PL211426B1 - Sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu, zmodyfikowany gen, wektor ekspresyjny i komórka ssacza transfekowana wektorem ekspresyjnym zawierającym zmodyfikowany gen - Google Patents

Sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu, zmodyfikowany gen, wektor ekspresyjny i komórka ssacza transfekowana wektorem ekspresyjnym zawierającym zmodyfikowany gen

Info

Publication number
PL211426B1
PL211426B1 PL370282A PL37028204A PL211426B1 PL 211426 B1 PL211426 B1 PL 211426B1 PL 370282 A PL370282 A PL 370282A PL 37028204 A PL37028204 A PL 37028204A PL 211426 B1 PL211426 B1 PL 211426B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
codon
gene
replaced
protein
modified gene
Prior art date
Application number
PL370282A
Other languages
English (en)
Other versions
PL370282A1 (pl
Inventor
Grzegorz Kudła
Original Assignee
Międzynarodowy Inst Biolog Molekularnej I Komorkowej W Warszawie
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Międzynarodowy Inst Biolog Molekularnej I Komorkowej W Warszawie filed Critical Międzynarodowy Inst Biolog Molekularnej I Komorkowej W Warszawie
Priority to PL370282A priority Critical patent/PL211426B1/pl
Publication of PL370282A1 publication Critical patent/PL370282A1/pl
Publication of PL211426B1 publication Critical patent/PL211426B1/pl

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Description

(12) OPIS PATENTOWY (19) PL (11) 211426 (13) B1 (21) Numer zgłoszenia: 370282 (51) Int.Cl.
C12N 15/11 (2006.01) C12N 15/06 (2006.01) C12N 15/31 (2006.01) (22) Data zgłoszenia: 23.09.2004 C12N 15/63 (2006.01)
Sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu, zmodyfikowany gen, (54) wektor ekspresyjny i komórka ssacza transfekowana wektorem ekspresyjnym zawierającym zmodyfikowany gen
(73) Uprawniony z patentu: MIĘDZYNARODOWY INSTYTUT BIOLOGII MOLEKULARNEJ I KOMÓRKOWEJ W WARSZAWIE, Warszawa, PL
(43) Zgłoszenie ogłoszono: 03.04.2006 BUP 07/06 (72) Twórca(y) wynalazku: GRZEGORZ KUDŁA, Zielonka, PL
(45) O udzieleniu patentu ogłoszono: 31.05.2012 WUP 05/12 (74) Pełnomocnik: rzecz. pat. Witek Rafał WITEK TWARDOWSKA ŚNIEŻKO KANCELARIA RZECZNIKÓW PATENTOWYCH Spółka Partnerska
PL 211 426 B1
Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu o zwiększonym poziomie ekspresji w komórce ssaczej, sposób prowadzenia ekspresji białka w komórce ssaczej, zmodyfikowany gen o zwiększonym poziomie ekspresji w komórce ssaczej oraz wektor i komórka ssacza zawierające ten gen.
Cechą charakterystyczną kodu genetycznego jest kodowanie jednego aminokwasu przez kilka wariantów kodonów (patrz tabela 1).
Zazwyczaj kodony odpowiadające danemu aminokwasowi różnią się dwoma pierwszymi nukleotydami, co wiązane jest z ich wyjątkowym znaczeniem w oddziaływaniach pomiędzy tRNA i mRNA w trakcie translacji. Zaobserwowano również, że pewne kodony są częściej używane przez określone organizmy lub tkanki, a także wpływ pewnych kodonów na wydajność i szybkość procesu translacji. Liczne publikacje opisują korelację obserwowaną w różnych organizmach istniejącą pomiędzy wyborem kodonów, a wydajnością translacji (przykładowo lida K. i Akashi H., Gene 261 (2000) 93-105 i cytowane tam publikacje).
