток СМ штамма, содержащихся в 20 микролитрах 0,06N раствора серной кислоты. Число клеток было определено путем подсчета колоний в чашке в агаризованной железистой среде и соответствовало с погрешностью ±7% с числом колоний, которые можно подсчитать в пиритных чашках Петри. 20 мл стерильного 0,06N раствора серной кислоты добавили к соответствующим стерильным контрольным пробам. Все чашки Петри были подвергнуты выдерживанию в термостате при 30oC.
Периодически одну стерильную и одну подвергнутую затравке чашку Петри подвергли определению содержания растворимого железа путем абсорбционной спектрофотометрии.
Через 22 ч, когда чашки Петри приняли сухой внешний вид, было начато биологическое окисление. Начиная с 26 ч и в течение периода 8 ч было достигнуто наивысшее биологическое окисление, которое составило 8,79•10-4 мг/ч на клетку.
Сравнение этого значения с значением, полученным из жидкой среды с аммиаком, приводит к различию в пять порядков величины.
Пример 2. В качестве субстрата был использован искусственный CuS. Он был подвергнут затравке BA1-штаммом.
Аналогично примеру 1 биологическое окисление в обычной жидкой среде было проведено с аммиачным заполнителем и без него, а также в обезвоженной твердой среде в соответствии с описанным критерием. Во всех случаях одновременно были проведены соответствующие стерильные контрольные опыты. Содержание растворимой меди было определено путем абсорбционной спектрофотометрии. Биологическое окисление было определено в каждом случае как разность в содержании растворенной меди между затравленной системой и соответствующей стерильной контрольной пробой.
Жидкое выщелачивание было проведено в колбах Эрленмейера, содержащих 5 г CuS и 95 мл раствора серной кислоты, с добавлением 0,3 г сульфата аммония и без него. pH раствора был доведен до 2. Он был подвергнут затравке с помощью 5 мл активной культуры из ВА-штамма, содержащей 2•108 клеток/мл. В стерильных контрольных опытах вместо 95 мл были добавлены 100 мл раствора кислоты. Колбы Эрленмейера были выдержаны в вибраторе при 30oC.
Кинетический механизм растворения меди был сменен периодическими определениями содержания растворимой меди в аликвотах, взятых из выщелачивающего раствора. Была определена скорость биологического растворения меди, характеризующая биологически растворенную медь как функцию времени. Она была выражена в миллиграммах растворенной меди в части на одну затравленную клетку. В опыте с аммиачным азотом это значение составило 5,1•10-9 мг/ч на клетку. В опыте без аммиачного азота не наблюдалось в основном никакого различия со стерильным контрольным опытом.
Для опыта в обезвоженной твердой среде чашки Петри диаметром 9 см были приготовлены путем введения в каждую из них 2 г CuS и 2 мл H2O. Была получена суспензия и в результате вращательных движений она вся была равномерно распределена по поверхности чашки. Чашки Петри были высушены в вытяжном шкафу с ламинарным потоком до тех пор, пока не был достигнут постоянный вес. В каждую чашку Петри добавили 0,5 мл стерильного 0,3N раствора серной кислоты, распределяя его капля по капле до равносерного подкисления. Каждую чашку Петри подвергали затравке с использованием приблизительно 40 клеток ВА-штамма, содержащихся в 20 микролитрах 0,06N раствора серной кислоты. Количество клеток, содержащихся в прививочном материале (200 клеток/мл), было подсчитано по количеству колоний в железистой агаризованной среде и оно совпало с ошибкой +8% по отношению к числу колоний бактерий, которые были получены в чашках Петри с CuS в конце эволюции.
К стерильным контрольным пробам добавили 20 микролитров стерильного 0,06N раствора кислоты. Все чашки Петри были подвергнуты выдерживанию в термостате при 30oC.
Растворимая медь подвергалась периодическому анализу из стерильной чашки Петри и из затравленной чашки Петри. Через 18 ч, когда чашки Петри имели сухой внешний вид, биологическое окисление было начато и его продолжали с почти постоянной скоростью в течение 8 ч. В конце этой стадии была достигнута максимальная эволюция в единицах размера колоний, составленных из твердого кристаллообразного сульфата меди.
Скорость биологического окисления в течение этого периода, выраженная как растворенная медь в 1 ч на подвергнутую затравке клетку, составила 0,319 мг/ч на клетку. Это значение следует сравнить с соответствующим значением, полученным из жидкой среды.

