NO864113L - Fremgangsmaate for immunoassay, samt analysesett for dens utfoerelse. - Google Patents

Fremgangsmaate for immunoassay, samt analysesett for dens utfoerelse.

Info

Publication number
NO864113L
NO864113L NO864113A NO864113A NO864113L NO 864113 L NO864113 L NO 864113L NO 864113 A NO864113 A NO 864113A NO 864113 A NO864113 A NO 864113A NO 864113 L NO864113 L NO 864113L
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
analyte
specific
affinity
solid phase
bound
Prior art date
Application number
NO864113A
Other languages
English (en)
Other versions
NO864113D0 (no
Inventor
Geoffrey Lewis Hammond
Original Assignee
Farmos Oy
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Farmos Oy filed Critical Farmos Oy
Publication of NO864113D0 publication Critical patent/NO864113D0/no
Publication of NO864113L publication Critical patent/NO864113L/no

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G01N33/6893Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids related to diseases not provided for elsewhere
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Steroid Compounds (AREA)

Description

Denne oppfinnelse vedrører affinitets-immunometriske assay-metoder for identifisering og/eller kvantifisering av makromolekylære analytter, inkludert de som er til stede i eukaryotiske celler eller mikroorganismer til stede i biologiske prøver.
Fremgangsmåten av den foreliggende oppfinnelse for immunoassay av en makromolekylær analytt omfatter at man bringer en prøve som inneholder nevnte analytt i kontakt med en gruppe-spesifikk/affinitets-adsorbent bundet til en fast fase, idet man bringe nevnte faste fase i kontakt med et merket antistoff mot nevnte analytt, idet man separerer den faste fase med mar-kør bundet til seg og så måler den bundete eller ubundete mar-kør .
Gruppe-spesifikke/affinitets-adsorbenter er stoffer som har høy-affinitet for spesifikke strukturelle deler til stede i et vidt område av forbindelser av biologisk opprinnelse, inkludert noen forbindelser til stede i celler. Slike adsorbenter inkluderer ikke immunoglobuliner (antistoffer) hvor affini-teten bare er for den spesifikke type av protein som fremkalte dannelsen av immunoglobulinet. Den nye fremgangsmåte kan brukes til å bestemme plasmakonsentrasjonen av fysiologisk viktige glykoproteiner, slik som kjønnshormon-bindende globulin så vel som relative mengder av proteiner som for eksempel hemoglobin og albumin, som er til stede i blodprøver i en ikke-enzymatisk glykosylert (neg) form (en parameter som er blitt forfektet som en egnet indikator for diagnostikk og håndtering av diabetes mellitus. Se I. Peacock, Journal of Clinical Pathology, 3 7;
841 (1984) og K. Miedema og T. Casparie, Annals of Clinical Biochemistry, 21; 2 (1984).
Flere fremgangsmåter er tilgjengelige for den kliniske håndtering av diabetiske pasienter, men målinger av blodnivåene av neg-proteiner er blitt vist å samsvare godt med legers vur-deringer av diabetisk kontroll, fastende blodglukosekonsentrasjoner, middels og topp-blodglukose-konsentrasjoner, hjemme-urintestresultater, 24 timers glykosuri og hjemme-måling av blodglukosekonsentrasjoner. I denne henseende er måling av glykosylert hemoglobin A, spesielt anvendbar, fordi den er mer rikelig enn de andre lett separerbare glykosylerte hemoglobiner og dens konsentrasjon varierer sterkt i relasjon til diabetisk kontroll. Glykosylert hemoglobin A^cer den mest rike-lige av en gruppe av fire glykosylerte derivater av hemoglobin A (HbA), betegnet kollektivt som HbA^ , som står for ca. 6-9 %
av de totale konsentrasjoner av hemoglobin i normale personer, og så mye som 20 % i dårlig kontrollerte diabetikere.
Den ikke-enzymatiske glykosylering av HbA forekommer grad-vis i løpet av den 120-dagers levetid for erytrocytter. Målinger av neg-Hb gjenspeiler derfor gjennomsnitts-blodglukose-verdier av de foregående uker, og forbedringer i kontrollen av diabetiske pasienter resulterer i en reduksjon i neg-Hb-nivåer bare etter en 3-4 ukers periode. Livstiden for plasma-albumin er betraktelig kortere (20-30 dager) enn den til neg-Hb. Målinger av plasma neg-albumin-nivåer kan følgelig gjenspeile forbedringer i diabetisk kontroll innen en 1-ukes periode og derved gi en mer hurtig vurdering av overensstemmelse med pasien-ten. I kontrast til intervallet mellom forbedringer i diabetisk kontroll og forandringer i neg-protein-nivåer, kan relativt kor-te perioder med dårlig kontroll hurtig og irreversibelt øke neg-Hb og neg-albumin-nivåer i blodet. Av denne grunn er målinger av disse parametere klinisk verdifulle i tillegg til urin- og blodglukose-bestemmelser, spesielt når pasient-samsvar er dårlig, for eksempel i små barn, eller når streng diabetisk kontroll er nødven-dig, som den er for eksempel under graviditet.
