LT6340B - 5-hidroksimetilcitozinų dnr sekos analizė - Google Patents

Abstract

Pateiktas 5-hidroksimetilintų CG sekų vietų nustatymo genominėje DNR metodas, kuris apima tiriamos DNR veikimą nukleorūgšties polimeraze, kuomet nukleorūgšties polimerazė sintetina nukleorūgšties molekulę nuo matricos, turinčios kovalentines tarpnukleotidines jungtis minėtų 5-hidroksimetilintų CG sekų vietose.

Description

Išradimo sritis

Išradimas susijęs su metiltransferazių vykdoma sekai-specifine modifikacija ir 5-hidroksimetilcitozino liekanų analizę DNR, konkrečiai su metiltransferazių vykdomu selenolių prijungimu prie 5-hidroksimetil grupės minėtose liekanose, bei oksidatoriaus poveikyję vykstančiu šių liekanų kovalentiniu susiuvimu su gretimais nukleotidais ir DNR polimerazės grandinės sintezės nutraukimu susiūtų liekanų vietose, kurios atskleidžia 5-hidroksimetilcitozino liekanų vietas genominėje DNR.

Išradimo technikos lygis

Kovalentinė citozino modifikacija 5-je padėtyje yra viena iš geriausiai ištirtų epigenetinių DNR reguliacijos mechanizmų organizmuose nuo augalų iki žinduolių. Pirminė epigenetinė DNR modifikacija yra 5-metilcitozinas (5mC), kuris susidaro pernešant metilo grupę nuo kofaktoriaus SAM DNR metiltransferazių pagalba. Ši DNR modifikacija yra plačiai paplitusi žinduolių genome CpG sekose. Tačiau nauji tyrimai parodė, kad veikiant TET oksigenazėms 5mC gali būti paverstas į 5hidroksimetilcitoziną (hmC) ir po to į 5-formilcitoziną ar 5-karboksilcitoziną. Nors hmC yra antra labiausiai sutinkama modifikacija DNR (Tahiliani et ai., 2009, Science, 324, 930-935; Kriaucionis & Heintz, 2009, Science, 324, 929-930), jos biologinė reikšmė nėra pakankamai ištirta, didžia dalimi dėl tyrimo metodų netobulumo. Neseniai mes atradome netipinę metiltransferazės vykdomą reakciją, kurios metu susidaro hmC. hmC toliau gali būti modifikuojamas metiltransferazės nesant jos gamtiniam kofaktoriui SAM (Liutkeviciute et ai, Nat Chem. Biol., 2009, 5: 400-402). Neseniai mes atradome, kad hmC liekanos gali būti selektyviai modifikuojamos tioliais arselenoliais, susidarant atitinkamai 5-alkitiometilcitozinams arba 5-alkilselenometilcitozinams specifinėse DNR sekose in vitro (Liutkeviciute et ai., Angew. Chem. Int. Ed., 2011, 50, 2090-2093). Aprašyta, kad oksiduojant švelnias oksidantais, pvz, NaJO4, panašūs 5arilselenometilpirimidinų dariniai gali sudaryti kovalentinius metileno tiltelius su gretimais toje pat ar kitoje grandinėje esančiais purinais (Peng ir kt., 2008, J Am Chem Soc 130,10299-10306; Ding ir kt.,. 2008 J Am Chem Soc 130,17981-17987); reakcija, manoma, vyksta 5-arilseleno(oksi)metilpirimidinų sigmatropinio persigrupavimo keliu susidarant elektrofiliniam 5-metilencitozino dariniui (IV, Pav. 1), kuris aktyviai reaguoja su kaimyninėmis guanino nukleobazėmis (Romieu et ai. 2000 Org Lett2,1085-1088.; Bellon et ai. 2001 Nucleosides Nucleotides & Nucleic Acids 20, 967-971; Zhang and Wang 2003, J Am Chem Soc 125,12795-12802; Bellon et ai. 2006, Org Biomol Chem

4, 3831-3837; Hong et ai. 2006, J Am Chem Soc 128, 485-491; Ding et ai. 2008 J Am Chem Soc 130, 17981-17987; Peng et ai. 2008; J Am Chem Soc 130,10299-10306).

Išradimo esmė

Čia pirmąkart pademonstruota, kad veikiant DNR alifatiniu selenoliu ir esant DNR C5-MTazei bei toliau švelniai oksiduojant NaJO4, susidaro sekai-specifinės kovalentinės jungtys tarp hmC ir gretimo guanino (intra-grandininis guaninometilcitozino aduktas G^AmC); susidariusi jungtis lemia DNR polimerazės vykdomos dukterinės DNR grandinės sintezės nutrūkimą, kas leidžia nustatyti hmC buvimo vietą DNR.

hmC modifikacijų analizei CG dinukleotiduose naudojome MTazes M.Sssl ir M.Hhal, kurių atpažinimo sekos yra CG ir GCGC (modifikuoja pabrauktą citoziną). Demonstraciniuose eksperimentuose naudojome modelinį DNR substratą, turintį hmC nucleotidą, kuris buvo modifikuotas selenoliu (2-aminoetanselenolis, R1-SeH; Lselenocisteinas, R2-SeH ir 2-(2-aminoetoksi) etanselenolis, R3-SeH) esant vienai iš MTazių, bei veikiamas NalO4.

