PL217339B1 - Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu - Google Patents

Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu

Info

Publication number
PL217339B1
PL217339B1 PL395967A PL39596711A PL217339B1 PL 217339 B1 PL217339 B1 PL 217339B1 PL 395967 A PL395967 A PL 395967A PL 39596711 A PL39596711 A PL 39596711A PL 217339 B1 PL217339 B1 PL 217339B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
parts
weight
selectant
culture
oil
Prior art date
Application number
PL395967A
Other languages
English (en)
Other versions
PL395967A1 (pl
Inventor
Katarzyna Struszczyk-Świta
Łukasz Stańczyk
Mirosława Szczęsna-Antczak
Tadeusz Antczak
Stanisław Bielecki
Original Assignee
Politechnika Łódzka
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Politechnika Łódzka filed Critical Politechnika Łódzka
Priority to PL395967A priority Critical patent/PL217339B1/pl
Publication of PL395967A1 publication Critical patent/PL395967A1/pl
Publication of PL217339B1 publication Critical patent/PL217339B1/pl

Links

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/52Improvements relating to the production of bulk chemicals using catalysts, e.g. selective catalysts

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu.
Z czasopisma Biotechnologia 2 (57), 193-206, (2002) jest znany sposób otrzymywania wewnątrzkomórkowego biokatalizatora, pochodzącego z pleśni Absidia orchidis, stosowanego w postaci rozpuszczonej w procesie hydrolizy chitozanu.
Z czasopisma Food Research International 38, 315-322, (2005) znany jest sposób otrzymywania zewnątrzkomórkowych biokatalizatorów pochodzących z pleśni Aspergillus CJ22, stosowanych w procesie hydrolizy chitozanu.
Z czasopisma FEMS Microbiology Letters vol. 95, 187-194, (1992) jest znany sposób otrzymywania dwóch wewnątrzkomórkowych biokatalizatorów (o aktywności endochitozanolitycznej), pochodzących z pleśni Mucor rouxii, stosowanych w postaci roztworu w procesie hydrolizy chitozanu i jego pochodnych.
Z opisu zgłoszenia patentowego P 385093 jest znany sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu, w drodze hodowli pleśni z rodzaju Mucor, polegający na tym, że szczepy pleśni Mucor circinelloides CH81 lub Mucor racemosus CH52, po inkubacji na wysterylizowanym i wychłodzonym podłożu stałym zawierającym chitozan lub chitooligosacharydy, agar, brzeczkę piwowarską o stężeniu 8-9°Be, hoduje się w temperaturze 29-31°C, w czasie 3-5 dni i zawiesinę zarodników zmytych z tego podłoża szczepi się wysterylizowane podłoże inokulacyjne i prowadzi hodowlę wstrząsaną w temperaturze 28-31°C, w czasie 18-26 godzin. Otrzymywanym w wyniku tej hodowli inokulum zaszczepia się, wysterylizowane i wstępnie napowietrzone podłoże hodowlane o składzie analogicznym jak podłoże w hodowli inokulum i prowadzi hodowlę produkcyjną w warunkach wgłębnych, w temperaturze 29-31°C, w czasie 42-72 godzin w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, w trakcie mieszania, doprowadzając powietrze, otrzymaną w wyniku hodowli produkcyjnej biomasę, po oddzieleniu od cieczy pohodowlanej, przemywa się acetonem i otrzymany nierozpuszczalny preparat enzymatyczny suszy się na powietrzu. Hodowlę inokulum i hodowlę produkcyjną prowadzi się na podłożu zawierającym oliwę z oliwek lub olej, namok kukurydziany, chitynę, N-acetyloglukozaminę lub chitozan oraz wodę destylowaną lub na podłożu zawierającym oliwę z oliwek lub olej, namok kukurydziany oraz wodę destylowaną względnie na podłożu zawierającym glukozę, bactopeptonu, ekstrakt drożdżowy, (NH4)2SO4, K2HPO4, MgSO4 x 7H2O, NaCl, CaCl2 oraz wodę destylowaną.
