NO833198L - PREPARATION OF HEPATIT-B VIRUS VACCINE - Google Patents

PREPARATION OF HEPATIT-B VIRUS VACCINE

Info

Publication number
NO833198L
NO833198L NO833198A NO833198A NO833198L NO 833198 L NO833198 L NO 833198L NO 833198 A NO833198 A NO 833198A NO 833198 A NO833198 A NO 833198A NO 833198 L NO833198 L NO 833198L
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
fragment
hbsag
yeast
regulatory region
hindiii
Prior art date
Application number
NO833198A
Other languages
Norwegian (no)
Inventor
Theresa Cabezon
Marjolene Crabeel
Michel De Wilde
Nigel Harford
Original Assignee
Smith Kline Rit
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Smith Kline Rit filed Critical Smith Kline Rit
Publication of NO833198L publication Critical patent/NO833198L/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P21/00Preparation of peptides or proteins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/005Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from viruses
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/12Antivirals
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/80Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi
    • C12N15/81Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for fungi for yeasts
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K38/00Medicinal preparations containing peptides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2730/00Reverse transcribing DNA viruses
    • C12N2730/00011Details
    • C12N2730/10011Hepadnaviridae
    • C12N2730/10111Orthohepadnavirus, e.g. hepatitis B virus
    • C12N2730/10122New viral proteins or individual genes, new structural or functional aspects of known viral proteins or genes

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)

Abstract

A DNA fragment capable of coding for HBsAg and DNA derivatives of Dane particles is fused to the region for controlling the arg3 gene of yeast and cloned in a yeast vector. The recombinant vector is employed for transforming the competent yeast cells in which the HBsAg gene is expressed.

Description

Foreliggende oppfinnelse vedrører kloning av et gen som koder for hepatitt-B-overflateantigen hos gjær ved bruk av rekombinant DNA-teknikker og fremstilling av en hepatitt-B-virusvaksine fra antigen fremstilt av gjæren. The present invention relates to the cloning of a gene that codes for hepatitis B surface antigen in yeast using recombinant DNA techniques and the production of a hepatitis B virus vaccine from antigen produced by the yeast.

Infeksjon med hepatitt-B-virus (HBV) er et alvorlig utbredd helseproblem. Infeksjonen kan manifestere seg i akutte eller kroniske faser. Antall tilfeller av akutt hepatitt i USA anslås å være minst 100.000 pr. år med et dødelighets-forhold på 1 til 2 %. I USA varierer forekomst av kroniske bærere av HBV blant friske voksne mellom 0.1 og 1 % avhen-gig av alder og sosial klasse. I Syd-Amerika er forekomst av kroniske bærere ca. 1 til 3 %; i USSR og Syd-Europa ca. Hepatitis B virus (HBV) infection is a serious widespread health problem. The infection can manifest itself in acute or chronic phases. The number of cases of acute hepatitis in the USA is estimated to be at least 100,000 per year. year with a mortality ratio of 1 to 2%. In the USA, the prevalence of chronic carriers of HBV among healthy adults varies between 0.1 and 1%, depending on age and social class. In South America, the incidence of chronic carriers is approx. 1 to 3%; in the USSR and southern Europe approx.

3 til 6 %; og i Asia og Afrika mer enn 10 %.3 to 6%; and in Asia and Africa more than 10%.

-'I utviklede land foreligger et behov for en vaksine for folk med stor risiko for utsettelse såsom pasienter og per-sonale på medisinske sentere hvor blod behandles, militær-personell, ektefeller av kroniske bærere, reisende til områder med meget HBV, nyfødte av kroniske bærere, homo-seksuelle, prostituerte og medikamentmisbrukere. I den tredje verden foreligger et behov for en billig vaksine for masse-immunisering. Masseimmuniseringsprogrammer kan i siste in-stans ikke bare påvirke hyppigheten av hepatitt hos voksne og samlingen av kroniske bærere, men også redusere virkningen og dødeligheten ved kronisk aktiv hepatitt og hepatocellu-lært karcinom. " Dane-partikler som antas å være hepatitt-B-virioner og som kan isoleres fra infiserte pasienter, har en diameter på ca. 42 nm. Hver består av en kapsel omfattende hepåtitt-B-overflateantigen (HBsAg), et kapsid (HBcAg), en endogen polymerase og et DNA genom. Genomet er ringformet og dobbeltkjedet med et en-bånds-område bestående av ca. 200 baser. En-bånds-området kan innfylles in vitro ved på-virkning av endogen polymerase. Den lengste kjede inneholder ca. 3.200 baser. -'In developed countries there is a need for a vaccine for people at high risk of exposure such as patients and personnel at medical centers where blood is processed, military personnel, spouses of chronic carriers, travelers to areas with a lot of HBV, newborns of chronic carriers, homosexuals, prostitutes and drug addicts. In the third world there is a need for a cheap vaccine for mass immunization. Mass immunization programs may ultimately not only affect the frequency of hepatitis in adults and the collection of chronic carriers, but also reduce the impact and mortality of chronic active hepatitis and hepatocellular carcinoma. " Dane particles believed to be hepatitis B virions and which can be isolated from infected patients, has a diameter of approx. 42 nm. Each consists of a capsule comprising hepatitis B surface antigen (HBsAg), a capsid (HBcAg), an endogenous polymerase and a DNA genome. The genome is ring-shaped and double-stranded with a single-band region consisting of approx. 200 bases. The one-band region can be filled in in vitro by the action of endogenous polymerase. The longest chain contains approx. 3,200 bases.

Det har vært vanskelig å fremstille HBV-vaksiner fordi det ' har vist seg vanskelig å dyrke virus i vevskultur og fordi den eneste kjente vert er menneske. Små mengder autentisk HBV-antigener er blitt isolert fra infiserte mennesker. F- D- C Reports, s. 3-4, 19. Juli 1982 inneholder en rapport av kliniske studier av en nylig utviklet hepatitt-B-vaksine. It has been difficult to produce HBV vaccines because it has proved difficult to grow the virus in tissue culture and because the only known host is humans. Small amounts of authentic HBV antigens have been isolated from infected humans. F-D-C Reports, pp. 3-4, 19 July 1982 contains a report of clinical trials of a recently developed hepatitis B vaccine.

Valenzuela et al., Nature, bind 298, 347-350 (1982), beskriver syntese av HBsAg i gjær ved bruk av en ekspresjons-vektor hvor HBsAg kode-sekvensen er et 835 bp Taql-Hpal-fragment og promotoren er gjæralkohol-dehydrogenase I promotor. Flere tidligere korte rapporter beskriver forsk-ning forut for dette litteratursitat. Disse er Valenzuela et al., Arch. Biol. Med. Exp. ( Chile), bind 14(1), 21-22 Valenzuela et al., Nature, vol. 298, 347-350 (1982), describe the synthesis of HBsAg in yeast using an expression vector in which the HBsAg coding sequence is an 835 bp TaqI-HpaI fragment and the promoter is yeast alcohol dehydrogenase In promoter. Several previous short reports describe research prior to this literature citation. These are Valenzuela et al., Arch. Biol. With. Exp. (Chile), Volume 14(1), 21-22

(1981) som rapporterer ekspresjon hos gjær av en DNA-freg-ment inneholdende en frekvens som koder for et lignende protein til HBsAg ligert til et gjæralkohol-dehydrogenase-promotorområde; en rapport i Scrip nr. 616, s. 14 (12. august 19 81), som angir at en gruppe amerikanske forskere innbefattet P. Valenzuela og W.J. Rutter har beskrevet produksjon i gjær av "the protein-coating surrounding hepatitis B virus"; og Zuckerman,. Nature, bind 295, 98-99 (19 82) som rapporterer at W.J. Rutter har rapportert ekspresjon av glycosylert HBsAg i gjærceller. (1981) who report expression in yeast of a DNA fragment containing a frequency encoding a similar protein to HBsAg ligated to a yeast alcohol dehydrogenase promoter region; a report in Scrip No. 616, p. 14 (August 12, 1981), which states that a group of American researchers including P. Valenzuela and W.J. Rutter has described the production in yeast of "the protein-coating surrounding hepatitis B virus"; and Zuckerman, . Nature, vol. 295, 98-99 (1982) which reports that W.J. Rutter has reported the expression of glycosylated HBsAg in yeast cells.

Antigen-komponenter av HBV såsom HBsAg er blitt fremstiltAntigenic components of HBV such as HBsAg have been produced

i bakterier etter innsettning av et rekombinant DNA-molekyl inneholdende et gen som koder for antigenet. Burrell et al., Nature, bind 279, nr. 5708, 43-47 (1979), rapporterer ekspresjon i E. coli-stamme HB101 av HBV DNA-sekvenser klonet i plasmid pBR322. in bacteria after the insertion of a recombinant DNA molecule containing a gene that codes for the antigen. Burrell et al., Nature, Vol. 279, No. 5708, 43-47 (1979), report expression in E. coli strain HB101 of HBV DNA sequences cloned in plasmid pBR322.

Murray et al., Europeisk. patentansøkning 13.828, beskriver fremstilling av en rekombinant vektor som kan kode for HBV-antigener inneholdende HBsAg i E.coli-stamme HB101. Vektoren fremstilles av Dane-partikkel DNA og plasmid pBR322. Forfåtterene angir at anvendelige verter kan være bakterieverter, gjær eller andre sopper, dyr eller plante-) celler og andre verter, selv om den eneste viste vert er E. coli. Charnay et al., Nature, bind 286, 893-895 (1980) rapporterer konstruksjon av en bakteriofag som bærer en fusjon av 0-galaktosidasegenet og HBsAg strukturgenet. Bakteriofagen forårsaker syntese av et fusjonsprotein omfattende anti-gendeterminanter for både HBsAg og 3-galaktosidase. Murray et al., European. patent application 13,828, describes the production of a recombinant vector which can code for HBV antigens containing HBsAg in E.coli strain HB101. The vector is made from Dane particle DNA and plasmid pBR322. The authors state that useful hosts may be bacterial hosts, yeast or other fungi, animal or plant cells, and other hosts, although the only host shown is E. coli. Charnay et al., Nature, vol. 286, 893-895 (1980) report the construction of a bacteriophage carrying a fusion of the 0-galactosidase gene and the HBsAg structural gene. The bacteriophage causes synthesis of a fusion protein comprising antigenic determinants for both HBsAg and 3-galactosidase.

Tiollais et al., Britisk patentansøkning nr. 2.034.323, beskriver fremstilling av en colifag inneholdende HBV DNA. Sammenkoblet fag-HBV DNA transformeres til E. coli-stamme C600. Tiollais et al., British Patent Application No. 2,034,323, describes the preparation of a coliphage containing HBV DNA. Annealed phage HBV DNA is transformed into E. coli strain C600.

I Britisk patentansøkning nr. 2.070.621, først publisert som PCT-ansøkning WO81/00577, beskrives et plasmid som omfatter en del av HBsAg-genet og promotoren og Z-genet til lactose-operonet og som kan klones i E. coli. British Patent Application No. 2,070,621, first published as PCT application WO81/00577, describes a plasmid comprising part of the HBsAg gene and the promoter and Z gene of the lactose operon and which can be cloned in E. coli.

Rutter et al., Europeisk patentansøkning nr. 20.251, beskriver rekombinantvektorer innbefattet en rekombinant-vektor omfattende pBR322 og BamHI-fragmenter av HBV DNA, som kan brukes for å transformere E. coli. En annen vektor omfattende et BamHI-fragment av HBV DNA og en del av trypto-fanoperonet, ble brukt for å oppnå ekspresjon i E. coli-stamme HB101. Rutter et al., European Patent Application No. 20,251, describes recombinant vectors including a recombinant vector comprising pBR322 and BamHI fragments of HBV DNA, which can be used to transform E. coli. Another vector comprising a BamHI fragment of HBV DNA and part of the tryptophanoperon was used to achieve expression in E. coli strain HB101.

Edman et al., Nature, bind 291, nr. 5815, 503-506 (1981), beskriver konstruksjon av plasmider som dirigerer syntese av HBcAg og et 3-lactamase-HBsAg-fusjonsprotein under kontroll av tryptofanoperonreguleringsområdet i E. coli. Edman et al., Nature, Vol. 291, No. 5815, 503-506 (1981), describe the construction of plasmids that direct synthesis of HBcAg and a 3-lactamase-HBsAg fusion protein under the control of the tryptophan operon regulatory region in E. coli.

Annen litteratur beskriver innsetting av HBV DNA i bakterier innbefattet Charnay et al., Prog. Ited. Virol., bind 27, 88-92 (1981); MacKay et al, Proe. Nati. Acad. Sei. U. S., bind 78, nr. 7, 4510-4514 (1981); Fritsch et al., CR. Acad. Sei, bind 287, nr. 16, 1453 (1978); U.K. patent-beskrivelse 2.034.323 (Derwent nr. 46874C); og Pasek et al. Nature, bind 282 nr. 6. 575 (1979). Other literature describes insertion of HBV DNA into bacteria including Charnay et al., Prog. Eaten. Virol., Vol. 27, 88-92 (1981); MacKay et al., Proe. Nati. Acad. Pollock. U. S., Vol. 78, No. 7, 4510-4514 (1981); Fritsch et al., CR. Acad. Sei, Vol. 287, No. 16, 1453 (1978); UK Patent Specification 2,034,323 (Derwent No. 46874C); and Pasek et al. Nature, Vol. 282 No. 6. 575 (1979).

HBV DNA er også klonet i pattedyrceller. Disse innbefatter mennesker, mus, og menneske-heptoma-cellelinjer. F. eks'. rapporterer Dubois et al., Proe. Nati. Acad. Sei. U. S., bind 77, nr. 8, 4549-4553 (1980), transformasjon av muse-celler med et plasmid inneholdende HBV-genomet og ekspresjon av HBsAg; Hirschman et al., Proe. Nati. Acad. Sei. U. S., bind 77, nr. 9, 5507-5511 (1980) rapporterer produksjon av HBV-lignende partikler ved HeLa-celler transformert med HBV DNA. HBV DNA is also cloned in mammalian cells. These include human, mouse, and human hepatoma cell lines. F. ex'. report Dubois et al., Proe. Nati. Acad. Pollock. U. S., Vol. 77, No. 8, 4549-4553 (1980), transformation of mouse cells with a plasmid containing the HBV genome and expression of HBsAg; Hirschman et al., Proe. Nati. Acad. Pollock. U. S., Vol. 77, No. 9, 5507-5511 (1980) reports the production of HBV-like particles by HeLa cells transformed with HBV DNA.

