PL176383B1 - Nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o strukturze peptydów i sposób ich otrzymywania - Google Patents

Nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o strukturze peptydów i sposób ich otrzymywania

Info

Publication number
PL176383B1
PL176383B1 PL93300659A PL30065993A PL176383B1 PL 176383 B1 PL176383 B1 PL 176383B1 PL 93300659 A PL93300659 A PL 93300659A PL 30065993 A PL30065993 A PL 30065993A PL 176383 B1 PL176383 B1 PL 176383B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
acid
trans
norvaline
epoxy
residue
Prior art date
Application number
PL93300659A
Other languages
English (en)
Other versions
PL300659A1 (en
Inventor
Ryszard Andruszkiewicz
Teresa Zieniawa
Edward Borowski
Original Assignee
British Tech Group
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by British Tech Group filed Critical British Tech Group
Priority to PL93300659A priority Critical patent/PL176383B1/pl
Priority to CA002173502A priority patent/CA2173502A1/en
Priority to JP7510693A priority patent/JPH09503223A/ja
Priority to GB9420129A priority patent/GB2282602B/en
Priority to EP94928464A priority patent/EP0722456A1/en
Priority to AU77886/94A priority patent/AU7788694A/en
Priority to US08/624,559 priority patent/US5863937A/en
Priority to PCT/GB1994/002162 priority patent/WO1995009867A1/en
Priority to SG1996005849A priority patent/SG47980A1/en
Priority to ZA947878A priority patent/ZA947878B/xx
Publication of PL300659A1 publication Critical patent/PL300659A1/xx
Publication of PL176383B1 publication Critical patent/PL176383B1/pl

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/08Tripeptides
    • C07K5/0819Tripeptides with the first amino acid being acidic
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/10Antimycotics
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06008Dipeptides with the first amino acid being neutral
    • C07K5/06017Dipeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
    • C07K5/06034Dipeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic the side chain containing 2 to 4 carbon atoms
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06008Dipeptides with the first amino acid being neutral
    • C07K5/06017Dipeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
    • C07K5/0606Dipeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic the side chain containing heteroatoms not provided for by C07K5/06086 - C07K5/06139, e.g. Ser, Met, Cys, Thr
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/06Dipeptides
    • C07K5/06086Dipeptides with the first amino acid being basic
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/08Tripeptides
    • C07K5/0802Tripeptides with the first amino acid being neutral
    • C07K5/0804Tripeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
    • C07K5/0808Tripeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic the side chain containing 2 to 4 carbon atoms, e.g. Val, Ile, Leu
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/08Tripeptides
    • C07K5/0802Tripeptides with the first amino acid being neutral
    • C07K5/0804Tripeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic
    • C07K5/081Tripeptides with the first amino acid being neutral and aliphatic the side chain containing O or S as heteroatoms, e.g. Cys, Ser
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K5/00Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof
    • C07K5/04Peptides containing up to four amino acids in a fully defined sequence; Derivatives thereof containing only normal peptide links
    • C07K5/08Tripeptides
    • C07K5/0815Tripeptides with the first amino acid being basic
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)

Abstract

1 . Nowe pochodne kwasu D-trans-2,3- epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropa- nowego o wzorze ogólnym 1, w którym R1 oznacza reszte aminokwasu, znamienne tym, ze reszta aminokwasu jest reszta wali- ny, norwaliny, metioniny, leucyny, izoleucy- ny, norleucyny, kwasu 2-aminobutanowego, kwasu asparaginowego lub kwasu glutami- nowego. WZÓR 1 PL