Claims (8)

1. Способ биоокисления минерального сырья для извлечения металлов, обессеривания угля или очистки ценных металлов, включающий последовательную обработку минерального сырья кислотным реагентом и культурой микроорганизмов-биоокислителей, культивирования микроорганизмов на минеральном сырье с последующим отделением продуктов биоокисления, отличающийся тем, что до отделения продуктов биоокисления осуществляют осушениее минерального сырья.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что в качестве минерального сырья используют руды, минеральные концентраты или уголь.
3. Способ по п.1, отличающийся тем, что одновременно с обработкой минерального сырья кислотным реагентом сырье дополнительно обрабатывают поверхностно-активным веществом.
4. Способ по п.1, отличающийся тем, что минеральное сырье дополнительно обрабатывают реагентами, удаляющими связанную воду.
5. Способ по п. 1, отличающийся тем, что используют микроорганизмы - биоокислители, способные развиваться при 5 100oС.
6. Способ по п. 1, отличающийся тем, что в качестве микроорганизмов-биоокислителей используют собственную микрофлору минерального сырья.
7. Способ по п. 1, отличающийся тем, что процессы обработки кислотным реагентом и осушения минерального сырья осуществляют циклически.
8. Способ по п.1, отличающийся тем, что отделение продуктов биоокисления осуществляют посредством промывки, просеивания или любым другим известным путем.
SU915010167A 1990-11-07 1991-11-06 Способ биоокисления минерального сырья RU2099432C1 (ru)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
AR90318330A AR245506A1 (es) 1990-11-07 1990-11-07 Un proceso de bio-metalurgica en el cual se produce la bio-oxidacion de compuestos minerales
AR318.330 1990-11-07

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2099432C1 true RU2099432C1 (ru) 1997-12-20

Family

ID=3478796

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU915010167A RU2099432C1 (ru) 1990-11-07 1991-11-06 Способ биоокисления минерального сырья

Country Status (21)

Country Link
EP (1) EP0489258B1 (ru)
JP (1) JP2854746B2 (ru)
AP (1) AP283A (ru)
AR (1) AR245506A1 (ru)
AT (1) ATE133998T1 (ru)
AU (1) AU643566B2 (ru)
BG (1) BG61042B1 (ru)
BR (1) BR9104843A (ru)
CA (1) CA2054806C (ru)
DE (1) DE69117016T2 (ru)
DK (1) DK0489258T3 (ru)
ES (1) ES2086453T3 (ru)
FI (1) FI915244A (ru)
GR (1) GR3019831T3 (ru)
MX (1) MX9101933A (ru)
PE (1) PE14091A1 (ru)
PL (1) PL168727B1 (ru)
RU (1) RU2099432C1 (ru)
UA (1) UA27709C2 (ru)
YU (1) YU176991A (ru)
ZA (1) ZA918770B (ru)

Families Citing this family (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES2087033B1 (es) * 1994-10-14 1997-02-16 Univ Madrid Autonoma Nuevo microorganismo del genero sulfolobus y su uso en la biolixiviacion de sulfuros metalicos para recuperacion de metales.
JP5090697B2 (ja) * 2005-09-26 2012-12-05 公立大学法人大阪府立大学 金属回収方法
JP5052834B2 (ja) * 2006-07-27 2012-10-17 Jx日鉱日石金属株式会社 黄銅鉱を含有する硫化銅鉱の浸出方法

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3607235A (en) * 1968-02-23 1971-09-21 British Columbia Res Council Rapid bacteriological metal extraction method
EP0129564A4 (en) * 1982-12-17 1985-07-01 Biotech Australia Pty Ltd BACTERIAL RECOVERY.
US4974816A (en) * 1986-02-07 1990-12-04 Envirotech Corporation Method and apparatus for biological processing of metal-containing ores
US4729788A (en) * 1987-01-23 1988-03-08 Advanced Mineral Technologies, Inc. Thermophilic microbial treatment of precious metal ores

