PL224560B1 - Test diagnostyczny do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1 - Google Patents

Test diagnostyczny do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1

Info

Publication number
PL224560B1
PL224560B1 PL405522A PL40552213A PL224560B1 PL 224560 B1 PL224560 B1 PL 224560B1 PL 405522 A PL405522 A PL 405522A PL 40552213 A PL40552213 A PL 40552213A PL 224560 B1 PL224560 B1 PL 224560B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
protein
antibodies
igy
detection
hiv
Prior art date
Application number
PL405522A
Other languages
English (en)
Other versions
PL405522A1 (pl
Inventor
Marcin Sieńczyk
Agnieszka Łupicka-Słowik
Renata Grzywa
Maciej Walczak
Kamila Bobrek
Andrzej Gaweł
Stephane Boivin
Ewa Burchacka
Original Assignee
Politechnika Wroclawska
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Wroclawska filed Critical Politechnika Wroclawska
Priority to PL405522A priority Critical patent/PL224560B1/pl
Publication of PL405522A1 publication Critical patent/PL405522A1/pl
Publication of PL224560B1 publication Critical patent/PL224560B1/pl

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Przedmiotem wynalazku jest test diagnostyczny do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1 charakteryzujący się tym, że jako czynnik detekcyjny zawiera przeciwciała poliklonalne klasy IgY specyficzne wobec epitopu białka gp120(416-439) izolowane z żółtka jaj drobiu immunizowanego białkowym antygenem w postaci koniugatu fragmentu epitopowego białka gp120(416-439) o sekwencji Cys-LPSRIKQIINMWQEVGKAMYAPPI z białkiem nośnikowym -albuminą wołową.

