NO318435B1 - Isolated DNA sequence from IL-15, isolated DNA sequence encoding a precursor polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide, recombinant expression vector, host cell, method of producing an IL-15 polypeptide, isolated biologically active IL-15 polypeptide preparation, pharmaceutical composition for stimulating T-lymphocyte proliferation, and using a polypeptide according to the invention for the preparation of a means for treating or preventing specific diseases. - Google Patents

Isolated DNA sequence from IL-15, isolated DNA sequence encoding a precursor polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide, recombinant expression vector, host cell, method of producing an IL-15 polypeptide, isolated biologically active IL-15 polypeptide preparation, pharmaceutical composition for stimulating T-lymphocyte proliferation, and using a polypeptide according to the invention for the preparation of a means for treating or preventing specific diseases. Download PDF

Info

Publication number
NO318435B1
NO318435B1 NO19964141A NO964141A NO318435B1 NO 318435 B1 NO318435 B1 NO 318435B1 NO 19964141 A NO19964141 A NO 19964141A NO 964141 A NO964141 A NO 964141A NO 318435 B1 NO318435 B1 NO 318435B1
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
polypeptide
dna sequence
isolated
cells
seq
Prior art date
Application number
NO19964141A
Other languages
Norwegian (no)
Other versions
NO964141L (en
NO964141D0 (en
Inventor
Kenneth H Grabstein
Dirk M Anderson
June R Eisenman
Charles Rauch
Victor Fung
Original Assignee
Immunex Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from NZ266264A external-priority patent/NZ266264A/en
Priority claimed from ZA942636A external-priority patent/ZA942636B/en
Application filed by Immunex Corp filed Critical Immunex Corp
Publication of NO964141D0 publication Critical patent/NO964141D0/en
Publication of NO964141L publication Critical patent/NO964141L/en
Publication of NO318435B1 publication Critical patent/NO318435B1/en

Links

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Det er beskrevet et pattedyrepitelavledet T-cellefaktorpolypeptid ("ETT") her henvist til som interleukin-15 ("IL-15"), derivater derav, DNA-sekvenser, rekombinante DNA-molekyler og transformerte vertsceller som produserer IL-15-polypeptider. Nærmere bestemt tilveiebringer denne oppfinnelsen isolerte pattedyr-IL-15-polypeptider og derivater derav som regulerer hendelser ved T-lymfocyttproliferasjon.Described is a mammalian epithelial-derived T cell factor polypeptide ("ETT") referred to herein as interleukin-15 ("IL-15"), derivatives thereof, DNA sequences, recombinant DNA molecules, and transformed host cells that produce IL-15 polypeptides. More particularly, this invention provides isolated mammalian IL-15 polypeptides and derivatives thereof that regulate events of T lymphocyte proliferation.

Description

Oppfinnelsens område Field of the invention

Isolert DNA-sekvens fra IL-15, isolert DNA-sekvens som koder for et forløperpolypeptid til det biologisk aktive IL-15-polypeptid, rekombinant ekspresjonsvektor, vertscelle, fremgangsmåte for fremstilling av et IL-15-polypeptid, isolert, Isolated DNA sequence from IL-15, isolated DNA sequence encoding a precursor polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide, recombinant expression vector, host cell, method for producing an IL-15 polypeptide, isolated,

biologisk aktivt IL-15-polypeptidpreparat, farmasøytisk preparat for stimulering av proliferasjon av T-lymfocytter, samt anvendelse av et polypeptid ifølge oppfinnelsen for fremstilling av et middel forbehandling eller forebyggelse av spesifikt angitte sykdommer. biologically active IL-15 polypeptide preparation, pharmaceutical preparation for stimulating the proliferation of T-lymphocytes, as well as the use of a polypeptide according to the invention for the production of an agent for the treatment or prevention of specifically indicated diseases.

Oppfinnelsens bakgrunn The background of the invention

T-celler, også kjent som T-lymfocytter, er en klasse immuneffektorceller. I perifert vev kan T-celler deles i to generelle grupper basert på deres gjensidig utelukkende ekspresjon av CD4- og CD8-celleoverflatemolekyler. Typiske CD8<+->T-celler blir cytotoksiske T-celler etter aktivering og ødeleg- T cells, also known as T lymphocytes, are a class of immune effector cells. In peripheral tissues, T cells can be divided into two general groups based on their mutually exclusive expression of CD4 and CD8 cell surface molecules. Typical CD8<+->T cells become cytotoxic T cells after activation and destruction

ger antigenbærende målceller gjennom direkte cellekontakt. Aktiverte CD4<*->T-celler gir generelt positive signaler, f.eks. "hjelper"-funksjon for B-celler (det gjør det mulig for B- provides antigen-bearing target cells through direct cell contact. Activated CD4<*->T cells generally provide positive signals, e.g. "helper" function for B cells (it enables B-

celler å differensiere til antistoffdannende celler), og kal- cells to differentiate into antibody-producing cells), and cal-

les derfor hjelper-T-celler. therefore read helper T cells.

Seks T-cellevekstfaktorer er tidligere blitt identifisert. De seks er: interleukin (IL) -2, -4, -7, -9, -12 og kofaktor IL-10. lL-2's åpne leseramme koder for et 15 kDa stort 153 aminosyrers polypeptid. IL-2 fremstilles av visse T-celler og av store, granulære lymfocytter. IL-2 ble opprinne- Six T-cell growth factors have previously been identified. The six are: interleukin (IL)-2, -4, -7, -9, -12 and cofactor IL-10. IL-2's open reading frame codes for a 15 kDa 153 amino acid polypeptide. IL-2 is produced by certain T cells and by large, granular lymphocytes. IL-2 was origi-

lig oppdaget som en faktor som ville understøtte langvarig vekst av humane T-celler. I tillegg til T-cellevekst omfatter dets virkninger aktivering av naturlige dreperceller (NK- lig discovered as a factor that would support long-term growth of human T cells. In addition to T cell growth, its effects include activation of natural killer cells (NK

celler) og lymfocyttaktiverte dreperceller (LAK-celler), samt cytotoksiske T-celler ("CTL"), makrofager og fremming av B-cellevekst. cells) and lymphocyte-activated killer cells (LAK cells), as well as cytotoxic T cells ("CTL"), macrophages and promoting B-cell growth.

IL-4 er et 15-20 kDa stort protein fremstilt av aktiverte T-celler, benmargsstromaceller og masteeller. Den åpne IL-4-ieseramme koder for 140 aminosyrers murint IL-4 og 153 aminosyrers humant IL-4. Opprinnelig ble IL-4 definert som en faktor som aktiverte B-cellevekst og -differensiering. Dens virkninger omfatter også makrofagaktivering og induksjon av MHC-molekyler av klasse II, vekst av noen T-celle- og mastcel-lelinjer, proliferasjon og CTL-generering fra T-celler fra humant, perifert blod, økning av immunglobulinproduksjon av B-celler og en kofaktor i vekst av hematopoeseceller fra stam-celler. IL-4 spiller en viktig rolle i nedreguleringen av IL-2-induserte NK-celle- og LAK-celleaktiviteter. Humant IL-4 er ikke aktivt på murine celler. IL-4 is a 15-20 kDa protein produced by activated T cells, bone marrow stromal cells and mast cells. The open IL-4 ise frame codes for 140 amino acid murine IL-4 and 153 amino acid human IL-4. Initially, IL-4 was defined as a factor that activated B-cell growth and differentiation. Its effects also include macrophage activation and induction of class II MHC molecules, growth of some T cell and mast cell lines, proliferation and CTL generation from human peripheral blood T cells, increase in immunoglobulin production by B cells and a cofactor in the growth of hematopoietic cells from stem cells. IL-4 plays an important role in the down-regulation of IL-2-induced NK cell and LAK cell activities. Human IL-4 is not active on murine cells.

IL-7 er et 20-25 kDa stort, 177 aminosyrers polypeptid fremstilt av benmarg og thymusstromaceller. Selv om det opprinnelig ble beskrevet som en pre-B-cellevekstfaktor, understøtter IL-7 veksten av pro-B-celler samt pre-B-celler. IL-7 induserer også proliferasjon og CTL-generering fra T-celler fra humant, perifert blod, IL-2-reseptorekspresjon, IL-2-produksjon og -proliferasjon i CD4<*-> og CD8<+->celler. IL-7 gir også synergi med IL-2 og øker thymisk T-celleproliferasjon og induserer proliferasjon av CD4"- og CD8"-thymocytter. IL-9 er et 30-40 kDa stort, 144 aminosyrers polypeptid fremstilt av aktiverte T-lymfocytter. IL-9 ble først identifisert som en hjelper-T-cellevekstfaktor. IL-9 stimulerer erytroid utvikling og øker IL-3-indusert proliferasjon i ben-margsavledede mastceller. Det modulerer også IgE- og igG-produksjon av B-celler i nærvær av IL-4. Murint IL-9 er aktivt på menneskeceller, mens humant IL-9 ikke virker på murine celler. IL-7 is a 20-25 kDa, 177 amino acid polypeptide produced by bone marrow and thymus stromal cells. Although originally described as a pre-B cell growth factor, IL-7 supports the growth of pro-B cells as well as pre-B cells. IL-7 also induces proliferation and CTL generation from human peripheral blood T cells, IL-2 receptor expression, IL-2 production and proliferation in CD4<*-> and CD8<+-> cells. IL-7 also synergizes with IL-2 and increases thymic T cell proliferation and induces proliferation of CD4" and CD8" thymocytes. IL-9 is a 30-40 kDa, 144 amino acid polypeptide produced by activated T-lymphocytes. IL-9 was first identified as a helper T cell growth factor. IL-9 stimulates erythroid development and increases IL-3-induced proliferation in bone marrow-derived mast cells. It also modulates IgE and igG production by B cells in the presence of IL-4. Murine IL-9 is active on human cells, while human IL-9 does not act on murine cells.

Humant IL-10 er et 16-20 kDa stort, 178 aminosyrers polypeptid fremstilt av makrofager og TH2, men ikke av TH1-T-hjelperceller. På samme måte som IL-2, IL-4 og IL-7 har IL-10 flere forskjellige biologiske aktiviteter. IL-10 ble oppdaget på grunnlag av dets evne til å inhibere cytokinproduksjon av aktiverte T-celler. Både humant og murint IL-10 er vekststimu-latorkofaktorer for thymocytter og T-celler i kombinasjon med IL-7 eller IL-2 pluss IL-4. IL-10 stimulerer mastcellelevedyk-tighet og -vekst i kombinasjon med IL-4 eller IL-3 pluss IL-4. IL-10 induserer også IgG-utskillelsen og ekspresjonen av MHC-molekyler av klasse II på B-celler og øker deres levedyktighet i kultur. IL-12 er konstitutivt eller induseres av forbolester og kalsiumionofor - i lymfoblastoidcellelinjer og fremstilles ved hjelp av LPS-stimulerte makrofager. IL-12 har en molekylvekt på 70 kDa og en uvanlig heterodimerstruktur, idet det er dannet av to disulfidbundne glykoproteiner. Den største av de to glykoproteinunderenhetene er et 40 kDa stort 328 aminosyrers polypeptid. Den mindre glykoproteinunderenheten er et 35 kDa stort 253 aminosyrers polypeptid. Begge glykoproteinunderenhetene er nødvendige for bioaktivitet. IL-12 induserer proliferasjonen av aktiverte T-celler i både CD4<+-> og CD8<+->undersettene, uavhengig av IL-2. IL-12 aktiverer også NK-cel-leformidlet cytotoksisitet og gir synergi med IL-2, hvorved det frembringes LAK-celler. I motsetning til IL-2 og IL-7, men på samme måte som IL-4, forårsaker IL-12 liten eller ingen proliferasjon av gjenværende mononukleære celler i perifert blod. Human IL-10 is a 16-20 kDa, 178 amino acid polypeptide produced by macrophages and TH2, but not by TH1-T helper cells. In the same way as IL-2, IL-4 and IL-7, IL-10 has several different biological activities. IL-10 was discovered on the basis of its ability to inhibit cytokine production by activated T cells. Both human and murine IL-10 are growth stimulator cofactors for thymocytes and T cells in combination with IL-7 or IL-2 plus IL-4. IL-10 stimulates mast cell viability and growth in combination with IL-4 or IL-3 plus IL-4. IL-10 also induces the secretion of IgG and the expression of class II MHC molecules on B cells and increases their viability in culture. IL-12 is constitutive or induced by phorbol ester and calcium ionophore in lymphoblastoid cell lines and is produced by LPS-stimulated macrophages. IL-12 has a molecular weight of 70 kDa and an unusual heterodimer structure, in that it is formed from two disulfide-bonded glycoproteins. The larger of the two glycoprotein subunits is a 40 kDa 328 amino acid polypeptide. The smaller glycoprotein subunit is a 35 kDa 253 amino acid polypeptide. Both glycoprotein subunits are required for bioactivity. IL-12 induces the proliferation of activated T cells in both the CD4<+-> and CD8<+-> subsets, independently of IL-2. IL-12 also activates NK cell-mediated cytotoxicity and synergizes with IL-2, whereby LAK cells are produced. Unlike IL-2 and IL-7, but similarly to IL-4, IL-12 causes little or no proliferation of residual peripheral blood mononuclear cells.

O ppsummering av oppfinnelsen Summary of the invention

Foreliggende oppfinnelse omfatter isolert DNA-sekvens, kjennetegnet ved at sekvensen omfatter, The present invention comprises isolated DNA sequence, characterized in that the sequence comprises,

(a) DNA-sekvenser som koder for polypeptidene ifølge sekvensen, hvor aminosyre 52 er Leu eller His, aminosyre 57 er Ala eller Thr, aminosyre 58 er Ser eller Asp, aminosyre 73 er Ser eller Ile og aminosyre 80 er Val eller Ile, (b) varianter av sekvensene i (a) som koder for et protein med tilsvarende biologisk aktivitet, og (c) DNA-sekvenser sin påvisbart hybridiserer til DNA-sekvensene ifølge (a) eller (b), eller deres komplementære tråder, under svært strenge betingelser omfattende hybridisering og vask etter hybridisering ved 55 °C eller høyere og ved en saltkonsentrasjon på 0,5 x SSC eller lavere, og som etter ekspresjon koder for et polypeptid med tilsvarende biologisk aktivitet som sekvensene ifølge SEKV. ID NR. 3 eller SEKV. ID NR. 6. (a) DNA sequences encoding the polypeptides of the sequence wherein amino acid 52 is Leu or His, amino acid 57 is Ala or Thr, amino acid 58 is Ser or Asp, amino acid 73 is Ser or Ile and amino acid 80 is Val or Ile, ( b) variants of the sequences in (a) that encode a protein with corresponding biological activity, and (c) DNA sequences that hybridize detectably to the DNA sequences of (a) or (b), or their complementary strands, under very stringent conditions comprising hybridization and washing after hybridization at 55 °C or higher and at a salt concentration of 0.5 x SSC or lower, and which after expression encodes a polypeptide with similar biological activity to the sequences according to SEQ. ID NO. 3 or SEQ. ID NO. 6.

Oppfinnelsen omfatter også isolert DNA-sekvens som koder for et forløperpolypeptid til det biologisk aktive IL-15-polypeptid, kjennetegnet ved at DNA-sekvensen er valgt fra gruppen bestående av: en DNA-sekvens som etter ekspresjon koder for polypeptidet definert ved SEKV. ID NR. 2, og The invention also includes isolated DNA sequence which codes for a precursor polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide, characterized in that the DNA sequence is selected from the group consisting of: a DNA sequence which, after expression, codes for the polypeptide defined by SEQ ID NO. ID NO. 2, and

en DNA-sekvens som etter ekspresjon koder for polypeptid definert ved a DNA sequence which, after expression, codes for polypeptide defined by

SEKV. ID NR. 5. SEQ. ID NO. 5.

En ny T-cellevekstfaktor, heretter henvist til som "interleukin-15" ("IL-15"), er blitt isolert og renset. En cDNA-sekvens som koder for et ape-IL-15-polypeptid, ble isolert og har et 483 bp stort 5'-ikke-kodende område forut for en åpen leseramme med 489 bp og et 303 bp stort 3'-ikke-kodende område. En cDNA-sekvens som koder for et humant IL-15-polypeptid, har et 316 bp stort 5'-ikke-kodende område som går forut for en åpen leseramme med 489 bp og et 397 bp stort 31 - ikke-kodende område. Nukleotidsekvensene og de utledede aminosyresekvenser for åpne leser ammer fra ape og menneske er beskrevet i SEKV.ID NR. 1 og 4. De åpne leserammene både fra ape og menneske koder for et forløperpolypeptid (SEKV.ID NR. 2 og 5). Forløperpolypeptidene omfatter hver en 48 aminosyrers ledersekvens og en sekvens som koder for modne ape- eller menneske-IL-15-polypeptider. De aktive ape- og menneske-IL-15-polypeptider er beskrevet i henholdsvis SEKV.ID NR. 3 og 6. A new T-cell growth factor, hereinafter referred to as "interleukin-15" ("IL-15"), has been isolated and purified. A cDNA sequence encoding a monkey IL-15 polypeptide was isolated and has a 483 bp 5' non-coding region preceding an open reading frame of 489 bp and a 303 bp 3' non-coding region area. A cDNA sequence encoding a human IL-15 polypeptide has a 316 bp 5' non-coding region preceding an open reading frame of 489 bp and a 397 bp 31 non-coding region. The nucleotide sequences and the deduced amino acid sequences for open reads from monkeys and humans are described in SEQ ID NO. 1 and 4. The open reading frames from both monkey and human code for a precursor polypeptide (SEQ ID NOS 2 and 5). The precursor polypeptides each comprise a 48 amino acid leader sequence and a sequence encoding mature monkey or human IL-15 polypeptides. The active monkey and human IL-15 polypeptides are described respectively in SEQ ID NO. 3 and 6.

Foreliggende oppfinnelse omfatter videre andre IL-15-polypeptider som kodes for av nukleotidsekvenser som hybridiserer under middels til svært sterke betingelser til prober definert ved nukleotidene 145-489 i SEKV.ID NR. 1 eller 4, eller til deres komplementære DNA- eller RNA-tråder, og som etter ekspresjon koder for polypeptider som stimulerer T-lymfocytter til å proliferere og differensiere. Oppfinnelsen omfatter videre nukleotidsekvenser som, på grunn av den genetiske kodes degenerasjon, koder for IL-15-polypeptider kodet for av nukleotidsekvensene beskrevet ovenfor og sekvenser som er komplementære til dem. The present invention further comprises other IL-15 polypeptides which are coded for by nucleotide sequences that hybridize under medium to very strong conditions to probes defined at nucleotides 145-489 in SEQ ID NO. 1 or 4, or to their complementary DNA or RNA strands, and which, after expression, encode polypeptides that stimulate T-lymphocytes to proliferate and differentiate. The invention further encompasses nucleotide sequences which, due to the degeneracy of the genetic code, encode IL-15 polypeptides encoded by the nucleotide sequences described above and sequences complementary thereto.

Enda ytterligere sørger oppfinnelsen for rekombinante DNA-molekyler som omfatter nukleotidsekvensene ovenfor, f.eks. ekspresjonsvektorer eller plasmider og transformerte vertsceller som kan anvendes ved fremstilling av IL-15-polypeptider, og fremgangsmåter for fremstilling av rekombinante IL-15-polypeptider under anvendelse av slike molekyler. Even further, the invention provides for recombinant DNA molecules comprising the above nucleotide sequences, e.g. expression vectors or plasmids and transformed host cells that can be used in the production of IL-15 polypeptides, and methods for the production of recombinant IL-15 polypeptides using such molecules.