Znane są sposoby podnoszenia poziomu ekspresji genów polegające na zmianie sekwencji kodowanego przez te geny mRNA. Polegają one na dostosowaniu sekwencji poddawanego ekspresji genu do specyficznych warunków translacji cechujących komórkę, w której produkowane ma być dane białko. Znane sposoby opierają się na uwzględnieniu we wprowadzanych modyfikacjach preferencji używania poszczególnych kodonów (ang. codon usage) reprezentowanych w podlegającym translacji mRNA, które to preferencje są obserwowane w danym organizmie. Tego rodzaju podejście opisano między innymi w US 6114148, EP1433853, WO04050872, WO03085114, WO03062374.
T a b e l a 1. Kodony występujące w mRNA i odpowiadające im aminokwasy
aminokwas kod on
1 2
alanina (Ala) GCU GCC GCA GCG
arginina (Arg) CGU CGC CGA CGG AGA AGG
asparagina (Asn) AAU AAC
kwas asparaginowy (Asp) GAU GAC
leucyna (Leu) UUA UUG CUU CUC CUA CUG
lizyna (Lys) AAA AAG
prolina (Pro) CCU CCC CCA CCG
fenyloalanina (Phe) UUU UUC
PL 211 426 B1 cd. tabeli 1
1 2
cysteina (Cys) UGU UGC
glutamina (Gln) CAA CAG
kwas glutaminowy (Glu) GAA GAG
glicyna (Gly) GGU GGC GGA GGG
histydyna (His) CAU CAC
izoleucyna (Ile) AUU AUC AUA
metionina (Met) AUG
seryna (Ser) UCU UCC UCA UCG AGU AGC
treonina (Uhr) ACU ACC ACA ACG
walina (Val) GUU GUC GUA GUG
tryptofan (Urp) UGG
tyrozyna (Uyr) UAU UAC
Podsumowując, można stwierdzić, że dotychczasowe sposoby podnoszenia wydajności ekspresji białek dotyczące zmian obojętnych dla sekwencji aminokwasowej produkowanego białka wprowadzanych w sekwencji kodującej pożądany polipeptyd skupiały się głównie na próbie optymalizacji przebiegu procesu translacji, a wprowadzane zmiany polegały na dostosowaniu kodonów obecnych w wykorzystywanym mRNA do preferencji używania poszczególnych kodonów cechującej dany organizm.
Istotnym ograniczeniem opisanych sposobów jest ścisłe powiązanie zakresu ich stosowania z rodzajem wykorzystywanego do ekspresji organizmu/tkanki/komórki wynikające z różnic w preferencjach używania poszczególnych kodonów charakterystycznych dla różnych typów gospodarzy.
Istnieje jednak ciągłe zapotrzebowanie na metody pozwalające na zwiększanie wydajności rekombinowanych białek, zwłaszcza w komórkach ssaczych. Pożądane jest, aby takie metody niewywoływany zmiany właściwości produkowanego białka, a także nadawały się do stosowania w różnych typach komórek ssaczych.
Nieoczekiwanie tak zdefiniowany cel udało się osiągnąć dzięki niniejszemu wynalazkowi.
Przedmiotem niniejszego wynalazku są: sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu o zwiększonym poziomie ekspresji w komórce ssaczej, sposób prowadzenia ekspresji białka w komórce ssaczej, zmodyfikowany gen o zwiększonym poziomie ekspresji w komórce ssaczej oraz wektor i komórka ssacza zawierające ten gen, zdefiniowane w załączonych zastrzeżeniach patentowych.
PL 211 426 B1
Sposób według wynalazku polega na takiej zmianie sekwencji genu kodującego dane białko, żeby uzyskać wysoką częstość występowania nukleotydów G i C w obszarze kodującym genu, bez zmieniania sekwencji aminokwasowej białka. W praktyce polega to na takiej zamianie większości nukleotydów A i T, najczęściej w trzecich pozycjach kodonów, na nukleotydy C i G, aby nie zmienić sekwencji kodowanego białka.
