KR20220156934A - 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체 분해의 촉진 방법 및 약물 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 피험자에게 치료 유효량의 플라스미노겐 활성화 경로의 성분을 투여하는 단계를 포함하는 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체 분해의 촉진 방법을 제공한다. 본 발명은 또한 잘못 접힌 단백질 및/또는 이의 중합체로 인한 질환의 예방 및 치료에 사용되는 플라스미노겐 활성화 경로의 성분을 포함하는 약물, 약학적 조성물, 제품, 키트를 제공한다.
Description
본 발명은 피험자에게 유효량의 플라스미노겐 활성화 경로의 성분 또는 이의 관련 화합물, 예를 들어 플라스미노겐을 투여하여, 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체 분해를 촉진하고, 잘못 접힌 단백질 및/또는 이의 중합체로 인한 질환을 예방 및 치료하는 단계를 포함하는 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체 분해의 촉진 방법에 관한 것이다.
잘못 접힌 단백질 또는 이의 중합체로 인한 질환은 알츠하이머병, 파킨슨, 근위축성 축삭경화증, 폴리글루타민병 및 프라이온병[크로이츠펠트-야콥병(Creutzfeldt-Jakob Disease, CJD), 거스트만 증후군(Gerstmann syndrome, GSS), 산발성 또는 가족성 치명적 불면증(Fatal sporadic or familial isomnia) 및 쿠루병(Kuru)] 등을 포함한다. 이들은 상이한 병인에 의해 유발되고, 각각 선택적인 병변 부위가 있으며, 질병 유전자의 위치도 상이하지만, 공통적인 병리학적 특징, 즉 특정 영역의 뉴런 변성, 사멸 및 돌연변이 단백질의 응집에 의해 형성된 뉴런 내 봉입체를 갖는 바, 예를 들어 알츠하이머병 환자의 뇌에서 발생한 노인성 플라크, 신경 엉킴; 파킨슨병 환자의 도파민성 뉴런 내 잔류된 호산성 Lewy 소체, 근위축성 축삭경화증 환자의 척수 및 뇌간 뉴런 내의 Bunina 소체 등; 폴리글루타민병 환자의 영향을 받는 뉴런의 핵내 봉입체 등이다. 현재 연구에 따르면 이러한 뉴런의 변성, 사멸 및 봉입체의 형성은 잘못 접힌 단백질에 의해 형성된 응집체와 밀접한 관련이 있다.
최근 연구에 따르면 세포 내 잘못 접힌 단백질은 열충격 단백질과 같은 분자 샤페론을 이용하여 리폴딩될 수 있으며, 유비퀴틴-프로테아좀 시스템을 통해 분해될 수도 있다(Rubinsztein DC.The roles of intracellular protein-degradation pathways in neurodegen-eration,Nature, 2006, 443(7113):780-786). 잘못 접힌 단백질이 과도하게 생성되어 이들의 분해 능력을 초과하거나 프로테아좀 기능 자체가 손상되면, 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체는 유비퀴틴화를 위해 주로 K-63 방식으로 연결된 폴리유비퀴틴 사슬에 의해 선택적으로 매개되고, 유비퀴틴화된 단백질 및 이의 응집체는 히스톤 디아세틸라제 6(histone deacetylase 6, HDAC6)(미세소관과 관련된 α 튜불린 디아세틸라제)과 상호작용하며, HDAC6에 의해 다이네인 모터를 통해 미세소관을 따라 미세소관 조직 중심 주변의 봉입체-단백질 응집체로 역수송되는 이러한 과정을 단백질 응집체 경로라고 한다. 연구에 따르면, 단백질 응집체의 형성은 상응한 질환에 대한 보호 메커니즘일 수 있으며, 이의 작용은 잠재적인 세포 독성이 있는 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체를 모집하여 단백질 응집체를 형성하여 세포 독성 작용을 경감하는 것일 수 있다.
알츠하이머병과 단백질 응집체 알츠하이머병의 병리학적 특징은 광범위한 세포외 Aβ 플라크 및 세포내 신경 섬유 엉킴의 형성이다(Braak H, Braak E.Evolution of neuronal changes in the course of Alzheimer's disease,Neural Transm Suppl, 1998, 53:127-140). 많은 연구 결과에서는 알츠하이머병이 응집체 경로와 일정한 관련이 있음을 나타낸다.
파킨슨병은 흔한 신경퇴행성질환으로, 주요 특징은 도파민성 뉴런의 선택적인 소실 및 루이소체의 발생이다(Spillantini MG, Schmidt ML, Lee VM, et al.Alpha-synuclein in Lewy bodies, Nature, 1997, 3 88(6645):839-840). 상기 질환은 봉입체의 형성과 일정한 관련이 있다. 산발성 파킨슨병 루이소체의 주요 단백질 성분은 α-시누클레인이다.
폴리글루타민병은 헌팅톤병, 척수소뇌성 운동실조증 타입 3, 치상핵 적핵 담창구 루이체 위축증과 같은 글루타민을 암호화하는 CAG 서열의 비정상적인 반복에 의해 유발되는 지연성, 진행성 신경퇴행성질환이다. 헌팅톤병에서, 헌팅틴 단백질 엑손 1 중의 폴리글루타민 분지쇄가 37개의 중단되지 않은 글루타민을 초과하면 질병을 유발한다.
근위축성 축삭경화증 환자의 주요 병리학적 특징은 Bunina 소체, skein 유사 봉입체 및 루이소체 유사 봉입체의 형성이고(Mizuno Y, Fujita Y, Takatama M, et al.Peripherin partially localizes in Bunina bodies in amyotrophic lateral sclerosis,J Neurol Sci, 2011, 302(1/2):14-18), 이의 구체적인 형성 메커니즘은 아직 명확하지 않다.
또한, 문헌에서는 하기와 같은 질환이 하기와 같은 잘못 접힌/잘못 배열된/ 비정상적으로 응집된 단백질과 일정한 관련이 있음을 보고하였다. 낭포성 섬유증과 낭포성 섬유증 막횡단 전도 조절자(CFTR, cystic fibrosis transmembrane conductance regulator), 폐기종 및 간 손상과 α1-항트립신(α1-antitryspin), 파킨슨병과 Parkin 단백질, 백내장과 크리스탈린(Crystallin), 가족성 아밀로이드증과 트랜스티레틴(Transthyretin), 단쇄 아실-CoA 탈수소효소(SCAD) 결핍증과 단쇄 아실-CoA 탈수소효소 변이체(SCAD variant), 가족성 고콜레스테롤혈증과 저밀도 지질단백질 수용체(Low density lipoprotein receptor), 헌팅톤과 헌팅틴 단백질(huntingtin), 근위축성 축삭경화증과 신경세사 단백질(Neurofilament protein), 근위축성 축삭경화증과 말초 단백질(Peripherin), 운동 뉴런 질환과 α-중간세사 단백질(α-Internexin), 당뇨병과 섬 아밀로이드 폴리펩티드(Islet Amyloid Polypeptide), 투석 관련 아밀로이드증과 β2-마이크로글로불린(β2-microglobulin), 아밀로이드증과 혈청 아밀로이드 단백질 A(Serum amyloid A Protein), 아밀로이드증과 면역글로불린 경쇄(Immunoglobulin light Chains), 아밀로이드증 관련 인간 질환과 인간 라이소자임(Human Lysozyme), 아밀로이드증과 α-유청 단백질(α-Lactalbumin), 아밀로이드증과 아포지질단백질 E(Apolipoprotein E), 아밀로이드증과 아포지질단백질 J(Apolipoprotein J).
현재, 잘못 접힌 단백질의 리폴딩 또는 프로테아좀의 분해를 촉진하는 것은 신경퇴행성질환의 치료에 좋은 방법이며, 신경퇴행성질환의 임상 치료에 효과적인 경로를 제공하기 위해 관련 약물을 찾아야 한다.
본 발명의 연구는 플라스미노겐이 알츠하이머병 환자의 기억 기능 회복을 촉진하고, 인지 능력을 개선하며, 알츠하이머병의 다양한 임상 증상 및 징후를 유의하게 경감 및 완화하고, 알츠하이머병을 예방 및 치료할 수 있음을 발견하였다.
구체적으로, 본 발명은 하기와 같은 각 항에 관한 것이다.
1. 일 양태에서, 본 발명은 치료 유효량의 플라스미노겐 활성화 경로의 성분, 플라스미노겐을 직접적으로 활성화하거나 또는 플라스미노겐 활성화 경로의 업스트림 성분을 활성화하여 플라스미노겐을 간접적으로 활성화할 수 있는 화합물, 플라스미노겐 또는 플라스민의 활성을 모방하는 화합물, 플라스미노겐 또는 플라스미노겐 활성제의 발현을 상향 조절할 수 있는 화합물, 플라스미노겐 유사체, 플라스민 유사체, tPA 또는 uPA 유사체 및 피브린 용해 억제제의 길항제로부터 선택되는 하나 이상의 화합물을 피험자에게 투여하는 단계를 포함하는 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체 분해의 촉진 방법에 관한 것이다.
일 양태에서, 본 발명은 플라스미노겐 활성화 경로의 성분, 플라스미노겐을 직접적으로 활성화하거나 또는 플라스미노겐 활성화 경로의 업스트림 성분을 활성화하여 플라스미노겐을 간접적으로 활성화할 수 있는 화합물, 플라스미노겐 또는 플라스민의 활성을 모방하는 화합물, 플라스미노겐 또는 플라스미노겐 활성제의 발현을 상향 조절할 수 있는 화합물, 플라스미노겐 유사체, 플라스민 유사체, tPA 또는 uPA 유사체 및 피브린 용해 억제제의 길항제로부터 선택되는 하나 이상의 화합물의 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체 분해의 촉진을 위한 약물의 제조에서의 용도에 관한 것이다.
일 양태에서, 본 발명은 플라스미노겐 활성화 경로의 성분, 플라스미노겐을 직접적으로 활성화하거나 또는 플라스미노겐 활성화 경로의 업스트림 성분을 활성화하여 플라스미노겐을 간접적으로 활성화할 수 있는 화합물, 플라스미노겐 또는 플라스민의 활성을 모방하는 화합물, 플라스미노겐 또는 플라스미노겐 활성제의 발현을 상향 조절할 수 있는 화합물, 플라스미노겐 유사체, 플라스민 유사체, tPA 또는 uPA 유사체 및 피브린 용해 억제제의 길항제로부터 선택되는 하나 이상의 화합물을 포함하는 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체 분해의 촉진을 위한 약물 또는 약학적 조성물에 관한 것이다.
2. 1항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 플라스미노겐 활성화 경로의 성분은 플라스미노겐, 재조합 인간 플라스민, Lys-플라스미노겐, Glu-플라스미노겐, 플라스민, 플라스미노겐 및 플라스민의 하나 이상의 kringle 도메인 및 프로테아제 도메인을 포함하는 플라스미노겐 및 플라스민의 변이체 및 유사체, 미니플라스미노겐(mini-plasminogen), 미니플라스민(mini-plasmin), 마이크로플라스미노겐(micro-plasminogen), 마이크로플라스민(micro-plasmin), 델타-플라스미노겐, 델타-플라스민(delta-plasmin), 플라스미노겐 활성제, tPA 및 uPA로부터 선택된다.
3. 1항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 피브린 용해 억제제의 길항제는 PAI-1, 보체 C1 억제제, α2 항플라스민 또는 α2 마크로글로불린의 억제제, 예를 들어 항체이다.
4. 1항 내지 3항 중 어느 한 항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 화합물은 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40, 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42, α-시누클레인, Tau 단백질, SOD-1 단백질, 폴리글루타민, 뉴로세르핀(Neuroserpin, NSP), 낭포성 섬유증 막횡단 전도 조절자(CFTR, cystic fibrosis transmembrane conductance regulator), α1-항트립신(α1-antitryspin), Parkin 단백질, 크리스탈린(Crystallin), 트랜스티레틴(Transthyretin), 단쇄 아실-CoA 탈수소효소 변이체(SCAD variant), 저밀도 지질단백질 수용체(Low density lipoprotein receptor), 헌팅틴 단백질(huntingtin), 신경세사 단백질(Neurofilament protein), 말초 단백질(Peripherin), α-중간세사 단백질(α-Internexin), 섬 아밀로이드 폴리펩티드(Islet Amyloid Polypeptide), β2-마이크로글로불린(β2-microglobulin), 혈청 아밀로이드 단백질 A(Serum amyloid A Protein), 면역글로불린 경쇄(Immunoglobulin light Chains), 인간 라이소자임(Human Lysozyme), α-유청 단백질(α-Lactalbumin), 프로티모신 α(Prothymosinα), 아포지질단백질 E(Apolipoprotein E) 및 아포지질단백질 J(Apolipoprotein J)로부터 선택되는 하나 이상의 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체 분해를 촉진한다.
일부 실시형태에서, 상기 화합물은 뇌 조직에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40, 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42, α-시누클레인, Tau 단백질, SOD-1 단백질 및 폴리글루타민으로부터 선택되는 하나 이상의 단백질 분해를 촉진한다.
5. 1항 내지 3항 중 어느 한 항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 화합물은 Pro-BDNF가 성숙한 BDNF로 절단되는 것을 촉진하거나, 또는 Pro-NGF가 성숙한 NGF로 절단되는 것을 촉진한다. 일부 실시형태에서, 상기 화합물은 뇌 조직 내 Pro-BDNF가 성숙한 BDNF로 절단되는 것을 촉진하거나, 또는 뇌 조직 내 Pro-NGF가 성숙한 NGF로 절단되는 것을 촉진한다.
6. 1항 내지 5항 중 어느 한 항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 화합물은 플라스미노겐이다.
7. 1항 내지 6항 중 어느 한 항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 플라스미노겐은 인간 전장 플라스미노겐 또는 이의 보존적 치환 변이체이다.
8. 1항 내지 6항 중 어느 한 항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 2와 적어도 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99%의 서열 상동성을 갖고, 플라스미노겐의 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성을 여전히 갖는다.
9. 1항 내지 6항 중 어느 한 항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 14와 적어도 80%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%의 아미노산 서열 상동성을 갖는 아미노산 서열, 및 플라스미노겐의 단백질 분해 활성을 여전히 갖는 단백질을 포함한다.
10. 1항 내지 6항 중 어느 한 항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 플라스미노겐은 Glu-플라스미노겐, Lys-플라스미노겐, 미니플라스미노겐, 마이크로플라스미노겐, 델타-플라스미노겐 또는 플라스미노겐의 단백질 분해 활성을 유지하는 이들의 변이체로부터 선택된다.
11. 1항 내지 6항 중 어느 한 항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 2, 6, 8, 10, 12로 표시되는 아미노산 서열을 포함하거나 또는 서열번호 2, 6, 8, 10, 12로 표시되는 아미노산 서열의 보존적 치환 변이체를 포함한다.
12. 1항 내지 11항 중 어느 한 항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 화합물은 하나 이상의 다른 치료 방법 또는 다른 약물과 병용된다.
13. 12항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 다른 치료 방법은 세포 치료(줄기 세포 치료 포함), 지지 치료 및 물리 치료를 포함한다.
14. 12항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 하나 이상의 다른 약물은 알츠하이머병, 근위축성 축삭경화증(ALS), 또는 파킨슨병의 치료를 위한 약물이다.
15. 1항 내지 14항 중 어느 한 항에 따른 방법, 용도, 약물 또는 약학적 조성물에 있어서, 상기 화합물은 비강 흡입, 에어로졸 흡입, 점비액, 점안액, 점이액, 정맥내, 복막내, 피하, 두개내, 척추강내, 동맥내(예를 들어, 경동맥을 통해) 또는 근육내에 의해 투여된다.
또한, 본 발명은 하기와 같은 각 항에 관한 것이다.
1. 치료 유효량의 플라스미노겐 활성화 경로의 성분, 플라스미노겐을 직접적으로 활성화하거나 또는 플라스미노겐 활성화 경로의 업스트림 성분을 활성화하여 플라스미노겐을 간접적으로 활성화할 수 있는 화합물, 플라스미노겐 또는 플라스민의 활성을 모방하는 화합물, 플라스미노겐 또는 플라스미노겐 활성제의 발현을 상향 조절할 수 있는 화합물, 플라스미노겐 유사체, 플라스민 유사체, tPA 또는 uPA 유사체 및 피브린 용해 억제제의 길항제로부터 선택되는 하나 이상의 화합물을 피험자에게 투여하는 단계를 포함하는 잘못 접힌 단백질로 인한 질환(잘못 접힌 단백질증이라고도 함)의 예방 또는 치료 방법에 관한 것이다.
2. 1항에 따른 방법에 있어서, 상기 플라스미노겐 활성화 경로의 성분은 플라스미노겐, 재조합 인간 플라스민, Lys-플라스미노겐, Glu-플라스미노겐, 플라스민, 플라스미노겐 및 플라스민의 하나 이상의 kringle 도메인 및 프로테아제 도메인을 포함하는 플라스미노겐 및 플라스민의 변이체 및 유사체, 미니플라스미노겐(mini-plasminogen), 미니플라스민(mini-plasmin), 마이크로플라스미노겐(micro-plasminogen), 마이크로플라스민(micro-plasmin), 델타-플라스미노겐, 델타-플라스민(delta-plasmin), 플라스미노겐 활성제, tPA 및 uPA로부터 선택된다.
3. 1항에 따른 방법에 있어서, 상기 피브린 용해 억제제의 길항제는 PAI-1, 보체 C1 억제제, α2 항플라스민 또는 α2 마크로글로불린의 억제제, 예를 들어 항체이다.
4. 1항 내지 3항 중 어느 한 항에 따른 방법에 있어서, 잘못 접힌 단백질로 인한 질환(잘못 접힌 단백질증이라고도 함)은 알츠하이머병, 파킨슨병, 근위축성 축삭경화증 및 폴리글루타민병, 거스트만 증후군, 산발성 또는 가족성 치명적 불면증, 쿠루병, 낭포성 섬유증, 간 손상, 백내장, 가족성 아밀로이드증, 단쇄 아실-CoA 탈수소효소(SCAD) 결핍증, 가족성 고콜레스테롤혈증, 운동 뉴런 질환, 당뇨병, 투석 관련 아밀로이드증 및 아밀로이드증 관련 인간 질환을 포함한다.
5. 4항에 따른 방법에 있어서, 상기 폴리글루타민병은 헌팅톤병, 척수소뇌성 운동실조증 타입 3, 치상핵 적핵 담창구 루이체 위축증을 포함한다.
6. 1항 내지 5항 중 어느 한 항에 따른 방법에 있어서, 상기 화합물은 플라스미노겐이다.
7. 1항 내지 6항 중 어느 한 항에 따른 방법에 있어서, 상기 플라스미노겐은 인간 전장 플라스미노겐 또는 이의 보존적 치환 변이체이다.
8. 1항 내지 6항 중 어느 한 항에 따른 방법에 있어서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 2와 적어도 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99%의 서열 상동성을 갖고, 플라스미노겐의 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성을 여전히 갖는다.
9. 1항 내지 6항 중 어느 한 항에 따른 방법에 있어서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 14와 적어도 80%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%의 아미노산 서열 상동성을 갖는 아미노산 서열, 및 플라스미노겐의 단백질 분해 활성을 여전히 갖는 단백질을 포함한다.