Kort beskrivelse av tegningene Brief description of the drawings

Figur 1 viser nukleotidsekvensen og den utledede aminosyresekvens til den aktive apeart av IL-15. Figur 2 viser nukleotidsekvensen og den utledede aminosyresekvens til den aktive humanart av IL-15. Figur 3 viser et rense- og proteinsekvenseringsskjerna som kan anvendes ved isolering av IL-15-polypeptider. Figur 4 viser homologien mellom nukleotidsekvenser som koder for human- og apearter av IL-15. Humansekvensen er vist over apesekvensen. Figur 5 viser homologien mellom aminosyresekvenser til human- og apeartene av IL-15. Humansekvensen er vist over apesekvensen. I begge artene spaltes ledersekvensen (aminosyrene 1-48) fra forløperpolypeptidet, hvorved det modne polypeptid dannes (aminosyrene 49-162). Figur 6 viser den biologiske aktivitet av rekombinant IL-15, IL-2 og IL-4 in vltro under anvendelse av CTLL-2-celler. Den proliferatlve respons ln vltro av CTLL-2-celler ble målt ved økende konsentrasjoner av rekombinant cytokin (uttrykt som ng/ml). Dataene er uttrykt som cpm av <3>H-tymidin inkorporert (X IO"<3>). Figur 7 viser induksjonen av lytisk CTL-aktivitet ved hjelp av rIL-15 og IL-2. Antigenspesifikke, cytolytiske T-lymfocytter (CTL) ble frembrakt in vltro. Enkjernede celler fra humant, perifert blod (PBL) fra én donor ble stimulert med bestrålt PBL fra en allogen donor i kulturer som inneholder forskjellige konsentrasjoner av enten IL-2 eller humant rIL-15. Kulturer ble analysert med hensyn på cytolytisk aktivitet mot <51>Cr-merkede mål avledet fra den opprinnelige stimulerende donor. Lytiske enheter ble beregnet som inverstallet av den fraksjon av kulturen som ga respons, som er påkrevet for å frembringe 50% av den maksimale, spesifikke <51>Cr-frigjørelse. Figur 8 viser induksjonen av LAK-cellers lytiske aktivitet ved hjelp av rIL-15 og IL-2. Lymfokinaktiverte dreperceller (LAK) ble frembrakt in vi tro. Humant PBL ble stimulert med bestrålt, autologt PBL,' og cytolytisk aktivitet ble målt mot Daudi-lymfoblastoidcellelinjen. Lytiske enheter ble beregnet som det omvendte tall av den fraksjon av kulturen som ga respons, som er påkrevet for å frembringe 30% av den maksimale, spesifikke 51Cr-frigjørelse. Figur 9 viser induksjonen av NK-cellelytisk aktivitet ved hjelp av rIL-15 og IL-2. Naturlige dreperceller (NK-celler) ble isolert fra helt, human PBL isolert ved hjelp av antistoffaffinitet mot paramagnetiske mikrosfærer under anvendelse av monoklonale antistoffer mot CD16. De rensede NK-celler ble dyrket i 3 dager, og cytolytisk aktivitet ble målt mot K562-erytroleukemicellelinjen. Figure 1 shows the nucleotide sequence and the deduced amino acid sequence of the active monkey species of IL-15. Figure 2 shows the nucleotide sequence and the deduced amino acid sequence of the active human species of IL-15. Figure 3 shows a purification and protein sequencing core that can be used when isolating IL-15 polypeptides. Figure 4 shows the homology between nucleotide sequences encoding human and monkey species of IL-15. The human sequence is shown above the monkey sequence. Figure 5 shows the homology between amino acid sequences of the human and monkey species of IL-15. The human sequence is shown above the monkey sequence. In both species, the leader sequence (amino acids 1-48) is cleaved from the precursor polypeptide, whereby the mature polypeptide is formed (amino acids 49-162). Figure 6 shows the biological activity of recombinant IL-15, IL-2 and IL-4 in vitro using CTLL-2 cells. The in vitro proliferative response of CTLL-2 cells was measured at increasing concentrations of recombinant cytokine (expressed as ng/ml). The data are expressed as cpm of <3>H-thymidine incorporated (X IO"<3>). Figure 7 shows the induction of lytic CTL activity by rIL-15 and IL-2. Antigen-specific cytolytic T lymphocytes (CTL ) were generated in vitro. Human peripheral blood mononuclear cells (PBL) from one donor were stimulated with irradiated PBL from an allogeneic donor in cultures containing different concentrations of either IL-2 or human rIL-15. Cultures were analyzed for on cytolytic activity against <51>Cr-labeled targets derived from the original stimulating donor Lytic units were calculated as the inverse of the fraction of the culture that responded, which is required to produce 50% of the maximal specific <51>Cr -release. Figure 8 shows the induction of LAK cell lytic activity by rIL-15 and IL-2. Lymphokine-activated killer (LAK) cells were generated in vitro. Human PBL were stimulated with irradiated autologous PBL,' and cytolytic activity was measured against Daudi lymphoblastoid cell line jen. Lytic units were calculated as the reciprocal of the fraction of the culture that responded, which is required to produce 30% of the maximum specific 51Cr release. Figure 9 shows the induction of NK cell lytic activity by rIL-15 and IL-2. Natural killer cells (NK cells) were isolated from whole human PBL isolated by antibody affinity to paramagnetic microspheres using monoclonal antibodies against CD16. The purified NK cells were cultured for 3 days, and cytolytic activity was measured against the K562 erythroleukemia cell line.

Nærmere beskrivelse av oppfinnelsen Detailed description of the invention

"Interleukin-15" eller "IL-15" henviser til pattedyr-polypeptider som er strukturelt like med polypeptidene beskrevet her, og som stimulerer T-lymfocytter til å proliferere og differensiere. IL-15 kan skjelnes fra IL-2, IL-4, IL-7, IL-9, IL-10 og IL-12 i struktur og cellulær opprinnelse (tabell "Interleukin-15" or "IL-15" refers to mammalian polypeptides that are structurally similar to the polypeptides described herein and that stimulate T lymphocytes to proliferate and differentiate. IL-15 can be distinguished from IL-2, IL-4, IL-7, IL-9, IL-10 and IL-12 in structure and cellular origin (Table

1). Hos primater produseres IL-15-polypeptid til å begynne med av epitelceller som et 162 aminosyrers forløper-IL-15-polypeptid. Denne forløperen inneholder en 48 aminosyrers ledersekvens som fjernes fra forløperpolypeptidet slik at det modne polypeptid dannes. Det modne IL-15-polypeptid er i stand til å signalisere proliferasjon og/eller differensiering av for-løper- eller modne T-celler. Proteinet kan derfor anvendes til å fremme langvarig dyrking in vitro av T-lymfocytter og T-cellelinjer. 1). In primates, IL-15 polypeptide is initially produced by epithelial cells as a 162 amino acid precursor IL-15 polypeptide. This precursor contains a 48 amino acid leader sequence that is removed from the precursor polypeptide so that the mature polypeptide is formed. The mature IL-15 polypeptide is capable of signaling proliferation and/or differentiation of progenitor or mature T cells. The protein can therefore be used to promote long-term cultivation in vitro of T-lymphocytes and T-cell lines.

"sIL-15" henviser til en apeart av IL-15. "hIL-15" henviser til en humanart av IL-15. "rIL-15" henviser til rekombinant IL-15. Både renset sIL-15 og rIL-15 vil stimulere proliferasjon av CTLL-2-celler (Gillis og Smith, Nature 268:154 (1977); ATCC TIB 214). Ved CTLL-2-proliferasjonsana-lysene induserte supernatanter av celler transfektert med rekombinant uttrykt forløper og fusjoner i ramme av modne former av sIL-15, CTLL-2-celleproliferasjon. For andre analyser ble det isolert T-celler fra perifert blod ("PBT") og enkjernede leukocytter fra perifert blod ("PBL") fra humant, perifert blod. Vi fant at rIL-15 stimulerte proliferasjon av PBT og PBL som på forhånd var blitt dyrket med fytohemagglu-tinin ("PHA"). rIL-15 stimulerte også proliferasjon av PHA-aktiverte CD4<+-> og CD8<*->celler. rIL-15 stimulerte proliferasjon av hvilende, humane T-celler eller hvilende, murine T-celle-kloner i nærvær av antistoffer mot anti-CD3 (T-cellereseptor). Forsøk med PHA-aktivert PBT viser at rIL-15 utøver sine vekst-stimulatoreffekter uavhengig av IL-2 ved at antistoffer mot IL-2 eller mot IL-2-reseptoren ikke inhiberer IL-15. "sIL-15" refers to a monkey species of IL-15. "hIL-15" refers to a human species of IL-15. "rIL-15" refers to recombinant IL-15. Both purified sIL-15 and rIL-15 will stimulate proliferation of CTLL-2 cells (Gillis and Smith, Nature 268:154 (1977); ATCC TIB 214). In the CTLL-2 proliferation assays, supernatants of cells transfected with recombinantly expressed precursor and fusions in the frame of mature forms of sIL-15 induced CTLL-2 cell proliferation. For other analyses, peripheral blood T cells ("PBT") and peripheral blood mononuclear leukocytes ("PBL") were isolated from human peripheral blood. We found that rIL-15 stimulated proliferation of PBT and PBL pre-cultured with phytohemagglutinin ("PHA"). rIL-15 also stimulated proliferation of PHA-activated CD4<+-> and CD8<*-> cells. rIL-15 stimulated proliferation of resting human T cells or resting murine T cell clones in the presence of anti-CD3 (T cell receptor) antibodies. Experiments with PHA-activated PBT show that rIL-15 exerts its growth-stimulating effects independently of IL-2 in that antibodies against IL-2 or against the IL-2 receptor do not inhibit IL-15.

Uttrykkene IL-15, sIL-15 og hIL-15 inkluderer analoger eller underenheter av naturlig forekommende pattedyr-poly pep tider som kodes for av nukleinsyrer som bindes til nuk-leinsyresekvensene i figurene 1 og 2 (nukleotidene fra og med 145 til og med 489 i SEKV.ID NR. 1 og 4) under spesifiserte, strenge betingelser og som induserer proliferasjon og differensiering av T-lymfocytter, og stimulerer proliferasjon av T-cellelinjer og isolert PBT. The terms IL-15, sIL-15, and hIL-15 include analogs or subunits of naturally occurring mammalian polypeptides encoded by nucleic acids that bind to the nucleic acid sequences of Figures 1 and 2 (nucleotides 145 through 489 inclusive in SEQ ID NOS 1 and 4) under specified, stringent conditions and which induce proliferation and differentiation of T-lymphocytes, and stimulate proliferation of T-cell lines and isolated PBT.

"Teknikk med rekombinant DNA" eller "rekombinant" henviser, slik det her er brukt, til teknikker og fremgangsmåter for fremstilling av bestemte polypeptider fra mikrobe-(f.eks. bakterie-, sopp- eller gjær-) eller pattedyrceller eller -organismer (f.eks. transgene organismer) som er blitt transformert eller transfektert med klonede eller syntetiske DNA-sekvenser for å muliggjøre biosyntese av heterologe pep-tider. Naturlig forekommende glykosyleringsmønstre vil bare bli oppnådd med pattedyrcelleekspresjonssystemer. Gjær gir et distinkt glykosyleringsmønster. Prokaryot celleekspresjon (f.eks. E. coli) vil generelt gi polypeptider uten glykosyler- "Recombinant DNA technology" or "recombinant" as used herein refers to techniques and methods for producing particular polypeptides from microbial (eg, bacterial, fungal or yeast) or mammalian cells or organisms ( eg transgenic organisms) that have been transformed or transfected with cloned or synthetic DNA sequences to enable the biosynthesis of heterologous peptides. Naturally occurring glycosylation patterns will only be achieved with mammalian cell expression systems. Yeast provides a distinct glycosylation pattern. Prokaryotic cell expression (e.g. E. coli) will generally yield polypeptides without glycosyl-

ing. Eng.

"Biologisk aktiv" betyr at et bestemt IL-15-polypeptid er i stand til å stimulere T-lymfocyttproliferasjon og/eller -differensiering. I tilfellet med sIL-15 og hIL-15 tilsvarer denne biologiske aktivitet også stimulering av proliferasjonen av murin- eller primat-, f.eks. huraan-T-cellelinjer eller PBT. "Biologically active" means that a particular IL-15 polypeptide is capable of stimulating T-lymphocyte proliferation and/or differentiation. In the case of sIL-15 and hIL-15, this biological activity also corresponds to stimulation of the proliferation of murine or primate, e.g. huraan T cell lines or PBT.

En "nuklebtidsekvens" henviser til et polynukleotid i form av et separat fragment eller som en komponent i en større DNA-konstruksjon som er blitt avledet fra DNA isolert minst én gang i hovedsakelig ren form (dvs. fri for forurensende, endo-gene materialer) og i en mengde eller konsentrasjon som mulig-gjør identifikasjon, manipulasjon og utvinning av dens kom-ponentnukleotidsekvenser ved hjelp av standard biokjemiske metoder (slik som de som er skissert i Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2. utg., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY (1989)), slik som en kloningsvektor. Slike sekvenser tilveiebringes fortrinnsvis i form av en åpen leseramme som er uavbrutt av interne, ikke-translaterte sekvenser, eller introner, som vanligvis er til stede i eukaryote gener. Sekvenser av ikke-translatert DNA kan være til stede 5' eller 3' fra en åpen leseramme hvor den samme ikke virker inn på manipulasjon eller ekspresjon av de kodende områder. A "nucleotide sequence" refers to a polynucleotide in the form of a separate fragment or as a component of a larger DNA construct that has been derived from DNA isolated at least once in substantially pure form (ie, free of contaminating, endogenous materials) and in an amount or concentration that permits the identification, manipulation and recovery of its component nucleotide sequences by standard biochemical methods (such as those outlined in Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2nd ed. , Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY (1989)), such as a cloning vector. Such sequences are preferably provided in the form of an open reading frame that is uninterrupted by internal, untranslated sequences, or introns, which are usually present in eukaryotic genes. Sequences of untranslated DNA may be present 5' or 3' from an open reading frame where the same does not affect the manipulation or expression of the coding regions.

"Rekombinant ekspresjonsvektor" henviser til et plasmid som omfatter en transkripsjonen enhet omfattende en sam-mensetning av (1) et genetisk element eller elementer som har en regulatorrolle ved genekspresjon, f.eks. promoterer eller enhancere, (2) en strukturell eller kodende sekvens som transkriberes til mRNA og translateres til et polypeptid med biologisk lL-15-aktivitet, og (3) passende transkripsjons- og tr anslås jonsinitierings- og termineringssekvenser. De forskjellige regulatorelementene som kan anvendes, er omtalt nedenunder (se teknikker med rekombinant DNA). Strukturelle elementer ment for anvendelse i gjærekspresjonssystemer, omfatter fortrinnsvis en ledersekvens som muliggjør ekstracellulær utskillelse av translatert polypeptid ved hjelp av en gjærvertscelle. Alternativt kan det rekombinante polypeptid i et bakterielt ekspresjonssystem omfattet en N-terminal met- "Recombinant expression vector" refers to a plasmid comprising a transcription unit comprising a composition of (1) a genetic element or elements that have a regulatory role in gene expression, e.g. promoters or enhancers, (2) a structural or coding sequence that is transcribed into mRNA and translated into a polypeptide with biological IL-15 activity, and (3) appropriate transcription and transcription initiation and termination sequences. The different regulatory elements that can be used are discussed below (see techniques with recombinant DNA). Structural elements intended for use in yeast expression systems preferably comprise a leader sequence which enables extracellular secretion of translated polypeptide by means of a yeast host cell. Alternatively, the recombinant polypeptide in a bacterial expression system may comprise an N-terminal met-

ioninrest. Den N-terminale metioninrest kan deretter spaltes fra det uttrykte, rekombinante polypeptid, hvorved man får et produkt som er egnet for videre rensing. ion residue. The N-terminal methionine residue can then be cleaved from the expressed, recombinant polypeptide, whereby a product is obtained which is suitable for further purification.

"Rekombinant, mikrobielt ekspresjonssystem" henviser til en i det vesentlige homogen monokultur av egnede verts-mikroorganismer, f .eks. bakterier, slik som E. coil, eller gjær, slik som S. cerevisiae, som har fått integrert stabilt en rekombinant transkripsjonsenhet i kromosom-DNA, eller som bærer den rekombinante transkripsjonsenhet som en komponent i et iboende plasmid. Generelt er vertsceller som utgjør et rekombinant, mikrobielt ekspresjonssystem, opphavet til en enkelt transformert stamcelle. Rekombinante, mikrobielle eks-presjonssystemer vil uttrykke heterologe polypeptider etter induksjon av regulatorelementene bundet til en strukturell nukleotidsekvens som skal uttrykkes. "Recombinant microbial expression system" refers to a substantially homogeneous monoculture of suitable host microorganisms, e.g. bacteria, such as E. coil, or yeast, such as S. cerevisiae, which have had a recombinant transcription unit stably integrated into chromosomal DNA, or which carry the recombinant transcription unit as a component of an intrinsic plasmid. In general, host cells constituting a recombinant microbial expression system are the origin of a single transformed stem cell. Recombinant, microbial expression systems will express heterologous polypeptides after induction of the regulatory elements bound to a structural nucleotide sequence to be expressed.

Transformerte vertsceller er celler som er blitt transformert eller transfektert med en rekombinant ekspresjonsvektor. Uttrykt pattedyr-IL-15 vil være lokalisert i vertscellen og/eller utskilles i kultursupernatant, avhengig av typen av vertscellen og genkonstruksjonen som er innføyet i vertscellen. Transformed host cells are cells that have been transformed or transfected with a recombinant expression vector. Expressed mammalian IL-15 will be localized in the host cell and/or secreted into the culture supernatant, depending on the type of host cell and the gene construct inserted into the host cell.

Middels strenge hybridiseringsbetingelser refererer seg, slik de her er definert og slik de er kjent for fagfolk innen teknikken, til betingelser beskrevet f.eks. i Sambrook et al., supra, vol. 2, s. 8.46-8.49 og 9.47-9.55. Middels strenge betingelser som definert av Sambrook et al., omfatter f.eks. hybridisering over natten og etterhybridiseringsvask-inger ved 55 °C, 5 x SSC, 0,5% SDS. Svært strenge betingelser omfatter høyere hybridiseringstemperaturer og etterhybridiser-ingsvaskinger, eller lavere saltkonsentrasjoner. Moderately stringent hybridization conditions refer, as defined here and as known to those skilled in the art, to conditions described e.g. in Sambrook et al., supra, vol. 2, pp. 8.46-8.49 and 9.47-9.55. Moderately strict conditions as defined by Sambrook et al., include e.g. overnight hybridization and post-hybridization washes at 55°C, 5 x SSC, 0.5% SDS. Very strict conditions include higher hybridization temperatures and post-hybridization washes, or lower salt concentrations.

IL- 15- polvpeptider IL-15 polypeptides

Vi har renset en apeart av IL-15 (sIL-15) og sekvensert det N-terminale peptid i modent sIL-15. Ved å anvende den N-terminale aminosyresekvens og PCR isolerte vi en cDNA som koder for sIL-15, og bestemte nukleotidsekvensen og den utledede aminosyresekvens for modent sIL-15 (figur 1), og nukleotidsekvensen og den utledede aminosyresekvens for en forløper til sIL-15-polypeptid (SEKV.ID NR. 1 og SEKV.ID NR. 2). For-løper-lL-15-polypeptidsekvens hos apearten omfatter et modent, aktivt protein (SEKV.ID NR. 3) som følger etter en 48 aminosyrers leder sekvens. Ledersekvensen er aminosyrene 1-48 i SEKV.ID NR. 2. Primat-IL-15 stimulerer proliferasjon av murine T-cellelinjer (f.eks. CTLL-2) og stimulerer proliferasjon og differensiering av humane PBT-celler. We have purified a monkey species of IL-15 (sIL-15) and sequenced the N-terminal peptide in mature sIL-15. Using the N-terminal amino acid sequence and PCR, we isolated a cDNA encoding sIL-15, and determined the nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of mature sIL-15 (Figure 1), and the nucleotide sequence and deduced amino acid sequence of a precursor of sIL- 15 polypeptide (SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2). The monkey precursor 1L-15 polypeptide sequence comprises a mature, active protein (SEQ ID NO: 3) following a 48 amino acid leader sequence. The leader sequence is amino acids 1-48 in SEQ ID NO. 2. Primate IL-15 stimulates proliferation of murine T-cell lines (eg, CTLL-2) and stimulates proliferation and differentiation of human PBT cells.