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest test diagnostyczny do detekcji białka gp120(416-439) wirusa HIV-1, znajdujący zastosowanie w diagnostyce infekcji wirusem HIV-1.
Białko gp120 jest powierzchniowym białkiem wirusa ludzkiego niedoboru odporności typu 1 (HIV-1), które odpowiedzialne jest za wnikanie wirusa do komórek ludzkiego układu immunologicznego. Specyficzne oddziaływanie białka gp120 z receptorem CD4 obecnym na powierzchni komórek układu immunologicznego zmienia konformację białka gp120, co prowadzi do powstania dodatkowego miejsca wiązania z koreceptorem CCR5 lub CXCR4. Powoduje to zbliżenie cząsteczki wirusa do membrany oraz fuzji wirusa z komórką docelową. Po wniknięciu do wnętrza komórki wirus ulega repl ikacji co prowadzi do rozwoju infekcji [Tomaras GD, Greenberg ML, Mechanisms for HIV-1 Entry: Current Strategies to Interfere with This Step, Curr Infect Dis Rep. 2001, 3:93-99; Sierra-Aragón S, Walter H, Targets for inhibition of HIVreplication: entry, enzyme action, release and naturation. Intervirology, 2012, 55:84-97].
Opisane w literaturze i używane w diagnostyce infekcji HIV-1 przeciwciała (zarówno poliklonalne i monoklonalne) pochodzą głównie z myszy, królika, owcy oraz kozy. Brak jest doniesień literatur owych i patentowych dotyczących wytwarzania i zastosowania przeciwciał ptasich (IgY) specyficznych wobec białka gp120 pochodzącego z wirusa HIV-1 zarówno w celach diagnostycznych i terapeutycznych. Znane są jedynie przeciwciała IgY skierowane wobec białka tat wirusa HIV-1 [produkty firm Novus Biologicals czy Acris].
Epitop białka gp120(416-439) został wybrany ze względu na swą potencjalnie wysoką immunogenność, a także ze względu na niski współczynnik mutacji w różnych typach i szczepach wirusa HIV-1. Epitop gp120(416-439) jest częścią pętli β19-β21 odpowiedzialnej za wiązanie białka gp120 z receptorem CD4. Obejmuje aminokwasy od reszty 416 do 439 (PDB:1G9M) o strukturze przedstawionej wzorem 1.
Immunoglobuliny Y są podstawową klasą przeciwciał występującą u ptaków. Pełnią analogiczne funkcje do ssaczych przeciwciał IgG. Przeciwciała IgY nie wykazują interakcji z czynnikiem reumatoidalnym, białkiem A oraz białkiem G, nie aktywują ludzkiego systemu dopełniacza oraz nie wiążą się z przeciwciałami HAMA, co znacznie ogranicza ilość fałszywie pozytywnych wyników uzyskiwanych w testach diagnostycznych. Dodatkowo, ze względu na dużą odległość filogenetyczną, immunizacja ptaków z wykorzystaniem antygenów pochodzących od ssaków daje wysoką i długo utrzymującą się odpowiedź immunologiczną w postaci produkcji specyficznych przeciwciał IgY. Dzięki obecności dużej ilości (około 80-130 mg) przeciwciał IgY w żółtku jaj możliwe jest wykorzystanie ich jako źródła spec yficznych przeciwciał bez konieczności skrwawiania zwierząt. Ptasie przeciwciała klasy IgY stanowią cenne narzędzie diagnostyczne, ze względu na zalety wynikające z nieinwazyjnej technologii ich produkcji oraz reaktywności odróżniających je od stosowanych w diagnostyce ssaczych przeciwciał IgG. Immunoglobuliny Y specyficzne wobec epitopu białka gp120(416-439) umożliwiające detekcję antygenu specyficznego dla wirusa HIV-1 nie zostały dotychczas opisane w literaturze naukowej i patentowej, a także nie są dostępne handlowo.
Istotą testu diagnostycznego do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1 według wynalazku jest to, że jako czynnik detekcyjny zawiera przeciwciała poliklonalne klasy IgY specyficzne wo bec epitopu białka gp120(416-439), które izolowane są z żółtka jaj drobiu immunizowanego białkowym antyg enem w postaci koniugatu fragmentu epitopowego białka gp120(416-439) o sekwencji Cys-LPSRIKQIINMWQEVGKAMYAPPI, z białkiem nośnikowym - albuminą wołową.
Korzystnie przeciwciała mają masę cząsteczkową od 175000 do 200000 daltonów.