10. 1항 내지 6항 중 어느 한 항에 따른 방법에 있어서, 상기 플라스미노겐은 Glu-플라스미노겐, Lys-플라스미노겐, 미니플라스미노겐, 마이크로플라스미노겐, 델타-플라스미노겐 또는 플라스미노겐의 단백질 분해 활성을 유지하는 이들의 변이체로부터 선택된다.
11. 1항 내지 6항 중 어느 한 항에 따른 방법에 있어서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 2, 6, 8, 10, 12로 표시되는 아미노산 서열을 포함하거나 또는 서열번호 2, 6, 8, 10, 12로 표시되는 아미노산 서열의 보존적 치환 변이체를 포함한다.
12. 1항 내지 11항 중 어느 한 항에 따른 방법에 있어서, 상기 화합물은 하나 이상의 다른 치료 방법 또는 다른 약물과 병용된다.
13. 12항에 따른 방법에 있어서, 상기 다른 치료 방법은 세포 치료(줄기 세포 치료 포함), 지지 치료 및 물리 치료를 포함한다.
14. 12항에 따른 방법에 있어서, 상기 다른 약물은 알츠하이머병, 파킨슨, ALS, 헌팅톤병의 치료를 위한 다른 약물이다.
15. 1항 내지 14항 중 어느 한 항에 따른 방법에 있어서, 상기 화합물은 비강 흡입, 에어로졸 흡입, 점비액, 점안액, 점이액, 정맥내, 복막내, 피하, 두개내, 척추강내, 동맥내(예를 들어, 경동맥을 통해) 또는 근육내에 의해 투여된다.
본 발명의 상기 어느 하나의 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 2, 6, 8, 10 또는 12와 적어도 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99%의 서열 상동성을 갖고, 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성과 같은 플라스미노겐 활성을 여전히 가질 수 있다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 2, 6, 8, 10 또는 12의 기초상에서 1 ~ 100, 1 ~ 90, 1 ~ 80, 1 ~ 70, 1 ~ 60, 1 ~ 50, 1 ~ 45, 1 ~ 40, 1 ~ 35, 1 ~ 30, 1 ~ 25, 1 ~ 20, 1 ~ 15, 1 ~ 10, 1 ~ 5, 1 ~ 4, 1 ~ 3, 1 ~ 2, 1개의 아미노산을 첨가, 삭제 및/또는 치환하고, 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성과 같은 플라스미노겐 활성을 여전히 갖는 단백질이다.
일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 플라스미노겐 활성 단편을 포함하고, 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성과 같은 플라스미노겐 활성을 여전히 갖는 단백질이다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 Glu-플라스미노겐, Lys-플라스미노겐, 미니플라스미노겐, 마이크로플라스미노겐, 델타-플라스미노겐 또는 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성과 같은 플라스미노겐 활성을 유지하는 이들의 변이체로부터 선택된다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 천연 또는 합성 인간 플라스미노겐, 또는 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성과 같은 플라스미노겐 활성을 여전히 유지하는 이들의 변이체 또는 단편이다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 영장류 동물 또는 설치류 동물로부터 유래되는 인간 플라스미노겐 동원체 또는 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성과 같은 플라스미노겐 활성을 여전히 유지하는 이들의 변이체 또는 단편이다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐의 아미노산은 서열번호 2, 6, 8, 10 또는 12로 표시된 바와 같다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 인간 천연 플라스미노겐이다.
일부 실시형태에서, 상기 피험자는 인간이다. 일부 실시형태에서, 상기 피험자는 플라스미노겐이 결핍하거나 결실되어 있다. 일부 실시형태에서, 상기 결핍 또는 결실은 선천적, 이차적 및/또는 국소적이다.
일부 실시형태에서, 상기 약학적 조성물은 약학적으로 허용 가능한 벡터 및 전술한 방법에 사용되는 플라스미노겐을 포함한다. 일부 실시형태에서, 상기 키트는 예방 또는 치료 키트일 수 있는 바, (i) 전술한 방법에 사용되는 플라스미노겐 및 (ii) 상기 피험자에게 상기 플라스미노겐을 전달하기 위한 수단(means)을 포함한다. 일부 실시형태에서, 상기 수단은 주사기 또는 바이알이다. 일부 실시형태에서, 상기 키트는 라벨 또는 사용설명서를 더 포함하고, 상기 라벨 또는 사용설명서는 전술한 어느 하나의 방법을 구현하기 위해 상기 플라스미노겐을 상기 피험자에게 투여하도록 지시한다.
일부 실시형태에서, 상기 제품은 라벨을 포함하는 용기; 및 (i) 전술한 방법에 사용되는 플라스미노겐 또는 플라스미노겐을 포함하는 약학적 조성물을 포함하고, 여기서 상기 라벨은 전술한 어느 하나의 방법을 구현하기 위해 상기 플라스미노겐 또는 조성물을 상기 피험자에게 투여하도록 지시한다.
일부 실시형태에서, 상기 키트 또는 제품은 하나 이상의 다른 수단 또는 용기를 더 포함하고, 상기 수단 또는 용기에는 다른 약물이 포함된다.
전술한 방법의 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 전신 또는 국소 투여되고, 바람직하게는 정맥내, 근육내, 피하에 의해 플라스미노겐을 투여하여 치료한다. 전술한 방법의 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 적절한 폴리펩티드 벡터 또는 안정화제와 병용된다. 전술한 방법의 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 매일 0.0001 ~ 2000 mg/kg, 0.001 ~ 800 mg/kg, 0.01 ~ 600 mg/kg, 0.1 ~ 400 mg/kg, 1 ~ 200 mg/kg, 1 ~ 100 mg/kg, 10 ~ 100 mg/kg(체중 킬로그램당 계산) 또는 0.0001 ~ 2000mg/cm2, 0.001 ~ 800 mg/cm2, 0.01 ~ 600 mg/cm2, 0.1 ~ 400 mg/cm2, 1 ~ 200 mg/cm2, 1 ~ 100 mg/cm2, 10 ~ 100 mg/cm2(체표면적의 제곱센티미터당 계산)의 용량으로 투여되고, 바람직하게는 적어도 1회 반복되며, 바람직하게는 적어도 매일 투여된다.
본 발명은 본 발명의 실시형태에 속하는 기술특징의 모든 조합을 명시적으로 포함하고, 이러한 조합된 기술적 해결수단은 상기 기술적 해결수단이 단독으로 명시적으로 공개된 것처럼 본 발명에서 명시적으로 공개되었다. 또한, 본 발명은 각 실시형태 및 이들의 구성요소 간의 조합을 명시적으로 포함하고, 상기 조합된 기술적 해결수단은 본문에서 명시적으로 공개된다.
도 1의 A ~ D는 마우스의 뇌 균질물에서 재조합 인간 α-시누클레인(α-synuclein)에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Tricine-SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B, C, D는 각각 α-시누클레인, 중합체 a, 중합체 b 밴드 스캐닝 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 α-시누클레인의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고(***는 P<0.001을 나타냄), 이의 중합체 a, b의 양은 모두 비히클 대조군보다 유의하게 낮으며(**는 P<0.01을 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 α-시누클레인의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고(***는 P<0.001을 나타냄), 이의 중합체 a, b의 양은 모두 비히클 대조군보다 유의하게 낮다(*는 P<0.05를 나타내고, **는 P<0.01을 나타냄). 이는 파킨슨 모델 마우스 및 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐이 재조합 인간 α-시누클레인 및 이의 중합체 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 2의 A ~ C는 마우스의 뇌 균질물에서 재조합 인간 α-시누클레인에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Western-blotting 사진이고, B, C는 각각 α-시누클레인, 중합체 밴드 스캐닝 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 α-시누클레인의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고(**는 P<0.01을 나타냄), 이의 중합체의 양은 모두 비히클 대조군보다 유의하게 낮으며(***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 α-시누클레인의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고(**는 P<0.01을 나타냄), 이의 중합체의 양은 모두 비히클 대조군보다 유의하게 낮다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 파킨슨 모델 마우스 및 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐이 재조합 인간 α-시누클레인 및 이의 중합체 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 3의 A ~ D는 플라스미노겐을 14일 동안 투여한 후 파킨슨 모델 마우스의 흑질 α-시누클레인의 면역조직화학적 결과를 도시한다. A는 블랭크 대조군이고, B는 비히클군이며, C는 플라스미노겐 투여군이고, D는 평균 광학 밀도 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 흑질에는 소량의 α-시누클레인만 있고; 비히클군 마우스의 흑질 α-시누클레인의 양은 블랭크 대조군보다 유의하게 높으며(*는 P<0.05를 나타냄); 플라스미노겐 투여군 마우스의 흑질 α-시누클레인의 양은 비히클군보다 유의하게 낮고, 통계학적 차이가 현저하며(*는 P<0.05를 나타냄); 플라스미노겐 투여군 마우스의 흑질 α-시누클레인의 양은 블랭크 대조군에 근접한다. 이는 플라스미노겐이 파킨슨 모델 마우스의 흑질 α-시누클레인의 발현을 감소시키고 신경 손상 변성을 개선할 수 있음을 나타낸다.
도 4의 A ~ B는 PBS 완충액 시스템에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Tricine-SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B는 시험관내 Aβ40 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 비히클 대조군의 Aβ40의 양을 100%로 정의하였고, 아무런 변화가 없었으며; 플라스미노겐군에서는 플라스미노겐 단독 첨가 시 Aβ40이 부분적으로 분해되었고; 플라스미노겐+tPA군, 즉 플라스미노겐과 tPA를 동시에 첨가한 경우 시험관내 Aβ40 분해 상황은 현저하며, 비히클 대조군과 비교하여 현저한 차이를 갖는다(**는 P<0.01을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 PBS 완충액 시스템에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 5의 A ~ B는 토끼 뇌 척수액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Tricine-SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B는 Aβ40 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 비히클 대조군의 Aβ40의 양을 100%로 정의하였고, 아무런 변화가 없었으며; 플라스미노겐군에서는 플라스미노겐 단독 첨가 시 Aβ40이 74.81%로 부분적으로 분해되었다. 이는 플라스미노겐이 토끼 뇌 척수액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 6의 A ~ B는 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Tricine-SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B는 시험관내 Aβ40 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 아밀로이드 단백질 Aβ40의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(P=0.001). 이는 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐이 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 7의 A ~ B는 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Tricine-SDS-PAGE이고, B는 시험관내 Aβ42 및 이의 중합체 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 낮고, 이의 중합체 a, b, c의 양은 모두 비히클군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(*는 P<0.05를 나타내고; ***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(***는 P<0.001을 나타냄), 이의 중합체 a, b, c의 양은 모두 비히클군보다 낮으며, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐이 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42 및 이의 중합체 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 8의 A ~ B는 알츠하이머병 모델 및 정상 마우스의 뇌 균질액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Western-blotting 사진이고, B는 시험관내 Aβ42 및 이의 중합체 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐 투여군의 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 낮고, 이의 중합체의 양은 모두 비히클군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(*는 P<0.05를 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(**는 P<0.01을 나타냄), 이의 중합체의 양은 모두 비히클군보다 낮으며, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 알츠하이머병 모델 및 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐이 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42 및 이의 중합체 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 9의 A ~ B는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 Tau 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 사진이고, B는 Tau 단백질 밴드 광학 밀도 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Tau 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 현저하며(*는 P<0.05를 나타내고, **는 P<0.01을 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질물 내 Tau 단백질 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 10의 A ~ B는 알츠하이머 마우스의 뇌 균질액에서 Tau 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 사진이고, B는 Tau 단백질 밴드 광학 밀도 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Tau 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 통계학적 차이가 현저하다(*는 P<0.05를 나타내고, **는 P<0.01을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머 마우스의 뇌 균질물 내 Tau 단백질 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 11은 플라스미노겐을 28일 동안 투여한 후 알츠하이머 마우스의 뇌 조직에서 상이한 분자량의 Tau 단백질의 Western blot 검출 결과를 도시한다. 결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 뇌 균질물에는 일정한 수준의 상이한 분자량의 Tau 단백질이 있고; 투여군 마우스의 뇌 조직 내 각 분자량의 Tau 단백질 및 총 Tau 단백질 수준은 비히클군 마우스보다 유의하게 낮고, 두 그룹에서 분자량이 35 kd, 35 ~ 40 kd, 40 kd, 54 kd인 Tau 단백질 수준 및 총 Tau 단백질 수준의 통계적 분석 P 값은 각각 0.174, 0.0406, 0.052, 0.067 및 0.055이다. 이는 플라스미노겐이 알츠하이머 모델 마우스의 뇌 조직 내 Tau 단백질 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 12의 A ~ B는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 자?을 도시한다. A는 SDS-PAGE 이미징 사진이고, B는 SDS-PAGE 밴드 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질물 내 재조합 인간 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 13의 A ~ B는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 이미징 사진이고, B는 Western blot의 Pro-BDNF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(**는 P<0.01을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질물 내 재조합 인간 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 14의 A ~ B는 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시하고, A는 SDS-PAGE 이미징 사진이며, B는 SDS-PAGE 밴드 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro- BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질물 내 재조합 인간 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 15의 A ~ C는 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 이미징 사진이고, B는 Western blot의 Pro-BDNF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이며, C는 Western blot의 BDNF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 현저하며(*는 P<0.05를 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐 투여군의 BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 매우 현저하다. 이는 플라스미노겐이 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF 절단 및 성숙한 BDNF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 16의 A ~ B는 알츠하이머 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 SDS-PAGE 이미징 사진이고, B는 SDS-PAGE中Pro-BDNF 밴드 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질물 내 재조합 인간 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 17의 A ~ C는 알츠하이머 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시하고, A는 Western blot 이미징 사진이며, B는 Western blot의 Pro-BDNF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이고, C는 Western blot의 BDNF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(**는 P<0.01을 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐 투여군의 BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 매우 현저하다. 이는 플라스미노겐이 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF 절단 및 성숙한 BDNF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 18의 A-D는 플라스미노겐을 35일 동안 투여한 후 정신분열증 모델 마우스의 해마 BDNF 면역조직화학적 염색 결과를 도시한다. A는 블랭크 대조군이고, B는 비히클 PBS 투여 대조군이며, C는 플라스미노겐 투여군이고, D는 평균 광학 밀도 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 해마는 일정한 수준의 BDNF(화살표로 표시)를 갖고, 비히클군 마우스의 해마 BDNF 수준은 증가되며, 투여군 마우스의 해마 BDNF 수준은 비히클군보다 유의하게 높고, 통계학적 차이가 유의에 근접한다(P=0.095). 이는 플라스미노겐이 정신분열증 모델 마우스의 해마 BDNF 수준의 증가를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 19의 A ~ D는 플라스미노겐을 28일 동안 투여한 후 알츠하이머 모델 마우스의 해마 BDNF 면역조직화학적 염색 결과를 도시한다. A는 블랭크 대조군이고, B는 비히클군이며, C는 투여군이고, D는 평균 광학 밀도 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 해마는 일정한 수준의 BDNF(화살표로 표시)를 발현하고, 비히클군 마우스의 해마 BDNF의 발현은 블랭크 대조군보다 유의하게 적으며, 투여군 마우스의 해마 BDNF의 발현은 비히클군보다 유의하게 높고, 통계학적 차이가 현저하다(*는 P<0.05를 나타냄). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머 모델 마우스의 해마 BDNF의 발현을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 20의 A ~ B는 플라스미노겐을 투여한 후 SMA 마우스의 대표적인 뇌 조직 Western blot 검출 결과 및 NGF/Pro-NGF 광학 밀도(OD) 비율의 정량적 분석 결과를 도시한다. 결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 뇌 조직은 일정한 NGF/ProNGF 비율을 갖고, 투여군 마우스의 뇌 조직 NGF/ProNGF 비율은 비히클군 마우스보다 유의하게 높으며, 통계학적 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 SMA 모델 마우스의 뇌 조직에서 ProNGF의 NGF로의 형질전환을 촉진하고 성숙한 NGF의 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 21의 A ~ C는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-NGF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시하고, A는 Western blot 이미징 사진이며, B는 Western blot의 Pro-NGF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이고, C는 Western blot의 NGF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(*는 P<0.05를 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐 투여군NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 현저하다. 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질액 내 재조합 인간 Pro-NGF 절단 및 성숙한 NGF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 22의 A ~ C는 알츠하이머 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-NGF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 이미징 사진이고, B는 Western blot의 Pro-NGF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이며, C는 Western blot의 NGF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐 투여군의 NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 현저하다. 이는 플라스미노겐이 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액 내 재조합 인간 Pro-NGF 절단 및 성숙한 NGF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 23의 A ~ B는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 SOD-1 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B는 시험관내 SOD-1 단백질 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1의 양은 비히클 대조군보다 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 SOD-1 단백질 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 24의 A ~ B는 SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 SOD-1 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B는 시험관내 SOD-1 단백질 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 ALS 모델 마우스의 마우스 뇌 균질액에서, 플라스미노겐이 SOD-1 단백질의 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 25의 A ~ B는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 SOD-1 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 이미징 사진이고, B는 Western blot의 SOD-1 단백질 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 SOD-1 단백질 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 26의 A ~ B는 SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 SOD-1 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 이미징 사진이고, B는 Western blot의 SOD-1 단백질 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 SOD-1 단백질 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 2의 A ~ C는 마우스의 뇌 균질물에서 재조합 인간 α-시누클레인에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Western-blotting 사진이고, B, C는 각각 α-시누클레인, 중합체 밴드 스캐닝 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 α-시누클레인의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고(**는 P<0.01을 나타냄), 이의 중합체의 양은 모두 비히클 대조군보다 유의하게 낮으며(***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 α-시누클레인의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고(**는 P<0.01을 나타냄), 이의 중합체의 양은 모두 비히클 대조군보다 유의하게 낮다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 파킨슨 모델 마우스 및 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐이 재조합 인간 α-시누클레인 및 이의 중합체 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 3의 A ~ D는 플라스미노겐을 14일 동안 투여한 후 파킨슨 모델 마우스의 흑질 α-시누클레인의 면역조직화학적 결과를 도시한다. A는 블랭크 대조군이고, B는 비히클군이며, C는 플라스미노겐 투여군이고, D는 평균 광학 밀도 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 흑질에는 소량의 α-시누클레인만 있고; 비히클군 마우스의 흑질 α-시누클레인의 양은 블랭크 대조군보다 유의하게 높으며(*는 P<0.05를 나타냄); 플라스미노겐 투여군 마우스의 흑질 α-시누클레인의 양은 비히클군보다 유의하게 낮고, 통계학적 차이가 현저하며(*는 P<0.05를 나타냄); 플라스미노겐 투여군 마우스의 흑질 α-시누클레인의 양은 블랭크 대조군에 근접한다. 이는 플라스미노겐이 파킨슨 모델 마우스의 흑질 α-시누클레인의 발현을 감소시키고 신경 손상 변성을 개선할 수 있음을 나타낸다.
