PL162961B1 - Sposób wytwarzania koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi - Google Patents

Sposób wytwarzania koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi

Info

Publication number
PL162961B1
PL162961B1 PL28316690A PL28316690A PL162961B1 PL 162961 B1 PL162961 B1 PL 162961B1 PL 28316690 A PL28316690 A PL 28316690A PL 28316690 A PL28316690 A PL 28316690A PL 162961 B1 PL162961 B1 PL 162961B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
factor
concentrate
mol
solution
amount
Prior art date
Application number
PL28316690A
Other languages
English (en)
Other versions
PL283166A1 (en
Inventor
Jerzy Witwicki
Zofia Lis
Elzbieta Teisseyre
Halina Goch
Malgorzata Hay
Witold Kocinski
Jolanta Tyll
Original Assignee
Ts Lab Surowic I Szczepionek
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ts Lab Surowic I Szczepionek filed Critical Ts Lab Surowic I Szczepionek
Priority to PL28316690A priority Critical patent/PL162961B1/pl
Publication of PL283166A1 publication Critical patent/PL283166A1/xx
Publication of PL162961B1 publication Critical patent/PL162961B1/pl

Links

Landscapes

  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

Sposób wytwarzania koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi, polegający na wyodrębnieniu go z osocza i dodaniu do roztworu koncentratu IX czynnika chlorku sodowego w ilości nie wyższej niż 30 mmoli/lOOcm3, cytrynianu sodowego w ilości nie wyższej niż 3 mmole/100cm3 oraz heparyny w ilości nie wyższej niż 500j. m./100cm3, a następnie poddaniu roztworu procesowi liofilizacji, znamienny tym, ze do roztworu koncentratu IX czynnika przed liofilizacją dodaje się sacharozę w ilości od 2 g do 4 g na 100 cm3 i przeprowadza się liofilizację oraz ogrzewanie preparatu w temperaturze nie niższej niz 80°C przez czas nie krótszy niż 72 h.