Test diagnostyczny do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1 według wynalazku znajduje zastosowanie w diagnostyce infekcji wirusem HIV-1 do wykrywania antygenu gp120 wirusa HIV-1, dzięki temu, że zastosowane przeciwciała skierowane wobec krótkiego fragmentu rozpoznają całe białko.
Wyizolowane przeciwciała poddaje się analizie biochemicznej w celu określenia ich czystości, miana, specyficzności antygenowej i stężenia. W trakcie procesu immunizacji analizę przeciwciał prowadzi się dla każdego pobranego jaja w okresie 20 tygodni. Odpowiedź organizmu w postaci produkcji specyficznych przeciwciał IgY pojawia się po 4 tygodniu od momentu rozpoczęcia immunizacji.
Diagnostyczne wykorzystanie otrzymanych przeciwciał anty-gp120(416-439) IgY polega na ich zdolności do specyficznego wiązania z antygenem, którym jest natywne/pełnołańcuchowe białko gp120. Dzięki związaniu przeciwciał IgY możliwa jest pośrednia detekcja białka gp120 przy użyciu
PL 224 560 B1 dowolnych przeciwciał drugorzędowych anty-IgY (np. królicze przeciwciała IgG anty-IgY) zawierających dowolny znacznik (peroksydaza chrzanowa, fosfataza alkaliczna, biotyna, fluoresceina).
Przedmiot wynalazku przedstawiony jest bliżej w przykładach jego wykonania oraz na rysunku na którym:
Fig. 1 przedstawia analizę elektroforetyczna (SDS-PAGE, 4-12%) w warunkach nieredukujących otrzymanych przeciwciał IgY specyficznych wobec białka gp120. Barwienie wykonano przy użyciu barwnika Coomassie R 250.
Fig. 2 przedstawia wykres przedstawiający odpowiedź w postaci produkcji specyficznych wobec białka gp120 przeciwciał IgY. Strzałkami oznaczono czas immunizacji.
Fig. 3 przedstawia wykres przedstawiający limit detekcji epitopu gp120(416-439) przez otrzymane przeciwciała IgY.
Fig. 4 przedstawia wykres mianowania przeciwciał IgY do detekcji gp120(416-439).
Fig. 5 przedstawia limit detekcji epitopu gp120(416-439) przez otrzymane specyficzne przeciwciała IgY (dot blot).
Fig. 6 przedstawia miano przeciwciał IgY anty-gp120(416-439) (dot blot).
Fig. 7 przedstawia zdolność krzyżowej detekcji białka gp120 przez otrzymane przeciwciała IgY specyficzne wobec epitopu gp120(416-439); P - kontrola pozytywna, K - kontrola negatywna, 1,2,3-przeciwciała IgY specyficzne wobec epitopu gp120(416-439) (różne izolaty).
P r z y k ł a d 1
1.1 Synteza peptydowego antygenu
Peptyd o sekwencji Cys-LPSRIKQIINMWQEVGKAMYAPPI otrzymuje się na drodze syntezy na podłożu stałym z użyciem żywicy H-L-Ile-2-Cl-Trt (0,92 mmol/g). Etapy sprzęgania kolejnych aminokwasów prowadzi się przy użyciu HBTU jako czynnika sprzęgającego w obecności DIPEA. Do usunięcia grupy ochronnej Fmoc stosuje się 20% roztwór piperydyny w DMF. W celu odłączenia peptydu od żywicy stosuje się mieszaninę TFA/TIPS/EDT/fenol w stosunku 92,5:2,5:2,5:2,5 (v/v). Otrzymany peptyd oczyszcza się z za pomocą chromatografii HPLC, a masę cząsteczkową oczekiwanego produktu potwierdza metoda wysokorozdzielczej spektrometrii mas (HRMS).
1.2 Otrzymywanie koniugatu gp120(416-439)-BSA
Do roztworu białka BSA w 10 mM buforze fosforanowym (pH 7,0) dodaje się roztwór GMBS w DMSO. Reakcję prowadzi się 2 h w temperaturze pokojowej, po czym zaktywowane białko BSA-MB oczyszcza z wykorzystaniem chromatografii żelowej. Frakcje zawierające białko łączy się i dodaje roztwór peptydu delikatnie mieszając. Wartość pH mieszaniny utrzymuje się w granicach 7,2-7,4 przy pomocy 1M wodnego roztworu NaOH. Postęp reakcji monitoruje się przy użyciu chromatografii HPLC.
1.3 Synteza koniugatu gp120(416-439)-KLH
Do roztworu białka KLH w buforze fosforanowym powoli dodaje się roztwór GMBS w DMSO. Reakcję prowadzi się 30 min w temperaturze pokojowej po czym zaktywowane białko KLH-MB oczyszcza się z wykorzystaniem chromatografii żelowej. Frakcje zawierające białko łączy się a następnie dodaje się roztwór peptydu. Wartość pH mieszaniny utrzymuje się w granicach 7,0-7,4 przy pomocy 1 M wodnego roztworu NaOH. Postęp reakcji monitoruje się przy użyciu chromatografii HPLC.
P r z y k ł a d 2
2.1. Przygotowanie antygenu do immunizacji