Stosowane w niniejszym opisie pojęcie „cicha substytucja dotyczy takiej zmiany w sekwencji nukleotydowej, która nie prowadzi do zmiany kodowanej przez nią sekwencji aminokwasowej. Każdorazowo prowadzi ona do osiągnięcia zmiany synonimicznej.
Stosowane w niniejszym opisie pojęcie „częstość występowania nukleotydów G i C” charakteryzujące sekwencję nukleotydową może być utożsamiane z zawartością procentową tych nukleotydów w cał kowitym skł adzie nukleotydowym danej sekwencji.
Zaproponowana metoda może być stosowana wobec różnych znanych genów kodujących pożądane białko, zarówno naturalnych jak i rekombinowanych, które mają być poddane ekspresji w komórkach ssaczych. Sekwencje takich genów są łatwo dostępne dla specjalisty i mogą być przykładowo uzyskane z bazy GeneBank dostępnej w Internecie (www.ncbi.nih.gov).
Zmodyfikowany gen według wynalazku może być łatwo otrzymany znanymi technikami, przykładowo techniką wprowadzania poszczególnych mutacji punktowych do polinukleotydu genu poddawanego modyfikacji albo poprzez zautomatyzowaną syntezę de novo całego genu lub jego fragmentów.
Pojęcie „znane odmiany i rekombinowane pochodne stosowane w niniejszym opisie wobec białek kodowanych przez gen modyfikowany metodą według wynalazku obejmuje wszelkie znane warianty, mutanty i pochodne takich białek. Mogą to być białka naturalne albo rekombinowane, posiadające np. ulepszone właściwości funkcjonalne. Przykładowymi pochodnymi białek są białka fuzyjne, białka humanizowane lub białka posiadające dodatkowe sekwencje ułatwiające ich oczyszczanie. Specjalista, w oparciu o powszechnie dostępną wiedzę, będzie w stanie wskazać odpowiednie sekwencje aminokwasowe jak również zaproponować ich pożądane modyfikacje. Szczególnym przykładem białek nadających się do produkowania metodą według wynalazku są białka terapeutyczne wymienione w Tabeli 2. Są to białka, których ekspresja jest szczególnie pożądana, ze względu na ich oczekiwane właściwości terapeutyczne.
T a b e l a 2. Wybrane białka terapeutyczne
Klasa Białko Wskazanie
1 2 3
Hormony Insulina zwierzęca cukrzyca
Rekombinowana insulina ludzka cukrzyca
Rekombinowany ludzki hormon wzrostu Niedobór hormonu wzrostu, Zespół Turnera
Hormon uwalniający gonadotropinę Męska niepłodność
Ludzka kosmówkowa gonadotropina Hipogonadyzm hipogonadotropowy
Kalcytonina z łososia Choroba Pageta, hiperkalcemia w chorobie nowotworowej osteoporoza postmenopauzalna
Rekombinowana ludzka erytropoetyna (epoetyna) anemia
Enzymy Czynnik VIII Hemofilia
rhDNaza Mukowiscydoza
Rekombinowany tkankowy aktywator plazminogenu Thromboliza w ostrym zawale mięśnia sercowego
Rekombinowana streptokinaza Thromboliza w ostrym zawale mięśnia sercowego
Rekombinowana stafylokinaza Thromboliza w ostrym zawale mięśnia sercowego
PL 211 426 B1 cd. tabeli 2
1 2 3
Cytokiny IFN-alfa2a Hepatitis C, Niektóre nowotwory
IFN-alfa2b Leukemia, guz nowotworowy
IFN-beta 1a, 1b Stwardnienie rozsiane, niektóre nowotwory
IL-2 niektóre nowotwory
IL-3 niektóre nowotwory
Czynniki wzrostu białko fuzyjne IL-3 GM-CSF (ΡΙΧΥ321) niektóre nowotwory
GM-CSF niektóre nowotwory
Ludzki G-CSF Neutropenia
Receptory i antagoniści CD4 HIV
Lenercept (TNF białko rozpuszczalnej formy receptora) Stwardnienie rozsiane
Etanercept (TNF białko rozpuszczalnej formy receptora) Reumatoidalne zapalenie stawów
G-CSF = czynnik stymulujący wzrost granulocytarnych kolonii; GM-CSF = czynnik stymulujący wzrost granulocytarnychmakrofagowych kolonii; HIV = ludzki wirus upośledzenia odporności, IFN = interferon; IL = interleukina; rhDNase = rekombinowana ludzka deoksyrybonukleaza; TNF = czynnik martwicy nowotworu
Geny pozyskane metodą według wynalazku zgodnie z jednym z jego aspektów mogą być wykorzystywane w przemysłowej produkcji białek w odpowiednich kulturach hodowlanych. Zarówno warunki hodowli jak i dobór odpowiedniego gospodarza i zaprojektowanie wektora właściwego do jego transfekcji leżą w możliwościach specjalisty dysponującego dostępną wiedzą z tej dziedziny.