W kolekcji Instytutu Biochemii Technicznej Politechniki Łódzkiej znajduje się, szczep Mucor circinelloides oznaczony symbolem CH81, wyodrębniony z pancerzy krewetek.
Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu, w drodze hodowli pleśni Mucor circinelloides, polegający na hodowli zarodników pleśni na wysterylizowanym, stałym podłożu zawierającym agar i brzeczkę piwowarską o stężeniu 8°Be w temperaturze 30°C w czasie 4-6 dni, następnie zmyciu wyhodowanych zarodników sterylną solą fizjologiczną z dodatkiem surfaktanta, zaszczepieniu zawiesiną zarodników wysterylizowanego, ciekłego podłoża aktywującego zawierającego oliwę z oliwek lub olej, korzystnie sojowy, słonecznikowy lub uniwersalny, chitynę, namok kukurydziany i wodę, o wyjściowym pH 4,6-5,0 i prowadzeniu w tym podłożu hodowli wstrząsanej inokulum w temperaturze 28-31°C w czasie 18 godzin przy stopniu napeł-1 nienia kolb 20% i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min-1, następnie zaszczepieniu otrzymanym inokulum wysterylizowanego i wstępnie napowietrzonego sterylnym powietrzem, ciekłego podłoża produkcyjnego zawierającego oliwę z oliwek lub olej, korzystnie sojowy, słonecznikowy lub uniwersalny, namok kukurydziany i wodę i prowadzeniu hodowli produkcyjnej w temperaturze 28-31°C w czasie 72 godzin w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, w trakcie mieszania i napowietrzania sterylnym powietrzem doprowadzanym w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową podłoża w czasie 1 minuty, oddzieleniu otrzymanego preparatu od cieczy pohodowlanej, odmyciu od rozpuszczalnych produktów metabolizmu oraz suszeniu, według wynalazku polega na tym, że preparaty otrzymuje się w drodze hodowli selektanta pleśni Mucor circinelloides CH81/3SC, którego zarodniki hoduje się na podłożu stałym zawierającym w częściach wagowych: agaru 20-30 części, brzeczki piwowarskiej 1000 części, a nadto 0,5-1 części koloidalnej chityny pochodzącej z pancerzy krewetek. Hodowlę inokulum selektanta prowadzi się w podłożu ciekłym zawierającym w częściach wagowych: oliwy z oliwek lub oleju 10-50 części, namoku kukurydzianego 30-73 części, koloidalnej chityny 0,2-1 części oraz 1000 części wody wodociągowej o barwie większej niż 5 mg Pt (PN-EN ISO 7887 : 2002),
PL 217 339 B1 mętności nie większej niż 0,4 NTU (PN-EN ISO 7027 : 2003), przewodności nie większej niż
500 ąS/cm (PN-EN-27888 : 1999), pH w zakresie 7,1-7,4 (PN-90/C 04540.01), ChZT nie większym niż 1,75 (PN-ISO 15705 : 2005 PB-22.00 : 2009), twardości nie większej niż 15°n, o zawartości azotanów nie większej niż 4 mg/l (PB-03.00 : 2008) i żelaza nie większej niż 0,2 mg/l (PN-ISO 6332 : 2001).
