RU2071058C1 - Способ получения аффинного сорбента для выделения с-реактивного белка - Google Patents

Способ получения аффинного сорбента для выделения с-реактивного белка Download PDF

Info

Publication number
RU2071058C1
RU2071058C1 SU5036548A RU2071058C1 RU 2071058 C1 RU2071058 C1 RU 2071058C1 SU 5036548 A SU5036548 A SU 5036548A RU 2071058 C1 RU2071058 C1 RU 2071058C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
reactive protein
sorbent
preparing
glycosphosphocholine
isolation
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Е.Г. Молчанова
С.Ж. Токсамбаева
Е.Б. Мысякин
Н.Г. Евстратова
Г.А. Серебренникова
Original Assignee
Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им.Н.Ф.Гамалеи РАМН
Московский институт тонкой химической технологии им.М.В.Ломоносова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им.Н.Ф.Гамалеи РАМН, Московский институт тонкой химической технологии им.М.В.Ломоносова filed Critical Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им.Н.Ф.Гамалеи РАМН
Priority to SU5036548 priority Critical patent/RU2071058C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2071058C1 publication Critical patent/RU2071058C1/ru

Links

Images

Landscapes

  • Solid-Sorbent Or Filter-Aiding Compositions (AREA)

Abstract

Использование: изобретение относится к области биотехнологии, а именно, к способам получения диагностических препаратов и может быть использовано в медицине. Сущность изобретения: для выделения С-реактивного белка из асцитной жидкости человека используют аффинный сорбент, полученный на основе гликольфосфохолина, ковалентно связанного с аминозамещенной агарозной матрицей. Данный способ отличается от описанных ранее быстротой и простотой получения аффинного сорбента. 3 ил.