Fremgangsmåter for fremstilling av HBV-vaksine ved bruk av HBsAg fra menneskeblod er beskrevet av Funakoshi et al., Prog. Med. Virol. bind 27, 163-167 (1981), og Maupas et al. Prog. Med. Virol. bind 27, 185-201 (1981). Vaksinen fremstilt av Funakoshi et al. inneholder 40 ug renset, formalin-behandled HBsAg, forsfatnatriumklorid, 20 mg mannitol; og 0,1 % aluminiumhydroksyd som hjelpestoff. I sistnevte publikasjon rapporterer Maupas et al. at en dose vaksine "var 1 ml renset, formalinbehandlet HBsAg inneholdende Methods for the production of HBV vaccine using HBsAg from human blood are described by Funakoshi et al., Prog. With. Virol. vol. 27, 163-167 (1981), and Maupas et al. Prog. With. Virol. vol 27, 185-201 (1981). The vaccine prepared by Funakoshi et al. contains 40 µg purified, formalin-treated HBsAg, sodium phosphate chloride, 20 mg mannitol; and 0.1% aluminum hydroxide as excipient. In the latter publication, Maupas et al report. that a dose of vaccine "was 1 ml of purified, formalin-treated HBsAg containing

2-10 ug/ml protein (Lowry's metode) og 0,1 % aluminiumhydroksyd. Forskriften som ble brukt i undersøkelsen "rapportert av Maupas et al. krevet tre injeksjoner med en måneds intervaller med en booster-dose etter ett år; og for-fatterene foreslår en forskrift bestående av to injeksjoner konsentrert HBsAg med tre måneders mellomrom. 2-10 ug/ml protein (Lowry's method) and 0.1% aluminum hydroxide. The regimen used in the study "reported by Maupas et al. required three injections at one-month intervals with a booster dose after one year; and the authors suggest a regimen consisting of two injections of concentrated HBsAg at three-month intervals.

Ytterligere referanser for fremstilling av HBV-vaksiner er Maupas et al., Adamowicz et al., og Funakoshi et al. ved sidene 3, 37 og 57, av hepatitt-B-vaksine INSERM symposium nr. 18, edit. ved Maupas og Guesry, 1981, Elserier/North-Holland Biomedical Press. Additional references for the preparation of HBV vaccines are Maupas et al., Adamowicz et al., and Funakoshi et al. at pages 3, 37 and 57, of hepatitis B vaccine INSERM symposium no. 18, edit. by Maupas and Guesry, 1981, Elserier/North-Holland Biomedical Press.

Gjær er blitt brukt som vertsorganismer for visse andre DNA-sekvenser. F.eks. beskriver Fraser et al., Britisk patentansøkning nr. 2.068.969 fremstilling av kylling-ovalbumin i gjær; Scrip nr. 640, s.ll (4. november 1981) inneholder en rapport om at en type interferon fremstilles i gjær. I Europeisk patent nr. 11.562 (Derwent nr. 38762C) rap<p>orteres hybride gjærplasmider inneholdende ura^-gjær-gen i 2 u plasmidet. Foreliggende oppfinnelse vedrører fremstillingen av et rekombinant DNA-molekyl omfattende en nukleotidsekvens som kan kode for HBsAg og et reguleringsområde avledet fra gjær arg 3 genet som kan bevirke transkripsjon av HBsAg-sekvensen i gjæren, Saccharomyces cerevisiae. Molekylet inneholder vektorer hvori HBsAg-sekvensen og reguleringsområdet er blitt innsatt, hvilke vektorer kan brukes for å fremstille en gjærvektor eller for å opprettholde HBsAg Yeast have been used as host organisms for certain other DNA sequences. E.g. Fraser et al., British Patent Application No. 2,068,969 describes the preparation of chicken ovalbumin in yeast; Scrip No. 640, p.ll (November 4, 1981) contains a report that a type of interferon is produced in yeast. In European patent no. 11,562 (Derwent no. 38762C) hybrid yeast plasmids are reported containing the ura^ yeast gene in the 2u plasmid. The present invention relates to the production of a recombinant DNA molecule comprising a nucleotide sequence which can code for HBsAg and a regulatory region derived from the yeast arg 3 gene which can effect transcription of the HBsAg sequence in the yeast, Saccharomyces cerevisiae. The molecule contains vectors into which the HBsAg sequence and regulatory region have been inserted, which vectors can be used to produce a yeast vector or to maintain HBsAg

og reguleringsområdene. Mikroorganismer inneholdende rekombinant DNA-molekylet, såsom mikroorganismer transformert med plasmider ifølge oppfinnelsen, inngår i oppfinnelsen. Oppfinnelsen inneholder også et plasmid med arg_3 reguleringsområde og et restriksjonspunkt nær dette for innsettning av en kode-sekvens såsom en HBsAg-sekvens, and the regulatory areas. Microorganisms containing the recombinant DNA molecule, such as microorganisms transformed with plasmids according to the invention, form part of the invention. The invention also contains a plasmid with an arg_3 regulatory region and a restriction point close to this for the insertion of a coding sequence such as an HBsAg sequence,

slik at proteinet som syntetiseres ved ekspresjon av kodesekvensen mangler fremmede aminosyrerester. so that the protein synthesized by expression of the coding sequence lacks extraneous amino acid residues.

Oppfinnelsen innbefatter også fremstilling av en vaksine for å stimulere beskyttelse mot HBV-infeksjon hos mennesker omfattende en vaksinemengde av HBsAg fremstilt ifølge foreliggende oppfinnelse og en egnet bærer. The invention also includes the preparation of a vaccine to stimulate protection against HBV infection in humans comprising a vaccine amount of HBsAg prepared according to the present invention and a suitable carrier.

Videre omfatter oppfinnelsen fremgangsmåte for fremstilling av rekombinant DNA-molekyler og mikroorganismer som inneholder molekylene samt fremgangsmåte for fremstilling av HBsAg og HBsAg-holdig vaksine. Furthermore, the invention includes a method for the production of recombinant DNA molecules and microorganisms that contain the molecules as well as a method for the production of HBsAg and HBsAg-containing vaccine.

Figur 1 viser et restriksjonsendonukleasespaltningskart for Figure 1 shows a restriction endonuclease cleavage map for

PRIT10601. PRIT10601.

Figur 2 er et restriksjonsendonukleasespaltningskart for Figure 2 is a restriction endonuclease cleavage map for

pRIT10616. pRIT10616.

Figur 3 er et restriksjonsendonukleasespaltningskart for Figure 3 is a restriction endonuclease cleavage map for

pMC2 00.pMC2 00.

Figur 4 er nukleotidsekvensen for en del av 3.300 bp HindIII-gjær-DNA-insatsen i pMC200, hvilken del inneholder HincII, Bglll og EcoRI punkter. Figur 5 er et flytediagram som illustrerer fremstillingen Figure 4 is the nucleotide sequence of a portion of the 3,300 bp HindIII yeast DNA insert in pMC200, which portion contains HincII, BglII and EcoRI sites. Figure 5 is a flowchart illustrating the preparation

av pRITlO.6 71 og pRITl0673.of pRIT10.6 71 and pRIT10673.

Figur 6 er et flytediagram som illustrerer fremstillingenFigure 6 is a flowchart illustrating the preparation

av pRIT10749.of pRIT10749.

Figur 7 er et flytediagram som illustrerer fremstillingenFigure 7 is a flowchart illustrating the preparation

av pRIT10761 og pRIT10764.of pRIT10761 and pRIT10764.

Rekombinant DNA-molekylet fremstilles ved å sammensmelteThe recombinant DNA molecule is produced by fusing

en nukleotid-sekvens som inneholder et strukturelt gen for HBsAg med gjær arg3 reguleringsområde, hvilket reguleringsområde kan dirigere transkripsjon av HBsAg-sekvensen i gjær, og derved bevirke ekspresjon av denne. Med "rekombinant DNA-moleky1" menes et DNA-fragment inneholdende HBsAg-kodesekvensen og reguleringsområdet samt andre DNA-molekyler "inneholdende fragmentet såsom plasmid eller fagvektorer. a nucleotide sequence containing a structural gene for HBsAg with a yeast arg3 regulatory region, which regulatory region can direct transcription of the HBsAg sequence in yeast, thereby causing its expression. By "recombinant DNA molecule" is meant a DNA fragment containing the HBsAg coding sequence and the regulatory region as well as other DNA molecules "containing the fragment such as plasmid or phage vectors.

Med "reguleringsområde" menes en sekvens som inneholder et promotorområde og andre sekvenser som er nødvendig for transkripsjon. Gjær arg3-reguleringsområdet er spesielt fordelaktig fordi det kan være en sterk promotor for ekspresjon av en HBsAg-kodesekvens. By "regulatory region" is meant a sequence containing a promoter region and other sequences necessary for transcription. The yeast arg3 regulatory region is particularly advantageous because it can be a strong promoter for expression of an HBsAg coding sequence.

Med "HBsAg" menes et protein som er strukturelt identisk med autentisk HGsAg eller har i det vesentlige samme anti-gendeterminanter som autentisk HBsAg, dvs. er i stand til å stimulere produksjon av antistoffer som spesifikt erkjenner og reagerer med autentisk HBsAg eller spesifikt erkjennes av anti-HBsAg-antistoffer. By "HBsAg" is meant a protein that is structurally identical to authentic HGsAg or has essentially the same antigenic determinants as authentic HBsAg, i.e. is capable of stimulating the production of antibodies that specifically recognize and react with authentic HBsAg or are specifically recognized by anti-HBsAg antibodies.

HBsAg-kodesekvensen kan isoleres fra DNA ekstrahert fra Dane-partikler i infisert menneskeserum ved å fylle ett-båndsområdet med en DNA-polymerase, fortrinnsvis den endo-gene polymerase, etterfulgt av bryting med en restriksjonsendonuklease. Valget av endonuklease vil delvis avhenge av de foreliggende Dane-partikler. F.eks. kan, som illustrert i eksemplene nedenunder, HBsAg-kodesekvensen til HBV DNA i| Visse Dane-partikler av adw-serotypen isoleres på et enkelt! BamHI-fragment, og HBsAg-kodesekvensen til HBV DNA i visse Dane-partikler av ayw-serotypen kan isoleres på et Hhal-fragment. HBV DNA i Dane-partikler av den samme serotype kan altså vise forskjellige mønstere for restriksjons-punkter. The HBsAg coding sequence can be isolated from DNA extracted from Dane particles in infected human serum by filling the single-band region with a DNA polymerase, preferably the endogenous polymerase, followed by digestion with a restriction endonuclease. The choice of endonuclease will depend in part on the Dane particles available. E.g. can, as illustrated in the examples below, the HBsAg coding sequence of HBV DNA i| Certain Dane particles of the adw serotype are isolated on a single! BamHI fragment, and the HBsAg coding sequence of HBV DNA in certain Dane particles of the ayw serotype can be isolated on an Hhal fragment. HBV DNA in Dane particles of the same serotype can therefore show different patterns for restriction points.

Restriksjon av DNA for å fremstille DNA-fragmenter brukt i oppfinnelsen, ligering av slike fragmenter for å fremstille rekombinant DNA-molekyler brukt i oppfinnelsen og innføring i mikroorganismer utføres ved kjente teknikker såsom de teknikker som er beskrevet i de forut og etterfølgende angitte litteratursteder. Betingelsene velges slik at man unngår denaturering av DNA-et og enzymene. F.eks. pufferes pH til å bli på ca. 7,0 til 11,0 og temperaturen holdes under ca. 60°C. Fortrinnsvis utføres restriksjon ved en temperatur på ca. 30 til 40°C og ligering utføres ved ca. 0-10°C. Restriksjonsenzymer og ligaser som brukes i ut-førelsen av oppfinnelsen kan kjøpes og bør brukes i henhold til medfølgende instruksjoner. T4 DNA-ligase er den foretrukne ligase. Restriction of DNA to produce DNA fragments used in the invention, ligation of such fragments to produce recombinant DNA molecules used in the invention and introduction into microorganisms are carried out by known techniques such as the techniques described in the previously and subsequently indicated literature places. The conditions are chosen so as to avoid denaturation of the DNA and the enzymes. E.g. the pH is buffered to approx. 7.0 to 11.0 and the temperature is kept below approx. 60°C. Restriction is preferably carried out at a temperature of approx. 30 to 40°C and ligation is carried out at approx. 0-10°C. Restriction enzymes and ligases used in the practice of the invention can be purchased and should be used according to accompanying instructions. T4 DNA ligase is the preferred ligase.

Sammensmelting av HBsAg-sekvensen til det regulerende område kan utføres ved å bruke mellomproduktvektorer som illustrert i eksemplene nedenunder. Alternativt kan HBsAg-sekvensen innsettes direkte i vektoren som inneholder reguleringsområdet. En vektor er DNA som kan bære og bi-beholde DNA-fragmentet i oppfinnelsen inbefattet f.eks. fager og plasmider. Teknikker for kloning av DNA-fragmenter i fager er beskrevet f.eks. av Charnay et al. Nature, bind 286, 893-895 (1980) og Tiollais, Britisk patentansøkning 2,0 34.32 3. Fortrinnsvis plasseres HBsAg-sekvensen slik i forhold til reguleringsområdet at det HBsAg som syntetiseres ved ekspresjon av HBsAg-sekvensen mangler fremmede aminosyrerester. Fusion of the HBsAg sequence to the regulatory region can be performed using intermediate vectors as illustrated in the examples below. Alternatively, the HBsAg sequence can be inserted directly into the vector containing the regulatory region. A vector is DNA that can carry and retain the DNA fragment in the invention, including e.g. phages and plasmids. Techniques for cloning DNA fragments in phages are described e.g. by Charnay et al. Nature, vol. 286, 893-895 (1980) and Tiollais, British patent application 2,0 34.32 3. Preferably, the HBsAg sequence is placed in such a way in relation to the regulatory region that the HBsAg which is synthesized by expression of the HBsAg sequence lacks foreign amino acid residues.

Et reguleringsområde som er funnet å være spesielt an-vendelig stammer fra gjær arg_3-genet som koder for ornitin-karbamoyltransferase (OCT). Bruk av arg3 reguleringsområde i er fordelaktig foi^di dets aktivitet er gjenstand for ba0ide _ spesifike og generelle kontrollmekanismer. Det har vært klonet i E. coli på plasmid. pYe ura3 arg3 som angitt av Crabeel et al., Proe. Nati. Acad. Sei. U. S. A., bind 78, A regulatory region that has been found to be particularly useful originates from the yeast arg_3 gene which codes for ornithine carbamoyl transferase (OCT). Use of arg3 regulatory area i is advantageous foi^di its activity is subject to ba0ide _ specific and general control mechanisms. It has been cloned in E. coli on a plasmid. pYe ura3 arg3 as indicated by Crabeel et al., Proe. Nati. Acad. Pollock. U. S. A., Volume 78,

5026 (1981). Foretrukne verter er S. cerevisiae-stammer hvori arginin-biosyntese-forløpet er derepressert, slik som stamme lcl697d. Bruk av slike stammer fører til øket ekspresjon fra arg3-promotoren sammenlignet med den andre stamme som ble brukt i eksemplene, stamme DC5. 5026 (1981). Preferred hosts are S. cerevisiae strains in which the arginine biosynthesis pathway is derepressed, such as strain lcl697d. Use of such strains leads to increased expression from the arg3 promoter compared to the other strain used in the examples, strain DC5.