도 4의 A ~ B는 PBS 완충액 시스템에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Tricine-SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B는 시험관내 Aβ40 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 비히클 대조군의 Aβ40의 양을 100%로 정의하였고, 아무런 변화가 없었으며; 플라스미노겐군에서는 플라스미노겐 단독 첨가 시 Aβ40이 부분적으로 분해되었고; 플라스미노겐+tPA군, 즉 플라스미노겐과 tPA를 동시에 첨가한 경우 시험관내 Aβ40 분해 상황은 현저하며, 비히클 대조군과 비교하여 현저한 차이를 갖는다(**는 P<0.01을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 PBS 완충액 시스템에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 5의 A ~ B는 토끼 뇌 척수액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Tricine-SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B는 Aβ40 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 비히클 대조군의 Aβ40의 양을 100%로 정의하였고, 아무런 변화가 없었으며; 플라스미노겐군에서는 플라스미노겐 단독 첨가 시 Aβ40이 74.81%로 부분적으로 분해되었다. 이는 플라스미노겐이 토끼 뇌 척수액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 6의 A ~ B는 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Tricine-SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B는 시험관내 Aβ40 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 아밀로이드 단백질 Aβ40의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(P=0.001). 이는 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐이 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 7의 A ~ B는 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Tricine-SDS-PAGE이고, B는 시험관내 Aβ42 및 이의 중합체 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 낮고, 이의 중합체 a, b, c의 양은 모두 비히클군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(*는 P<0.05를 나타내고; ***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(***는 P<0.001을 나타냄), 이의 중합체 a, b, c의 양은 모두 비히클군보다 낮으며, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐이 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42 및 이의 중합체 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 8의 A ~ B는 알츠하이머병 모델 및 정상 마우스의 뇌 균질액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42에 대한 플라스미노겐의 작용 결과를 도시한다. A는 Western-blotting 사진이고, B는 시험관내 Aβ42 및 이의 중합체 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐 투여군의 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 낮고, 이의 중합체의 양은 모두 비히클군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(*는 P<0.05를 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(**는 P<0.01을 나타냄), 이의 중합체의 양은 모두 비히클군보다 낮으며, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 알츠하이머병 모델 및 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐이 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42 및 이의 중합체 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 9의 A ~ B는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 Tau 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 사진이고, B는 Tau 단백질 밴드 광학 밀도 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Tau 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 현저하며(*는 P<0.05를 나타내고, **는 P<0.01을 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질물 내 Tau 단백질 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 10의 A ~ B는 알츠하이머 마우스의 뇌 균질액에서 Tau 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 사진이고, B는 Tau 단백질 밴드 광학 밀도 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Tau 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 통계학적 차이가 현저하다(*는 P<0.05를 나타내고, **는 P<0.01을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머 마우스의 뇌 균질물 내 Tau 단백질 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 11은 플라스미노겐을 28일 동안 투여한 후 알츠하이머 마우스의 뇌 조직에서 상이한 분자량의 Tau 단백질의 Western blot 검출 결과를 도시한다. 결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 뇌 균질물에는 일정한 수준의 상이한 분자량의 Tau 단백질이 있고; 투여군 마우스의 뇌 조직 내 각 분자량의 Tau 단백질 및 총 Tau 단백질 수준은 비히클군 마우스보다 유의하게 낮고, 두 그룹에서 분자량이 35 kd, 35 ~ 40 kd, 40 kd, 54 kd인 Tau 단백질 수준 및 총 Tau 단백질 수준의 통계적 분석 P 값은 각각 0.174, 0.0406, 0.052, 0.067 및 0.055이다. 이는 플라스미노겐이 알츠하이머 모델 마우스의 뇌 조직 내 Tau 단백질 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 12의 A ~ B는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 자?을 도시한다. A는 SDS-PAGE 이미징 사진이고, B는 SDS-PAGE 밴드 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질물 내 재조합 인간 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 13의 A ~ B는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 이미징 사진이고, B는 Western blot의 Pro-BDNF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(**는 P<0.01을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질물 내 재조합 인간 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 14의 A ~ B는 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시하고, A는 SDS-PAGE 이미징 사진이며, B는 SDS-PAGE 밴드 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro- BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질물 내 재조합 인간 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 15의 A ~ C는 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 이미징 사진이고, B는 Western blot의 Pro-BDNF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이며, C는 Western blot의 BDNF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 현저하며(*는 P<0.05를 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐 투여군의 BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 매우 현저하다. 이는 플라스미노겐이 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF 절단 및 성숙한 BDNF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 16의 A ~ B는 알츠하이머 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 SDS-PAGE 이미징 사진이고, B는 SDS-PAGE中Pro-BDNF 밴드 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질물 내 재조합 인간 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 17의 A ~ C는 알츠하이머 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시하고, A는 Western blot 이미징 사진이며, B는 Western blot의 Pro-BDNF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이고, C는 Western blot의 BDNF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(**는 P<0.01을 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐 투여군의 BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 매우 현저하다. 이는 플라스미노겐이 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-BDNF 절단 및 성숙한 BDNF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 18의 A-D는 플라스미노겐을 35일 동안 투여한 후 정신분열증 모델 마우스의 해마 BDNF 면역조직화학적 염색 결과를 도시한다. A는 블랭크 대조군이고, B는 비히클 PBS 투여 대조군이며, C는 플라스미노겐 투여군이고, D는 평균 광학 밀도 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 해마는 일정한 수준의 BDNF(화살표로 표시)를 갖고, 비히클군 마우스의 해마 BDNF 수준은 증가되며, 투여군 마우스의 해마 BDNF 수준은 비히클군보다 유의하게 높고, 통계학적 차이가 유의에 근접한다(P=0.095). 이는 플라스미노겐이 정신분열증 모델 마우스의 해마 BDNF 수준의 증가를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 19의 A ~ D는 플라스미노겐을 28일 동안 투여한 후 알츠하이머 모델 마우스의 해마 BDNF 면역조직화학적 염색 결과를 도시한다. A는 블랭크 대조군이고, B는 비히클군이며, C는 투여군이고, D는 평균 광학 밀도 정량적 분석 결과이다. 결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 해마는 일정한 수준의 BDNF(화살표로 표시)를 발현하고, 비히클군 마우스의 해마 BDNF의 발현은 블랭크 대조군보다 유의하게 적으며, 투여군 마우스의 해마 BDNF의 발현은 비히클군보다 유의하게 높고, 통계학적 차이가 현저하다(*는 P<0.05를 나타냄). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머 모델 마우스의 해마 BDNF의 발현을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 20의 A ~ B는 플라스미노겐을 투여한 후 SMA 마우스의 대표적인 뇌 조직 Western blot 검출 결과 및 NGF/Pro-NGF 광학 밀도(OD) 비율의 정량적 분석 결과를 도시한다. 결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 뇌 조직은 일정한 NGF/ProNGF 비율을 갖고, 투여군 마우스의 뇌 조직 NGF/ProNGF 비율은 비히클군 마우스보다 유의하게 높으며, 통계학적 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 플라스미노겐이 SMA 모델 마우스의 뇌 조직에서 ProNGF의 NGF로의 형질전환을 촉진하고 성숙한 NGF의 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 21의 A ~ C는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-NGF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시하고, A는 Western blot 이미징 사진이며, B는 Western blot의 Pro-NGF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이고, C는 Western blot의 NGF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(*는 P<0.05를 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐 투여군NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 현저하다. 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질액 내 재조합 인간 Pro-NGF 절단 및 성숙한 NGF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 22의 A ~ C는 알츠하이머 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 Pro-NGF에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 이미징 사진이고, B는 Western blot의 Pro-NGF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이며, C는 Western blot의 NGF 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐 투여군의 NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 현저하다. 이는 플라스미노겐이 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액 내 재조합 인간 Pro-NGF 절단 및 성숙한 NGF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 23의 A ~ B는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 SOD-1 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B는 시험관내 SOD-1 단백질 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1의 양은 비히클 대조군보다 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 SOD-1 단백질 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 24의 A ~ B는 SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 SOD-1 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 SDS-PAGE 전기영동 이미지이고, B는 시험관내 SOD-1 단백질 용해의 정량적 스캐닝 분석 결과이다. 결과에 따르면, SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 ALS 모델 마우스의 마우스 뇌 균질액에서, 플라스미노겐이 SOD-1 단백질의 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 25의 A ~ B는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 SOD-1 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 이미징 사진이고, B는 Western blot의 SOD-1 단백질 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 SOD-1 단백질 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
도 26의 A ~ B는 SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 SOD-1 단백질에 대한 플라스미노겐의 작용을 도시한다. A는 Western blot 이미징 사진이고, B는 Western blot의 SOD-1 단백질 밴드 광학 밀도(OD) 값의 분석 결과이다. 결과에 따르면, SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄). 이는 SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 SOD-1 단백질 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
“단백질 접힘”은 리보솜에서 폴리펩티드 사슬이 합성되는 동시에 또는 후에 열역학 및 동역학 원리에 따라 분자 샤페론의 도움으로 감겨 특정된 기능적 3차원 구조 또는 형태를 형성하는 과정이다. 올바르게 접힌 단백질은 기능이 정상적이고, 잘못 접힌 단백질은 질병을 유발할 수 있다.
피브린 용해 시스템(Fibrinolytic system)은 섬유소 용해 시스템이라고도 하며, 피브린 용해(섬유소 용해) 과정에 관여하는 일련의 화학 물질로 구성된 시스템으로, 주로 플라스미노겐, 플라스민, 플라스미노겐 활성제, 피브린 용해 억제제를 포함한다. 플라스미노겐 활성제는 조직형 플라스미노겐 활성제(t-PA) 및 유로키나아제형 플라스미노겐 활성제(u-PA)를 포함한다. t-PA는 혈관 내피 세포로 합성된 세린 프로테아제이다. t-PA는 플라스미노겐을 활성화하고, 이 과정은 주로 피브린에서 수행되며; 유로키나아제형 플라스미노겐 활성제(u-PA)는 신세뇨관 상피 세포 및 혈관 내피 세포에서 생성되고, 보조 인자로 피브린을 사용하지 않고도 플라스미노겐을 직접적으로 활성화할 수 있다. 플라스미노겐(PLG)은 간에서 합성되고, 혈액이 응고되는 경우 PLG는 피브린 네트워크에 대량으로 흡착되며, t-PA 또는 u-PA의 작용하에 플라스민으로 활성화되어 피브린 용해를 촉진한다. 플라스민(PL)은 세린 프로테아제로, 이의 작용은 피브린 및 피브리노겐을 분해하고; 다양한 혈액 응고 인자 Ⅴ, Ⅷ, Ⅹ, Ⅶ, , Ⅱ 등을 가수분해하며; 플라스미노겐을 플라스민으로 전환시키고; 보체를 가수분해하는 등이다. 피브린 용해 억제제는 플라스미노겐 활성제 억제제(PAI) 및 α2 항플라스민(α2-AP)을 포함한다. PAI는 주로 PAI-1 및 PAI-2의 두 가지 형태가 있는데, 이는 t-PA에 1:1의 비율로 특이적으로 결합되어 이를 불활성화시키는 동시에 PLG를 활성화시킬 수 있다. α2-AP는 간에서 합성되고, PL과 1:1의 비율로 결합하여 착물을 형성하여 PL 활성을 억제하며; FⅩⅢ는 α2-AP를 피브린과 공유 결합시켜 PL 작용에 대한 피브린의 민감도를 감소시킨다. 체내에서 피브린 용해 시스템 활성을 억제하는 물질은 PAI-1, 보체 C1 억제제; α2 항플라스민; α2 마크로글로불린이다.
본 발명의 용어 “플라스미노겐 활성화 경로의 성분”은,
1. 플라스미노겐, Lys-플라스미노겐, Glu-플라스미노겐, 마이크로플라스미노겐(micro-plasminogen), 델타-플라스미노겐; 이들의 변이체 또는 유사체;
2. 플라스민 및 이들의 변이체 또는 유사체; 및
3. 플라스미노겐 활성제, 예를 들어 tPA, uPA 및 하나 이상의 tPA 또는 uPA의 도메인(예를 들어, 하나 이상의 kringle 도메인 및 단백질 분해 도메인)을 포함하는 tPA 또는 uPA의 변이체 및 유사체를 포함한다.
상기 플라스미노겐, 플라스민, tPA 및 uPA의 “변이체”는 천연적으로 존재하는 모든 인간 유전 변이체 및 이러한 단백질의 다른 포유동물 형태, 및 예를 들어 1 ~ 100, 1 ~ 90, 1 ~ 80, 1 ~ 70, 1 ~ 60, 1 ~ 50, 1 ~ 45, 1 ~ 40, 1 ~ 35, 1 ~ 30, 1 ~ 25, 1 ~ 20, 1 ~ 15, 1 ~ 10, 1 ~ 5, 1 ~ 4, 1 ~ 3, 1 ~ 2, 1개의 아미노산의 첨가, 삭제 및/또는 치환을 통해 플라스미노겐, 플라스민, tPA 또는 uPA 활성을 여전히 갖는 단백질을 포함한다. 예를 들어, 플라스미노겐, 플라스민, tPA 및 uPA의 “변이체”는 예를 들어 1 ~ 100, 1 ~ 90, 1 ~ 80, 1 ~ 70, 1 ~ 60, 1 ~ 50, 1 ~ 45, 1 ~ 40, 1 ~ 35, 1 ~ 30, 1 ~ 25, 1 ~ 20, 1 ~ 15, 1 ~ 10, 1 ~ 5, 1 ~ 4, 1 ~ 3, 1 ~ 2, 1개의 보존적 아미노산 치환을 통해 획득된 이러한 단백질의 돌연변이체를 포함한다.
본 발명의 “플라스미노겐 변이체”는 서열번호 2, 6, 8, 10 또는 12와 적어도 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99%의 서열 상동성을 갖고, 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성과 같은 플라스미노겐 활성을 여전히 갖는 단백질을 포함한다. 예를 들어, 본 발명의 “플라스미노겐 변이체”는 서열번호 2, 6, 8, 10 또는 12의 기초상에서 1 ~ 100, 1 ~ 90, 1 ~ 80, 1 ~ 70, 1 ~ 60, 1 ~ 50, 1 ~ 45, 1 ~ 40, 1 ~ 35, 1 ~ 30, 1 ~ 25, 1 ~ 20, 1 ~ 15, 1 ~ 10, 1 ~ 5, 1 ~ 4, 1 ~ 3, 1 ~ 2, 1개의 아미노산을 첨가, 삭제 및/또는 치환하고, 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성과 같은 플라스미노겐 활성을 여전히 갖는 단백질일 수 있다. 구체적으로, 본 발명의 플라스미노겐 변이체는 천연적으로 존재하는 모든 인간 유전 변이체 및 이러한 단백질의 다른 포유동물 형태, 및 1 ~ 100, 1 ~ 90, 1 ~ 80, 1 ~ 70, 1 ~ 60, 1 ~ 50, 1 ~ 45, 1 ~ 40, 1 ~ 35, 1 ~ 30, 1 ~ 25, 1 ~ 20, 1 ~ 15, 1 ~ 10, 1 ~ 5, 1 ~ 4, 1 ~ 3, 1 ~ 2, 1개의 보존적 아미노산 치환을 통해 획득된 이러한 단백질의 돌연변이체를 포함한다.
본 발명의 플라스미노겐은 영장류 동물 또는 설치류 동물로부터 유래되는 인간 플라스미노겐 동원체 또는 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성과 같은 플라스미노겐 활성을 유지하는 이들의 변이체, 예를 들어 서열번호 2, 6, 8, 10 또는 12로 표시되는 플라스미노겐, 예를 들어 서열번호 2로 표시되는 인간 천연 플라스미노겐일 수 있다.
상기 플라스미노겐, 플라스민, tPA 및 uPA의 “유사체”는 각각 플라스미노겐, 플라스민, tPA 또는 uPA와 기본적으로 유사한 작용을 제공하는 화합물을 포함한다.
상기 플라스미노겐, 플라스민, tPA 및 uPA의 “변이체” 및 “유사체”는 하나 이상의 도메인(예를 들어, 하나 이상의 kringle 도메인 및 단백질 분해 도메인)을 포함하는 플라스미노겐, 플라스민, tPA 및 uPA의 “변이체” 및 “유사체”를 포함한다. 예를 들어, 플라스미노겐의 “변이체” 및 “유사체”는 하나 이상의 플라스미노겐 도메인(예를 들어, 하나 이상의 kringle 도메인 및 단백질 분해 도메인)을 포함하는 플라스미노겐 변이체 및 유사체, 예를 들어 미니플라스미노겐(mini-plasminogen)을 포함한다. 플라스민의 “변이체” 및 “유사체”는 하나 이상의 플라스민 도메인(예를 들어, 하나 이상의 kringle 도메인 및 단백질 분해 도메인)을 포함하는 플라스민 “변이체” 및 “유사체”, 예를 들어 미니플라스민(mini-plasmin) 및 δ-플라스민(delta-plasmin)을 포함한다.
상기 플라스미노겐, 플라스민, tPA 또는 uPA의 “변이체” 또는 “유사체”가 각각 플라스미노겐, 플라스민, tPA 또는 uPA의 활성을 갖는지 여부, 또는 각각 플라스미노겐, 플라스민, tPA 또는 uPA와 기본적으로 유사한 작용을 제공하는지 여부는 본 기술분야에 공지된 방법에 의해 검출될 수 있고, 예를 들어 효소측정법(enzymography), ELISA(효소 결합 면역 흡착 측정) 및 FACS(형광 활성 세포 분류 방법)에 기반하여 활성화된 플라스민 활성 수준을 통해 측정되며, 예를 들어 하기 문헌에 기재된 방법을 참조하여 측정할 수 있다. Ny, A., Leonardsson, G., Hagglund, A.C, Hagglof, P., Ploplis, V.A., Carmeliet, P. and Ny, T.(1999). Ovulation inplasminogen-deficient mice. Endocrinology 140, 5030-5035; Silverstein RL, Leung LL, Harpel PC, Nachman RL(November 1984). "Complex formation of platelet thrombospondin with plasminogen. Modulation of activation by tissue activator". J.Clin.Invest.74(5):1625-33; Gravanis I, Tsirka SE(February 2008). "Tissue-type plasminogen activator as a therapeutic target in stroke". Expert Opinion on Therapeutic Targets.12(2):159-70; Geiger M, Huber K, Wojta J, Stingl L, Espana F, Griffin JH, Binder BR(Aug 1989). "Complex formation between urokinase and plasma protein C inhibitor in vitro and in vivo". Blood.74(2):722-8.
본 발명의 일부 실시형태에서, 본 발명의 “플라스미노겐 활성화 경로의 성분”은 플라스미노겐이다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 인간 전장 플라스미노겐 또는 플라스미노겐 활성(예를 들어, 이들의 라이신 결합 활성 및 단백질 분해 활성)을 유지하는 이들의 보존적 치환 변이체이다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 Glu-플라스미노겐, Lys-플라스미노겐, 미니플라스미노겐, 마이크로플라스미노겐, 델타-플라스미노겐 또는 플라스미노겐 활성(예를 들어, 이들의 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성)을 유지하는 이들의 변이체로부터 선택된다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 천연 또는 합성 인간 플라스미노겐, 또는 플라스미노겐 활성(예를 들어, 이들의 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성)을 여전히 유지하는 이들의 보존적 치환 변이체 또는 이들의 단편이다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 영장류 동물 또는 설치류 동물로부터 유래되는 인간 플라스미노겐 동원체 또는 플라스미노겐 활성을 여전히 유지하는 이들의 보존적 돌연변이체 또는 이들의 단편이다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 2, 6, 8, 10 또는 12로 표시되는 아미노산 서열을 포함한다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 2, 6, 8, 10 또는 12로 표시되는 아미노산 서열의 보존적 치환 서열은 포함한다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐의 아미노산은 서열번호 2, 6, 8, 10 또는 12로 표시된 바와 같다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 2, 6, 8, 10 또는 12로 표시되는 플라스미노겐의 보존적 치환 변이체이다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 인간 천연 플라스미노겐 또는 이의 보존적 돌연변이체이다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 서열번호 2로 표시되는 인간 천연 플라스미노겐 또는 이의 보존적 치환 변이체이다.