Koniugat gp120(416-439)-BSA (o sekwencji peptydu przedstawionej wzorem 1) rozpuszcza się tuż przed wykonaniem iniekcji w mieszaninie sterylnego roztworu soli fizjologicznej i pełnego adiuwa ntu Freund'a (1:1, v/v) przy pierwszej immunizacji oraz niepełnego adiuwantu Freund'a (1:1, v/v) dla dawek przypominających.
2.2. Immunizacja zwierząt
Kury hodowlane, rasy White Leghorn immunizuje się przez podanie domięśniowe antygenu, w ilości 100 pg/zwierzę (300 pl). Immunizację powtarza się następnie po 4 i 8 tygodniach stosując antygen, w ilości 100 pg na zwierzę. Grupa kontrolna otrzymuje iniekcję roztworu soli fizjologicznej zawierającej jedynie pełny adiuwant Freund'a (1:1, v/v, 300 pl/zwierzę).
2.3. Pobieranie i przechowywanie materiału biologicznego
Jaja kolekcjonuje się codziennie od następnego dnia po immunizacji przez 20 tygodni i przechowuje w temperaturze 4°C do czasu izolacji przeciwciał.
2.4. Izolacja przeciwciał IgY
Jaja przemywa się 50% roztworem izopropanolu, a następnie rozdziela żółtko od białka. Po usunięciu błony białkowej otaczającej worek żółtkowy płynną zawartość rozcieńcza się pięciokrot4
PL 224 560 B1 nie buforem fosforanowym (10 mM, pH 7,4), a następnie dodaje glikol polietylenowy 6000 (PEG 6000) do końcowego stężenia 3,5%. Po dokładnym wymieszaniu całość wiruje się (11 000 rpm, 15 min, 4°C), a otrzymany supernatant filtruje przez sączek bibułowy. Do supernatantu dodaje się następnie PEG 6000 do końcowego stężenia 12%. Po dokładnym wymieszaniu wytrącony osad odwirowuje się (11 000 rpm przez 15 min. w 4°C). Supernatant odrzuca się, a osad zawierający przeciwciała klasy IgY rozpuszcza dokładnie w buforze fosforanowym (pH 7,4) w objętości 10 ml i dodaje PEG 6000 do końcowego stężenia 12%. Wytrącony osad zawierający czyste przeciwciała IgY odwirowuje się a uz yskany osad rozpuszcza w 5 ml buforu PBS. Po wykonaniu analiz biochemicznych roztwory przeciwciał przechowuje się w temperaturze -20°C. Stężenie otrzymanych białek określa się spektrofotometrycznie (A280). Czystość wyizolowanych przeciwciał zawiera się w zakresie 85-95% (Fig. 1.).
P r z y k ł a d 3.
Analiza odpowiedzi immunologicznej na podany antygen oraz awidność przeciwciał anty-gp120(416-439) w czasie procesu immunizacji
Do analizy odpowiedzi immunologicznej immunizowanych zwierząt i określenia miana produkowanych przeciwciał zastosowano test ELISA. Płytki mikrotitracyjne 96-cio dołkowe pokryto antygenem KLH-gp120(416-439) (50 ng/100 pL) rozpuszczonym w buforze węglanowym (50 mM, pH 9,6) i inkubowano w temperaturze 4°C przez 12 godzin. Wolne miejsca zablokowano następnie przy użyciu 5% roztworu mleka odtłuszczonego w buforze fosforanowym zawierającym 0,05% (v/v) Tween-20 w temperaturze 37°C w czasie 120 minut. Po odmyciu czynnika blokującego specyficzne oraz kontrolne przeciwciała rozcieńczone w 0,5% roztworze mleka odtłuszczonego w buforze fosforanowym zawierającym 0,05% (v/v) Tween-20 (10 mM, pH 7,4) naniesiono na opłaszczoną antygenem płytkę mikrotitracyjną (1:100) i inkubowano przez 2 godziny w temperaturze 37°C. W celu oznaczenia awidności przeciwciał część próbek inkubowano z 6M roztworem mocznika w PBS-T. Detekcję kompleksów gp120(416-439)-przeciwciało IgY wykonano przy użyciu przeciwciała króliczego anty-IgY sprzężonego z peroksydazą chrzanową przy zastosowaniu O-fenylodiaminy jako chromogenicznego substratu. Pomiaru absorbancji dokonano przy długości fali 490 nm za pomocą czytnika mikropłytek. Wszystkie pomiary wykonano w dwóch powtórzeniach (Fig. 2).
P r z y k ł a d 4.
Limit detekcji gp120(416-439) w teście ELISA
