NO320175B1 - Fremgangsmate for fremstilling av korrekt foldet, biologisk aktivt rekombinant protein eller polypeptid. - Google Patents

Fremgangsmate for fremstilling av korrekt foldet, biologisk aktivt rekombinant protein eller polypeptid. Download PDF

Info

Publication number
NO320175B1
NO320175B1 NO19982155A NO982155A NO320175B1 NO 320175 B1 NO320175 B1 NO 320175B1 NO 19982155 A NO19982155 A NO 19982155A NO 982155 A NO982155 A NO 982155A NO 320175 B1 NO320175 B1 NO 320175B1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
igf
cells
protein
polypeptide
buffer
Prior art date
Application number
NO19982155A
Other languages
English (en)
Other versions
NO982155D0 (no
NO982155L (no
Inventor
Jan-Gunnar Gustafsson
Johan Ohman
Original Assignee
Pfizer Health Ab
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Pfizer Health Ab filed Critical Pfizer Health Ab
Publication of NO982155D0 publication Critical patent/NO982155D0/no
Publication of NO982155L publication Critical patent/NO982155L/no
Publication of NO320175B1 publication Critical patent/NO320175B1/no

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K1/00General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
    • C07K1/107General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides
    • C07K1/113General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides without change of the primary structure
    • C07K1/1133General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length by chemical modification of precursor peptides without change of the primary structure by redox-reactions involving cystein/cystin side chains
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/61Growth hormone [GH], i.e. somatotropin
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/575Hormones
    • C07K14/65Insulin-like growth factors, i.e. somatomedins, e.g. IGF-1, IGF-2

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Endocrinology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Diabetes (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