Description

Изобретение относится к биотехнологии, а именно, к способам получения диагностических препаратов и может быть использовано в медицине.
Известен способ получения аффинного сорбента для выделения С-реактивного белка (СРБ) путем присоединения n-диазонийфенилфосфохолина к модифицированной дипептидом глицилтирозин BrCN-активированной сефарозе 4В (1, 2).
К 20 мМ диметилэтаноламина в 10 мл эфира добавляют 2 мМ метилиодида, смесь перемешивают в течение 18 часов, добавляют 2 мМ n-нитрофенилдихлоридата и 2 мМ хинолина, растворенных в 0,5 мл ацетонитрила каждый, перемешивают в темноте при 0oC в течение 4-8 часов. После чего в смесь добавляют 1 мл пиридина, 0,2 мл дистиллированной воды, выдерживают 30 минут и упаривают. Сухой остаток растворяют в дистиллированной воде, пропускают через колонку содержащую 40 мл смолы Amberlite МВ-3, элюируют дистиллированной водой и лиофилизируют.
0,3 мМ полученного n-нитрофенилфосфохолина растворяют в метаноле и выдерживают 1 час при 1 атм Н2 в присутствии 10 мг 10% Pd/C, затем фильтруют на стеклянном фильтре и упаривают. Остаток немедленно растворяют в 2мл холодной 0,1 н НСl и обрабатывают NaNO 2 при 15oC.
К 500 мл BrCN-активированной сефарозы 4В ("Pharmacia") присоединяют 1,8 мМ глицилтирозина ("Sigma"). К гелю добавляют 0,5 мМ синтезированного n-диазонийфенилфосфохолина и перемешивают 20 часов.
Асцитную жидкость пропускают через аффинный сорбент, уравновешенный Ca2+-содержащим боратным буфером (рН 8,5), затем гель промывают этим же буфером до достижения близкого к нулю значения оптической плотности при 280 нм, после чего белок элюируют, используя боратный буфер с заменой хлористого кальция на этилендиаминтетрауксусную кислоту.
Однако недостатком данного способа получения аффинного сорбента для выделения СРБ является необходимость предварительного получения тирозинзамещенной матрицы и синтез сложного соединения - n-диазонийфенилфосфохолина.
Наиболее близким по своему техническому решению к предлагаемому способу является способ получения аффинного сорбента для выделения СРБ, заключающийся в присоединении к тиолзамещенной агарозе конъюгата гликольфосфохолина с бычьим сывороточным альбумином (3).
16 мМ кадмиевого комплекса sn-глицеро-3-фосфоолина ("Sigma") переводят в свободную форму с помощью ионообменной смолы AG 501 X-8 (Д). 14 мМ sn-глицеро-3-фосфохолина растворяют в 280 мл дистиллированной воды, добавляют 28 мМ сухого мета-периодата натрия и выдерживают 30 минут, после чего добавляют 28 мМ этиленгликоля и упаривают. Сухой остаток растворяют в 0,1 н уксусной кислоте, помещают на колонку, содержащую Sephadex G-15, элюируют 0,1 н уксусной кислотой. Фракции, содержащие гликольфосфохолин, объединяют и упаривают. 7,3 мМ гликольфосфохолина растворяют в 25 мл 0,2 М фосфатного буфера (рН 7.0), добавляют 14,5 мкМ бычьего сывороточного альбумина и 36,3 мМ цианборогидрида натрия в том же буфере. Смесь инкубируют при 37oC в течение 24 часов, диализуют против дистиллированной воды, фильтруют и лиофилизируют.
90 г агарозы Тoyoperl HW 65 ("Toyo Soda") промывают дистиллированной водой и суспендируют в 90 мл диглицидилового эфира 1,4-бутандиола и 90 мл 0,6 М NaOH, содержащего 180 мг NaBH4. Гель перемешивают 8 часов, промывают дистиллированной водой, суспендируют в 270 мл 1, M Na2S2O3, устанавливая рН 7,0 с помощью 1 М HCl, смесь инкубируют 16 часов. Затем гель промывают дистиллированной водой, суспендируют в 270 мл 25 мМ трео-2,3-дигидрокси-1,4-дитандитиола и перемешивают 90 минут при 30oC. Гель промывают ледяным 0,1 М фосфатным буфером (рН 6,0), содержащим 1 мМ этилендиаминтетрауксусной кислоты.
10,1 мг конъюгата гликольфосфохолина с бычьим сывороточным альбумином растворяют в 10,1 мл 0,1 М фосфатного буфера (рН 6,0), содержащего 44,1 мг N, N-о-фенилендималеимида, растворенного в 1 мл диметилформамида, смесь инкубируют 90 минут при 37oC, наносят на колонку с Sephadex G-25, элюируют фосфатным буфером. Фракции, содержащие малеимидированной конъюгат, объединяют.
9 г тиолзамещенного агарозного сорбента суспендируют в объединенном растворе малеимидированного конъюгата гликольфосфохолина с бычьим сывороточным альбумином и перемешивают 10-12 часов при 4oC.