“플라스미노겐을 직접적으로 활성화하거나 또는 플라스미노겐 활성화 경로의 업스트림 성분을 활성화하여 플라스미노겐을 간접적으로 활성화할 수 있는 화합물”은 플라스미노겐을 직접적으로 활성화하거나 또는 플라스미노겐 활성화 경로의 업스트림 성분을 활성화하여 플라스미노겐을 간접적으로 활성화할 수 있는 임의의 화합물을 의미하며, 예를 들어, tPA, uPA, 스트렙토키나아제(streptokinase), 사루플라제(saruplase), 알테플라제(alteplase), 레테플라제(reteplase), 테넥테플라제(tenecteplase), 아니스트레플라제(anistreplase), 몬테플라제(monteplase), 라노테플라제(lanoteplase), 파미테플라제(pamiteplase), 스타필로키나아제(staphylokinase)이다.
본 발명의 “피브린 용해 억제제의 길항제”는 피브린 용해 억제제의 작용을 길항, 약화, 차단 및 방지하는 화합물이다. 상기 피브린 용해 억제제는 예를 들어 PAI-1, 보체 C1 억제제, α2 항플라스민 및 α2 마크로글로불린이다. 상기 길항제는 예를 들어 PAI-1, 보체 C1 억제제, α2 항플라스민 또는 α2 마크로글로불린의 항체, 또는 예를 들어 PAI-1, 보체 C1 억제제, α2 항플라스민 또는 α2 마크로글로불린 발현을 차단 또는 하향 조절하는 안티센스 RNA 또는 작은 RNA, 또는 PAI-1, 보체 C1 억제제, α2 항플라스민 또는 α2 마크로글로불린의 결합 부위를 점유하지만 PAI-1, 보체 C1 억제제, α2 항플라스민 또는 α2 마크로글로불린의 기능이 없는 화합물, 또는 PAI-1, 보체 C1 억제제, α2 항플라스민 또는 α2 마크로글로불린의 결합 도메인 및/또는 활성 도메인을 차단하는 화합물이다.
플라스민은 플라스미노겐 활성화 시스템(PA 시스템)의 핵심 성분이다. 이는 피브린, 젤라틴(gelatin), 피브로넥틴(fibronectin), 라미닌(laminin) 및 프로테오글리칸(proteoglycan)을 포함하여 세포외 매트릭스(ECM)의 여러 성분을 가수분해할 수 있는 광범위 스펙트럼의 프로테아제이다. 또한, 플라스민은 일부 메탈프로테이나제 전구체(pro-MMPs)를 활성화하여 활성을 갖는 메탈로프로테이나제(MMPs)를 형성할 수 있다. 따라서 플라스민은 세포외 단백질 분해 작용의 하나의 중요한 업스트림 조절자로 간주된다. 플라스민은 플라스미노겐이 조직형 플라스미노겐 활성제(tPA) 또는 유로키나아제형 플라스미노겐 활성제(uPA)의 두 가지 생리학적 PAs를 통해 단백질 분해되어 형성된 것이다. 혈장 및 다른 체액에서 플라스미노겐의 상대적 수준이 비교적 높기 때문에 전통적으로 PA 시스템의 조절은 주로 PAs의 합성 및 활성 수준을 통해 구현되는 것으로 간주된다. PA 시스템 성분의 합성은 호르몬, 성장 인자 및 사이토카인과 같은 상이한 요인에 의해 엄격하게 조절된다. 또한, 플라스민과 PAs의 특정 생리학적 억제제도 있다. 플라스민의 주요 억제제는 α2-항플라스민(α2-antiplasmin)이다. PAs의 활성은 동시에 uPA 및 tPA의 플라스미노겐 활성제 억제제-1(PAI-1)에 의해 억제되고, 주로 uPA를 억제하는 플라스미노겐 활성제 억제제-2(PAI-2)에 의해 조절된다. 일부 세포 표면에는 직접적인 가수분해 활성을 갖는 uPA 특이적 세포 표면 수용체(uPAR)가 있다.
플라스미노겐은 하나의 단일 사슬 당단백질로 791개의 아미노산으로 구성되고 분자량은 약 92 kDa이다. 플라스미노겐은 주로 간에서 합성되고 세포외액에 대량으로 존재한다. 혈장 내 플라스미노겐 함량은 약 2 μM이다. 따라서 플라스미노겐은 조직 및 체액에서 단백질 분해 활성의 큰 잠재적 유래이다. 플라스미노겐은 글루타메이트-플라스미노겐(Glu-plasminogen) 및 라이신-플라스미노겐(Lys-plasminogen)의 두 가지 분자 형태로 존재한다. 자연적으로 분비되고 절단되지 않은 형태의 플라스미노겐은 하나의 아미노 말단(N-말단) 글루타메이트를 갖기 때문에 글루타메이트-플라스미노겐이라고 한다. 그러나, 플라스민의 존재하에 글루타메이트-플라스미노겐은 Lys76-Lys77에서 라이신-플라스미노겐으로 가수분해된다. 글루타메이트-플라스미노겐에 비해 라이신-플라스미노겐은 피브린과 더 높은 친화력을 갖고 더 높은 속도로 PAs에 의해 활성화될 수 있다. 이 두 가지 형태의 플라스미노겐의 Arg560-Val561 펩티드 결합은 uPA 또는 tPA에 의해 절단되어 이황화 결합으로 연결된 이중 사슬 프로테아제 플라스민이 형성될 수 있다. 플라스미노겐의 아미노 말단 부분은 5개의 상동 삼중 고리, 즉 소위 kringles를 포함하고, 카르복시 말단 부분은 프로테아제 도메인을 포함한다. 일부 kringles은 플라스미노겐과 피브린 및 이의 억제제 α2-AP의 특이적 상호작용을 매개하는 라이신 결합 부위를 포함한다. 최근에 발견된 하나의 플라스미노겐은 kringles1-4를 포함하는 38 kDa의 단편으로, 강력한 혈관신생 억제제이다. 이 단편은 앤지오스타틴(angiostatin)으로 명명되며, 여러 프로테아제에 의한 플라스미노겐의 가수분해에 의해 생성될 수 있다.
플라스민의 주요 기질은 피브린이고, 피브린의 용해는 병리학적 혈전증을 예방하는 관건이다. 플라스민은 또한 라미닌, 피브로넥틴, 프로테오글리칸 및 젤라틴을 비롯한 ECM의 여러 성분에 대한 기질 특이성을 갖고, 이는 플라스민이 ECM 리모델링에서도 중요한 작용을 일으킨다는 것을 나타낸다. 간접적으로, 플라스민은 또한 일부 프로테아제 전구체를 활성 프로테아제로 전환함으로써 MMP-1, MMP-2, MMP-3 및 MMP-9를 비롯한 ECM의 다른 성분을 분해할 수 있다. 따라서, 플라스민이 세포외 단백질 분해의 하나의 중요한 업스트림 조절자일 수 있다고 제시하였다. 또한, 플라스민은 일부 잠재적 형태의 성장 인자를 활성화하는 능력을 갖는다. 시험관 내에서 플라스민은 또한 보체 시스템의 성분을 가수분해하고 주화성 보체 단편을 방출할 수 있다.
“플라스민”은 피브린 응괴를 피브린 분해 산물 및 D-이량체로 가수분해할 수 있는 혈액에 존재하는 매우 중요한 효소이다.
“플라스미노겐”은 플라스민의 자이모겐(zymogen) 형태로, swiss prot 중의 서열에 따르면 신호 펩티드를 포함하는 천연 인간 플라스미노겐 아미노산 서열(서열번호 4)에 따라 계산되는 810개의 아미노산으로 구성되고 분자량은 약 90 kD이며, 주로 간에서 합성되고 혈액에서 순환될 수 있는 당단백질이며, 상기 아미노산 서열을 코딩하는 cDNA 서열은 서열번호 3으로 표시된 바와 같다. 전장 플라스미노겐은 C 말단의 세린 프로테아제 도메인, N 말단의 Pan Apple(PAp) 도메인 및 5개의 kringle 도메인(Kringle1-5) 등 7개의 도메인을 포함한다. swiss prot 중의 서열을 참조하면, 이의 신호 펩티드는 잔기 Met1-Gly19를 포함하고, PAp는 잔기 Glu20-Val98을 포함하며, Kringle1은 잔기 Cys103-Cys181을 포함하고, Kringle2는 잔기 Glu184-Cys262를 포함하며, Kringle3은 잔기 Cys275-Cys352를 포함하고, Kringle4는 잔기 Cys377-Cys454를 포함하며, Kringle5는 잔기 Cys481-Cys560을 포함한다. NCBI 데이터에 따르면, 세린 프로테아제 도메인은 잔기 Val581-Arg804를 포함한다.
Glu-플라스미노겐은 인간 천연 전장 플라스미노겐으로, 791개의 아미노산으로 구성(19개의 아미노산의 신호 펩티드를 포함하지 않음)되고, 상기 서열을 코딩하는 cDNA 서열은 서열번호 1로 표시된 바와 같으며, 이의 아미노산 서열은 서열번호 2로 표시된 바와 같다. 체내에는 또한 Glu-플라스미노겐의 76 ~ 77번 아미노산에서 가수분해되어 형성된 Lys-플라스미노겐이 존재하고, 서열번호 6으로 표시된 바와 같으며, 상기 아미노산 서열을 코딩하는 cDNA 서열은 서열번호 5로 표시된 바와 같다. 델타-플라스미노겐(δ-plasminogen)은 Kringle2-Kringle5 구조가 결실된 전장 플라스미노겐의 단편으로, Kringle1 및 세린 프로테아제 도메인(프로테아제 도메인(protease domain, PD)이라고도 함)만 포함하고, 문헌에 델타-플라스미노겐의 아미노산 서열(서열번호 8)이 보고되어 있으며, 상기 아미노산 서열을 코딩하는 cDNA 서열은 서열번호 7로 표시된 바와 같다. 미니플라스미노겐(Mini-plasminogen)은 Kringle5 및 세린 프로테아제 도메인으로 구성되고, 문헌에 잔기 Val443-Asn791(신호 펩티드를 포함하지 않는 Glu-플라스미노겐 서열의 Glu 잔기를 시작 아미노산으로 함)을 포함하는 것으로 보고되어 있으며, 이의 아미노산 서열은 서열번호 10으로 표시된 바와 같고, 상기 아미노산 서열을 코딩하는 cDNA 서열은 서열번호 9로 표시된 바와 같다. 마이크로플라스미노겐(Micro-plasminogen)은 세린 프로테아제 도메인만 포함하고, 문헌에 이의 아미노산 서열이 잔기 Ala543-Asn791(신호 펩티드를 포함하지 않는 Glu-플라스미노겐 서열의 Glu 잔기를 시작 아미노산으로 함)을 포함하는 것으로 보고되어 있으며, 특허 문헌 CN102154253A에도 이의 서열이 잔기 Lys531-Asn791(신호 펩티드를 포함하지 않는 Glu-플라스미노겐 서열의 Glu 잔기를 시작 아미노산으로 함)을 포함하는 것으로 보고되어 있으며, 본 특허 출원에서 마이크로플라스미노겐 서열은 특허 문헌 CN102154253A를 참조하고, 이의 아미노산 서열은 서열번호 12로 표시된 바와 같으며, 상기 아미노산 서열을 코딩하는 cDNA 서열은 서열번호 11로 표시된 바와 같다.
전장 플라스미노겐의 구조도 Aisina 등(Aisina R B, Mukhametova L I. Structure and function of plasminogen/plasmin system[J]. Russian Journal of Bioorganic Chemistry, 2014, 40(6):590-605)의 문장에 기재되어 있다. 상기 문장에서 Aisina 등은 플라스미노겐이 Kringle1, 2, 3, 4, 5 도메인 및 세린 프로테아제 도메인(프로테아제 도메인(protease domain, PD)이라고도 함)을 포함하고, 여기서 Kringles이 플라스미노겐과 저분자량 및 고분자량의 리간드의 결합(즉, 라이신 결합 활성)을 담당하여 플라스미노겐이 보다 개방된 배열로 전환되도록 함으로써 더 쉽게 활성화되며; 프로테아제 도메인(PD)은 잔기 Val562- Asn791이고, tPA 및 UPA가 플라스미노겐의 Arg561-Val562 활성화 결합을 특이적으로 절단하여 플라스미노겐이 플라스민으로 형성되도록 함으로써, 프로테아제 도메인(PD)은 플라스미노겐 단백질 분해 활성을 부여하는 영역이라는 것을 설명하였다.
본 발명의 “플라스민”과 “섬유소 용해 효소”, “피브린 용해 효소”는 상호교환하여 사용될 수 있고 의미는 동일하며; “플라스미노겐”과 “섬유소 용해 자이모겐”, “피브린 용해 자이모겐”은 상호교환하여 사용될 수 있고 의미는 동일하다.
본 발명에서, 상기 플라스미노겐 또는 플라스미노겐 활성의 “결핍”은 피험자 체내의 플라스미노겐 함량이 상기 피험자의 정상적인 생리학적 기능에 영향을 미칠만큼 정상인보다 낮다는 것을 의미하고; 상기 플라스미노겐 또는 플라스미노겐 활성의 “결실”은 피험자 체내의 플라스미노겐 함량이 정상인보다 현저히 낮고, 심지어는 활성 또는 발현이 극히 낮으며, 외부 공급에 의해서만 정상적인 생리학적 기능을 유지할 수 있다는 것을 의미한다.
당업자는 본 발명의 플라스미노겐의 모든 기술적 해결수단이 플라스민에 적용되기 때문에 본 발명에 기재된 기술적 해결수단이 플라스미노겐 및 플라스민을 포함하는 것을 이해할 수 있다. 순환 과정에서, 플라스미노겐은 폐쇄된 비활성 형태를 사용하지만, 혈전 또는 세포 표면에 결합되는 경우 플라스미노겐 활성제(plasminogen activator, PA)의 매개하에 개방형 형태를 갖는 활성 플라스민으로 전환된다. 활성을 갖는 플라스민은 피브린 응괴를 피브린 분해 산물 및 D-이량체로 추가 가수분해하여 혈전을 용해할 수 있다. 여기서 플라스미노겐의 PAp 도메인은 플라스미노겐이 비활성 폐쇄 형태로 유지하도록 하는 중요한 결정 인자를 포함하고, KR 도메인은 수용체 및 기질에 존재하는 라이신 잔기에 결합될 수 있다. 조직 플라스미노겐 활성제(tPA), 유로키나아제 플라스미노겐 활성제(uPA), 칼리크레인(kallikrein) 및 혈액 응고 인자 XII(하게만 인자) 등을 비롯한 다양한 효소가 플라스미노겐 활성제로 사용될 수 있다는 것이 알려져 있다.
“플라스미노겐 활성 단편”은 기질 표적 서열 중 라이신에 결합되는 활성(라이신 결합 활성), 또는 단백질 분해 기능을 발휘하는 활성(단백질 분해 활성), 또는 단백질 분해 활성 및 라이신 결합 활성을 갖는 단편을 의미한다. 본 발명에 따른 플라스미노겐의 기술적 해결수단은 플라스미노겐 활성 단편으로 플라스미노겐을 대체하는 기술적 해결수단을 포함한다. 일부 실시형태에서, 본 발명에 따른 플라스미노겐 활성 단편은 플라스미노겐의 세린 프로테아제 도메인을 포함하거나 또는 플라스미노겐의 세린 프로테아제 도메인으로 구성된다. 일부 실시형태에서, 본 발명에 따른 플라스미노겐 활성 단편은 서열번호 14를 포함하거나, 또는 서열번호 14와 적어도 80%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%의 동일성을 갖는 아미노산 서열을 포함하거나, 또는 서열번호 14로 구성되거나, 또는 서열번호 14와 적어도 80%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%의 동일성을 갖는 아미노산 서열로 구성된다. 일부 실시형태에서, 본 발명에 따른 플라스미노겐 활성 단편은 Kringle 1, Kringle 2, Kringle 3, Kringle 4, Kringle 5로부터 선택되는 하나 이상의 도메인 또는 이들의 보존적 치환 변이체를 포함하거나, 또는 Kringle 1, Kringle 2, Kringle 3, Kringle 4, Kringle 5로부터 선택되는 하나 이상의 도메인 또는 이들의 보존적 치환 변이체로 구성된다. 일부 실시형태에서, 본 발명에 따른 플라스미노겐은 상기 플라스미노겐 활성 단편을 포함하는 단백질을 포함한다.
현재, 혈액 내 플라스미노겐 및 이의 활성 측정 방법은 조직 플라스미노겐 활성제 활성의 검출(t-PAA), 혈장 조직 플라스미노겐 활성제 항원의 검출(t-PAAg), 혈장 조직 플라스미노겐 활성의 검출(plgA), 혈장 조직 플라스미노겐 항원의 검출(plgAg), 혈장 조직 플라스미노겐 활성제 억제제 활성의 검출, 혈장 조직 플라스미노겐 활성제 억제제 항원의 검출, 혈장 플라스민-항플라스민 착물 검출(PAP)을 포함한다. 여기서 가장 일반적으로 사용되는 검출 방법은 발색 기질 방법으로, 검출할 혈장에 스트렙토키나아제(SK) 및 발색 기질을 첨가하고, 검출할 혈장 내의 PLG를 SK의 작용하에 PLM으로 전환하며, 후자를 발색 기질에 작용시키고, 그 다음 분광 광도계로 측정하며, 흡광도의 증가는 플라스미노겐 활성에 정비례한다. 또한, 면역화학적 방법, 겔 전기영동, 면역비탁법, 방사면역측정법을 사용하여 측정할 수도 있다.
“동원체 또는 병렬상동체(ortholog)”는 단백질 동원체 뿐만 아니라 DNA 동원체도 포함하는 상이한 종 사이의 동원체를 의미하고, 이종상동체 및 수직 동원체라고도 한다. 구체적으로 상이한 종의 동일한 조상 유전자에서 진화한 단백질 또는 유전자를 의미한다. 본 발명의 플라스미노겐은 인간 천연 플라스미노겐을 포함하고, 상이한 종으로부터 유래되고 플라스미노겐 활성을 갖는 플라스미노겐 동원체 또는 병렬상동체를 더 포함한다.
“보존적 치환 변이체”는 그 중 하나의 주어진 아미노산 잔기가 변경되나 단백질 또는 효소의 전체 형태 및 기능이 변경되지 않는 것을 의미하며, 이는 유사한 특성(예를 들어 산성, 염기성, 소수성 등)의 아미노산으로 모 단백질의 아미노산 서열 중의 아미노산을 치환하는 것을 포함하지만 이에 한정되지 않는다. 유사한 특성을 갖는 아미노산은 잘 알려져 있다. 예를 들어 아르기닌, 히스티딘 및 라이신은 친수성 염기성 아미노산이고 상호교환할 수 있다. 이와 같이, 이소류신이 소수성 아미노산이면, 류신, 메티오닌 또는 발린으로 대체될 수 있다. 따라서, 유사한 기능의 두 단백질 또는 아미노산 서열의 유사성은 상이할 수 있다. 예를 들어, MEGALIGN 알고리즘 기반의 70% 내지 99%의 유사성(동일성)이다. “보존적 치환 변이체”는 BLAST 또는 FASTA 알고리즘을 통해 결정된 60% 이상, 바람직하게는 75% 이상, 보다 바람직하게는 85% 이상, 또는 가장 바람직하게는 90% 이상의 아미노산 동일성을 갖는 폴리펩티드 또는 효소를 더 포함하고, 천연 또는 모 단백질 또는 효소에 비해 동일하거나 기본적으로 유사한 특성 또는 기능을 갖는다.
