RU2042134C1 - Способ идентификации микобактерий м. tuberculosis и м. bovis - Google Patents
Способ идентификации микобактерий м. tuberculosis и м. bovis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2042134C1 RU2042134C1 RU92000899A RU92000899A RU2042134C1 RU 2042134 C1 RU2042134 C1 RU 2042134C1 RU 92000899 A RU92000899 A RU 92000899A RU 92000899 A RU92000899 A RU 92000899A RU 2042134 C1 RU2042134 C1 RU 2042134C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- mycobacteria
- tuberculosis
- bovis
- medium
- nutrient medium
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Использование: ветеринария, медицина. Сущность изобретения: для определения микобактерий туберкулеза в биологической пробе путем посева биологической пробы на твердую питательную среду, инкубации с последующим проведением газохроматографического анализа культуры клеток и регистрацией маркерного вещества используют среду следующего состава, г: KH2PO4 0,9700 1,0300, Na2HPO4 2,4250 2,5750, MgSO4 0,0485 - 0,0515, (NH4)2SO4 0,4850 0,5150, лимоннокислый натрий 0,0970 0,1030, пируват натрия 0,4850 0,5150, лимоннокислое железо 0,0390 0,0410, CuSO4 0,001, малахитовый зеленый 0,001, глицерин 1,94 2,06 мл, агар Дифко 14,5500 15,4500, дистиллированная вода до 1000 мл, а в качестве маркерного вещества пентоказановую кислоту C25:O. 1 табл.
Description
Изобретение относится к ветеринарии и медицине, в частности к лабораторным способам идентификации микроорганизмов, и может быть использовано для идентификации микобактерий туберкулеза.
Видовая идентификация штаммов микобактерий туберкулеза необходима для установления источника заболевания, что имеет значение при выборе противотуберкулезных мероприятий в очаге инфекций.
Известен способ видовой идентификации микобактерий туберкулеза по культуральным, бактериологическим и биологическим свойствам выделенных штаммов. Однако этот способ продолжителен во времени, недостаточно информативен из-за изменения культуральных, бактериологических и биологических свойств под влиянием различных факторов внешней среды и трудоемок.
Известен также способ определения микобактерий M. bovis, M. tuberculosis путем определения в газохроматографическом спектре жирных кислот, выросших на твердых питательных средах после селективной обработки патологического материала или образцов окружающей среды, соотношения гексакозановой (С26:0) и тетракозановой (С24:0) кислот. Однако клетки M. tuberculosis и M. bovis, выросшие на плотной яичной среде, имеют сходные профили жирных кислот. Видовая идентификация возможна на основе определения соотношения длиноцепочечных кислот, что требует затрат времени и труда.
Цель изобретения повышение специфичности и упрощение способа.
Это достигается тем, что для определения микобактерий туберкулеза в биологической пробе путем посева биологической пробы на твердую питательную среду, инкубации с последующим проведением газохроматографического анализа культуры клеток и регистрацией маркерного вещества, используют среду следующего состава: KH2PO4 0,9700-1,0300 г Na2HPO4 2,4250-2,5750 г MgSO4 0,0485-0,0515 г (NH4)2SO4 0,4850-0,5150 г
Лимоннокислый натрий 0,0970-0,1030 г Пируват натрия 0,4850-0,5150 г
Лимоннокислое железо 0,0390-0,0410 г CuSO4 0,001 г Малахитовый зеленый 0,001 г Агар Дифко (ПА) 14,5500-15,4500 г Глицерин 1,94-2,06 мл Дистиллированная вода До 1000 мл, в качестве маркерного вещества пентикозановую кислоту, при ее отсутствии определяют наличие микобактерий M. bovis, а при ее присутствии наличие микобактерий M. tuberculosis.
Лимоннокислый натрий 0,0970-0,1030 г Пируват натрия 0,4850-0,5150 г
Лимоннокислое железо 0,0390-0,0410 г CuSO4 0,001 г Малахитовый зеленый 0,001 г Агар Дифко (ПА) 14,5500-15,4500 г Глицерин 1,94-2,06 мл Дистиллированная вода До 1000 мл, в качестве маркерного вещества пентикозановую кислоту, при ее отсутствии определяют наличие микобактерий M. bovis, а при ее присутствии наличие микобактерий M. tuberculosis.
П р и м е р 1. Определяют специфичности питательной среды. Используют среду следующего состава: KH2PO4 0,9700 г Na2HPO4 2,4250 г NgSO4 0,0485 г (NH4)2SO4 0,4850 г Лимоннокислый натрий 0,0970 г Пируват натрия 0,4850 г Лимоннокислое железо 0,0390 г CuSO4 0,001 г Малахитовый зеленый 0,001 г Глицерин 1,94 мл Агар Дифко (ПА) 14,5500 г Дистиллированная вода До 1000 мл
Среду стерилизуют кипячением в течение 30 мин на водяной бане, горячей разливают по 5 мл в стерильные пробирки. Патологический материал засевают на селективную среду Левенштейна-Йенсена, визуально проверяют чистоту культуры и делают мазки с окраской по Цилю-Нильсену. Культуры со среды Левенштейна-Йенсена пересевают на среду в соответствии с изобретением. Штаммы выращивают в течение 2-3 недель при 37оС. Снятую с питательной среды бактериальную массу в количестве 2-5 мг помещают в ампулу, добавляют несколько капель (0,1-0,2 мл) 7% -ного раствора ГТМА в 80%-ном водном метаноле. Запаянные ампулы прогревают при 120-130оС в течение 15-20 мин, в результате проба приобретает вид прозрачного или опалесцирующего раствора.
