PL91092B1 - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
PL91092B1
PL91092B1 PL16535373A PL16535373A PL91092B1 PL 91092 B1 PL91092 B1 PL 91092B1 PL 16535373 A PL16535373 A PL 16535373A PL 16535373 A PL16535373 A PL 16535373A PL 91092 B1 PL91092 B1 PL 91092B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
hormone
discs
methods
buffer
hormones
Prior art date
Application number
PL16535373A
Other languages
English (en)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Priority to PL16535373A priority Critical patent/PL91092B1/pl
Publication of PL91092B1 publication Critical patent/PL91092B1/pl

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób radioimmunologi¬ cznego oznaczania substancji biologicznych, zwlaszcza hormonów, w plynach ustrojowych, przy uzyciu swoistych przeciwcial, kowalencyjnie zwiazanych z nierozpuszczal¬ nym nosnikiem.
Metody radioimmunologiczne, oparte na ilosciowym wiazaniu hormonu ze swoistym dla niego przeciwcialem, pozwalaja na oznaczanie nanogramowych ilosci hormo¬ nów w surowicach, ekstraktach tkankowych i plynach ustrojowych. W chwili obecnej metody te ze wzgledu na wysoka czulosc i swoistosc stanowia jedyna mozliwosc dokladnego oznaczania hormonów we krwi ludzkiej i sa szeroko stosowane w laboratoriach klinicznych i nauko¬ wo-badawczych. Powstalo wiec zapotrzebowanie na kom¬ pletny, wystandaryzowanyzestaw odczynników, pozwala¬ jacych na rutynowe wykonywanie analiz.
Dotychczasowe sposoby przeprowadzania radioimmu- nologicznych oznaczen hormonówwplynach ustrojowych, wykonywane za pomoca metody podwójnych przeciwcial lub tzw. fazy stalej, wykazuja duzo wad analitycznych.
Metoda podwójnych przeciwcial, polegajaca na wytra¬ ceniu kompleksu hormonu ze swoistym dla niego przeciw¬ cialem za pomoca drugiego przeciwciala, skierowanego przeciwko przeciwcialu, zwiazanemu w kompleks, wyma¬ ga uzycia trzech róznych surowic, jest pracochlonna w wy¬ konaniu i daje wynik dopiero po 3 - 5 dniach. Wynik ten uzalezniony jest od stalych dysocjacji dwu róznych kom¬ pleksów, znajdujacych sie w roztworze,przez coobciazony jest dodatkowym bledem.
W metodach fazy stalej do oddzielenia kompleksu od hormonu wolnego zamiast drugiego przeciwciala uzywane sa nierozpuszczalne sorbenty takie, jak talk, wegiel akty¬ wowany lub probówki, ewentualnie krazki z tworzyw sztucznych. Sa to jednak metody oparte na nieswoistych wlasciwosciach sorbcyjnych tych nosników, wobec czego pozbawione sa podstaw teoretycznych i nie zapewniaja nalezytej powtarzalnosci wyników.Dla podniesienia swo¬ istosci metod fazy stalej próbowano stosowac przeciwcia¬ la, kowalencyjne zwiazane z nierozpuszczalnym rozdrob¬ nionym nosnikiem. Jednakze stosowane do tego celu nosni¬ ki takie, jak proszek celulozowy czy hydrofilne zele (agar i jego pochodne), nie spelniajazadowalajaco swojego zada¬ nia ze wzgledu na zbyt rozwinieta powierzchnie i efekt sita molekularnego. Dodatkowa trudnosc w wykonaniu anali¬ zy sprawia sposób równomiernego rozdawkowania bardzo malych ilosci nosnika.
Sposób wedlug wynalazkupozbawionyjestwaddotych¬ czas stosowanych metod i polega na reakcji pomiedzy przeciwcialem, immobilizowanym na krazku bibuly, a hormonem, znajdujacym sie w roztworze. Kowalencyjne przywiazanie przeciwciala do bibuly zostalo osiagniete przez aktywacje grup -OH w celulozie za pomoca prostej reakcji np. bromocjanowania. Fakt, ze przeciwciala zosta¬ ly zwiazane zkrazkami bibuly, a nie rozdrobnionym nosni¬ kiem w zasadniczy sposób upraszcza metodyke postepo¬ wania. Krazki bibuly z przylaczonascisleokreslonailoscia przeciwcial umieszcza sie w roztworach, zawierajacych sladowa ilosc hormonu znakowanego i próby badane, wzglednie wzorcowe roztwory hormonów, sluzace do spo¬ rzadzenia krzywej kalibracyjnej. Po 15-20 godzinnej inku- 91 092/ 91 092 bacji w temperaturze pokojowej, krazki plucze sie woda i oznacza ich radioaktywnosc. Ilosc zwiazanego przez krazki hormonu znakowanego maleje wraz ze wzrostem stezenia hormonu nieznakowanego w mieszaninieinkuba- cyjnej. Pozwala to z prostolinijnego odcinka krzywej ka- libracyjnej odczytac ilosc hormonu, zawartego w próbie badanej.