Description

Przedmiotem wynalazku jest sposób przygotowania koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi do stosowania w lecznictwie. Sposób ten umożliwia ogrzewanie liofilizowanego preparatu w temperaturze od 80°C do 95°C celem termicznej inaktywacji wirusów, przy jednoczesnym zachowaniu biologicznej aktywności czynnika IX.
Preparat jest stosowany leczniczo i profilaktycznie w przypadkach wrodzonego lub nabytego niedoboru czynnika IX (hemofilia B). Osobom chorym na hemofilię B preparaty koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi muszą być podawane przez całe życie, zarówno profilaktycznie jak i leczniczo.
Terapia preparatami krwiopochodnymi związana jest z ryzykiem zachorowania na choroby wirusowe (np. wirusowe zapalenie wątroby typu B, wirusowe zapalenie wątroby nie-A, nie-B, AIDS-zespół nabytego niedoboru immunologicznego). Obecnie ocenia się, że na początku lat osiemdziesiątych zachorowalność na AIDS u chorych na hemofilię, leczonych preparatami czynników krzepnięcia krwi, wynosiło około 80% (Haimburger N., Virus safety of pasteurized factor VIII and factor IX concentrates: Study in virgin patients, Develop. biol. Standard., 1987, 67, 303).
Niebezpieczeństwo występowania infekcji wirusowych (szczególnie zapalenia wątroby typu B, zapalenia wątroby nie-A nie-B oraz AIDS) po podaniu preparatów czynnika IX krzepnięcia krwi jest poważnym problemem związanym z produkcją tego preparatu. W literaturze istnieje szereg doniesień, w których opisano sposoby inaktywacji wirusów w otrzymanych z osocza preparatach do stosowania terapeutycznego i profilaktycznego (International Forum, Ways to reduce the risk of transmission of viral infections by plasma products. Vox Song., 1988, 54, 228). Dane te dotyczą zarówno preparatów produkowanych w postaci roztworów, jak i w postaci liofilizowanej.
Z obserwacji klinicznych wynika, że tylko dwa sposoby inaktywacji wirusów pozwalają na otrzymanie bezpiecznych preparatów tj. takich, których podanie nie wiąze się z ryzykiem wywołania u pacjentów chorób wirusowych. Są to:
1) inkubacja roztworu koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi z detergentem (Tween 80) i fosforanem trójbutylu (Michalski C. i in., Large-scale production and properties of a solventdetergent-treated factor IX concentrate from human plasma. Vox Sang., 1988, 55, 202).
2) ogrzewanie liofilizowanego preparatu w temperaturze 80°C przez okres nie krótszy niż 72 godziny (Horowitz B., Ways to reduce the risk of transmission of viral infections by plasma and plasma products. Vox Sang., 1988, 54, 235).
Zastosowanie pierwszej z wymienionych metod jest kosztowne i pracochłonne, gdyż wymaga wprowadzenia do procesu produkcyjnego dodatkowego etapu usuwania z roztworu Tweenu 80 i fosforanu trójbutylu przy użyciu metod chromatograficznych. Wiąże się to także z obniżeniem wydajności otrzymywania preparatu.
Di uga z wymienionych metod, polegająca na termicznej inaktywacji wirusów w temperaturze
80°C, nie wymaga stosowania toksycznych substancji i jest korzystna z ekonomicznego punktu widzenia. Do jej przeprowadzenia potrzebna jest aparatura prosta w obsłudze i mniej kosztowna
162 961 (suszarka z wymuszonym obiegiem powietrza). Jednakże zastosowanie tej prostej metody inaktywacji wirusów wiąże się z dużymi trudnościami, gdyż czynniki krzepnięcia są białkami termolabilnymi. Liofilizacja roztworu czynnika IX w pewnym tylko stopniu zwiększa jego termostabilność. W połowie lat 80 stwierdzono, że aktywność liofilizowanego czynnika IX spada o 50% juz po 5 dniach przechowywania w temperaturze 56°C (Hoffman S., Bykowska K., Łukasiak S., Łopaciuk S., „Ocena trwałości liofilizowanego koncentratu czynnika IX“, Acta Haemat. Pol., 1985, 16, 135-138), przy czym w temperaturze tej nie następuje jeszcze inaktywacja wirusów.
W badaniach własnych stwierdzono, że ogrzewanie liofilizowanego preparatu w temperaturze 68°C przez 72 h (sposób inaktywacji wirusów stosowany przez niektórych producentów) prowadzi do znacznego spadku aktywności czynnika IX (Tab. 1, ροζ. 1 i 2). Podobne obniżenie aktywności obserwuje się po ogrzewaniu preparatu w temperaturze 80°C (Tab. 1, poz. 8 i 9).
Dodanie do roztworu preparatu przed liofilizacją znanych stabilizatorów białek, takich jak glicyna lub kaprylan sodowy nie dało zadawalających rezultatów. Zaobserwowano nawet całkowity spadek aktywności biologicznej czynnika IX liofilizowanego w obecności kaprylanu i ogrzewanego w temperaturze 68°C(Tab. Ι,ροζ. 4). Dodanie sacharozy do preparatu w ilości 1 g/100cm3 roztworu zmniejszało jedynie w niewielkim stopniu spadek aktywności biologicznej czynnika IX.