Среду стерилизуют кипячением в течение 30 мин на водяной бане, горячей разливают по 5 мл в стерильные пробирки. Патологический материал засевают на селективную среду Левенштейна-Йенсена, визуально проверяют чистоту культуры и делают мазки с окраской по Цилю-Нильсену. Культуры со среды Левенштейна-Йенсена пересевают на среду в соответствии с изобретением. Штаммы выращивают в течение 2-3 недель при 37оС. Снятую с питательной среды бактериальную массу в количестве 2-5 мг помещают в ампулу, добавляют несколько капель (0,1-0,2 мл) 7% -ного раствора ГТМА в 80%-ном водном метаноле. Запаянные ампулы прогревают при 120-130оС в течение 15-20 мин, в результате проба приобретает вид прозрачного или опалесцирующего раствора.
2-3 мкл анализируемого материала вводят микрошприцом в испаритель газового хроматографа.
Газохроматографический анализ проводят на газовом хроматографе с пламенно-ионизационным детектором. Используют две стальные колонки длиной 1,5-2,0 м и диаметром 3 мм. Колонки заполняют целитом-545 (60-80 меш) с нанесенной на него жидкой фазой 7% апиезона 1. Приготовление сорбента и заполнение колонок проводят общепринятыми методами.
Основные рабочие параметры: температура термостата колонок в режиме программирования от 180 до 280оС при скорости нагрева 8оС в 1 мин; температура испарителя 370оС; расход газа-носителя и водорода 2,4 л/ч, воздуха 25 л/ч.
На хроматограммах микобактерий выявляются жирные кислоты с алифатической цепью, содержащей нечетное число атомов углерода. Основным отличительным признаком является наличие пентакозановой кислоты (С25:0). У микобактерий M. bovis пентакозановая кислота отсутствует, а у микобактерий M. tuberculosis присутствует.
П р и м е р 2. Проводят сравнительное изучение специфичности способа видовой идентификации в зависимости от состава среды.
45 штаммов микобактерий туберкулеза выращивают на картофельно-глицериновой среде Павловского с последующим проведением газохроматографического анализа, как в примере 1. Параллельно исследуют те же штаммы. В опыт берут штаммы из коллекции ГИСК им. Тарасевича и свежевыделенные от больных туберкулезом людей и крупного рогатого скота.
Свежевыделенные штаммы идентифицируют с применением культурально-биохимических методов (морфология клеток и колоний, скорость роста при 37оС, наличие роста при 22 и 45оС, наличие роста в среде с салицилатом натрия и с 5% NaCl, наличие ферментов: галактозидазы, уреазы, никотинамидазы, пиразинамидазы, гидролиза Твин-80, арилсульфатазы; редукция нитратов, наличие ниацина. Несколько штаммов идентифицированы до вида с помощью биопробы на кроликах.
Результаты представлены в таблице.
Из таблицы видно полное совпадение результатов биохимических, биологических и газохроматографических исследований, что указывает на специфичность способа в соответствии с изобретением.
П р и м е р 3. Проводят видовую идентификацию 53 штаммов микобактерий туберкулеза, отобранных из 120 штаммов микобактерий, выделенных на плотных яичных средах из патологического материала от больных людей и животных по результатам газохроматографического анализа жирных кислот известным способом. 53 штамма исследуют, как в примере 1.
Результаты идентификации: в спектре жирных кислот 29 штаммов микобактерий туберкулеза отсутствует пентакозановая кислота, их относят к M. bovis, в спектре жирных кислот 24 штаммов микобактерий туберкулеза присутствует пентакозановая кислота, их относят к M. tuberculosis.
Биохимические исследования чистой культуры подтвердили результаты видовой идентификации способом в соответствии с изобретением.
Проведенные исследования показали, что предложенный способ в соответствии с изобретением отвечает современным требованиям, обладает значительной разрешающей способностью при относительной простоте его осуществления.