Description

Przedmiotem wynalazku są nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoiloL-2,3-diaminopropanowego o strukturze peptydów o wzorze ogólnym 1, w którym R1 oznacza resztę aminokwasu lub dipeptydu oraz nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o strukturze peptydów o wzorze ogólnym 2, w którym R2 oznacza resztę aminokwasu i sposób ich otrzymywania.
Dotychczas z publikacji w J. Antibiotics 41,13-19 (1988) i Tetrahedron Lett. 34, 3201 3204 (1993) znany jest antybiotyk peptydowy, kwas N2-L-alanylo, N3-D-trans-2,3epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowy o symbolu Sch 37137, który otrzymuje się na drodze fermentacji, a jego absolutną konfigurację wszystkich centrów chiralnych ustalono w wyniku korelacji produktu fermentacji ze związkiem syntetycznym. Antybiotyk ten wykazuje słabą aktywność biologiczną w stosunku do niektórych grzybów oraz bakterii gramdodatnich i gram-ujemnych. Peptydy zawierające reszty inne niż alanina są dotychczas nieznane jak i nieznane są ich metody otrzymy wania.
Według wynalazku nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3diaminopropanowego o wzorze ogólnym 1, charakteryzują się tym, że R1 oznacza resztę ami-. nokwasu takiego jak walina, norwalina, leucyna, norleucyna, izoleucyna, metionina, lizyna, kwas 2-aminobutanowy, kwas asparaginowy lub kwas glutaminowy.
Inna odmiana wynalazku przedstawiona wzorem ogólnym 1, charakteryzuje się tym, że R1 jest resztą dipeptydu. W szczególności resztą dipeptydu jest reszta norwalilo-norwaliny,
176 383 lizylo-norwaliny, metionylo-norwaliny, glutamylo-norwaliny, norwalilo-metioniny, metionylo-metioniny, leucylo-norwaliny, norleucylo-norwaliny, walilo-norwaliny, glutamyloleucyny, asparaginylo-norwaliny lub leucylo-leucyny.
Kolejna odmiana wynalaZku o wzorze ogólnym 2 charakteryzuje się tym, że R2 jest resztą aminokwasu. W szczególności resztą aminokwasu jest reszta alaniny, metioniny, waliny, norwaliny, leucyny, norleucyny lub kwasu 2-aminobutanowego.
Sposób otrzymywania peptydów zawierających kwas N-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowy o wzorze ogólnym 1, w którym Ri oznacza resztę aminokwasu, według wynalazku charakteryzuje się tym, że monoester etylowy kwasu D-trans-2,3epoksybursztynowego aktywuje się i poddaje reakcji z solą kwasu N2-tert-biuoksykarbonyloL-2,3-diaminopropanowego w środowisku polarnego rozpuszczalnika organicznego lub jego mieszaniny z wodą. Z powstałego kwasu N-tert-butoksykarbonylo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego usuwa się ochronę grupy aminowej i acyluje go estrem aktywnym N-chronionego aminokwasu takiego jak metionina, leucyna, norleucyna, walina, izoleucyna, norwalina lub kwas 2-aminobutanowyk Po upływie 4-10 godzin uzyskany N-chroniony dipeptyd wydziela się z mieszaniny poreakcyjnej, przeprowadza amonolizę estru i usuwa ochronę grupy aminowej, zaś produkt w postaci soli z kwasem trifluorooctowym izoluje się poprzez krystalizację.
W przypadku otrzymywania tripeptydów o wzorze ogólnym 1, w którym Ri oznacza resztę dipeptydu, otrzymany powyżej N-chroniony dipeptyd zawierający norwalinę po usunięciu osłony grupy aminowej poddaje się reakcji z estrem aktywnym N-chronionego aminokwasu takiego jak norwalina, leucyna, metionina, lizyna lub kwas glutaminowy. Z otrzymanego tripeptydu po reakcji amonolizy estru usuwa się osłonę grupy aminowej, a produkt końcowy w postaci soli izoluje się poprzez krystalizację.
Sposób otrzymywania peptydów zawierających kwas N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowy o wzorze ogólnym 1, w którym R2 oznacza resztę, aminokwasu według wynalazku charakteryzuje się tym, że monoester etylowy kwasu D-trans-2,3epoksybursztynowego aktywuje się i poddaje reakcji z kwasem N-tert-butoksykarbonylo-L2,3-diaminopropanowym w środowisku polarnego rozpuszczalnika organicznego lub jego mieszaniny z wodą. Otrzymany kwas ^-tert-butoksykarbonylo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowy przeprowadza się w ester aktywny, którym acyluje się aminokwas taki jak norwalina, metionina, leucyna, izoleucyna, norleucyna lub kwas 2-aminobutanowy. Po upływie 4-8 godzin uzyskany N-chroniony dipeptyd wydziela się z mieszaniny poreakcyjnej, a po amonolizie estru usuwa ochronę grupy aminowej, zaś produkt końcowy w postaci soli izoluje się przez krystalizację. Jako czynnik aktywujący monoester etylowy kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynowego, kwas N2-tert-butoksykarbonylo, iN-D-transU-etoksy-dJ-epoksybursztynoilo-LUJ-diaminopropanowy i N-chroniony aminokwas stosuje się N-hydroksysukcynoimid. Natomiast jako polarny rozpuszczalnik organiczny stosuje się tetrahydrofuran, octan etylu lub mieszaninę alkoholu alifatycznego takiego jak metanol lub etanol z wodą.