Den foretrukne vektor for kloning av det sammensmeltede DNA-fragment i gjær er plasmidet YEpl3, som har evne til replisering og eksistens i både E. coli og S. cerevisiae og derfor er kjent som en pendelvektor. Flere andre gjær-vektorer er kjente og tilgjengelige. HBsAg og reguleringsområdene kan innsettes i en gjærvektor i rekkefølge eller, som illustrert i eksemplene nedenunder, samtidig. Transformasjon med plasmidvektorer vil normalt føre til innsettning av DNA-molekylet ifølge oppfinnelsen som et plasmid. Imidler-tid kan andre reaksjoner såsom rekombinasjoner føre til inn-føring av DNA-molekylet i kromosomalt DNA. The preferred vector for cloning the fused DNA fragment in yeast is the plasmid YEpl3, which is capable of replication and existence in both E. coli and S. cerevisiae and is therefore known as a shuttle vector. Several other yeast vectors are known and available. HBsAg and the regulatory regions can be inserted into a yeast vector sequentially or, as illustrated in the examples below, simultaneously. Transformation with plasmid vectors will normally lead to the insertion of the DNA molecule according to the invention as a plasmid. However, other reactions such as recombinations can lead to the introduction of the DNA molecule into chromosomal DNA.

Vaksiner for å stimulere beskyttelse mot HBV-infeksjon hos mennesker omfattende HBsAg fremstilt av gjær ifølge oppfinnelsen og en egnet bærer kan fremstilles ved kjente teknikker. Bruk av et hjelpestoff såsom aluminiumhydroksyd er ønskelig. Således fremstilt HBsAg kan også kombineres med andre immunogener til kombinasjonsvaksiner. HBV eller kombinasjonsvaksiner kan f.eks. gis ved subkutan, intra-venøs eller intramuskulær vei. DNA-fragmentet ifølge oppfinnelsen og HBsAg fremstilt ved denne kan også brukes som en sonde for påvisning av HBV i biologiske prøver ved DNA-hydridiseringsteknikker og forskjellige immunologiske målinger. Vaccines to stimulate protection against HBV infection in humans comprising HBsAg produced by yeast according to the invention and a suitable carrier can be prepared by known techniques. The use of an auxiliary substance such as aluminum hydroxide is desirable. HBsAg produced in this way can also be combined with other immunogens for combination vaccines. HBV or combination vaccines can e.g. given by subcutaneous, intravenous or intramuscular route. The DNA fragment according to the invention and the HBsAg produced by it can also be used as a probe for the detection of HBV in biological samples by DNA hydridization techniques and various immunological measurements.

I de følgende eksempler på oppfinnelsen som er illustrer-ende og ikke begrensende, er alle prosentdeler vektdeler og alle temperaturer i °C. In the following examples of the invention, which are illustrative and not limiting, all percentages are parts by weight and all temperatures are in °C.

Eksempel 1Example 1

Fremstilling av mellomproduktplasmid, pRIT10601, ved kombi-nasjo n av HBV DNA med pBR322. Preparation of intermediate plasmid, pRIT10601, by combining HBV DNA with pBR322.

HBsAg positivt serum av ayw-serotype ble defibrinert ved tilsétning av CaCl2til en sluttkonsentrasjon på 0,28 % HBsAg positive serum of ayw serotype was defibrinated by adding CaCl2 to a final concentration of 0.28%

og sentrifugert i 2 timer ved 27.000 opm i en SW 27 rotor på 10-20 % sucrosegradienter laget i en puffer (pH 7,5) inneholdende 10 mM trometamin-HCl, IM NaCl og ImM EDTA. and centrifuged for 2 hours at 27,000 rpm in a SW 27 rotor on 10-20% sucrose gradients made in a buffer (pH 7.5) containing 10 mM tromethamine-HCl, IM NaCl and IM EDTA.

En transparent klump inneholdende Dane-partikler ble resuspendert i samme puffer og sentrifugert oå pufferet 20 % sucrose sjiktet på en 65 % sucrosepute. Et opalescent bånd på pute-mellomsjiktet ble tatt ut og sentrifugert på en lignende 20-65 % gradient ved 200.000 x Gi 4 timer for å pelletere Dane-partiklene. A transparent pellet containing Dane particles was resuspended in the same buffer and centrifuged over the buffered 20% sucrose layered on a 65% sucrose cushion. An opalescent band on the pad interlayer was taken out and centrifuged on a similar 20-65% gradient at 200,000 x Gi for 4 hours to pellet the Dane particles.

A. Enkeltbåndområder av HBV-genomet i Dane-partiklene ble reparert ved å bruke endogen DNA-polymerase ved å resus-pendere Dane-partiklene i en reaksjonsblanding (pH 8,0) inneholdende 50 mM trometamin-HCl, 10 mM MgCl2, 500 mM NaCl, 0,5 mM ditiotreitol, 5 0 mM hver av dATP, dCTP og A. Single-stranded regions of the HBV genome in the Dane particles were repaired using endogenous DNA polymerase by resuspending the Dane particles in a reaction mixture (pH 8.0) containing 50 mM tromethamine-HCl, 10 mM MgCl 2 , 500 mM NaCl, 0.5 mM dithiothreitol, 5 0 mM each of dATP, dCTP and

32 32

dGTP og 8 uM P-dTTP (350 Ci/mmol) og inkubere de resus-penderte partikler i 5 timer ved 37°C. Resuspensjonen ble fortynnet til pH 7,5 med en puffer inneholdende 10 mM trometamid-HCl, 10 mM EDTA, 100 mM NaCl og 0,02 % natrium-dodecylsulfat (pH7,5) og inkubert med 0,5 mg/ml pronase i 1 time ved 37°C etterfulgt av fenolekstraksjon og etanol-utf elling .- dGTP and 8 µM P-dTTP (350 Ci/mmol) and incubate the resuspended particles for 5 hours at 37°C. The resuspension was diluted to pH 7.5 with a buffer containing 10 mM tromethamide-HCl, 10 mM EDTA, 100 mM NaCl and 0.02% sodium dodecyl sulfate (pH 7.5) and incubated with 0.5 mg/ml pronase for 1 hour at 37°C followed by phenol extraction and ethanol precipitation.-

Brytning av DNA-et med BamHI-restriksjonsendonuklease gaDigestion of the DNA with BamHI restriction endonuclease gave

to radioaktive fragmenter med størrelser ca. 1.450 bp og 1.600 bp bestemt ved agarosegelelektroforese og autoradio-grafi av gelen. two radioactive fragments with sizes approx. 1,450 bp and 1,600 bp determined by agarose gel electrophoresis and autoradiography of the gel.

B. Ca. 30 mg Dane-partikkel DNA ble reparert med endogen-DNA-polymerase i nærvær av ikke-markert dTTP, og ble ekstrahert og tatt ut som beskrevet ovenfor. DNA-et ble blandet med 100 ng plasmid pBR322 som tidligere var brutt med BamHI-restriksjonsendonuklease og behandlet med alkalisk fosfatase. Plasmid pBR322 brukes normalt i rekombinant DNA-metoder og er deponert uten restriksjon på tilgjengeligheten i American Type Culture Collection under nr. 37017. Blandingen ble ekstrahert med fenol, utfelt med etanol, sentrifugert, tørket, resuspendert i 12 ul av en blanding (pH B. Approx. 30 mg of Dane particle DNA was repaired with endogenous DNA polymerase in the presence of unlabeled dTTP, and was extracted and sampled as described above. The DNA was mixed with 100 ng of plasmid pBR322 previously digested with BamHI restriction endonuclease and treated with alkaline phosphatase. Plasmid pBR322 is normally used in recombinant DNA methods and is deposited without restriction on availability in the American Type Culture Collection under No. 37017. The mixture was extracted with phenol, precipitated with ethanol, centrifuged, dried, resuspended in 12 µl of a mixture (pH

7,5) inneholdende 50 mM trometamin-HCl, 1 mM ATP, 10 mM MgCl2 t 10 mM ditiotreitol, 50 ug/ml gelatin og 2 enheter/ ml T4 DNA-ligase. Suspensjonen ble inkubert i 4 timer ved 10°C og deretter holdt på is i 18 timer. 7.5) containing 50 mM tromethamine-HCl, 1 mM ATP, 10 mM MgCl2 t 10 mM dithiothreitol, 50 µg/ml gelatin and 2 units/ml T4 DNA ligase. The suspension was incubated for 4 hours at 10°C and then kept on ice for 18 hours.

Den ligerte DNA-blanding ble brukt for å transformere kompetente celler av E. coli K12-stamme C600 fremstilt ifølge metoden til Cohen et al., Proe. Nati. Acad. Sei. U. S., bind 69, 2110 (1972). Transformanter ble utvalgt The ligated DNA mixture was used to transform competent cells of E. coli K12 strain C600 prepared according to the method of Cohen et al., Proe. Nati. Acad. Pollock. U. S., Vol. 69, 2110 (1972). Transformants were selected

på et fast medium inneholdende ampicilin (200 pg/ml). Isolerte kolonier ble undersøkt for tap av tetracyklinresistens, hvilket indikerer insats av et fremmed DNA-fragment i BamHI-punktet til pBR322 . En slik trans formant-klon ble funnet å inneholde et plasmid, pRIT10601, som etter brytning med BamHI-endonuklease ga et pBR322-fragment på 4.36 0 bp og HBV DNA-fragmenter på 1.600 bp og 1.450 bp. En kultur av E. coli K12-stamme C600(pRIT10601) ble deponert i henhold til bestemmelsene i Europeisk on a solid medium containing ampicillin (200 pg/ml). Isolated colonies were examined for loss of tetracycline resistance, indicating insertion of a foreign DNA fragment into the BamHI site of pBR322. One such transformant clone was found to contain a plasmid, pRIT10601, which after digestion with BamHI endonuclease gave a pBR322 fragment of 4.360 bp and HBV DNA fragments of 1600 bp and 1450 bp. A culture of E. coli K12 strain C600(pRIT10601) was deposited according to the provisions of European

Patentkonvensjon (EPC) og Budapest Treaty i AmericanPatent Convention (EPC) and Budapest Treaty in American

Type Culture Collection, Rockville, Maryland U.S.A. denType Culture Collection, Rockville, Maryland U.S.A. it

2. juni 1982 under ti lgjengelighetsnummer ATCC 39132 . Et restriksjonsendonukleasespaltningskart for plasmid pRIT10601 er vist i figur 1. 2 June 1982 under accession number ATCC 39132. A restriction endonuclease cleavage map for plasmid pRIT10601 is shown in Figure 1.

C. Størrelsene av fragmentene som dannes ved brytning av Dane-partikkel DNA og pRIT10601 med forskjellige restriksjonsenzymer ble sammenlignet som følger. Dane-partikkel C. The sizes of the fragments formed by digestion of Dane particle DNA and pRIT10601 with different restriction enzymes were compared as follows. Dane particle

32 32

DNA, dvs. HBV DNA, ble markert med P ved endogenpolymer-asereaksjon beskrevet ovenfor eller ved å behandle renset DNA med DNA-polymerase I fra E. coli. Det markerte HBV DNA ble blandet med pRIT10601 og blandingen ble behandlet med en restriksjonsendonuklease og elektroforese på agarosegel. Gelen ble farget med etidiumbromid og fotografert under UV-lys for å lokalisere DNA-fragmentene og ble deretter! DNA, i.e. HBV DNA, was labeled with P by endogenous polymerase reaction described above or by treating purified DNA with DNA polymerase I from E. coli. The labeled HBV DNA was mixed with pRIT10601 and the mixture was treated with a restriction endonuclease and electrophoresed on agarose gel. The gel was stained with ethidium bromide and photographed under UV light to locate the DNA fragments and then became!

i tørket og autoradiografert for å lokalisere de radioaktive ' HBV DNA-fragmenter. De følgende markerte HBV-fragmenter ble funnet 'å passe nøyaktig på størrelsen av pRITl0601-fragmenter: 1.450 og 1.600 bp BamHI-fragmenter; et 1.330 bp Hpal-fragment; og et 1.130 bp BamHI-XhoI-fragment. Markert Dane-partikkel DNA hydridiserte også spesifikt til både in dried and autoradiographed to locate the radioactive ' HBV DNA fragments. The following labeled HBV fragments were found to exactly match the size of pRIT10601 fragments: 1,450 and 1,600 bp BamHI fragments; a 1,330 bp HpaI fragment; and a 1,130 bp BamHI-XhoI fragment. Labeled Dane particle DNA also hybridized specifically to both

mm

1.450 og 1.600 bp fragmentene frigjort ved BamHI-brytning av pRITl0601 etter overføring av disse fragmenter fra en agarosegel på et nitrocellulosefilter ved teknikken til Southern, J. Mol.Biol., bind 98, 503 (1975). The 1,450 and 1,600 bp fragments released by BamHI digestion of pRIT10601 after transfer of these fragments from an agarose gel onto a nitrocellulose filter by the technique of Southern, J. Mol.Biol., vol. 98, 503 (1975).

Disse resultater viste at den klonede DNA-innsats på pRITl0601 representerer HBV-genomet og at en relativ orientering av de to BamHI-fragmenter på pRITl0601 er den samme som i virionet. pRIT10601 ble brukt for å fremstille pRIT10671 i eksempel 10 nedenunder. These results showed that the cloned DNA insert on pRIT10601 represents the HBV genome and that a relative orientation of the two BamHI fragments on pRIT10601 is the same as in the virion. pRIT10601 was used to prepare pRIT10671 in Example 10 below.

EksemDel 2Eczema Part 2

, .fa, .fa

Fremstilling av mellomproduktplasmid, pRIT10616 ved å kombinere HBV DNA med pACYC184. Preparation of intermediate plasmid, pRIT10616 by combining HBV DNA with pACYC184.

Dane-partikler ble isolert fra HBsAg positivt serum av adw-serotype som ovenfor beskrevet. Restriksjonsendonuklease-analyse av<32>P-markert HBV DNA tydet på at DNA-et inneholdt et EcoRI-punkt. Dane particles were isolated from HBsAg positive serum of adw serotype as described above. Restriction endonuclease analysis of<32>P-labeled HBV DNA indicated that the DNA contained an EcoRI site.

HBV DNA innfylt ved endogen polymerasereaksjon ved bruk av ikke-markerte nukleotider ble brutt med EcoRI. Det spaltede DNA ble blandet med plasmid pACYC184 som forut var brutt med EcoRI og behandled med alkalisk fosfatase. Plasmid pACYCl84 er deponert uten restriksjoner for tilgjengelighet i American Type Culture Collection under tilgjengelighetsnummer 37033. Blandingen ble ligert med T4 DNA-ligase. HBV DNA filled in by endogenous polymerase reaction using unlabeled nucleotides was digested with EcoRI. The cleaved DNA was mixed with plasmid pACYC184 which had previously been digested with EcoRI and treated with alkaline phosphatase. Plasmid pACYCl84 has been deposited without restriction for availability in the American Type Culture Collection under accession number 37033. The mixture was ligated with T4 DNA ligase.