Колонку с аффинным сорбентом уравновешивают Са2+-содержащим фосфатным буфером (рН 7,2), пропускают СРБ-положительную сыворотку, промывают тем же буфером до нулевого значения оптической плотности при 280 нм. С-реактивный белок элюируют с помощью фосфатного буфера (рН 7,2), содержащего этилендиаминтетрауксусную кислоту.
Однако недостатком этого способа получения аффинного сорбента для выделения СРБ является сложность и многостадийность получения фосфохолинсодержащего лиганда и тиолзамещенной агарозы.
Целью изобретения является упрощение получения аффинного сорбента, используемого для выделения С-реактивного белка.
Цель достигается использованием в качестве лиганда гликольфосфохолина, иммобилизованного на аминозамещенной агарозной матрице. Способ получения аффинного сорбента для выделения СРБ на основе гликольфосфохолина и приготовленной или коммерческой аминозамещенной агарозы (фиг.1), а также его применение для выделения СРБ иллюстрируются следующими примерами.
ПРИМЕР 1. Sn-глицеро-3-фосфолин, являющийся исходным соединением для используемого в качестве лиганда гликольфосфохолина, получают из яичного фосфатидилхолина согласно методу (4).
К 3,5 мл 100 мМ водного раствора Sn-глицеро-3-фосфолина добавляют 1 мМ сухого мета-периодата натрия и выдерживают 1-2 часа, добавляют 3 мМ этиленгликоля или глицерина и выдерживают еще 1 час. Раствор упаривают до сухого остатка, растворяют его в 0,1 н уксусной кислоте и наносят на колонку, содержащую Sephadex G-15, элюируют 0,1 и уксусной кислотой. Содержащие гликольфосфохолин фракции объединяют, выход гликольфосфохолина составляет 55-60%
1 г сухой BrCN-активизированной сефарозы 4В ("Pharmacia") суспендируют в 1 мМ HCL, промывают на стеклянном фильтре 0,1 М карбонатным буфером (рН 8,2-8,4). К суспензии агарозы в 3-кратном объеме карбонатного буфера добавляют 3,5 мМ триэтилтетраамина или гексаметилендиамина и перемешивают 10-12 часов. Затем гель промывают карбонатным буфером, суспендируют в 3-кратном объеме карбонатного буфера, добавляют объединенные фракции, содержащие гликольфосфохолин, и перемешивают в течение 10-12 часов. Емкость аффинного сорбента по фосфату составляет 24-28 мкМ/г сухого сорбента.
Пример 2. К 18 мл 50 мМ водного раствора Sn-глицеро-3-фосфохолина добавляют 1,8 мМ сухого мета-периодата натрия, смесь выдерживают 30 минут, после чего добавляют 310 мкл 1 мМ тиосульфата натрия. Разделение реакционной смеси проводят с помощью Sephadex G-15 как указано в примере 1.
2,5 г сухой АН-агарозы 4% ("Кемотех", Эстония) суспендируют в 1 мМ HCl, промывают 0,1 М карбонатным буфером (рН 8,2-8,4), суспендируют в 3-кратном объеме карбонатного буфера, добавляют объединенный раствор гликольфосфохолина и перемешивают 10-12 часов. После иммобилизации лиганда гель снова промывают карбонатным буфером. Емкость аффинного сорбента по фосфату составляет 24-28 мкМ/г сухого сорбента.
ПРИМЕР 3. Для выделения С-реактивного белка колонку, содержащую аффинный сорбент, уравновешивают Ca 2+ -содержащим трис-НСl буфером (рН 7,6-8,5), пропускают асцитную жидкость с содержанием СРБ не ниже 20 мкг/мл, промывают сорбент СА 2+ -содержащим трис-буфером до нулевого значения оптической плотности при 280 нм. С-реактивный белок элюируют трис-HCl буфером (рН 7,6-8,5) с заменой хлористого кальция на лимоннокислый натрий. Выход 60-75% чистота 90-95%
При анализе проб С-реактивного белка, выделенного с использованием описанных в примерах 1 и 2 сорбентов, с помощью электрофореза в полиакриламидном геле в присутствии додецилсульфата натрия выявлена одна полоса, соответствующая по молекулярной массе субъединице С-реактивного белка (фиг.1).
С помощью иммуноэлектрофореза показано, что пробы С-реактивного белка, выделенного с использованием описанных в примерах 1 и 2 сорбентов, реагируют с антисывороткой к нему с образованием одной линии преципитации, при использовании антисывороток к нормальным белкам человека линии преципитации отсутствуют (фиг.2).
Концентрацию выделенного С-реактивного белка определяют при помощи метода радиальной иммунодиффузии по Манчини в модификации Стефани Д.В. с соавт.