“분리된” 플라스미노겐은 자연 환경에서 분리 및/또는 회수된 플라스미노겐 단백질을 의미한다. 일부 실시형태에서, 상기 플라스미노겐은 (1) 90%, 95% 또는 98%보다 큰 순도(중량 기준), 예를 들어 Lowry 방법에 의해 결정된 99%(중량 기준)를 초과한 순도, (2) 스피닝 컵 서열 분석기를 사용하여 N 말단 또는 내부 아미노산 서열의 적어도 15개의 잔기를 획득하기에 충분한 정도, 또는 (3) 환원 또는 비환원 조건에서 나트륨 도데실 설페이트-폴리아크릴아미드 겔 전기영동(SDS-PAGE)을 통해 쿠마시 블루 또는 은 염색을 사용하여 결정된 균질성으로 정제된다. 분리된 플라스미노겐은 또한 생물공학 기술을 통해 재조합 세포로부터 제조되고 적어도 하나의 정제 단계를 통해 분리된 플라스미노겐을 포함한다.
용어 “폴리펩티드”, “펩티드” 및 “단백질”은 본문에서 상호교환하여 사용될 수 있고, 유전적으로 코딩된 아미노산 및 비유전적으로 코딩된 아미노산, 화학적으로 또는 생화학적으로 변형되거나 유도체화된 아미노산, 및 변형된 펩티드 골격을 갖는 폴리펩티드를 포함할 수 있는 임의의 길이의 아미노산의 중합 형태를 의미한다. 상기 용어는 이종 아미노산 서열을 갖는 융합 단백질, 이종 및 상동 리더 서열(N 말단 메티오닌 잔기가 있거나 없음)을 갖는 융합체 등을 포함하지만 이에 한정되지 않는 융합 단백질을 포함한다.
참조 폴리펩티드 서열에 대한 “아미노산 서열 상동성 백분율(%)”은 최대 백분율 서열 상동성을 달성하기 위해 필요시 갭을 도입한 후 임의의 보존적 치환을 서열 상동성의 일부로 고려하지 않는 경우, 참조 폴리펩티드 서열 중의 아미노산 잔기와 동일한 후보 서열의 아미노산 잔기의 백분율로 정의한다. 백분율 아미노산 서열 상동성을 측정하기 위한 정렬은 본 기술분야의 기술적 범위 내에서 다양한 방식으로 구현될 수 있고, 예를 들어 공개적으로 이용 가능한 컴퓨터 소프트웨어, 예를 들어 BLAST, BLAST-2, ALIGN 또는 Megalign(DNASTAR) 소프트웨어를 사용할 수 있다. 당업자는 비교될 서열의 전장에 대해 최대 정렬을 구현하는 데 필요한 임의의 알고리즘을 포함하여 서열을 정렬하기 위한 적절한 파라미터를 결정할 수 있다. 그러나, 본 발명의 목적을 위해 아미노산 서열 상동성의 백분율 값은 서열 비교를 위한 컴퓨터 프로그램 ALIGN-2를 사용하여 생성된다.
ALIGN-2를 사용하여 아미노산 서열을 비교하는 경우, 주어진 아미노산 서열 B에 대한 주어진 아미노산 서열 A의 % 아미노산 서열 상동성(또는 주어진 아미노산 서열 B에 대하여, 주어진 아미노산 서열 B와 또는 이와 관련하여 % 아미노산 서열 상동성을 갖거나 포함하는 주어진 아미노산 서열 A로 표현될 수 있음)은 하기와 같이 계산된다.
분수 X/Y 곱하기 100
여기서 X는 서열 정렬 프로그램 ALIGN-2에 의한 A 및 B 정렬에서 동일한 매치로 스코어링된 아미노산 잔기의 수이고, 여기서 Y는 B 중의 아미노산 잔기의 총 수이다. 아미노산 서열 A의 길이가 아미노산 서열 B의 길이와 동일하지 않은 경우, B에 대한 A의 % 아미노산 서열 상동성은 A에 대한 B의 % 아미노산 서열 상동성과 같지 않다는 것을 이해해야 한다. 달리 명시적으로 설명되지 않는 한, 본문에 사용된 모든 % 아미노산 서열 상동성 값은 상술한 바와 같이 ALIGN-2 컴퓨터 프로그램을 사용하여 획득된다.
본문에 사용된 바와 같이, 용어 “치료”는 원하는 약리학적 및/또는 생리학적 효과를 획득함을 의미한다. 상기 효과는 질환 또는 이의 증상의 발생, 발작을 완전히 또는 부분적으로 예방하거나, 질환 및/또는 이의 증상을 부분적으로 또는 완전히 경감하거나, 및/또는 질환 및/또는 이의 증상을 부분적으로 또는 완전히 치유할 수 있는 것이며, (a) 질환의 소인을 가질 수 있지만 질환이 있는 것으로 진단되지 않은 피험자 체내에서 질환의 발생 또는 발작을 예방하는 것; (b) 질환을 억제하는 것, 즉 질환의 발달을 막는 것; 및 (c) 질환 및/또는 이의 증상을 완화시키는 것, 즉 질환 및/또는 이의 증상을 퇴행 또는 소실시키는 것을 포함한다.
용어 “개체”, “피험자” 및 “환자”는 본문에서 상호교환하여 사용될 수 있고, 쥐(래트, 마우스), 비인간 영장류, 인간, 개, 고양이, 발굽이 있는 동물(예를 들어 말, 소, 양, 돼지, 염소) 등을 포함하지만 이에 한정되지 않는 포유동물을 의미한다.
“치료 유효량” 또는 “유효량”은 질환을 치료하기 위해 포유동물 또는 다른 피험자에게 투여될 때 질환을 예방 및/또는 치료하기에 충분한 플라스미노겐 활성화 경로의 성분 또는 이의 관련 화합물(예를 들어, 플라스미노겐)의 양을 의미한다. “치료 유효량”은 사용된 플라스미노겐 활성화 경로의 성분 또는 이의 관련 화합물(예를 들어, 플라스미노겐), 치료할 피험자의 질환 및/또는 이의 증상의 중증도, 연령, 체중 등에 따라 변화된다.
본 발명의 플라스미노겐의 제조
플라스미노겐은 자연계에서 분리되고 정제되어 추가적인 치료 용도에 사용되거나, 표준 화학 펩티드 합성 기술을 통해 합성될 수 있다. 폴리펩티드가 화학적으로 합성되는 경우, 액상 또는 고상을 통해 합성될 수 있다. 고상 폴리펩티드 합성(SPPS)(여기서 서열의 C 말단 아미노산을 불용성 지지체 부착한 다음, 서열의 나머지 아미노산을 순차적으로 첨가함)은 플라스미노겐의 화학적 합성에 적합한 방법이다. Fmoc 및 Boc와 같은 다양한 형태의 SPPS는 플라스미노겐의 합성에 사용할 수 있다. 고상 합성 기술은 Barany 및 Solid-Phase Peptide Synthesis; 제3-284페이지 The Peptides: Analysis, Synthesis, Biology. 제2권: Special Methods in Peptide Synthesis, Part A., Merrifield, 등. J.Am.Chem.Soc., 85:2149-2156(1963); Stewart 등, Solid Phase Peptide Synthesis, 2nd ed. Pierce Chem.Co., Rockford, Ill.(1984); 및 Ganesan A.2006Mini Rev.Med Chem.6:3-10 및 Camarero JA 등 2005 Protein Pept Lett.12:723-8에 기재되어 있다. 간단히 말해서, 펩티드 사슬이 구축되어 있는 기능성 단위로 작은 불용성 다공성 비드를 처리한다. 커플링/탈보호의 반복된 주기 후에, 부착된 고상이 없는 N 말단 아민과 단일 N 보호 아미노산 단위를 커플링한다. 그 다음 이 단위를 탈보호하여 다른 아미노산에 부착될 수 있는 새로운 N 말단 아민을 나타낸다. 펩티드는 고상에 고정된 상태로 유지되며, 그 후에 이를 절단한다.
표준 재조합 방법을 사용하여 본 발명의 플라스미노겐을 생산할 수 있다. 예를 들어, 플라스미노겐을 코딩하는 핵산을 발현 벡터에 삽입하여 발현 벡터 중의 조절 서열에 작동 가능하게 연결되도록 한다. 발현 조절 서열은 프로모터(예를 들어, 천연적으로 연관된 또는 이종 프로모터), 신호 서열, 인핸서 요소 및 전사 종결 서열을 포함하지만 이에 한정되지 않는다. 발현 조절은 진핵 숙주 세포(예를 들어, COS 또는 CHO 세포)를 형질전환 또는 형질감염시킬 수 있는 벡터 중의 진핵 프로모터 시스템일 수 있다. 벡터가 적합한 숙주에 통합되면, 뉴클레오티드 서열의 고수준 발현 및 플라스미노겐의 수집 및 정제에 적합한 조건하에 숙주가 유지된다.
적합한 발현 벡터는 통상적으로 숙주 유기체에서 에피솜 또는 숙주 염색체 DNA의 통합 부분으로서 복제된다. 통상적으로, 발현 벡터는 선택 가능한 마커(예를 들어, 암피실린(ampicillin) 내성, 하이그로마이신(hygromycin) 내성, 테트라사이클린(tetracycline) 내성, 카나마이신(kanamycin) 내성 또는 네오마이신(neomycin) 내성)을 포함하여 원하는 외인성 DNA 서열로 형질전환된 세포를 검출하는 데 도움이 된다.
대장균(Escherichia coli)은 주제 항체를 클로닝하여 폴리뉴클레오티드를 코딩하는 원핵 숙주 세포의 예일 수 있다. 사용하기에 적합한 다른 미생물 숙주는 간균, 예를 들어 고초균(Bacillus subtilis) 및 다른 장내세균과(enterobacteriaceae), 예를 들어 살모넬라속(Salmonella), 셀라티아속(Serratia), 및 다양한 슈도모나스속(Pseudomonas) 종을 포함한다. 이러한 원핵 숙주에서 또한 발현 벡터를 생성할 수 있고, 이는 통상적으로 숙주 세포와 양립할 수 있는 발현 조절 서열(예를 들어, 복제 기점)을 포함할 수 있다. 또한, 락토오스 프로모터 시스템, 트립토판(trp) 프로모터 시스템, beta-락타마제 프로모터 시스템, 또는 박테리오파지 λ로부터의 프로모터 시스템과 같은 공지된 다양한 프로모터가 있다. 프로모터는 선택적으로 작동 유전자 서열의 경우에 통상적으로 발현을 제어하고, 전사 및 번역을 개시 및 완료하기 위해 리보솜 결합 부위 서열 등을 갖는다.
효모와 같은 다른 미생물도 발현에 사용될 수 있다. 효모(예를 들어, 출아형 효모(S.cerevisiae)) 및 피키아(Pichia)는 적절한 효모 숙주 세포의 예로, 여기서 적절한 벡터는 필요에 따라 발현 조절 서열(예를 들어, 프로모터), 복제 기점, 종결 서열 등을 갖는다. 전형적인 프로모터는 3-포스포글리세르산 키나아제 및 기타 당분해 효소를 포함한다. 특히 유도성 효모 프로모터는 에탄올 탈수소 효소, 이소시토크롬 C, 및 말토스 및 갈락토스 이용을 담당한 효소로부터의 프로모터를 포함한다.
미생물 외에, 포유동물 세포(예를 들어, 시험관내 세포 배양물에서 배양된 포유동물 세포)는 또한 본 발명의 항-Tau 항체(예를 들어, 주제 항-Tau 항체를 코딩하는 폴리뉴클레오티드)를 발현 및 생성하는 데 사용될 수 있다. Winnacker,From Genes to Clones,VCH Publishers,N.Y.,N.Y.(1987)를 참조한다. 적합한 포유동물 숙주 세포는 CHO 세포주, 다양한 Cos 세포주, HeLa 세포, 골수종 세포주, 및 형질전환된 B 세포 또는 하이브리도마를 포함한다. 이러한 세포에 사용되는 발현 벡터는 복제 기점, 프로모터 및 인핸서(Queen 등, Immunol.Rev.89:49(1986))와 같은 발현 조절 서열, 및 리보솜 결합 부위, RNA 스플라이싱 부위, 폴리아데닐화 부위 및 전사 종결자 서열과 같은 필수적인 가공 정보 부위를 포함할 수 있다. 적합한 발현 조절 서열의 예는 면역글로불린 유전자, SV40, 아데노바이러스, 소유두종바이러스, 거대세포바이러스 등으로부터 유래된 프로모터이다. Co 등, J.Immunol.148:1149(1992)를 참조한다.
일단 합성(화학적 또는 재조합적 방식)되면, 황산암모늄 침전, 친화성 컬럼, 컬럼 크로마토그래피, 고성능 액체 크로마토그래피(HPLC), 겔 전기영동 등을 포함하는 본 기술분야의 표준 절차에 따라 본 발명에 따른 플라스미노겐을 정제할 수 있다. 상기 플라스미노겐은 기본적으로 순수하고, 예를 들어 적어도 약 80% 내지 85%, 적어도 약 85% 내지 90%, 적어도 약 90% 내지 95% 순수하거나, 또는 98% 내지 99% 순수하거나 더 순수하며, 예를 들어 세포 파편, 주제 항체 이외의 거대 분자 등과 같은 오염 물질을 포함하지 않는다.
약물 제제
원하는 순도의 플라스미노겐 활성화 경로의 성분 또는 이의 관련 화합물(예를 들어, 플라스미노겐)을 선택 가능한 약학적으로 허용 가능한 벡터, 부형제 또는 안정화제(Remington's Pharmaceutical Sciences, 16판, Osol, A.ed.(1980))와 혼합하여 동결건조제 또는 수용액을 형성함으로써 치료 제제를 제조할 수 있다. 허용 가능한 벡터, 부형제, 안정화제는 사용된 용량 및 농도하에 피험자에게 무독성이고, 인산염, 시트르산염 및 다른 유기산과 같은 완충제; 아스코르브산 및 메티오닌을 포함하는 항산화제; 방부제(예를 들어 옥타데실디메틸벤질암모늄 클로라이드; 헥산디아민 클로라이드; 벤잘코늄 클로라이드, 벤제토늄 클로라이드; 페놀, 부탄올 또는 벤질 알코올; 메틸 또는 프로필 파라벤과 같은 알킬 파라히드록시벤조에이트; 카테콜; 레조르시놀; 시클로헥산올; 3-펜탄올; m-크레졸); 저분자량 폴리펩티드(약 10개 미만의 잔기); 혈청 알부민, 젤라틴 또는 면역글로불린과 같은 단백질; 폴리비닐피롤리돈과 같은 친수성 중합체; 글리신, 글루타민, 아스파라긴, 히스티딘, 아르기닌 또는 라이신과 같은 아미노산; 단당류, 이당류 및 포도당, 만노오스 또는 덱스트린을 포함하는 다른 탄수화물; EDTA와 같은 킬레이트제; 수크로스, 만니톨, 푸코스 또는 소르비톨과 같은 당류; 나트륨과 같은 염 형성 반대 이온; 금속 착물(예를 들어, 아연-단백질 착물); 및/또는 TWEENTM, PLURONICSTM 또는 폴리에틸렌 글리콜(PEG)과 같은 비이온성 계면활성제를 포함한다. 바람직한 동결 건조된 항-VEGF 항체 제제는 WO 97/04801에 기재되어 있고, 이는 본문에서 참조로 포함된다.
본 발명의 제제는 또한 치료해야 할 구체적인 병증에 필요한 하나 이상의 활성 화합물을 포함할 수 있고, 바람직하게는 활성이 상보적이며 서로 부작용이 없는 것이다.
본 발명의 플라스미노겐은 코아세르베이션(coacervation) 또는 계면 중합과 같은 기술을 통해 제조된 마이크로캡슐에 캡슐화될 수 있으며, 예를 들어 콜로이드성 약물 전달 시스템(예를 들어, 리포솜, 알부민 마이크로스피어, 마이크로에멀젼, 나노입자 및 나노캡슐) 또는 매크로에멀젼의 히드록시메틸셀룰로스 또는 겔-마이크로캡슐 및 폴리-(메틸 메타크릴레이트) 마이크로캡슐에 배치할 수 있다. 이러한 기술은 Remington's Pharmaceutical Sciences 16th edition,Osol,A.Ed.(1980)에 공개되어 있다.
체내 투여를 위한 본 발명의 플라스미노겐 활성화 경로의 성분 또는 이의 관련 화합물(예를 들어, 플라스미노겐)은 무조건 멸균된 것이다. 이는 동결 건조 및 재조제 전후에 멸균 필터를 통한 여과에 의해 쉽게 구현될 수 있다.
본 발명의 플라스미노겐 활성화 경로의 성분 또는 이의 관련 화합물(예를 들어, 플라스미노겐)은 서방형 제제로 제조될 수 있다. 서방형 제제의 적합한 예는 멤브레인 또는 마이크로캡슐과 같이 일정한 형태를 갖고 당단백질을 포함하는 고체 소수성 중합체의 반투과성 매트릭스를 포함한다. 서방형 매트릭스의 예는 폴리에스테르, 하이드로겔(예를 들어, 폴리(2-히드록시에틸-메타크릴레이트)(Langer 등, J.Biomed.Mater.Res.,15:167-277(1981); Langer,Chem.Tech.,12:98-105(1982)) 또는 폴리(비닐 알코올), 폴리락티드(미국 특허 3773919,EP 58,481), L-글루탐산과 γ에틸-L-글루탐산의 공중합체(Sidman, 등, Biopolymers 22:547(1983)), 비분해성 에틸렌-비닐 아세테이트(ethylene-vinyl acetate)(Langer, 등, 출처는 상기와 같음), 또는 Lupron DepotTM(젖산-글리콜산 공중합체 및 류프롤라이드(leuprolide) 아세테이트로 구성된 주사 가능한 마이크로스피어)과 같은 분해성 젖산-글리콜산 공중합체, 및 폴리D-(-)-3-히드록시부티르산을 포함한다. 에틸렌-비닐 아세테이트 및 젖산-글리콜산과 같은 중합체는 100일 이상 동안 연속적으로 분자를 방출할 수 있지만 일부 하이드로겔은 단백질을 방출하는 시간이 비교적 짧다. 관련 메커니즘에 따라 단백질의 안정화를 위한 합리적인 전략을 설계할 수 있다. 예를 들어, 축합 메커니즘이 티오디설피드 교환을 통해 분자간 S-S 결합을 형성하는 것으로 발견되면, 설프히드릴 잔기를 변형시키고 산성 용액에서 동결 건조하며 습도를 조절하고 적절한 첨가제를 사용하며 특정된 중합체 매트릭스 조성물을 개발하여 안정화를 구현할 수 있다.