Hodowlę produkcyjną selektanta prowadzi się na podłożu ciekłym zawierającym w częściach wagowych: oliwy z oliwek lub oleju 10-50 części, namoku kukurydzianego 30-73 części oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak podano wyżej, zaszczepionym inokulum użytym w ilości
10% objętościowych stosunku do objętości podłoża, przy mieszaniu zawartości fermentora z szybko-1 ścią obrotową 120 min-1 za pomocą mieszadła, do którego przymocowuje się rozłącznie porowaty nośnik hodowanego selektanta, w postaci prostopadłościennych płatów pianki poliuretanowej na bazie poliolu polieteru o całkowicie otwartej strukturze komórkowej (tak zwanej pianki retykulowanej, uzyskiwanej w wyniku procesu termicznej retykulacji, numer klasyfikacyjny TM23280), o wymiarach 250 x 3
120 x 10 mm, charakteryzującej się gęstością 19-22 kg/m3, wytrzymałością na rozciąganie 70 kPa i średnicą porów 2,20-3,40 mm. Otrzymane w wyniku hodowli płaty pianki z przerośniętą biomasą selektanta Mucor circinelloides CH81/3SC oddziela się od cieczy pohodowlanej, przemywa wodą destylowaną w celu odmycia rozpuszczalnych produktów metabolizmu, odwadnia acetonem schłodzonym do temperatury 4°C, ekstrahuje eterem naftowym i suszy w temperaturze pokojowej lub przemywa wodą destylowaną, zamraża do temperatury -45°C, liofilizuje, przemywa acetonem, eterem naftowym i suszy w temperaturze pokojowej. Przemycie wodą monitoruje się pomiarem absorbancji A<0,05 dla długości fali λ=280 nm, odwodnienie acetonem prowadzi 3-krotnie stosując 15 części wagowych acetonu na 1 część wagową pianki przerośniętej biomasą w czasie 10 minut, w zakrytym naczyniu umieszczonym na wytrząsarce o szybkości obrotowej 120 min-1, zaś suszenie prowadzi się na powietrzu w czasie w czasie 12 godzin.
Selektant pleśni Mucor circinelloides CH81/3SC otrzymuje się ze szczepu pleśni Mucor circinelloides CH81, który poddaje się aktywacji na wysterylizowanym podłożu stałym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części koloidalnej chityny pochodzącej z pancerzy krewetek, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be, w temperaturze 30°C w czasie 72 godzin, po czym wyrosle kolonie poddaje się selekcji w drodze hodowli wstrząsanej na wysterylizowanym podłożu ciekłym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części handlowej chityny, 10-50 części oliwy z oliwek lub oleju, korzystnie sojowego, słonecznikowego lub uniwersalnego, 30-73 części namoku kukurydzianego, 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak podano wyżej, o wyjściowym pH = 4,6-5,0 w temperaturze 29-31°C w czasie 24 godzin przy stopniu napełnienia kolb 20% objętościowych i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min-1, przy czym procedurę aktywowania i selekcji pleśni Mucor circinelloides powtarza się 3-krotnie. Otrzymany selektant przechowuje się na podłożu stałym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części koloidalnej chityny, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be, w temperaturze 4°C.
Sposób według wynalazku zezwala na otrzymanie aktywnych i stabilnych preparatów enzymów hydrolizujących chitozan, z nowego selektanta Mucor circinelloides CH81/3SC, którego aktywność w reakcji hydrolizy chitozanu jest większa o 25% w porównaniu z aktywnością wyjściowego szczepu Mucor circinelloides CH81. Wytworzone sposobem według wynalazku preparaty lipaz osadzonych na porowatej piance poliuretanowej są elastyczne i trwałe. Można je przycinać do potrzebnych wymiarów, co umożliwia efektywne wypełnienie przestrzeni reaktora przeznaczonego do reakcji hydrolizy chitozanu.
Sposób według wynalazku ilustrują bliżej podane niżej przykłady.