Den ligerte DNA-blanding ble brukt for å transformere kompetente celler av E. coli K12-stamme C600. Transformanter ble selektert på tetracyklin (15 ug/ml) agar medium og undersøkt for tap av kloramfenicolresistens hvilket er en indikasjon på innsettning i EcoRI-punktet til pACYCl'84.. En transformert koloni ble funnet å inneholde et plasmid,PRIT10616, som inneholdt pACYC184 med en 3.200 bp innsats omfattende HBV DNA på EcoRI-punktet. Et restriksjonskart for pRITl0616 er vist i figur 2. E. coli K12-stamme C600 (pRIT10616) ble deponert ifølge EPC-bestemmelsene og Budapest Treaty i American Type Culture Collection av 2. juni 1982 under tilgjengelighetsnummer ATCC39131. The ligated DNA mixture was used to transform competent cells of E. coli K12 strain C600. Transformants were selected on tetracycline (15 µg/ml) agar medium and examined for loss of chloramphenicol resistance which is indicative of insertion into the EcoRI site of pACYC184. One transformed colony was found to contain a plasmid, PRIT10616, which contained pACYC184. with a 3,200 bp insert comprising HBV DNA at the EcoRI site. A restriction map for pRIT10616 is shown in Figure 2. E. coli K12 strain C600 (pRIT10616) was deposited under the EPC provisions and the Budapest Treaty in the American Type Culture Collection on June 2, 1982 under accession number ATCC39131.

Eksempel 3Example 3

Fremstilling av mellomproduktplasmid, pRIT10640 inneholdende en nukleotidsekvens som kode for HBsAg ved kombinasjon avPRIT10616 med pBR313. Preparation of intermediate plasmid, pRIT10640 containing a nucleotide sequence coding for HBsAg by combining PRIT10616 with pBR313.

pRIT10616 ble renset ved CsCl-etidiumbromid-densitetsgradi-entsentrifugering, i det vesetlige som beskrevet av Kahn et al, Methods in Enzymology, bind 68, 268 (1979). pRIT10616 was purified by CsCl-ethidium bromide density gradient centrifugation, essentially as described by Kahn et al, Methods in Enzymology, vol. 68, 268 (1979).

DNA-et ble brutt med BamHI-endonuklease, blandet med BamHI-brutt, alkalisk fosfatasebehandlet DNA fra plasmid pBR313, ligert og brukt for å transformere kompetente celler av E. coli Kl2-stamme C600 hovedsakelig som beskrevet i eksempel 1. Plasmid pBR313 er deponert uten restriksjoner på tilgjengelighet i American Type Culture Collection under ti lgjengelighetsnummer 37018. The DNA was digested with BamHI endonuclease, mixed with BamHI-digested, alkaline phosphatase-treated DNA from plasmid pBR313, ligated and used to transform competent cells of E. coli Kl2 strain C600 essentially as described in Example 1. Plasmid pBR313 has been deposited without restrictions on availability in the American Type Culture Collection under access number 37018.

Transformanter ble utvalgt på ampicillinholdig agar og undersøkt for tap av tetracyklinresistens, hvilket indikerer innsetning på BamHI-punktet av pBR313. En transformert koloni ble funnet å inneholde et plasmid pRITl0640, Transformants were selected on ampicillin-containing agar and examined for loss of tetracycline resistance, indicating insertion at the BamHI site of pBR313. A transformed colony was found to contain a plasmid pRIT10640,

som består av pBR313 med en 1.350 bp innsats i BamHI-punktet. Innsatsen er en nukleotidsekvens som kan kode for HBsAg. which consists of pBR313 with a 1,350 bp insert in the BamHI site. The insert is a nucleotide sequence that can code for HBsAg.

Det koder for en del av et antatt HBsAg forstadiumprotein og hele overflateantigenet og inneholder 565 bp av 3' ikke-kodende sekvenser. It encodes part of a putative HBsAg precursor protein and the entire surface antigen and contains 565 bp of 3' non-coding sequences.

Eksempel 4Example 4

Fremstilling av mellomproduktplasmid, pMC200, inneholdende arg3- reguleringsområde, ved kombinasjon av gjær arg3- gen med pBR322. Production of intermediate plasmid, pMC200, containing the arg3 regulatory region, by combining the yeast arg3 gene with pBR322.

Et 3.300 bp gjær DNA-fragment spesifikt for arg3-genet fremstiltes ved brytning av pYe ura3 arg3 med Hindlll. Plasmidet pYe ura3 arg3 er blitt beskrevet av Grabeel et al., Proe. Nati. Aca. Sei. U. S., bind 78, 5026 (1981). 3.300 bp-fragmentet ble klonet i Hindlll-punktet til pBR322 og transformert til E. coli K12-stamme MM294, hovedsakelig som ovenfor beskrevet. Trans formanter ble utvalgt på ampicillin-medium og undersøkt for tetracyklinresistens. Y, n transformert koloni ble funnet å inneholde plasmid, pMC200, som består av pBR322 med en innsats på Hindlll-punktet. Dette plasmid inneholder arg3-reguleringsområdet som kan bevirke transkripsjon av en HBsAg-nukleotidsekvens i gjærceller som beskrevet i følgende eksempler. E. coli K12-stamme MM294 (pMC200) ble deponert ifølge EPC-bestemmelsene og Budapest Treaty hos American Type Culture Collection av 2. juni 1982 under tilgjengelighetsnummer ATCC39130. A 3,300 bp yeast DNA fragment specific for the arg3 gene was prepared by digestion of pYe ura3 arg3 with HindIII. The plasmid pYe ura3 arg3 has been described by Grabeel et al., Proe. Nati. Approx. Pollock. U. S., Vol. 78, 5026 (1981). The 3,300 bp fragment was cloned into the HindIII point of pBR322 and transformed into E. coli K12 strain MM294 essentially as described above. Transformants were selected on ampicillin medium and examined for tetracycline resistance. Y,n transformed colony was found to contain plasmid, pMC200, which consists of pBR322 with an insert at the HindIII point. This plasmid contains the arg3 regulatory region which can effect transcription of an HBsAg nucleotide sequence in yeast cells as described in the following examples. E. coli K12 strain MM294 (pMC200) was deposited under the EPC provisions and the Budapest Treaty with the American Type Culture Collection on June 2, 1982 under accession number ATCC39130.

Nukleotidsekvensen til del av arg3-genet inneholdende en del av de N-terminale kode-sekvenser for ornitinkarbamoy1-transferase (OCT) og del av det 5<1>ikke-oversatte leder-området her bestemt av Huyghen et al., Arch. Intl. Physical. Biochem., bind 89, B172 (1981). Figur 4 illustrerer et 210 bp-fragment med kjent sekvens. 210 bp-fragmentet inneholder bare HincII, Bglll og EcoRI-punkter på 3.300 bp Hindlll-gjær-DNA-innsats i pMC200; begynnelseskodonet for OCT-proteinkodesekvensen antas å være det boksede ATG-kodon. Innføring i HincII, Bglll eller EcoRI-punktene i gjær- The nucleotide sequence of part of the arg3 gene containing part of the N-terminal coding sequences for ornithine carbamoyl transferase (OCT) and part of the 5<1>untranslated leader region here determined by Huyghen et al., Arch. International Physical. Biochem., Vol 89, B172 (1981). Figure 4 illustrates a 210 bp fragment of known sequence. The 210 bp fragment contains only HincII, BglII and EcoRI sites of the 3,300 bp HindIII yeast DNA insert in pMC200; the start codon for the OCT protein coding sequence is assumed to be the boxed ATG codon. Introduction into the HincII, Bglll or EcoRI sites of the yeast

DNA for kodesekvenser for HBsAg alene eller HBsAg-forstadium pluss HBsAg avledet fra klonet HBV DNA forventes å resultere i en genefusjon og fremstilling av et hybridprotein trans-kribert og translatert fra arg3-reguleringsområdet forutsatt at genefusjonen har korrekt orientering for fortsatt translasjon forbi fusjonspunktet. Eksempel 5 Fremstilling av mellomproduktplasmider, pRIT10671 og pRIT-106 72, inneholdende HBsAg og reguleringsområder ved kombinasjon av pRITl0641 med pMC200. DNA for coding sequences for HBsAg alone or HBsAg precursor plus HBsAg derived from cloned HBV DNA is expected to result in a gene fusion and production of a hybrid protein transcribed and translated from the arg3 regulatory region provided the gene fusion has the correct orientation for continued translation past the fusion point. Example 5 Production of intermediate plasmids, pRIT10671 and pRIT-106 72, containing HBsAg and regulatory regions by combining pRIT10641 with pMC200.

pMC200, 5 ug ble brutt med 6,4 enheter Bglll i 2,5 timer ved 37°C, fortynnet med samme volum av en puffer (pH 10,5) inneholdende 0,1 M glycin, 0,01 M MgCl26H20 og 0,1 mM ZnCl2, og inkubert med 0,5 enheter kalveinnvollsalkalisk fosfatase i 30 minutter ved 37°C for å fjerne 5' terminale fosfatrester.Blandingen ble ekstrahert to ganger med puffer-mettet fenol og tre ganger med eter. DNA-et ble utfelt med etanol og oppløst i 0,01 M trometaminpuffer (pH 7,5). pMC200, 5 µg was digested with 6.4 units of BglII for 2.5 h at 37°C, diluted with the same volume of a buffer (pH 10.5) containing 0.1 M glycine, 0.01 M MgCl 2 6 H 2 O and 0, 1 mM ZnCl2, and incubated with 0.5 units of calf intestinal alkaline phosphatase for 30 minutes at 37°C to remove 5' terminal phosphate residues. The mixture was extracted twice with buffer-saturated phenol and three times with ether. The DNA was precipitated with ethanol and dissolved in 0.01 M tromethamine buffer (pH 7.5).

pRIT10640, 25 pg, ble brutt med BamHI for å skjære ut 1.350 bp BamHI-fragmentet av HBV DNA. 1.350 bp-fragmentet ble renset ved preparativ agarosegelelektroforese og elektroeluering. Det eluerte DNA ble fjernet og konsentrert ved etanolutfelling og oppløst i 20 pl 0,01 M trometaminpuffer (pH 7,0). En 0,3 pg alikvot av BamHI-fragmentet, som inneholder HBsAg-kodesekvensen ble blandet med 0,5 pg Bglll-brutt pMC200 og blandingen ble ligert ved inkubering med T4 DNA-ligase. pRIT10640, 25 pg, was digested with BamHI to excise the 1,350 bp BamHI fragment of HBV DNA. The 1,350 bp fragment was purified by preparative agarose gel electrophoresis and electroelution. The eluted DNA was removed and concentrated by ethanol precipitation and dissolved in 20 µl of 0.01 M tromethamine buffer (pH 7.0). A 0.3 pg aliquot of the BamHI fragment containing the HBsAg coding sequence was mixed with 0.5 pg of BglII-cut pMC200 and the mixture was ligated by incubation with T4 DNA ligase.

Det ligerte DNA ble brukt til å transformere kompetente celler av E. coli K12-stamme MM294 . Trans formanter ble utvalgt på agarplater inneholdende 200 pg/ml ampicillin. Tolv resistente kolonier ble isolert ved passasje i serie på ampicillinagar og plasmider ble isolert ved den fremgangsmåte som er beskrevet av Birnboim et al., Nucl. Acid. Res., bind 7, 1513 (1979). Analyse ved agarosegelelektroforese viste at alle plasmidene ble kappet av Hpal, en indikasjon på innsettning av BamHI-fragmentet og at begge orienteringer av det fragment forelå blant tolv transformerte kolonier. Plasmidene ble isolert ved CsCl-etidiumbromid-densitets-gradientsentrifugering. Et plasmid pRITl0671 inneholdt BamHI-fragmentet sammensmeltet på Bglll-punktet i korrekt orientering for transkripsjon av HBsAg -kodesekvensen som gir et 386 aminosyrefusjonsprotein bestående av 18 N- ! terminale aminosyrer av OCT, 42 aminosyrer av det antatte<1>HBsAg-forstadiumsprotein og de 226 aminosyrene av HBsAg. Fusjonsproteinet er HBsAg som vist i eksempel 8 nedenunder. Transformanter inneholdende pRIT106 71 kalles E. coli Kl2-stamme MM294(pRITl0671). pRIT10671 er illustrert i figur 5. The ligated DNA was used to transform competent cells of E. coli K12 strain MM294. Transformants were selected on agar plates containing 200 pg/ml ampicillin. Twelve resistant colonies were isolated by serial passage on ampicillin agar and plasmids were isolated by the method described by Birnboim et al., Nucl. Acid. Res., Vol. 7, 1513 (1979). Analysis by agarose gel electrophoresis showed that all plasmids were cleaved by HpaI, an indication of insertion of the BamHI fragment and that both orientations of that fragment were present among twelve transformed colonies. The plasmids were isolated by CsCl-ethidium bromide density gradient centrifugation. A plasmid pRIT10671 contained the BamHI fragment fused at the Bglll point in the correct orientation for transcription of the HBsAg coding sequence yielding a 386 amino acid fusion protein consisting of 18 N-! terminal amino acids of OCT, 42 amino acids of the putative<1>HBsAg precursor protein and the 226 amino acids of HBsAg. The fusion protein is HBsAg as shown in Example 8 below. Transformants containing pRIT106 71 are called E. coli K12 strain MM294(pRIT10671). pRIT10671 is illustrated in Figure 5.

Bruk av pRIT106 40 som et mellomproduktplasmid er ikke vesentlig. F.eks. kunne BamHI-fragmentet være skåret ut fra pRIT10616. Use of pRIT106 as an intermediate plasmid is not essential. E.g. the BamHI fragment could be excised from pRIT10616.

Et annet plasmid, pRIT10672, inneholdt BamHI-fragmentet i feilaktig orientering for transkripsjon av HBsAg-kode-sekvensen. Trans formanter inneholdende dette plasmid kalles E. coli K12-stamme MM294(pRIT10672). Another plasmid, pRIT10672, contained the BamHI fragment in the wrong orientation for transcription of the HBsAg coding sequence. Trans formants containing this plasmid are called E. coli K12 strain MM294(pRIT10672).

Eksempel 6Example 6

Fremstilling av plasmider, pRIT10673 og pRIT10674 pendel-vekto rer, ved å kombinere pRIT10671 og pRIT10672 med pendelvektor YEpl3. Preparation of plasmids, pRIT10673 and pRIT10674 shuttle vectors, by combining pRIT10671 and pRIT10672 with shuttle vector YEpl3.

Vektor YEpl3 er en E. coli- S. cerevisiae pendelvektor. Den er beskrevet av Broach et al, Gene, bind 8, 121 (1979). Vector YEpl3 is an E. coli- S. cerevisiae shuttle vector. It is described by Broach et al, Gene, vol. 8, 121 (1979).