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
US, патент, 4729778, кл. C 22 B 3/00, 1988. *

Also Published As

Publication number Publication date
MX9101933A (es) 1992-06-01
EP0489258B1 (en) 1996-02-07
CA2054806C (en) 2003-03-11
JPH0841553A (ja) 1996-02-13
YU176991A (sh) 1994-01-20
DK0489258T3 (da) 1996-07-01
CA2054806A1 (en) 1992-05-08
GR3019831T3 (en) 1996-08-31
AU8699391A (en) 1992-05-14
ATE133998T1 (de) 1996-02-15
BR9104843A (pt) 1992-06-23
FI915244A (fi) 1992-05-08
DE69117016D1 (de) 1996-03-21
AR245506A1 (es) 1994-01-31
PL168727B1 (pl) 1996-03-29
BG61042B1 (bg) 1996-09-30
AU643566B2 (en) 1993-11-18
PE14091A1 (es) 1991-04-27
UA27709C2 (ru) 2000-10-16
JP2854746B2 (ja) 1999-02-03
AP283A (en) 1993-09-09
ES2086453T3 (es) 1996-07-01
DE69117016T2 (de) 1996-11-14
AP9100333A0 (en) 1992-01-31
EP0489258A1 (en) 1992-06-10
ZA918770B (en) 1992-10-28
FI915244A0 (fi) 1991-11-06
PL292342A1 (en) 1992-10-19

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5763259A (en) Bio-metallurgical process in which bio-oxidation of mineral compounds is produced
US5332559A (en) Biooxidation process for recovery of metal values from sulphur-containing ore materials
Frankenberger Jr et al. Microbial volatilization of selenium from soils and sediments
CA2305052C (en) Bioleaching sulfidic materials
Murr et al. Direct observations of selective attachment of bacteria on low-grade sulfide ores and other mineral surfaces
Berthelin et al. Effect of microorganisms on mobility of heavy metals in soils
FR2475522A1 (fr) Procede pour separer des metaux de leurs solutions aqueuses par traitement a l'aide de champignons vivants
Elzeky et al. Effect of bacterial adaptation on kinetics and mechanisms of bioleaching ferrous sulfides
Groudev et al. Microbial communities in four industrial copper dump leaching operations in Bulgaria
de Silóniz et al. Feasibility of copper uptake by the yeast Pichia guilliermondii isolated from sewage sludge
Southam et al. Examination of lipopolysaccharide (O-antigen) populations of Thiobacillus ferrooxidans from two mine tailings
Battaglia-Brunet et al. The mutual effect of mixed thiobacilli and leptospirilli populations on pyrite bioleaching
US5030426A (en) Biomining of gallium and germanium containing ores
RU2099432C1 (ru) Способ биоокисления минерального сырья
Kawabe et al. Enhancement of the specific growth rate of Thiobacillus ferrooxidans by diatomaceous earth
Kanayev et al. The effect of temperature on the duration of the process of biochemical leaching method
Puhakka et al. Biological leaching of sulfide minerals with the use of shake flask, aerated column, air‐lift reactor, and percolation techniques
Baldi et al. Bioleaching of cobalt and zinc from pyrite ore in relation to calcitic gangue content
Acevedo et al. Biooxidation of an enargite-pyrite gold concentrate in aerated columns
KR100557410B1 (ko) 망간단괴의 중간생성물인 매트로부터 철산화균에 의한구리, 니켈, 코발트의 미생물침출 제련방법
Garcia et al. Microbial activity in weathering columns
Groza et al. Application of the BIOX process to the pretreatment of refractory sulphide gold ores and concentrates in order to increase Au and Ag recovery rate in hydrometallurgical extraction process [articol]
Monroy et al. A laboratory study on the behavior of Thiobacillus ferrooxidans during pyrite bioleaching in percolation columns
KR100557411B1 (ko) 섬아연광 정광으로부터 철산화균에 의한 아연의미생물침출 제련방법
Trudinger et al. Leaching of copper-bearing mineral substrates with wild microflora and with laboratory-bred strains of Thiobacillus ferrooxidans

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20051107