Foreliggende oppfinnelse omfatter også andre pattedyr-IL-15, inkludert menneske-lL-15, som har biologisk IL-15-aktivitet og kodes for av nukleotidsekvenser som hybridiserer under middels til svært strenge betingelser til prober definert ved SEKV.ID NR. 5. Et plasmid som inneholder en rekombinant klon av human IL-15-cDNA, ble deponert ved American Type Culture Collection, 12301 Parklawn Drive, Rockville, MD 20852, USA ("ATCC") i overensstemmelse med Budapestkonvensjonen om internasjonal anerkjennelse av deponeringer av mikroorganismer i forbindelse med behandling av patentsaker, 19. februar 1993, under deponeringsnr. ATCC 69245. Deponeringen ble kalt "141-hETF" og omfattet en E. coli-stamme inneholdende plasmid hETF/pDC406 som inneholdt et 316 bp stort 5<1->ikke-kodende område foran en åpen leseramme med 489 bp og et 397 bp stort 31 - ikke-kodende område flankert av Sal I-adapterne vist i SEKV.ID NR. 7 og 8. Alle restriksjoner vedrørende tilgjengeligheten for allmennheten av det deponerte materiale, vil bli ugjenkal-lelig fjernet etter bevilgningen av et patent. The present invention also encompasses other mammalian IL-15, including human IL-15, which has biological IL-15 activity and is encoded by nucleotide sequences that hybridize under medium to very stringent conditions to probes defined by SEQ ID NO. 5. A plasmid containing a recombinant clone of human IL-15 cDNA was deposited at the American Type Culture Collection, 12301 Parklawn Drive, Rockville, MD 20852, USA ("ATCC") in accordance with the Budapest Convention on the International Recognition of Deposits of microorganisms in connection with the processing of patent cases, 19 February 1993, under deposit no. ATCC 69245. The deposit was named "141-hETF" and comprised an E. coli strain containing plasmid hETF/pDC406 which contained a 316 bp 5<1->non-coding region in front of a 489 bp open reading frame and a 397 bp large 31 - non-coding region flanked by the Sal I adapters shown in SEQ ID NO. 7 and 8. All restrictions regarding the availability to the general public of the deposited material will be irrevocably removed after the grant of a patent.

Aminosyrestrukturen til IL-15-polypeptider som her er beskrevet, kan modifiseres ved å danne kovalente eller aggregatkonjugater med andre kjemiske rester, slik som glykosyl-grupper, lipider, fosfat, acetylgrupper og lignende, ved å . danne aminosyresekvensmutanter. Kovalente derivater av pattedyr-IL-15 fremstilles ved å binde bestemte, funksjonelle grupper til pattedyr-IL-15-aminosyresidekjeder eller til N-enden eller C-enden av et pattedyr-IL-15-polypeptid. Andre derivater av pattedyr-IL-15 innenfor omfanget av denne oppfinnelsen omfatter kovalente eller aggregatkonjugater av pattedyr-lL-15 eller dets fragmenter med andre proteiner eller polypeptider, slik som ved syntese i rekombinant kultur som N-terminale eller C-terminale fusjoner. For eksempel kan det konjugerte polypeptid være en signalpolypeptidsekvens (eller lederpoly-peptidsekvens) i det N-terminale område av et pattedyr-IL-15-polypeptid for transport fra dets syntesested til et sted innenfor eller utenfor cellemembranen eller -veggen (f.eks. gjær-a-faktorlederen). Ved å anvende vanlige teknikker kan videre IL-15-polypeptider uttrykkes som polypeptidfusjoner som omfatter ytterligere polypeptidsekvenser, slik som Fc- eller andre immunglobulinsekvenser, linkersekvenser eller andre sekvenser som letter rensing og identifikasjon av IL-15-polypeptider. Enda ytterligere kan IL-15-polypeptidfusjoner omfatte fusjoner med andre cytokiner for å tilveiebringe nye, poly-funksjonelle enheter. Andre cytokiner omfatter f.eks. hvilke som helst av interleukinene 1-13, tumornekrosefaktor (TNF), granulocyttmakrofagkolonistimulerende faktor (GM-CSF), granu-locyttkolonistimulerende faktor (G-CSF), mastcellevekstfaktor (MGF) og andre cytokiner som påvirker immuncellevekst, -differensiering eller -funksjon. The amino acid structure of IL-15 polypeptides described herein can be modified by forming covalent or aggregate conjugates with other chemical residues, such as glycosyl groups, lipids, phosphate, acetyl groups and the like, by . form amino acid sequence mutants. Covalent derivatives of mammalian IL-15 are prepared by attaching specific functional groups to mammalian IL-15 amino acid side chains or to the N-terminus or C-terminus of a mammalian IL-15 polypeptide. Other derivatives of mammalian IL-15 within the scope of this invention include covalent or aggregate conjugates of mammalian IL-15 or its fragments with other proteins or polypeptides, such as by synthesis in recombinant culture as N-terminal or C-terminal fusions. For example, the conjugated polypeptide may be a signal polypeptide sequence (or leader polypeptide sequence) in the N-terminal region of a mammalian IL-15 polypeptide for transport from its site of synthesis to a site within or outside the cell membrane or wall (e.g. the yeast-a-factor leader). By using common techniques, IL-15 polypeptides can further be expressed as polypeptide fusions comprising additional polypeptide sequences, such as Fc or other immunoglobulin sequences, linker sequences or other sequences that facilitate purification and identification of IL-15 polypeptides. Still further, IL-15 polypeptide fusions may include fusions with other cytokines to provide novel, poly-functional entities. Other cytokines include e.g. any of interleukins 1-13, tumor necrosis factor (TNF), granulocyte macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF), granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF), mast cell growth factor (MGF) and other cytokines that affect immune cell growth, differentiation or function.

Foreliggende oppfinnelse omfatter videre IL-15-polypeptider med endret glykosylering. IL-15-polypeptider uttrykt i gjær- eller pattedyrekspresjonssystemer (f.eks^ C0S-7-celler (ATCC CRL 1651)) kan i molekylvekt og glykosyleringsmønster være like med eller signifikant forskjellige fra et naturlig forekommende IL-15-polypeptid. Dette avhenger av valget av ekspresjonssystem. Ekspresjon av IL-15-polypeptider i bak-terieekspresjonssystemer, slik som E. coli, gir ikke-glykosyl-erte molekyler. The present invention further comprises IL-15 polypeptides with altered glycosylation. IL-15 polypeptides expressed in yeast or mammalian expression systems (eg, COS-7 cells (ATCC CRL 1651)) may be similar in molecular weight and glycosylation pattern to or significantly different from a naturally occurring IL-15 polypeptide. This depends on the choice of expression system. Expression of IL-15 polypeptides in bacterial expression systems, such as E. coli, yields non-glycosylated molecules.

Funksjonelle mutantanaloger av humant eller annet pattedyr-IL-15 kan syntetiseres, f.eks. med inaktiverte N-gly-kosyleringsseter ved hjelp av oligonukleotidsyntese og liger-ing, eller ved setespesifikke mutageneseteknikker. IL-15-poly-peptidderivater kan uttrykkes i homogen, redusert karbohydrat-form under anvendelse av gjærekspresjonssysterner. N-glykosyl-eringsseter i eukaryote polypeptider er kjennetegnet ved en aminosyretriplett Asn-*-£J hvor * er hvilken som helst aminosyre bortsett fra Pro, og £1 er Ser eller Thr. Et IL-15-mutant-derivat som her henvist til, er et polypeptid som er i det vesentlige homologt til en sekvens i et naturlig forekommende pattedyr-IL-15, men som har en aminosyresekvens som er for-skjellig fra et naturlig forekommende pattedyr-IL-15-polypeptid på grunn av en delesjon, innføyelse eller substitusjon. Functional mutant analogs of human or other mammalian IL-15 can be synthesized, e.g. with inactivated N-glycosylation sites by means of oligonucleotide synthesis and ligation, or by site-specific mutagenesis techniques. IL-15 polypeptide derivatives can be expressed in homogeneous, reduced carbohydrate form using yeast expression systems. N-glycosylation sites in eukaryotic polypeptides are characterized by an amino acid triplet Asn-*-£J where * is any amino acid except Pro, and £1 is Ser or Thr. An IL-15 mutant derivative referred to herein is a polypeptide that is substantially homologous to a sequence in a naturally occurring mammalian IL-15 but has an amino acid sequence that is different from a naturally occurring mammalian -IL-15 polypeptide due to a deletion, insertion or substitution.

Bioekvivalente analoger av IL-15-polypeptider i IL-15-muteiner kan konstrueres ved å lage forskjellige substitusjoner av aminosyrerester eller -sekvenser, eller ved å delere terminale eller interne rester eller sekvenser som ikke trengs for biologisk aktivitet. For eksempel kan Cys-rester deleres eller erstattes med andre aminosyrer for å forhindre dannelse av ukorrekte, intramolekylære disulfidbroer etter renaturer-ing. Andre fremgangsmåter for mutagenese omfatter modifikasjon av tobasiske aminosyrerester for å øke ekspresjon i gjærsys-temer hvor KEX2-proteaseaktivitet er til stede. Generelt lages substitusjoner konservativt ved å substituere med en aminosyre som har fysiokjemiske karakteristika som ligner karakteristi-kaene til den naturlig forekommende rest. Bioequivalent analogs of IL-15 polypeptides in IL-15 muteins can be constructed by making different substitutions of amino acid residues or sequences, or by dividing terminal or internal residues or sequences not needed for biological activity. For example, Cys residues can be split or replaced with other amino acids to prevent the formation of incorrect intramolecular disulfide bridges after renaturation. Other methods of mutagenesis include modification of dibasic amino acid residues to increase expression in yeast systems where KEX2 protease activity is present. In general, substitutions are made conservatively by substituting with an amino acid that has physiochemical characteristics similar to those of the naturally occurring residue.

Antisense- eller sense-oligonukleotider omfatter enkelttrådede nukleinsyresekvenser (enten RNA eller DNA) som er i stand til å binde til sense-IL-15-mRNA- eller antisense-lL-15-cDNA-sekvenser. Et antisense- eller sense-oligonukleotid ifølge foreliggende oppfinnelse omfatter et fragment av nukleotidsekvensene i figurene 1 eller 2, eller et DNA- eller RNA-komplement til nukleotidsekvensene i figurene 1 og 2. Et slikt fragment omfatter minst ca. 14 nukleotider og er i stand til å binde til IL-15-DNA. Evnen til å danne et antisense-eller et sense-oligonukleotid basert på en cDNA-sekvens for IL-15, er beskrevet f.eks. i Stein .and Cohen, Cancer Res. 48:2659 (1988), og van der Krol et al., BioTechnigues 6:958 Antisense or sense oligonucleotides comprise single-stranded nucleic acid sequences (either RNA or DNA) capable of binding to sense IL-15 mRNA or antisense IL-15 cDNA sequences. An antisense or sense oligonucleotide according to the present invention comprises a fragment of the nucleotide sequences in Figures 1 or 2, or a DNA or RNA complement to the nucleotide sequences in Figures 1 and 2. Such a fragment comprises at least approx. 14 nucleotides and is able to bind to IL-15 DNA. The ability to form an antisense or a sense oligonucleotide based on a cDNA sequence for IL-15 is described e.g. in Stein and Cohen, Cancer Res. 48:2659 (1988), and van der Krol et al., BioTechnigues 6:958

(1988). (1988).

Isolering og karakterisering av IL-15 fra ikke-rekombinante cellekilder krever en pattedyrcellelinje som produserer IL-15 og en responscellelinje som prolifererer som respons på IL-15-stimulering. En biologisk analyse med hensyn på pattedyr-IL-15 kan gjøre bruk av en vekstfaktoravhengig T-cellelinje som en detektor for faktorer som Induserer lymfoidcel-leproliferasjon. T-celler isolert fra blodprøver tatt fra men-nesker eller fra andre pattedyr, kan også anvendes til å ana-lysere pattedyr-IL-15-polypeptider. Isolation and characterization of IL-15 from non-recombinant cell sources requires a mammalian cell line that produces IL-15 and a responder cell line that proliferates in response to IL-15 stimulation. A biological assay with regard to mammalian IL-15 can make use of a growth factor-dependent T cell line as a detector for factors that induce lymphoid cell proliferation. T cells isolated from blood samples taken from humans or from other mammals can also be used to analyze mammalian IL-15 polypeptides.

En IL-15-avhengig cellelinje kan avledes fra murine An IL-15-dependent cell line can be derived from murine

CTLL-2-celler. Denne cellelinjen gir respons på renset, humant, murint og rekombinant IL-2 og murint IL-4, men ikke på IL-1, IL-3, .humant IL-4 eller noen av de andre kjente vekst-faktorene . CTLL-2 cells. This cell line responds to purified, human, murine and recombinant IL-2 and murine IL-4, but not to IL-1, IL-3, human IL-4 or any of the other known growth factors.

Man kan utnytte ape- eller human-IL-15-cDNA-sekvensene som her er beskrevet, til å oppnå cDNA-er som koder for andre pattedyrhomologer av ape- eller human-IL-15, ved hjelp av artskrysningshybridiseringsteknikker. I korte trekk dannes en oligonukleotidprobe fra nukleotidsekvensen i det protein-kodende område i sIL-15-cDNA som beskrevet i figur 1, eller SEKV. ID NR. 1, eller hIL-15-cDNA som beskrevet i figur 2 eller SEKV.ID NR. 4. Denne proben kan lages ved hjelp av standardteknikker, slik som de som er beskrevet i Sambrook et al., supra. Ape- eller humanproben brukes til å screene et pattedyr-cDNA-bibliotek eller genom-DNA-bibliotek under middels Strenge betingelser. Pattedyr-cDNA-biblioteker kan lages fra mRNA-er isolert fra f.eks. murine, perifere blodlymfocytter. Alternativt kan andre cDNA-biblioteker eller mRNA-er isolert fra forskjellige vev eller cellelinjer, screenes ved hjelp av Northern-hybridisering for å bestemme en egnet kilde for pattedyr-IL-15-DNA eller -mRNA. One can utilize the monkey or human IL-15 cDNA sequences described herein to obtain cDNAs encoding other mammalian homologues of monkey or human IL-15 using cross-species hybridization techniques. Briefly, an oligonucleotide probe is formed from the nucleotide sequence in the protein-coding region of the sIL-15 cDNA as described in Figure 1, or SEQ. ID NO. 1, or hIL-15 cDNA as described in Figure 2 or SEQ ID NO. 4. This probe can be made using standard techniques, such as those described in Sambrook et al., supra. The monkey or human probe is used to screen a mammalian cDNA library or genomic DNA library under medium stringency conditions. Mammalian cDNA libraries can be made from mRNAs isolated from e.g. murine peripheral blood lymphocytes. Alternatively, other cDNA libraries or mRNAs isolated from different tissues or cell lines can be screened by Northern hybridization to determine a suitable source of mammalian IL-15 DNA or mRNA.

CV- 1/ EBNA IL- 15- renslng CV- 1/ EBNA IL- 15- cleaning hose

Vi har renset IL-15 for å tilveiebringe et isolert polypeptidpreparat fra en ikke-homogen proteinoppløsning, slik som kondisjonert medium samlet opp fra celler som uttrykker IL-15. IL-15-aktivitet i urensede prøver av kondisjonert medium er ikke alltid påvisbar under anvendelse av for tiden tilgjengelige IL-15-bioanalyseteknikker. Det er vanligvis påkrevet med minst ett rensetrinn før biologisk IL-15-aktivitet er påvisbar under anvendelse av biologiske analyseteknikker som her er beskrevet. We have purified IL-15 to provide an isolated polypeptide preparation from a non-homogeneous protein solution, such as conditioned medium collected from cells expressing IL-15. IL-15 activity in crude samples of conditioned medium is not always detectable using currently available IL-15 bioassay techniques. At least one purification step is usually required before biological IL-15 activity is detectable using the biological assay techniques described herein.

En ikke-homogen proteinoppløsning, f.eks. kondisjonert medium, fremstilles ved å dyrke CV-l/EBNA-linjen (C.J. McMahan et al., EMBO J-, 10(10):2821-2832 (1991); ATCC CRL 10478) av nyreceller fra afrikansk grønnape i et vevsdyrk-ningsmedium. Mediet er fortrinnsvis Dulbeccos modifiserte, essensielle medium med høyt glukoseinnhold ("DMEM", Gibco). Helst anvendes det et dyrkningsmedium og et produksjonsmedium. Dyrknlngsmediet som anvendes ved Isolering av sIL-15 slik som her beskrevet, var DMEM med høyt glukoseinnhold (4 500 mg/l) supplert med 7,5% bovint fosterserum, 50 u/ml penicillin, 50 pg/ml streptomycin, 3-4,0 mM L-glutamin, 1 mM natriumpyruvat, 0,1 mM ikke-essensielle aminosyrer og 10 mM N-[2-hydroksyetyl]piperazin-N'-[2-etansulfonsyre] ("HEPES")-buffer. Et serumfritt produksjonsmedium av DMEM uten fenolrødt supplert med 50 u/ml penicillin, 50 ug/ml streptomycin, 3-4,0 mM L-glutamin, 1 mM natriumpyruvat, 0,1 mM ikke-essensielle aminosyrer og 10 mM HEPES-buffer ble utviklet for IL-15-produksjon og -rensing. CV-l/EBNA-cellene var festeavhengige og kunne dyrkes i skåler, kolber, rulleflasker eller mikrobærere. A non-homogeneous protein solution, e.g. conditioned medium, is prepared by growing the CV-1/EBNA line (C.J. McMahan et al., EMBO J-, 10(10):2821-2832 (1991); ATCC CRL 10478) of African green monkey kidney cells in a tissue culture ning medium. The medium is preferably Dulbecco's Modified High Glucose Essential Medium ("DMEM", Gibco). Preferably, a cultivation medium and a production medium are used. The culture medium used for the isolation of sIL-15 as described here was DMEM with a high glucose content (4,500 mg/l) supplemented with 7.5% fetal bovine serum, 50 u/ml penicillin, 50 pg/ml streptomycin, 3-4 .0 mM L-glutamine, 1 mM sodium pyruvate, 0.1 mM non-essential amino acids and 10 mM N-[2-hydroxyethyl]piperazine-N'-[2-ethanesulfonic acid] ("HEPES") buffer. A serum-free production medium of DMEM without phenol red supplemented with 50 u/ml penicillin, 50 µg/ml streptomycin, 3-4.0 mM L-glutamine, 1 mM sodium pyruvate, 0.1 mM non-essential amino acids and 10 mM HEPES buffer was developed for IL-15 production and purification. The CV-1/EBNA cells were adherent and could be grown in dishes, flasks, roller bottles or microcarriers.