Den ble levert av J. Hicks, Cold Spring Harbor Laboratories, New York, U.S.A. Et lite HindIII-fragment ble skåret ut fra plasmidet ved brytning med Hindlll og plasmidet ble re-ligert for å fremstille et avledet plasmid, YEpl3 Hindlll som inneholder ett enkelt Hindlll-punkt. Renset YEpl3 Hindlll ble brutt med Hindlll og behandlet med alkalisk fosfatase for å inhibere religering. DNA ble gjenvunnet ved fenolekstråksjon og etanolutfelling. It was provided by J. Hicks, Cold Spring Harbor Laboratories, New York, USA. A small HindIII fragment was excised from the plasmid by digestion with HindIII and the plasmid was religated to produce a derivative plasmid, YEpl3 HindIII containing a single HindIII site. Purified YEpl3 HindIII was digested with HindIII and treated with alkaline phosphatase to inhibit religation. DNA was recovered by phenol extraction and ethanol precipitation.

Renset pRIT10671 og pRITl0672 ble brutt med BamHI og behandlet med alkalisk fosfatase for å inhibere ny dannelse av pBR322-resten. Det behandlede DNA ble videre brutt med Hindlll for å frigjøre et 4.650 bp HindIII-fragment, som inneholder reguleringsområde-HBsAg-genfusjonen, og prøver ble ekstrahert med fenol og utfelt med etanol. DNA-prepa-'ratene som stammet fra pRIT106 71 og pRIT106 72 , 0 ,4 ug av hver, ble separat blandet med 0,4 ug Hindlll-brutt YEpl3 Hindlll og blandingene ble inkubert med T4 DNA-ligase. Purified pRIT10671 and pRIT10672 were digested with BamHI and treated with alkaline phosphatase to inhibit new formation of the pBR322 residue. The treated DNA was further digested with HindIII to release a 4,650 bp HindIII fragment, containing the regulatory region-HBsAg gene fusion, and samples were extracted with phenol and precipitated with ethanol. The DNA preparations derived from pRIT106 71 and pRIT106 72, 0.4 µg of each, were separately mixed with 0.4 µg of HindIII fragmented YEpl3 HindIII and the mixtures were incubated with T4 DNA ligase.

En del av hver av de ligerte blandinger ble brukt for å transformere kompetente celler av E. coli K12-stamme MM2 94. Transformanter ble utvalgt på amficillinagar. Transfor-mantkolonier ble isolert og undersøkt med hensyn til plas-midinnhold ved fremgangsmåten beskrevet av Birnboim et al., Nucl. Acid. Res., bind 7, 1513 (1979). En trans formant-koloni, E. coli K12-stamme MM294(pRITi10673), inneholdt et plasmid, pRIT10673, som inneholder HindIII-fragmentet fra pRIT106 71 innsatt på YEpl3 Hindlll, i korrekt orientering som illustrert i figur 6. En annen transformantkoloni, E. coli K12-stamme MM294 (pRIT10674), inneholdt et plasmid pRIT10674 som inneholder HindIII-fragmentet fra pRIT10672 innsatt på YEpl3 Hindlll i feilaktig orientering. A portion of each of the ligated mixtures was used to transform competent cells of E. coli K12 strain MM2 94. Transformants were selected on amphicillin agar. Transformant colonies were isolated and examined for plasmid content by the method described by Birnboim et al., Nucl. Acid. Res., Vol. 7, 1513 (1979). One transformant colony, E. coli K12 strain MM294(pRITi10673), contained a plasmid, pRIT10673, containing the HindIII fragment from pRIT106 71 inserted into YEpl3 HindIII, in the correct orientation as illustrated in Figure 6. Another transformant colony, E .coli K12 strain MM294 (pRIT10674), contained a plasmid pRIT10674 containing the HindIII fragment from pRIT10672 inserted into YEpl3 HindIII in the wrong orientation.

Eksempel 7Example 7

Transformering av gjær med pRIT10673 og pRIT10674. Transformation of yeast with pRIT10673 and pRIT10674.

Plasmider pRIT10673 og pRIT10674 ble isolert fra klarede lysater av E. coli K12-stamme MM294(pRIT10673) og MM294 (pRITl06 74) med CsCl-etidiumbromid-densitetsgradient-sentrifugering. Plasmids pRIT10673 and pRIT10674 were isolated from clarified lysates of E. coli K12 strain MM294(pRIT10673) and MM294 (pRIT10674) by CsCl-ethidium bromide density gradient centrifugation.

A. S. cerevisiae-stammen DC5.A. S. cerevisiae strain DC5.

S. cerevisiaestammen DC5 ( leu 2-3, leu 2-112, his 3, can 1-11) beskrevet av Broach et al., Gene, bind 8, 121 (1979) erholdtes fra J. Hicks, Cold Spring Harbor Laboratories, New York, U.S.A. og ble deponert ifølge EPC-bestemmelsene og Budapest Treat hos American Type Culture Collection i Rockville, Maryland, U.S.A. 2. juni 1982 under tilgjengelighetsnummer ATCC 206 30. Celler av stammen DC5 ble dyrket og klargjort for transformasjon ved metodene beskrevet av Hinnen et al., Proe. Nati. Acad. Sei. U. S. A., bind 75, The S. cerevisiae strain DC5 (leu 2-3, leu 2-112, his 3, can 1-11) described by Broach et al., Gene, vol. 8, 121 (1979) was obtained from J. Hicks, Cold Spring Harbor Laboratories, New York, U.S.A. and was deposited under the EPC provisions and the Budapest Treat at the American Type Culture Collection in Rockville, Maryland, U.S.A. June 2, 1982 under accession number ATCC 206 30. Cells of strain DC5 were cultured and prepared for transformation by the methods described by Hinnen et al., Proe. Nati. Acad. Pollock. U. S. A., Volume 75,

1929 (1978) bortsett fra at protoplastering ble foretatt i 0,8 M sorbitol, 0,03 M (3-merkaptoe tanol, og 0,1 M kalium-fosfatpuffer (pH 7,5) ved bruk av en blanding av (3-gluco- 1929 (1978) except that protoplastization was carried out in 0.8 M sorbitol, 0.03 M (3-mercaptoethanol, and 0.1 M potassium phosphate buffer (pH 7.5) using a mixture of (3- gluco-

uronidase (0,24 enheter/ml sluttkonsentrasjon) og aryl-sulfatase (1,2 enheter/ml sluttkonsentrasjon). Gjærproto-plaster ble inkubert separat med 10 ug pRITl0673 og 10 ug pRIT106 74 og transformanter ble utvalgt i regenererings- uronidase (0.24 units/ml final concentration) and aryl-sulfatase (1.2 units/ml final concentration). Yeast protoplasts were incubated separately with 10 µg pRIT10673 and 10 µg pRIT106 74 and transformants were selected in regeneration

agar som manglet leucin. Kolonier som grodde i regenerer-ingsagaren ble isolert og streket på fast medium inneholdende 0,6 75 % gjærnitrogenbasemedium manglende aminosyrer, 2 % glucose, 2 % agar og 80 ug/ml histidin og ble dyrket ved 30°C. En koloni av stammen DC5 hadde blitt transformert med pRIT106 73 og kalles S. cerevisiae stamme DC5 (pRIT10673). En annen koloni var blitt transformert med pRITl0674 og kalles S. cerevisiae stamme DC5(pRITl0674). agar that lacked leucine. Colonies growing in the regeneration agar were isolated and streaked onto solid medium containing 0.6 75% yeast nitrogen base medium lacking amino acids, 2% glucose, 2% agar and 80 µg/ml histidine and were grown at 30°C. A colony of strain DC5 had been transformed with pRIT106 73 and is called S. cerevisiae strain DC5 (pRIT10673). Another colony had been transformed with pRIT10674 and is called S. cerevisiae strain DC5(pRIT10674).

Kulturer av stammene DC5(pRITl0673) og DC5(pRIT10674) ble dyrket i gjærnitrogenbasemdium pluss 80 ug/ml histidin opptil optiske densiteter på 0,33 til 1,0 ved 620 pm. Sistnevnte stamme kan brukes som en negativ kontroll fordi den inneholder HBsAg-kodesekvensen sammensmeltet i feilaktig orientering til reguleringsområdet. Celler ble isolert ved sentrifugering, vasket med fosfatpufferet saltvann (PBS) og suspendert igjen i 5 ml PBS pluss ImM fenylmetyl-sulfonylfluorid (PMSF) ved 20 til 160 gangers konsentrasjoner. Celler ble brutt ved to passasjer gjennom en French trykk-celle ved 83 MPa og lysatet sentrifugert ved 7.700 x G i 15 minutter og deretter i 30 minutter ved 30.000 x G. Supernatantene ble isolert og filtrert over en Millex GV membran. Cultures of strains DC5(pRIT10673) and DC5(pRIT10674) were grown in yeast nitrogen base medium plus 80 µg/ml histidine to optical densities of 0.33 to 1.0 at 620 µm. The latter strain can be used as a negative control because it contains the HBsAg coding sequence fused in the wrong orientation to the regulatory region. Cells were isolated by centrifugation, washed with phosphate-buffered saline (PBS) and resuspended in 5 ml PBS plus 1mM phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) at 20- to 160-fold concentrations. Cells were broken by two passages through a French pressure cell at 83 MPa and the lysate centrifuged at 7,700 x G for 15 minutes and then for 30 minutes at 30,000 x G. The supernatants were isolated and filtered over a Millex GV membrane.

Supernatanter ble undersøkt for nærvær av protein som reagerte med spesifike anti-HBsAg-antistoffer ved "Ausria" radioimmunologiske bestemmelsesmetoder. Klarede celle-ekstrakter fra S. cerevisiae stamme DC5(pRITl0673) fremstilt på denne måten ga positive reaksjoner i denne radio-logiske immunologiske bestemmelsen selv ved 16 til 256 gangers fortynninger i PBS. Derimot var ekstrakter av stammen DC5(pRIT10674) negative i denne målingen for nærvær av proteiner som reagerer med anti-HBsAg-antistoffer. Supernatants were examined for the presence of protein reacting with specific anti-HBsAg antibodies by "Ausria" radioimmunological assay methods. Cleared cell extracts from S. cerevisiae strain DC5(pRIT10673) prepared in this way gave positive reactions in this radiological immunological assay even at 16 to 256 fold dilutions in PBS. In contrast, extracts of strain DC5(pRIT10674) were negative in this assay for the presence of proteins that react with anti-HBsAg antibodies.

l l

B. S. cerevisiae-stamme lcl6 9 7d B. S. cerevisiae strain lcl6 9 7d

S. cerevisiaestamme lcl697d ble deponert ifølge EPC-bestemmelsene og Budapest Treaty hos American Type Culture Collection 2. juni 1982 under tilgjengelighetsnummer ATCC 2 06 3-1. Ved å bruke de ovenfor beskrevne metoder ble arginin bradytrof-stamme lcl69 7d ( argJ -, leu 2-1) transformert med pRITl0673 og pRIT10674. En leucin-uavhengig koloni av den bradytrofe stamme var blitt transformert med pRIT10673 og kalles S. cervisiaestamme lcl697d(pRIT-10673). En annen leucin-uavhengig koloni som var blitt transformert med pRIT106 74 kalles S. cerevisiaestamme lcl697d(pRITl0674). S. cerevisiae strain lcl697d was deposited under the EPC provisions and the Budapest Treaty with the American Type Culture Collection on June 2, 1982 under accession number ATCC 2 06 3-1. Using the methods described above, arginine bradytroph strain lcl69 7d ( argJ -, leu 2-1 ) was transformed with pRIT10673 and pRIT10674. A leucine-independent colony of the bradytrophic strain had been transformed with pRIT10673 and is called S. cervisiae strain lcl697d(pRIT-10673). Another leucine-independent colony that had been transformed with pRIT106 74 is called S. cerevisiae strain lcl697d(pRIT10674).

Kulturer av stammene lcl697d(pRIT10673) og lcl697d(pRIT-106 74) ble dyrket i gjærnitrogenbasemedium tilsatt 20 ug/ml arginin. Cellene ble isolert og celle-ekstraktet fremstilt som beskrevet ovenfor. Klarede celle-ekstrakter av stamme lcl697d(pRIT10673) ga positive resultater i "Ausria" radioimmunologisk måling ved fortynninger opptil 1/2048, mens ekstrakter av stammen lcl697d(pRIT10674) var gjennomgående negative i denne måling. Cultures of strains lcl697d(pRIT10673) and lcl697d(pRIT-106 74) were grown in yeast nitrogen base medium supplemented with 20 µg/ml arginine. The cells were isolated and the cell extract prepared as described above. Cleared cell extracts of strain lcl697d(pRIT10673) gave positive results in the "Ausria" radioimmunoassay at dilutions up to 1/2048, while extracts of strain lcl697d(pRIT10674) were consistently negative in this assay.

Fra disse resultater kan man slutte at gjærceller av stammene DC5 og lcl697d transformert med pRIT10673 spesifikt syntetiserer HBsAg i form av et fusjonsprotein med HBsAg-determi-nanter. From these results it can be concluded that yeast cells of the strains DC5 and lcl697d transformed with pRIT10673 specifically synthesize HBsAg in the form of a fusion protein with HBsAg determinants.

Eksempel 8Example 8

Immunisering av kaniner med HBsAg fra S. cerevisiaestamme lc! 697d( pRITl0673). Immunization of rabbits with HBsAg from S. cerevisiae strain lc! 697d (pRITl0673).