Analiza danych zawartych w tabeli 1 wykazuje, że pełne zachowanie aktywności czynnika IX po ogrzaniu w temperaturze 68°C, 80°C i 95°C obserwuje się jedynie w tych preparatach, które zawierają sacharozę dodaną do roztworu koncentratu czynnika IX przed liofilizacją w ilości nie mniejszej niż 2g/100cm3. Inne zastosowane substancje drobnocząsteczkowe nie zapobiegają termicznej denaturacji czynnika IX.
Sposób według wynalazku polega na dodaniu sacharozy w ilości od 2 g do 49 g na 100 cm3 do roztworu koncentratu czynnika IX otrzymanego w znany sposób. Następnie przeprowadza się liofilizację i ogrzewanie preparatu w temperaturze od 80°C do 95°C celem termicznej inaktywacji wirusów przez czas nie krótszy niż 72 godziny.
Przykład I. Koncentrat IX czynnika krzepnięcia krwi otrzymano z mrożonego osocza ludzkiego. Po rozmrożeniu osocza usunięto krioprecypitat przez wirowanie i następnie uzyskano koncentrat IX czynnika przy użyciu DEAE Sefadeksu A 50 według metody Haysteka i współpracowników (Haystek J. i in., Contributione to the optimal use of human blood. II. The large-scale preparation of prothrombin complex. A companson between two methods using the anion exchangers DEAE-cellulose DE-62and DEAE-Sephadex A-50, VoxSang., 1973, 25,113). 7,4 dm3 eluatu z DEAE Sefadeksu poddano ultrafiltracji i diafiltracji posługując się aparatem do diafiltracji firmy Millipore wyposażonym w 3 kasety o sumarycznej powierzchni membrany 1,84 m2. Uzyskano 2,ldm3 roztworu o aktywności 30,7j czynnika IX w 1cm3 oraz stężeniu białka 2,34%, chlorku sodowego 0,08 mola/dm3, cytrynianu sodowego 18 mmola/dm3 i pH 6,9. Do uzyskanego roztworu dodano 42 g sacharozy oraz 3,7 g chlorku sodowego i 4820j. m. heparyny. Roztwór poddano filtracji jałowiącej przy użyciu filtrów membranowych o gęstości 0,22/ym firmy Millipore i rozporcjowano po 20 cm3 do wyjałowionych butelek o pojemności 100 m3. Następnie preparat liofilizowano w produkcyjnym aparacie TG-50 firmy Hochvakuum. Po zakończeniu liofilizacji butelki zamykano w atmosferze azotu korkami gumowymi i kapslami. Otrzymany preparat ogrzewano przez 72 godziny w temperaturze 80°C w termostacie z wymuszonym obiegiem powietrza. Zawartość butelki z preparatem rozpuszczono w 20 cm3 wody do wstrzykiwań i oznaczono aktywność IX czynnika, która wynosiła 30,6j/cm3.
Przykład II. Roztwór koncentratu czynnika IX przygotowano w sposób opisany w przykładzie I Aktywność czynnika IX w uzyskanym roztworze wynosiła 25 j/cm3. Do 50 cm3 roztworu o stężeniu chlorku sodowego 0,11 mola/dm3 i stężeniu cytrynianu 0,018 mola/dm3 dodano 50j. m. heparyny i 1 g sacharozy. Po filtracji wyjaławiającej roztwór rozporcjowano po 2 cm3 do buteleczek o pojemności 10 cm3 i zliofilizowano. Otrzymany preparat ogrzewano 6 godzin w temperaturze 95°C. Następnie zawartość buteleczki rozpuszczono w 2 cm3 wody do wstrzykiwań i oznaczono aktywność czynnika IX, która wynosiła 24,5j/cm3.
162 961
Tabela
Wpływ składu preparatu na aktywność biologiczną liofilizowanego koncentratu czynnika IX, ogrzewanego w temperaturze 68°C, 80CC lub 95°C przez 72 godziny
Nr próby Skład roztworu przed liofilizacją Temperatura ogrzewania liofilizowanego preparatu °C Aktywność czynnika IX w rozpuszczonym preparacie j/cm3 Spadek aktywności po ogrzewaniu _ %
przed ogrzewaniem po ogrzewaniu
1 0,01 mol cytrynian Na 0,15 mol NaCl 68 23 11 52
2 0,015 mol cytrynian Na 0,15 mol NaCl 68 14,2 6,4 55
3. 0,015 mol cytrynian Na 2% glicyna 68 II 4,6 58
4 0,015 mol cytrynian Na 0,015 mol kaprylan Na 68 11 0 100
5 0,02 mol cytryn Na 0,02 mol glicyna 0,06 mol NaCl 1% sacharoza 68 11 7,6 31
6 0,015 mol cytrynian Na 2% mannitol 68 14,2 13,0 8
7 0,015 mol cytrynian Na 2% sacharoza 68 14,2 3,7 4
8 0,010 mol cytrynian Na 0,15 mol NaCl 80 5,2 2,7 49
9 0,010 mol cytrynian Na 0,15 mol NaCl 80 6,7 3,6 46
10 0,01 mol cytrynian Na 0,15 mol NaCl 2% sacharoza 80 5,1 5,1 0
11 0,01 mol cytrynian Na 0,15 mol NaCl 2% sacharoza 80 8,4 8,3 1
12 0,01 mol cytryn Na 0,15 mol NaCl 2% sacharoza 80 17,2 17,2 0
13 0,01 mol cytryn Na 0,15 mol NaCl 2% sacharoza 80 11,6 11,8 0
14’ 0,018 mol cytryn Na 0,11 mol NaCl 2% sacharoza 95 25,0 24,5 2
' - preparat ogrzewano przez 6 godzin
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 90 egz.
Cena 10 000 zł