Claims (1)
- СПОСОБ ИДЕНТИФИКАЦИИ МИКОБАКТЕРИЙ М TUBERCULOSIS И М BOVIS, включающий посев биологической пробы на твердую питательную среду на основе глицерина, инкубацию посевов с последующим проведением газохроматографического анализа полученной биомассы и идентификацией бактерий по жирным кислотам, отличающийся тем, что посев проводят на питательную среду следующего состава, г/л
KH2PO4 0,9700 1,0300
Na2HPO4 2,4250 2,5750
Mg S O4 0,0485 0,0515
(NH4)2SO4 0,4850 0,5150
Лимоннокислый натрий 0,0970 0,1030
Пируват натрия 0,4850 0,5150
Лимоннокислое железо 0,0390 0,0410
CuSO4 0,001
Малахитовый зеленый 0,001
Агар Дифко (ПА) 14,5500 15,4500
Глицерин 1,94 2,06
Дистиллированная вода До 1,0
из жирных кислот выделяют пентакозановую кислоту и при ее наличии идентифицируют микобактерии M. tuberculosis, а при ее отсутствии - микобактерии M.bovis.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU92000899A RU2042134C1 (ru) | 1992-10-15 | 1992-10-15 | Способ идентификации микобактерий м. tuberculosis и м. bovis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU92000899A RU2042134C1 (ru) | 1992-10-15 | 1992-10-15 | Способ идентификации микобактерий м. tuberculosis и м. bovis |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU92000899A RU92000899A (ru) | 1995-02-10 |
RU2042134C1 true RU2042134C1 (ru) | 1995-08-20 |
Family
ID=20130553
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU92000899A RU2042134C1 (ru) | 1992-10-15 | 1992-10-15 | Способ идентификации микобактерий м. tuberculosis и м. bovis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2042134C1 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2491551C1 (ru) * | 2011-12-26 | 2013-08-27 | Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СамГМУ Минздрава России) | Способ видовой идентификации микобактерий туберкулеза у лиц, инфицированных микобактериями туберкулеза |
CN109633045A (zh) * | 2018-12-20 | 2019-04-16 | 广州广电计量检测股份有限公司 | 一种液相色谱串联质谱同时测定水产品中6种色素残留量的方法 |
-
1992
- 1992-10-15 RU RU92000899A patent/RU2042134C1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР N 1735778, кл. G 01N 33/49, 1992. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2491551C1 (ru) * | 2011-12-26 | 2013-08-27 | Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Самарский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ГБОУ ВПО СамГМУ Минздрава России) | Способ видовой идентификации микобактерий туберкулеза у лиц, инфицированных микобактериями туберкулеза |
CN109633045A (zh) * | 2018-12-20 | 2019-04-16 | 广州广电计量检测股份有限公司 | 一种液相色谱串联质谱同时测定水产品中6种色素残留量的方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Levine | Mycoplasma contamination of animal cell cultures: a simple, rapid detection method | |
Udaka | Screening method for microorganisms accumulating metabolites and its use in the isolation of Micrococcus glutamicus | |
DeLand et al. | Automated radiometric detection of bacterial growth in blood cultures | |
FI67725B (fi) | Foerfarande foer framstaellning av enheter avsedda foer bestaemning av antibiotika- och sulfarester i biologiska vaetskor och framstaellda enheter | |
JPH012596A (ja) | エシェリヒア・コリーの計数方法 | |
NO823282L (no) | Fremgangsmaate for identifisering av mikroorganismer. | |
Sanwal | Investigations on the metabolism of Fusarium lycopersici Sacc. with the aid of radioactive carbon | |
Jesumirhewe et al. | Accuracy of conventional identification methods used for Enterobacteriaceae isolates in three Nigerian hospitals | |
Guernion et al. | Identifying bacteria in human urine: current practice and the potential for rapid, near-patient diagnosis by sensing volatile organic compounds | |
US4421849A (en) | Method for biological screening | |
FI57128B (fi) | Saett att identifiera mikroorganismer | |
RU2042134C1 (ru) | Способ идентификации микобактерий м. tuberculosis и м. bovis | |
JP2004523223A (ja) | 微生物を特異的に検出するためのinsituハイブリダイゼーション装置 | |
Larsson et al. | Diagnosis of bacteraemia by automated head-space capillary gas chromatography. | |
Petrie et al. | Specific identification of the chief pathogenic clostridia of gas gangrene | |
Heller | Principles Concerning the Isolation of Anaerobes Studies in Pathogenic Anaerobes. Ii | |
Slanetz et al. | Evaluation of membrane filters for the determination of numbers of coliform bacteria in water | |
Anderson et al. | Bacterial suspensions for the growth of Naegleria species | |
Wimpenny et al. | The use of two-dimensional gradient plates in determining the responses of non-sulphur purple bacteria to pH and NaCl concentration | |
EA036766B1 (ru) | Способ выявления патогенов | |
Kirthi et al. | Isolation and Identification of Bacterial Strains with Fatty Acid Methyl Ester (FAME) Analysis | |
Muttawar et al. | Fatty acid profiling of enterococcal isolates by Fames analysis with reference to antibiotic resistance from clinical samples collected in the Chandrapur region | |
EP3740585B1 (en) | Improving detection of microorganisms | |
RU2666257C1 (ru) | Способ определения чувствительности бактериальных гемокультур к антибиотикам | |
RU2203316C2 (ru) | Штамм бактерий yersinia pestis, используемый в качестве тест-штамма, резистентного к чумному бактериофагу л-413 "с" |