S. cerevisiaestamme lcl697d(pRITl0673) ble dyrket opptil en optisk densitet ved 620 um på 0,60 og isolert ved sentrifugering. Cellene ble suspendert igjen ved en 40 gangers konsentrasjon i PBS pluss 1 mil PMSF. Et klaret celle-ekstrakt ble fremstilt som beskrevet i eksempel 7. Et klaret celle-ekstrakt av stamme lcl697d(pRITl0674) ble fremstilt på lignende måte. Disse ekstrakter ble brukt 'for å immunisere kaniner. En første gruppe på seks kaniner fikk parenteral injeksjoner med 1 ml ekstrakt fra stamme lcl697d (pRITl0673) blandet med 1 ml Freund's "complete adjuvant" S. cerevisiae strain lcl697d(pRIT10673) was grown to an optical density at 620 µm of 0.60 and isolated by centrifugation. The cells were resuspended at a 40-fold concentration in PBS plus 1 ml PMSF. A clarified cell extract was prepared as described in Example 7. A clarified cell extract of strain lcl697d(pRIT10674) was prepared in a similar manner. These extracts were used to immunize rabbits. A first group of six rabbits received parenteral injections with 1 ml of extract from strain lcl697d (pRITl0673) mixed with 1 ml of Freund's "complete adjuvant"

på dagene 0, 9, 15, 30 og 37. En andre gruppe på tre kaniner fikk parenteral injeksjoner av 1 ml ekstrakt fra stamme lcl697d(pRIT10674) blandet med 1 ml Freund's "complete adjuvant" på de samme dager. Sera erholdtes fra begge grupper på dagene 0 (pre-immun), 23, 51 og 65, og fra den første gruppe på dag 44, og undersøkt for nærvær av anti-HBsAg-antistoffer ved bruk av "Ausab" radioimmunologisk måling. Resultatene av disse målinger som er gitt i tabell 1 viser at 4 av 6 kaniner som får injeksjoner av ekstrakt fra stamme lcl697d(PRIT10673) produserte antistoffer rettet mot HBsAg. Ingen av de tre kontrollkaniner som fikk injeksjoner av ekstrakt fra stamme lcl697d(pRIT10674) viste tegn på produksjon av anti-HBsAg-antistoffer. Fra disse resultater kan man slutte at ekstrakter av stamme lcl697d(pRITl0673) inneholder HBsAg, hvilket kan brukes i en vaksine for å stimulere beskyttelse mot HBV-infeksjon hos mennesker uten alvorlige bivirkninger. on days 0, 9, 15, 30 and 37. A second group of three rabbits received parenteral injections of 1 ml extract from strain lcl697d(pRIT10674) mixed with 1 ml Freund's "complete adjuvant" on the same days. Sera were obtained from both groups on days 0 (pre-immune), 23, 51 and 65, and from the first group on day 44, and examined for the presence of anti-HBsAg antibodies using the "Ausab" radioimmunological assay. The results of these measurements given in table 1 show that 4 out of 6 rabbits receiving injections of extract from strain lcl697d(PRIT10673) produced antibodies directed against HBsAg. None of the three control rabbits that received injections of extract from strain lcl697d(pRIT10674) showed signs of production of anti-HBsAg antibodies. From these results, it can be concluded that extracts of strain lcl697d(pRITl0673) contain HBsAg, which can be used in a vaccine to stimulate protection against HBV infection in humans without serious side effects.

Eksempel 9 Fremstilling av plasmid, pRIT10749 inneholdende arg3 reguleringsområde fra pMC200. Example 9 Preparation of plasmid, pRIT10749 containing arg3 regulatory region from pMC200.

Renset pMC2 00 ble brutt med HincII og elektroforesebe-handlet på en 10 % akrylamidgel. Et 1.940 bp-fragment inneholdende arg3-reguleringsområde ble isolert fra gelen ved elektroeluering og etanolutfelling. Ca. 4 ug av fragmentet ble inkubert med 0,2 enheter Bal31 eksonuklease i 1 til 3 sekunder ved 30°C i 100 ul puffer (pH 8,0) inneholdende 12,5 mM MgCl2, 12,5 mM CaCl2, 200 mM NaCl, 1 mM EDTA og 200 mM trometamin-HCl. Det behandlede DNA ble ekstrahert med fenol og utfelt med etanol. En 1 ug alikvot ble inkubert med T4 DNA-polymerase i nærvær av deoksynukleotidtrifosfater for å reparere alle enkelt-båndsekstremiteter og ble så brutt med EcoRI-endonuklease. Denne fremgangsmåte ga DNA-fragmenter med varierende lengde som skyldtes reseksjon-ering med Bal31. Hvert fragment hadde en fast EcoRI-utstrekning på en ende idet den andre ekstremitet var avkuttet og befant seg med en viss avstand fra det opprinnelige HincII-punkt og OCT-proteininjiseringskodonet. Fragmenter på ca. 1.480 bp inneholdende arg3-reguleringsområde ble isolert ved elektroforese på en 7,5 % akrylamidgel fulgt av elektroeluering og etanolutfelling. Denne tilbakeskårende reguleringsregionen foretrekkes fordi den kan gi transkripsjon som fører til syntese av et protein uten OCT-aminosyresekvenser som beskrevet i eksempel 10 nedenunder. Purified pMC200 was digested with HincII and electrophoresed on a 10% acrylamide gel. A 1,940 bp fragment containing the arg3 regulatory region was isolated from the gel by electroelution and ethanol precipitation. About. 4 µg of the fragment was incubated with 0.2 units of Bal31 exonuclease for 1 to 3 seconds at 30°C in 100 µl of buffer (pH 8.0) containing 12.5 mM MgCl2, 12.5 mM CaCl2, 200 mM NaCl, 1 mM EDTA and 200 mM tromethamine-HCl. The treated DNA was extracted with phenol and precipitated with ethanol. A 1 µg aliquot was incubated with T4 DNA polymerase in the presence of deoxynucleotide triphosphates to repair all single-stranded ends and then digested with EcoRI endonuclease. This procedure yielded DNA fragments of varying length due to resection with Bal31. Each fragment had a fixed EcoRI stretch on one end with the other extremity truncated and located some distance from the original HincII site and the OCT protein injection codon. Fragments of approx. 1,480 bp containing arg3 regulatory region was isolated by electrophoresis on a 7.5% acrylamide gel followed by electroelution and ethanol precipitation. This backsplitting regulatory region is preferred because it can provide transcription leading to the synthesis of a protein without OCT amino acid sequences as described in Example 10 below.

I en andre reaksjonsserie ble pMC200 brutt med Xbal ogIn a second series of reactions, pMC200 was digested with XbaI and

5' enkelt-båndekstremitetene ble oppfylt eller latt være avkuttet, ved inkubering med T4 DNA-polymerase og deoksy-nukleotidtrif osf ater . Dette DNA ble brutt med EcoRI og et stort EcoRi-T4/Xbal-fragment på ca. 5.700 bp inneholdende gjær-DNA-sekvenser som befant seg 3' til Xbal-punktet, pluss pBR322-sekvenser, ble renset ved elektroforese, elektroeluering og etanolutfelling. Dette fragment ble blandet med og ligert til 1.480 bp-promotorholdige fragmenter. I The 5' single-stranded ends were filled in, or left truncated, by incubation with T4 DNA polymerase and deoxynucleotide triphosphates. This DNA was digested with EcoRI and a large EcoRi-T4/XbaI fragment of approx. 5,700 bp containing yeast DNA sequences located 3' to the XbaI point, plus pBR322 sequences, were purified by electrophoresis, electroelution and ethanol precipitation. This fragment was mixed with and ligated to 1,480 bp promoter-containing fragments. IN

Ligeringsblandingen ble brukt til å transformere kompetente celler av E. coli K12-stamme MM294 . Trans formanter ble utvalgt på ampicillinagar. Plasmid DNA ble isolert fra trans-formantkolonier ved den metode som er beskrevet av Birnboim et al., Nucl. Acid. Res., bind 7, 1513, (1979) og man under-søkte om et Xbal-punkt forelå ved brytning med Xbal. Et The ligation mixture was used to transform competent cells of E. coli K12 strain MM294. Transformants were selected on ampicillin agar. Plasmid DNA was isolated from trans-formant colonies by the method described by Birnboim et al., Nucl. Acid. Res., volume 7, 1513, (1979) and it was investigated whether an Xbal point was present at refraction with Xbal. One

Xbal-punkt forelå bare i slike plasmider hvor det innfylte Xbal-punkt på et fragment fra de andre serier av reaksjoner var ligert til et annet fragment fra de første serier som sluttet i en 3' T-rest for å restaurere en Xbal-gjenkjennelsessekvens, TCTAGA, i en ny stilling. Et plasmid med et Xbal-punkt ble identifisert som pRIT10749. Et flytediagram som illustrerer disse manipulasjoner finnes på figur 6. E. coli Kl2-stamme MM2 9 4 (pRIT10749) ble deponert ifølge EPC-bestemmelsene og Budapest Treaty hos American Type Culture Collection, Rockville, Maryland, U.S.A. av 2. juni 1982 under tilgjengelighetsnummer ATCC 39133. XbaI point was present only in such plasmids where the filled XbaI point on a fragment from the second series of reactions was ligated to another fragment from the first series ending in a 3' T residue to restore an XbaI recognition sequence, TCTAGA, in a new position. A plasmid with an XbaI point was identified as pRIT10749. A flowchart illustrating these manipulations can be found in Figure 6. E. coli Kl2 strain MM2 9 4 (pRIT10749) was deposited under the EPC provisions and the Budapest Treaty at the American Type Culture Collection, Rockville, Maryland, U.S.A. of June 2, 1982 under accession number ATCC 39133.

En prøve av pRIT10749 ble brutt med en kombinasjon av BstEII og Xbal. Størrelsen av det deleterte arg 3 regluerings-område ble anslått til å være ca. 210 bp i sammenligning med pMC200 som ble brutt på lignende måte med BstEII og Xbal og ved referanse til de kjente molekylvekter av fragmenter av fag(£) xl74 DNA beskrevet av Fuchs et al. Gene, bind 4, 1, A sample of pRIT10749 was digested with a combination of BstEII and XbaI. The size of the deleted arg 3 regulatory region was estimated to be approx. 210 bp in comparison with pMC200 which was similarly digested with BstEII and XbaI and by reference to the known molecular weights of fragments of phage(£)xl74 DNA described by Fuchs et al. Genes, Volume 4, 1,

(1978). (1978).

For å bestemme DNA-sekvensen av BstEII-Xbal-fragmentet av pRIT10749 ble plasmid DNA brukt med BstEII, markert med To determine the DNA sequence of the BstEII-XbaI fragment of pRIT10749, plasmid DNA was used with BstEII, marked with

3 2 3 2

Y- P-ATP ved utskiftning og brutt med Bam HI endonuklease for frigjøring av et 2000 bp-fragment som ble renset ved elektroeluering og etanolutfelling. DNA-sekvenstering av det markerte fragment ble utført ifølge den kjemiske modifika-sjonsmetode beskrevet av Maxam et al., Methods in Enzymology, bind 65, 499 (1980). En del av denne sekvens ble funnet å væ-re CCCATCAACTTGTACACTCGT CTAGA. De understrekete nukleotider stammet fra 5700 pb EcoRI-T4/Xbal-fragmentet. Sammenligning med det riktige område av DNA-sekvensen vist i fig. 4 indikerer at det restaurerte Xbal-punkt befinner seg i det 5'-ikke-translaterte førerområde ni nukleotider oppstrøms for det opprinnelige HincII-punkt i pMC200 Gjær-DNA-innsatsen. Y-P-ATP by replacement and cleaved with Bam HI endonuclease to release a 2000 bp fragment that was purified by electroelution and ethanol precipitation. DNA sequencing of the labeled fragment was performed according to the chemical modification method described by Maxam et al., Methods in Enzymology, vol. 65, 499 (1980). Part of this sequence was found to be CCCATCAACTTGTACACTCGT CTAGA. The underlined nucleotides were from the 5700 bp EcoRI-T4/XbaI fragment. Comparison with the correct region of the DNA sequence shown in fig. 4 indicates that the restored XbaI site is located in the 5' untranslated leader region nine nucleotides upstream of the original HincII site in the pMC200 Yeast DNA insert.

EKSEMPEL 10.EXAMPLE 10.

Fremstilling av plasmider, pRIT10759 og pRIT10761, inneholdende BHsAg og reguleringsområder, ved å kombinere pRIT10749 med pRIT10601 Preparation of plasmids, pRIT10759 and pRIT10761, containing BHsAg and regulatory regions, by combining pRIT10749 with pRIT10601

pRIT10601 ble brutt med Hhal endonuklease og elictroforesebehand-let på en 7,5 % akrylamidgel. Et 1100 bp-fragment ble isolert ved elektroeluering og etanolutfelling. DNA-sekvensen til en del av dette fragment inneholder sekvenser tilsvarende den kjente N-terminal-aminosyresekvens av BHsAg av ayw-serotypen som beskrevet av Peterson et al., Viral Hepatitis, G. N. Vyas, S.N. Cohen and R. Schmid, Eds., Franklin Institute Press, Philadelphia, U.S.A., 1978, s. 569. Fragmentet inneholder 6 nukleotider som befinner seg 5' til BHsAg-påbegyn-nelseskodonet, den fullstendig HBsAg kode-sekvens og ca. 390 3' ikke-translaterte nukleotider....Ii pRIT10601 was digested with Hhal endonuclease and electrophoresed on a 7.5% acrylamide gel. A 1100 bp fragment was isolated by electroelution and ethanol precipitation. The DNA sequence of part of this fragment contains sequences corresponding to the known N-terminal amino acid sequence of BHsAg of the ayw serotype as described by Peterson et al., Viral Hepatitis, G.N. Vyas, S.N. Cohen and R. Schmid, Eds., Franklin Institute Press, Philadelphia, U.S.A., 1978, p. 569. The fragment contains 6 nucleotides located 5' to the BHsAg start codon, the complete HBsAg coding sequence and approx. 390 3' untranslated nucleotides....Ii

DNA av plasmid pRITI10749 ble brutt med Xbal og ca. 400 ng 1 av dette DNA ble blandet med ca. 280 ng av det rensete Hhal-fragment. Blandingen ble inkubert med 0,5 enheter T4 DNA-polymerase i 30 minutter ved 37°C i 20 ul puffer (pH 7,5) inneholdende 20 mM trometamin-HCl, 10 mM MgCl2, 1 mM ditiotreitol og 3 3 mM av hver av dATP, dCTP, dGTP og dTTP. Denne reaksjonsblandingen ble tilsatt 2,5 jul av 1 mM ATP, 2,5 yul av 10 mM EDTA og 2 pl (2 enheter) av T4 DNA-ligase, og blandingen ble inkubert i 16 timer ved 15°C. DNA of plasmid pRITI10749 was digested with XbaI and approx. 400 ng 1 of this DNA was mixed with approx. 280 ng of the purified Hhal fragment. The mixture was incubated with 0.5 units of T4 DNA polymerase for 30 min at 37°C in 20 µl of buffer (pH 7.5) containing 20 mM tromethamine-HCl, 10 mM MgCl 2 , 1 mM dithiothreitol and 3 3 mM of each of dATP, dCTP, dGTP and dTTP. To this reaction mixture was added 2.5 µl of 1 mM ATP, 2.5 µl of 10 mM EDTA and 2 µl (2 units) of T4 DNA ligase, and the mixture was incubated for 16 hours at 15°C.