W celu określenia limitu detekcji epitopu gp120(416-439) przez otrzymane specyficzne przeciwciała IgY wykorzystano enzymatyczny test immunosorpcyjny fazy stałej (ELISA) w sposób opisany powyżej. W tym celu 96-cio dołkową płytkę mikrotitracyjną opłaszczono koniugatem KLH-gp120 (416-439) w różnych stężeniach w przedziale od 1000 ng/ml do 2,5 ng/ml (100 pl/studzienkę; w przeliczeniu na ilość peptydu). Następnie inkubowano z roztworem otrzymanego specyficznego wobec gp120(416-439) przeciwciała IgY rozcieńczonego 500-krotnie roztworem mleka odtłuszczonego w PBS-T. Detekcję kompleksów gp1 20(416-439)-IgY przeprowadzono przy użyciu przeciwciała króliczego anty-IgY skoniugowanego z peroksydazą chrzanową przy zastosowaniu O-fenylenodiaminy jako chromogenicznego substratu. Pomiaru absorbancji dokonano przy długości fali 490 nm za pomocą czytnika mikropłytek. Jako kontroli użyto przeciwciała IgY z grupy kontrolnej w analogicznych rozcieńczeniach. Wszystkie pomiary wykonano w dwóch powtórzeniach (Fig. 4).
P r z y k ł a d 5.
Miano przeciwciał - test ELISA.
Miano otrzymanych przeciwciał specyficznych wobec epitopu gp120(416-439) określono przy użyciu testu ELISA. Płytkę opłaszczono koniugatem KLH-gp120(416-439) w ilości 50 ng/studzienkę. Przygotowano następnie serię rozcieńczeń przeciwciał IgY w zakresie od 1:100 do 1:50000 i inkubowano z opłaszczoną antygenem płytką. Detekcję kompleksów gp120(416-439)-IgY przeprowadzono przy użyciu przeciwciała króliczego anty-IgY skoniugowanego z peroksydazą chrzanową przy zastosowaniu O-fenylenodiaminy jako chromogenicznego substratu. Pomiaru absorbancji dokonano przy długości fali 490 nm za pomocą czytnika mikropłytek. Wszystkie pomiary wykonano w dwóch powtórzeniach (Fig. 5).
P r z y k ł a d 6.
Limit detekcji epitopu gp120(416-439) - technika dot blot
W celu określenia limitu detekcji epitopu gp120(416-439) w technice dot blot na membranę nitrocelulozową naniesiono koniugat KLH-gp120(416-439) (PBS, pH 7,4) w zakresie stężeń od 50 ng do 0,5 ng/dołek. Po zablokowaniu wolnych miejsc wiążących przy użyciu 5% roztworu mleka odtłus zczonego w buforze PBST membranę inkubowano z roztworem otrzymanego specyficznego wobec
PL 224 560 B1 gp120(416-439) przeciwciała IgY (1:500, 0,5% mleko/PBST). Detekcję kompleksów gp120(416-439)IgY przeprowadzono przy użyciu przeciwciała króliczego anty-IgY-HRP stosując chemiluminescencyjny substrat. Analizę obrazów wykonano przy zastosowaniu systemu obrazowania molekularnego zaopatrzonego w kamerę CCD.
P r z y k ł a d 7.
Miano przeciwciał - technika dot biot
W celu określenia miana otrzymanych przeciwciał IgY w technice dot blot na membranę nitrocelulozową naniesiono 50 ng koniugatu KLH-gp120(416-439)/dołek). Po zablokowaniu wolnych miejsc paski membrany inkubowano z roztworami specyficznego wobec epitopu gp120(416-439) przeciwciała IgY rozcieńczonego w zakresie od 1:500 do 1:50000. Po wypłukaniu pasków membrany buforem PBST detekcję związanych z antygenem specyficznych, przeciwciał przeprowadzono przy użyciu przeciwciała króliczego anty-IgY HR P stosując chemiluminescencyjny substrat. Analizę obrazów wykonano przy zastosowaniu systemu obrazowania molekularnego zaopatrzonego w kamerę CCD.
P r z y k ł a d 8.
Reaktywność krzyżowa przeciwciał anty-gp120(416-439) z białkiem gp120 - Western biot
Zdolność przeciwciał specyficznych wobec epitopu gp120(416-439) do rozpoznawania pełnołańcuchowego białka gp120 potwierdzono testem Western blotting. W tym celu natywne białko gp120 (100 ng/studzienkę) poddano rozdziałowi elektroforetycznemu (SDS-PAGE, 4%-12%) w warunkach redukujących. Następnie wykonano dektrotransfer białek na membranę nitrocelulozową i zablokowano wolne miejsca wiążące przy użyciu 5% roztworu mleka odtłuszczonego w buforze PBS-T i inkubowano z roztworem przeciwciał IgY specyficznych wobec epitopu gp120(416-439) w rozcieńczeniu 1:100 (0,5% mleko odtłuszczone w PBS-T, pH 7,4). Jako kontrolę negatywną (1:100) zastosowano roztwór przeciwciał IgY wyizolowanych z nieimmunizowanych kur, natomiast jako kontrolę pozytywną użyto roztworu przeciwciał IgY (1:100) specyficznych wobec natywnego białka gp120. Detekcję kompleksów gp120-lgY wykonano z wykorzystaniem przeciwciał króliczego anty-lgY-HRP przy zastosowaniu chemiluminscencyjnego substratu. Analizę obrazów wykonano przy zastosowaniu systemu obrazowania molekularnego zaopatrzonego w kamerę CCD.