Yra žinoma, kad DNR polimerazių vykdoma DNR grandinės pratęsimo reakcija stringa ties susiūtais nukleotidais matricinėje grandinėje, susidarant trupesnei dukterinei DNR grandinei. Iš tiesų, vykdant grandinės pratęsimo reakcijas su T4 DNA pol. (Pav. 2) arba Taq DNA pol. (Pav. 3), naudojant DNR matricomis perjodatu veiktus pavyzdžius, buvo stebimas DNR grandinės sintezės nutrūkimas pozicijose, atitinkančiose selenoliu modifikuotas hmC liekanas, tuo būdu parodant hmC buvimo vietas DNR. Grandinės nutrūkimas nebuvo stebimas kontroliniuose eksperimentuose, nesant MTazės ar nepaveikus NalO4.

Paveikslų aprašymai

Šis išradimas toliau detaliau aprašomas naudojant paveikslus, kuriuose pateikta:

Pav. 1. Chemo-enzimatinių reakcijų schema, apibudinanti MTazių-sąlygotą selenolio prijungimą, oksidaciją ir kovalentinį hmC liekanų susiuvimą, lemiantį DNR polimerazės užstrigimus ties susiūtais nukleotidais.

Pav. 2. Sekai-specifinis hmC modifikacijų nustatymas DNR, naudojant polimerazės grandinės pratęsimo reakciją. DNR turintis hmC modifikacijas GCGC sekose buvo inkunbuota su M.Hhal ir selenoliu, oksiduota su NalO4 ir analizuota polimerazių pagalba. Pradmens pratęsimo reakcijos naudojant naudojant DNR matricomis perjodatu veiktus pavyzdžius (takeliai 2, 4 ir 6) buvo stebimas DNR grandinės sintezės nutrūkimas pozicijose, atitinkančiose selenoliu modifikuotas hmC liekanas. Sanger’io sekoskaitos takeliai (G, C, T, A) įgalina DNR sekos sugretinimą, GCGC taikiniai yra paryškinti.

Pav.3. Hidrokslimetilintų CG taikinių nustatymas DNR, naudojant polimerazės grandinės pratęsimo reakciją. 618 bp DNR fragmentas, kuriame visi citozinai pakeisti į hmC, buvo inkubuotas su M.Sssl ir selenoliu, oksiduotas natrio perjodatu, ir galop analizuotas Taq polimerazės pradmens pratęsimo reakcijose. Pradmens pratęsimo reakcijos naudojant perjodatu oksiduotus pavyzdžius (takeliai 3 ir 5) aiškiai matomas trumpesnių DNR grandinių, kurios baigiasi ties hmC nukleotidais, susidarymas. Sanger’io sekoskaitos takeliai (G, C, T, A) įgalina DNR sekos sugretinimą, CG taikiniai yra paryškinti.

Detalus išradimo aprašymas

DNR substratų paruošimas

Oligonukleotidai

DNR oligonukleotidai (gryninti HPLC būdu) gauti iš IDT (JAV), IBA (Vokietija) ar Metabion (Vok.)

DNR substratų paruošimas

618 bp ir 1252 bp DNR fragmentai paruošti standartiniu PGR metodu naudojant pUC19 plazmidės matricą ir, atitinkamai, pradmenų poras 5’AACGTTGTTGCCATTGCTAC, 5’-GCTCATGAGACAATAACCCTGA arba 5’CTCAACCAAGTCATTCTGAGAATAGTG, 5’-GATACCGCTCGCCGCAG. Po PGR amplifikacijos, DNR fragmentai išgryninti naudojant QIAquic PCR Purification kit (Qiagen). DNR, turinti hmC liekanas GCGC sekose, paruošta pagal (Liutkeviciute et ai, Nat Chem. Biol., 2009, 5: 400-402) inkubuojant 120 ng/μΙ DNR su 8 μΜ M.Hhal ir 13 mM formaldehido 1 vai. kambario temperatūroje reakcijos buferyje (10 mM Tris-HCI (pH 7.4), 50 mM NaCI, 0,5 mM Na2EDTA 0,2 mg/ml BSA) bei išgryninant susidariusią DNR su QIAquick PCR Purification Kit.

