PL217339B1 - Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu - Google Patents
Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanuInfo
- Publication number
- PL217339B1 PL217339B1 PL395967A PL39596711A PL217339B1 PL 217339 B1 PL217339 B1 PL 217339B1 PL 395967 A PL395967 A PL 395967A PL 39596711 A PL39596711 A PL 39596711A PL 217339 B1 PL217339 B1 PL 217339B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- parts
- weight
- selectant
- culture
- oil
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02P—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
- Y02P20/00—Technologies relating to chemical industry
- Y02P20/50—Improvements relating to the production of bulk chemicals
- Y02P20/52—Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu.
Z czasopisma Biotechnologia 2 (57), 193-206, (2002) jest znany sposób otrzymywania wewnątrzkomórkowego biokatalizatora, pochodzącego z pleśni Absidia orchidis, stosowanego w postaci rozpuszczonej w procesie hydrolizy chitozanu.
Z czasopisma Food Research International 38, 315-322, (2005) znany jest sposób otrzymywania zewnątrzkomórkowych biokatalizatorów pochodzących z pleśni Aspergillus CJ22, stosowanych w procesie hydrolizy chitozanu.
Z czasopisma FEMS Microbiology Letters vol. 95, 187-194, (1992) jest znany sposób otrzymywania dwóch wewnątrzkomórkowych biokatalizatorów (o aktywności endochitozanolitycznej), pochodzących z pleśni Mucor rouxii, stosowanych w postaci roztworu w procesie hydrolizy chitozanu i jego pochodnych.
Z opisu zgłoszenia patentowego P 385093 jest znany sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu, w drodze hodowli pleśni z rodzaju Mucor, polegający na tym, że szczepy pleśni Mucor circinelloides CH81 lub Mucor racemosus CH52, po inkubacji na wysterylizowanym i wychłodzonym podłożu stałym zawierającym chitozan lub chitooligosacharydy, agar, brzeczkę piwowarską o stężeniu 8-9°Be, hoduje się w temperaturze 29-31°C, w czasie 3-5 dni i zawiesinę zarodników zmytych z tego podłoża szczepi się wysterylizowane podłoże inokulacyjne i prowadzi hodowlę wstrząsaną w temperaturze 28-31°C, w czasie 18-26 godzin. Otrzymywanym w wyniku tej hodowli inokulum zaszczepia się, wysterylizowane i wstępnie napowietrzone podłoże hodowlane o składzie analogicznym jak podłoże w hodowli inokulum i prowadzi hodowlę produkcyjną w warunkach wgłębnych, w temperaturze 29-31°C, w czasie 42-72 godzin w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, w trakcie mieszania, doprowadzając powietrze, otrzymaną w wyniku hodowli produkcyjnej biomasę, po oddzieleniu od cieczy pohodowlanej, przemywa się acetonem i otrzymany nierozpuszczalny preparat enzymatyczny suszy się na powietrzu. Hodowlę inokulum i hodowlę produkcyjną prowadzi się na podłożu zawierającym oliwę z oliwek lub olej, namok kukurydziany, chitynę, N-acetyloglukozaminę lub chitozan oraz wodę destylowaną lub na podłożu zawierającym oliwę z oliwek lub olej, namok kukurydziany oraz wodę destylowaną względnie na podłożu zawierającym glukozę, bactopeptonu, ekstrakt drożdżowy, (NH4)2SO4, K2HPO4, MgSO4 x 7H2O, NaCl, CaCl2 oraz wodę destylowaną.
W kolekcji Instytutu Biochemii Technicznej Politechniki Łódzkiej znajduje się, szczep Mucor circinelloides oznaczony symbolem CH81, wyodrębniony z pancerzy krewetek.
Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu, w drodze hodowli pleśni Mucor circinelloides, polegający na hodowli zarodników pleśni na wysterylizowanym, stałym podłożu zawierającym agar i brzeczkę piwowarską o stężeniu 8°Be w temperaturze 30°C w czasie 4-6 dni, następnie zmyciu wyhodowanych zarodników sterylną solą fizjologiczną z dodatkiem surfaktanta, zaszczepieniu zawiesiną zarodników wysterylizowanego, ciekłego podłoża aktywującego zawierającego oliwę z oliwek lub olej, korzystnie sojowy, słonecznikowy lub uniwersalny, chitynę, namok kukurydziany i wodę, o wyjściowym pH 4,6-5,0 i prowadzeniu w tym podłożu hodowli wstrząsanej inokulum w temperaturze 28-31°C w czasie 18 godzin przy stopniu napeł-1 nienia kolb 20% i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min-1, następnie zaszczepieniu otrzymanym inokulum wysterylizowanego i wstępnie napowietrzonego sterylnym powietrzem, ciekłego podłoża produkcyjnego zawierającego oliwę z oliwek lub olej, korzystnie sojowy, słonecznikowy lub uniwersalny, namok kukurydziany i wodę i prowadzeniu hodowli produkcyjnej w temperaturze 28-31°C w czasie 72 godzin w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, w trakcie mieszania i napowietrzania sterylnym powietrzem doprowadzanym w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową podłoża w czasie 1 minuty, oddzieleniu otrzymanego preparatu od cieczy pohodowlanej, odmyciu od rozpuszczalnych produktów metabolizmu oraz suszeniu, według wynalazku polega na tym, że preparaty otrzymuje się w drodze hodowli selektanta pleśni Mucor circinelloides CH81/3SC, którego zarodniki hoduje się na podłożu stałym zawierającym w częściach wagowych: agaru 20-30 części, brzeczki piwowarskiej 1000 części, a nadto 0,5-1 części koloidalnej chityny pochodzącej z pancerzy krewetek. Hodowlę inokulum selektanta prowadzi się w podłożu ciekłym zawierającym w częściach wagowych: oliwy z oliwek lub oleju 10-50 części, namoku kukurydzianego 30-73 części, koloidalnej chityny 0,2-1 części oraz 1000 części wody wodociągowej o barwie większej niż 5 mg Pt (PN-EN ISO 7887 : 2002),
PL 217 339 B1 mętności nie większej niż 0,4 NTU (PN-EN ISO 7027 : 2003), przewodności nie większej niż
500 ąS/cm (PN-EN-27888 : 1999), pH w zakresie 7,1-7,4 (PN-90/C 04540.01), ChZT nie większym niż 1,75 (PN-ISO 15705 : 2005 PB-22.00 : 2009), twardości nie większej niż 15°n, o zawartości azotanów nie większej niż 4 mg/l (PB-03.00 : 2008) i żelaza nie większej niż 0,2 mg/l (PN-ISO 6332 : 2001).
Hodowlę produkcyjną selektanta prowadzi się na podłożu ciekłym zawierającym w częściach wagowych: oliwy z oliwek lub oleju 10-50 części, namoku kukurydzianego 30-73 części oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak podano wyżej, zaszczepionym inokulum użytym w ilości
10% objętościowych stosunku do objętości podłoża, przy mieszaniu zawartości fermentora z szybko-1 ścią obrotową 120 min-1 za pomocą mieszadła, do którego przymocowuje się rozłącznie porowaty nośnik hodowanego selektanta, w postaci prostopadłościennych płatów pianki poliuretanowej na bazie poliolu polieteru o całkowicie otwartej strukturze komórkowej (tak zwanej pianki retykulowanej, uzyskiwanej w wyniku procesu termicznej retykulacji, numer klasyfikacyjny TM23280), o wymiarach 250 x 3
120 x 10 mm, charakteryzującej się gęstością 19-22 kg/m3, wytrzymałością na rozciąganie 70 kPa i średnicą porów 2,20-3,40 mm. Otrzymane w wyniku hodowli płaty pianki z przerośniętą biomasą selektanta Mucor circinelloides CH81/3SC oddziela się od cieczy pohodowlanej, przemywa wodą destylowaną w celu odmycia rozpuszczalnych produktów metabolizmu, odwadnia acetonem schłodzonym do temperatury 4°C, ekstrahuje eterem naftowym i suszy w temperaturze pokojowej lub przemywa wodą destylowaną, zamraża do temperatury -45°C, liofilizuje, przemywa acetonem, eterem naftowym i suszy w temperaturze pokojowej. Przemycie wodą monitoruje się pomiarem absorbancji A<0,05 dla długości fali λ=280 nm, odwodnienie acetonem prowadzi 3-krotnie stosując 15 części wagowych acetonu na 1 część wagową pianki przerośniętej biomasą w czasie 10 minut, w zakrytym naczyniu umieszczonym na wytrząsarce o szybkości obrotowej 120 min-1, zaś suszenie prowadzi się na powietrzu w czasie w czasie 12 godzin.