Flere metoder er i utbredt klinisk anvendelse for påvis-ningen av neg-protein-nivåer i blodprøver, inkludert isoelekt-risk fokusering, elektroforese/elektroendosmose, kationutveks-lings-kromatografi, affinitetskromatografi, spektrometri og koiorimetri. Mange av disse metoder er spesifikt utformet for analyse av HbA, , hvorav ca. 75 % er glykosylert, og kan ikke lett modifiseres for analyse av andre enn neg-proteiner, slik som neg-albumin. I tillegg er de generelt arbeidskrevende, følsomme for små variasjoner i temperatur, pH eller ionestyrke og i noen tilfeller krever de høy anvendelse av høyt spesialiser-te instrumenter, slik som et scanderings-densitometer som må innstilles nøye for å sikre god mellom-porsjon-assaypresisjon. Det er derfor et behov for en enkelt, nøyaktig og presis rutine-assay som er generelt anvendbar til måling av neg-former av hemoglobin og albumin eller ethvert annet klinisk viktig protein. Affinitetskromatografi basert på anvendelse av fenylboronsyre viser seg å tilfredsstille de fleste av disse kriterier, og minst to selskaper (Amicon Corporation og Pierce Chemical Company) har utviklet testsett for klinisk anvendelse, og har publisert forslag for anvendelse av immobilisert fenylboronsyre for isolering og kvantifisering av neg-proteiner (se bri-tisk patentsøknad GB 2024829 A, US-patent 4 269 605). Disse kommersielt tilgjengelige testsett er imidlertid basert på anvendelse av konvensjonelle affinitetskolonne-kromatografiske prosedyrer som krever store mengder dyre affinitetsgeler, som bare kan brukes om igjen et begrenset antall anledninger uten reduksjon i effektivitet. I sammenligning med mange andre metoder er de også arbeidsintensive, krever relativt store prøvevo-lumer og avhenger av metoder for måling av proteinkonsentrasjon-er som ikke er helt spesifikke.
Immunoassay-prosedyrer er vidt anvendt til å kvantifisere spesifikke komponentmolekyler i biologiske prøver, i spesielle blodprøver fra pasienter for prognostiske, diagnostiske eller andre kliniske formål. Forøyeblikket anvendes de mest viktige immunokjemiske analytiske metoder de såkalte markører, som er varierende stoffer som er relativt lette å måle, slik som radio-aktive isotoper, molekyler med fluorescerende eller biolumine-scerende egenskaper, eller enzymer som fremmer farveforandringer.
I konvensjonelle immunoassays kobles et rent preparat av analytt eller en analog til analytten til en passende markør av-hengig av den anvendte påvisningsmetode. For eksempel brukes i en radioimmunoassay en radioaktiv isotop som markør, som kan kvantifiseres i et væske- eller krystall-scintillasjons-spektro-meter. Denne merkete analytt eller analytt-analog inkuberes ved en fiksert konsentrasjon med en fiksert mengde antistoff som gjenkjenner den merkete analytt såvel som selve analytten. Konkurranse mellom merket og umerket analytt om det antistoff-bindende sted forekommer derfor, og mengden av merket analytt bundet av antistoffet er inverst proporsjonal med mengden av den umerkede analytt til stede. Antistoff-bundete komplekser separeres for eksempel ved immunoabsorpsjon, fysisk-kjemisk adsorpsjon eller presipitering av enten antistoff-bundete komplekser eller ubundet analytt (merket og umerket). Antistoffbundet merket analytt blir så kvantifisert, og en standardkurve konstrueres fra kjente analytt-konsentrasjoner (standarder), hvorfra ukjente konsentrasjoner av analytt kan interpoleres. Dette er illustrert i den vedlagte figur 1.