Zgodnie z innym aspektem wynalazku, geny modyfikowane mogą być wykorzystywane w terapii genowej. Również w tym przypadku należy zwrócić uwagę na odpowiedni wybór wektora stosowanego do wprowadzania genu modyfikowanego dostosowany do leczonego organizmu lub tkanki, czy też pożądanego efektu terapeutycznego lub planowanej metody leczenia. Specjalista w oparciu o dostępną wiedzę z tej dziedziny będzie w stanie dokonać koniecznego doboru pozostałych elementów i warunków terapii.
Zgodnie z niniejszym wynalazkiem, nieoczekiwanie ustalono, że geny o wysokiej zawartości nukleotydów G i C w sekwencji kodującej są poddawane ekspresji skuteczniej niż geny o niskiej zawartości G i C. Zwiększenie zawartości nukleotydów G i C w genie wpływa na zwiększenie ilości mRNA produkowanego przez ten gen. Natomiast nie stwierdzono wpływu zawartości nukleotydów G i C na prę dkość translacji. Moż na postulować co najmniej dwa mechanizmy zaobserwowanego efektu, mianowicie wydajniejsza produkcja mRNA przez geny o wysokiej zawartości G i C może być wynikiem większej stabilności mRNA albo też wydajniejszej transkrypcji.
Celem lepszego zilustrowania wynalazku opisano poniżej przykłady jego realizacji dla pewnych genów ssaczych. Zilustrowano również obserwowany efekt wzrostu poziomu ekspresji dla genów modyfikowanych. Nie należy jednak ograniczać zakresu przedmiotowego wynalazku jedynie do wskazanych przykładowych genów, komórek ssaczych, wektorów i warunków ekspresji. W szczególności należy oczekiwać, że wzrost poziomu ekspresji będzie obserwowany również dla innych genów i ssaczych układów ekspresyjnych.
P r z y k ł a d 1. Porównanie wydajności ekspresji w komórkach ssaczych genów o wysokiej i niskiej zawartoś ci nukleotydów G i C.
W celu porównania wydajności ekspresji genów o wysokiej i niskiej zawartości nukleotydów G i C użyto wektora pEGFP-N2 (BD Clontech) oraz wektora pGFP-N2, stworzonego przez nas. Wektory te zawierają promotor CMV do ekspresji w komórkach ludzkich i są identyczne na całej długości, z wyjątkiem sekwencji genów kodujących białka EGFP i GFP. Gen kodujący białko EGFP zawiera 97% nukleotydów G i C w trzeciej pozycji kodonów, a gen kodujący białko GFP - 33% nukleotydów G i C w trzeciej pozycji kodonów. Sekwencje aminokwasowe biał ek EGFP i GFP są identyczne; identyczne są również 3' i 5' UTRy genów GFP i EGFP oraz sekwencje Kozak w tych genach.