Claims (1)

  1. Способ получения аффинного сорбента для выделения С-реактивного белка, включающий взаимодействие замещенной агарозной матрицы с лигандом на основе sn-глицеро-3-фосфохолина с последующей промывкой, отличающийся тем, что в качестве замещенной агарозной матрицы используют аминозамещенную агарозу, в качестве лиганда используют гликольфосфохолин при их соотношении 1,0 0,042 соответственно и взаимодействие проводят при pH 8,2 8,4.
SU5036548 1992-04-08 1992-04-08 Способ получения аффинного сорбента для выделения с-реактивного белка RU2071058C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5036548 RU2071058C1 (ru) 1992-04-08 1992-04-08 Способ получения аффинного сорбента для выделения с-реактивного белка

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5036548 RU2071058C1 (ru) 1992-04-08 1992-04-08 Способ получения аффинного сорбента для выделения с-реактивного белка

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2071058C1 true RU2071058C1 (ru) 1996-12-27

Family

ID=21601471

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5036548 RU2071058C1 (ru) 1992-04-08 1992-04-08 Способ получения аффинного сорбента для выделения с-реактивного белка

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2071058C1 (ru)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2578387C2 (ru) * 2014-05-27 2016-03-27 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Балтийский государственный технический университет "ВОЕНМЕХ" им. Д.Ф. Устинова (БГТУ "ВОЕНМЕХ") Устройство охлаждения лопаток турбины газотурбинной установки
RU2700605C1 (ru) * 2019-03-25 2019-09-18 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ кардиологии" Минздрава России) Сорбент для сочетанного удаления из плазмы человека атерогенных липопротеидов и С-реактивного белка

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Osmand A.P., Mortensen R.F., Siegel, Hewurz H. - J.Exp.Med.- 1975, v. 142, p. 1065-1073. 2. Chesebro B., Metzger H. - Biochem., 1972, v. 11, p. 776-781. 3. Stultz N.L., Lee J.C., Hoppe C.A. et al. - Anal.Biochem. 1987, v. 161, p. 567 - 573. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2578387C2 (ru) * 2014-05-27 2016-03-27 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Балтийский государственный технический университет "ВОЕНМЕХ" им. Д.Ф. Устинова (БГТУ "ВОЕНМЕХ") Устройство охлаждения лопаток турбины газотурбинной установки
RU2700605C1 (ru) * 2019-03-25 2019-09-18 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр кардиологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ кардиологии" Минздрава России) Сорбент для сочетанного удаления из плазмы человека атерогенных липопротеидов и С-реактивного белка

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4308254A (en) Material able to fix reversibly biologial macromolecules, its preparation and its application
US5092992A (en) Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography
US4269605A (en) Method and kit for separation of glycoproteins
US3966898A (en) Method and reagent for determining immunologic materials
EP0040365B1 (en) An assaying method involving biospecific affinity reactions
JP3174637B2 (ja) 改質されたクロマトグラフィー用支持体材料
JPH0672161B2 (ja) アフイニテイクロマトグラフイ用材料の製法
JPH032560A (ja) 新規なクロマトグラフィー用固定担体
US5085779A (en) Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography
US4647655A (en) Method for splitting di-sulphide bonds and a compound obtained thereby
PT749435E (pt) Agente anti-interferencias para utilizacao em testes imunologicos
US4757003A (en) Method for the detection of cancer
HU215555B (hu) Eljárás variánsok koncentrációjának meghatározására, valamint az eljárásban használható analitikai vizsgálati készlet
US5112952A (en) Composition and method for isolation and purification of Immunoglobulin M
RU2071058C1 (ru) Способ получения аффинного сорбента для выделения с-реактивного белка
EP0460576A1 (en) Assay for cobalamins
EP0153763A2 (en) Affinity chromatography matrix with built-in reaction indicator
US5227311A (en) Intrinsic factor to determine B12
JPH0476579B2 (ru)
US5082929A (en) Immobilization of glycocompounds and glycoconjugates
EP0403700B1 (en) Polyethyleneimine matrixes for affinity chromatography
Larsson et al. Isolation of concanavalin A by affinity precipitation
US5990274A (en) Cyclosporine derivatives and uses thereof
EP0167152A2 (en) Protease adsorbent and process for purifying TPA utilizing the same
EP0216162A2 (en) A method of preparing indoles or indole derivatives, coupled via position 4, 5, 6, or 7, the indoles or indole derivatives concerned, as well as the use thereof