Immunometriske assays involverer på den annen side anvendelse av merkete antistoffer istedenfor merket analytt, og er spesielt anvendbare til målinger av store molekyler, for eksempel proteiner, som har to eller flere adskilte antigene steder, eller epitoper. I denne type assay, illustrert i figur 2, er et antistoff (eller flere antistoffer) anvendt som "fangende antistoff", og dette kan immobiliseres på en fast-fasebærer. Det "merkete antistoff" er et preparat av et eller flere antistoffer som fortrinnsvis gjenkjenner (en) forskjellig(e) epi-top(er) mot det "fangende antistoff", selv om dette ikke er nødvendig. Under inkubering med standardmengder av analytt, eller ukjente konsentrasjoner av analytt i biologiske prøver, dannes en "sandwich" mellom det "fangende antistoff", analytten og det "merkete antistoff". Derfor er i nærvær av overskudds-mengder av både "fangende" og "merkete" antistoffer, mengden av "merket antistoff" festet til en slik "sandwich" direkte proporsjonal med mengden av analytt til stede og gir derved grunnlag for en kvantitativ måling. Immunometriske teknikker byr på tallrike fordeler i forhold til konvensjonelle immunoassays, for eksempel fjerner de behovet for rene preparater av merket analytt, anvendelse av overskudds-reagenser reduserer også nød-vendigheten for presisjons-pipettering av reagenser, øker re-aksjonshastigheter og reduserer derved inkuberingstider.
I fremgangsmåten av den foreliggende oppfinnelse brukes merkete antistoffer mot spesifikke proteiner i en overskudds-reagens-immunometrisk assay, i konjunksjon med immobiliserte, gruppespesifikke/affinitets-adsorbenter istedenfor det konvensjonelle, immobiliserte, "fangende antistoff", for å kvantifisere konsentrasjonen av en makromolekylær analytt (for eksempel et glykoprotein) i en biologisk prøve. Fremgangsmåten er føl-som, spesifikk, nøyaktig og presis, og på grunn av dens enkel-het er den egnet til rutineanalyser av store antall prøver.
Det generelle prinsipp for fremgangsmåten, illsutrert i fig. 3, kan anvendes til påvisning og bestemmelse av en lang rekke markomolekylære analytter, inkludert selv forskjellige celletyper, som kan isoleres på grunnlag av en høyaffinitets-interaksjon med en passende immobilisert gruppe-spesifikk/affinitets-adsorbent, slik som: et spesifikt bindingsprotein, for eksempel Protein A, en farve, for eksempel Cibacron ® blå F3G-A, et oligonukleotid, en aminosyre, et steroid, biotin, heparin, gelatin, en borsyre eller en plantelecitin, for eksempel lentil-lecitin, hvetekimlecitin eller concanavalin A.
Forskjellige klasser av makromolekyler eller celletyper kan isoleres ved en affinitets-interaksjon med en egnet immobilisert gruppe-spesifikk/affinitets-adsorbent, som kan festes til en ulø-selig matrikx, slik som polyakrylamid, dekstran, agarose i kuleform, et cellulosederivat, leire (kaolin), glass, nylon, en polyester, polystyren, en polyolefin, et metalloksyd, en porøs keramisk diatoméjord, eller magnetiske partikler eller ethvert annet egnet materiale. Hovedfordelen ved å bruke en immobilisert affinitetsmatrix er at den vil binde spesifikke klasser av stoffer med relativ høy affinitet, reversibelt, og derved gjøre det mulig at forurensende stoffer blir fysisk vasket bort ved anvendelse av sentrifugering og aspirering av supernatanter eller ved filtrering. Gruppe-spesifikke/affinitets-adsorbenter kan også belegges på rør, cuvetter, magnetiske partikler eller testpinner, for å forenkle vaskingsprosessen. Det adsorberte materiale kan så fjernes fra affinitetsmatrixen, om nødvendig, ved fysisk forandring av bindingsbetingelsene (for eksempel pH), eller desorpsjon med en kompetitiv bindingsligand eller et denaturerende stoff.
Glykoproteinene er spesielt godtkarakteriserti denne henseende, og et antall gruppe-spesifikke/affinitets-adsorbenter er blitt identifisert, som kan brukes til selektivt å isolere de forskjellige klasser av glykoproteiner, og noen kan til og med skille mellom isotyper av det samme protein som bare er forskjellige i karbohydratinnhold. Det bør imidlertid nevnes at disse adsorbenter, som inkluderer plantelecitiner og bor- eller boroniske syrer, interagerer med lignende karbohydrat-komponen-ter som er til stede i et stort antall komplekse polysakkarider og glykolipider. Av denne grunn må det forstås at de gjenkjenner
en lang rekke makromolekyler med like karbohydrat-strukturer.
På tross av denne begrensning av absolutt spesifisitet som er vanlig for de fleste andre gruppe-spesifikke/affinitets-adsorbenter er bindingsreaksjonen mellom disse adsorbenter og noen typer molekylære deler analog med interaksjonen mellom et antistoff og et antigen, og er tilstrekkelig spesifikk til å danne grunnlag for en tilfredsstillende assay-metode.