Selektant pleśni Mucor circinelloides CH81/3SC otrzymuje się ze szczepu pleśni Mucor circinelloides CH81, który poddaje się aktywacji na wysterylizowanym podłożu stałym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części koloidalnej chityny pochodzącej z pancerzy krewetek, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be, w temperaturze 30°C w czasie 72 godzin, po czym wyrosle kolonie poddaje się selekcji w drodze hodowli wstrząsanej na wysterylizowanym podłożu ciekłym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części handlowej chityny, 10-50 części oliwy z oliwek lub oleju, korzystnie sojowego, słonecznikowego lub uniwersalnego, 30-73 części namoku kukurydzianego, 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak podano wyżej, o wyjściowym pH = 4,6-5,0 w temperaturze 29-31°C w czasie 24 godzin przy stopniu napełnienia kolb 20% objętościowych i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min-1, przy czym procedurę aktywowania i selekcji pleśni Mucor circinelloides powtarza się 3-krotnie. Otrzymany selektant przechowuje się na podłożu stałym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części koloidalnej chityny, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be, w temperaturze 4°C.
Sposób według wynalazku zezwala na otrzymanie aktywnych i stabilnych preparatów enzymów hydrolizujących chitozan, z nowego selektanta Mucor circinelloides CH81/3SC, którego aktywność w reakcji hydrolizy chitozanu jest większa o 25% w porównaniu z aktywnością wyjściowego szczepu Mucor circinelloides CH81. Wytworzone sposobem według wynalazku preparaty lipaz osadzonych na porowatej piance poliuretanowej są elastyczne i trwałe. Można je przycinać do potrzebnych wymiarów, co umożliwia efektywne wypełnienie przestrzeni reaktora przeznaczonego do reakcji hydrolizy chitozanu.
Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady.
P r z y k ł a d I
Szczep pleśni Mucor circinelloides CH81, wyodrębniony z pancerzy krewetek, przeszczepiono na aktywujące podłoże stałe, wysterylizowane w temperaturze 121°C w czasie 15 minut, o składzie w częściach wagowych: 1 część koloidalnej chityny pochodzącej z pancerzy krewetek, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be i hodowano na tym podłożu w temperaturze 30°C w czasie 72 godzin. Wyrosłe kolonie przenoszono za pomocą ezy na aktywujące podłoże ciekłe, wysterylizowane w temperaturze 121°C w czasie 20 minut, o składzie w częściach wagowych: 0,5 części chityny handlowej, 27 części oliwy z oliwek lub oleju, korzystnie sojowego, słonecznikowego, uniwersalnego, 37 części namoku kukurydzianego firmy Roquette, 1000 części wody wodociągowej o barwie nie większej niż 5 mg Pt, mętności nie większej niż 0,4 NTU, przewodności nie większej niż 500 μS/cm, pH w zakresie 7,1-7,4, ChZT nie większym niż 1,75, twardości nie większej niż 15°n, o zawartości azotanów nie większej niż 4 mg/l i żelaza nie większej niż 0,2 mg/l, o wyjściowym pH =
PL 217 339 B1
4,6 i prowadzono hodowlę wstrząsaną w temperaturze 29-31°C przez 24 godziny przy stopniu napeł-1 nienia kolb 20% objętościowych i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min-1. Procedurę hodowli pleśni na obu podłożach, stałym i ciekłym, powtarzano 3-krotnie.