PL 211 426 B1
Wektor pGFP-N2 uzyskano przez podstawienie sekwencji kodującej białko GFP w wektorze pEGFP-N2 przez sekwencje kodującą GFP z wektora pS65T-C1 (BD Clontech), oraz 3 mutagenezy prowadzące do uzyskania jednakowej sekwencji aminokwasowej białek GFP kodowanych przez wektory pEGFP-N2 i pGFP-N2. Sekwencje wektorów przedstawiono na figurach 1 i 2. Sekwencję części kodującej GFP wektora pGFP-N2 sprawdzono przez sekwencjonowanie.
Poziom ekspresji genów GFP i EGFP monitorowano przy użyciu cytofluorymetru przepływowego. Komórki HeLa wysiewano na płytce 6-dołkowej w ilości 250 000 komórek na dołek, a następnego dnia transfekowano 1.5 μg wektorów pGFP-N2 albo pEGFP-N2, przy użyciu 5 μg odczynnika Lipofectamine2000. Podobnie komórki HEK293 wysiewano na płytce 6-dołkowej w ilości 400 000 na dołek, a następnego dnia transfekowano 2 μg wektorów pGFP-N2 albo pEGFP-N2, przy użyciu 4 μg odczynnika PEI. Po 24 godzinach komórki trypsynizowano, zawieszano w buforze PBS i mierzono fluorescencję na cytofluorymetrze. Poziom białka EGFP był kilkudziesięciokrotnie wyższy niż białka GFP. Wyniki zaprezentowano na fig. 3 i fig. 4.
W celu porównania ilości mRNA genów EGFP i GFP, 24 godziny po transfekcji komórek wykonano izolację całkowitego RNA komórkowego za pomocą zestawu NucleoSpin firmy Macherey-Nagel. Po określeniu ilości RNA we wszystkich próbkach wykonano odwrotną transkrypcję za pomocą zestawu firmy Fermentas, a następnie ilościowe oznaczenie cDNA za pomocą urządzenia Light-Cycler (Roche) przy użyciu odczynnika Sybr-Green. Sekwencje starterów przyłączały się do cDNA EGFP i GFP w obszarze 3'UTR, co gwarantowało identyczną wydajność PCR w obu przypadkach, ponieważ obszary 3'UTR tych genów są identyczne. Jako kontroli jednakowej wydajności transfekcji wektorami pEGFP-N2 i pGFP-N2 użyto sekwencji cDNA genu oporności na neomycynę, znajdującego się na tych plazmidach. Ilości produktów genu oporności na neomycynę były podobne w przypadku transfekcji wektorami pEGFP-N2 i pGFP-N2. Przeciwnie, poziom mRNA genu EGFP był kilkudziesięciokrotnie wyższy niż poziom mRNA genu GFP, zarówno w komórkach HeLa jak i HEK293. W świetle wcześniejszej wiedzy uzyskany efekt należy uznać za nieoczekiwany. Wyniki zaprezentowano na figurze 5.
P r z y k ł a d 2. Porównanie wydajności ekspresji w komórkach ssaczych podobnych genów ssaczych o wysokiej i niskiej zawartości nukleotydów G i C.
Przykładem ludzkich genów o podobnej sekwencji, ale różnej zawartości nukleotydów G i C są geny HSPA1A i HSPA8, kodujące odpowiednio białka Hsp70 i Hsc70. Gen HSPA1A zawiera 92% nukleotydów G i C w trzeciej pozycji kodonów, a gen HSPA8 - 46% nukleotydów G i C w tej pozycji. W celu porównania wydajności ekspresji tych genów stworzono wektory pET-Hsc70 i pET-Hsp70 zawierające promotor dla polimerazy T7, pozwalający na syntezę mRNA w warunkach in vitro. Zsyntetyzowane mRNA wykorzystano następnie do pokazania, że mimo różnicy w zawartości nukleotydów G i C, prędkość translacji obu genów jest identyczna (szczegółowo eksperyment opisano w publikacji Grzegorz Kudła, Aleksandra Helwak, i Leszek Lipiński, „Gene Conversion and GC-Content Evolution in Mammalian Hsp70, Molecular Biology and Evolution 2004 21: 1438-1444).