Følgelig kan enhver immobiliert gruppe-spesifikk/affinitets-adsorbent substitueres for det "fangende antistoff", anvendt i konvensjonelle immunometriske assays. Fordelene som dette byr på er tallrike; for eksempel, a) fjerner det behovet for en konstant tilførsel av store mengder av spesifikke antistoffer som kreves for immobilisering, b) affinitets-interaksjonen mellom gruppe-spesifikke/affinitets-adsorbenter og makromolekylære analytter eller celler er nesten øyeblikkelig når man sammenligner med den relativt langsomme reaksjon mellom antistoff og antigen, c) gruppe-spesifikke/affinitets-adsorbenter kan skille mellom små variasjoner i et spesielt makromolekyl som ikke kan gjenkjennes immunokjemisk, eller mot hvilket det er vanskelig å produsere spesifikke antisera eller monoklonale antistoffer, og d) utvinning av det adsorberte makromolekyl ved desorpsjon utelates fordi målinger utføres in situ ved anvendelse av merkete antistoffer.
Evnen hos noen gruppe-spesifikke/affinitets-adsorbenter til å interagere med celleoverflateproteiner er også blitt undersøkt kromatografisk for affinitetsrensning av spesifikke celletyper. Prinsippet i affinitets-immunometriske assays kan derfor også anvendes til identifisering og kvantifisering av patogene mikroorganismer i biologiske prøver.
Den affinitets-immunometriske assay-metode av oppfinnelsen representerer derfor et viktig tillegg til det vanlige repertoar av klinisk kjemiske og mikrobiologiske laboratorietester. Spesielt kan affinitets-immunometriske assays brukes til å måle plasmakonsentrasjonene av glykoproteiner hvis biologiske aktivi-tet på noen måte kan relateres til deres karbohydrat-deler, og kan spesielt være anvendbare i påvisninger av blod-neg-protein-nivåer for klinisk håndtering av diabetiske pasienter. Assay-protokoller som illustrerer disse anvendelser og som er egnet for bruk i kommersiell testsettform, er presentert i de følgende
eksempler:
EKSEMPEL 1
Dette eksempel beskriver den affinitets-immunoradiometriske assay for påvisning av serum kjønnshormon-bindende globulin (SHBG)-konsentrasjoner. SHBG er et enzymatisk glykosylert protein som inneholder to dobbeltgrenete N-bundete oligosakkarid-kjeder og et 0-bundet oligosakkarid pr. molekyl, og er hoved-plasma-transportproteinet for kjønns-steroidhormonene, testo-steron ogøstradiol. Mer viktig er det at dets konsentrasjon er tenkt å regulere den biologiske virkning av disse hormoner, og flere kliniske assays er blitt utformet for dets kvantifisering i blodprøver, inkludert en immunoradiometrisk assay (IRMA). Se G.L. Hammond et al., J. Steroid Biochemistry (trykket 1985). Det er blitt rapportert at pasienter med en blemmeform-føflekk eller trofoblastisk sykdom kan produsere en form av SHBG som ikke binder seg til Concanavalin A (P. Englebienne&G. Doyen, IRCS Medical Science, 10; 600 (1982)). Dette sirkulerer i blodplasma og kan ikke adskilles fra SHBG ved konvensjonell steroid-bindingskapasitet eller immunoassays. I det foreliggende eksempel blir den gruppe-spesifikke/affinitets-adsorbent, Concanavalin A (Con A), immobilisert og erstatter de "fangende antistoffer" anvendt i en konvensjonell IRMA, og tilsetter derved et tilleggsnivå av spesifisitet til immunoassayen som tillater spaltning mellom Con A-bindende og ikke-bindende former av SHBG.
Alikvote mengder (100 ul) av en 50 % Concanavalin A-sefaro-se-oppslemming, holdt i suspensjon (magnetisk rører) i 0,1M Na-acetatbuffer som inneholder 1 M NaCl, 1 mM MnCl2, 1 mM MgCl2, 1 mM CaCl2og 0,01 % Merthiolat, pH 6, ble tilsatt til alle prø-verør, ved å bruke en positiv fortrengningspipette. 100 m1
av fortynnet (1:100 i 25 mM fosfatbufret saltvann (PBS) som inneholder 0,9 % NaCl, 0,625 % laktose, 1 % bovin-gammaglobulin og 0,05 % NaN^, pH 7,6) standarder (seriefortynninger av human graviditetsserum i bovin-serum) og humane serumprøver ble tilsatt til duplikerte rør, og disse ble vortex-blandet. Etter en 30 minutters inkubering ved romtemperatur (~21°C), ble 1 ml PBS som inneholdt 2 % bovin-serum, pH 7,4, tilsatt til alle rørene som ble vortex-blandet og etterlatt ved romtemperatur i 15 min. Rørene ble så sentrifugert (1000 G i 5 min), supernatantene ble aspirert å kaste, og alikvote mengder (100 ul) av
125
I-merket monoklonalt antistoff (-40000qpm iPBS) ble tilsatt til alle rør. Etter en videre inkubering med intermitterende rysting i 1 time ble 2 ml vask/fortynningsmiddel (0,9 %NaCl) tilsatt til alle rør som ble sentrifugert ved 1000 G i