Foreliggende oppfinnelse angår en fremgangsmåte for fremstilling av korrekt foldet, biologisk aktivt rekombinant protein eller polypeptid, omfattende trinnene ekspresjon av proteinet i prokaryotiske celler, høsting av cellene, direkte løsning av cellene i en buffer ved pH 8 til 11 og deretter fortynning med vann og et fortynningsmiddel som består av etanol og eventuelt guanidin-hydroklorid.
Proteinet eller polypeptidet er fortrinnsvis GH, IGF-I eller IGF-II.
INNLEDNING
Et generelt stort problem når rekombinante proteiner overproduseres i effektive bakterielle ekspresjonssystemer, er relatert til foldingen av proteinproduktene til deres native konformasjoner. Mange høynivåekspresjonssystemer i Escherichia coli medfører dannelse av aggregater av denaturerte proteiner, såkalte inklusjonslegemer, som i noen tilfeller kan refoldes til det ønskede native protein. Generelle fremgangsmåter som letter refoldingen og gjør den mer effektiv er blitt funnet. En fremgangsmåte er anvendelsen av en klasse av varmesjokk-proteiner (HSP) og en annen er foldingsenzymer. Ved anvendelse av HSP unngås aggregering, og ved anvendelse av foldingsenzymer akselereres refoldingshastigheten.
Imidlertid er ikke alle proteiner følsomme for disse fremgangsmåter, og andre løsninger er blitt foreslått for å øke refoldingsutbyttet. I en artikkel av J.C. Carlson et al. i Biotechnology, vol 10, januar 1992, beskrives anvendelsen av monoklonale antistoffer under proteinrefolding for å øke utbyttet av nativt protein, spesielt S-Protein.
En annen foreslått fremgangsmåte for gjenvinning av det native protein er oppløsning av inklusjonslegemeprotein med et denatureringsmiddel som guanidin eller urea og, hvis nødvendig, reduksjon av disulfidbåndet. Ved fortynning eller dialyse og reoksidering kan proteinet refoldes til det native protein.
Vellykket refolding uten dannelse av nye inklusjonslegemer er vanligvis vanskelig med høye konsentrasjoner av det rekombinante protein. Det beste utbytte oppnås vanligvis ved konsentrasjoner rundt 20-200 ug/ml. Refolding antas derfor å være en svært kostbar fremstillingsform som krever et kost-nadsintensivt medikament.
Imidlertid er utbyttet av en refoldingsfremgangsmåte uforutsigbar, siden proteinproduktet ofte aggregerer eller blir modifisert. I tillegg vil den løselige refoldede fraksjon for IGF-I og -II inneholde misfoldede utgaver, og det totale utbytte av korrekt foldet vekstfaktor er ganske lav (Samuelsson, E. et al. (1991) Bio/Technology vol. 9, side 363) .
Ulike fremgangsmåter er foreslått for å øke utbytte av korrekt foldet IGF-I.
Human insulinlignende vekstfaktor I (IGF-I) er en enkeltkjedet peptidvekstfaktor på 70 aminosyrer, først isolert fra serum. IGF-I reguleres positivt av veksthormon (GH), og viser mitogen effekt på mange celletyper. IGF-I antas derfor å mediere mange av de vekstfremmende effekter av GH. I homologi-regionene er IGF-I og insulin 4 9 % homologe, omfattende de seks cysteinrester som frembringer tre disulfidbroer. Den tredimensjonale struktur av IGF-I er blitt modellert basert på røntgenstrukturen til insulin, og denne modell er i det siste blitt bekreftet i disulfidbroregionene ved avstandsbånd frem-skaffet ved 2-D NMR-spektroskopi av IGF-I (for en oversikts-artikkel om IGF-I,' se: Insulin-like growth factors I and II, Humbel R.E. Eur.J. Biochem 190, 445-462, 1990).
Human rekombinant IGF-I er blitt fremstilt som et utskilt produkt hos både Escherichia coli og Saccharomyces cerevisiae. I isolert materiale fra begge arter finnes IGF-I hovedsakelig som misfoldede former med intermolekylære disulfidbroer. In vitro refolding av redusert IGF-I i nærvær av oksygen har i tillegg vist at nativt, upassende og aggregert IGF-I akkumulerer selv under fortynnede refoldings-
betingelser.
Refoldingsutbyttet av rekombinant IGF-I ble betydelig forbedret ved utnyttelse av en fusjonert fusjonspartner, bestående av to IgG-bindende domener (ZZ) avledet fra protein A fra stafylokokker (Samuelsson, E. et al. (1991) Bio/Technology vol. 9, side 363). ZZ-fusjonspartneren anvendes for å løse opp misfoldede molekyler før, under og etter reduksjon og reoksidering. Utbyttet av korrekt foldet IGF-I vises å være økt vesentlig, men det er fortsatt en betydelig mengde av misfoldet IGF.
Patenter og patentsøknader har også beskrevet problemene omkring misfoldete IGF og foreslått ulike forbedringer.
I Bio/Technology, bind 12, nov. 1994, Roger Hart et al., "Large Scale, In Situ Isolation of Periplasmic IGF-I from E. coli." s. 1113-1117 beskrives in situ isolering av IGF-I ved bruk av 2-fase vannløsninger.