Tożsamość uzyskanych pochodnych stwierdzono przy pomocy spektrometrii masowej, analizy elementarnej i spektroskopii protonowego rezonansu magnetycznego. Wartość jonów masowych określono przy pomocy spektrometrii masowej techniką desorpcji polem - field desorption.
Przedmiotowe pochodne wykazują wysoką aktywność przeciwdrobnoustrojową, w szczególności zaś przeciwgrzybową w stosunku do grzybów Candida albicans. Oznaczenie aktywności przeciwgrzybowej wykonano metodą rozcieńczeń seryjnych w podłożu płynnym YNB (Yeast Nitrogen Base) zawierającym glutaminian sodu w stężeniu 200 (gg/ml, w temperaturze 30°C, czas odczytu 24 godz. Przykładowo stwierdzono, że minimalne stężenie hamujące (MIC) dla peptydu, kwasu N2-L-norwalilo, N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3diaminopropanowego wynosi 0,15 gg/ml wobec Candida albicans ATCC 26278. Dla porównania MIC oznaczony dla peptydu, kwasu ^-L-alanylo, N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego wynosi 1,2 gg/ml.
176 383
Zaletą wynalazku jest możliwość otrzymywania mało toksycznych związków o wysokiej aktywności przeciwgrzybowej, a ich działanie polega na specyficznej inhibicji syntetazy glukozamino-6-fosforanu co prowadzi do zahamowania biosyntezy ściany komórkowej drobnoustroju.
Wynalazek ilustrują podane niżej przykłady.
Przykład I.
a) 4,08 g (20 mM) kwasu N2-tert-butoksykarbonylo-L-2,3-diaminopropanowego rozpuszcza się w mieszaninie 50 ml wody i 20 ml metanolu oraz dodaje 1,68 g (20 mM) kwaśnego węglanu sodu. Mieszaninę schładza się do temperatury 0°C i przy silnym mieszaniu dodaje się 5,14 g (20 mM) estru N-sukcynoimidowoetylowego kwasu D-trans-2,3epoksybursztynowego. Reakcję prowadzi się przez 6 godzin, a po tym czasie metanol odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem, pozostałość zakwasza się 10% roztworem kwaśnego siarczanu potasu do pH = 2. Produkt ekstrahuje się kilkakrotnie octanem etylu, warstwę organiczną, przemywa nasyconym roztworem chlorku sodu, suszy nad bezwodnym MgSO4, odparowuje rozpuszczalnik i krystalizuje z mieszaniny eter etylowy - heksan. Otrzymuje się 5,44 g kwasu N2-tert-butoksykarbonylo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3diaminopropanowego o t.t. 52-54°C i [a]s7g - -54,2° (c = 1, MeOH). Wydajność procesu wynosi 78%.
b) 3,46 g (10 mM) kwasu N -tert-butoksykarbonylo, N -D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego rozpuszcza się w 30 ml bezwodnego kwasu trifluorooctowego, schładza się do temperatury 0°C i pozostawia na 2 godziny. Po tym czasie odparowuje się kwas, pozostałość zalewa się suchym eterem, a powstały osad suszy się w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 3,46 g trifluorooctanu kwasu N3-D-trans-4-etoksy-2,3epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego o t.t. 164-166°C i [a]s7g = -71,2° (c = 1, MeOH). Wydajność procesu wynosi 96%.
c) Do schłodzonego roztworu 1,57 g (5 mM) estru N-hydroksysukcynoimidowego Ntert-butoksykarbonylo-L-norwaliny w 20 ml octanu etylu przy silnym mieszaniu dodaje się 0,7 ml trietyloaminy i 1,85 g (5 mM) trifluorooctanu kwasu N3-D-trans-4-etoksy-2,3epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego rozpuszczonego w 10 ml metanolu. Całość miesza się przez 8 godzin i odparowuje rozpuszczalnik. Pozostałość rozpuszcza się w 10 ml wody, dodaje 10% roztworu kwaśnego siarczanu potasu do pH = 2, a produkt reakcji ekstrahuje kilkakrotnie octanem etylu. Warstwę organiczną przemywa się nasyconym roztworem chlorku sodu, suszy nad bezwodnym MgSO4 i odparowuje rozpuszczalnik. Otrzymuje się