P r z y k ł a d I
Szczep pleśni Mucor circinelloides CH81, wyodrębniony z pancerzy krewetek, przeszczepiono na aktywujące podłoże stałe, wysterylizowane w temperaturze 121°C w czasie 15 minut, o składzie w częściach wagowych: 1 część koloidalnej chityny pochodzącej z pancerzy krewetek, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be i hodowano na tym podłożu w temperaturze 30°C w czasie 72 godzin. Wyrosłe kolonie przenoszono za pomocą ezy na aktywujące podłoże ciekłe, wysterylizowane w temperaturze 121°C w czasie 20 minut, o składzie w częściach wagowych: 0,5 części chityny handlowej, 27 części oliwy z oliwek lub oleju, korzystnie sojowego, słonecznikowego, uniwersalnego, 37 części namoku kukurydzianego firmy Roquette, 1000 części wody wodociągowej o barwie nie większej niż 5 mg Pt, mętności nie większej niż 0,4 NTU, przewodności nie większej niż 500 μS/cm, pH w zakresie 7,1-7,4, ChZT nie większym niż 1,75, twardości nie większej niż 15°n, o zawartości azotanów nie większej niż 4 mg/l i żelaza nie większej niż 0,2 mg/l, o wyjściowym pH =
PL 217 339 B1
4,6 i prowadzono hodowlę wstrząsaną w temperaturze 29-31°C przez 24 godziny przy stopniu napeł-1 nienia kolb 20% objętościowych i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min-1. Procedurę hodowli pleśni na obu podłożach, stałym i ciekłym, powtarzano 3-krotnie.
Otrzymany w ten sposób selektant Mucor circinelloides oznaczony numerem CH81/3SC, wysiano na wysterylizowane termicznie, w czasie 15 minut w temperaturze 121°C, podłoże stałe o składzie w częściach wagowych: 0,5 części koloidalnej chityny, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be i po 3 dniach hodowli w temperaturze 29-31°C zarodniki selektanta ® zmywano sterylną solą fizjologiczną zawierającą 0,01% Tritonu® Χ-100 stosując 8 ml soli fizjologicznej ma 1 skos. Otrzymaną zawiesiną zarodników szczepiono wysterylizowane, w czasie 30 minut w temperaturze 121°C, podłoże hodowlane o składzie w częściach wagowych: 0,5 części handlowej chityny, 27 części oliwy z oliwek, 37 części namoku kukurydzianego oraz 1000 części wody wodocią33 gowej o właściwościach jak podano wyżej, stosując 1 cm3 zarodników na 100 cm3 podłoża i prowadzono hodowlę wstrząsaną w temperaturze 28-31°C, w czasie 18 godzin, przy stopniu napełnienia kolb 20% objętościowych i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min-1. Otrzymanym w wyniku tej hodowli inokulum zaszczepiono uprzednio wysterylizowane, w czasie 30 minut w temperaturze 121°C. podłoże o objętości 18 litrów wprowadzone do fermentora o objętości całkowitej 24 l, wstępnie napowietrzone sterylnym powietrzem, o składzie analogicznym jak w hodowli inokulum, ale bez dodatku chityny, stosując 10% objętościowych inokulum w stosunku do objętości podłoża. Do mieszadła umieszczonego w fermentorze zamocowano w powtarzalny sposób prostopadłościenne płaty pianki poliuretanowej na bazie poliolu polieteru o całkowicie otwartej strukturze komórkowej (tak zwanej pianki retykulowanej, uzyskanej w wyniku procesu termicznej retykulacji, numer klasyfikacyjny TM 3
23280) charakteryzującej się następującymi parametrami fizykochemicznymi: gęstością 19-22 kg/m3, wytrzymałością na rozciąganie 70 kPa i średnicą porów 2,20-3,40 mm, o wymiarach: 250 x 120 x 10 mm (wysokość/szerokość/grubość). Hodowlę prowadzono w temperaturze 28-31°C w czasie 72 godzin, w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, przy mieszaniu z szybkością obrotową -1
120 min-1, doprowadzając powietrze w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową podłoża w czasie 1 minuty. Otrzymane w wyniku hodowli produkcyjnej płaty pianki poliuretanowej, przerośnięte biomasą Mucor circinelloides CH81/3SC, po oddzieleniu od cieczy pohodowlanej na drodze filtracji, przemywano wodą w celu odmycia rozpuszczalnych produktów metabolizmu monitorowanego pomiarem absorbancji A<0,05 dla długości fali λ=280 nm, zalewano kolejno 3 porcjami acetonu schłodzonego do temperatury 4°C, stosowanym w ilości 15 części wagowych na 1 część wagową pianki przerośniętej biomasą i odwadniano 10 minut w zakrytym naczyniu umieszczonym na wytrząsarce o szybko-1 ści obrotowej 120 min-1. Odwodnioną i odlipidowaną biomasę, zaadsorbowaną w porach pianki poliuretanowej, suszono na powietrzu w czasie 18 godzin w temperaturze pokojowej. Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów w ilości 22,3 g z 1 I podłoża, o aktywności endochitozanazy równej 432,5 unit/g oraz aktywności egzochitozanazy równej 0,118 U/g preparatu.