Nærmere bestemt ble IL-15 produsert ved å dyrke CV-1/EBNA-celler på mikrobærere i en regulert bioreaktor. Celle-forråd ble oppbevart i rulleflaskekolber. For å starte en produksjonssyklus ble celler trypsinisert og inokulert i en spinnerkolbe inneholdende dyrknlngsmediet beskrevet ovenfor og 5 g/l "Cytodex" 3 mikrobærere (Pharmacia). Inokulasjonstetthet ved start varierte fra 1,5 til 3,5 x IO<5> celler/ml. For å sikre effektiv cellefesting til mikrobærerne ble cellene holdt i spinnerkolben i 2-24 timer. Spinnerkolbekulturer ble inkubert ved 37 'C og omrørt ved 25-40 RPM. Etter festeperioden ble kulturen overført til en regulert bioreaktor. Bioreaktortemp-eratur-, pH-, oksygen- og omrøringsinnstillingspunkter var henholdsvis 37 "C, 7,0, 20% metning (i forhold til luft) og 75-85 RPM. For rutineobservasjon av cellevekst og -tilstand ble prøver observert ved hjelp av lysfeltmikroskopi. Kvanti-fisering av cellevekst ble oppnådd ved å telle frigjorte kjerner etter behandling med en løsning av 100 mM sitronsyre og 0,1% krystallfiolett. Specifically, IL-15 was produced by growing CV-1/EBNA cells on microcarriers in a regulated bioreactor. Cell stocks were stored in roller bottle flasks. To initiate a production cycle, cells were trypsinized and inoculated into a spinner flask containing the culture medium described above and 5 g/l "Cytodex" 3 microcarriers (Pharmacia). Inoculation density at start ranged from 1.5 to 3.5 x 10<5> cells/ml. To ensure effective cell attachment to the microcarriers, the cells were kept in the spinner flask for 2-24 hours. Spinner flask cultures were incubated at 37°C and agitated at 25-40 RPM. After the fixation period, the culture was transferred to a regulated bioreactor. Bioreactor temperature, pH, oxygen and agitation set points were 37°C, 7.0, 20% saturation (relative to air) and 75-85 RPM, respectively. For routine observation of cell growth and condition, samples were observed using bright field microscopy Quantification of cell growth was achieved by counting released nuclei after treatment with a solution of 100 mM citric acid and 0.1% crystal violet.

Kulturen ble supplert med ytterligere vekstmedium når ammoniumnivåer nådde 5,0 mM. Dette ble gjentatt inntil mikrobærerne var sammenflytende. Dyrknlngsmediet ble så byttet ut med det serumfrie produksjonsmedium beskrevet ovenfor. Denne fremgangsmåten ble utført ved å la mikrobærerne slå seg ned på bunnen av reaktoren, lufte dyrknlngsmediet og erstatte det med produksjonsmedium. Dette ble gjentatt inntil det var oppnådd en omtrent 3,125 gangers fortynning. 2 til 6 runder med produksjon kan forventes. I hver runde fikk celler produsere i 4 til 7 dager, hvoretter 80% av produksjonsmediet ble samlet opp. Dette ble gjentatt inntil cellene var fullstendig løsnet fra mikrobærerne. The culture was supplemented with additional growth medium when ammonium levels reached 5.0 mM. This was repeated until the microcarriers were confluent. The culture medium was then replaced with the serum-free production medium described above. This procedure was carried out by allowing the microcarriers to settle to the bottom of the reactor, aerating the culture medium and replacing it with production medium. This was repeated until an approximately 3.125-fold dilution was achieved. 2 to 6 rounds of production can be expected. In each round, cells were allowed to produce for 4 to 7 days, after which 80% of the production medium was collected. This was repeated until the cells were completely detached from the microcarriers.

Omtrent 64 liter CV-l/EBNA-kondisjonert medium ble brukt til å rense og tilveiebringe protein for N-aminosyresek-vensen til sIL-15. Som vist i figur 3, omfattet renseskjemaet ultrafiltrering, hydrofob kromatografi, anionbytterkromato-grafi, væskekromatografi i reversfase med høy yteevne (RP-HPLC) og natriumdodecylsulfatpolyakrylamidgelelektroforese (SDS-PAGE). Protein ble sekvensert ved å blotte SDS-gelen mot en polyvinylidenfluoridmembran ("PVDF"-membran) og bestemme en N-terminal aminosyresekvens ved hjelp av Edman-nedbrytning direkte fra PVDF-membranen. N-terminal aminosyresekvensering avslørte de første 33 aminosyrene vist i SEKV.ID NR. 3. Etter-følgende sekvensering av en cDNA-klon erholdt fra et CV-1/EBNA-cDNA-bibliotek, ga en DNA-sekvens som koder for polypeptidet ifølge SEKV.ID NR. 2. Denne klonen omfatter en for-holdsvis kort 48 aminosyrers ledersekvens fra SEKV.ID NR. 2 og et modent polypeptid representert ved SEKV.ID NR. 3. Approximately 64 liters of CV-1/EBNA conditioned medium was used to purify and provide protein for the N-amino acid sequence of sIL-15. As shown in Figure 3, the purification scheme included ultrafiltration, hydrophobic chromatography, anion exchange chromatography, reverse phase high performance liquid chromatography (RP-HPLC) and sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). Protein was sequenced by blotting the SDS gel against a polyvinylidene fluoride ("PVDF" membrane) and determining an N-terminal amino acid sequence by Edman digestion directly from the PVDF membrane. N-terminal amino acid sequencing revealed the first 33 amino acids shown in SEQ ID NO. 3. Subsequent sequencing of a cDNA clone obtained from a CV-1/EBNA cDNA library yielded a DNA sequence encoding the polypeptide according to SEQ ID NO. 2. This clone comprises a relatively short 48 amino acid leader sequence from SEQ ID NO. 2 and a mature polypeptide represented by SEQ ID NO. 3.

Teknikker med rekombinant DNA Recombinant DNA techniques

Human-, ape- og andre pattedyr-IL-15-polypeptider fremstilles fortrinnsvis ved hjelp av teknikker med rekombinant DNA. Slike teknikker omfatter lnnføyelse av en cDNA som koder for et human- eller annet pattedyr-IL-15-polypeptid, eller et derivat derav i en ekspresjonsvektor. Human, monkey, and other mammalian IL-15 polypeptides are preferably produced by recombinant DNA techniques. Such techniques include inserting a cDNA encoding a human or other mammalian IL-15 polypeptide, or a derivative thereof, into an expression vector.

Rekombinant produksjon av pattedyr-IL-15-polypeptider eller derivater derav krever først isolering av en DNA-klon (dvs. cDNA) som ved ekspresjon koder for et pattedyr-IL-15-polypeptid eller et derivat derav. cDNA-kloner avledes fra primære celler eller cellelinjer som uttrykker pattedyr-IL-15-polypeptider. Først isoleres totalcelle-mRNA, så lages et cDNA-bibliotek fra mRNA-en ved hjelp av reverstranskripsjon. En cDNA-klon kan isoleres og identifiseres under anvendelse av DNA-sekvensinformasjonen som her er tilveiebrakt, for å utforme en artskrysningshybridiseringsprobe eller PCR-primer som beskrevet ovenfor. Recombinant production of mammalian IL-15 polypeptides or derivatives thereof first requires isolation of a DNA clone (ie, cDNA) which upon expression encodes a mammalian IL-15 polypeptide or derivative thereof. cDNA clones are derived from primary cells or cell lines expressing mammalian IL-15 polypeptides. First, total cell mRNA is isolated, then a cDNA library is made from the mRNA using reverse transcription. A cDNA clone can be isolated and identified using the DNA sequence information provided herein to design a cross-species hybridization probe or PCR primer as described above.

Den isolerte cDNA er fortrinnsvis i form av en åpen leseramme uavbrutt av interne, ikke-trånslaterte sekvenser, eller introner. Genom-DNA som inneholder de relevante nukleotidsekvensene som koder for ekspresjon av pattedyr-IL-15-polypeptider, kan også anvendes som en kilde for genetisk infor-masjon som kan brukes ved konstruksjon av kodende sekvenser. Den isolerte cDNA kan muteres ved hjelp av teknikker som er kjent innen faget for å hjelpe frem IL-15-derivater eller analoger som utviser biologisk IL-15-aktivitet. The isolated cDNA is preferably in the form of an open reading frame uninterrupted by internal, untranslated sequences, or introns. Genomic DNA containing the relevant nucleotide sequences that code for expression of mammalian IL-15 polypeptides can also be used as a source of genetic information that can be used in the construction of coding sequences. The isolated cDNA can be mutated using techniques known in the art to yield IL-15 derivatives or analogs that exhibit biological IL-15 activity.

Rekombinante ekspresjonsvektorer omfatter syntetiske eller cDNA-avledede DNA-fragmenter som koder for IL-15 eller biologisk aktive derivater derav. Den DNA som koder for et IL-15 eller et derivat derav, er operativt bundet til en egnet transkripsjonen eller translasjonen regulator- eller struk-turnukleotidsekvens, slik som én avledet fra pattedyr-, mik-robe-, virus- eller insektsgener. Eksempler på regulatorsek-venser omfatter f.eks. en genetisk sekvens med en regulatorrolle ved genekspresjon (f.eks. transkripsjonene promoterer eller enhancere), en eventuell operatorsekvens for å regulere transkripsjon, en sekvens som koder for egnede, ribosomale mRNA-bindingsseter, og passende sekvenser som regulerer transkripsjons- og translåsjonsinitiering og -terminering. Nukleotidsekvenser er operativt bundet når regulatorsekvensen forholder seg funksjonelt til strukturgenet. For eksempel kan en DNA-sekvens for et signalpeptid (sekretorisk leder) være operativt bundet til en strukturgen-DNA-sekvens for et pattedyr-IL-15 eller derivat derav dersom signalpeptidet uttrykkes som del av en forløperaminosyresekvens og deltar i sekresjonen av et pattedyr-IL-15. Videre er en promoternukleotidsekvens operativt bundet til en kodende sekvens (f.eks. strukturgen-DNA) dersom promoternukleotidsekvensen regulerer transkripsjonen av strukturgennukleotidsekvensen. Enda ytterligere kan et ribosombindende sete være operativt bundet til en struktur-gennukleotidkodende sekvens (f.eks. pattedyr-IL-15) dersom det ribosombindende sete er plassert innenfor vektoren for å hjelpe frem translasjon. Recombinant expression vectors comprise synthetic or cDNA-derived DNA fragments encoding IL-15 or biologically active derivatives thereof. The DNA encoding an IL-15 or derivative thereof is operably linked to a suitable transcriptional or translational regulatory or structural nucleotide sequence, such as one derived from mammalian, microbial, viral or insect genes. Examples of regulator sequences include e.g. a genetic sequence with a regulatory role in gene expression (e.g. the transcripts promote or enhance), a possible operator sequence to regulate transcription, a sequence that codes for suitable ribosomal mRNA binding sites, and suitable sequences that regulate transcription and translation initiation and - termination. Nucleotide sequences are operatively linked when the regulatory sequence relates functionally to the structural gene. For example, a DNA sequence for a signal peptide (secretory leader) can be operably linked to a structural gene DNA sequence for a mammalian IL-15 or derivative thereof if the signal peptide is expressed as part of a precursor amino acid sequence and participates in the secretion of a mammalian IL-15 IL-15. Furthermore, a promoter nucleotide sequence is operatively linked to a coding sequence (e.g. structural gene DNA) if the promoter nucleotide sequence regulates the transcription of the structural gene nucleotide sequence. Even further, a ribosome binding site can be operably linked to a structural gene nucleotide coding sequence (eg, mammalian IL-15) if the ribosome binding site is located within the vector to aid translation.

Egnede vertsceller for ekspresjon av pattedyr-IL-15 eller derivater derav omfatter prokaryoter, gjær eller høyere eukaryote celler under kontroll av passende promoterer. Prokaryoter omfatter gramnegative eller grampositive organismer, f.eks. E. coli eller basiller. Egnede prokaryote vertsceller for transformasjon omfatter f.eks. E. coli, Bacillus subtilis, Salmonella typhlmurium og forskjellige andre arter Suitable host cells for expression of mammalian IL-15 or derivatives thereof include prokaryotes, yeast or higher eukaryotic cells under the control of appropriate promoters. Prokaryotes include gram-negative or gram-positive organisms, e.g. E. coli or bacilli. Suitable prokaryotic host cells for transformation include e.g. E. coli, Bacillus subtilis, Salmonella typhlmurium and various other species

innenfor slektene Pseudomonas, Streptomyces og Staphylococcus. Som omtalt nærmere nedenunder, omfatter eksempler på egnede vertsceller også gjær, slik som S. cerevisiae, en pattedyrcellelinje, slik som ovarleceller fra kinesisk hamster (CHO) eller insektsceller. Cellefrie translasjonssystemer kan også anvendes til å fremstille pattedyr-IL-15 eller derivater derav under anvendelse av RNA-er avledet fra DNA-konstruksjonene som her er beskrevet. Passende klonings- og ekspresjonsvektorer for anvendelse med bakterie-, sopp-, gjær- og pattedyrcelle-verter er beskrevet f.eks. i Pouwels et al., Cloning Vectors: A Laboratory Manual, Elsevier, New York, 1985. within the genera Pseudomonas, Streptomyces and Staphylococcus. As discussed further below, examples of suitable host cells also include yeast, such as S. cerevisiae, a mammalian cell line, such as Chinese hamster ovary (CHO) cells, or insect cells. Cell-free translation systems can also be used to produce mammalian IL-15 or derivatives thereof using RNAs derived from the DNA constructs described herein. Suitable cloning and expression vectors for use with bacterial, fungal, yeast and mammalian cell hosts are described e.g. in Pouwels et al., Cloning Vectors: A Laboratory Manual, Elsevier, New York, 1985.

Når" et pattedyr-IL-15 eller derivat derav uttrykkes i en gjærvertscelle, kan nukleotidsekvensen (f.eks. strukturgenet) som etter ekspresjon koder for et pattedyr-IL-15 eller derivat derav, omfatte en ledersekvens. Ledersekvensen kan muliggjøre forbedret, ekstracellulær utskillelse av translatert polypeptid ved hjelp av en gjærvertscelle. When" a mammalian IL-15 or derivative thereof is expressed in a yeast host cell, the nucleotide sequence (eg, the structural gene) which upon expression encodes a mammalian IL-15 or derivative thereof may comprise a leader sequence. The leader sequence may enable enhanced, extracellular secretion of translated polypeptide by a yeast host cell.

Pattedyr-IL-15 kan uttrykkes i gjærvertsceller, fortrinnsvis fra Saccharontyces-slekten (f.eks. S. cerevisiae). Andre gjærslekter, slik som Pichla eller Kluyveromyces, kan også anvendes. Gjærvektorer vil ofte inneholde en replika-sjonsopprinnelsessekvens fra et 2 u gjærplasmid, en autonomt replikerende sekvens (ARS), et promoterområde, sekvenser for polyadenylering og sekvenser for transkripsjonsterminering. Fortrinnsvis omfatter gjærvektorer en replikasjonsopprinnel-sessekvens og selekterbar markør. Egnede promotersekvenser for gjærvektorer omfatter promoterer for metallotionein, 3-fosfo-glyseratkinase (Hitzeman et al., J. Biol. Chem. 255:2073, 1980) eller andre glykolytiske enzymer (Hess et al., J. Adv. Enzyme Reg. 7:149, 1968; og Holland et al., Biochem. 17:4900, 1978), slik som enolase, glyseraldehyd-3-fosfatdehydrogenase, heksokinase, pyruvatdekarboksylase, fosfofruktokinase, glukose-6-fosfatisomerase, 3-fosfoglyseratmutase, pyruvatkinase, triosefosfatisomérase, fosfoglukoseisomerase og glukokinase. Andre egnede vektorer og promoterer for anvendelse i gjæreks-presjon er nærmere beskrevet i Hitzeman, EP-A-73 657. Mammalian IL-15 can be expressed in yeast host cells, preferably from the Saccharontyces genus (eg, S. cerevisiae). Other yeast genera, such as Pichla or Kluyveromyces, can also be used. Yeast vectors will often contain an origin of replication sequence from a 2 µ yeast plasmid, an autonomously replicating sequence (ARS), a promoter region, sequences for polyadenylation and sequences for transcription termination. Preferably, yeast vectors comprise an origin of replication sequence and selectable marker. Suitable promoter sequences for yeast vectors include promoters for metallothionein, 3-phospho-glycerate kinase (Hitzeman et al., J. Biol. Chem. 255:2073, 1980) or other glycolytic enzymes (Hess et al., J. Adv. Enzyme Reg. 7 :149, 1968; and Holland et al., Biochem. 17:4900, 1978), such as enolase, glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase, hexokinase, pyruvate decarboxylase, phosphofructokinase, glucose-6-phosphate isomerase, 3-phosphoglycerate mutase, pyruvate kinase, triosephosphate isomerase, phosphoglucose isomerase and glucokinase. Other suitable vectors and promoters for use in yeast expression are further described in Hitzeman, EP-A-73 657.

Gjærvektorer kan settes sammen f.eks. ved å anvende DNA-sekvenser fra pBR322 for utvelgelse og replikasjon i E. coli (Amp<r->gen og replikasjonsopprinnelsessted). Andre gjær-DNA-sekvenser som kan inkluderes i en gjærekspresjonskonstruk-sjon, omfatter en glukoseundertrykkbar ADH2-promoter og en a-faktorsekresjonsleder. ADH2-promoteren er blitt beskrevet av Russell et al. (J. Biol. Chem. 258:2674, 1982) og Beier et al. Yeast vectors can be put together, e.g. using DNA sequences from pBR322 for selection and replication in E. coli (Amp gene and origin of replication). Other yeast DNA sequences that can be included in a yeast expression construct include a glucose-repressible ADH2 promoter and an α-factor secretion leader. The ADH2 promoter has been described by Russell et al. (J. Biol. Chem. 258:2674, 1982) and Beier et al.

(Nature 300:724, 1982). Gjær-a-faktorledersekvensen styrer utskillelse av heterologe polypeptider. a-faktorledersekvensen innføyes ofte mellom promotersekvensen og strukturgensekven-sen. Se f.eks. Kurjan et al., Cell 30:933, 1982; og Bitter et al., Proe. Nati. Acad. Sei. USA 81:5330, 1984. En ledersekvens kan modifiseres nær sin 3<*->ende slik at den inneholder ett eller flere restriksjonsseter. Dette vil lette fusjon av ledersekvensen til strukturgenet. Gjærtransformasjonsfrem-gangsmåter er kjent for fagfolk innen teknikken. Én slik fremgangsmåte er beskrevet av Hinnen et al.. Proe. Nati. Acad. Sel. USA 75:1929, 1978. Fremgangsmåten ifølge Hinnen et al. selekterer med hensyn på Trp<+->transformanter i et selektivt medium hvor det selektive medium består av 0,67% gjærnitrogen-base, 0,5% kasaminosyrer, 2% glukose, 10 mg/ml adenin og 20 mg/ml uracil. (Nature 300:724, 1982). The yeast α-factor leader sequence directs secretion of heterologous polypeptides. The α-factor leader sequence is often inserted between the promoter sequence and the structural gene sequence. See e.g. Kurjan et al., Cell 30:933, 1982; and Bitter et al., Proe. Nati. Acad. Pollock. USA 81:5330, 1984. A leader sequence can be modified near its 3<*->end to contain one or more restriction sites. This will facilitate fusion of the leader sequence to the structural gene. Yeast transformation methods are known to those skilled in the art. One such method is described by Hinnen et al.. Proe. Nati. Acad. Seal. USA 75:1929, 1978. The method of Hinnen et al. selects with regard to Trp<+->transformants in a selective medium where the selective medium consists of 0.67% yeast nitrogen base, 0.5% casamino acids, 2% glucose, 10 mg/ml adenine and 20 mg/ml uracil.

Gjærvertsceller transformert ved hjelp av vektorer som inneholder ADH2-promotersekvensen, kan dyrkes for å indusere ekspresjon i ét "rikt" medium. Et eksempel på et rikt medium er ett som består av 1% gjærekstrakt, 2% pepton og 1% glukose supplert med 80 mg/ml adenin og 80 mg/ml uracil. Opp-hevelse av undertrykkelsen av ADH2-promoteren inntrer når mediet er tømt for glukose. Yeast host cells transformed using vectors containing the ADH2 promoter sequence can be cultured to induce expression in a "rich" medium. An example of a rich medium is one consisting of 1% yeast extract, 2% peptone and 1% glucose supplemented with 80 mg/ml adenine and 80 mg/ml uracil. Derepression of the ADH2 promoter occurs when the medium is depleted of glucose.