Test wykonuje sie w sposób bardzo prosty, przy czym pomijane sa klopotliwe zabiegi oddzielania i plukania sladowych ilosci osadów za pomoca kilkakrotnego wiro¬ wania w ochlodzonych wirówkach, badz tez ich saczenia przez saczki membranowe.
Warunki analityczne wieludotychczas stosowanych me¬ tod pozwalaly na pomiar hormonów w surowicachdopiero po 2-3krotnym ich rozcienczeniu. Sprawa uwzgledniania, badz nieuwzgledniania tego wstepnego rozcienczenia su¬ rowic, jest zródlem wielu kontrowersji i utrudnia porów¬ nywanie wyników, uzyskiwanych przez rózne laboratoria.
Sposób wedlug wynalazku pozwala wykonywac pomiar w surowicach nierozcienczonych, a wiec prowadzi do oznaczenia rzeczywistej zawartosci hormonu w próbie.
Przyklad: Do 3000 krazków, wycietych z bibuly fil¬ tracyjnej, o srednicy 0,5 cm, zawieszonych w 600 ml wody dodano 600 ml 4% wodnego roztworu CNBr. Reakcje bromocjanowania prowadzonoprzez20minutw pH = 10,5 - 11,0, utrzymywanym przez automatyczne dawkowanie 2N NaOH, przy lagodnym mieszaniu. Nastepnie krazki przeplukano na lejku ochlodzona woda i 0,1 M buforem weglanowym o pH = 8,5. Natychmiast po odmyciu krazki umieszczono w 450 ml buforu weglanowego, zawierajace¬ go 300 ng gammaglobuliny przeciwko ludzkiemu hormo¬ nowi wzrostu (tj. 0,5 ng/cm2) i lagodnie mieszano przez noc , w temperaturze 4°C. Nastepnie krazki po przemyciu 0,5M NaHC03, woda, 0,1M buforem octanowym o pH = 4,0, woda i 0,5 M roztworem glicynyprzechowywano w buforze fosforanowym o pH = 7,4, zawierajacym 0,05% azydku sodu w temperaturze 4°C. Przydatnosc tak przygotowa¬ nych krazków do oznaczen radioimmunologicznych sprawdzono w sposób nastepujacy. Do szeregu probówek dano po 10 fil (0,5 ng) hormonu wzrostu, znakowanego 40 jodem radioaktywnym, rfastepnie do czesci probówek do¬ dano po 0,5 ml kalibrujacych roztworów, zawierajacychod 0,0625 do 16 ng hormonu wzrostu, a do pozostalych po 0,1 ml badanych surowic i 0,4 ml buforu weronalowego, za¬ wierajacego 0,2% albuminywolowej. Bufor tenbyl uzywa¬ ny do rozcienczania wszystkich pozostalych roztworów.
Wyniki obliczano w stosunku do próbek odniesienia, za¬ wierajacych tylko hormon znakowany i 0,5 ml buforu weronalowego. W kazdej z probówek umieszczano krazek bibuly i poddawano je wytrzasaniu przez 15-20 godzin, w temperaturze pokojowej, po czym krazki oplukiwano woda i liczono ich radioaktywnosc. Ilosc impulsów, znale¬ ziona na krazkach, zmniejszala sie wraz ze wzrostem stezenia hormonu nieznakowanego w mieszaninie inkuba- cyjnej. Zakres stezen hormonu nieznakowanego, wktórym zachowana byla prostolinijnosc krzywej kalibracyjnej wy¬ nosil od 0,0625 do 8,0 ng, co pozwalalo oznaczyc od 0,6 do 80 ng hormonu wzrostu w 1 ml surowicy, gdyz do analizy brano po 0,1 ml surowicy. Zakres ten moze byc jednak regulowany iloscia przylaczonych do krazka bibuly prze¬ ciwcial, co w zaleznosci od potrzeb umozliwia oznaczanie zarówno malych, jak i duzych ilosci hormonu. Analiza wielu róznych surowic wykazala, ze ilosc oznaczanego w nich hormonu wzrostu proporcjonalnie malala wraz z rozcienczaniem surowicy.
Opisana metoda daje mozliwosc wprowadzeniana rynek znacznie tanszych i dogodniejszych w uzyciu zestawów, niz dotychczas dostepnych zestawów podwójnych prze¬ ciwcial do radioimmunologicznych oznaczen hormonów. .%/..