투여 및 용량
비강 흡입, 에어로졸 흡입, 점비액 또는 점안액, 정맥내, 복막내, 피하, 두개내, 척추강내, 동맥내(예를 들어, 경동맥을 통해), 근육내, 직장내 투여와 같이 상이한 방식을 통해 본 발명의 약학적 조성물의 투여를 구현할 수 있다.
비경구 투여를 위한 제조물은 멸균된 수성 또는 비수성 용액, 현탁액 및 에멀젼을 포함한다. 비수성 용매의 예로는 프로필렌 글리콜, 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 및 에틸 올레이트와 같은 주사 가능한 유기 에스테르이다. 수성 벡터는 물, 알코올성/수성 용액, 염수 및 완충 매질을 포함한 에멀젼 또는 현탁액을 포함한다. 비경구 비히클은 염화나트륨 용액, 링거 덱스트로스, 덱스트로스 및 염화나트륨 또는 고정유를 포함한다. 정맥내 비히클은 액체 및 영양 보충제, 전해질 보충제 등을 포함한다. 또한 방부제 및 다른 첨가제, 예를 들어 항미생물제, 항산화제, 킬레이트제 및 불활성 가스 등이 존재할 수 있다.
의료진은 다양한 임상 요인에 기반하여 용량 방법을 결정한다. 의료 분야에 공지된 바와 같이, 임의의 환자의 용량은 환자의 체격, 체표면적, 연령, 투여할 구체적인 화합물, 성별, 투여 횟수 및 경로, 일반적인 건강 및 동시에 투여되는 다른 약물을 비롯한 다양한 요인에 따라 결정된다. 본 발명의 플라스미노겐을 포함하는 약학적 조성물의 용량 범위는 예를 들어 매일 약 0.0001 내지 2000 mg/kg, 또는 약 0.001 내지 500 mg/kg(예를 들어 0.02 mg/kg, 0.25 mg/kg, 0.5 mg/kg, 0.75 mg/kg, 10 mg/kg, 50 mg/kg 등) 피험자 체중일 수 있다. 예를 들어, 용량은 1 mg/kg 체중 또는 50 mg/kg 체중 또는 1 ~ 50 mg/kg 범위, 또는 적어도 1 mg/kg일 수 있다. 이 예시적인 범위보다 높거나 낮은 용량도 특히 상기 요인을 고려하여 포함된다. 상기 범위 중의 중간 용량도 본 발명의 범위 내에 포함된다. 피험자는 매일, 격일, 매주 또는 경험적 분석에 의해 결정된 임의의 다른 일정에 따라 이러한 용량을 투여할 수 있다. 예시적인 용량 일정은 연속적으로 몇일 0.01 ~ 100 mg/kg을 포함한다. 본 발명의 약물 투여 과정에서 치료 효과 및 안전성을 실시간으로 평가해야 한다.
제품 또는 키트
본 발명의 일 실시형태는 플라스미노겐 활성화 경로의 성분 또는 이의 관련 화합물(예를 들어, 플라스미노겐)을 포함하는 제품 또는 키트에 관한 것이다. 상기 제품은 바람직하게는 하나의 용기, 라벨 또는 패키지 인서트를 포함한다. 적합한 용기는 병, 바이알, 주사기 등이 있다. 용기는 유리 또는 플라스틱과 같은 다양한 재료로 제조될 수 있다. 상기 용기는 조성물을 포함하고, 상기 조성물은 본 발명의 질환 또는 병증을 효과적으로 치료하고 멸균 접근 포트(예를 들어, 상기 용기는 피하 주사바늘이 관통할 수 있는 마개를 포함하는 정맥내 용액 팩 또는 바이알일 수 있음)를 갖는다. 상기 조성물 중 적어도 하나의 활성제는 플라스미노겐 활성화 경로의 성분 또는 이의 관련 화합물(예를 들어, 플라스미노겐)이다. 상기 용기 상의 또는 부착된 라벨은 상기 조성물이 본 발명에 따른 병증의 치료에 사용됨을 나타낸다. 상기 제품은 약학적으로 허용 가능한 완충액을 포함하는 제2 용기를 추가로 포함할 수 있는 바, 예를 들어 인산완충식염수, 링거 용액 및 포도당 용액이다. 다른 완충액, 희석제, 필터, 바늘 및 주사기를 포함하여 상업적 및 사용자 관점에서 요구되는 다른 물질을 추가로 포함할 수 있다. 또한, 상기 제품은 사용 지침이 있는 패키지 인서트를 포함하고, 예를 들어 상기 조성물의 사용자가 플라스미노겐 활성화 경로의 성분 또는 이의 관련 화합물(예를 들어, 플라스미노겐)의 조성물 및 수반되는 질환의 치료를 위한 다른 약물을 환자에게 투여하도록 지시하는 것을 포함한다.
실시예
하기 모든 실시예에서 사용되는 인간 플라스미노겐은 인간 공여자 혈장에서 유래되고, KennethC Robbins,Louis Summaria,David Elwyn et al.Further Studies on the Purification and Characterization of Human Plasminogen and Plasmin.Journal of Biological Chemistry,1965,240(1):541-550; Summaria L,Spitz F,Arzadon L et al.Isolation and characterization of the affinity chromatography forms of human Glu-and Lys-plasminogens and plasmins.J Biol Chem.1976 Jun 25; 251(12):3693-9; HAGAN JJ,ABLONDI FB,DE RENZO EC.Purification and biochemical properties of human plasminogen.J Biol Chem.1960 Apr; 235:1005-10에 기재된 방법에 기반하여, 공정 최적화를 수행하고, 인간 공여자 혈장으로부터 정제하여 획득한다. 여기서, 플라스미노겐 단량체는 >98%이다.
실시예 1 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 재조합 인간 α-시누클레인의 분해를 촉진하는 플라스미노겐
11 ~ 12주령, 18 ~ 25 g의 C57BL/6J 수컷 마우스를 8마리 취하고, 모델링 1일 전에 무게를 측정하며, 체중에 따라 랜덤으로 2 그룹으로 나누었는 바, 블랭크 대조군 4마리와 모델군 4마리이다. 모델링 시간은 매일 아침 9시로 정하고, 블랭크 대조군은 200 μl의 생리식염수를 복강내 주사하며; 모델군은 35 mg/kg/마리에 따라 5 mg/mL의 MPTP(1-methyl-4-phenyl-1,2,3,6-tetrahydropyridine, 1-메틸-4-페닐-1,2,3,6-테트라히드로피리딘) 용액을 복강내 주사하고, 5일 동안 연속 주사하여, 파킨슨 모델을 구축하였다[1]. MPTP 용액의 조제: 45 mg의 MPTP(Sigma, M0896)를 취하여 9 ml의 생리식염수 용액에 용해시키고, 조제 최종 농도는 5 mg/mL이다. 모델링 완료 후, 즉 모델링 6일차에 모든 마우스에 대해 오픈 필드 실험을 수행하고, 모델링이 성공적임을 동정하였다. 모든 마우스를 희생시킨 다음 전체 뇌를 취하여 무게를 측정하고, 150 mg 조직/mL PBS에 따라 각각 1×PBS(Thermo Fisher, pH 7.4; 10010-031)를 첨가하며, 4℃에서 균질화(1 min/회, 3 ~ 4회)하고, 균질화 후 4℃에서 원심분리(12000 rpm, 20 min)하며, 상층액(뇌 조직 균질액)을 취하여 EP 튜브에 넣었다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크 대조군, ② 비히클 대조군, ③ 플라스미노겐군으로 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하고; 비히클 대조군에 21.5 μL의 α-시누클레인 용액(Shanghai Qiangyao Biotechnology Co., Ltd, 인간 α-시누클레인의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P37840, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하며; 플라스미노겐군에 21.5 mL의 α-시누클레인(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
Tris-Tricine-SDS-PAGE 겔 제조 키트(Solarbio, P1320)의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 1.5 h 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 1‰ 쿠마시 브릴리언트 블루 염색액(1 g의 쿠마시 브릴리언트 블루 R250을 에탄올:빙초산:정제수의 부피비가 5:2:13인 1000 ml의 혼합액에 용해시킴)에서 30 min 동안 염색한 다음, 탈색액(정제수:빙초산:무수 에탄올=17:2:1 부피비 혼합)으로 깨끗해질 때까지 탈색하였다. 겔은 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영 및 정량적 스캐닝 분석하였다.
파킨슨병은 현재 중뇌 흑질 도파민성 뉴런의 결실 및 루이소체의 발생으로 유발된 것으로 간주하고 있다. α-시누클레인은 140개의 아미노산 잔기로 구성된 하나의 뉴런 단백질로, 뉴런 소상을 유발할 수 있고, 중추신경계 신경 변성 과정에 관여하며, 연구에 따르면 신경 세포의 루이소체 및 시냅스에 응집된 α-시누클레인은 파킨슨병의 뇌 병변의 표지인 것으로 나타났다[2].
결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 α-시누클레인의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(***는 P<0.001을 나타냄), 이의 중합체 a, b의 양은 모두 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(**는 P<0.01을 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 α-시누클레인의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(***는 P<0.001을 나타냄), 이의 중합체 a, b의 양은 모두 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 현저하다(*는 P<0.05를 나타내고, **는 P<0.01을 나타냄)(도 1). 이는 파킨슨 모델 마우스 및 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 인간 α-시누클레인 및 이의 중합체를 효과적으로 분해할 수 있음을 나타낸다.
실시예 2 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질물에서 α-시누클레인 분해를 촉진하는 플라스미노겐
11 ~ 12주령, 18 ~ 25 g의 C57BL/6J 수컷 마우스를 8마리 취하고, 모델링 1일 전에 무게를 측정하며, 체중에 따라 랜덤으로 2 그룹으로 나누었는 바, 블랭크 대조군 4마리와 모델군 4마리이다. 실시예 1에 기재된 바에 따라 파킨슨 모델을 구축하고[5] 뇌 조직 균질물을 제조하여 EP 튜브에 넣었다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 α-시누클레인(Shanghai Qiangyao Biotechnology Co., Ltd, 인간 α-시누클레인의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P37840, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21.5 mL의 α-시누클레인(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
Tris-Tricine-SDS-PAGE 겔 제조 키트(Solarbio, P1320)의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 1.5 h 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 항 인간 α-시누클레인 항체(Proteintech,10842-1-AP)를 첨가하고 실온에서 3 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 정량적 분석하였다.
결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 α-시누클레인의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(**는 P<0.01을 나타냄), 이의 중합체의 양은 모두 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐군의 α-시누클레인의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(**는 P<0.01을 나타냄), 이의 중합체의 양은 모두 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 2). 이는 파킨슨 모델 마우스 및 정상 마우스의 뇌 균질물에서 플라스미노겐이 인간 α-시누클레인 및 이의 중합체를 효과적으로 분해할 수 있음을 나타낸다.
실시예 3 파킨슨 모델 마우스의 흑질 α-시누클레인 발현을 감소시킬 수 있는 플라스미노겐
28마리의 10 ~ 12주령 C57BL/6J 수컷 마우스를 취하고, 모델링 1일 전에 무게를 측정하며, 체중에 따라 랜덤으로 2 그룹으로 나누었는 바, 블랭크 대조군 8마리와 모델군 20마리이다. 실시예 1에 기재된 바와 같이 파킨슨 모델을 구축하였다[1]. 모델링 완료 후, 즉 모델링 6일차에 모델군 마우스를 체중에 따라 랜덤으로 두 그룹으로 나누었는 바, 비히클군과 투여군으로 각각 10마리이며, 투여하기 시작하고 1일차로 기록하며, 투여군 마우스는 1 mg/100 μL/마리에 따라 플라스미노겐 용액을 꼬리 정맥 주사하고, 비히클군은 100 μL/마리의 비히클 용액을 주사하며, 14일 동안 연속 투여하고, 투여 15일차에 희생시키며, 마우스 흑질을 취하여 4% 파라포름알데히드에 24 ~ 48시간 동안 고정시켰다. 고정된 뇌 조직을 알코올 구배로 탈수하고 자일렌으로 투명하게 한 다음 파라핀 포매를 수행하였다. 절편 흑질을 정위하고, 절편의 두께는 3 μm이며, 절편을 탈납 및 재수화하고 물로 1회 세척하였다. PAP 펜으로 조직에 동그라미를 치고, 3% 과산화수소로 15분 동안 배양하며, 0.01 M의 PBS로 매회 5분씩 2회 세척하였다. 5%의 정상 염소 혈청액(Vector laboratories,Inc.,USA)으로 30분 동안 차단하고; 시간이 다 되면 염소 혈청을 버리고, 토끼 항 마우스 α-시누클레인 항체(Proteintech,10842-1-AP)를 적가하여 4℃에서 밤새 배양하며, 0.01 M의 PBS로 매회 5분씩 2회 세척하였다. 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam) 2차 항체를 실온에서 1시간 동안 배양하고, 0.01 M의 PBS로 매회 5분씩 2회 세척하였다. DAB 키트(Vector laboratories,Inc.,USA)에 따라 발색하고, 물로 3회 세척한 다음 헤마톡실린으로 30초 동안 대조염색하며, 흐르는 물로 5분 동안 세척하였다. 구배 알코올로 탈수하고 자일렌으로 투명하게 한 다음 중성 검으로 절편을 밀봉하며, 절편은 400배 광학 현미경으로 관찰하였다.
결과에 따르면, 블랭크 대조군(도 3의 A) 마우스의 흑질에는 소량의 α-시누클레인만 있고, 비히클군(도 3의 B) 마우스의 흑질 α-시누클레인의 양은 블랭크 대조군보다 유의하게 높으며(*는 P<0.05를 나타냄), 플라스미노겐 투여군(도 3의 C) 마우스의 흑질 α-시누클레인의 양은 비히클군보다 유의하게 낮고, 블랭크 대조군에 근접하며, 통계학적 차이가 현저하다(*는 P<0.05를 나타냄)(도 3의 D). 이는 플라스미노겐이 파킨슨 모델 마우스의 흑질 α-시누클레인 발현을 감소시키고 뉴런 손상 변성을 개선할 수 있음을 나타낸다.
실시예 4 PBS 완충액 시스템에서 인간 아밀로이드 단백질(Aβ40) 분해를 촉진할 수 있는 플라스미노겐
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크 대조군, ② 비히클 대조군, ③ 플라스미노겐군, ④ 플라스미노겐+tPA군으로 설정하고, 각 그룹은 4개이다. 블랭크 대조군에 43.3 μL의 생리식염수, 16 μL의 플라스미노겐 용액(0.575 mg/mL), 10 μL의 초순수, 30.7 μL의 PBS 완충액(10mM, PH 7.4, Thermo Fisher, 10010-031)을 첨가하고; 비히클 대조군에 43.3 μL의 Aβ40(Shanghai Qiangyao Biotechnology Co., Ltd, 04010011521, 1.0 mg/mL), 16 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 10 μL의 초순수, 30.7 μL의 PBS 완충액을 첨가하며; 플라스미노겐군에 43.3 μL의 Aβ40(1.0 mg/mL), 16 μL의 플라스미노겐 용액(0.575 mg/mL), 10 μL의 초순수, 30.7 μL의 PBS 완충액을 첨가하고; 플라스미노겐+tPA군에 43.3 μL의 Aβ40(1.0 mg/mL), 8 μL의 플라스미노겐 용액(1.15 mg/mL), 8 μL의 tPA 용액(1.0 mg/mL), 10 μL의 라이신 용액(0.1 mM), 30.7 μL의 PBS 완충액을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 3 h 동안 배양하고 100 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
Tris-Tricine-SDS-PAGE 겔 제조 키트(Solarbio, P1320)의 겔 조제 지침에 따라 20% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 1 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 1 h 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 1‰ 쿠마시 브릴리언트 블루 염색액(1 g의 쿠마시 브릴리언트 블루 R250을 에탄올:빙초산:정제수의 부피비가 5:2:13인 1000 ml의 혼합액에 용해시킴)에서 30 min 동안 염색한 다음, 탈색액(정제수:빙초산:무수 에탄올=17:2:1 부피비 혼합)으로 깨끗해질 때까지 탈색하였다. 겔은 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영 및 정량적 스캐닝하였다.
아밀로이드 단백질(Aβ)의 축적은 알츠하이머병의 형성에 중요한 요인이며, 여기서 40개 및 42개의 잔기를 포함하는 Aβ40 및 Aβ42는 노인반을 구성하는 주요 형태이고, 즉 뇌의 해마 및 선조체에 침착되어 AD의 주요 발병 요인인 노인반을 형성한다[3]. 뇌 척수액에서 Aβ40 및 Aβ42의 함량 검출도 점차 임상 알츠하이머병의 생리학적 지표로 된다.
결과에 따르면, 비히클 대조군의 Aβ40의 양을 100%로 정의하였고, 아무런 변화가 없었으며; 플라스미노겐군에서는 플라스미노겐 단독 첨가 시 Aβ40이 부분적으로 분해되었고; 플라스미노겐+tPA군에서는 플라스미노겐과 tPA를 동시에 첨가한 경우 시험관내 Aβ40 분해 상황은 현저하며, 비히클 대조군과 비교하여 현저한 차이를 갖는다(**는 P<0.01을 나타냄)(도 4). 이는 플라스미노겐이 PBS 완충액 시스템에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 5 토끼 뇌 척수액에서 인간 아밀로이드 단백질(Aβ40) 분해를 촉진할 수 있는 플라스미노겐
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크 대조군, ② 비히클 대조군, ③ 플라스미노겐군, ④ 플라스미노겐+tPA군으로 설정하였다. 블랭크 대조군에 43.3 μL의 생리식염수, 16 μL의 플라스미노겐 용액(0.575 mg/mL), 40.7 μL의 토끼(시판) 뇌 척수액을 첨가하고; 비히클 대조군에 43.3 μL의 Aβ40(Shanghai Qiangyao Biotechnology Co., Ltd, 04010011521, 1.0 mg/mL), 16 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 40.7 μL의 토끼 뇌 척수액을 첨가하며; 플라스미노겐군에 43.3 μL의 Aβ40(1.0 mg/mL), 16 μL의 플라스미노겐 용액(0.575 mg/mL), 40.7 μL의 토끼 뇌 척수액을 첨가하고; 플라스미노겐+tPA군에 43.3 μL의 Aβ40(1.0 mg/mL), 8 μL의 플라스미노겐 용액(1.15 mg/mL), 8 μL의 tPA 용액(1.0 mg/mL), 40.7 μL의 PBS 완충액을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 3 h 동안 배양하고 100 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
Tris-Tricine-SDS-PAGE 겔 제조 키트(Solarbio, P1320)의 겔 조제 지침에 따라 20% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 실시예 1과 같이 전기영동, 쿠마시 브릴리언트 블루 염색한 다음, 탈색 및 정량적 스캐닝하였다.