Alternativt kan, hos en prokaryot vertscelle, slik som E. coli, pattedyr-IL-15 eller derivatet derav omfatte en N-terminal metioninrest for å lette ekspresjon av det rekombinante polypeptid i en prokaryot vertscelle. Det N-terminale Met kan spaltes fra det uttrykte, rekombinante pattedyr-IL-15. Alternatively, in a prokaryotic host cell, such as E. coli, the mammalian IL-15 or derivative thereof may comprise an N-terminal methionine residue to facilitate expression of the recombinant polypeptide in a prokaryotic host cell. The N-terminal Met can be cleaved from the expressed recombinant mammalian IL-15.

De rekombinante ekspresjonsvektorene som bærer den rekombinante pattedyr-IL-15-strukturgennukleotidsekvens eller derivatet derav, transfekteres eller transformeres inn i en egnet vertsmikroorganisme eller pattedyrcellelinje. The recombinant expression vectors carrying the recombinant mammalian IL-15 structural gene nucleotide sequence or derivative thereof are transfected or transformed into a suitable host microorganism or mammalian cell line.

Ekspresjonsvektorer transfektert 1 prokaryote vertsceller, omfatter generelt én eller flere fenotypeselekterbare markører. En fenotypeselekterbar markør er f.eks. et gen som koder for proteiner som gir antibiotisk resistens, eller som tilfører et autotroft behov, og et replikasjonsopprinnelsessted som gjenkjennes av verten, for å sikre amplifikasjon i verten. Andre anvendbare ekspresjonsvektorer for prokaryote vertsceller omfatter en selekterbar markør av bakterieopprin-nelse, avledet fra kommersielt tilgjengelige plasmider. Denne selekterbare markør kan omfatte genetiske elementer fra klon-ingsvektoren pBR322 (ATCC 37017). pBR322 inneholder gener for ampicillin- og tetrasyklinresistens og gir således enkle mid-ler for identifisering av transformerte celler. pBR322-"ryggrads"-avsnittene er kombinert med en passende promoter og en pattedyr-IL-15-strukturgensekvens. Andre kommersielt tilgjengelige vektorer omfatter f.eks. pKK223-3 (Pharmacia Fine Chemicals, Uppsala, Sverige) og pGEMl (Promega Biotec, Madi-son, WI, USA). Expression vectors transfected into prokaryotic host cells generally comprise one or more phenotype selectable markers. A phenotype selectable marker is e.g. a gene encoding proteins conferring antibiotic resistance, or conferring an autotrophic requirement, and an origin of replication recognized by the host, to ensure amplification in the host. Other useful expression vectors for prokaryotic host cells include a selectable marker of bacterial origin, derived from commercially available plasmids. This selectable marker may comprise genetic elements from the cloning vector pBR322 (ATCC 37017). pBR322 contains genes for ampicillin and tetracycline resistance and thus provides simple means for identifying transformed cells. The pBR322 "backbone" segments are combined with an appropriate promoter and a mammalian IL-15 structural gene sequence. Other commercially available vectors include e.g. pKK223-3 (Pharmacia Fine Chemicals, Uppsala, Sweden) and pGEM1 (Promega Biotec, Madison, WI, USA).

Promotersekvenser anvendes vanligvis til rekombinante, prokaryote vertscelleekspresjonsvektorer. Vanlige promotersekvenser omfatter B-laktamase (penicillinase), laktose-promotersystem (Chang et al., Nature 275:615, 1978; og Goeddel et al.. Nature 281:544, 1979), tryptofan(trp)promotersystem (Goeddel et al., Nucl. Acids Res. 8:4057, 1980; og EPA 36, 776) og tac-proraoter (Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1989)). Et særlig anvendbart, prokaryot vertscelleekspresjonssystem gjør bruk av en fag X PL-promoter og en varmelabil cl857ts-repres-sorsekvens. Plasmidvektorer tilgjengelige fra American Type Culture Collection som inkorporerer derivater av k PL-pro-moteren, omfatter plasmid pHUB2 (som befinner seg i E. coli-stamme JMB9 (ATCC 37092)) og pPLc28 (som befinner seg i E. coli RR1 (ATCC 53082)). Promoter sequences are commonly used for recombinant prokaryotic host cell expression vectors. Common promoter sequences include B-lactamase (penicillinase), lactose promoter system (Chang et al., Nature 275:615, 1978; and Goeddel et al.. Nature 281:544, 1979), tryptophan (trp) promoter system (Goeddel et al. , Nucl. Acids Res. 8:4057, 1980; and EPA 36, 776) and tac proteins (Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory (1989)). A particularly useful prokaryotic host cell expression system makes use of a phage X PL promoter and a heat-labile cl857ts repressor sequence. Plasmid vectors available from the American Type Culture Collection that incorporate derivatives of the k PL promoter include plasmid pHUB2 (located in E. coli strain JMB9 (ATCC 37092)) and pPLc28 (located in E. coli RR1 (ATCC 53082)).

Pattedyr- eller insektsvertscellekultursystemer vil også kunne anvendes til å uttrykke rekombinant pattedyr-IL-15-polypeptid eller derivater derav. Eksempler på egnede patte-dyrvertscellelinjer omfatter C0S-7-linjene av apenyreceller Mammalian or insect host cell culture systems will also be able to be used to express recombinant mammalian IL-15 polypeptide or derivatives thereof. Examples of suitable mammalian host cell lines include the C0S-7 line of monkey kidney cells

(Gluzman et al., Cell 23:175 (1981); ATCC CRL 1651), L-celler, C127-celler, 3T3-celler (ATCC CCL 163), CHO-celler, HeLa-celler (ATCC CCL 2) og BHK- (ATCC CRL 10) cellelinjer. Egnede pattedyrekspresjonsvektorer omfatter ikke-transkriberte elementer, slik som et replikasjonsopprinnelsessted, en promoter-sekvens, en enhancer bundet til strukturgenet, andre 5'- eller 3<1->flankerende, ikke-transkriberte sekvenser, slik som ribosombindende seter, et polyadenyleringssete, spleisedonor- og -akseptorseter, og transkripsjonstermineringssekvenser. (Gluzman et al., Cell 23:175 (1981); ATCC CRL 1651), L cells, C127 cells, 3T3 cells (ATCC CCL 163), CHO cells, HeLa cells (ATCC CCL 2) and BHK - (ATCC CRL 10) cell lines. Suitable mammalian expression vectors include non-transcribed elements, such as an origin of replication, a promoter sequence, an enhancer linked to the structural gene, other 5'- or 3<1->flanking, non-transcribed sequences, such as ribosome-binding sites, a polyadenylation site, splice donors - and -acceptor sites, and transcription termination sequences.

Transkripsjons- og translasjonskontrollsekvenser i pattedyrvertscelleekspresjonsvéktorer kan tilveiebringes ved hjelp av viruskilder. For eksempel utvinnes vanlig brukte pat-tedyrcellepromotersekvenser og -enhancersekvenser fra polyoraa, adenovirus 2, apevirus 40 (SV4Q) og humant cytomegalovirus. DNA-sekvenser avledet fra SV40-virusgenomet, f.eks. SV40-seter for opprinnelse, tidlig og sen promoter, enhancer, spleising og polyadenylering, kan anvendes for å tilveiebringe de øvrige genetiske elementene som er påkrevet for ekspresjon av en strukturgensekvens i en pattedyrvertscelle. Virale tidlig- og senpromoterer er særlig anvendbare ettersom begge lett oppnås fra et virusgenom som et fragment som også kan inneholde et viralt replikasjonsopprinnelsessted (Fiers et al.. Nature 273:113, 1978). Mindre eller større SV40-fragmenter kan også anvendes, forutsatt at den omtrent 250 store sekvens som strekker seg fra Hind 111-setet mot Bgl i-setet lokalisert i SV40-virusreplikasjonsopprinnelsesstedet, er inkludert. Transcriptional and translational control sequences in mammalian host cell expression vectors can be provided by viral sources. For example, commonly used mammalian cell promoter and enhancer sequences are derived from polyora, adenovirus 2, simian virus 40 (SV4Q), and human cytomegalovirus. DNA sequences derived from the SV40 virus genome, e.g. SV40 origin, early and late promoter, enhancer, splicing and polyadenylation sites can be used to provide the other genetic elements required for expression of a structural gene sequence in a mammalian host cell. Viral early and late promoters are particularly useful as both are readily obtained from a viral genome as a fragment which may also contain a viral origin of replication (Fiers et al.. Nature 273:113, 1978). Smaller or larger SV40 fragments can also be used, provided that the approximately 250 sequence extending from the Hind 111 site toward the Bgl i site located in the SV40 viral origin of replication is included.

Eksempelvise pattedyrekspresjonsvektorer kan konstrueres som beskrevet av Okayama og Berg (Mol. Cell. Biol. 3:280, 1983). Ytterligere anvendbare pattedyrekspresjonsvektorer er beskrevet i US patentsøknad nr. 07/480 694 innlevert 14. februar 1990, og i US patentsøknad nr. 07/543 193 innlevert 5. juni 1990. Exemplary mammalian expression vectors can be constructed as described by Okayama and Berg (Mol. Cell. Biol. 3:280, 1983). Additional useful mammalian expression vectors are described in US Patent Application No. 07/480,694 filed February 14, 1990, and in US Patent Application No. 07/543,193 filed June 5, 1990.

Rensing av rekombinant pattedvr- IL- 15 Purification of recombinant pattedvr-IL-15

IL-15-polypeptider kan fremstilles ved å dyrke transformerte vertsceller under kulturbetingelser som er nødvendige for å uttrykke pattedyr-IL-15-polypeptider eller derivater derav. De resulterende, uttrykte polypeptider kan så renses fra kulturmedier eller celleekstrakter. Et pattedyr-IL-15-polypeptld eller derivat derav kan konsentreres ved å anvende et kommersielt tilgjengelig proteinkonsentreringsfilter, f.eks. en "Amicon" eller "Millipore Pellicon" ultrafiltrer-ingsenhet. Med eller uten konsentrasjonstrinnet kan kultur-mediet påføres en rensematriks, slik som et hydrofobt kromato-grafimedium. Fenyl-"Sepharose" CL-4B (Pharmacia) er det fore-trukne medium. Alternativt kan det anvendes en anionbytterhar-piks, f.eks. en matriks eller et substrat med fremstikkende dietylaminoetylgrupper (DEAE-grupper). Matriksene kan være akrylamid, agarose, dekstran, cellulose eller andre typer som vanligvis anvendes ved proteinrensing. Alternativt kan det anvendes gelfiltreringsmedium. Rekombinant IL-15 er stabilt i sure, vandige buffere, og det kan også anvendes en kationbyt-terharpiks. IL-15 polypeptides can be prepared by growing transformed host cells under culture conditions necessary to express mammalian IL-15 polypeptides or derivatives thereof. The resulting expressed polypeptides can then be purified from culture media or cell extracts. A mammalian IL-15 polypeptide or derivative thereof can be concentrated using a commercially available protein concentration filter, e.g. an "Amicon" or "Millipore Pellicon" ultrafiltration unit. With or without the concentration step, the culture medium can be applied to a purification matrix, such as a hydrophobic chromatography medium. Phenyl-Sepharose CL-4B (Pharmacia) is the preferred medium. Alternatively, an anion exchange resin can be used, e.g. a matrix or a substrate with protruding diethylaminoethyl groups (DEAE groups). The matrices can be acrylamide, agarose, dextran, cellulose or other types that are usually used in protein purification. Alternatively, gel filtration medium can be used. Recombinant IL-15 is stable in acidic, aqueous buffers, and a cation exchange resin can also be used.

Endelig kan det anvendes ett eller flere trinn med reversfasevæskekromatografi med høy yteevne (RP-HPLC) under anvendelse av hydrofobe RP-HPLC-medier, f.eks. silikagel med fremstikkende metyl- eller andre alifatiske grupper, for å rense IL-15 ytterligere. Noen av eller alle de forutgående rensetrinn kan i forskjellige kombinasjoner også anvendes for å tilveiebringe et i det vesentlige homogent, rekombinant protein. Alternativt kan det også anvendes noen av eller alle trinnene som brukes ved rensefremgangsmåten beskrevet ovenfor, for ape-IL-15. Finally, one or more steps of reverse phase high performance liquid chromatography (RP-HPLC) can be employed using hydrophobic RP-HPLC media, e.g. silica gel with protruding methyl or other aliphatic groups, to further purify IL-15. Some or all of the previous purification steps can also be used in different combinations to provide an essentially homogeneous, recombinant protein. Alternatively, some or all of the steps used in the purification procedure described above for monkey IL-15 can also be used.

Rekombinant protein fremstilt i bakteriekultur, isoleres vanligvis ved innledende oppbrytning av vertscellene, sentrifugering, ekstraksjon fra cellepellet dersom det er et uoppløselig polypeptid, eller fra supernatanten dersom det er et oppløselig polypeptid, etterfulgt av ett eller flere kon-sentrer ings-, utsaltings-, ionebytter- eller størrelsesuteluk-kelseskromatografitrinn. Endelig kan RP-HPLC anvendes til sluttrensetrinn. Mikrobeceller kan brytes opp ved hjelp av hvilken som helst passende metode, inkludert fryse-tine-sykluser, sonikering, mekanisk oppbrytning eller bruk av celle-lyseringsmidler. Recombinant protein produced in bacterial culture is usually isolated by initial disruption of the host cells, centrifugation, extraction from the cell pellet if it is an insoluble polypeptide, or from the supernatant if it is a soluble polypeptide, followed by one or more concentration, salting out, ion exchange or size exclusion chromatography step. Finally, RP-HPLC can be used for the final purification step. Microbial cells can be disrupted by any suitable method, including freeze-thaw cycles, sonication, mechanical disruption, or the use of cell lysing agents.

Transformerte gjærvertsceller anvendes fortrinnsvis for å uttrykke IL-15 som et utskilt polypeptid. Dette for-enkler rensing. Utskilt, rekombinant polypeptid fra en gjær-vertscellerermeivtasjon kan renses ved hjelp av fremgangsmåter som er analoge med de som er beskrevet av Urdal et al. (J. Chromatog. 296:171, 1984). Urdal et al. beskriver to sekvens- Transformed yeast host cells are preferably used to express IL-15 as a secreted polypeptide. This simplifies cleaning. Secreted recombinant polypeptide from a yeast-host cell mutant can be purified by methods analogous to those described by Urdal et al. (J. Chromatog. 296:171, 1984). Urdal et al. describes two sequence-

vise, reversfase-HPLC-trinn for rensing av rekombinant, humant IL-2 på en preparativ HPLC-kolonne. show reverse-phase HPLC steps for the purification of recombinant human IL-2 on a preparative HPLC column.

Administrering av pattedyr- IL- 15- polypeptid- oa derivatprepar-ater Administration of mammalian IL-15 polypeptide or derivative preparations

Foreliggende oppfinnelse omfatter anvendelse av et polypeptid ifølge oppfinnelsen v for fremstilling av et middel for behandling eller forebyggelse av anemi, karsinom, melanom, sarkom, leukemi, lymfom eller for behandling eller forebyggelse av infeksjoner forårsaket av herpesvirus, inkludert cytomegalovirus, polyomavirus, retrovirus, inkludert HIV, influensavirus, hepatittvirus, deriblant hepatitt A, hepatitt B, hepatitt C, hepatitt 5 eller hepatitt D. For terapeutisk anvendelse administreres renset IL-15 eller et biologisk aktivt derivat derav til en pasient, fortrinnsvis et menneske, for behandling på en måte som passer til indika- The present invention comprises the use of a polypeptide according to the invention v for the production of an agent for the treatment or prevention of anemia, carcinoma, melanoma, sarcoma, leukemia, lymphoma or for the treatment or prevention of infections caused by herpes viruses, including cytomegalovirus, polyoma virus, retrovirus, including HIV, influenza virus, hepatitis virus, including hepatitis A, hepatitis B, hepatitis C, hepatitis 5 or hepatitis D. For therapeutic use, purified IL-15 or a biologically active derivative thereof is administered to a patient, preferably a human, for treatment in a manner that suitable for indica-

sjonen. Således kan f.eks. IL-15-preparater administrert for å undertrykke en form for anemi, gis ved hjelp av bolusinjek- the tion. Thus, e.g. IL-15 preparations administered to suppress a form of anemia are given by bolus injection

sjon, kontinuerlig innsprøyting, langvarig frigjørelse fra implantater eller annen egnet teknikk. Administrering kan være tion, continuous injection, prolonged release from implants or other suitable technique. Administration can be

ved intravenøs injeksjon, subkutan injeksjon eller parenteral eller intraperitoneal innsprøyting. Vanligvis vil et terapeut- by intravenous injection, subcutaneous injection or parenteral or intraperitoneal injection. Usually, a therapist will

isk IL-15-middel bli administrert i form av et farmasøytisk preparat som omfatter renset polypeptid sammen med fysiologisk akseptable bærere, eksipienser eller fortynningsmidler. Slike bærere vil være ikke-toksiske for pasienter ved de doseringer og konsentrasjoner som anvendes. Vanligvis medfører fremstil-lingen av slike preparater blanding av et pattedyr-IL-15-polypeptid eller derivat derav med buffere, antioksidanter, slik ical IL-15 agent be administered in the form of a pharmaceutical preparation comprising purified polypeptide together with physiologically acceptable carriers, excipients or diluents. Such carriers will be non-toxic to patients at the dosages and concentrations used. Usually, the production of such preparations involves mixing a mammalian IL-15 polypeptide or derivative thereof with buffers, antioxidants, such

som askorbinsyre, polypeptider med lav molekylvekt (mindre enn such as ascorbic acid, low molecular weight polypeptides (less than

ca. 10 rester), proteiner, aminosyrer, karbohydrater inkludert glukose, sukrose eller dekstraner, slike chelateringsmidler about. 10 residues), proteins, amino acids, carbohydrates including glucose, sucrose or dextrans, such chelating agents

som EDTA, glutation og andre stabiliseringsmidler og eksipienser. Nøytralt bufret saltoppløsning eller saltoppiøsning blandet med konspesifikt serumalbumin, er eksempelvise, passende fortynningsmidler. such as EDTA, glutathione and other stabilizers and excipients. Neutral buffered saline or saline solution mixed with conspecific serum albumin are exemplary suitable diluents.

De følgende eksempler er for illustrasjonsformål og The following examples are for illustrative purposes and

ikke som begrensning. not as a limitation.

Eksempel 1 Example 1

Rensing og sekvensering for naturlig forekommende sIL- 15 Purification and sequencing for naturally occurring sIL-15

Ultrafiltrering Ultrafiltration

Ultrafiltrering var ikke absolutt nødvendig for å rense IL-15. Fremgangsmåten fjerner imidlertid visse mindre forurensende proteiner og reduserer volumet, hvorved rensefremgangsmåten fremskyndes. Ultrafiltreringstrinnet kan ut-føres ved å anvende enten en YM10- eller YM30-spiralpatron, en hulfiberpatron eller en skivemembran i forskjellige typer av ultrafiltreringsapparat. Et "Amicon" ultrafiltreringssystem med en YM30-spiralpatron var imidlertid foretrukket. Det var ikke påkrevet med noen bufferutbytting før eller etter dette trinnet. Ultrafiltration was not absolutely necessary to purify IL-15. However, the process removes certain minor contaminating proteins and reduces the volume, thereby speeding up the purification process. The ultrafiltration step can be carried out by using either a YM10 or YM30 spiral cartridge, a hollow fiber cartridge or a disc membrane in different types of ultrafiltration apparatus. However, an "Amicon" ultrafiltration system with a YM30 spiral cartridge was preferred. No buffering was required before or after this step.