Den ligerte blanding ble brukt for å transformere kompetente celler av E_. coli K12 stamme MM294 idet seleksjon ble foretatt etter ampicillin-resistente transformanter. Plas-midpreparater ble laget fra flere av disse transformanter og analysert ved restriksjonsendonuklease-brytning og gelelek-troforese. Resultatene viste at HBV-fragment med avkappet ende var innsatt i begge mulige orienteringer i det Xbal-brut-te pRIT10749. Ett slikt plasmid, pRIT10761 inneholdt 1100 bp-innsatsen i riktig orientering for transkripsjon av HBsAg-sekvensen fra arg<3->promotoren og ga et 271 bp-fragment etter sekvens-brytning med BstEII og Xbal. Dette er illustrert i fig. 7. Et annet plasmid, pRIT10759 inneholdt innsatsen i feilaktig orientering og ga opphav til et anslagsvis 1175 bp-fragment etter brytning med en kombinasjon av BstEII og Ybal endonukleaser. Nukleotid-sekvensen ved arg 3 regulerxngsom-råde-HBsAg-innsatsforbindelsen ble undersøkt for pRIT10761 ved sekventering av 271 bp BstEII-Xbal-fragment under bruk av de kjemiske modifikasjonsmetoder til Maxam et al., Me-thod s in Enzymology, bind 65, 499 (1980), etter utskiftnings-markering av Xbal enden med y~ 32P-ATP. Den målte sekvens for arg 3-reguleringsområdet - HBsAg-forbindelsen er TACACTCGTCTACTGAAC ATG. Man kan se at Xbal-restriksjonspunktet ikke var fullstendig reparert ved T4-DNA-polymerasen og at en guanm-rest var tapt. Det arg 3-ikke-translaterte le-derområde etterfølges umiddelbart av 6 nukleotider av HBV-opprinnelse, CTGAAC, fulgt av HBsAg-initieringskodonet, ATG, og kodesekvensen for HBsAg-strukturgenet. HBsAg-initieringskodonet er det første initieringskodon man finner nedstrøms for arg 3 -promotoren. Derfor vil translasjon av mRNA-tranIs-_ skribert fra DNA begynne ved det kodon ogHBsAg som syntetiseres vil mangle utvendige aminosyrerester. HBsAg som syntetiseres er ikke et fusjonsprotein; det er i det vesentlige strukturelt identisk med autentisk HBsAg. The ligated mixture was used to transform competent cells of E_. coli K12 strain MM294 as selection was made for ampicillin-resistant transformants. Plasmid preparations were made from several of these transformants and analyzed by restriction endonuclease digestion and gel electrophoresis. The results showed that the truncated HBV fragment was inserted in both possible orientations in the XbaI-broken pRIT10749. One such plasmid, pRIT10761 contained the 1100 bp insert in the correct orientation for transcription of the HBsAg sequence from the arg<3-> promoter and yielded a 271 bp fragment after sequence digestion with BstEII and XbaI. This is illustrated in fig. 7. Another plasmid, pRIT10759 contained the insert in the wrong orientation and gave rise to an estimated 1175 bp fragment after digestion with a combination of BstEII and YbaI endonucleases. The nucleotide sequence at the arg 3 regulatory HBsAg insert was examined for pRIT10761 by sequencing the 271 bp BstEII-XbaI fragment using the chemical modification methods of Maxam et al., Methods in Enzymology, Vol. 65, 499 (1980), after replacement labeling of the XbaI end with γ~ 32 P-ATP. The measured sequence for the arg 3 regulatory region - HBsAg junction is TACACTCGTCTACTGAAC ATG. It can be seen that the XbaI restriction site was not completely repaired by the T4 DNA polymerase and that a guanm residue was lost. The arg 3 untranslated leader region is immediately followed by 6 nucleotides of HBV origin, CTGAAC, followed by the HBsAg initiation codon, ATG, and the coding sequence for the HBsAg structural gene. The HBsAg initiation codon is the first initiation codon found downstream of the arg 3 promoter. Therefore, translation of mRNA transcripts written from DNA will begin at that codon and the HBsAg that is synthesized will lack external amino acid residues. The HBsAg that is synthesized is not a fusion protein; it is essentially structurally identical to authentic HBsAg.

EKSEMPEL 11EXAMPLE 11

Fremstilling av plasmid pRIT10764 og pRIT10765 ved kombinasjon av pRIT10761 med YEpl3 Hindlll. Preparation of plasmid pRIT10764 and pRIT10765 by combining pRIT10761 with YEpl3 HindIII.

PRIT10761 og pRIT10759 ble separat brutt med Pstl og BamHIPRIT10761 and pRIT10759 were separately digested with Pstl and BamHI

for å ødelegge pBR322-replikonresten og deretter med Hindlll for å frigjøre DNA-fragmentet med innsatt HBV DNA og reguleringsområdet. DNA'ene ble ekstrahert med fenyl, utfelt med etanol og oppløst i puffer (pH 7,5) inneholdende 0,01 M trometamin-HCl og 0,001 ff EDTA. En 0,6^g porsjon av hvert DNA-preparat ble adskilt blandet med 0,3^ug Hindlll-brutt, alkalisk fosfatase-behandlet DNA fra YEpl3 Hindlll fremstilt som beskrevet foran og blandingen ble ligert. to destroy the pBR322 replicon remnant and then with HindIII to release the DNA fragment with inserted HBV DNA and the regulatory region. The DNAs were extracted with phenyl, precipitated with ethanol and dissolved in buffer (pH 7.5) containing 0.01 M tromethamine-HCl and 0.001 ff EDTA. A 0.6 µg portion of each DNA preparation was separately mixed with 0.3 µg of HindIII-digested, alkaline phosphatase-treated DNA from YEpl3 HindIII prepared as described above and the mixture was ligated.

Den ligerte blanding ble brukt for å transformere kompetente celler av E± coli K12 stamme MM294 med seleksjon ble foretatt etter ampicillin-resistente transformanter. Én transformant ble vist å inneholde et plasmid, pRIT10764, bestående av HindIII-fragmentet fra pRIT10761 innsatt på YEpl3HindIII. En videre transformant ble vist å inneholde et plasmid, pRIT10765, bestående av HindIII-fragmentet fra pRIT10759 innsatt på YEp 13HindIII. Et flytediagram som illustrerer fremstillingen av pRIT10761 og pRIT10764 finnes i fig. 7. The ligated mixture was used to transform competent cells of E± coli K12 strain MM294 with selection being made for ampicillin-resistant transformants. One transformant was shown to contain a plasmid, pRIT10764, consisting of the HindIII fragment from pRIT10761 inserted into YEpl3HindIII. A further transformant was shown to contain a plasmid, pRIT10765, consisting of the HindIII fragment from pRIT10759 inserted into YEp 13HindIII. A flow diagram illustrating the preparation of pRIT10761 and pRIT10764 can be found in Fig. 7.

EKSEMPEL 12EXAMPLE 12

Transformasjon av gjær med pRTI10764 og pRIT10765Transformation of yeast with pRTI10764 and pRIT10765

pRIT10764 og pRIT10765 ble isolert fra kulterer av transformanter fremstilt i eksempel 11 ved CsCl-etidiumbromid-densi-tetsgradient-sentrifugering, og 10 ug av hver ble brukt for å transformere celler av gjærstamme lcl697d som beskrevet i pRIT10764 and pRIT10765 were isolated from cultures of transformants prepared in Example 11 by CsCl-ethidium bromide density gradient centrifugation, and 10 µg of each was used to transform cells of yeast strain lcl697d as described in

eksempel 7 idet seleksjon ble foretatt for leucin-uavhen-gige transformanter på regenereringsagar. Én leucin-uav- example 7 when selection was made for leucine-independent transformants on regeneration agar. One leucine-unav-

hengig koloni som stammet fra disse transformanter kalles stamme lcl697d(pRIT10764). En annen transformant kalles S. cerevisiae stamme lcl697d(pRIT10765). Kulturer av disse stammer ble dyrket ved 30°C i gjærnitrogenbasemedium tilsatt 2% glukose og 20 pg/ml arginin til en optisk densitet ved 620 pm på 0,80 til 0,88. Celler ble høstet og celle-frie ekstrakter ble fremstilt og målt for HBsAg ved "Austria" radioimmunologisk bestemmelse som beskrevet i eksempel 7. Ekstrakter av lcl697d(pRIT10764) ga positive resultater adherent colony derived from these transformants is called strain lcl697d(pRIT10764). Another transformant is called S. cerevisiae strain lcl697d(pRIT10765). Cultures of these strains were grown at 30°C in yeast nitrogen base medium supplemented with 2% glucose and 20 µg/ml arginine to an optical density at 620 µm of 0.80 to 0.88. Cells were harvested and cell-free extracts were prepared and measured for HBsAg by "Austria" radioimmunoassay as described in Example 7. Extracts of lcl697d(pRIT10764) gave positive results

i denne målingen ved fortynninger i PBS på opp til 1/1024, mens ikke-fortynnete ekstrakter fra stamme lcl697d(pRIT10765) var gjennomgående negative i denne målingen. Fra det geneti-ske og radiomimmunologiske materiale slutter man at celler av S^cerevisiae stamme lcl697d(pRIT10764) syntetiserer HBsAg som kan brukes i en vaksine for å stimulere beskyttelse mot HBV-infeksjoner hos mennesker uten alvorlige bivirkninger. in this assay at dilutions in PBS of up to 1/1024, while undiluted extracts from strain lcl697d(pRIT10765) were consistently negative in this assay. From the genetic and radioimmunological material it is concluded that cells of S^cerevisiae strain lcl697d(pRIT10764) synthesize HBsAg which can be used in a vaccine to stimulate protection against HBV infections in humans without serious side effects.

Claims (30)