WO 91/02807 (Amgen)(=US 5158875) beskriver en fremgangsmåte for refolding av IGF-I i nærvær av en fusjonert, kort, positivt ladet ledersekvens, der aminosyrer som lysin, arginin og histidin er fusjonert i den N-terminale N-enden av IGF-I. Inklusjonslegemer isoleres og løses i urea. I WO 93/11240 (Genentech) beskrives en fremgangsmåte for refolding av uløselig og ufullstendig foldet IGF-I som involverer opp-løsning av inklusjonslegemer og refolding i et enkelt buffer-system.
US 5 151 501 (American Cyanamid) beskriver en fremgangsmåte for oppløsning og naturliggjøring av soraa-tropiner (veksthormoner) ved å dispergere refraktære soma-tropinlegemer i en løsning inneholdende sulfolan, etterfulgt av fortynning.
WO 9319084 (Synergen) beskriver en fremgangsmåte for fremstilling av aktiv IGF-I, omfattende trinnene ekspresjon i prokaryotisk celle, tilføring av et første reduksjonsmiddel, tilføring av et denatureringsmiddel (f.eks. urea), tilføring av et oksideringsmiddel (f.eks. oksidert glutation eller cystein) og tilsetting av et andre reduksjonsmiddel (f.eks. DTT, cystein etc). Met-IGF-I uttrykkes.
WO 9506064 beskriver en fremgangsmåte for å øke utbyttet av korrekt refolding av et polypeptid, der kobber-eller mangansalt er til stede under refoldingstrinnet, og WO 9506059 (Genentech) beskriver en fremgangsmåte for isolering av celler ved tilsetting av en fasedannende forbindelse som danner flere vannfaser.
Vi har nå oppfunnet en ny, forenklet fremgangsmåte for fremstilling av korrekt foldet, biologisk aktivt rekombinant protein eller polypeptid. Det henvises spesielt til rekombinant IGF-I etter ekspresjon av Z-IGF-I. Det henvises her til EP 230 869, spesielt til eksemplene. Det er oppnådd spesielt høye ekspresjonsnivåer (opp til 15 g/l ved fermentering) med Escherichia coli som uttrykker hybridproteinet Z-IGF-I. Selv om fremgangsmåten her beskrives med IGF-I som det foretrukne polypeptid, kan den også anvendes for rekombinant fremstilling av andre polypeptider, når det dannes misfoldede forbindelser og det totale utbytte av korrekt foldede polypeptider er ganske lavt.
I følge foreliggende fremgangsmåte kan trinnene for mekanisk ødeleggelse av cellene og isoleringen og vaskingen av refraktære legemer utgå. Foreliggende fremgangsmåte er enklere enn de tidligere beskrevne, og medfører et høyt utbytte.
OPPFINNELSEN
Oppfinnelsen angår en fremgangsmåte for fremstilling av korrekt foldet, biologisk aktivt rekombinant protein eller polypeptid, omfattende trinnene:
a) ekspresjon av proteinet i prokaryotiske celler,
b) høsting av cellene,
c) direkte oppløsning av cellene i en buffer ved pH ca. 8 til 11, fortrinnsvis ca. 8, med et kaotropt middel og et
reduksjonsmiddel, og
d) fortynning med vann og et fortynningsmiddel. Proteinet kan f.eks. være IGF-I, IGF-II eller GH.
Når proteinet er IGF-I omfatter fremgangsmåten
fortrinnsvis trinnene:
a) ekspresjon av et IGF-I-fusjonsprotein i prokaryotisk cellesystem, fortrinnsvis i E Coli,
b) høsting av cellene,
c) direkte oppløsning av cellene i en buffer ved pH 8
til 11, fortrinnsvis ca. 8, med et kaotropt middel eller et
reduksjonsmiddel,
d) fortynning med vann og et fortynningsmiddel
e) tilsetting av et avspaltingsmiddel og
f) rensing for å fremstille det biologisk aktive IGF-I.
IGF-I-fusjonsproteinet er fortrinnsvis et hybrid Z-IGF-I. Bufferen i trinnet c) kan være f.eks. Tris (Tris-[hydroksymetyl]aminometanhydroklorid) eller glysin.
Det kaotrope middel i trinn c) er fortrinnsvis guanidin eller urea, og guanidin kan anvendes ved en konsentrasjon på 3-7 M, fortrinnsvis 5 M. Reduksjonsmiddelet i trinn c) kan være f.eks. DTT(DL-ditiotreitol) eller cystein, og fortynningsmiddelet i trinn d) kan være etanol.
Etter trinn d) reduseres fortrinnsvis pH under pH 6, og helst til pH 4 eller lavere.
Ved fremstillingen av IGF-I redyseres pH fortrinnsvis til pH 3 eller lavere mellom trinnene d) og e).
Et konsentreringstrinn og et bufferbytte mellom trinnene d) og e), der kromatografi og/eller ionebytte fortrinnsvis anvendes, omfattes også av oppfinnelsen. Avspaltingsmiddelet i trinn e) ved fremstillingen av IGF-I kan være hydroksylamin, et enzym eller et annet avspaltingsmiddel.
Rensetrinnene for fremstillingen av det rene protein eller polypeptid omfatter f.eks. kationebytte, RP-HPLC og/eller hydrofobinteraksjonskromatografi (HIC).
Når IGF-I fremstilles som Z-IGF-I, har IGF-I en bedre løselighet, hvilket betyr at det kan anvendes en høyere konsentrasjon av redusert IGF-I i løsning, som medfører en høy mengde av riktig foldet IGF-I som er av stor betydning for en industriell fremgangsmåte for fremstilling av IGF-I.
EKSEMPLER
Det rekombinante humane IGF-I (rhIGF-I) som anvendes 1 eksperimentene ble fremstilt i E Coli i henhold til fremgangsmåten beskrevet i EP 230 869, eksempel VIII, (men i en fermentor) omfattende dyrking ved 37 °C i 20 timer.