Stworzono następnie wektory pcDNA3.1-Hsc70-HA oraz pcDNA3.1-Hsp70-HA, których sekwencje zaprezentowano na figurach 6 i 7. Są to wektory pozwalające na ekspresję genów Hsc70 i Hsp70 w komórkach ludzkich, zawierające promotor CMV oraz tag HA umożliwiający skuteczne wykrywanie białek w lizatach komórkowych metodą Westernbloting.
Uzyskane wyniki ekspresji powinny potwierdzić wpływ zawartości nukleotydów G i C na poziom ekspresji - w tym przypadku podobnych genów.

Claims (40)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu, znamienny tym, że w obszarze kodującym sekwencji nukleotydowej genu wprowadza się ciche substytucje zwiększające częstość występowania nukleotydów G i C.
  2. 2. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Ala zastępuje się kodonem wybranym spośród GCC i GCG.
  3. 3. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Cys zastępuje się kodonem TGC.
  4. 4. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Asp zastępuje się kodonem GAC.
    PL 211 426 B1
  5. 5. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Glu zastę puje się kodonem GAG.
  6. 6. Sposób wedł ug zastrz. 1, znamienny tym, ż e kodon odpowiadający Phe zastę puje się kodonem TTC.
  7. 7. Sposób wedł ug zastrz. 1, znamienny tym, ż e kodon odpowiadają cy Gly zastę puje się kodonem wybranym spośród GGC i GGG.
  8. 8. Sposób wedł ug zastrz. 1, znamienny tym, ż e kodon odpowiadają cy His zastę puje się kodonem CAC.
  9. 9. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, ż e kodon odpowiadający Ile zastę puje się kodonem ATC.
  10. 10. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Lys zastępuje się kodonem AAG.
  11. 11. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Leu zastępuje się kodonem wybranym spośród TTG, CTT, CTC, CTA, CTG, korzystnie kodonem CTG albo CTC.
  12. 12. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Asn zastępuje się kodonem AAC.
  13. 13. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Pro zastępuje się kodonem wybranym spośród CCG albo CCC.
  14. 14. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Gln zastępuje się kodonem CAG.
  15. 15. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Arg zastępuje się kodonem wybranym spośród CGT, CGC, CGA, CGG, AGG, korzystnie kodonem CGC albo CGG.
  16. 16. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Ser zastępuje się kodonem wybranym spośród TCC, TCG albo AGC.
  17. 17. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Thr zastępuje się kodonem ACC albo ACG.
  18. 18. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Val zastępuje się kodonem GTC albo GTG.
  19. 19. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że jako kodon odpowiadający Trp stosuje się TGG, a jako kodon odpowiadający Met stosuje się ATG.
  20. 20. Sposób według zastrz. 1, znamienny tym, że kodon odpowiadający Thr zastępuje się kodonem ACC albo ACG.
  21. 21. Sposób według jednego z zastrz. od 1 do 20, znamienny tym, że modyfikowanym genem jest gen kodujący białko wybrane spośród: czynników transkrypcyjnych, chaperonów (białek opiekuńczych), hormonów białkowych, enzymów, cytokin, czynników wzrostu lub receptorów i antagonistów lub ich znanych odmian i rekombinowanych pochodnych.
  22. 22. Sposób według zastrz. 21, znamienny tym, że hormon białkowy jest wybrany z grupy obejmującej: insulinę zwierzęcą, insulinę ludzką, ludzki hormon wzrostu, hormon uwalniający gonadotropinę, ludzką kosmówkową gonadotropinę, kalcytoninę z łososia, ludzką erytropoetynę lub ich znane odmiany i rekombinowane pochodne.