P r z y k ł a d II
Selektant Mucor circinelloides oznaczony numerem CH81/3SC otrzymano postępując jak w przykładzie I, ale stosując aktywujące podłoże stałe zawierające 0,005 części chityny koloidalnej i ciekłe podłoże aktywujące zawierające 1 część chityny handlowej. Dalej postępowano jak w przykładzie I.
Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów w ilości 21,4 g z 1 I podłoża, o aktywności endochitozanazy równej 415 unit/g oraz aktywności egzochitozanazy równej 0,125 U/g preparatu.
P r z y k ł a d III
Selektant Mucor circinelloides oznaczony numerem CH81/3SC otrzymano postępując jak w przykładzie I. Hodowlę wytworzonego selektanta prowadzono w fermentorze jak w przykładzie I. Otrzymane w wyniku hodowli produkcyjnej płaty pianki poliuretanowej przerośnięte biomasą Mucor circinelloides CH81/3SC, po oddzieleniu od cieczy pohodowlanej na drodze filtracji, przemywano wodą jak w przykładzie I, zamrożono do temperatury -45°C i poddano liofilizacji, produkt liofilizacji zalewano kolejno 3 porcjami acetonu schłodzonego do temperatury 4°C stosując 15 części wagowych acetonu na 1 część wagową pianki przerośniętej biomasą i ekstrahowano przez 10 minut w zakrytym naczyniu umieszczonym na wytrząsarce o szybkości obrotowej 120 min-1, następnie przemywano eterem naftowym i suszono na powietrzu w czasie 12 godzin w temperaturze pokojowej.
Otrzymano nierozpuszczalny preparat enzymów w ilości 20,6 g z 1 litra podłoża, o aktywności endochitozanazy równej 418,1 unit/g oraz aktywności egzochitozanazy równej 0,127 U/g preparatu.

Claims (4)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu, w drodze hodowli pleśni Mucor circinelloides, polegający na hodowli zarodników pleśni na wysterylizowanym, stałym podłożu zawierającym agar i brzeczkę piwowarską o stężeniu 8°Be, w temperaturze 30°C w czasie 4-6 dni, następnie zmyciu wyhodowanych zarodników sterylną solą fizjologiczną z dodatkiem surfaktanta, zaszczepieniu zawiesiną zarodników wysterylizowanego, ciekłego podłoża aktywującego zawierającego oliwę z oliwek lub olej, korzystnie sojowy, słonecznikowy lub uniwersalny, chitynę, namok kukurydziany i wodę, o wyjściowym pH 4,6-5,0 i prowadzeniu w tym podłożu hodowli wstrząsanej inokulum w temperaturze 28-31°C w czasie 18 godzin przy stopniu napeł-1 nienia kolb 20% i szybkości obrotowej wstrząsarki 180 min-1, następnie zaszczepieniu otrzymanym inokulum wysterylizowanego i wstępnie napowietrzonego sterylnym powietrzem, ciekłego podłoża produkcyjnego zawierającego oliwę z oliwek lub olej, korzystnie sojowy, słonecznikowy lub uniwersalny, namok kukurydziany i wodę i prowadzeniu hodowli produkcyjnej w temperaturze 28-31°C w czasie 72 godzin, w obecności środków przeciwdziałających pienieniu, w trakcie mieszania i napowietrzania sterylnym powietrzem doprowadzanym w ilości 1 część objętościowa na 1 część objętościową podłoża w czasie 1 minuty, oddzieleniu otrzymanego preparatu od cieczy pohodowlanej, odmyciu od rozpuszczalnych produktów metabolizmu oraz suszeniu, znamienny tym, że preparaty otrzymuje się w drodze hodowli selektanta pleśni Mucor circinelloides CH81/3SC, którego zarodniki hoduje się na podłożu stałym zawierającym w częściach wagowych: agaru 20-30 części, brzeczki piwowarskiej 1000 części, a nadto 0,5-1 części koloidalnej