2,16 g kwasu N2-tert-butoksykarbonylo-L-norwalilo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego o t.t. 69-70°C i [a]57g = -14,2° (c = 1, MeOH). Wydajność procesu wynosi 90%.
d) 0,96 g (2 mM) kwasu N2-tert-butoksykarbonylo-L-norwalilo, N3-D-trans-4-etoksy2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego rozpuszcza się w 20 ml zimnego, wodnego roztworu amoniaku (29%), intensywnie miesza i pozostawia na 3 godziny. Amoniak odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze pokojowej, pozostałość rozpuszcza w 20 ml wody i nanosi na kolumnę wypełnioną jonitem Amberlit CG 50 H+. Kolumnę płucze się wodą, wyciek odparowuje do sucha, a pozostałość suszy się w eksykatorze próżniowym nad stałym KOH, a następnie rozpuszcza się w 20 ml zimnego kwasu trifluorooctowego i pozostawia na 3 godziny. Kwas trifluorooctowy odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem, do pozostałości dodaje się suchy eter etylowy, osad suszy się w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 0,71 g trifluorooctanu kwasu N2-L-norwalilo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego (Nva-EADP) o t.t. 120-122°C i [a]s7g = -20,2° (c = 1, MeOH). Wydajność procesu wynosi 77%.
Przykłady II-V. Analogicznie jak w przykładzie I otrzymuje się następujące peptydy zawierające kwas N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowy, przedstawione w tabeli 1.
176 383
Tabela 1
Przykład Nazwa peptydu Jon masowy m/z
II trifluorooctan kwasu N2-L-leucylo, N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3diaminopropanowego (Leu-EADP) 330
III trifluorooctan kwasu N2-L-metionylo, N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L2,3-diaminopropanowego (Met-EADP) 348
IV trifluorooctan kwasu N2-L-2-ammobutanoilo, N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3 -diaminopropanowego (Abu-EADP) 302
V trifluorooctan kwasu N2-L-walilo, N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3diaminopropanowego (Val-EADP) 316
Przykład VI.
a) 1,1 g (2,5 mM) kwasu N -tert-butoksykarbonylo-L-norwalilo, N -D-trans-4-etoksy2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego rozpuszcza się w 10 ml zimnego kwasu trifluorooctowego i pozostawia na 2 godziny, po czym kwas odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem, do pozostałości dodaje się suchy eter etylowy. Osad odsącza się i suszy w eksykatorze próżniowym nad KOH. Otrzymuje się 0,93 g trifluorooctanu kwasu N-L-norwalilo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diammopropanowego o t.t. 102106°C i [α]578 = -26,2° (c = 1, MeOH). Wydajność procesu wynosi 90%.
b) Do schłodzonego roztworu 0,94 g (2 mM) trifluorooctanu kwasu N2-L-norwalilo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego w 10 ml metanolu i 0,2 ml trietyloaminy dodaje się podczas silnego mieszania 0,88 g (2 mM) estru N-hydroksysukcynoimidowego N°,Ne-Di-tert-butoksykarbonylo-L-lizyny w 10 ml tetrahydrofuranu. Mieszanie kontynuuje się przez 8 godzin, po czym odparowuje się rozpuszczalniki. Pozostałość rozpuszcza się w 10 ml wody, dodaje 10% roztworu kwaśnego siarczanu potasu do pH = 2, a produkt reakcji ekstrahuje się kilkakrotnie octanem etylu. Warstwę organiczną przemywa się nasyconym roztworem chlorku sodu, suszy nad bezwodnym MgSO4 i odparowuje rozpuszczalnik. Otrzymuje się 1,07 g kwasu N2-bis-tert-butoksykarbonylo-L-lizylo-Lnorwalilo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o t.t. 79-81°C, [α]578 = -47,2° (c = 1, MeOH). Wydajność procesu wynosi 82%.
c) 0,98 g (1,5 mM) peptydu otrzymanego powyżej rozpuszcza się w 20 ml zimnego 28% roztworu amoniaku i pozostawia na 3 godziny. Amoniak odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze pokojowej, rozpuszcza w 5 ml wody, nanosi na kolumnę wypełnioną jonitem Amberlit CG 50 H+. Kolumnę płucze się wodą, wyciek zatęża do sucha, suszy nad KOH w eksykatorze próżniowym, a następnie rozpuszcza w 20 ml zimnego kwasu trifluorooctowego i pozostawia na 3 godziny. Kwas odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem, do pozostałości dodaje się suchego eteru etylowego. Osad myje się eterem i suszy nad KOH w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 0,75 g kwasu N2-L-lizylo-L-norwalilo, N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego (Lys-Nva-EADP) w postaci soli di-trifluorooctanowej w formie bezpostaciowego osadu [α]578 = -9,8° (c = 1, MeOH). Wydajność procesu wynosi 68%.