En ikke-homogen proteinoppløsning, dvs. kondisjonert medium, ble erholdt ved å dyrke CV-l/EBNA-cellekulturer i serumfritt, fenolrødt-fritt DMEM i bioreaktorer med 5 g/l "Cytodex" 3 mikrobærere. 8x8 liters bioreaktorer (totalt ca. 64 liter) ble innhøstet, sentrifugert for å fjerne celler og mikrobærere, filtrert gjennom et 0,22 pm celluloseacetatmembranfilter og så konsentrert inntil et sluttvolum på ca. 2 liter under anvendelse av en YM30-spiralpatron. Fortrinnsvis filtreres YM30-konsentratet før det gjennomgår hydrofob kromatografi. Dette trinnet vil minimalisere forurensning ved å fjerne bakterier og andre partikler. Ethvert filter med en porestørrelse fra 0,1 til 0,45 um som ikke binder protein, kan anvendes; et 0,22 um celluloseacetatmembranfilter var imidlertid foretrukket. A non-homogeneous protein solution, i.e. conditioned medium, was obtained by growing CV-1/EBNA cell cultures in serum-free, phenol red-free DMEM in bioreactors with 5 g/l "Cytodex" 3 microcarriers. 8x8 liter bioreactors (total approx. 64 liters) were harvested, centrifuged to remove cells and microcarriers, filtered through a 0.22 µm cellulose acetate membrane filter and then concentrated to a final volume of approx. 2 liters using a YM30 spiral cartridge. Preferably, the YM30 concentrate is filtered before undergoing hydrophobic chromatography. This step will minimize contamination by removing bacteria and other particles. Any filter with a pore size from 0.1 to 0.45 µm that does not bind protein can be used; however, a 0.22 µm cellulose acetate membrane filter was preferred.

Hydrofob kromatoqrafi Hydrophobic chromatography

Hydrofob kromatografi ga en hurtig måte for overfør-ing av proteinet til en buffer med lavt saltinnhold som kunne påføres anionbytterkolonner. I tillegg ga den tre til seks gangers rensing. Enda ytterligere var det ikke påkrevet med noen bufferutbytting før eller etter dette trinnet. Forskjellige hydrofobe kolonner er egnet. En fenyl-"Sepharose" CL-4B-kolonne (Pharmacia) var foretrukket. Som et alternativ til det hydrofobe kromatografitrinn som her er beskrevet, kan det anvendes et diafiltrerings- eller dialysetrinn. Hydrophobic chromatography provided a rapid way of transferring the protein into a low salt buffer that could be applied to anion exchange columns. In addition, it provided three to six times of purification. Even further, no buffering was required before or after this step. Various hydrophobic columns are suitable. A phenyl "Sepharose" CL-4B column (Pharmacia) was preferred. As an alternative to the hydrophobic chromatography step described here, a diafiltration or dialysis step can be used.

Fortrinnsvis ble ammoniumsulfat tilsatt til ultrafiltreringskonsentratet inntil en sluttkonsentrasjon på ca. Preferably, ammonium sulfate was added to the ultrafiltration concentrate until a final concentration of approx.

0,2 M. Ultrafiltreringskonsentratet ble bufret med 1 M HEPES ved ca. pH 8,5 inntil en sluttkonsentrasjon på ca. 20 mM. Kon-sentratet ble så pumpet over på en fenyl-"Sepharose" CL-4B-kolonne og vasket med 0,2 M ammoniumsulf at, 10 mM HEPES, ved ca. pH 8,5 for å fjerne ubundet protein. Bundne proteiner ble eluert med 10 mM HEPES ved ca. pH 8,5. Toppen for eluert protein (inkludert IL-15) ble ført til en anionbytterkolonne. 0.2 M. The ultrafiltration concentrate was buffered with 1 M HEPES at approx. pH 8.5 until a final concentration of approx. 20 mM. The concentrate was then pumped onto a phenyl-Sepharose CL-4B column and washed with 0.2 M ammonium sulfate, 10 mM HEPES, at approx. pH 8.5 to remove unbound protein. Bound proteins were eluted with 10 mM HEPES at approx. pH 8.5. The eluted protein peak (including IL-15) was passed to an anion exchange column.

Anionbytterkromatoqrafl Anion exchange chromatography

Anionbytterkromatografirensing muliggjorde ytterligere rensing uten å kreve dialyse eller bufferutbytting. Dette trinnet involverte fortrinnsvis to passeringer av fenyl-"Sepharose"-proteinblandingen over kolonner som inneholdt et anionbyttermedium. Etter hver passering ble de bundne proteiner eluert med NaCl i HEPES. Selv om forskjellige anionbyt-termedier og buf f ersys terner med en pH på ca. 8 til ca. 9 var egnet, muliggjorde DEAE-"Sephacel" (Pharmacia) etterfulgt av Mono Q, sekvensvise anionbyttertrinn uten bufferutbyttinger eller dialyse. DEAE-"Sephacel" ga fjerning av noen forurensende proteiner før påføring til en hurtigvirkende Mono Q-kromatografi med høyere oppløsning ("FPLC", Pharmacia). NaCl-kon-sentrasjonen som ble brukt, var avhengig av den utvalgte anionbytter og pH i den valgte buffer. Andre salter kunne byt-tes ut med NaCl for å eluere proteinet fra anionbyttergelen. Anion exchange chromatography purification enabled further purification without requiring dialysis or buffer exchange. This step preferably involved two passes of the phenyl-Sepharose protein mixture over columns containing an anion exchange medium. After each passage, the bound proteins were eluted with NaCl in HEPES. Although various anion exchange media and buffers exist with a pH of approx. 8 to approx. 9 was suitable, DEAE-"Sephacel" (Pharmacia) followed by Mono Q, enabled sequential anion exchange steps without buffer exchanges or dialysis. DEAE-"Sephacel" provided removal of some contaminating proteins prior to application to a fast-acting Mono Q higher resolution chromatography ("FPLC", Pharmacia). The NaCl concentration used was dependent on the selected anion exchanger and the pH of the selected buffer. Other salts could be replaced with NaCl to elute the protein from the anion exchange gel.

Mest foretrukket ble NaCl tilsatt til fenyl-"Sephar-ose"-blandingen inntil en sluttkonduktivitet på ca. 1,2 mil-liSiemens/centimeter ("mS/cm") (mindre enn ca. 0,1 M NaCl) og pumpet over på en DEAE-"Sephacel"-kolonne som var ekvilibrert med ca. 0,1 M NaCl i ca. 10 mM HEPES ved ca. pH 8,5. Bundne proteiner ble eluert med en lineær gradient fra ca. 0,1 til ca. 0,3 M NaCl i ca. 10 mM HEPES ved ca. pH 8,5. De aktive proteinfraksjoner som ble eluert (inkludert IL-15), ble slått sammen for tilførsel til eh Mono Q-anionbytterkolonne. Most preferably, NaCl was added to the phenyl "Sepharose" mixture until a final conductivity of approx. 1.2 mil-liSiemens/centimeter ("mS/cm") (less than about 0.1 M NaCl) and pumped onto a DEAE "Sephacel" column equilibrated with about 0.1 M NaCl for approx. 10 mM HEPES at approx. pH 8.5. Bound proteins were eluted with a linear gradient from approx. 0.1 to approx. 0.3 M NaCl for approx. 10 mM HEPES at approx. pH 8.5. The active protein fractions that eluted (including IL-15) were pooled for input to eh Mono Q anion exchange column.

Den aktive DEAE-"Sephacel"-blanding ble fortynnet med ca. 10 mM HEPES inntil en sluttkonduktivitet som er mindre enn 1,6 mS/cm (mindre enn 0,14 M NaCl). Den fortynnede blanding ble så pumpet over på en Mono Q FPLC hurtigvirkende væske-kromatografikolonne som var ekvilibrert med ca. 0,14 M NaCl i ca. 10 mM HEPES ved ca. pH 8,5. Bundne proteiner ble eluert med en gradient fra ca. 0,14 M til ca. 0,5 M NaCl i ca. 10 mM HEPES ved ca. pH 8,5. De aktive fraksjoner (inkludert IL-15) ble slått sammen for tilførsel til reversfase-væskekromatografi med høy yteevne (RP-HPLC). The active DEAE-"Sephacel" mixture was diluted with approx. 10 mM HEPES until a final conductivity less than 1.6 mS/cm (less than 0.14 M NaCl). The diluted mixture was then pumped onto a Mono Q FPLC fast liquid chromatography column equilibrated with approx. 0.14 M NaCl for approx. 10 mM HEPES at approx. pH 8.5. Bound proteins were eluted with a gradient from approx. 0.14 M to approx. 0.5 M NaCl for approx. 10 mM HEPES at approx. pH 8.5. The active fractions (including IL-15) were pooled for input to reverse phase high performance liquid chromatography (RP-HPLC).

RP- HPLC RP-HPLC

Det naturlig forekommende pattedyr-IL-15-polypeptid er stabilt fra ca. pH 7 til ca. 9 og ved ca. pH 2,5 i 0,1% The naturally occurring mammalian IL-15 polypeptide is stable from approx. pH 7 to approx. 9 and at approx. pH 2.5 in 0.1%

trifluoreddiksyre ("TFA") i acetonitril ("AcN"). lL-15-aktiviteten ble ikke gjenvunnet når det ble brukt sure, vandige buffere; mange HPLC-buffersystemer ble således eliminert, og kat-ionbytterkromatografi kunne ikke inkluderes i renseskjemaet. C4-RP-HPLC-kolonner ("Vydac" 0,46 x 25 cm, 5 pm) ga den største rensing. Andre reversfasekolonner (C8 eller C18) virket ikke; proteinet eluerte fra C4 ved en høy AcN-konsentrasjon og ble ikke utvunnet fra C8 eller C18 i det hele tatt. Andre buffersystemer som ble prøvd (dvs. ammoniumacetat/metanol, pH 7, og pyridinacetat/propanol), var ikke vellykket. Trifluoroacetic acid ("TFA") in acetonitrile ("AcN"). IL-15 activity was not recovered when acidic aqueous buffers were used; many HPLC buffer systems were thus eliminated, and cation-exchange chromatography could not be included in the purification scheme. C4-RP-HPLC columns ("Vydac" 0.46 x 25 cm, 5 pm) gave the greatest purification. Other reverse phase columns (C8 or C18) did not work; the protein eluted from C4 at a high AcN concentration and was not recovered from C8 or C18 at all. Other buffer systems that were tried (ie, ammonium acetate/methanol, pH 7, and pyridine acetate/propanol) were not successful.

RP-HPLC-rensingen involverte fortrinnsvis to passeringer av den aktive Mono Q-blanding gjennom "Vydac" C4-matrik-sen. Ved den første passering ble den aktive Mono Q-blanding pumpet over på en C4-HPLC-kolonne ved ca. 1 ml/min. og eluert med en gradient av 0,1% TFA/H20 til 0,1% TFA/100% AcN ved den følgende gradient: The RP-HPLC purification preferably involved two passes of the active Mono Q mixture through the "Vydac" C4 matrix. In the first pass, the active Mono Q mixture was pumped onto a C4-HPLC column at approx. 1 ml/min. and eluted with a gradient of 0.1% TFA/H 2 O to 0.1% TFA/100% AcN at the following gradient:

0 til 45% AcN, 1% AcN/minutt 0 to 45% AcN, 1% AcN/minute

45 til 60% AcN, 0,5% AcN/minutt 45 to 60% AcN, 0.5% AcN/minute

60 til 100% AcN, 2% AcN/minutt. 60 to 100% AcN, 2% AcN/minute.

Aktive toppfraksjoner (inkludert IL-15) eluerer mellom ca. 48 og ca. 51% AcN. Aktive fraksjoner bestemt ved hjelp av biologisk analyse, ble slått sammen, fortynnet med 0,1% tfa/h20 for å redusere AcN-konsentrasjon, og tilført den samme C4-kolonne. Active top fractions (including IL-15) elute between approx. 48 and approx. 51% AcN. Active fractions determined by biological analysis were pooled, diluted with 0.1% tfa/h 2 O to reduce AcN concentration, and fed to the same C4 column.

Den aktive, fortynnede blanding fra C4-TFA/AcN-for-søket ble pumpet tilbake til C4-kolonnen, vasket med 0,1% TFA/H20 og eluert med en lineær gradient av 0,1% TFA/H20 (buffer A) til 0,1% TFA/60% n-propanol (buffer B) ved ca. The active, diluted mixture from the C4-TFA/AcN pre-screen was pumped back to the C4 column, washed with 0.1% TFA/H2O and eluted with a linear gradient of 0.1% TFA/H2O (buffer A) to 0.1% TFA/60% n-propanol (buffer B) at approx.

0,5 ml/min. Gradienten ble kjørt ved ca. 0,5% buffer B/min. Fraksjoner ble biologisk analysert for å identifisere de IL- 0.5 ml/min. The gradient was run at approx. 0.5% buffer B/min. Fractions were biologically analyzed to identify the IL-

15-holdige fraksjoner. IL-15-holdige fraksjoner ble slått sammen. 15-containing fractions. IL-15-containing fractions were pooled.

SDS- PAGE SDS-PAGE

- Renset IL-15 kan visualiseres ved hjelp av sølvfarget SDS-PAGE. Bånd med renset pattedyr-IL-15-protein isolert ved hjelp av SDS-PAGE, kan elektroblottes og analyseres for å bestemme deres N-terminale aminosyresekvenser. IL-15-proteinbåndet kan identifiseres ved hjelp av biologisk analyse. - Purified IL-15 can be visualized using silver-stained SDS-PAGE. Bands of purified mammalian IL-15 protein isolated by SDS-PAGE can be electroblotted and analyzed to determine their N-terminal amino acid sequences. The IL-15 protein band can be identified by biological analysis.

Fraksjoner med renset IL-15-protein fra C4-TFA/n-propanol-HPLC-forsøket ble hurtig satt under vakuum inntil tørr-het, på nytt oppslemmet i reduserende SDS-prøvebuffer og kjørt på en polyakrylamid-SDS-gel. Fortrinnsvis ble HPLC-renset IL-15 kjørt på'SDS-PAGE ("Phastgel" 8-25%, Pharmacia) i to til-grensende felt. Før fiksering og farging ble omtrent 1 mm stykker gel kuttet fra ett felt i "Phastgel" og puttet direkte inn i biologiske analyser. Den gjenværende gel ble fremkalt og de sølvfargede bånd sammenlignet med stykker ført til biologiske analyser. IL-15-aktiviteten tilsvarte 15-17 kDa. For spesifikk aktivitetsbestemmelse ble renset IL-15 på nytt oppslemmet i reduserende SDS-prøvebuffer, kjørt på 14% polyakrylamid-SDS-gel (Novex) og sølvfarget. Renheten til sIL-15-polypeptidene som tilsvarer 15-17 kDa, var omtrent 222 000 ganger større enn sIL-15-polypeptidrenheten i det CV-l/EBNA-kondi-sjonerte medium ved begynnelsen av renseskjemaet (tabell 2). I tillegg til renhet og proteindata viser tabell 2 aktiviteten av det naturlig forekommende sIL-15-polypeptid i en biologisk CTLL-2-analyse (beskrevet nedenunder i eksempel 2) utført etter hvert trinn i renseprosessen. Fractions with purified IL-15 protein from the C4-TFA/n-propanol HPLC experiment were quickly placed under vacuum until dryness, resuspended in reducing SDS sample buffer and run on a polyacrylamide SDS gel. Preferably, HPLC-purified IL-15 was run on SDS-PAGE ("Phastgel" 8-25%, Pharmacia) in two adjacent fields. Before fixation and staining, approximately 1 mm pieces of gel were cut from one field in "Phastgel" and put directly into biological assays. The remaining gel was developed and the silver colored bands compared with pieces taken for biological analyses. The IL-15 activity corresponded to 15-17 kDa. For specific activity determination, purified IL-15 was resuspended in reducing SDS sample buffer, run on a 14% polyacrylamide-SDS gel (Novex) and silver stained. The purity of the sIL-15 polypeptides corresponding to 15-17 kDa was approximately 222,000-fold greater than the sIL-15 polypeptide purity in the CV-1/EBNA-conditioned medium at the beginning of the purification schedule (Table 2). In addition to purity and protein data, Table 2 shows the activity of the naturally occurring sIL-15 polypeptide in a CTLL-2 biological assay (described below in Example 2) performed after each step of the purification process.

PVDF- blottincr PVDF blot incr

14% polyakrylamid- SDS -gelen ble blottet på en PVDF-membran ("ProBlot" fra Applied Biosystems) under anvendelse av konstant strømstyrke, ved ca. 60 V innstilling i ca. 1 time. Proteinbånd ble visualisert ved farging av PVDF-membranen med Coomassie-blått (0,1% i 10% eddiksyre, 50% metanol). Membranen kan avfarges ved å bruke den samme oppløsning uten Coomassie-blåfargen for å fremheve proteinbåndene. Proteinbåndet som tilsvarer IL-15-aktiviteten, ble kuttet ut, og N-terminal pro-teinsekvensbestemmelse ble utført direkte fra PVDF-membranen. The 14% polyacrylamide-SDS gel was blotted onto a PVDF membrane ("ProBlot" from Applied Biosystems) using constant amperage, at approx. 60 V setting for approx. 1 hour. Protein bands were visualized by staining the PVDF membrane with Coomassie blue (0.1% in 10% acetic acid, 50% methanol). The membrane can be destained using the same solution without the Coomassie blue dye to highlight the protein bands. The protein band corresponding to IL-15 activity was excised, and N-terminal protein sequencing was performed directly from the PVDF membrane.

sIL- 15- polvpeptidsekvenserinq sIL-15 polypeptide sequence

lL-15-preparatet som skriver seg fra det forutgående RP-HPLC-trinn, ble analysert ved hjelp av SDS-PAGE. Hver gel ble sølvfarget for å indikere tilstedeværelsen av proteinbånd. Biologisk analyse av ufargede gelstykker som tilsvarer synlige bånd, Indikerte at lL-15-aktiviteten var forbundet med proteiner med molekylvekter i området 15-17 kDa. N-enden av 15-17 kDa-polypeptidet, blottet på en PVDF-membran, ble sekvensert ved hjelp av Edman-nedbrytning i et Applied Biosystems proteinsekvenseringsapparat. Resultatene indikerte identiteten til de første 33 aminosyrene vist i SEKV.ID NR. 3. Etterføl-gende sekvensering av en cDNA-klon erholdt fra et apebiblio-tek, ga en sekvens som koder for polypeptidet ifølge SEKV.ID NR. 2. Polypeptidet ifølge SEKV.ID NR. 2 omfatter en forholds-vis kort 48 aminosyrers ledersekvens og et modent polypeptid representert ved SEKV.ID NR. 3. 1 The IL-15 preparation resulting from the preceding RP-HPLC step was analyzed by SDS-PAGE. Each gel was silver stained to indicate the presence of protein bands. Biological analysis of unstained gel pieces corresponding to visible bands indicated that IL-15 activity was associated with proteins with molecular weights in the range of 15-17 kDa. The N-terminus of the 15-17 kDa polypeptide, blotted onto a PVDF membrane, was sequenced by Edman digestion in an Applied Biosystems protein sequencer. The results indicated the identity of the first 33 amino acids shown in SEQ ID NO. 3. Subsequent sequencing of a cDNA clone obtained from a monkey library gave a sequence which codes for the polypeptide according to SEQ ID NO. 2. The polypeptide according to SEQ ID NO. 2 comprises a relatively short 48 amino acid leader sequence and a mature polypeptide represented by SEQ ID NO. 3. 1

Eksempel 2 Example 2

Biologisk analyse Biological analysis

CTLL-2-celler ga en hurtig og følsom biologisk analyse for påvisning av IL-15-polypeptider. Andre cellelinjer som også prolifererer som respons på IL-15 med varierende føl-somhet, er CTLL-2.4 (Valentine et al., Eur. J. Immunol, 21(4):913 (1991)), 32D (Greenberger, Federation Proceedings 42:2762 (1983)), BAF-B03 (Hatakeyama et al., Cell, 59:837 CTLL-2 cells provided a rapid and sensitive bioassay for the detection of IL-15 polypeptides. Other cell lines that also proliferate in response to IL-15 with varying sensitivity are CTLL-2.4 (Valentine et al., Eur. J. Immunol, 21(4):913 (1991)), 32D (Greenberger, Federation Proceedings 42:2762 (1983)), BAF-B03 (Hatakeyama et al., Cell, 59:837