Otrzymany w ten sposób selektant Mucor circinelloides oznaczony numerem CH81/3SC, wysiano na wysterylizowane termicznie, w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, podłoże stałe o składzie w częściach wagowych: 0,5 części koloidalnej chityny, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be i po 3 dniach hodowli w temperaturze 29-31°C zarodniki selektanta ® zmywano sterylną solą fizjologiczną zawierającą 0,01% Tritonu® Χ-100 stosując 8 ml soli fizjologicznej ma 1 skos. Otrzymaną zawiesiną zarodników szczepiono wysterylizowane, w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie w częściach wagowych: 0,5 części handlowej chityny, 27 części oliwy z oliwek, 37 części namoku kukurydzianego oraz 1000 części wody wodocią33 gowej o właściwościach jak podano wyżej, stosując 1 cm3 zarodników na 100 cm3 podłoża i prowadzono hodowlę wstrząsaną w temperaturze 28-31°C, w czasie 18 godzin, przy stopniu napełnienia kolb 20% objętościowych i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min-1. Otrzymanym w wyniku tej hodowli inokulum zaszczepiono uprzednio wysterylizowane, w czasie 30 minut w temperaturze 121°C. podłoże o objętości 18 litrów wprowadzone do fermentora o objętości całkowitej 24 l, wstępnie napowietrzone sterylnym powietrzem, o składzie analogicznym jak w hodowli inokulum, ale bez dodatku chityny, stosując 10% objętościowych inokulum w stosunku do objętości podłoża. Do mieszadła umieszczonego w fermentorze zamocowano w powtarzalny sposób prostopadłościenne płaty pianki poliuretanowej na bazie poliolu polieteru o całkowicie otwartej strukturze komórkowej (tak zwanej pianki retykulowanej, uzyskanej w wyniku procesu termicznej retykulacji, numer klasyfikacyjny TM 3
23280) charakteryzującej się następującymi parametrami fizykochemicznymi: gęstością 19-22 kg/m3, wytrzymałością na rozciąganie 70 kPa i średnicą porów 2,20-3,40 mm, o wymiarach: 250 x 120 x 10 mm (wysokość/szerokość/grubość). Hodowlę prowadzono w temperaturze 28-31°C w czasie 72 godzin, w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, przy mieszaniu z szybkością obrotową -1
120 min-1, doprowadzając powietrze w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową podłoża w czasie 1 minuty. Otrzymane w wyniku hodowli produkcyjnej płaty pianki poliuretanowej, przerośnięte biomasą Mucor circinelloides CH81/3SC, po oddzieleniu od cieczy pohodowlanej na drodze filtracji, przemywano wodą w celu odmycia rozpuszczalnych produktów metabolizmu monitorowanego pomiarem absorbancji A<0,05 dla długości fali λ=280 nm, zalewano kolejno 3 porcjami acetonu schłodzonego do temperatury 4°C, stosowanym w ilości 15 części wagowych na 1 część wagową pianki przerośniętej biomasą i odwadniano 10 minut w zakrytym naczyniu umieszczonym na wytrząsarce o szybko-1 ści obrotowej 120 min-1. Odwodnioną i odlipidowaną biomasę, zaadsorbowaną w porach pianki poliuretanowej, suszono na powietrzu w czasie 18 godzin w temperaturze pokojowej. Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów w ilości 22,3 g z 1 I podłoża, o aktywności endochitozanazy równej 432,5 unit/g oraz aktywności egzochitozanazy równej 0,118 U/g preparatu.
P r z y k ł a d II
Selektant Mucor circinelloides oznaczony numerem CH81/3SC otrzymano postępując jak w przykładzie I, ale stosując aktywujące podłoże stałe zawierające 0,005 części chityny koloidalnej i ciekłe podłoże aktywujące zawierające 1 część chityny handlowej. Dalej postępowano jak w przykładzie I.
Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów w ilości 21,4 g z 1 I podłoża, o aktywności endochitozanazy równej 415 unit/g oraz aktywności egzochitozanazy równej 0,125 U/g preparatu.
P r z y k ł a d III
Selektant Mucor circinelloides oznaczony numerem CH81/3SC otrzymano postępując jak w przykładzie I. Hodowlę wytworzonego selektanta prowadzono w fermentorze jak w przykładzie I. Otrzymane w wyniku hodowli produkcyjnej płaty pianki poliuretanowej przerośnięte biomasą Mucor circinelloides CH81/3SC, po oddzieleniu od cieczy pohodowlanej na drodze filtracji, przemywano wodą jak w przykładzie I, zamrożono do temperatury -45°C i poddano liofilizacji, produkt liofilizacji zalewano kolejno 3 porcjami acetonu schłodzonego do temperatury 4°C stosując 15 części wagowych acetonu na 1 część wagową pianki przerośniętej biomasą i ekstrahowano przez 10 minut w zakrytym naczyniu umieszczonym na wytrząsarce o szybkości obrotowej 120 min-1, następnie przemywano eterem naftowym i suszono na powietrzu w czasie 12 godzin w temperaturze pokojowej.
Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów w ilości 20,6 g z 1 litra podłoża, o aktywności endochitozanazy równej 418,1 unit/g oraz aktywności egzochitozanazy równej 0,127 U/g preparatu.