Przykłady VII-IX. Analogicznie jak w przykładzie VI otrzymuje się następujące peptydy zawierające kwas D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowy przedstawione w tabeli 2.
176 383
Ta bela 2
Przykład Nazwa peptydu Jon masowy m/z
VII trifluorooctan kwasu N2-L-norwalilo-L-norwalilo, N2-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego (Nva-Nva-EADP) 415
VIII trifluorooctan kwasu N2-L-glutamylo-L-norwalilo, N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego (Glu-Nva-EADP) 445
IX trifluorooctan kwasu N2-L-metionylo-L-norwalilo, N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego (Met-Nva-EADP) 447
Przykład X.
a) 1,04 g (3 mM) kwasu N2-tert-butoksykarbonylo, N?-D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego i 0,35 g (3 mM) N-hydroksysukcynoimidu rozpuszcza się w 20 ml octanu etylu, chłodzi do 0°C i dodaje 0,68 g (3,3 mM) dicykloheksylokarbodiimidu w 10 ml octanu etylu. Reakcję prowadzi się przez 1 godzinę w 0°C, a następnie przez 24 godziny w temperaturze pokojowej. Po tym czasie odsącza się dicykloheksylomocznik, filtrat odparowuje się do sucha pod zmniejszonym ciśnieniem, pozostałość krystalizuje z mieszaniny eter etylowy - heksan. Otrzymuje się 1,22 g estru N-hydroksysukcynoimidowego kwasu N2-tert-butoksykarbonylo, N-D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego o t.t. 120-122°C i [α]578 = -70,2° (c = 1, MeOH). Wydajność procesu wynosi 92%.
b) Do schłodzonego roztworu 0,23 g (2 mM) L-norwaliny i 0,17 g (2 mM) kwaśnego węglanu sodu w 10 ml wody i 10 ml metanolu dodaje się przy silnym mieszaniu 0,89 g (2 mM) estru aktywnego rozpuszczonego w 5 ml metanolu i pozostawia na 12 godzin. Następnie odparowuje się rozpuszczalnik, pozostałość rozpuszcza w 10 ml wody i zakwasza 10%o roztworem kwaśnego siarczanu potasu do pH = 2, a produkt reakcji ekstrahuje octanem etylu. Warstwę organiczną przemywa się wodą, suszy nad bezwodnym MgSO4 i odparowuje. Otrzymuje się 1,46 g bezpostaciowego osadu, [α]578 = -25,4° (c = 1, MeOH). Wydajność procesu wynosi 71%.
c) 0,48 g (1 mM) N2-tert-butoksykarbonylo, N3-D-trans-4-etoksy-L-2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanoilo-L-norwaliny rozpuszcza się w 15 ml zimnego, 29% wodnego roztworu amoniaku i pozostawia na 3 godziny. Amoniak odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem w temperaturze pokojowej. Pozostałość rozpuszcza się w 5 ml wody i nanosi na kolumnę wypełnioną jonitem Amberlit CG 50 H+. Kolumnę płucze się wodą, wyciek zatęża do sucha i suszy nad KOH w eksykatorze próżniowym, zalewa zimnym kwasem trifluorooctowym (10 ml) i pozostawia na 3 godziny. Kwas odparowuje się pod zmniejszonym ciśnieniem, pozostałość zalewa suchym eterem. Osad suszy się nad KOH w eksykatorze próżniowym. Otrzymuje się 0,3 g bezpostaciowego osadu trifluorooctanu N3-D-trans2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanoilo-L-norwaiiny (EADP-Nva) [a]57g = -1,2° (c = 1, MeOH). Wydajność procesu wynosi 70%.
Przykłady XI-XII. Analogicznie jak w przykładzie XI otrzymuje się następujące peptydy kwasu N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego przedstawione w tabeli 3.
Tabela 3
Przykład Nazwa peptydu Jon masowy m/z
XI trifluorooctan N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanoiloL-metioniny (EADP-Met) 348
XII trifluorooctan kwasu N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanoilo-L-2-aminobutanowego (EADP-Abu) 302
176 383
Minimalne stężenia hamujące MIC (w mg/ml) dla wybranych peptydów przedstawia tabela 4.
Tabela 4
Szczep Nva-EADP Lys-Nva-EADP EADP-Nva
Candida albicans ATTC 26278 0,15 0,20 0,40
Candida albicans 2043 0,10 0,25 0,50
Candida crusei 0,35 0,75 0,80
Candida glabrata 0,50 0,50 1,00
Candida famata 1940 0,35 0,50 0,50
Oznaczenia zostały wykonane w podłożu płynnym Yeast Nitrogen Base (Difco) zawierającym 200 ug/ml glutaminianu sodu, przy czasie odczytu 24 godziny, temperaturze 30°C, zawartości 10^ komórek/ml metodą rozcieńczeń seryjnych.
COOH ł
RrNH-CH l
ch2-nh-co-
WZÓR 1 co-r2
NHo-CH
I ch2-nh-co-
WZÓR 2
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 70 egz.
Cena 2,00 zł.