Eksempel 1
Oppløsning
Cellene ble høstet etter fermentering ved sentri-fugering eller krysstrømningsfiltrering.
Deretter ble cellene løst i:
13 1 celleløsning, våtvekt 498 g/l
5 mol/l guanidinhydroklorid
97 mmol/1 Tris-base
159 mmol/1 Tris-HCl
2 mmol/1 etylendinitrotetraeddiksyre-dinatriumsalt-dihydrat
(EDTA)
4 mmol/1 ditiotreitol (DDT)
Totalt volum: 16,9 1
pH ble holdt på 8,1, oppløsningen ble utført i 3 timer med omrøring ved 15 °C.
Refolding
Oppløsningsløsningen ble fortynnet med 33,8 1 22,5 % etanolløsning, fortynningsfaktor 3.
pH ble holdt på 8,1 under røring ved 15 °C.
Refoldingen ble stoppet etter 20 timer ved tilsetting av konsentrert saltsyre til pH av løsningen var <3,1.
RP-HPLC-analyse av konsentrasjonen av Z-IGF-I i refoldingsløsningen ga 3,249 g korrekt foldet Z-IGF-I/1.
Eksempel 2
Oppløsning
Cellene ble høstet etter fermentering ved sentri-fugering og krysstrømningfiltrering.
Deretter ble cellene løst i:
154 ml celleløsning, våtvekt 450 g/l
4,5 mol/l guanidinhydroklorid
400 mmol/1 glysin
0,2 % Tween 20
2 mmol/1 etylendinitrotetraeddiksyre-dinatriumsalt-dihydrat
(EDTA)
3 mmol/1 ditiotreitol (DDT)
Totalt volum: 200 ml
pH ble holdt på 10,0, oppløsningen ble utført i 3 timer under omrøring ved romtemperatur.
Refolding
Oppløsningsløsningen ble fortynnet med 125 ml etanol, 400 ml vann> 66,8 g guanidinhydroklorid, fortynningsfaktor 4.
pH ble holdt på 10,0, under omrøring ved romtemperatur .
Refoldingen ble stoppet etter 20 timer ved tilsetning av konsentrert saltsyre inntil pH av løsningen var <3,1.
RP-HPLC-analyse av konsentrasjonen av Z-IGF-I i refoldingsløsningen ga 1,38 g korrekt foldet Z-IGF-I/1.
Eksempel 3
Oppløsning
Cellene ble høstet etter fermentering ved sentri-fugering eller krysstrømningsfiltrering.
Deretter ble cellene løst i:
900 ml celleløsning, våtvekt 720 g/l
6 mol/l guanidinhydroklorid
97 mmol/1 Tris-base
159 mmol/1 Tris-HCl
2 mmol/1 etylendinitrotetraeddiksyre-dinatriumsalt-dihydrat
(EDTA)
3 mmol/1 ditiotreitol (DDT)
Totalt volum: 1,17 1
pH ble holdt på 8,0, oppløsningen ble utført i 3 timer under omrøring ved 15 °C.
Refolding
Oppløsningsløsningen ble fortynnet med 547 ml etanol, 1786 ml vann, fortynningsfaktor 3.
Totalt volum 3,6 1
pH ble holdt på 8,1, under omrøring ved 15 °C.
Refoldingen ble stoppet etter 21 timer.ved tilsetting av konsentrert saltsyre til pH av løsningen var <3,1.
RP-HPLC-analyse av konsentrasjonen ga 1,32 g korrekt foldet Z-IGF-I/1.
Utbytte
Oppløsning: 74 % (av Z-IGF-I fra fermentoren) Totalt, oppløsning og refolding: 41 %.
Endelig renset IGF-I ble vist å ha biologisk aktivitet f.eks. på lårben fra kyllingembryo og RRA (radio-reseptoranalyse).
Eksempel 4, første rensetrinn
En løsning fra refoldingstrinnet ble fortynnet med WFI (vann for injeksjon), fortynningsfaktor 3, og klarnet på en krysstrømningsmembran før applisering på en kationbytter (Pharmacia Biotech BPG 200/500,SP-Sepharose FF, 9,5 liter, 0,33 m karhøyde).
Følgende buffere ble anvendt:
Kolonnen ble vasket med 1 kolonnevolum (CV) WFI, kolonnen ble behandlet med 3 CV ekvilibreringsbuffer, og prøven ble deretter applisert på kolonnen.
Kolonnen ble først vasket med 3 CV vaskebuffer 1 og deretter med 4 CV vaskebuffer 2.
Produktet ble eluert med 5 CV elueringsbuffer og kolonnen ble behandlet med 2 CV regenereringsbuffer og 2 CV med renholdsbuffer.
I henhold til RP-HPLC var utbyttet i forbindelse med rensetrinnet 98 % korrekt foldet IGF-I.
Eksempel 5, avspaltingstrinn
Etter det første rensetrinn på en kationbyttekolonne, ble avspalting av Z fra IGF-I utført.
Til. et kar ble det tilsatt: 40 1 fra kationbytter-reservoaret, 1428 g natriumdifosfat og 4,0 1 hydroksylamin, 50 % oppløsning. pH ble justert til 9,55 (med NaOH) og temperaturen ble holdt på 40 °C.
Reaksjonen ble stoppet etter 3 timer ved å senke temperaturen til 25 °C og tilsette 40 1 konsentrert eddiksyre (HAC) og 160 liter WFI.
pH ble justert til 3,30.
I henhold til RP-HPLC var utbyttet i forbindelse med dette trinn 84 % korrekt foldet, ikke-oksidert IGF-I.
Eksempel 6, avspaltingstrinn
Etter det første rensetrinn på en kationbyttekolonne, ble avspalting av Z fra IGF-I utført.
Til et kar ble det tilsatt: 18,6 1 fra kationbytter-reservoaret, 664 g natriumdifosfat og 2,17 1 hydroksylamin, 50 % oppløsning. pH ble justert til 9,5 (med HAc) og temperaturen ble holdt på 40 °C. Reaksjonen ble stoppet etter 3 timer ved å senke temperaturen til 25 °C og tilsette 22,3 1 konsentrert
HAc og 93 1 WFI. pH ble justert til 3,35.
I henhold til RP-HPLC ble utbyttet i forbindelse med dette trinn 61 % korrekt foldet, ikke-oksidert IGF-I.