결과에 따르면, 비히클 대조군의 Aβ40의 양을 100%로 정의하였고, 아무런 변화가 없었으며; 플라스미노겐군에서는 플라스미노겐 단독 첨가 시 Aβ40이 74.81%로 부분적으로 분해되었다(도 5). 이는 플라스미노겐이 토끼 뇌 척수액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 6 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40 분해를 촉진하는 플라스미노겐
11주령 B6SJLTg(APPSwFlLon,PSEN1*M146L*L286V) 6799 Vas/Mmjax(FAD)(Stock Number: 034840)(FAD라고 약칭함), C57BL/6(정상) 마우스를 각각 4마리씩 취하여 희생시킨 다음 전체 뇌 조직을 취하며, 실시예 1과 같이 상층액 뇌 균질액을 제조하여 EP 튜브에 비축하였다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크 대조군, ② 비히클 대조군, ③ 플라스미노겐군으로 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하고; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Aβ40(Shanghai Qiangyao Biotechnology Co., Ltd, 04010011521, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하며; 플라스미노겐군에 21.5 mL의 Aβ40(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
Tris-Tricine-SDS-PAGE 겔 제조 키트(Solarbio, P1320)의 겔 조제 지침에 따라 20% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 실시예 1과 같이 전기영동, 쿠마시 브릴리언트 블루 염색한 다음, 탈색 및 정량적 스캐닝하였다.
결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 아밀로이드 단백질 Aβ40의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(P=0.001)(도 6). 이는 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40의 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 7 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42 분해를 촉진하는 플라스미노겐
11주령 B6SJLTg(APPSwFlLon,PSEN1*M146L*L286V) 6799 Vas/Mmjax(FAD)(Stock Number: 034840)(FAD라고 약칭함), C57BL/6(정상) 마우스를 각각 4마리씩 취하여 희생시킨 다음 전체 뇌 조직을 취하고, 실시예 1과 같이 상층액 뇌 균질액을 제조하여 EP 튜브에 비축하였다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크 대조군, ② 비히클 대조군, ③ 플라스미노겐군으로 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하고; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Aβ42(Shanghai Qiangyao Biotechnology Co., Ltd, 04010011526, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하며; 플라스미노겐군에 21.5 mL의 Aβ42(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
Tris-Tricine-SDS-PAGE 겔 제조 키트(Solarbio, P1320)에 따라 20% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 실시예 1과 같이 전기영동, 쿠마시 브릴리언트 블루 염색한 다음, 탈색 및 정량적 스캐닝하였다.
결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 낮고, 이의 중합체 a, b, c의 양은 모두 비히클군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(*는 P<0.05를 나타내고; ***는 P<0.001을 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(***는 P<0.001을 나타냄), 이의 중합체 a, b, c의 양은 모두 비히클군보다 낮으며, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 7). 이는 알츠하이머병 모델 및 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42 및 이의 중합체 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 8 알츠하이머병 모델, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42 분해를 촉진하는 플라스미노겐
11주령 B6SJLTg(APPSwFlLon,PSEN1*M146L*L286V) 6799 Vas/Mmjax(FAD)(Stock Number: 034840)(FAD라고 약칭함), C57BL/6(정상) 마우스를 각각 4마리씩 취하여 희생시킨 다음 전체 뇌 조직을 취하고, 실시예 1과 같이 상층액 뇌 균질액을 제조하여 EP 튜브에 비축하였다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크 대조군, ② 비히클 대조군, ③ 플라스미노겐군으로 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하고; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Aβ42(Shanghai Qiangyao Biotechnology Co., Ltd, 04010011526, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하며; 플라스미노겐군에 21.5 mL의 Aβ42(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
Tris-Tricine-SDS-PAGE 겔 제조 키트(Solarbio, P1320)에 따라 20% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 1.5 h 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 마우스 항 인간 Aβ42 항체(Nanjing GenScript, 10842-1-AP)를 첨가하고 실온에서 3 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 마우스 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6789) 이차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 정량적 분석하였다.
결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 이의 중합체의 양도 비히클군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(*는 P<0.05를 나타냄); 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 아밀로이드 단백질 Aβ42의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하고(***는 P<0.001을 나타냄), 이의 중합체의 양도 비히클군보다 유의하게 낮으며, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 8). 이는 알츠하이머병 모델 및 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42 및 이의 중합체 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 9 정상 마우스의 뇌 균질물에서 Tau 단백질 분해를 촉진하는 플라스미노겐
4마리의 11 ~ 12주령 18 ~ 25 g의 C57BL/6J 수컷 마우스를 취하고 희생시킨 다음 전체 뇌를 취하여 무게를 측정하며, 150 mg 조직/mL PBS에 따라 각각 1×PBS(Thermo Fisher, PH 7.4; 10010-031)를 첨가하고, 4℃에서 균질화(1 min, 3 ~ 4회)하며, 균질화 후 4℃에서 원심분리(12000 rpm, 20 min)하고, 상층액, 즉 뇌 균질액을 취하여 EP 튜브에 넣었다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(0.5 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Tau(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 Tau 단백질의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P10636-8, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21.5 μL의 Tau(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(0.5 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE 겔 조제 지침에 따라 10% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 45 min 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 활성화된 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 유래 Tau 단백질 항체(Abcam, ab151559)를 첨가하고 실온에서 2 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 정량적 분석하였다.
Tau 단백질은 함량이 가장 높은 미세소관 관련 단백질이다. Tau 단백질은 인산기 함유 단백질로, 정상적인 성숙 뇌에서 Tau 단백질 분자는 2 ~ 3개의 인산기를 포함한다. 알츠하이머병(노인성 치매) 환자의 뇌에서 Tau 단백질은 비정상적으로 과도하게 인산화되어, 분자당 Tau 단백질은 5 ~ 9개의 인산기를 포함할 수 있고, 정상적인 생리학적 기능을 상실한다[4].
결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Tau 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 현저하다(*는 P<0.05를 나타내고, **는 P<0.01을 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄)(도 9). 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질물 내 Tau 단백질 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 10 알츠하이머 마우스의 뇌 균질물에서 Tau 단백질 분해를 촉진하는 플라스미노겐
11주령 B6SJLTg(APPSwFlLon,PSEN1*M146L*L286V) 6799 Vas/Mmjax(FAD)(Stock Number: 034840)(FAD라고 약칭함) 마우스를 각각 4마리씩 취하고 희생시킨 다음 전체 뇌를 취하여 무게를 측정하며, 150 mg 조직/mL PBS에 따라 각각 1×PBS(Thermo Fisher, PH 7.4; 10010-031)를 첨가하고, 4℃에서 균질화(1 min, 3 ~ 4회)하며, 균질화 후 4℃에서 원심분리(12000 rpm, 20 min)하고, 상층액, 즉 뇌 균질액을 취하여 새로운 EP 튜브에 넣었다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(0.5 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Tau(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 Tau 단백질의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P10636-8, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21.5 μL의 Tau(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(0.5 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE 겔 조제 지침에 따라 10% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 45 min 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 활성화된 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 유래 Tau 단백질 항체(Abcam, ab151559)를 첨가하고 실온에서 2 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 정량적 분석하였다.
결과에 따르면, 알츠하이머 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Tau 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 통계학적 차이가 현저하다(*는 P<0.05를 나타내고, **는 P<0.01을 나타냄)(도 10). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머 마우스의 뇌 균질물 내 Tau 단백질 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 11 알츠하이머 모델 마우스의 뇌 조직 내 Tau 단백질 수준을 감소시키는 플라스미노겐
B6SJL-Tg(APPSwFlLon,PSEN1*M146L*L286V) 6799 Vas/Mmjax 마우스 품종 번호: 034840, Jackson 실험실에서 구입) 및 C57BL/6J 마우스를 3회 역교배시켜 래트(B6-F3-FAD라고 약칭함)를 번식시켰다. 20 ~ 25주령의 암컷 B6-F3-FAD 마우스 18마리와 9주령의 C57BL/6J 암컷 마우스 9마리를 취하였다. B6-F3-FAD는 체중 및 Y 미로 실험 검출 결과에 따라 랜덤으로 두 그룹으로 나누었는 바, 비히클군 및 투여군으로 각각 9마리이다. 9마리의 C57BL/6J를 블랭크 대조군으로 사용하였다. 그룹을 나눈 후, 블랭크 대조군 마우스와 비히클군 마우스는 비히클을 꼬리 정맥 주사하고, 각 마우스의 주사량은 5 ml/kg이다. 투여군 마우스는 플라스미노겐을 꼬리 정맥 주사하고, 각 마우스의 주사량은 50 mg/kg이며, 28일 동안 연속 주사하였다. 투여 종료 7일 후, 각 그룹은 랜덤으로 마우스를 취하여 희생시키고, 뇌 조직을 취하며, 4℃에서 균질화한 후 상층액, 즉 뇌 균질액을 BCA 방법으로 전체 단백질 검출 및 Western blot 검출을 수행하였다.
SDS-PAGE 겔 조제 지침에 따라 10% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 1.5 h 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 항 마우스 Tau 항체(Abcam, ab151559)를 첨가하고 실온에서 2 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 정량적 분석하였다.
결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 뇌 균질물에는 일정한 수준의 상이한 분자량의 Tau 단백질이 있고; 투여군 마우스의 뇌 조직 내 각 분자량의 Tau 단백질 및 총 Tau 단백질 수준은 비히클군 마우스보다 유의하게 낮고, 두 그룹에서 분자량이 35 kd, 35 ~ 40 kd, 40 kd, 54 kd인 Tau 단백질 수준 및 총 Tau 단백질 수준의 통계적 분석 P 값은 각각 0.174, 0.0406, 0.052, 0.067 및 0.055이다(도 11). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머 모델 마우스의 뇌 조직 내 Tau 단백질 분해를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 12 정상 마우스의 뇌 균질물에서 Pro-BDNF 절단을 촉진하는 플라스미노겐
11 ~ 12주령, 18 ~ 25 g의 C57BL/6J 수컷 마우스를 4마리 취하고 희생시킨 다음 전체 뇌를 취하여 무게를 측정하며, 150 mg 조직/mL PBS에 따라 각각 1×PBS(Thermo Fisher, PH 7.4; 10010-031)를 첨가하고, 4℃에서 균질화(1 min, 3 ~ 4회)하며, 균질화 후 4℃에서 원심분리(12000 rpm, 20 min)하며, 상층액, 즉 뇌 균질액을 취하여 새로운 EP 튜브에 넣었다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Pro-BDNF(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 Pro-BDNF의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P23560, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21. μL의 Pro-BDNF(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 실시예 1과 같이 전기영동, 쿠마시 브릴리언트 블루 염색한 다음, 탈색 및 정량적 스캐닝하였다.
뇌 유래 신경 영양 인자(brain-derived neurotrophic factor, BDNF)는 분자량이 12.3 kD인 알칼리성 단백질의 일종으로, 119개의 아미노산 잔기로 구성되고, 3쌍의 이황화 결합을 포함하며, 체내에서 이량체의 형태로 존자하고, BDNF 전구체의 형태로 합성되며, BDNF 전구체(Pro-BDNF)는 효소 분해 작용을 통해 절단되어 성숙한 BDNF를 형성할 수 있다. 문헌에는 Pro-BDNF가 절단되어 형성된 성숙한 BDNF와 반대 작용을 갖는다는 것이 보고되어 있다. Pro-BDNF는 신경 세포 사멸을 촉진하고, 시냅스의 가소성을 감소시킨다[5]. 성숙한 BDNF 및 이의 수용체는 중추신경계 내에 널리 분포되고, 중추신경계 발육 과정에서 뉴런의 생존, 분화, 성장 및 발육에 중요한 작용을 하며, 뉴런이 손상되어 사멸되는 것을 방지하고 뉴런의 병리학적 상태를 개선하며 손상된 뉴런의 재생 및 분화 등 생물학적 효과를 촉진할 수 있고, 성숙한 중추 및 말초 신경계의 뉴런의 생존 및 정상적인 생리학적 기능을 유지하는 데 필수적인 것이다[6].
결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 12). 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질물 내 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 13 정상 마우스의 뇌 균질물에서 Pro-BDNF 절단을 촉진하여 성숙한 Pro-BDNF를 형성하는 플라스미노겐
11 ~ 12주령, 18 ~ 25 g의 C57BL/6J 수컷 마우스를 4마리 취하고 희생시킨 다음 전체 뇌를 취하여 무게를 측정하며, 150 mg 조직/mL PBS에 따라 각각 1×PBS(Thermo Fisher, PH 7.4; 10010-031)를 첨가하고, 4℃에서 균질화(1 min, 3 ~ 4회)하며, 균질화 후 4℃에서 원심분리(12000 rpm, 20 min)하며, 상층액, 즉 뇌 균질액을 취하여 새로운 EP 튜브에 넣었다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, PH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5μL Pro- BDNF(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 Pro-BDNF의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P23560, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21. μL의 Pro-BDNF(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 45 min 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 활성화된 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 항 인간 BDNF 항체(Boster Biological Technology,PB9075)를 첨가하고 실온에서 3 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 정량적 분석하였다.
결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(**는 P<0.01을 나타냄)(도 13). 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질물 내 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 14 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질물에서 Pro-BDNF 절단을 촉진하는 플라스미노겐
11 ~ 12주령, 18 ~ 25 g의 C57BL/6J 수컷 마우스를 4마리 취하였다. 모델링 시간을 매일 아침 9시로 정하고, 블랭크 대조군은 200 μl의 생리식염수를 복강내 주사하며; 모델군은 35 mg/kg/마리에 따라 5 mg/mL의 MPTP 용액을 복강내 주사하고, 5일 동안 연속 주사하여, 파킨슨 모델을 구축하였다[6]. MPTP 용액의 조제: 45 mg의 MPTP(Sigma, M0896)를 취하여 9 ml의 생리식염수 용액에 용해시키고, 조제 최종 농도는 5 mg/mL이다. 모델링 완료 후, 즉 모델링 6일차에 모든 마우스에 대해 오픈 필드 실험을 수행하고, 모델링이 성공적임을 동정하였다. 모든 마우스를 희생시킨 다음 전체 뇌를 취하여 무게를 측정하고, 150 mg 조직/mL PBS에 따라 각각 1×PBS(Thermo Fisher, PH 7.4; 10010-031)를 첨가하고, 4℃에서 균질화(1 min, 3 ~ 4회)하며, 균질화 후 4℃에서 원심분리(12000 rpm, 20 min)하며, 상층액, 즉 뇌 균질액을 취하여 새로운 EP 튜브에 넣었다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, pH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Pro-BDNF 용액(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 Pro-BDNF의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P23560, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21. μL의 Pro-BDNF 용액(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 실시예 1과 같이 전기영동, 쿠마시 브릴리언트 블루 염색한 다음, 탈색 및 정량적 스캐닝하였다.
결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 14). 이는 플라스미노겐이 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질물 내 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 15 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질물에서 Pro-BDNF 절단을 촉진하여 성숙한 Pro-BDNF를 형성하는 플라스미노겐
11 ~ 12주령, 18 ~ 25 g의 C57BL/6J 수컷 마우스를 8마리 취하고, 모델링 1일 전에 무게를 측정하며, 체중에 따라 랜덤으로 2 그룹으로 나누었는 바, 블랭크 대조군 4마리와 모델군 4마리이다. 모델링 시간을 매일 아침 9시로 정하고, 블랭크 대조군은 200 μl의 생리식염수를 복강내 주사하며; 모델군은 35 mg/kg/마리에 따라 5 mg/mL의 MPTP 용액을 복강내 주사하고, 5일 동안 연속 주사하여, 파킨슨 모델을 구축하였다[6]. MPTP 용액의 조제: 45 mg의 MPTP(Sigma, M0896)를 취하여 9 ml의 생리식염수 용액에 용해시키고, 조제 최종 농도는 5 mg/mL이다. 모델링 완료 후, 즉 모델링 6일차에 모든 마우스에 대해 오픈 필드 실험을 수행하고, 모델링이 성공적임을 동정하였다. 모든 마우스를 희생시킨 다음 전체 뇌를 취하여 무게를 측정하고, 150 mg 조직/mL PBS에 따라 각각 1×PBS(Thermo Fisher, PH 7.4; 10010-031)를 첨가하고, 4℃에서 균질화(1 min, 3 ~ 4회)하며, 균질화 후 4℃에서 원심분리(12000 rpm, 20 min)하며, 상층액, 즉 뇌 균질액을 취하여 새로운 EP 튜브에 넣었다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, pH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Pro-BDNF(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 Pro-BDNF의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P23560, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21. μL의 Pro-BDNF(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 45 min 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 활성화된 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 항 인간 BDNF 항체(Boster Biological Technology,PB9075)를 첨가하고 실온에서 3 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 정량적 분석하였다.
결과에 따르면, 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 현저하며(*는 P<0.05를 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐군의 BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 매우 현저하다(도 15). 이는 플라스미노겐이 파킨슨 모델 마우스의 뇌 균질액에서 Pro-BDNF 절단 및 성숙한 BDNF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 16 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 Pro-BDNF 절단을 촉진하는 플라스미노겐
11주령 B6SJLTg(APPSwFlLon,PSEN1*M146L*L286V) 6799 Vas/Mmjax(FAD)(Stock Number: 034840)(FAD라고 약칭함) 마우스를 각각 4마리씩 취하여 희생시킨 다음 전체 뇌 조직을 취하고, 실시예 1과 같이 상층액 뇌 균질액을 제조하여 EP 튜브에 비축하였다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, pH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Pro-BDNF(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 Pro-BDNF의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P23560, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21.5 mL의 Pro-BDNF(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 실시예 1과 같이 전기영동, 쿠마시 브릴리언트 블루 염색한 다음, 탈색 및 정량적 스캐닝하였다.
결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 16). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질물 내 Pro-BDNF 절단을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 17 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 Pro-BDNF 절단을 촉진하여 성숙한 BDNF를 형성하는 플라스미노겐
11주령 B6SJLTg(APPSwFlLon,PSEN1*M146L*L286V) 6799 Vas/Mmjax(FAD)(Stock Number: 034840)(FAD라고 약칭함) 마우스를 각각 4마리씩 취하여 희생시킨 다음 전체 뇌 조직을 취하고, 실시예 1과 같이 상층액 뇌 균질액을 제조하여 EP 튜브에 비축하였다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 투여군으로 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, pH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Pro-BDNF(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 Pro-BDNF의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P23560, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21.5 mL의 Pro-BDNF(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 45 min 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 항 인간 BDNF 항체(Boster Biological Technology,PB9075)를 첨가하고 실온에서 3 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 밴드 광학 밀도를 정량적 분석하였다.