Claims (14)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o wzorze ogólnym 1, w którym R1 oznacza resztę aminokwasu, znamienne tym, ze resztą aminokwasu jest reszta waliny, norwaliny, metioniny, leucyny, izoleucyny, norleucyny, kwasu 2-aminobutanowego, kwasu asparaginowego lub kwasu glutaminowego.
  2. 2. Nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o wzorze ogólnym 1, znamienne tym, że R1 oznacza resztę dipeptydu.
  3. 3. Nowe pochodne według zastrz. 2, znamienne tym, że resztą dipeptydu jest reszta norwalilo-norwaliny, lizylo-norwaliny, metionylo-norwaliny, glutamylo-norwaliny, norleucylo-norwaliny, walilo-norwaliny, glutamylo-leucyny, asparaginylo-norwaliny, metionylometioniny lub leucylo-leucyny.
  4. 4. Nowe pochodne kwasu D-trans^J-epoksybursztynamoilo-L^J-diaminopropanowego o wzorze ogólnym 2, znamienne tym, że R2 oznacza resztę aminokwasu.
  5. 5. Nowe pochodne według zastrz. 4, znamienne tym, że resztą aminokwasu jest reszta waliny, norwaliny, leucyny, norleucyny, izoleucyny, metioniny lub kwasu 2-aminobutanowego.
  6. 6. Sposób otrzymywania nowych pochodnych kwasu N^-D-trans^J-epoksybursztynamoilo-L-^^-diaminopropanowego o wzorze ogólnym 1, w którym Ri oznacza resztę aminokwasu, znamienny tym, że monoester etylowy kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynowego aktywuje się i poddaje się reakcji z solą kwasu N^tert-butoksykarbonylo-L^J-diaminopropanowego w środowisku polarnego rozpuszczalnika organicznego lub jego mieszaniny z wodą, a następnie z powstałego kwasu N-tert-butoksykarbonylo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego usuwa się ochronę grupy aminowej i acyluje się estrem aktywnym N-chronionego aminokwasu takiego jak walina, norwalina, metionina, leucyna, izoleucyna, norleucyna, kwas 2-aminobutanowy, kwas asparaginowy lub kwas glutaminowy, zaś po upływie 4-10 godzin uzyskany N-chroniony dipeptyd wydziela się z mieszaniny poreakcyjnej, przeprowadza się amonolizę estru i usuwa ochronę grupy aminowej, zaś produkt końcowy w postaci soli z kwasem trifluorooctowym izoluje się poprzez krystalizację, po czym N-chroniony dipeptyd zawierający resztę norwaliny, po usunięciu ochrony grupy aminowej, poddaje się reakcji z estrem aktywnym N-chronionego aminokwasu takiego jak norwalina, metionina, lizyna lub kwas glutaminowy a z otrzymanego tripeptydu po amonolizie estru usuwa się osłonę grupy aminowej i produkt końcowy w postaci soli izoluje się przez krystalizację.
  7. 7. Sposób według zastrz. 6, znamienny tym, że jako czynnik, który aktywuje monoester etylowy kwasu D-trans^J-epoksybursztynowego, kwas N3-D-trans-4-etoksy-2,3epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowy i N-chroniony aminokwas stosuje się N-hydroksysukcynoimid.
  8. 8. Sposób według zastrz. 6 albo 7, znamienny tym, że jako polarny rozpuszczalnik organiczny stosuje się tetrahydrofuran, octan etylu lub mieszaninę alifatycznego alkoholu takiego jak metanol lub etanol z wodą.
  9. 9. Sposób otrzymywania nowych pochodnych kwasu N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o wzorze ogólnym 1, w którym R1 oznacza resztę dipeptydu, znamienny tym, że monoester etylowy kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynowego aktywuje się i poddaje się reakcji z kwasem N2-tert-butoksykarbonylo-L-2,3-diaminopropanowym w środowisku polarnego rozpuszczalnika organicznego lub jego mieszaniny z wodą, a następnie z otrzymanego kwasu N2-tert-butoksykarbonylo, N3-D-trans-4-etoksy2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowego usuwa się ochronę grupy aminowej i acyluje się estrem aktywnym N-chronionej norwaliny, zaś po upływie 4-8 godzin
    176 383
    N-chroniony dipeptyd wydziela się z mieszaniny poreakcyjnej, usuwa osłonę grupy aminowej, poddaje się reakcji z estrem aktywnym N-chronionego aminokwasu takiego jak norwalina, metionina, lizyna lub kwas glutaminowy a z otrzymanego tripeptydu po amonolizie estru usuwa się osłonę grupy aminowej, zaś uzyskany produkt końcowy w postaci soli z kwasem trifluorooctowym izoluje się poprzez krystalizację.
  10. 10. Sposób według zastrz. 9, znamienny tym, że jako odczynnik, który aktywuje monoester etylowy kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynowego, kwas N2-tert-butoksykarbonylo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowy i N-chroniony aminokwas stosuje się N-hydroksysukcynoimid.
  11. 11. Sposób według zastrz. 9 albo 10, znamienny tym, że jako polarny rozpuszczalnik organiczny stosuje się tetrahydrofuran, octan etylu lub mieszaninę alkoholu alifatycznego takiego jak metanol lub etanol z wodą.
  12. 12. Sposób otrzymywania nowych pochodnych kwasu N3-D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o wzorze ogólnym 2, w którym R2 oznacza resztę aminokwasu, znamienny tym, że monoester etylowy kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynowego aktywuje się i poddaje reakcji z kwasem N2-tert-butoksykarbonylo-L-2,3-diaminopropanowym w środowisku polarnego rozpuszczalnika organicznego lub jego mieszaniny z wodą, a otrzymany kwas N-tert-butoksykarbonylo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynoilo-L2,3-diaminopropanowy przeprowadza się w ester aktywny, którym acyluje się aminokwas taki jak norwalina, metionina, leucyna, norleucyna lub kwas 2-aminobutanowy, zaś po upływie 4-8 godzin N-chroniony dipeptyd wydziela się z mieszaniny poreakcyjnej, poddaje się reakcji amonolizy i usunięcia osłony grupy aminowej, przy czym uzyskany produkt końcowy w postaci soli z kwasem trifluorooctowym izoluje się poprzez krystalizację.
  13. 13. Sposób według zastrz. 12, znamienny tym, że jako odczynnik, który aktywuje monoester etylowy kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynowego, kwas N2-tert-butoksykarbonylo, N3-D-trans-4-etoksy-2,3-epoksybursztynoilo-L-2,3-diaminopropanowy i N-chroniony aminokwas stosuje się N-hydroksysukcynoimid.
  14. 14. Sposób według zastrz. 12 albo 13, znamienny tym, że jako polarny rozpuszczalnik organiczny stosuje się tetrahydrofuran, octan etylu lub mieszaninę alkoholu alifatycznego takiego jak metanol lub etanol z wodą.
PL93300659A 1993-10-07 1993-10-07 Nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o strukturze peptydów i sposób ich otrzymywania PL176383B1 (pl)