Claims (16)

1. Fremgangsmåte for fremstilling av korrekt foldet, biologisk aktivt rekombinant protein eller polypeptid, omfattende trinnene: a) ekspresjon av proteinet eller polypeptidet i prokaryotiske celler b) høsting av cellene c) direkte oppløsning av cellene i en buffer ved pH 8 til 11 med et kaotropt middel og et reduksjonsmiddel og d) fortynning med vann og et fortynningsmiddel som består av etanol og eventuelt guanidin-hydroklorid.
2. Fremgangsmåte ifølge krav 1, der proteinet er IGF-I, IGF-II eller GH.
3. Fremgangsmåte ifølge krav 1, der proteinet er IGF-I og som omfatter trinnene: a) ekspresjon av et IGF-I-fusjonsprotein i prokaryotisk cellesystem, fortrinnsvis i E Coll b) høsting av cellene, c) direkte oppløsning av cellene i en buffer på pH 8 til 11 med et kaotropt middel og et reduksjonsmiddel, d) fortynning med vann og et fortynningsmiddel som består av etanol og eventuelt guanidin-hydroklorid, e) tilsetting av et avspaltingsmiddel og f) rensing for å fremstille den biologisk aktive IGF-I.
4. Fremgangsmåte i følge et hvilket som helst av kravene 1 til 3, der IGF-I-fusjonsproteinet er hybrid Z-IGF-I.
5. Fremgangsmåte ifølge et hvilket som helst av kravene 1 til 4, der bufferen i trinn c) er Tris eller glysin.
6. Fremgangsmåte ifølge et hvilket som helst av kravene 1 til 5, der pH i trinn c) er 8.
7. Fremgangsmåte ifølge et hvilket som helst av kravene 1 til 6, der det kaotrope middel i trinn c) er guanidin eller urea.
8. Fremgangsmåte ifølge krav 7, der guanidin blir brukt i en konsentrasjon fra 3-7 M.
9. Fremgangsmåte ifølge et hvilket som helst av kravene 1 til 8, der reduksjonsmiddelet i trinn c) er DTT eller cystein.
10. Fremgangsmåte ifølge et hvilket som helst av kravene 1 til 9, der fortynningsmiddelet i trinn d) er etanol.
11. Fremgangsmåte ifølge et hvilket som helst av kravene 1 til 10, der pH reduseres etter trinn d), fortrinnsvis under pH 6, helst til pH 3 eller lavere.
12. Fremgangsmåte ifølge krav 11, der pH reduseres til pH 3 eller lavere mellom trinnene d) og e) .
13. Fremgangsmåte ifølge krav 3, der det er et konsentreringstrinn og et bufferbytte mellom trinnene d) og e) .
14. Fremgangsmåte ifølge krav 13, der kromatografi og/eller ionebytte anvendes.
15. Fremgangsmåte ifølge et hvilket som helst av kravene 1 til 14, der avspaltingsmiddelet i trinn e) er hydroksylamin.
16. Fremgangsmåte ifølge krav 14, der rensetrinnet f) omfatter kationebytte, RP-HPLC og/eller hydrofobinteraksjonskromatografi (HIC).
NO19982155A 1995-11-13 1998-05-12 Fremgangsmate for fremstilling av korrekt foldet, biologisk aktivt rekombinant protein eller polypeptid. NO320175B1 (no)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SE9504019A SE9504019D0 (sv) 1995-11-13 1995-11-13 Method for production of proteins
PCT/SE1996/001456 WO1997018233A1 (en) 1995-11-13 1996-11-12 Method for producing a correctly folded, biological active recombinant protein