5 min, og supernatantene ble aspirert. Gel-pelleten ble så vasket igjen på samme måte. Rørene ble tellet i en gamma-teller i 1 min og verdiene av ukjente prøver ble interpolert fra en standard kurve dannet fra en rekke standarder av kjent SHBG konsentrasjon. Et eksempel på en SHBG-affinitets-IRMA standardkurve er presentert i fig. 4, og de oppnådde referanse-verdier er presentert i tabell 1.
En sammenligning ble gjort mellom verdiene fått ved å bruke den affinitets-immunometriske assay beskrevet ovenfor og en kommersielt tilgjengelig SHBG-IRMA (Farmos Diagnostics Ltd),
og dette er presentert i figur 5.
EKSEMPEL 2
Dette eksempel demonstrerer anvendelsen av immobilisert fe-nvlboronsvre i en affinitets-immunometrisk assay for neg-hemoglobin (HbA^) .
Blodprøver og standarder ble fremstilt på samme måte, dvs.
50 ul alikvote mengder ble tilsatt til 50 ul av lyserende løs-ning som inneholdt 1 % saponin og EDTA. Rørene ble vortex-blandet og inkubert i 5 min før tilsetning av 900 ul assay-buffer (0,1 M glycin, 0,01 M MgCl2, 0,1 % NaN^ r pH 8,3). Rørene ble igjen vortex-blandet og 100 m1 prøver ble tatt i duplikat og tilsatt til rør som inneholdt 100 ul av en oppslemming av fenylboronsyre - Sepharose-affinitetsgel. Denne blanding ble rørt forsiktig i 10 min, 2 ml assay-buffer ble tilsatt til hvert rør, og disse ble så sentrifugert ved 1000 G i 5 min. Supernatantene ble sugd opp, og gel-pellets ble igjen vasket med 2
125
ml assay-buffer på samme måte. Det I-merkede hemoglobin-antistoff (MO 000 cpm/200 ul i assay-buffer som inneholdt 5 % fetalt kalveserum) ble tilsatt til alle rør, og disse ble så inkubert i 1 time med intermitterende rysting. Assay-buffer (2 ml) ble tilsatt til alle rør og de ble så sentrifugert (1000 G i 5 min) og supernatantene ble aspirert å kaste. Dette ble gjentatt og gelpellets ble tellet i 1 min i en gamma-teller. Konsentrasjonen av neg-Hb i prøvene ble interpolert fra en standardkurve (figur 6) dannet ved å bruke kontroller hvor konsentrasjonen av neg-Hb var kjent, og de totale Hb-konsentrasjoner ble målt spektrofotometrisk (430 nm) i de samme prøver etter fortynning (1:40) i assay-buffer.
En sammenligning (figur 7) ble også gjort mellom prosentene av neg-Hb målt i blodprøver ved affinitets-immunometrisk assay og kommersielt tilgjengelig elektroforetisk metode.
EKSEMPEL 3
Dette eksempel demonstrerer anvendelsen av immobilisert fenylboronsyre i en affinitets-immunometrisk assay for enneg-al bumin.
Blodprøver og standarder kan fremstilles som beskrevet i eksempel 2 eller, alternativt, blodplasma eller serum kan for-tynnes 1:20 i den samme assay-buffer som ble brukt i eksempel 2.Alikvote mengder (100 m1) av de fortynnete lyserte blod-eller plasmaprøver tilsettes til rør som inneholder 100 pl av en immobilisert oppslemming av fenylboronsyre - Sepharose-af f initetsgel . Denne blanding blir rørt svakt i 10 min, 2 ml assay-buffer blir tilsatt til hvert rør, og disse blir så sentrifugert ved 1000 x g i 5 min. Supernatantene blir aspirert,
og gel-pellets blir igjen vasket med 2 ml assay-buffer på sam-12R
me måte. Det I-merkete albumin antistoff (MO 000 cpm/200 al assay-buffer som inneholder 5 % fetalt kalveserum) blir så tilsatt til alle rør som inkuberes i 1 time med intermitterende rystning. Assay-buffer (2 ml) tilsettes alle rør, og etter
sentrifugering (1000 G i 5 min) blir supernatantene aspirert. Dette gjentas, og gelpellets telles i 1 min i en gamma-teller.
Konsentrasjonen av neg-albumin kan interpoleres fra en standardkurve (figur 8) dannet ved å bruke plasma-prøver hvor konsentrasjonen av neg-albumin ble påvist ved å bruke et kommersielt tilgjengelig boronat-affinitets-kromatografi-testsett (Pierce GlycoTest ). Disse data tjener også til å demonstrere den gode korrelasjon som eksisterer mellom verdiene som fåes ved den affinitets-immunometriske assay og en standard affinitetskromato-grafisk metode.
I alle tre eksempler ovenfor har affinitets-liganden vært festet til Sepharose som fast-fasebærer. Dette er en effektiv og egnet immobiliseringsmatrix, men den lider av den ulempe at den ikke-spesifikke oppfanging av merkete antistoffer er et sig-nifikant problem. Dette kan overvinnes ved å bruke en alterna-tiv fast-fasebærer som er assosiert med veldig lav ikke-spesifikk adsorpsjon, slik som kontrollert poreglass eller kaolin.