(1989)), M07e (Avanzi et al., Br. J. Haematol. 69:359 (1988)) og TF1 (Kitamura et al., J. Cell. Physiol., 140:323 (1989)). Fortrinnsvis ble CTLL-2-celler dyrket i DMEM med høyt glukoseinnhold supplert med ca. 30 ng/ml IL-2, 5% bovint fosterserum {FBS), 5 x 10-<5> M 2-merkaptoetanol, 50 u/ml penicillin, 50 ug/ml streptomycin og 3-4,0 mM L-glutamin ved 37 "C, 10% C02 og 97% fuktighet. CTLL-2 er en faktoravhengig cellelinje som krever IL-2 for vekst. For analyse ble følgelig CTLL-2-celler vasket to ganger med DMEM med høyt glukoseinnhold supplert med 5% FBS, 5 x 10"s M 2-merkaptoetanol, 50 u/ml penicillin, 50 ug/ml streptomycin, 3-4,0 mM L-glutamin for å fjerne IL-2. IL-15-prøver som skulle analyseres, ble titrert i DMEM 5% FBS i 96-brønners flatbunnede mikrotiterplater. Vas-kede CTLL-2-celler ble tilsatt (sluttanalysevolum 100 ul, 2 000 celler/brønn), og platene ble inkubert i ca. 24 timer ved 37 °C og 10% C02. Platene ble pulset med <3>H-tymidin (25 Ci/mMol) ved 0,5 uCi/brønn i ca. 5 timer, så innhøstet ("Inotech" 96-brønners celleinnhøster) og CPM-tellet ("Packard Matrix" 96 "gas proportional counting system). Enheter ble beregnet fra CPM hvor 1 enhet er lik antallet mikroliter som gir 50% maksimal stimulering. (1989)), M07e (Avanzi et al., Br. J. Haematol. 69:359 (1988)) and TF1 (Kitamura et al., J. Cell. Physiol., 140:323 (1989)). Preferably, CTLL-2 cells were cultured in high glucose DMEM supplemented with ca. 30 ng/ml IL-2, 5% fetal bovine serum {FBS), 5 x 10-<5> M 2-mercaptoethanol, 50 u/ml penicillin, 50 ug/ml streptomycin and 3-4.0 mM L-glutamine at 37 "C, 10% CO2, and 97% humidity. CTLL-2 is a factor-dependent cell line that requires IL-2 for growth. Accordingly, for analysis, CTLL-2 cells were washed twice with high-glucose DMEM supplemented with 5% FBS, 5 x 10"s M 2 -mercaptoethanol, 50 u/ml penicillin, 50 ug/ml streptomycin, 3-4.0 mM L-glutamine to remove IL-2. IL-15 samples to be analyzed were titrated in DMEM 5% FBS in 96-well flat-bottomed microtiter plates. Washed CTLL-2 cells were added (final assay volume 100 µl, 2000 cells/well), and the plates were incubated for approx. 24 hours at 37 °C and 10% C02. The plates were pulsed with <3>H-thymidine (25 Ci/mMol) at 0.5 uCi/well for approx. 5 h, then harvested ("Inotech" 96-well cell harvester) and CPM counted ("Packard Matrix" 96 "gas proportional counting system). Units were calculated from CPM where 1 unit is equal to the number of microliters that gives 50% maximal stimulation.

Eksempel 3 Example 3

Fremstilling av sIL- 15- cDNA- klon Preparation of sIL-15 cDNA clone

Sekvensen til de N-terminale 31 aminosyrene i renset slL-15-polypeptid (aminosyrene 1-31 i SEKV.ID NR. 3) ble brukt til å utforme syntetiske oligonukleotidprimere for PCR-amplifikasjon av lL-15-spesifikke DNA-sekvenser. De første seks aminosyrene i N-enden (Asn-Trp-Val-Asn-Val-Ile) ble brukt til å utforme én primer, en degenerert blanding som koder for alle mulige kodonanvendelser i de første seks aminosyrerestene: The sequence of the N-terminal 31 amino acids of purified IL-15 polypeptide (amino acids 1-31 of SEQ ID NO: 3) was used to design synthetic oligonucleotide primers for PCR amplification of IL-15-specific DNA sequences. The first six amino acids at the N-terminus (Asn-Trp-Val-Asn-Val-Ile) were used to design one primer, a degenerate mixture encoding all possible codon usages in the first six amino acid residues:

som vist i SEKV.ID NR. 9 hvor Y er T eller C; H er A, T eller C; og N er A, C, G eller T. Aminosyresekvensene til den modne ape-N-enden 26-31 (Tyr-Thr-Glu-Ser-Asp-Val) ble brukt til å utforme en andre primer, en degenerert blanding som koder for et komplement av alle mulige kodonanvendelser av aminosyrene 26-31 hvor 3-stilling for Val unngås: som vist henholdsvis i SEKV.ID NR. 10 og 11, hvor Y og N er som definert ovenfor, og R er A eller G. Polyadenylerte RNA-er fra CV-l/EBNA-celler stimulert i 24 timer, 37 timer og 72 timer med 10 ng/ml forbol 12-myri-stat 13-acetat ("PMA"), ble brukt som separate templater for førstetråds cDNA-syntese. En porsjon av førstetråds reaksjonsblandinger ble tilsatt til kommersielt tilgjengelige PCR-reaksjonsblandinger som inneholder oligonukleotidprimerne. Denne blanding ble underkastet 31 sykluser med PCR-amplifikasjon i 100 ul reaksjonsblandinger i standardbuffer med primere ved 1 uM konsentrasjon. Syklusene ble programmert på følgende måte: denaturering ved 94 °C i 0,5 minutt, annealeringstrinn i 0,5 minutt og forlengelsestrinn ved 72 °C i 0,75 minutt. To sykluser med annealering ved hver av 55, 53 og 51 °C ble etterfulgt av 25 sykluser med en annealeringstemperatur på 49 °C. as shown in SEQ ID NO. 9 where Y is T or C; H is A, T or C; and N is A, C, G or T. The amino acid sequences of the mature monkey N terminus 26-31 (Tyr-Thr-Glu-Ser-Asp-Val) were used to design a second primer, a degenerate mixture encoding for a complement of all possible codon uses of amino acids 26-31 where the 3-position for Val is avoided: as shown respectively in SEQ ID NO. 10 and 11, where Y and N are as defined above, and R is A or G. Polyadenylated RNAs from CV-1/EBNA cells stimulated for 24 hours, 37 hours, and 72 hours with 10 ng/ml phorbol 12- myri-stat 13-acetate ("PMA"), were used as separate templates for first-strand cDNA synthesis. An aliquot of first strand reaction mixtures was added to commercially available PCR reaction mixtures containing the oligonucleotide primers. This mixture was subjected to 31 cycles of PCR amplification in 100 µl reaction mixtures in standard buffer with primers at 1 µM concentration. The cycles were programmed as follows: denaturation at 94 °C for 0.5 min, annealing step for 0.5 min and extension step at 72 °C for 0.75 min. Two cycles of annealing at each of 55, 53 and 51 °C were followed by 25 cycles at an annealing temperature of 49 °C.

Etter amplifikasjon ble prøver renset og underkastet agarosegelelektroforese. Dette ga et 92-basepars DNA-fragment som ble skåret ut fra gelfelter fra to separate reaksjonsblandinger som involverte CV-l/EBNA-celler. 92-basepars-DNA-frag-mentet ble renset ved å bruke en "Elutip-D"-kolonne (Schleicher & Schuell, Keene, NH), klonet i "pBluescript SK"" After amplification, samples were purified and subjected to agarose gel electrophoresis. This yielded a 92 base pair DNA fragment that was excised from gel fields from two separate reaction mixtures involving CV-1/EBNA cells. The 92-bp DNA fragment was purified using an "Elutip-D" column (Schleicher & Schuell, Keene, NH), cloned into "pBluescript SK""

(Stratagene, La Jolla, CA) og brukt til dideoksy-DNA-sekvensering . (Stratagene, La Jolla, CA) and used for dideoxy DNA sequencing.

En hybridiseringsprobe ble fremstilt ved hjelp av vilkårlig primemerking av det underklonede 92-basepars DNA-fragment. Hybridiseringsproben ble brukt til å screene en del av et plasmidbibliotek som inneholder cDNA-innføyelser fremstilt fra CV-l/EBNA-polyadenylert RNA. Dette resulterte i isolering av klon C85.SIL-15 som har en åpen leseramme omfattende nukleotidsekvensen vist i SEKV.ID NR. 1. A hybridization probe was prepared by random priming of the subcloned 92 base pair DNA fragment. The hybridization probe was used to screen a portion of a plasmid library containing cDNA inserts prepared from CV-1/EBNA polyadenylated RNA. This resulted in the isolation of clone C85.SIL-15 which has an open reading frame comprising the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO. 1.

Nukleotidsekvensen til det polypeptidkodende område i sIL-15 er illustrert i SEKV.ID NR. 1. Denne sekvensen ble avledet fra innføyd C85.SIL-15 som var Sal I-bundet i Sal I-setet i ekspresjonsvektor pDC406 (C.J. McMahan et al., EMBO J., 10(10):2821-2832 (1991)). Polyadenylert mRNA ble fremstilt fra en CV-l/EBNA-cellelinje, og cDNA-er ble fremstilt ved å anvende standardteknikker. CV-l/EBNA-linjen er en produsent av sIL-15. cDNA-ender ble tilpasset med Sal I-adaptere (Haymerle et al., Nucleic Acid Res., 14:8615-24 (1986)): The nucleotide sequence of the polypeptide coding region in sIL-15 is illustrated in SEQ ID NO. 1. This sequence was derived from inserted C85.SIL-15 which was Sal I ligated into the Sal I site in expression vector pDC406 (C.J. McMahan et al., EMBO J., 10(10):2821-2832 (1991)) . Polyadenylated mRNA was prepared from a CV-1/EBNA cell line, and cDNAs were prepared using standard techniques. The CV-1/EBNA line is a producer of sIL-15. cDNA ends were ligated with Sal I adapters (Haymerle et al., Nucleic Acid Res., 14:8615-24 (1986)):

(henholdsvis SEKV.ID NR. 7 og 8) og klonet i vektor pDC406. En blanding bestående av omtrent 500 individuelle plasmidholdige isolater, ble platet ut og screenet ved hybridisering mot et DNA-probefragment. DNA-probefragmentet ble fremstilt ved å anvende PCR-ampiifikasjon av slL-15-sekvenser fra CV-1/EBNA-cellelinj e-cDNA. (SEQ ID NO: 7 and 8, respectively) and cloned into vector pDC406. A mixture consisting of approximately 500 individual plasmid-containing isolates was plated and screened by hybridization against a DNA probe fragment. The DNA probe fragment was prepared using PCR amplification of slL-15 sequences from CV-1/EBNA cell line cDNA.

Eksempel 4 Example 4

Kloning av humant IL- 15 Cloning of human IL-15

En sIL-15-probe ble fremstilt fra et isolert, renset og radioaktivt merket Sal I-fragment (ca. 1,37 kb) inneholdende sIL-15-cDNA ved vilkårlig primemerking. Den spesifikke aktivitet til proben var omtrent 1 x 10<6> cpm/ng. Etter Northern-blottinger ble proben hybridisert mot humane RNA-er fra forskjellige kilder, inkludert en IMTLH-cellelinje. IMTLH-cellelinjen var avledet fra en stabil transformasjon av en human benmargstromacellekultur med pSV3Neo. Proben ble hybridisert til humane RNA-er ved ca. 42 °C i ca. 40% formamid i ca. 18 timer. Hybridisering ble etterfulgt av vasking i 6 x SSC i ca. 10 minutter ved 22 "C, etterfulgt av vasking i 2 x SSC ved 42 'C i ca. 30 minutter. Autoradiografi avslørte et positivt signal i IMTLH-feltet. A sIL-15 probe was prepared from an isolated, purified and radiolabeled Sal I fragment (about 1.37 kb) containing sIL-15 cDNA by random priming. The specific activity of the probe was approximately 1 x 10<6> cpm/ng. After Northern blots, the probe was hybridized against human RNAs from various sources, including an IMTLH cell line. The IMTLH cell line was derived from a stable transformation of a human bone marrow stromal cell culture with pSV3Neo. The probe was hybridized to human RNAs at approx. 42 °C for approx. 40% formamide for approx. 18 hours. Hybridization was followed by washing in 6 x SSC for approx. 10 min at 22'C, followed by washing in 2 x SSC at 42'C for approximately 30 min. Autoradiography revealed a positive signal in the IMTLH field.

Vi probet Southern-blottinger av Sal i-fordøyde bibliotekblandinger av iMTLH-cDNA-biblioteket for å identifisere en blanding som inneholder en human IL-15-cDNA. Ved å anvende metoden til Haymerle et al., Nucleic Acid Res., 14:8615-24 (1986) ovenfor brukt for CV-l/EBNA-biblioteket, ble IMTLH-biblioteket konstruert i ekspresjonsvektor pDC406. Blanding "141", en blanding av omtrent 1 000 forskjellige cDNA-kloner, ble identifisert som positiv. Omtrent 4 000 kolonier av "141" ble så platet ut og probet ved hjelp av vanlige kolonihybridiseringsmetoder for å identifisere en klon som inneholder den humane IL-15-cDNA. Bare en enkeltklon, l41.hETF, ble påvist å kode for humant IL-15. Det er omtrent 96% nukleotidsekvensidentitet og omtrent 96% aminosyresekvens-identitet mellom humane og ape-IL-15-sekvenser for åpen leseramme {figurene 4 og 5). We probed Southern blots of Sal i-digested library mixtures of the iMTLH cDNA library to identify a mixture containing a human IL-15 cDNA. Using the method of Haymerle et al., Nucleic Acid Res., 14:8615-24 (1986) above used for the CV-1/EBNA library, the IMTLH library was constructed in expression vector pDC406. Mixture "141", a mixture of approximately 1,000 different cDNA clones, was identified as positive. Approximately 4,000 colonies of "141" were then plated and probed by standard colony hybridization methods to identify a clone containing the human IL-15 cDNA. Only a single clone, l41.hETF, was found to encode human IL-15. There is approximately 96% nucleotide sequence identity and approximately 96% amino acid sequence identity between human and monkey IL-15 open reading frame sequences (Figures 4 and 5).

Eksempel 5 Example 5

rIL- 15- stimulerina av CTLL- 2- proliferasion rIL-15 stimulates CTLL-2 proliferation

cDNA-er som koder for modne former av IL-15 (nukleotidene fra og med 145 til og med 489 i SEKV. ID NR. 1 og 4) ble innføyet nedstrøms for et heterologt patted<y>rsekresjonssignal for å skape rIL-15-ekspresjonsplasmid for sIL-15 og hIL-15. Sekresjonssignalet er en stort sett hydrofob strekning av aminosyrer (vanligvis i N-enden av et polypeptid) som styrer utskillelse og spalting av polypeptidet mellom C-enden av signalpeptidet og N-enden av det modne, utskilte protein (von Heijne, Eur. J. Biochem., 116:419 (1981)). Sekresjonssignal-sekvensen som ble brukt, var en murin IL-7-signalsekvens. De dannede plasmider ble transfektert inn i C0S-7-celler. Supernatanter av de transfekterte cellekulturer stimulerte CTLL-2-proliferasjon. I tillegg ble det kodende område for forløper-formen av hIL-15 (SEKV.ID NR. 3) innføyet i pDC406 og transfektert i CV-l/EBNA-celler. Supernatanter fra celler transfektert med pDC406:hlL-15 (dvs. hETF/pDC406), men ikke de som var transfektert med tom vektor, stimulerte CTLL-2-proliferasjon. cDNAs encoding mature forms of IL-15 (nucleotides 145 through 489 of SEQ ID NOS 1 and 4) were inserted downstream of a heterologous patted<y>rsecretion signal to create rIL-15- expression plasmid for sIL-15 and hIL-15. The secretion signal is a largely hydrophobic stretch of amino acids (usually at the N-terminus of a polypeptide) that directs secretion and cleavage of the polypeptide between the C-terminus of the signal peptide and the N-terminus of the mature, secreted protein (von Heijne, Eur. J. Biochem., 116:419 (1981)). The secretion signal sequence used was a murine IL-7 signal sequence. The resulting plasmids were transfected into COS-7 cells. Supernatants of the transfected cell cultures stimulated CTLL-2 proliferation. In addition, the coding region for the precursor form of hIL-15 (SEQ ID NO: 3) was inserted into pDC406 and transfected into CV-1/EBNA cells. Supernatants from cells transfected with pDC406:hlL-15 (ie, hETF/pDC406), but not those transfected with empty vector, stimulated CTLL-2 proliferation.

Eksempel 6 Example 6

Induksjon av CTLL- 2- proliferas- ion ved hjelp av rIL- 15 Induction of CTLL-2 proliferation by means of rIL-15

Rekombinant ape-IL-15 (ape-rIL-15) ble renset fra supernatant av gjær som uttrykker sIL-15-cDNA-en ved en modifikasjon av rensemetoden beskrevet ovenfor i eksempel 1, hvor ultrafiltrerings- og ionebyttertrinnene ble utelatt. Det rensede ape-riL-15 ble sammenlignet med renset, rekombinant IL-2 og IL-4 med hensyn på biologisk aktivitet. Renheten til hvert av de tre proteinene ble bekreftet ved hjelp av aminosyreana-lyse. Hvert av de tre rensede, rekombinante proteinene ble analysert med hensyn på biologisk aktivitet in vltro ved å anvende CTLL-2-celler. CTLL-2-kulturer inneholdt det angitte cytokin med 2 000 celler/kultur i 100 ul supplert dyrkningsmedium. CTLL-2-kulturene ble pulset med 0,5 uCi [3H]tymidin/- kultur i minst 4 timer av en 24-timers dyrkningsperiode, inn-høstet på glassfiberfilter, og radioaktivitet ble målt ved hjelp av skredgassionisering. Den proliferative respons in vltro av CTLL-2-celler ble målt ved økende konsentrasjoner av rekombinant cytokin (uttrykt som ng/ml). Dataene er uttrykt som cpm av <3>H-tymidin inkorporert (X IO"<3>) i figur 6. Recombinant monkey IL-15 (monkey rIL-15) was purified from the supernatant of yeast expressing the sIL-15 cDNA by a modification of the purification method described above in Example 1, where the ultrafiltration and ion exchange steps were omitted. The purified monkey riL-15 was compared with purified, recombinant IL-2 and IL-4 with regard to biological activity. The purity of each of the three proteins was confirmed by amino acid analysis. Each of the three purified recombinant proteins was assayed for biological activity in vitro using CTLL-2 cells. CTLL-2 cultures contained the indicated cytokine at 2,000 cells/culture in 100 µl of supplemented culture medium. The CTLL-2 cultures were pulsed with 0.5 uCi [3 H]thymidine/culture for at least 4 hours of a 24-hour culture period, harvested on glass fiber filters, and radioactivity was measured by avalanche gasification. The proliferative response in vitro of CTLL-2 cells was measured at increasing concentrations of recombinant cytokine (expressed as ng/ml). The data are expressed as cpm of <3>H-thymidine incorporated (X IO"<3>) in Figure 6.