  23. 23. Sposób według zastrz. 21, znamienny tym, że enzym jest wybrany z grupy obejmującej: Czynnik VIII krzepnięcia krwi, rhDNazę, tkankowy aktywator plazminogenu, streptokinazę, stafylokinazę lub ich znane odmiany i rekombinowane pochodne.
  24. 24. Sposób według zastrz. 21, znamienny tym, że cytokina jest wybrana z grupy obejmującej: IFN-alfa2a, IFN-alfa2b, IFN-beta 1a, 1b, IL-2, IL-3 lub ich znane odmiany i rekombinowane pochodne.
  25. 25. Sposób według zastrz. 21, znamienny tym, że czynnik wzrostu jest wybrany z grupy obejmującej: białko fuzyjne IL-3 GM-CSF (PIXY321), GM-CSF, ludzki G-CSF lub ich znane odmiany i rekombinowane pochodne.
  26. 26. Sposób według zastrz. 21, znamienny tym, że receptor lub antagonista jest wybrany z grupy obejmującej: CD4, lenercept, etanercept lub ich znane odmiany i rekombinowane pochodne.
  27. 27. Sposób prowadzenia ekspresji białka w komórce ssaczej, znamienny tym, że identyfikuje się sekwencję nukleotydową genu kodującego rzeczone białko, w obszarze kodującym sekwencji nukleotydowej genu wprowadza się ciche substytucje zwiększające częstość występowania nukleotydów G i C, syntetyzuje się wektor ekspresyjny zawierający gen o zmodyfikowanej sekwencji połączony operacyjnie z sekwencjami umożliwiającymi ekspresję w komórek ssaczej, a następnie (znanymi
    PL 211 426 B1 metodami) wprowadza się otrzymany wektor ekspresyjny do komórki ssaczej i uzyskuje się ekspresję zmodyfikowanego genu.
  28. 28. Sposób według zastrz. 27, znamienny tym, że wprowadzając substytucje dokonuje się zmiany kodonów według zastrz. od 2 do 20.
  29. 29. Sposób według zastrz. 27 albo 28, znamienny tym, że modyfikowanym genem jest gen według zastrz. od 21 do 26.
  30. 30. Sposób według zastrz. 27, znamienny tym, że komórka ssacza jest komórką ludzką lub jej pochodną.
  31. 31. Sposobi według zastrz. 27, znamienny tym, że ekspresję zmodyfikowanego genu uzyskuje się in vitro albo w organizmie ssaka.
  32. 32. Zmodyfikowany gen o zwiększonym poziomie ekspresji w komórce ssaczej, znamienny tym, że w obszarze kodującym sekwencji nukleotydowej zawiera ciche substytucje zwiększające częstość występowania nukleotydów G i C.
  33. 33. Zmodyfikowany gen według zastrz. 32, znamienny tym, że zawiera zmiany kodonów według zastrz. od 2 do 20.
  34. 34. Zmodyfikowany gen według zastrz. 32 albo 33, znamienny tym, że modyfikowanym genem jest gen według zastrz. od 21 do 26.
  35. 35. Wektor ekspresyjny, znamienny tym, że zawiera zmodyfikowany gen o zwiększonym poziomie ekspresji w komórce ssaczej, przy czym rzeczony gen w obszarze kodującym sekwencji nukleotydowej zawiera ciche substytucje zwiększające częstość występowania nukleotydów G i C.
  36. 36. Wektor ekspresyjny według zastrz. 35, znamienny tym, że zmodyfikowany gen zawiera zmiany kodonów według zastrz. od 2 do 20.
  37. 37. Wektor ekspresyjny według zastrz. 35 albo 36, znamienny tym, że modyfikowanym genem jest gen według zastrz. od 21 do 26.
  38. 38. Wektor ekspresyjny według zastrz. 35 albo 36 albo 37, znamienny tym, że jest wektorem do przemysłowej produkcji białka albo wektorem to terapii genowej.