Priority Applications (10)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL93300659A PL176383B1 (pl) 1993-10-07 1993-10-07 Nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o strukturze peptydów i sposób ich otrzymywania
CA002173502A CA2173502A1 (en) 1993-10-07 1994-10-05 Antifungal compositions
JP7510693A JPH09503223A (ja) 1993-10-07 1994-10-05 抗真菌性組成物
GB9420129A GB2282602B (en) 1993-10-07 1994-10-05 N3-D-trans-2,3-Epoxysuccinamoyl-L-2,3-diaminopropanoic acid compositions
EP94928464A EP0722456A1 (en) 1993-10-07 1994-10-05 Antifungal compositions
AU77886/94A AU7788694A (en) 1993-10-07 1994-10-05 Antifungal compositions
US08/624,559 US5863937A (en) 1993-10-07 1994-10-05 Pharmaceutical compositions
PCT/GB1994/002162 WO1995009867A1 (en) 1993-10-07 1994-10-05 Antifungal compositions
SG1996005849A SG47980A1 (en) 1993-10-07 1994-10-05 Pharmaceutical compositions
ZA947878A ZA947878B (en) 1993-10-07 1994-10-07 Pharmaceutical compositions

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL93300659A PL176383B1 (pl) 1993-10-07 1993-10-07 Nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o strukturze peptydów i sposób ich otrzymywania