1. Fremgangsmåte ved fremstilling av et rekombinant DNA-molekyl inneholdende en nukleotidsekvens som kan kode for HBsAg og som kan uttrykkes i gjær, karakterisert ved at man forbinder en nukleotid-sekvens som kan kode for HBsAg med et reguleringsområde stammende fra 3 gjærens arg gen.1. Method for the production of a recombinant DNA molecule containing a nucleotide sequence which can code for HBsAg and which can be expressed in yeast, characterized by connecting a nucleotide sequence which can code for HBsAg with a regulatory region originating from 3 the yeast's arg gene. 2. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at HBsAg-sekvensen forbindes i en posisjon i forhold til reguleringsområdet slik at HBsAg syntetiseres ved ekspresjon av HBsAg-sekvensen uten fremmede aminosyrerester.2. Method according to claim 1, characterized in that the HBsAg sequence is connected in a position in relation to the regulatory region so that HBsAg is synthesized by expression of the HBsAg sequence without extraneous amino acid residues. 3. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at reguleringsområdet er dannet fra brytning av pYe ura3 arg3 med en restriksjonsendonuklease.3. Method according to claim 1, characterized in that the regulatory region is formed from breaking pYe ura3 arg3 with a restriction endonuclease. 4.. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at reguleringsområdet er dannet fra brytning av pYE ura3 arg3 med Hindlll-restriksjonsendonuklease under fremstilling av et 3300 bp gjær DNA-fragment inneholdende arg3 genet.4.. Method according to claim 1, characterized in that the regulatory region is formed from breaking pYE ura3 arg3 with HindIII restriction endonuclease during production of a 3300 bp yeast DNA fragment containing the arg3 gene. 5. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at man innsetter HBsAg-sekvensen og reguleringsområdet i en vektor.5. Method according to claim 1, characterized in that the HBsAg sequence and the regulatory region are inserted into a vector. 6. Fremgangsmåte ifølge krav 1, karakterisert ved at man behandler HBV DNA med BamHI-restriksjonsendonuklease for å fremstille HBsAg-sekvensen.6. Method according to claim 1, characterized in that HBV DNA is treated with BamHI restriction endonuclease to produce the HBsAg sequence. 7. Fremgangsmåte ifølge krav 5, karakterisert ved at man innsetter et BamHI-fragment fra HBV i DNA ekstrahert fra Dane-partikler av adw-serotype i Bglill- punktet til et HindIII-fragment av reguleringsområdet før innsetning i en vektor.7. Method according to claim 5, characterized in that a BamHI fragment from HBV is inserted into DNA extracted from Dane particles of adw serotype in Bglill- point to a HindIII fragment of the regulatory region prior to insertion into a vector. 8. Fremgangsmåte ifølge krav 5, karakterisert ved at man innsetter et Hhal-fragment utledet fra et forbundet par av BamHI-fragmenter av HBV DNA ekstrahert fra Dane-partikler av ayw-serotype i Xbal-punktet til vektoren som er et 1480 bp-fragment av pMC200 inneholdende reguleringsområdet og med en EcoRI-utstrekning på én ende og en avslutning i en 3' T-rest på den andre ende som er avstumpet, forbundet med et 5700 bp Xbal-EcoRI-fragment av pMC200 etter DNA-polymerase-reperasjon av Xbal-punktet i 5700 bp-fragmentet.8. Method according to claim 5, characterized in that one inserts an Hhal fragment derived from a connected pair of BamHI fragments of HBV DNA extracted from Dane particles of ayw serotype in the XbaI point of the vector which is a 1480 bp fragment of pMC200 containing the regulatory region and with an EcoRI stretch on one end and terminating in a 3' T residue on the other end which is blunted, ligated with a 5700 bp XbaI-EcoRI fragment of pMC200 after DNA polymerase repair of The XbaI point in the 5700 bp fragment. 9. Fremgangsmåte ifølge krav 6, karakterisert ved at man forbinder et BamHI-fragment av HBV-DNA ekstrahert fra Dane-partikler av adw-serotype med reguleringsområdet .9. Method according to claim 6, characterized in that a BamHI fragment of HBV DNA extracted from Dane particles of adw serotype is connected to the regulatory region. 10. Fremgangsmåte ifølge krav 6, karakterisert ved at man forbinder et Ilhal-f ragment utledet fra et forbundet par av BamHI-fragmenter av HBV DNA ekstrahert fra Dane-partikler av ayw-serotype med reguleringsområdet.10. Method according to claim 6, characterized in that an Ilhal fragment derived from a connected pair of BamHI fragments of HBV DNA extracted from Dane particles of ayw serotype is connected to the regulatory region. 11. Fremgangsmåte ifølge krav 7, karakterisert ved at HindIII-fragmentet forut innsettes i pBR322.11. Method according to claim 7, characterized in that the HindIII fragment is first inserted into pBR322. 12. Fremgangsmåte ifølge krav 7, karakterisert ved at man videre frigjør HindIII-fragment inneholdende HBsAg-innsatsen og reguleringsområdet ved behandling med Hindlll og innsetter HindIII-fragmentet i en gjærvektor.12. Method according to claim 7, characterized in that the HindIII fragment containing the HBsAg insert and the regulatory region is further released by treatment with HindIII and the HindIII fragment is inserted into a yeast vector. 13. Fremgangsmåte ifølge krav 8, karakterisert ved at man behandler de forbundne 1480 bp-5700 ; ! bi p-fragmenter med Hindlll for å skjære ut et HindIII-fraig- ment som bærer HBsAg-sekvensen og reguleringsområdet og innsetter HindIII-fragmentet i en gjærvektor.13. Method according to claim 8, characterized in that one processes the connected 1480 bp-5700 ; ! bi β fragments with HindIII to excise a HindIII fragment carrying the HBsAg sequence and regulatory region and insert the HindIII fragment into a yeast vector. 14. Fremgangsmåte ifølge krav 9, karakterisert ved at man innsetter BamHI-fragmentet i Bglll-punktet til reguleringsområdet.14. Method according to claim 9, characterized in that the BamHI fragment is inserted into the Bglll point of the regulatory region. 15. Fremgangsmåte ifølge krav 10, karakterisert ved at man forbinder Hhal-fragmentet med reguleringsområdet på Xbal-punktet til et 1480 bp-fragment av pMC200 inneholdende reguleringsområdet og med en EcoRI-utstrekning på én ende og avsluttende i en 3 <1> T-rest på den andre ende forbundet til et 5700 bp Xbal-EcoRI-fragment av pMC200 etter polymerasereparasjon av Xbal-punktet i 5700 bp-fragmentet.15. Method according to claim 10, characterized in that one connects the HhaI fragment with the regulatory region at the XbaI point to a 1480 bp fragment of pMC200 containing the regulatory region and with an EcoRI extension at one end and terminating in a 3 <1> T- residue at the other end ligated to a 5700 bp XbaI-EcoRI fragment of pMC200 after polymerase repair of the XbaI point in the 5700 bp fragment. 16. Fremgangsmåte ifølge krav 11, karakterisert ved at man frigjør HindIII-fragmentet inneholdende HBsAg-sekvensen og reguleringsområdet ved behandling med Hindlll og innsetter HindIII-fragmentet i en gjærvektor.16. Method according to claim 11, characterized in that the HindIII fragment containing the HBsAg sequence and the regulatory region is released by treatment with HindIII and the HindIII fragment is inserted into a yeast vector. 17. Fremgangsmåte ifølge krav 13, karakterisert ved at gjærvektoren er YEpl3 som forut er modifisert ved utskjæring av et HindIII-fragment.17. Method according to claim 13, characterized in that the yeast vector is YEpl3 which has previously been modified by excision of a HindIII fragment. 18. i1' Fremgangsmåte ifølge krav 16, karakterisert ved at det som gjærvektor anvendes YEpl3 som er forut modifisert ved utskjæring av et HindIII-fragment.18. i1' Method according to claim 16, characterized in that the yeast vector used is YEpl3 which has been previously modified by excision of a HindIII fragment. 19. Fremgangsmåte ved fremstilling av HBsAg, karakterisert ved at man i gjærceller innsetter et rekombinant DNA-molekyl omfattende en nukleotidsekvens som kan kode for HBsAg og et reguleringsområde utledet fra gjær arg3-genet som kan bevirke transkripsjon av HBsAg-sekvensen i gjær, dyrker gjæren og isolerer HBsAg som pro-duseres .19. Method for the production of HBsAg, characterized in that a recombinant DNA molecule comprising a nucleotide sequence that can code for HBsAg and a regulatory region derived from the yeast arg3 gene that can cause transcription of the HBsAg sequence in yeast is inserted into yeast cells, the yeast is cultivated and isolates the HBsAg that is produced. 20. Fremgangsmåte ved fremstilling HBsAg ifølge krav i 19, karakterisert ved at HBsAg-sekvkn-_ sen plasseres slik i forhold til reguleringsområdet at HBsAg syntetiseres ved ekspresjon av HBsAg-sekvensen i det vesentlige uten fremmede aminosyrerester.20. Method for producing HBsAg according to claim 19, characterized in that HBsAg-seqkn-_ sen is placed in such a way in relation to the regulatory region that HBsAg is synthesized by expression of the HBsAg sequence essentially without extraneous amino acid residues. 21. Fremgangsmåte ved fremstilling av HBsAg ifølge krav 1, karakterisert ved at HBsAg-sekvensen er et BamHI-fragment av HBV DNA ekstrahert fra Dane-partikler av adw-serotype og innsatt i Bglll-punktet av gjærreguleringsområdet.21. Method for producing HBsAg according to claim 1, characterized in that the HBsAg sequence is a BamHI fragment of HBV DNA extracted from Dane particles of adw serotype and inserted into the Bglll point of the yeast regulatory region. 22. Fremgangsmåte ved fremstilling av HBsAg ifølge krav 1, karakterisert ved at som HBsAg anvendes et Hhal-fragment utledet fra et forbundet par av BamHI-fragmenter av HBV DNA ekstrahert fra Dane-partikler av ayw-serotype og innsatt i Xbal-punktet i et molekyl med 1480 bp-fragmentet forbundet med et 5700bp Xbal-EcoRI-fragment av pMC200 etter polymerasereparasjon av Xbal-punktet i 5700-bp-fragmentet, og hvor reguleringsområdet er et 1480 bp-fragment av pMC200 med en EcoRI-utstrekning på én ende og slutter i en 3 <1> T-rest på den andre ende som er avstumpet.22. Process for the production of HBsAg according to claim 1, characterized in that as HBsAg an Hhal fragment derived from a connected pair of BamHI fragments of HBV DNA extracted from Dane particles of ayw serotype and inserted into the Xbal point in a molecule with the 1480 bp fragment joined to a 5700 bp XbaI-EcoRI fragment of pMC200 after polymerase repair of the XbaI point in the 5700 bp fragment, and where the regulatory region is a 1480 bp fragment of pMC200 with an EcoRI stretch on one end and ending in a 3 <1> T-residue on the other end which is blunted. 23. Fremgangsmåte ifølge krav 19, karakterisert ved at det som gjær anvendes S.. cerevisiae stamme DC5 eller lcl697d.23. Method according to claim 19, characterized in that S. cerevisiae strain DC5 or lcl697d is used as yeast. 24. Fremgangsmåte ifølge krav 20, karakterisert ved at det som gjær anvendes J3. cerevisiae stamme DC5 eller lcl697d.24. Method according to claim 20, characterized in that J3 is used as yeast. cerevisiae strain DC5 or lcl697d. 25. Fremgangsmåte ifølge krav 21, karakterisert ved at det som gjær anvendes S. cerevisiae stamme DC5 eller lcl697d.25. Method according to claim 21, characterized in that S. cerevisiae strain DC5 or lcl697d is used as yeast. 26. Fremgangsmåte ifølge krav 21, karakterisert ved at argininbiosyntesegangen derepresseres i gjæren.26. Method according to claim 21, characterized in that the arginine biosynthesis pathway is derepressed in the yeast. 27. Fremgangsmåte ifølge krav 22, karakter i- sert ved at argininbiosyntesegangen derepresseres i gjæren.27. Method according to claim 22, characterized in that the arginine biosynthesis pathway is derepressed in the yeast. 28. Fremgangsmåte ifølge krav 22, karakterisert ved at det som gjær anvendes S_. cerevisiae stamme lcl697d.28. Method according to claim 22, characterized in that S_ is used as yeast. cerevisiae strain lcl697d. 29. Fremgangsmåte ved fremstilling av en vektor omfattende gjær arg_3 reguleringsområdet og et restriksjonspunkt nær dette slik at et protein syntetisert ved ekspresjon av en kodesekvens innsatt i restriksjonspunktet mangler fremmede aminosyrerester, karakterisert ved at man setter sammen reguleringsområdet, som er et 148o bp-fragment av pMC200 med en EcoRI-utstrekning på én ende og slutter i en 3' T-rest på den andre ende som er avstumpet, med et 5700 bp Xbal-EcoRI-fragment av pMC200 etter polymerasereparasjon av Xbal-punktet til 5700 bp-fragmentet.29. Method for producing a vector comprising the yeast arg_3 regulatory region and a restriction point close to this so that a protein synthesized by expression of a coding sequence inserted in the restriction point lacks foreign amino acid residues, characterized by assembling the regulatory region, which is a 148o bp fragment of pMC200 with an EcoRI stretch on one end and ending in a 3' T residue on the other end that is blunted, with a 5700 bp XbaI-EcoRI fragment of pMC200 after polymerase repair of the XbaI point of the 5700 bp fragment. 30. Fremgangsmåte ved fremstilling av en hepatitis B virus-vaksine, karakterisert ved at HBsAg fremstilles ved en fremgangsmåte ifølge kravene 19 - 29.30. Method for producing a hepatitis B virus vaccine, characterized in that HBsAg is produced by a method according to claims 19 - 29.
NO833198A 1982-09-08 1983-09-07 PREPARATION OF HEPATIT-B VIRUS VACCINE NO833198L (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US41578982A 1982-09-08 1982-09-08

Publications (1)

Publication Number Publication Date
NO833198L true NO833198L (en) 1984-03-09

Family

ID=23647197

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO833198A NO833198L (en) 1982-09-08 1983-09-07 PREPARATION OF HEPATIT-B VIRUS VACCINE

Country Status (22)

Country Link
EP (1) EP0106828B1 (en)
JP (5) JPS5971694A (en)
KR (1) KR840006014A (en)
AT (1) ATE91718T1 (en)
AU (4) AU584580B2 (en)
CA (1) CA1222707A (en)
CY (1) CY1932A (en)
DE (1) DE3382704T2 (en)
DK (1) DK406483A (en)
ES (4) ES525439A0 (en)
FI (1) FI833205A (en)
GR (1) GR78982B (en)
HK (1) HK1004570A1 (en)
HU (1) HU196625B (en)
IE (1) IE60387B1 (en)
IL (1) IL69202A (en)
MA (1) MA19895A1 (en)
MY (1) MY102920A (en)
NO (1) NO833198L (en)
NZ (1) NZ204952A (en)
PT (1) PT77265B (en)
ZA (1) ZA836658B (en)

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS5936699A (en) * 1982-08-20 1984-02-28 Chemo Sero Therapeut Res Inst Shuttle vector
JPS5931799A (en) * 1982-08-16 1984-02-20 Science & Tech Agency Recombinant plasmid and preparation of transformed yeast and hepatitis virus b surface antigen using the same
WO1986001534A1 (en) * 1984-09-04 1986-03-13 Takeda Chemical Industries, Ltd. Recombinant dna and its use
WO1986003411A1 (en) * 1984-12-12 1986-06-19 Takeda Chemical Industries, Ltd. Process for preparing novel protein
WO1986007384A1 (en) * 1985-06-03 1986-12-18 Takeda Chemical Industries, Ltd. Process for preparing hapatitis b virus surface antigen p31
US4683294A (en) * 1985-04-03 1987-07-28 Smith Kline Rit, S.A. Process for the extraction and purification of proteins from culture media producing them
DE3677851D1 (en) * 1985-08-05 1991-04-11 Merck & Co Inc METHOD FOR INCREASING THE PRODUCTION OF RECOMBINANT PROTEIN IN YEARS OF THE GENERATION SACCHAROMYCES.
US4895800A (en) * 1985-11-26 1990-01-23 Phillips Petroleum Company Yeast production of hepatitis B surface antigen
ZA88488B (en) * 1987-01-30 1988-10-26 Smith Kline Rit Hepatitis b virus surface antigens and hybrid antigens containing them
DE3883596T2 (en) * 1987-03-09 1994-02-17 Merck & Co Inc Purification of recombined hepatitis B surface antigen.
NZ229260A (en) * 1988-06-03 1994-02-25 Merck & Co Inc Hepatitis b virus, expression cassette for pre-s domain, host cells and
US4962656A (en) * 1989-06-30 1990-10-16 The United States Of America As Represented By The United States Department Of Energy Control and monitoring method and system for electromagnetic forming process
LT3988B (en) 1992-02-17 1996-06-25 Fermentas Biotech Inst Recombinant plasmides pfs19, pfps2-48 and pjlfds1 codingsynthesis of human hepatite b of surfice virus antigenes, methods fof producing thereof
TW340132B (en) * 1994-10-20 1998-09-11 Ibm Structure for use as an electrical interconnection means and process for preparing the same
JP4028850B2 (en) * 2004-02-04 2007-12-26 株式会社名機製作所 Mold for molding disk substrate

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ES487106A0 (en) * 1978-12-22 1981-05-16 Biogen Nv A METHOD FOR PRODUCING AT LEAST ONE POLYPEPTIDE SHOWING HBV ANTIGENICITY
NZ199722A (en) * 1981-02-25 1985-12-13 Genentech Inc Dna transfer vector for expression of exogenous polypeptide in yeast;transformed yeast strain
GR76274B (en) * 1981-08-04 1984-08-04 Univ California
NZ201705A (en) * 1981-08-31 1986-03-14 Genentech Inc Recombinant dna method for production of hepatitis b surface antigen in yeast
GB2125047B (en) * 1982-08-09 1986-02-19 Ciba Geigy Ag Yeast hybrid vectors and their use for the production of polypeptides

Also Published As

Publication number Publication date
ES8600938A1 (en) 1985-10-16
IE60387B1 (en) 1994-07-13
EP0106828A2 (en) 1984-04-25
IL69202A (en) 1991-08-16
ES532730A0 (en) 1985-10-16
MY102920A (en) 1993-03-31
ES8600939A1 (en) 1985-10-16
DE3382704T2 (en) 1994-02-10
EP0106828B1 (en) 1993-07-21
FI833205A0 (en) 1983-09-07
DK406483D0 (en) 1983-09-07
ES532732A0 (en) 1985-10-16
AU9001491A (en) 1992-02-27
DK406483A (en) 1984-03-09
CA1222707A (en) 1987-06-09
JP2702899B2 (en) 1998-01-26
EP0106828A3 (en) 1985-11-21
CY1932A (en) 1983-09-06
AU1569288A (en) 1988-07-28
PT77265A (en) 1983-09-01
AU1675083A (en) 1984-03-15
AU584580B2 (en) 1989-06-01
AU3131889A (en) 1989-07-20
JPH02231084A (en) 1990-09-13
DE3382704D1 (en) 1993-08-26
KR840006014A (en) 1984-11-21
ATE91718T1 (en) 1993-08-15
PT77265B (en) 1986-02-04
JPH02464A (en) 1990-01-05
ES8506350A1 (en) 1985-07-01
HU196625B (en) 1988-12-28
NZ204952A (en) 1986-05-09
JP2522825B2 (en) 1996-08-07
ZA836658B (en) 1984-06-27
ES525439A0 (en) 1985-07-01
HK1004570A1 (en) 1998-11-27
GR78982B (en) 1984-10-02
IE832099L (en) 1984-03-08
JPS5971694A (en) 1984-04-23
ES532731A0 (en) 1985-11-01
ES8602120A1 (en) 1985-11-01
JPH08317796A (en) 1996-12-03
MA19895A1 (en) 1984-04-01
FI833205A (en) 1984-03-09
JPH02116A (en) 1990-01-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
AP56A (en) Hepatitis B virus surface antigens and hybrid antigehs containing them.
US4722840A (en) Hybrid particle immunogens
US6306625B1 (en) Method for obtaining expression of mixed polypeptide particles in yeast
EP0522030B1 (en) Hepatitis b vaccine
EP0244924B1 (en) Production of vaccines against Hepatitis B virus
NO833198L (en) PREPARATION OF HEPATIT-B VIRUS VACCINE
US5612041A (en) Recombinant herpes simplex gD vaccine
EP0425082B1 (en) Bordetella vaccines
CA1334386C (en) Method for producing hepatitis b virus proteins in yeast
US4820642A (en) Amplified expression vector
US5851823A (en) Hepatitis B vaccine
AU642729C (en) Hepatitis B vaccine
US5989865A (en) Hepatitis B vaccine
JPS62181785A (en) Production of confluent protein
NO884304L (en) EXPRESSION OF PLASMODIUM FALCIPARUM CIRCUMSPOROZOITT PROTEIN WHICH DOES.
JPS63283586A (en) Development of p.falciparum circumsporozoite protein by yeast