Claims (7)

1. Fremgangsmåte for immunoassay av en makromolekylær analytt,karakterisert vedå bringe en prøve som inneholder nevnte analytt, i kontakt med en gruppe-spesifikk/affini-tetsadsorbent bundet til en fastfase, å bringe nevnte fastfase i kontakt med et merket antistoff mot nevnte analytt, å separere den faste fase med markør bundet til seg og så måle den bundne eller ubundne markør.
2. Fremgangsmåte i henhold til krav 1,karakterisert vedat den gruppespesifikke/- affinitets-adsorbent er et oligonukleotid, en aminosyre, et steroid, en farve, biotin, et borsyrederivat, heparin, gelatin, et spesifikt bindingsprotein forskjellig fra immunoglobulin eller en platelecitin.
3. Fremgangsmåte i henhold til krav 1 eller 2,karakterisert vedat den nevnte faste fase omfatter polyakrylamid, dekstran, agarose i kuleform, et cellulosederivat, et polyamid, en polyester, polystyren, en polyolefin, et metalloksyd, et porøst keramisk materiale, kaolin, diatoméjord, glass eller magnetiske partikler.
4. Fremgangsmåte i henhold til ethvert av kravene 1 til 3,karakterisert vedat det nevnte merkede antistoff er et polyklonalt eller monoklonalt antistoff dannet mot nevnte analytt merket med en radio-isotop, et enzym, eller et fluorescerende, luminescerende, fosforescerende eller spin-merket molekyl.
5. Fremgangsmåte i henhold til et hvilket som helst av krav 1 til 4,karakterisert vedat den nevnte analytt er et glykoprotein, et hormon, et DNA eller RNA, et virus, en prokaryotisk organisme eller en spesifikk eukaryotisk celletype.
6. Assay-testsett for anvendelse ved fremgangsmåten i henhold til hvert av de foregående krav,karakterisertved at det omfatter: (1) et merket antistoff mot nevnte analytt; (2) en gruppe-spesifikk/affinitets-adsorbent som binder seg til nevnte analytt bundet til en fastfase; og (3) kalibreringsstandarder for analytt.
7. Assay-testsett i henhold til krav 6,karakterisert vedat den gruppe-spesifikke affinitets-adsorbent er bundet indirekte til den faste fase ved et annet bindingsstoff.
NO864113A 1985-10-16 1986-10-15 Fremgangsmaate for immunoassay, samt analysesett for dens utfoerelse. NO864113L (no)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GB8525475A GB2181840B (en) 1985-10-16 1985-10-16 Method for the immunoassay of a macromolecular analyte