Eksempel 7 Example 7

Induksjon av CTL-. LAK- og NK- lvtisk aktivitet av rIL- 15 Induction of CTL-. LAK- and NK-lvetic activity of rIL-15

Antigenspesifikke, cytolytiske T-lymfocytter (CTL) ble frembrakt in vltro. Mononuklesre celler fra humant, perifert blod (PBL) fra én donor (5 x 10<5>/kultur) ble stimulert med bestrålt PBL (5 x 10<5>/kultur) fra en allogen donor i kulturer som inneholder forskjellige konsentrasjoner av enten IL-2 eller humant rIL-15 eller ikke noe cytokin. Dyrkninger ble utført som beskrevet av M.B. Widmer et al. i J. Exp. Med., 166:1447 (1987), innhøstet etter 7 dager og analysert med hensyn på cytolytisk aktivitet mot <51>Cr-merkede mål avledet fra den opprinnelige stimulerende donor. Lyseanalysen inneholdt forskjellige antall av de PBL som ga respons, dyrket med 1 000 merkede mål i 200 ul medium i V-bunnede brønner, og super-natantene ble samlet opp etter 4 timers inkubasjon. Lytiske enheter ble beregnet som inverstallet av fraksjonen av den kultur som ga respons, som var påkrevet for å frembringe 50% av den maksimale, spesifikke <51>Cr-frigjørelse. Dataene for de cytokinbehandlede CTL er oppsummert i figur 7. Antigen-specific cytolytic T lymphocytes (CTL) were generated in vitro. Human peripheral blood mononuclear cells (PBL) from one donor (5 x 10<5>/culture) were stimulated with irradiated PBL (5 x 10<5>/culture) from an allogeneic donor in cultures containing different concentrations of either IL-2 or human rIL-15 or no cytokine. Cultivations were performed as described by M.B. Widmer et al. in J. Exp. Med., 166:1447 (1987), harvested after 7 days and assayed for cytolytic activity against <51>Cr-labeled targets derived from the original stimulating donor. The lysis assay contained various numbers of responding PBLs cultured with 1,000 labeled targets in 200 µl medium in V-bottomed wells, and the supernatants were collected after 4 hours of incubation. Lytic units were calculated as the inverse of the fraction of the responding culture required to produce 50% of the maximal specific <51>Cr release. The data for the cytokine-treated CTL are summarized in Figure 7.

Lymfokinaktiverte dreperceller (LAK-celler) ble frembrakt under identiske dyrkningsbestemmelser som de ovenfor beskrevne CTL, bortsett fra at de humane PBL ikke ble stimulert med bestrålte PBL fra en allogen donor. I stedet ble det byttet ut med bestrålte, autologe PBL, og cytolytisk aktivitet ble målt mot Daudi-lymfoblastoidcellelinjen. For LAK-analysen ble lytiske enheter beregnet som inverstallet av fraksjonen av kulturen som ga respons, og som var påkrevet for å frembringe 30% av den maksimale, spesifikke <51>Cr-frigjørelse. Dataene for de cytokinbehandlede LAK-celler er oppsummert i figur 8. Lymphokine-activated killer cells (LAK cells) were generated under identical culture conditions as the CTLs described above, except that the human PBLs were not stimulated with irradiated PBLs from an allogeneic donor. Instead, it was replaced with irradiated, autologous PBL, and cytolytic activity was measured against the Daudi lymphoblastoid cell line. For the LAK assay, lytic units were calculated as the inverse of the fraction of the culture that responded, which was required to produce 30% of the maximal specific <51>Cr release. The data for the cytokine-treated LAK cells are summarized in Figure 8.

Naturlige dreperceller (NK-celler) ble isolert fra hele, humane PBL isolert ved hjelp av antistoffaffinitet mot paramagnetiske mikrokuler med MACS (Miltenyi Biotec, Sunny-vale, CA) under anvendelse av monoklonale antistoffer mot CD16. De rensede NK-celler ble dyrket i 3 dager, og cytolytisk aktivitet ble målt mot K562 erytroleukemicellelinjen. For NK-analysen ble lytiske enheter beregnet som inverstallet av fraksjonen av kulturen som ga respons, og som var påkrevet for å frembringe 30% av den maksimale, spesifikke <51>Cr-frigjørelse. Dataene for de cytokinbehandlede NK-celler er oppsummert i figur 9. Natural killer cells (NK cells) were isolated from whole human PBL isolated by antibody affinity to paramagnetic microbeads with MACS (Miltenyi Biotec, Sunnyvale, CA) using monoclonal antibodies against CD16. The purified NK cells were cultured for 3 days, and cytolytic activity was measured against the K562 erythroleukemia cell line. For the NK assay, lytic units were calculated as the inverse of the fraction of the culture that responded and was required to produce 30% of the maximal specific <51>Cr release. The data for the cytokine-treated NK cells are summarized in Figure 9.

På grunn av likheten i aktivitet mellom IL-2 og IL-15 i eksemplene 6 og 7, ville fagfolk innen teknikken forventet at IL-15 stimulerer aktiviteten av CTL-, LAK- og NK-celler og ekspanderer populasjonen av T-celler som kan ødelegge tumor-celler og virusinfiserte celler. Som beskrevet ovenfor i av-snittet om administrering av IL-15-polypeptidet, kan en effektiv mengde av IL-15 i en egnet fortynner eller bærer administreres til pasienter med karsinomer, melanomer, leukemisar-komer eller lymfomer, eller pasienter smittet med herpesvirus, inkludert cytomegalovirus, polyomavirus, retrovirus. Inkludert HIV, influensavirus, hepadnavirus, hepatitt A, hepatitt B, hepatitt C, hepatitt delta eller hepatitt D. Because of the similarity in activity between IL-2 and IL-15 in Examples 6 and 7, those skilled in the art would expect that IL-15 stimulates the activity of CTL, LAK and NK cells and expands the population of T cells that can destroy tumor cells and virus-infected cells. As described above in the section on administration of the IL-15 polypeptide, an effective amount of IL-15 in a suitable diluent or carrier can be administered to patients with carcinomas, melanomas, leukemic sarcomas or lymphomas, or patients infected with herpes virus, including cytomegalovirus, polyomavirus, retrovirus. Including HIV, influenza virus, hepadnavirus, hepatitis A, hepatitis B, hepatitis C, hepatitis delta or hepatitis D.

Claims (15)

1. Isolert DNA-sekvens, karakterisert ved at sekvensen omfatter, (a) DNA-sekvenser som koder for polypeptidene ifølge sekvensen: shvor aminosyre 52 er Leu eller His, aminosyre 57 er Ala eller Thr, aminosyre 58 er Ser eller Asp, aminosyre 73 er Ser eller Ile og aminosyre 80 er Val eller Ile, (b) varianter av sekvensene i (a) som koder for proteiner med tilsvarende biologisk aktivitet, og (c) DNA-sekvenser sin påvisbart hybridiserer til DNA-sekvensene ifølge (a) eller (b), eller deres komplementære tråder, under svært strenge betingelser omfattende hybridisering og vask etter hybridisering ved 55 °C eller høyere og ved en saltkonsentrasjon på 0,5 x SSC eller lavere, og som etter ekspresjon koder for et polypeptid med tilsvarende biologisk aktivitet som sekvensene ifølge SEKV. ID NR. 3 eller SEKV. ID NR. 6.1. Isolated DNA sequence, characterized in that the sequence comprises, (a) DNA sequences that code for the polypeptides according to the sequence: wherein amino acid 52 is Leu or His, amino acid 57 is Ala or Thr, amino acid 58 is Ser or Asp, amino acid 73 is Ser or Ile and amino acid 80 is Val or Ile, (b) variants of the sequences in (a) which encode proteins with corresponding biological activity, and (c) its DNA sequences demonstrably hybridize to the DNA sequences according to (a) or (b), or their complementary strands, under very stringent conditions including hybridization and washing after hybridization at 55 °C or higher and at a salt concentration of 0.5 x SSC or lower, and which, after expression, codes for a polypeptide with similar biological activity to the sequences according to SEQ ID NO. ID NO. 3 or SEQ. ID NO. 6. 2. Isolert DNA-sekvens ifølge krav 1, karakterisert ved at sekvensen omfatter, (a) nukleotidene 145 - 489 i DNA-sekvensen ifølge SEKV. ID NR. 1 eller SEKV. ID NR. 4, (b) DNA-sekvenser som påvisbart hybridiserer til DNA-sekvensene ifølge (a) eller deres komplementære tråder under svært strenge betingelser, omfattende hybridisering og vask etter hybridisering ved 55 °C eller høyere, og ved en saltkonsentrasjon på 0,5 x SSC eller lavere, og som etter ekspresjon koder for et polypeptid med tilsvarende biologisk aktivitet som sekvensene ifølge SEKV. ID NR. 3 eller SEKV. ID NR. 6, og (c) DNA-sekvenser som på grunn av den genetiske kodes degenerasjon, koder for et polypeptid som kodes for av hvilken som helst av DNA-sekvensene under (a) og (b).2. Isolated DNA sequence according to claim 1, characterized in that the sequence comprises, (a) nucleotides 145 - 489 in the DNA sequence according to SEQ. ID NO. 1 or SEQ. ID NO. 4, (b) DNA sequences that detectably hybridize to the DNA sequences of (a) or their complementary strands under very stringent conditions, including hybridization and washing after hybridization at 55 °C or higher, and at a salt concentration of 0.5 x SSC or lower, and which, after expression, codes for a polypeptide with similar biological activity to the sequences according to SEQV. ID NO. 3 or SEQ. ID NO. 6, and (c) DNA sequences which, due to the degeneracy of the genetic code, encode a polypeptide encoded by any of the DNA sequences under (a) and (b). 3. Isolert DNA-sekvens som koder for et forløperpolypeptid til det biologisk aktive IL-15-polypeptid, karakterisert ved at DNA-sekvensen er valgt fra gruppen bestående av: en DNA-sekvens som etter ekspresjon koder for polypeptidet definert ved SEKV. ID NR. 2, og en DNA-sekvens som etter ekspresjon koder for polypeptid definert ved SEKV. ID NR. 5.3. Isolated DNA sequence encoding a precursor polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide, characterized in that the DNA sequence is selected from the group consisting of: a DNA sequence which, after expression, codes for the polypeptide defined by SEQ. ID NO. 2, and a DNA sequence which, after expression, codes for polypeptide defined by SEQ. ID NO. 5. 4. Isolert DNA-sekvens ifølge krav 3, karakterisert ved at DNA-sekvensen som koder for et forløperpolypeptid til det bioligisk aktive IL-15-polypeptid, er valgt fra gruppen bestående av: DNA-sekvensen ifølge SEKV. ID NR. 1, og DNA-sekvensen ifølge SEKV. ID NR. 4.4. Isolated DNA sequence according to claim 3, characterized in that the DNA sequence which codes for a precursor polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide is selected from the group consisting of: the DNA sequence according to SEQ. ID NO. 1, and the DNA sequence according to SEQ. ID NO. 4. 5. Rekombinant ekspresjonsvektor, karakterisert ved at den omfatter DNA-sekvensene ifølge hvilket som helst av kravene 1-2.5. Recombinant expression vector, characterized in that it comprises the DNA sequences according to any of claims 1-2. 6. Vertscelle, karakterisert ved at den er transformert eller transfektert med en ekspresjonsvektor ifølge krav 5.6. Host cell, characterized in that it is transformed or transfected with an expression vector according to claim 5. 7. Vertscelle ifølge krav 6, karakterisert ved at vertscellen er valgt fra gruppen bestående av E. coli, Pseudomonas, Bacillus, Streptromyces, gjær, sopp, innsektsceller og pattedyrceller.7. Host cell according to claim 6, characterized in that the host cell is selected from the group consisting of E. coli, Pseudomonas, Bacillus, Streptromyces, yeast, fungi, insect cells and mammalian cells. 8. Vertscelle ifølge krav 7, karakterisert ved at vertscellen er Saccharomyces cerevisiae.8. Host cell according to claim 7, characterized in that the host cell is Saccharomyces cerevisiae. 9. Vertscelle ifølge krav 7, karakterisert ved at vertscellen er en ovariecelle fra kinesisk hamster.9. Host cell according to claim 7, characterized in that the host cell is an ovary cell from a Chinese hamster. 10. Fremgangsmåte for fremstilling av et IL-15-polypeptid, karakterisert ved at den omfatter dyrking av en vertscelle ifølge krav 6 under betingelser som fremmer ekspresjon, og utvinning av et polypeptid som oppviser biologisk-IL-15-aktivitet, fra kulturen.10. Method for producing an IL-15 polypeptide, characterized in that it comprises culturing a host cell according to claim 6 under conditions that promote expression, and recovering a polypeptide exhibiting biological IL-15 activity from the culture. 11. Isolert, biologisk aktivt IL-15-polypeptidpreparat, karakterisert ved at det omfatter en aminosyresekvens som kodes for av en isolert DNA-sekvens ifølge krav 1.11. Isolated biologically active IL-15 polypeptide preparation, characterized in that it comprises an amino acid sequence which is coded for by an isolated DNA sequence according to claim 1. 12. Isolert polypeptid av det biologisk aktive IL-15-polypeptid ifølge krav 11, karakterisert ved at det omfatter polypeptidet definert ved SEKV. ID NR. 2.12. Isolated polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide according to claim 11, characterized in that it comprises the polypeptide defined by SEQ. ID NO. 2. 13. Isolert polypeptid av det biologisk aktive IL-15-polypeptid ifølge krav 11, karakterisert ved at det omfatter polypeptidet definert ved hjelp av SEKV. ID NR. 5.13. Isolated polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide according to claim 11, characterized in that it comprises the polypeptide defined by SEQ. ID NO. 5. 14. Farmasøytisk preparat for stimulering av proliferasjon av T-lymfocytter, karakterisert ved at det omfatter det isolerte IL-15-polypeptid iøflge krav 11, og en fysiologisk akseptable bærere, eksipienser eller fortynningsmidler.14. Pharmaceutical preparation for stimulating the proliferation of T-lymphocytes, characterized in that it comprises the isolated IL-15 polypeptide according to claim 11, and a physiologically acceptable carrier, excipient or diluent. 15. Anvendelse av et polypeptid ifølge krav 11 -13 for fremstilling av et middel for behandling eller forebyggelse av anemi, karsinom, melanom, sarkom, leukemi, lymfom eller forbehandling eller forebyggelse av infeksjoner forårsaket av herpesvirus, inkludert cytomegalovirus, polyomavirus, retrovirus, inkludert HIV, influensavirus, hepatittvirus, deriblant hepatitt A, hepatitt B, hepatitt C, hepatitt 5 eller hepatitt D.15. Use of a polypeptide according to claims 11-13 for the preparation of an agent for the treatment or prevention of anemia, carcinoma, melanoma, sarcoma, leukemia, lymphoma or pretreatment or prevention of infections caused by herpes viruses, including cytomegalovirus, polyomavirus, retrovirus, including HIV, influenza virus, hepatitis virus, including hepatitis A, hepatitis B, hepatitis C, hepatitis 5 or hepatitis D.
NO19964141A 1994-04-06 1996-09-30 Isolated DNA sequence from IL-15, isolated DNA sequence encoding a precursor polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide, recombinant expression vector, host cell, method of producing an IL-15 polypeptide, isolated biologically active IL-15 polypeptide preparation, pharmaceutical composition for stimulating T-lymphocyte proliferation, and using a polypeptide according to the invention for the preparation of a means for treating or preventing specific diseases. NO318435B1 (en)

Applications Claiming Priority (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
NZ266264A NZ266264A (en) 1994-04-06 1994-04-06 Mammalian epithelium-derived t-cell factor called interleukin-15
PCT/US1994/003793 WO1995027722A1 (en) 1994-04-06 1994-04-06 Interleukin-15
ZA942636A ZA942636B (en) 1994-04-06 1994-04-18 Interleukin-15
OA60897A OA10375A (en) 1994-04-06 1996-09-27 Interleukin-15

Publications (3)

Publication Number Publication Date
NO964141D0 NO964141D0 (en) 1996-09-30
NO964141L NO964141L (en) 1996-12-06
NO318435B1 true NO318435B1 (en) 2005-03-21

Family

ID=33314050

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO19964141A NO318435B1 (en) 1994-04-06 1996-09-30 Isolated DNA sequence from IL-15, isolated DNA sequence encoding a precursor polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide, recombinant expression vector, host cell, method of producing an IL-15 polypeptide, isolated biologically active IL-15 polypeptide preparation, pharmaceutical composition for stimulating T-lymphocyte proliferation, and using a polypeptide according to the invention for the preparation of a means for treating or preventing specific diseases.

Country Status (4)

Country Link
JP (1) JPH09512165A (en)
AU (1) AU680909B2 (en)
FI (1) FI117054B (en)
NO (1) NO318435B1 (en)

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CA3028038C (en) 2007-05-11 2021-08-10 Altor Bioscience Corporation Fusion molecules and il-15 variants
PT2619229T (en) 2010-09-21 2016-07-13 Altor Bioscience Corp Multimeric il-15 soluble fusion molecules and methods of making and using same
US11053299B2 (en) 2010-09-21 2021-07-06 Immunity Bio, Inc. Superkine
ES2906615T3 (en) 2013-04-19 2022-04-19 Cytune Pharma Cytokine-derived therapy with reduced vascular leak syndrome
EP2915569A1 (en) * 2014-03-03 2015-09-09 Cytune Pharma IL-15/IL-15Ralpha based conjugates purification method
KR20230028807A (en) 2014-06-30 2023-03-02 알토 바이오사이언스 코포레이션 Il-15-based molecules and methods of use thereof
BR112019007920A2 (en) 2016-10-21 2019-10-08 Altor Bioscience Corp il-15 based multimeric molecules
WO2021200744A1 (en) * 2020-03-31 2021-10-07 Cell Exosome Therapeutics株式会社 Method for producing proliferating cells, method for producing cell product, mesenchymal stem cell population and method for producing same, culture supernatant of stem cells and method for producing same, and therapeutic agent

Family Cites Families (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5552303A (en) * 1993-03-08 1996-09-03 Immunex Corporation DNA encoding epithelium-derived T-cell factor
US5574138A (en) * 1993-03-08 1996-11-12 Immunex Corporation Epithelium-derived T-cell factor
US5795966A (en) * 1995-02-22 1998-08-18 Immunex Corp Antagonists of interleukin-15

Also Published As

Publication number Publication date
FI963828A0 (en) 1996-09-25
FI117054B (en) 2006-05-31
NO964141L (en) 1996-12-06
JPH09512165A (en) 1997-12-09
NO964141D0 (en) 1996-09-30
FI963828A (en) 1996-12-02
AU680909B2 (en) 1997-08-14
AU6767394A (en) 1995-10-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0772624B1 (en) Interleukin-15
US5552303A (en) DNA encoding epithelium-derived T-cell factor
US7875709B2 (en) Nucleic acids encoding interleukin-18 mutants
US7067118B2 (en) Methods of using mutant flt3-ligand polypeptides to induce cellular expansion
NZ502139A (en) Chimeric interleukin-6 soluble receptor/interleukin-6 fusion protein (sIL-6R/IL-6) to treat malignant melanoma cells
DK175865B1 (en) Interleukin-7
JP2010279365A (en) Modified human thymic stromal lymphopoietin
AU2002324249A1 (en) Interleukin-18 mutants, their production and use
CN112513276B (en) Protein heterodimers and uses thereof
NO318435B1 (en) Isolated DNA sequence from IL-15, isolated DNA sequence encoding a precursor polypeptide of the biologically active IL-15 polypeptide, recombinant expression vector, host cell, method of producing an IL-15 polypeptide, isolated biologically active IL-15 polypeptide preparation, pharmaceutical composition for stimulating T-lymphocyte proliferation, and using a polypeptide according to the invention for the preparation of a means for treating or preventing specific diseases.
AU2002359238A1 (en) Modified human thymic stromal lymphopoietin
KR19990064068A (en) Multifunctional hematopoietic receptor agonist
KR20000052812A (en) Multi-functional chimeric hematopoietic receptor agonists
WO1995001421A1 (en) Expression system for production of recombinant proteins in yeast
JP3689111B2 (en) Interleukin 15
KR102275668B1 (en) Chimeric Cytokine Receptor Capable of Converting Immunosuppressive Signal to Immunostimmulatory Signal, Immune Cell Expressing the Same, and Anti-Cancer Use Thereof
JPH06277065A (en) Adipocyte-formation suppressing factor derivative
MXPA00000364A (en) Chimeric interleukin-6 soluble receptor/ligand protein, analogs thereof and uses thereof
MXPA99003875A (en) NOVEL flt-3 RECEPTOR AGONISTS

Legal Events

Date Code Title Description
MM1K Lapsed by not paying the annual fees