Claims (4)
- Zastrzeżenia patentowe1. Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu, w drodze hodowli pleśni Mucor circinelloides, polegający na hodowli zarodników pleśni na wysterylizowanym, stałym podłożu zawierającym agar i brzeczkę piwowarską o stężeniu 8°Be, w temperaturze 30°C w czasie 4-6 dni, następnie zmyciu wyhodowanych zarodników sterylną solą fizjologiczną z dodatkiem surfaktanta, zaszczepieniu zawiesiną zarodników wysterylizowanego, ciekłego podłoża aktywującego zawierającego oliwę z oliwek lub olej, korzystnie sojowy, słonecznikowy lub uniwersalny, chitynę, namok kukurydziany i wodę, o wyjściowym pH 4,6-5,0 i prowadzeniu w tym podłożu hodowli wstrząsanej inokulum w temperaturze 28-31°C w czasie 18 godzin przy stopniu napeł-1 nienia kolb 20% i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min-1, następnie zaszczepieniu otrzymanym inokulum wysterylizowanego i wstępnie napowietrzonego sterylnym powietrzem, ciekłego podłoża produkcyjnego zawierającego oliwę z oliwek lub olej, korzystnie sojowy, słonecznikowy lub uniwersalny, namok kukurydziany i wodę i prowadzeniu hodowli produkcyjnej w temperaturze 28-31°C w czasie 72 godzin, w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, w trakcie mieszania i napowietrzania sterylnym powietrzem doprowadzanym w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową podłoża w czasie 1 minuty, oddzieleniu otrzymanego preparatu od cieczy pohodowlanej, odmyciu od rozpuszczalnych produktów metabolizmu oraz suszeniu, znamienny tym, że preparaty otrzymuje się w drodze hodowli selektanta pleśni Mucor circinelloides CH81/3SC, którego zarodniki hoduje się na podłożu stałym zawierającym w częściach wagowych: agaru 20-30 części, brzeczki piwowarskiej 1000 części, a nadto 0,5-1 części koloidalnej chityny pochodzącej z pancerzy krewetek, hodowlę inokulum prowadzi się w podłożu ciekłym zawierającym w częściach wagowych: oliwy z oliwek lub oleju 10-50 części, namoku kukurydzianego 30-73 części, koloidalnej chityny 0,2-1 części oraz 1000 części wody wodociągowej o barwie większej niż 5 mg Pt, mętności nie większej niż 0,4 NTU, przewodności nie większej niż 500 μS/cm, pH w zakresie 7,1-7,4, ChZT nie większym niż 1,75, twardości nie większej niż 15°n, o zawartości azotanów nie większej niż 4 mg/l i żelaza nie większej niż 0,2 mg/l, hodowlę produkcyjną selektanta prowadzi się na podłożu ciekłym zawierającym w częściach wagowych: oliwy z oliwek lub oleju 10-50 części, namoku kukurydzianego 30-73 części oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak podano wyżej, zaszczepionym inokulum użytym w ilości 10% objętościowych stosunku do objętości podłoża, przy mieszaniu zawartości fermentom z szybkością obrotową120 min-1 za pomocą mieszadła, do którego przymocowuje się rozłącznie porowaty nośnik wyhodowanego selektanta, w postaci prostopadłościennych płatów pianki poliuretanowej, zaś otrzymane w wyniku hodowli płaty pianki z przerośniętą biomasą selektanta Mucor circinelloides CH81/3SC oddziela się od cieczy pohodowlanej, przemywa wodą destylowaną, odwadnia acetonem schłodzonym do temperatury 4°C, ekstrahuje eterem naftowym i suszy w temperaturze pokojowej lub przemywa wodą destylowaną, zamraża do temperatury -45°C, liofilizuje, przemywa acetonem, eterem naftowym i suszy w temperaturze pokojowej.
- 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że selektant pleśni Mucor circinelloides CH81/3SC otrzymuje się ze szczepu pleśni Mucor circinelloides CH81, który poddaje się aktywacji na wysterylizowanym podłożu stałym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części koloidalnej chityny pochodzącej z pancerzy krewetek, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be w temperaturze 30°C w czasie 72 godz., a następnie kolonie wyrosłe na podłożu stałym poddaje się selekcji w drodze hodowli wstrząsanej na wysterylizowanym podłożu ciekłym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części chityny handlowej, 10-50 części oliwy z oliwek lub oleju, korzystnie sojowego, słonecznikowego lub uniwersalnego, 30-73 części namoku kukurydzianego, 1000 części wody wodociągowej o właściwościach określonych w zastrz. 1, o wyjściowym pH = 4,6-5,0 w temperaturze 29-31°C w czasie 24 godzin przy stopniu napełnienia kolb 20% objętościowych i szybkości obro-1 towej wstrząsarki 180 min-1, przy czym procedurę aktywowania i selekcji pleśni Mucor circinelloides powtarza się 3-krotnie, a otrzymany selektant przechowuje się na podłożu stałym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części koloidalnej chityny, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be, w temperaturze 4°C.