Publications (2)

Publication Number Publication Date
NO864113D0 NO864113D0 (no) 1986-10-15
NO864113L true NO864113L (no) 1987-04-21

Family

ID=10586733

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO864113A NO864113L (no) 1985-10-16 1986-10-15 Fremgangsmaate for immunoassay, samt analysesett for dens utfoerelse.

Country Status (6)

Country Link
EP (1) EP0227240A1 (no)
JP (1) JPS62100660A (no)
DK (1) DK478086A (no)
FI (1) FI863531A (no)
GB (1) GB2181840B (no)
NO (1) NO864113L (no)

Families Citing this family (18)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6461825B1 (en) * 1987-09-30 2002-10-08 Sanofi (Societe Anonyme) Immunometric assay kit and method applicable to whole cells
SE462165B (sv) * 1988-02-26 1990-05-14 Porath Jerker Saett att paa en baerare adsorbera sammansatta proteinkomplex, saerskilt vid biospecifika bestaemningsmetoder
CA1333883C (en) * 1988-04-07 1995-01-10 Shashidhara H. M. Murthy Immunoassay utilizing biotin bridge with universal solid phase
US5362624A (en) * 1988-05-25 1994-11-08 Boehringer Mannheim Gmbh Process for the determination of an immunologically detectable substance and a suitable reaction vessel therefor
IE64286B1 (en) * 1988-05-25 1995-07-26 Boehringer Mannheim Gmbh Process for the determination of an immunologically detectable substance and a suitable vessel therefor
GB8825290D0 (en) * 1988-10-28 1988-11-30 Hounsell E F Characterisation of glycoproteins
CA2008100A1 (en) * 1989-01-20 1990-07-20 Hubert Bayer Method for the determination of immunologically detectable substance
JP2543630B2 (ja) * 1990-05-01 1996-10-16 ナカライテスク株式会社 特定タンパク質の糖化割合の測定方法
DE69229230T2 (de) * 1991-09-25 2000-01-27 Samar Makhlouf Antikörpertest zur erkennung von alkoholikern und zur überwachung der alkoholaufnahme
ES2182826T3 (es) * 1992-03-04 2003-03-16 Abbott Lab Determinacion de la hemoglobina glicosilada por reduccion de la intensidad de la fluorescencia.
GB2270976A (en) * 1992-09-18 1994-03-30 Marconi Gec Ltd Immunoassay/separation process using an auxiliary species on a support
JP3181390B2 (ja) * 1992-08-19 2001-07-03 ナカライテスク株式会社 タンパク質の糖化割合の測定方法
GB9304979D0 (en) * 1993-03-11 1993-04-28 Sinvent As Imobilisation and separation of cells and other particles
JPH08233824A (ja) * 1994-12-19 1996-09-13 Bio Rad Lab Inc カラム再生をしないクロマトグラフィによる糖化ヘモグロビンの連続測定法
US6162645A (en) * 1997-03-13 2000-12-19 Abbott Laboratories Determination of % glycated hemoglobin
JP5066615B2 (ja) * 2011-01-31 2012-11-07 株式会社日立製作所 フェニルボロン酸基と特異的に結合するオリゴペプチド配列
KR20140100843A (ko) * 2013-02-07 2014-08-18 삼성전자주식회사 시료 중의 당화 단백질을 포획하는 지지체 및 이를 이용한 상기 당화 단백질을 측정하는 장치 및 방법
JP7009822B2 (ja) * 2016-08-09 2022-02-10 東ソー株式会社 繊維状物質を用いる検出方法