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO982155D0 NO982155D0 (no) 1998-05-12
NO982155L NO982155L (no) 1998-05-12
NO320175B1 true NO320175B1 (no) 2005-11-07

Family

ID=20400188

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO19982155A NO320175B1 (no) 1995-11-13 1998-05-12 Fremgangsmate for fremstilling av korrekt foldet, biologisk aktivt rekombinant protein eller polypeptid.

Country Status (11)

Country Link
US (1) US6605706B1 (no)
EP (1) EP0952981B1 (no)
JP (1) JP3930051B2 (no)
AT (1) ATE261985T1 (no)
AU (1) AU705192B2 (no)
CA (1) CA2236751C (no)
DE (1) DE69631906T2 (no)
HK (1) HK1023781A1 (no)
NO (1) NO320175B1 (no)
SE (1) SE9504019D0 (no)
WO (1) WO1997018233A1 (no)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6653098B1 (en) * 1998-02-23 2003-11-25 G. D. Searle & Co. Method of producing mouse and human endostatin
MXPA00009564A (es) * 1998-03-31 2004-03-10 Thongua Gantech Biotechnology Proteina quimerica que contiene una secuencia similar a la caperona intramolecular y su aplicacion a la produccion de insulina.
GB9913437D0 (en) * 1999-06-09 1999-08-11 Medical Res Council Fusion proteins
FR2820424B1 (fr) * 2001-02-05 2004-01-02 Merieux Oravax Procede de purification de alpa
EP2041154B1 (en) 2006-07-14 2018-12-12 Genentech, Inc. Refolding of recombinant proteins
US9119832B2 (en) 2014-02-05 2015-09-01 The Regents Of The University Of California Methods of treating mild brain injury
WO2017075535A1 (en) 2015-10-28 2017-05-04 Oxeia Biopharmaceuticals, Inc. Methods of treating neurodegenerative conditions
JPWO2022097216A1 (no) * 2020-11-05 2022-05-12