  39. 39. Komórka ssacza, znamienna tym, że jest transfekowana wektorem ekspresyjnym zawierającym zmodyfikowany gen o zwiększonym poziomie ekspresji w komórce ssaczej, przy czym rzeczony gen w obszarze kodującym sekwencji nukleotydowej zawiera ciche substytucje zwiększające częstość występowania nukleotydów G i C.
  40. 40. Komórka według zastrz. 39, znamienna tym, że zawiera wektor ekspresyjny według zastrz. od 35 do 38.
PL370282A 2004-09-23 2004-09-23 Sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu, zmodyfikowany gen, wektor ekspresyjny i komórka ssacza transfekowana wektorem ekspresyjnym zawierającym zmodyfikowany gen PL211426B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL370282A PL211426B1 (pl) 2004-09-23 2004-09-23 Sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu, zmodyfikowany gen, wektor ekspresyjny i komórka ssacza transfekowana wektorem ekspresyjnym zawierającym zmodyfikowany gen

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL370282A PL211426B1 (pl) 2004-09-23 2004-09-23 Sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu, zmodyfikowany gen, wektor ekspresyjny i komórka ssacza transfekowana wektorem ekspresyjnym zawierającym zmodyfikowany gen

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL370282A1 PL370282A1 (pl) 2006-04-03
PL211426B1 true PL211426B1 (pl) 2012-05-31

Family

ID=38317545

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL370282A PL211426B1 (pl) 2004-09-23 2004-09-23 Sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu, zmodyfikowany gen, wektor ekspresyjny i komórka ssacza transfekowana wektorem ekspresyjnym zawierającym zmodyfikowany gen

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL211426B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL370282A1 (pl) 2006-04-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN113631708B (zh) 编辑rna的方法和组合物
EP2681327B1 (en) Vectors conditionally expressing protein
JP5873511B2 (ja) mRNA翻訳エンハンサーエレメントに関する組成物および方法
US6410314B1 (en) Episomally replicating vector, its preparation and use
JP2025508861A (ja) センス・レスポンス・アプリケーションのためのadar編集を利用した生細胞内rnaセンサー
WO2024240138A1 (zh) 基于perv逆转录酶的先导编辑系统
JP6855037B2 (ja) ゲノム編集方法
PL211426B1 (pl) Sposób otrzymywania zmodyfikowanego genu, zmodyfikowany gen, wektor ekspresyjny i komórka ssacza transfekowana wektorem ekspresyjnym zawierającym zmodyfikowany gen
CN102016025B (zh) 用于用动物细胞大量生产源自外源基因的蛋白质的表达载体及其应用
JPWO2018066492A1 (ja) Hspa5遺伝子のプロモーター
TW202020160A (zh) Hspa8 基因之啟動子
AU618394B2 (en) Factor regulating gene expression
Upreti et al. Expression and DNA binding activity of the recombinant interferon regulatory factor-1 (IRF-1) of mouse
US20080077999A1 (en) Using Nonhuman Animal Model, Method of Measuring Transcription Activity Method of Measuring Cell Quantity and Method of Measuring Tumor Volume
JP2005312304A (ja) 新規インターフェロン制御因子活性化ポリペプチド及びそれをコードする核酸
KR100512018B1 (ko) 상동 재조합에 의해 인간 세포에서 인간 변이 단백질을 생성시키는 방법
KR20250007570A (ko) Eno1 유전자의 프로모터
CN102695794B (zh) 启动子的增强子及其用途
EP2382319B1 (en) A method for increasing protein expression in cells
CN116355100A (zh) 一种碱基编辑器及其构建方法与应用
HK1192590B (en) Vectors conditionally expressing protein
HK1192590A (en) Vectors conditionally expressing protein
JPS63263083A (ja) 新しい塩基配列のヒトプロテインc遺伝子

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20130923