chityny pochodzącej z pancerzy krewetek, hodowlę inokulum prowadzi się w podłożu ciekłym zawierającym w częściach wagowych: oliwy z oliwek lub oleju 10-50 części, namoku kukurydzianego 30-73 części, koloidalnej chityny 0,2-1 części oraz 1000 części wody wodociągowej o barwie większej niż 5 mg Pt, mętności nie większej niż 0,4 NTU, przewodności nie większej niż 500 μS/cm, pH w zakresie 7,1-7,4, ChZT nie większym niż 1,75, twardości nie większej niż 15°n, o zawartości azotanów nie większej niż 4 mg/l i żelaza nie większej niż 0,2 mg/l, hodowlę produkcyjną selektanta prowadzi się na podłożu ciekłym zawierającym w częściach wagowych: oliwy z oliwek lub oleju 10-50 części, namoku kukurydzianego 30-73 części oraz 1000 części wody wodociągowej o właściwościach jak podano wyżej, zaszczepionym inokulum użytym w ilości 10% objętościowych stosunku do objętości podłoża, przy mieszaniu zawartości fermentom z szybkością obrotową
    120 min-1 za pomocą mieszadła, do którego przymocowuje się rozłącznie porowaty nośnik wyhodowanego selektanta, w postaci prostopadłościennych płatów pianki poliuretanowej, zaś otrzymane w wyniku hodowli płaty pianki z przerośniętą biomasą selektanta Mucor circinelloides CH81/3SC oddziela się od cieczy pohodowlanej, przemywa wodą destylowaną, odwadnia acetonem schłodzonym do temperatury 4°C, ekstrahuje eterem naftowym i suszy w temperaturze pokojowej lub przemywa wodą destylowaną, zamraża do temperatury -45°C, liofilizuje, przemywa acetonem, eterem naftowym i suszy w temperaturze pokojowej.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że selektant pleśni Mucor circinelloides CH81/3SC otrzymuje się ze szczepu pleśni Mucor circinelloides CH81, który poddaje się aktywacji na wysterylizowanym podłożu stałym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części koloidalnej chityny pochodzącej z pancerzy krewetek, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be w temperaturze 30°C w czasie 72 godz., a następnie kolonie wyrosłe na podłożu stałym poddaje się selekcji w drodze hodowli wstrząsanej na wysterylizowanym podłożu ciekłym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części chityny handlowej, 10-50 części oliwy z oliwek lub oleju, korzystnie sojowego, słonecznikowego lub uniwersalnego, 30-73 części namoku kukurydzianego, 1000 części wody wodociągowej o właściwościach określonych w zastrz. 1, o wyjściowym pH = 4,6-5,0 w temperaturze 29-31°C w czasie 24 godzin przy stopniu napełnienia kolb 20% objętościowych i szybkości obro-1 towej wstrząsarki 180 min-1, przy czym procedurę aktywowania i selekcji pleśni Mucor circinelloides powtarza się 3-krotnie, a otrzymany selektant przechowuje się na podłożu stałym o składzie w częściach wagowych: 0,5-1 części koloidalnej chityny, 30 części agaru, 1000 części brzeczki piwowarskiej o stężeniu 8°Be, w temperaturze 4°C.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że stosuje się płaty pianki poliuretanowej na bazie poliolu polieteru o całkowicie otwartej strukturze komórkowej - pianki retykulowanej uzyskiwanej w wyniku procesu termicznej retykulacji, o numerze klasy fikacyjnym TM23280, charakteryzującej się 3 gęstością 19-22 kg/m3, wytrzymałością na rozciąganie 70 kPa i średnicą porów 2,20-3,40 mm, o wymiarach 250 x 120 x 10 mm.