Claims (1)

  1. Zastrzeżenie patentowe
    Sposób wytwarzania koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi, polegający na wyodrębnieniu go z osocza i dodaniu do roztworu koncentratu IX czynnika chlorku sodowego w ilości nie wyższej niż 30mmoli/100cm3, cytrynianu sodowego w ilości nie wyższej niż 3 mmole/lOOcm3 oraz heparyny w ilości nie wyższej niż 500j. m./100cm3, a następnie poddaniu roztworu procesowi liofilizacji, znamienny tym, że do roztworu koncentratu IX czynnika przed liofilizacją dodaje się sacharozę w ilości od 2 g do 4 g na 100 cm3 i przeprowadza się liofilizację oraz ogrzewanie preparatu w temperaturze nie niższej niż 80°C przez czas nie krótszy niż 72 h.
PL28316690A 1990-01-03 1990-01-03 Sposób wytwarzania koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi PL162961B1 (pl)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL28316690A PL162961B1 (pl) 1990-01-03 1990-01-03 Sposób wytwarzania koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
PL28316690A PL162961B1 (pl) 1990-01-03 1990-01-03 Sposób wytwarzania koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL283166A1 PL283166A1 (en) 1991-07-15
PL162961B1 true PL162961B1 (pl) 1994-01-31

Family

ID=20049798

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL28316690A PL162961B1 (pl) 1990-01-03 1990-01-03 Sposób wytwarzania koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi

Country Status (1)

Country Link
PL (1) PL162961B1 (pl)

Also Published As

Publication number Publication date
PL283166A1 (en) 1991-07-15

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4876241A (en) Stabilization of biological and pharmaceutical products during thermal inactivation of viral and bacterial contaminants
EP0094611B1 (en) A method for the heat treatment of plasma of plasma fractions and compositions obtained thereby
JP3133338B2 (ja) ウイルス的に安全な生物学的組成物の調製方法
JPH0611702B2 (ja) 治療上活性な蛋白質組成物の熱処理方法
JPH06102627B2 (ja) 脂質含有ウイルスを含まない蛋白質含有組成物及びその製造方法
US4490361A (en) Virus inactivating heat treatment of plasma fractions
JP2001521941A (ja) ウイルス汚染に対する安全性の高いフィブリンのり形成用成分をヒト血漿プールから製造する方法
AU549584B2 (en) Heat stabilization of plasma proteins
CA2285935C (en) An immunotolerant prothrombin complex preparation
EP0252392B1 (en) Viral inactivation and purification of active proteins
JP4472672B2 (ja) 血漿の低温殺菌方法
EP0011739B1 (en) Process for obtaining blood coagulation factor xiii derived from human placenta
EP0292003B1 (en) Stabilzation of biological and pharmaceutical products during inactivation of viral and bacterial contaminants
WO1998030230A1 (en) Protein-containing compositions and process for producing the same
JPS61189228A (ja) 血液凝固第8因子製剤の製法
PL162961B1 (pl) Sposób wytwarzania koncentratu IX czynnika krzepnięcia krwi
CN102416171B (zh) 高纯度凝血酶原复合物制品干热病毒灭活过程中的保护剂
US4994438A (en) Heat treatment of lyophilized plasma fractions
US4845074A (en) Heat treatment of Factor VIII
PT98190B (pt) Processo para a preparacao de composicoes farmaceuticas para estabilizar o plasma sanguineo durante a pasteurizacao
DK175644B1 (da) Fremgangsmåde til stabilisering af biologiske og farmaceutiske midler under inaktivering af virale og bakterielle kontaminanter
JPS62195331A (ja) 血液凝固第8因子製剤の製法