Sekai-specifinis hmC modifikacijų nustatymas DNR naudojant pradmens pratęsimo reakciją hmC analizė GCGC sekose (reakcijos su M.Hhal). 1252 bp PGR fragmentas (38 ng/pl, 0,44 μΜ taikinių kone) veikiamas M.Hhal (5 μΜ) ir 12,5 mM selenoliu reakcijos buferyje (15 mM Na-citratas pH 5,5, 0,2 mg/ml BSA) 1 vai. kambario temperatūroje. DNR išgryninama naudojant QIAquick PCR Purification Kit ir inkubuojama su 10 mM NalO4 (10 mM Na-PO4 pH 7,5 buferyje) 1 vai. kambario temperatūroje, ir gryninimas rinkiniu pakartojamas.

Pradmens pratesimo reakcijos naudojant T4 DNR polimeraze. Modifikuota DNR pakaitinta 3 min. 95°C ir po to staigiai perkelta ant ledo. 20 nM 5’ žymėtas pradmuo (5’-GATACCGCTCGCCGCAG), 0,2 mM dNTP ir buferis (T4 polymerase buffer, Thermo Fisher Scientific) pridėti į denatūruotą šaltą DNR tirpalą. Pradmens hibridizacija vykdyta 3 min. 54 °C temp., po to vėl pernešant mėginį ant ledo. Pridėjus T4 polimerazės (0.031 vnt/pl), mėginiai inkubuoti 20 min. 37 °C temp. Reakcija sustabdyta pridedant 1/3 tūrio STOP solution (Thermo Fisher Scientific).

DNR sekoskaitos reakcijas (palyginamiesiems takeliams) vykdytos naudojant CycIeReader™ DNA Seųuencing Kit (Thermo Fisher Scientific).

hmC analizė CG sekose (reakcijos su M.Sssl). 618 bp PGR fragmentas (63 ng/pl, 5 pM taikinių kone.) veikiamas M.Sssl (10 pM) ir 12,5 mM selenolio reakcijos buferyje (50 mM Na-acetatas pH 6,0, 0,2 mg/ml BSA) 1 vai. kambario temperatūroje. DNR išgryninama naudojant QIAquick PCR Purification Kit ir inkubuota su 10 mM NalO4 (10 mM Na-PO4 pH 7,5 buferyje) 1 vai. kambario temperatūroje, ir gryninimas rinkiniu pakartojamas.

Pradmens pratesimo reakcijos naudojant Tag DNR polimeraze. Modifikuotos DNR ir kontroliniai pavyzdžiai buvo sekvenuojami naudojant 0.2 mM dNTP, 130 ng DNR, 50 nM 5’ žymėto pradmens 5’- AACGTTGTTGCCATTGCTAC ir 0,125 vnt./pl Taq pol. 8 pi reakcijos tūryje su Sequencing buffer. PGR reakcijos sąlygos: 1) 95 °C 3 min., 2) 95 °C 1 min, 3) 49 °C 1 min., 4) 72 °C 1 min; žingsniai 2-4 kartojami 25 kartus. PGR reakcija sustabdyta pridedant 4 pi STOP solution (Thermo Fisher Scientific).

Selenoliu paruošimas

Selenoliai (R-SeH) paruošti prieš pat naudojimą iš atitinkamų diselenidų (RSe-Se-R) pastaruosius redukuojant ditiotreitoliu (DTT). Diselenidai R1-Se-Se-R1 ir R2Se-Se-R2 yra komerciškai prieinami junginiai, tuo trarpu diselenidas R3-Se-Se-R3 buvo susintetintas pagal žemiau aprašytas metodikas:

Claims (5)

1. IŠRADIMO APIBRĖŽTIS

   1. Būdas, skirtas 5-hidroksimetilintų CG sekų nustatymui DNR, b e s i s k i r i antis tuo, kad būdas apima matricos nukleorūgšties sekos veikimą nukleorūgšties polimeraze, esant sąlygoms, kurios leidžia nukleorūgšties polimerazei produkuoti nukleorūgšties molekulę nuo matricos, kur matricos nukleorūgšties seka turi tarpnukleotidines kovalentines jungtis minėtos 5-hidroksimetilintos CG vietos padėtyje.
2. 2. Būdas pagal 1 punktą, besiskiriantis tuo, kad minėta tarpnukleotidinė kovalentinė jungtis 5-hidroksimetilintos CG vietos padėtyje yra pasiekiama DNR veikiant alifatiniu selenoliu, dalyvaujant metiltransferazei, po to sekančiam oksidavimui švelniais reagentais.
3. 3. Būdas pagal 2 punktą, besiskiriantis tuo, kad alifatinis selenolis yra parinktas iš 2-aminoetilselenolio, L-selenocisteino ir 2-(2-aminoetoksi)etilselenolio.
4. 4. Būdas pagal 2 arba 3 punktą, besiskiriantis tuo, kad minėta metiltransferazė yra DNR citozino-5 metiltransferazė, geriau M.Hhal arba M.SssI.
5. 5. Būdas pagal bet kurį iš 2-4 punktų, besiskiriantis tuo, kad minėtas švelnus reagentas yra NalO4.