    PL 217 339 B1
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że przemycie wodą płatów pianki z przerośniętą biomasą selektanta Mucor circinelloides CH81/3SC monitoruje się pomiarem absorbancji A<0,05 dla długości fali λ=280 nm, odwodnienie acetonem prowadzi 3-krotnie stosując 15 części wagowych acetonu na 1 część wagową pianki przerośniętej biomasą w czasie 10 minut w zakrytym naczyniu umieszczonym na wytrząsarce o szybkości obrotowej 120 min-1, zaś suszenie prowadzi się na powietrzu w czasie w czasie 12 godzin.
PL395967A 2011-08-16 2011-08-16 Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu PL217339B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL395967A PL217339B1 (pl) 2011-08-16 2011-08-16 Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL395967A PL217339B1 (pl) 2011-08-16 2011-08-16 Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL395967A1 PL395967A1 (pl) 2013-02-18
PL217339B1 true PL217339B1 (pl) 2014-07-31

Family

ID=47682238

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL395967A PL217339B1 (pl) 2011-08-16 2011-08-16 Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL217339B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL395967A1 (pl) 2013-02-18

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ha et al. Production of bacterial cellulose by a static cultivation using the waste from beer culture broth
CN103025862B (zh) 新型破囊壶菌类微藻及用其生产生物油的方法
EP2084290B1 (en) Production of omega-3 fatty acids in microflora of thraustochytriales using modified media
Ludemann et al. Conidial production by Penicillium nalgiovense for use as starter cultures in dry fermented sausages by solid state fermentation
Paranthaman et al. Optimization of various culture media for tannase production in submerged fermentation by Aspergillus flavus
JP4642351B2 (ja) 共培養による没食子酸の調製法
CN103642698B (zh) 高山被孢霉突变株及其应用
Gutarra et al. Lipase production and Penicillium simplicissimum morphology in solid‐state and submerged fermentations
PL217339B1 (pl) Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu
PL217332B1 (pl) Sposób otrzymywania nierozpuszczalnych preparatów enzymów katalizujących hydrolizę chitozanu
PL217361B1 (pl) Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor racemosus
PL217686B1 (pl) Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor circinelloides
PL217358B1 (pl) Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor racemosus
PL217359B1 (pl) Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor circinelloides
PL217695B1 (pl) Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor racemosus
PL217360B1 (pl) Sposób otrzymywania nierozpuszczalnego preparatu lipazy Mucor circinelloides
Singh et al. Chitinase production by Serratia marcescens GG5
CN117736882A (zh) 一种红托竹荪原生质体及其制备方法和应用
CN112980698B (zh) 微生物发酵碳源及其制备方法
Boakye et al. Isolation, screening and identification of pectinolytic fungi from the soil of decomposed plant materials
JP7397438B2 (ja) 油脂生産性が増加した緑藻変異体及びその利用
CN114287462A (zh) 一种蛋糕复合防腐乳化剂及其制备方法
Patidar et al. Chitinase production by Beauveria felina RD 101: optimization of parameters under solid substrate fermentation conditions
Darah et al. Tannase enzyme production by entrapped cells of Aspergillus niger FETL FT3 in submerged culture system
Namasivayam et al. Evaluation of organic waste liquor media for the production of alpha amylase using Aspergillus niger