Claims (2)

1. Test diagnostyczny do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1, znamienny tym, że jako czynnik, detekcyjny zawiera przeciwciała poliklonalne klasy IgY specyficzne wobec epitopu białka gp120 (416-439) izolowane z żółtka jaj drobiu immunizowanego białkowym antygenem w postaci koniugatu fragmentu epitopowego białka gp120(416-439) o sekwencji Cys-LPSRIKQIINMWQEVGKAMYAPPI z białkiem nośnikowym - albuminą wołową.
2. Test według zastrz. 1 , znamienny tym, że przeciwciała mają masę cząsteczkową od 175000 do 200000 daltonów.
PL405522A 2013-10-03 2013-10-03 Test diagnostyczny do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1 PL224560B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL405522A PL224560B1 (pl) 2013-10-03 2013-10-03 Test diagnostyczny do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL405522A PL224560B1 (pl) 2013-10-03 2013-10-03 Test diagnostyczny do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL405522A1 PL405522A1 (pl) 2014-03-17
PL224560B1 true PL224560B1 (pl) 2017-01-31

Family

ID=50240978

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL405522A PL224560B1 (pl) 2013-10-03 2013-10-03 Test diagnostyczny do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL224560B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL405522A1 (pl) 2014-03-17

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Munhoz et al. Avian IgY antibodies: characteristics and applications in immunodiagnostic
US11209436B2 (en) Vitro potency assay for protein-based meningococcal vaccines
Laman et al. Variant-specific monoclonal and group-specific polyclonal human immunodeficiency virus type 1 neutralizing antibodies raised with synthetic peptides from the gp120 third variable domain
Grzywa et al. Highly sensitive detection of cancer antigen 15-3 using novel avian IgY antibodies
PL224560B1 (pl) Test diagnostyczny do detekcji białka gp120 wirusa HIV-1
KR102791677B1 (ko) 촌충을 검출하기 위한 방법, 장치, 키트 및 조성물
US11307202B1 (en) Antibody binding detection method for detecting MERS-CoV
FI81452B (fi) Diagnostiskt system foer bestaemning av pilusproteinet av neisseria gonorrhoeae-bakterie.
Mossmann et al. Experimental studies on the bridging hypothesis of anaphylaxis: haptenic determinants required to elicit immediate-type reactions in calf skin by separate or concurrent sensitization with reagins of different specificity
Vaillant et al. Feeding Eggs from Hens Immunized with Specific KLH-Conjugated HIV Peptide Candidate Vaccines to Chicks Induces Specific Anti-HIV gp120 and gp41 Antibodies that Neutralize the Original HIV Antigens
PL223729B1 (pl) Przeciwciała poliklonalne klasy IgY specyficzne wobec białka gp120 wirusa HIV-1, sposób ich wytwarzania oraz ich zastosowanie
PL224220B1 (pl) Przeciwciała poliklonalne klasy IgY specyficzne wobec epitopu ludzkiego białka CA 15-3(1085-1103), sposób ich wytwarzania oraz ich zastosowanie
CN103665113A (zh) 人Aβ42抗原决定簇多肽、抗原、抗体、用途及试剂盒
US9056916B2 (en) Method and assay kit for detection of toxicity induced by pyrrolizidine alkaloids
PL224244B1 (pl) Przeciwciała poliklonalne klasy IgY specyficzne wobec epitopu ludzkiego białka CA 15-3(1066-1085), sposób ich wytwarzania oraz ich zastosowanie
PL224246B1 (pl) Przeciwciała poliklonalne klasy IgY specyficzne wobec epitopu białka BLCA -4(5-21) sposób ich wytwarzania i zastosowanie
PL224245B1 (pl) Przeciwciała poliklonalne klasy IgY specyficzne wobec epitopu ludzkiego białka BLCA-4(56-73), sposób ich wytwarzania oraz ich zastosowanie
PL224443B1 (pl) Test diagnostyczny do detekcji białka Efb(105-124)
KARACA et al. Characterization of a novel monoclonal antibody which identifies chicken secretory component
PL224388B1 (pl) Test diagnostyczny do detekcji białka Efb(127-140)
PL224219B1 (pl) Przeciwciała poliklonalne klasy IgY specyficzne wobec epitopu białka PSA, sposób ich wytwarzania oraz zastosowanie
RU2782463C1 (ru) Способы, устройства, наборы и композиции для обнаружения ленточных червей
Mirsaliotis et al. Resistance to neutralization by antibodies targeting the coiled coil of fusion-active envelope is a common feature of retroviruses
CN107449901B (zh) 喹诺酮类和磺胺类多残留检测抗原、抗体及其制备方法及应用
US20050287609A1 (en) Methods and compositions for detection of equine tapeworm infections