- 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się płaty pianki poliuretanowej na bazie poliolu polieteru o całkowicie otwartej strukturze komórkowej - pianki retykulowanej uzyskiwanej w wyniku procesu termicznej retykulacji, o numerze klasy fikacyjnym TM23280, charakteryzującej się 3 gęstością 19-22 kg/m3, wytrzymałością na rozciąganie 70 kPa i średnicą porów 2,20-3,40 mm, o wymiarach 250 x 120 x 10 mm.PL 217 339 B1
- 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że przemycie wodą płatów pianki z przerośniętą biomasą selektanta Mucor circinelloides CH81/3SC monitoruje się pomiarem absorbancji A<0,05 dla długości fali λ=280 nm, odwodnienie acetonem prowadzi 3-krotnie stosując 15 części wagowych acetonu na 1 część wagową pianki przerośniętej biomasą w czasie 10 minut w zakrytym naczyniu umieszczonym na wytrząsarce o szybkości obrotowej 120 min-1, zaś suszenie prowadzi się na powietrzu w czasie w czasie 12 godzin.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL395967A PL217339B1 (pl) | 2011-08-16 | 2011-08-16 | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PL395967A PL217339B1 (pl) | 2011-08-16 | 2011-08-16 | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL395967A1 PL395967A1 (pl) | 2013-02-18 |
| PL217339B1 true PL217339B1 (pl) | 2014-07-31 |
Family
ID=47682238
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL395967A PL217339B1 (pl) | 2011-08-16 | 2011-08-16 | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| PL (1) | PL217339B1 (pl) |
-
2011
- 2011-08-16 PL PL395967A patent/PL217339B1/pl unknown
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| PL395967A1 (pl) | 2013-02-18 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Ha et al. | Production of bacterial cellulose by a static cultivation using the waste from beer culture broth | |
| CN103025862B (zh) | 新型破囊壶菌类微藻及用其生产生物油的方法 | |
| EP2084290B1 (en) | Production of omega-3 fatty acids in microflora of thraustochytriales using modified media | |
| Ludemann et al. | Conidial production by Penicillium nalgiovense for use as starter cultures in dry fermented sausages by solid state fermentation | |
| Paranthaman et al. | Optimization of various culture media for tannase production in submerged fermentation by Aspergillus flavus | |
| JP4642351B2 (ja) | 共培養による没食子酸の調製法 | |
| CN103642698B (zh) | 高山被孢霉突变株及其应用 | |
| Gutarra et al. | Lipase production and Penicillium simplicissimum morphology in solid‐state and submerged fermentations | |
| PL217339B1 (pl) | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu | |
| PL217332B1 (pl) | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu | |
| PL217361B1 (pl) | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor racemosus | |
| PL217686B1 (pl) | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor circinelloides | |
| PL217358B1 (pl) | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor racemosus | |
| PL217359B1 (pl) | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor circinelloides | |
| PL217695B1 (pl) | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor racemosus | |
| PL217360B1 (pl) | Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor circinelloides | |
| Singh et al. | Chitinase production by Serratia marcescens GG5 | |
| CN117736882A (zh) | 一种红托竹荪原生质体及其制备方法和应用 | |
| CN112980698B (zh) | 微生物发酵碳源及其制备方法 | |
| Boakye et al. | Isolation, screening and identification of pectinolytic fungi from the soil of decomposed plant materials | |
| JP7397438B2 (ja) | 油脂生産性が増加した緑藻変異体及びその利用 | |
| CN114287462A (zh) | 一种蛋糕复合防腐乳化剂及其制备方法 | |
| Patidar et al. | Chitinase production by Beauveria felina RD 101: optimization of parameters under solid substrate fermentation conditions | |
| Darah et al. | Tannase enzyme production by entrapped cells of Aspergillus niger FETL FT3 in submerged culture system | |
| Namasivayam et al. | Evaluation of organic waste liquor media for the production of alpha amylase using Aspergillus niger |