Claims (1)

1. Zastrzezenie patentowe Sposób radioimmunologicznego oznaczania substancji biologicznych, zwlaszcza hormonów, w plynach ustrojo¬ wych przy uzyciu swoistych przeciwcial, kowalencyjnie zwiazanych z nierozpuszczalnym nosnikiem, znamienny tym, ze swoiste przeciwciala przylacza sie kowalencyjnie do bibuly, uprzednio zaktywowanej, korzystnie bromocy- janem. Sklad wykonano w DSP, zam 2245'ZC Druk w UPPRL, n..k!al i:>:'. -i 20 *
PL16535373A 1973-09-21 1973-09-21 PL91092B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL16535373A PL91092B1 (pl) 1973-09-21 1973-09-21

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL16535373A PL91092B1 (pl) 1973-09-21 1973-09-21

Publications (1)

Publication Number Publication Date
PL91092B1 true PL91092B1 (pl) 1977-02-28

Family

ID=19964136

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL16535373A PL91092B1 (pl) 1973-09-21 1973-09-21

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL91092B1 (pl)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4108972A (en) Immunological reagent employing radioactive and other tracers
US3853987A (en) Immunological reagent and radioimmuno assay
CA1336577C (en) Lateral flow chromatographic binding assay device
US4956302A (en) Lateral flow chromatographic binding assay device
CA1184114A (en) Assay method and device
TW297094B (pl)
JPH0654313B2 (ja) 即時配位子検出分析法及びこれに用いる検出試験用キット
US4222743A (en) Method and apparatus for detecting biological particles by fluorescent stain
JPH076984B2 (ja) 複数項目分析方法
CN113933502B (zh) 一种免疫荧光层析法定量检测叶酸的检测卡及试剂盒
ATE77149T1 (de) Verfahren und testkit zur bestimmung freier wirkstoffe in biologischen fluessigkeiten.
JPS62110155A (ja) 免疫分析用試薬および免疫分析方法
TW494238B (en) Chromatographic test pieces and chromatographic assay
RU2379691C1 (ru) Способ многоаналитного иммуноанализа с использованием микрочастиц
JP2003215126A (ja) 微生物抗原の抽出方法
JPS5984162A (ja) 免疫分析法
JPS61128168A (ja) 免疫分析方法
US3710117A (en) Vitro test system for assessing thyroid function
CN117169519B (zh) 用于检测样本中tt3和/或tt4的解离剂和试剂盒
PL91092B1 (pl)
EP0241042A2 (en) A method for cell analysis
JPS6075298A (ja) 環境有害物質の検出方法
US3476514A (en) Cancer cytoscreening
JPH03505920A (ja) 検出方法
EP1716420A1 (en) Method for a rapid test