Family Cites Families (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SE8505922D0 (sv) * 1985-12-13 1985-12-13 Kabigen Ab Construction of an igg binding protein to facilitate downstream processing using protein engineering
US5231178A (en) 1991-01-16 1993-07-27 The Salk Institute Biotechnology/Industrial Associates, Inc. Method for the purification of intact, correctly-folded insulin-like growth factor-1
US5288931A (en) * 1991-12-06 1994-02-22 Genentech, Inc. Method for refolding insoluble, misfolded insulin-like growth factor-I into an active conformation
DE59305396D1 (de) * 1992-12-02 1997-03-20 Hoechst Ag Verfahren zur Gewinnung von Proinsulin mit korrekt verbundenen Cystinbrücken
US5407810A (en) * 1993-08-20 1995-04-18 Genentech, Inc. Aqueous multiple-phase isolation of polypeptide
US5663304A (en) * 1993-08-20 1997-09-02 Genentech, Inc. Refolding of misfolded insulin-like growth factor-I

Also Published As

Publication number Publication date
US6605706B1 (en) 2003-08-12
ATE261985T1 (de) 2004-04-15
NO982155D0 (no) 1998-05-12
JP3930051B2 (ja) 2007-06-13
AU7659696A (en) 1997-06-05
JP2000500023A (ja) 2000-01-11
AU705192B2 (en) 1999-05-20
SE9504019D0 (sv) 1995-11-13
NO982155L (no) 1998-05-12
CA2236751A1 (en) 1997-05-22
DE69631906D1 (de) 2004-04-22
EP0952981B1 (en) 2004-03-17
DE69631906T2 (de) 2005-01-20
EP0952981A1 (en) 1999-11-03
CA2236751C (en) 2007-01-09
HK1023781A1 (en) 2000-09-22
WO1997018233A1 (en) 1997-05-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Rudolph et al. In vitro folding of inclusion body proteins
Marston et al. [20] Solubilization of protein aggregates
US5756672A (en) Refolding of polypeptides
KR101741859B1 (ko) 화학적으로 조절된 산화환원 상태를 사용한 단백질의 재폴딩
EP0215625B1 (en) Protein recovery
EP3337820B1 (en) An improved refolding process for antibody&#39;s fragments
CA2444480C (en) Methods and compositions for production of recombinant peptides
KR20140135959A (ko) 온-컬럼 효소적 절단
NO320175B1 (no) Fremgangsmate for fremstilling av korrekt foldet, biologisk aktivt rekombinant protein eller polypeptid.
US6586575B1 (en) Purification of somatotropin from transformed microorganisms
Kelley et al. Folding of eukaryotic proteins produced in Escherichia coli
Jia et al. Peptide models of four possible insulin folding intermediates with two disulfides
US7189811B2 (en) Process for solubilization of recombinant proteins expressed as inclusion body
AU739394B2 (en) Process for the preparation of active somatotropin from inclusion bodies
AU684117B2 (en) Use of IGF-BP for refolding of IGF
Marston et al. Scale-up of the recovery and reactivation of recombinant proteins
US7071313B1 (en) Methods of purifying authentic IGF from yeast hosts
US7193042B1 (en) Methods for purifying authentic IGF from yeast hosts
EP0578472A2 (en) A process for recovering peptides expressed as fusion proteins

Legal Events

Date Code Title Description
MM1K Lapsed by not paying the annual fees