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4269605A (en) * 1978-06-28 1981-05-26 Amicon Corporation Method and kit for separation of glycoproteins
GB2065298B (en) * 1979-12-12 1985-02-20 Wei Kung Wang Method and apparatus for detecting biological particles by induced signal
JPS5729949A (en) * 1980-07-30 1982-02-18 Nippon Koutai Kenkyusho:Kk Determination of sugar branch related to cancer and diagnostic technique of cancer
FR2502786B1 (fr) * 1981-03-24 1985-06-21 Stallergenes Laboratoire Procede de fixation d'antigenes et d'anticorps sur support de polysaccharides, et utilisation du produit ainsi obtenu pour les dosages immunologiques
US4447528A (en) * 1981-08-10 1984-05-08 Corning Glass Works Detecting intrinsic factor blocking site antibody
IL63855A (en) * 1981-09-16 1984-10-31 Teva Pharma Method and kit for detecting pregnancy
US4478744A (en) * 1982-01-25 1984-10-23 Sherwood Medical Company Method of obtaining antibodies
US4629692A (en) * 1982-12-06 1986-12-16 Miles Laboratories, Inc. Immunoassay for nonenzymatically glucosylated proteins and protein fragments an index of glycemia
DE3311889A1 (de) * 1983-03-31 1984-10-11 Byk-Mallinckrodt Chemische Produkte Gmbh, 6057 Dietzenbach Verfahren zur irreversiblen bindung von protein an polystyroloberflaechen unter erhaltung der biologischen aktivitaet, so erhaltene polystyroloberflaechen und ihre verwendung
EP0134868A1 (en) * 1983-08-26 1985-03-27 Anda Biologicals Unicellular organisms activated by glutaraldehyde as solid carriers for sensitizing agents and uses of sensitized unicellular organisms
SE8304836D0 (sv) * 1983-09-09 1983-09-09 Pharmacia Ab Sett att bestemma forendringar i ledbrosk

Also Published As

Publication number Publication date
GB8525475D0 (en) 1985-11-20
NO864113D0 (no) 1986-10-15
FI863531A (fi) 1987-04-17
JPS62100660A (ja) 1987-05-11
EP0227240A1 (en) 1987-07-01
DK478086A (da) 1987-04-17
FI863531A0 (fi) 1986-09-01
DK478086D0 (da) 1986-10-07
GB2181840B (en) 1989-11-29
GB2181840A (en) 1987-04-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NO864113L (no) Fremgangsmaate for immunoassay, samt analysesett for dens utfoerelse.
US5571667A (en) Elongated membrane flow-through diagnostic device and method
US4143124A (en) Antigen-antibody analysis with solid phase rf and c1q
CA2573749C (en) Immunological test element with improved control zone
JP3356785B2 (ja) グリコヘモグロビン(%)の定量
US20040018576A1 (en) Bence Jones protein testing cassette
JP3551678B2 (ja) ヘモグロビンA1cの測定法及びキット
NO327714B1 (no) Anordning og metode for kromatografisk deteksjon av en analytt i en blodprove.
Bertholf Proteins and albumin
EP0535162B1 (en) Analyte variant analysis
US6316265B1 (en) Determination of % glycated hemoglobin
EP1673635B1 (en) Hemoglobin assay for neonatal screening
JPH01248061A (ja) 試験キットおよび免疫リガンドの測定方法
EP1301790B1 (en) Direct assessment of analyte to reference molecule ratios
EP0455225B1 (en) Method for measuring the percentage of glycation of a particular protein
CN116027035B (zh) 一种用于提高hiv1/2尿液胶体金免疫层析检测准确率的试剂盒及制备方法
EP0402023B1 (en) Elongated membrane flow-through diagnostic device and method
NO164135B (no) Immunometrisk metode for bestemmelse av et hapten, samt analysesett for utfoerelse av metoden.
John et al. An automated immunoradiometric assay of thyrotrophin (TSH) in dried blood filter paper spots
CN206975046U (zh) 糖化血红蛋白检测试纸条
US7544513B2 (en) Hemoglobin assay for neonatal screening
JP3292766B2 (ja) 糖化蛋白の測定方法
JPH0666807A (ja) タンパク質の糖化割合の測定方法
JPH0658936A (ja) 糖化蛋白の測定方法
JPH10227793A (ja) カルバミル化ヘモグロビンの測定方法