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL300659A1 PL300659A1 (en) 1995-04-18
PL176383B1 true PL176383B1 (pl) 1999-05-31

Family

ID=20060994

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL93300659A PL176383B1 (pl) 1993-10-07 1993-10-07 Nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o strukturze peptydów i sposób ich otrzymywania

Country Status (10)

Country Link
US (1) US5863937A (pl)
EP (1) EP0722456A1 (pl)
JP (1) JPH09503223A (pl)
AU (1) AU7788694A (pl)
CA (1) CA2173502A1 (pl)
GB (1) GB2282602B (pl)
PL (1) PL176383B1 (pl)
SG (1) SG47980A1 (pl)
WO (1) WO1995009867A1 (pl)
ZA (1) ZA947878B (pl)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN102417593B (zh) * 2011-09-26 2013-03-06 河南清水源科技股份有限公司 一种生物可降解的水处理剂天冬酰胺基聚环氧琥珀酸及其制备方法

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
PL144744B1 (en) * 1984-10-16 1988-06-30 Politechnika Gdanska Method of obtaining novel derivatives of l-2,3-diaminopropanic acid exhibiting dipeptide structure
ZA914464B (en) * 1990-06-13 1992-03-25 Schering Corp Method and compositions for treating hiv-type 1 infection
AU3240493A (en) * 1991-12-12 1993-07-19 Schering Corporation Compounds and compositions for treating HIV infections

Also Published As

Publication number Publication date
SG47980A1 (en) 1998-04-17
PL300659A1 (en) 1995-04-18
JPH09503223A (ja) 1997-03-31
EP0722456A1 (en) 1996-07-24
GB2282602B (en) 1998-03-25
GB2282602A (en) 1995-04-12
AU7788694A (en) 1995-05-01
US5863937A (en) 1999-01-26
WO1995009867A1 (en) 1995-04-13
CA2173502A1 (en) 1995-04-13
ZA947878B (en) 1996-04-09
GB9420129D0 (en) 1994-11-16

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Moree et al. Synthesis of peptidosulfinamides and peptidosulfonamides: Peptidomimetics containing the sulfinamide or sulfonamide transition-state isostere
Matsunaga et al. Bioactive marine metabolites, IV. Isolation and the amino acid composition of discodermin A, an antimicrobial peptide, from the marine sponge Discodermia kiiensis
Dolence et al. Synthesis and siderophore activity of albomycin-like peptides derived from N5-acetyl-N5-hydroxy-L-ornithine
HU203221B (en) Process for selective amidation of diamines
Ozinskas et al. Synthesis of L-canaline and. gamma.-functional 2-aminobutyric acid derivatives
GB1585061A (en) Synthesis of peptides
NO177677B (no) Analogifremgangsmåte for fremstilling av terapeutisk aktive forbindelser
EP0973518A1 (en) Semi-synthetic studies toward didemnin analogues
Momose et al. Tyropeptins A and B, new proteasome inhibitors produced by Kitasatospora sp. MK993-dF2 II. Structure determination and synthesis
PL176383B1 (pl) Nowe pochodne kwasu D-trans-2,3-epoksybursztynamoilo-L-2,3-diaminopropanowego o strukturze peptydów i sposób ich otrzymywania
EP3625243B1 (en) Tailored cyclodepsipeptides as potent non-covalent serine protease inhibitors
CA2226303A1 (en) Peptide derivatives and angiotensin iv receptor agonist
Esumi et al. Propeptin, a new inhibitor of prolyl endopeptidase produced by microbispora II. Determination of chemical structure
US20030224475A1 (en) Lipodepsipeptide antibiotics and methods of preparation
Van Nispen et al. INVESTIGATION OF THE ROLE OF TRYPTOPHAN IN α‐MSH*: Replacement by L‐Pentamethylphenylalanine and L‐Phenylalanine
Blackburn et al. Aqueous solutions containing amino acids and peptides. Part 22-free energetic and enthalpic virial coefficients at 25° C for some interactions of isofunctional amides
Andruszkiewicz et al. Synthesis and anticandidal activities of optimized analogs of antibiotic Sch 37137
Salam et al. α-Chymotrypsin-catalyzed peptide synthesis in frozen aqueous solution using N-protected amino acid carbamoylmethyl esters as acyl donors
PL158132B1 (pl) peptydów, zawierajacych kwas N3 -bromo lub N3 -jodoacetylo-L-2,3-diaminopropanowy PL
PT2004670E (pt) Processo para a preparação de derivados de lisobactina
CA1247084A (en) Peptide process for preparation thereof and use thereof
Seguer et al. Physicochemical and antimicrobial properties of N ″-acyI-L-arginine dipeptides from
Stanchev et al. Synthesis and antibacterial activity of some new non-proteinogenic amino acids containing thiazole residues
US3948971A (en) N-protected-α-amino acid compounds
US4923965A (en) Tripeptides of N3 -4-methoxyfumaryl-L-2,3-diaminopropanoic acid