결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Pro-BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(**는 P<0.01을 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐군의 BDNF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 매우 현저하다(도 17). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 Pro-BDNF 절단 및 성숙한 BDNF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 18 정신분열증 모델 마우스의 해마 BDNF 수준 증가를 촉진하는 플라스미노겐
30마리의 C57 마우스 암컷을 취하고, 모델링 전에 무게를 측정하며, 체중이 비정상인 마우스를 제거한 후 모든 마우스를 랜덤으로 두 그룹으로 나누었는 바, 블랭크 대조군 8마리의 마우스와 모델군 22마리의 마우스이다. 그룹을 나눈 후, 블랭크 대조군은 유지 사료를 공급하고, 모델군은 0.6% 쿠프리존(CPZ)(제조업체: Shanghai Yuanye Biotechnology Co., Ltd., 제품번호: S30349)을 포함하는 모델링 사료를 공급하며, 42일 동안 연속 공급하여, 정신분열증 모델을 유도하였다[7,8]. 모델링 완료 후, 모든 마우스에 대해 오픈 필드 실험 검출을 수행하고, 검출 결과에 따라 모델군 마우스를 그룹화하였는 바, 비히클군 11마리의 마우스와 투여군 11마리의 마우스이다. 그룹을 나눈 후, 모든 마우스는 투여하기 시작하고, 투여 1일차로 기록하며, 블랭크 대조군 마우스는 0.1 ml/마리/일에 따라 비히클(4% 아르기닌+2% 글리신 용액)을 꼬리 정맥 주사하고, 비히클군 마우스는 0.1 ml/마리/일에 따라 비히클을 꼬리 정맥 주사하며, 투여군 마우스는 1 mg/마리/일에 따라 플라스미노겐을 꼬리 정맥 주사하고, 35일 동안 연속 투여하며, 투여 기간에 모든 마우스는 정상 유지 사료를 공급하였다. 36일차에 마우스를 희생시키고, 뇌 조직을 취하여 10% 포름알데히드 용액에 고정시킨 다음, 탈수 및 포매하였다. 고정된 조직 샘플을 알코올 구배로 탈수하고 자일렌으로 투명하게 한 다음 파라핀 포매를 수행하였다. 뇌 조직 관상 절편의 두께는 3 μm이며, 절편을 탈납 및 재수화하고 물로 1회 세척하였다. 시트르산으로 30분 동안 복구하고, 실온에서 10분 동안 냉각시킨 다음 물로 부드럽게 헹구었다. 3% 과산화수소로 15분 동안 배양하고, PAP 펜으로 조직에 동그라미를 쳤다. 10%의 염소 혈청(Vector laboratories, Inc.,USA)으로 1시간 동안 차단하고; 시간이 다 되면 염소 혈청을 버렸다. 토끼 유래 항 BDNF 항체(BosterBio,PB9075)를 적가하여 4℃에서 밤새 배양하며, PBS로 매회 5분씩 2회 세척하였다. 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam) 2차 항체를 실온에서 1시간 동안 배양하고, PBS로 매회 5분씩 2회 세척하였다. DAB 키트(Vector laboratories, Inc.,USA)에 따라 발색하고, 물로 3회 세척한 다음 헤마톡실린으로 30초 동안 대조염색하며, 흐르는 물에서 5분 동안 파란색으로 되돌린 다음, PBS로 1회 세척하였다. 구배 탈수하고 투명하게 한 다음 절편을 밀봉하며, 절편은 400배 광학 현미경으로 관찰 및 촬영하고, 촬영된 사진은 Imaging-Pro 소프트웨어로 양성 염색 광학 밀도 분석을 수행하였다.
성숙한 BDNF 및 이의 수용체는 중추신경계 내에 널리 분포되고, 중추신경계 발육 과정에서 뉴런의 생존, 분화, 성장 및 발육에 중요한 작용을 하며, 뉴런이 손상되어 사멸되는 것을 방지하고 뉴런의 병리학적 상태를 개선하며 손상된 뉴런의 재생 및 분화 등 생물학적 효과를 촉진할 수 있고, 성숙한 중추 및 말초 신경계의 뉴런의 생존 및 정상적인 생리학적 기능을 유지하는 데 필수적인 것이다[5].
결과에 따르면, 블랭크 대조군(도 18의 A) 마우스의 해마는 일정한 수준의 BDNF(화살표로 표시)를 갖고, 비히클군(도 18의 B) 마우스의 해마 BDNF 수준은 증가되며, 투여군 마우스의 해마 BDNF 수준은 비히클군보다 유의하게 높고(도 18의 C), 통계학적 차이가 유의에 근접한다(도 18의 D)(P=0.095). 이는 플라스미노겐이 정신분열증 모델 마우스의 해마 BDNF 수준의 증가를 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 19 알츠하이머 모델 마우스의 해마 BDNF의 발현을 촉진하는 플라스미노겐
23마리의 24주령 수컷 C57 마우스를 취하고, 모델링 전에 무게를 측정하며, 체중이 비정상인 마우스를 제거한 후 모든 마우스를 랜덤으로 두 그룹으로 나누었는 바, 블랭크 대조군 7마리와 모델군 16마리이다. 모든 마우스를 마취시키고, 마우스의 뇌 입체 해부도에 따라 해마의 과립층에 정위시키며, 그룹을 나눈 후 모든 마우스를 마취시키고, 마우스의 뇌 입체 해부도에 따라 해마의 과립층(브레그마에 따른 좌표 정위: AP-2.0 mm, ML±1.5 mm, DV 2.0 mm)에 정위시키며, 각 마우스의 양측에 천천히 미량으로 주사하고, 모델군 마우스는 Aβ1-42 올리고머 용액을 주사하며, 블랭크 대조군 마우스는 동일한 부피의 PBS 용액을 주사하고, 주사 속도는 0.4 μL/min이며, 주사 부피는 2 μL이다. 주사 완료 후, 주사기를 5 min 동안 정지한 후 천천히 빼내어, 알츠하이머 모델을 구축하였다[3]. Aβ1-42 올리고머 용액의 제조(10 μM): β-Amyloid(1-42)(제품번호: D2650, 제조업체: Sigma)를 취하고, 냉각된 헥사플루오로이소프로판올을 첨가하며, 조제 농도는 1 mg/mL이고, 실온에서 3일 동안 배치하며, 45 μL/튜브, 즉 10 nmol/mL로 분배하고, 흄후드에 밤새 배치하며, 25℃의 건조기에서 1시간 동안 건조시키고, -80℃에 보관하였다. 사용 시 각 튜브에 10 μl의 디메틸술폭시드 용액을 첨가하여 재용해시키고, 주사 시 990 μL의 멸균 PBS 용액을 첨가하며, 4℃에서 24 h 동안 배치한 후 사용하였다. 뇌 정위 주사 28일 후, 모든 마우스는 체중 및 Y 미로 검출을 수행하고, 검출 결과에 따라 블랭크 대조군, 모델군의 비정상 마우스를 제거하며, 여기서 모델군 마우스를 랜덤으로 두 그룹으로 나누었는 바, 비히클군 6마리의 마우스와 투여군 7마리의 마우스이고, 블랭크 대조군은 6마리의 마우스가 남았다. 비히클군 및 투여군 마우스는 투여하기 시작하고, 1일차로 기록하며, 투여군 마우스는 1 mg/0.1 ml/마리/일에 따라 플라스미노겐을 꼬리 정맥 주사하고, 비히클군 마우스는 0.1 ml/마리/일에 따라 비히클(4% 아르기닌+2% 글리신 용액)을 꼬리 정맥 주사하며, 28일 동안 연속 투여하고, 블랭크 대조군 마우스는 투여 처리를 하지 않았다. 29일차에 마우스를 희생시키고 뇌를 취하여 10% 포름알데히드에 24 ~ 48시간 동안 고정시켰다. 고정된 뇌 조직을 알코올 구배로 탈수하고 자일렌으로 투명하게 한 다음 파라핀 포매를 수행하였다. 절편 흑질을 정위하고, 절편의 두께는 4 μm이며, 절편을 탈납 및 재수화하고 물로 1회 세척하였다. PAP 펜으로 조직에 동그라미를 치고, 3% 과산화수소로 15분 동안 배양하며, 0.01 M의 PBS로 매회 5분씩 2회 세척하였다. 5%의 정상 염소 혈청액(Vector laboratories,Inc.,USA)으로 30분 동안 차단하고; 시간이 다 되면 염소 혈청을 버리고, 토끼 항 마우스 BDNF 항체(BosterBio,PB9075)를 적가하여 4℃에서 밤새 배양하며, 0.01 M의 PBS로 매회 5분씩 2회 세척하였다. 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam) 2차 항체를 실온에서 1시간 동안 배양하고, 0.01 M의 PBS로 매회 5분씩 2회 세척하였다. DAB 키트(Vector laboratories,Inc.,USA)에 따라 발색하고, 물로 3회 세척한 다음 헤마톡실린으로 30초 동안 대조염색하며, 흐르는 물로 5분 동안 세척하였다. 구배 알코올로 탈수하고 자일렌으로 투명하게 한 다음 중성 검으로 절편을 밀봉하며, 절편은 200배 광학 현미경으로 관찰하였다.
결과에 따르면, 블랭크 대조군(도 19의 A) 마우스의 해마는 일정한 수준의 BDNF(화살표로 표시)를 발현하고, 비히클군(도 19의 B) 마우스의 해마 BDNF의 발현은 블랭크 대조군보다 유의하게 적으며, 투여군(도 19의 C) 마우스의 해마 BDNF의 발현은 비히클군보다 유의하게 높고, 통계학적 차이가 현저하다(*는 P<0.05를 나타냄)(도 19의 D). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머 모델 마우스의 해마 BDNF의 발현을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 20 척수성 근위축증(SMA) 모델 마우스의 뇌 조직의 성숙한 NGF 형성을 촉진하는 플라스미노겐
FVB.Cg-Grm7Tg(SMN2)89Ahmb Smn1tm1MsdTg(SMN2*delta7)4299Ahmb/J 유전자 돌연변이 마우스(이하 SMNΔ7 SMA 마우스라고 약칭함)의 SMN1 유전자는 동형 접합 돌연변이를 갖고 인간 SMN2 유전자를 발현하며, 상기 마우스는 임상적 및 병리학적으로 인간 SMA와 유사하다. 사육 마우스는 미국 Jackson 실험실에서 구입하였다(혈통 번호: 005025).
생후 3일된 SMNΔ7 SMA 마우스를 7마리 취하고, 4마리는 비히클군 마우스로 하며, 첫 9일 동안은 매일 오전과 오후에 각각 6 μl의 소혈청 알부민 용액(5 mg/mL)을 1회 복강내 주사하고, 그 후 며칠 동안은 6 μl의 소혈청 알부민 용액(10 mg/mL)을 1일 1회 복강내 주사하며; 3마리는 투여군 마우스로 하고, 첫 9일 동안은 30 μg/6 μl에 따라 매일 오전과 오후에 각각 플라스미노겐을 1회 복강내 주사하며, 그 후 며칠 동안은 매일 60 μg/6 μl에 따라 플라스미노겐을 1회 복강내 주사하고; 4마리의 야생형 마우스를 취하여 블랭크 대조군으로 하며, 첫 9일 동안은 매일 오전과 오후에 각각 6 μl의 소혈청 알부민 용액(5 mg/mL)을 1회 복강내 주사하고, 10일차에 6 μl의 소혈청 알부민 용액(10 mg/mL)을 1일 1회 복강내 주사하였다. 12일차에 마우스를 희생시키고 뒷다리 근육 조직을 취하며, 조직 균질액을 제조하여 NGF 단백질의 Western blot 검출을 수행하였다. SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 45 min 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 활성화된 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 항 마우스 NGF 항체(Abcam, ab52918)를 첨가하고 실온에서 2 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J 소프트웨어로 각 밴드의 광학 밀도 값을 취하여 정량적 분석하였다.
신경 성장 인자(Nerve growth factor,NGF)는 신경 영양 인자 패밀리의 중요한 구성원이다. 체내에서 전구체 형태로 합성되고, 신호 펩티드, 선도 펩티드 및 성숙 펩티드를 포함한다. 연구에서는 신경 성장 인자의 NGF 전구체(Pro-NGF)가 절단되어 형성된 NGF와 반대 작용을 한다는 것을 보고하였다. Pro-NGF는 신경 세포 사멸을 촉진할 수 있다. 성숙한 NGF는 신경 세포의 성장, 발육, 분화, 생존 및 손상 후 재복구 등 과정에 관여하고, 중추 및 말초 뉴런의 기능적 발현에 대해서도 중요한 조절 작용을 한다[7]. NGF/Pro-NGF 비율=NGF 광학 밀도(OD)/Pro-NGF 광학 밀도(OD) 값.
결과에 따르면, 블랭크 대조군 마우스의 뇌 조직은 일정한 NGF/ProNGF 비율을 갖고, 투여군 마우스의 뇌 조직 NGF/ProNGF 비율은 비히클군 마우스보다 유의하게 높으며, 통계학적 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 20). 이는 플라스미노겐이 SMA 모델 마우스의 ProNGF의 NGF로의 형질전환을 촉진하고 성숙한 NGF의 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 21 정상 마우스의 뇌 균질물에서 Pro-NGF 절단 및 성숙한 NGF 형성을 촉진하는 플라스미노겐
11 ~ 12주령, 18 ~ 25 g의 C57BL/6J 수컷 마우스를 4마리 취하고 희생시킨 다음 전체 뇌를 취하여 무게를 측정하며, 150 mg 조직/mL PBS에 따라 각각 1×PBS(Thermo Fisher, PH 7.4; 10010-031)를 첨가하고, 4℃에서 균질화(1 min, 3 ~ 4회)하며, 균질화 후 4℃에서 원심분리(12000 rpm, 20 min)하며, 상층액, 즉 뇌 균질액을 취하여 새로운 EP 튜브에 넣었다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, pH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Pro-NGF(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 Pro-NGF의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P01138, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21. μL의 Pro-NGF(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 15% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 30 min 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 활성화된 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 항 인간 NGF 항체(Abcam,ab52918)를 첨가하고 실온에서 2 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 밴드 광학 밀도를 정량적 분석하였다.
NGF는 신경 영양 인자 패밀리의 중요한 구성원이다. 체내에서 전구체 형태로 합성되고, 신호 펩티드, 선도 펩티드 및 성숙 펩티드를 포함한다. 연구에서는 신경 성장 인자의 NGF 전구체(Pro-NGF)가 절단되어 형성된 NGF와 반대 작용을 한다는 것을 보고하였다. Pro-NGF는 신경 세포 사멸을 촉진할 수 있다[8]. 성숙한 NGF는 신경 세포의 성장, 발육, 분화, 생존 및 손상 후 재복구 등 과정에 관여하고, 중추 및 말초 뉴런의 기능적 발현에 대해서도 중요한 조절 작용을 한다[9].
결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐 투여군의 Pro-NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(*는 P<0.05를 나타내고, ***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐군의 NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 현저하다(도 21). 이는 플라스미노겐이 정상 마우스의 뇌 균질액 내 Pro-NGF 절단 및 성숙한 NGF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 22 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 Pro-NGF 절단을 촉진하여 성숙한 NGF를 형성하는 플라스미노겐
11주령 B6SJLTg(APPSwFlLon,PSEN1*M146L*L286V) 6799 Vas/Mmjax(FAD)(Stock Number: 034840)(FAD라고 약칭함) 마우스를 각각 4마리씩 취하여 희생시킨 다음 전체 뇌 조직을 취하고, 실시예 1과 같이 상층액 뇌 균질액을 제조하여 EP 튜브에 비축하였다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 비히클 대조군에 21.5 μL의 Pro-NGF(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 Pro-NGF의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P01138, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 플라스미노겐군에 21. μL의 Pro-NGF(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 15% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 30 min 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 활성화된 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 항 인간 NGF 항체(Abcam,ab52918)를 첨가하고 실온에서 2 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 밴드 광학 밀도를 정량적 분석하였다.
결과에 따르면, 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 Pro-NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하며(***는 P<0.001을 나타냄); 플라스미노겐군NGF의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 높고, 차이가 현저하다(도 22). 이는 플라스미노겐이 알츠하이머병 모델 마우스의 뇌 균질액 내 Pro-NGF 절단 및 성숙한 NGF 형성을 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 23 정상 마우스의 뇌 균질액에서 SOD-1 단백질 분해를 촉진하는 플라스미노겐
4마리의 11주령 C57BL/6(정상) 마우스를 취하여 희생시킨 다음 전체 뇌 조직을 취하고, 실시예 1과 같이 상층액 뇌 균질액을 제조하여 EP 튜브에 비축하였다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, pH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 SOD-1 단백질(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 SOD-1의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P00441, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21.5 μL의 SOD-1 단백질(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 실시예 1과 같이 전기영동, 쿠마시 브릴리언트 블루 염색한 다음, 탈색 및 정량적 스캐닝하였다.
과산화물제거효소-1(SOD-1)은 구리 이온과 아연 이온을 결합하는 금속 단백질로서, 반응성이높은 활성산소종인 초산화물을 산소 분자와 과산화수소로 전환하는데 중요한 작용을 발휘한다. 난치성 신경계 질환인 근위축성 축삭경화증(ALS)을 앓고 있는 일부 환자의 체내에서 SOD-1 유전자가 돌연변이되어, 잘못 접혀 비정상적인 입체 구조를 갖는 SOD-1이 척수의 운동 신경에서 축적되는 것으로 알려져 있다. 또한, SOD-1 코딩 유전자 돌연변이가 없는 원인불명형 산발성 ALS 환자의 뇌 척수액에서 독성이 높은 잘못 접힌 SOD-1이 검출되었다. 즉, SOD-1의 구조 이상은 ALS의 발병기전과 관련이 있을 수 있다[10].
결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1의 양은 비히클 대조군보다 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 23). 이는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 SOD-1 단백질 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 24 근위축성 축삭경화증(ALS) 모델 마우스의 뇌 균질액에서 SOD-1 단백질 분해를 촉진하는 플라스미노겐
8주령 B6.Cg-Tg(SOD1-G93A) 1Gur/J 유전자 변형 수컷 마우스(SOD1-G93A유전자 변형 마우스라고 약칭함)를 4마리 취하여 희생시킨 다음 전체 뇌 조직을 취하고, 실시예 6과 같이 상층액 뇌 균질액을 제조하여 EP 튜브에 비축하였다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 투여군으로 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, pH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 SOD-1 단백질(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 SOD-1의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P00441, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21.5 μL의 SOD-1 단백질(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질액을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 12% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 실시예 1과 같이 전기영동, 쿠마시 브릴리언트 블루 염색한 다음, 탈색 및 정량적 스캐닝하였다.
SOD1-G93A 유전자 변형 마우스는 근위축성 축삭경화증(Amyotrophiclateral sclerosis,ALS)의 연구에 널리 사용되는 모델 마우스이다[11].
결과에 따르면, SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 24). 이는 ALS 모델 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 SOD-1 단백질 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 25 정상 마우스의 뇌 균질액에서 SOD-1 단백질 분해를 촉진하는 플라스미노겐
4마리의 11주령C57BL/6(정상) 마우스를 취하여 희생시킨 다음 전체 뇌 조직을 취하고, 실시예 1과 같이 상층액 뇌 균질액을 제조하여 EP 튜브에 비축하였다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, pH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 SOD-1 단백질(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 SOD-1의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P00441, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21. μL의 SOD-1 단백질(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 15% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 30 min 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 활성화된 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 항 인간 SOD-1 항체(BOSTER Biological Technology,PB0453)를 첨가하고 실온에서 3 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 밴드 광학 밀도를 정량적 분석하였다.
결과에 따르면, 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 25). 이는 정상 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 SOD-1 단백질 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
실시예 26 근위축성 축삭경화증(ALS) 모델 마우스의 뇌 균질액에서 SOD-1 단백질 분해를 촉진하는 플라스미노겐
4마리의 8주령 B6.Cg-Tg(SOD1-G93A) 1Gur/J 유전자 변형 수컷 마우스(SOD1-G93A 유전자 변형 마우스라고 약칭함)를 취하여 희생시킨 다음 전체 뇌 조직을 취하고, 실시예 1과 같이 상층액 뇌 균질액을 제조하여 EP 튜브에 비축하였다.
Eppendorf(EP) 튜브를 취하여 각각 ① 블랭크군, ② 블랭크 대조군, ③ 비히클 대조군, ④ 플라스미노겐군을 설정하고, 각 그룹에 5개의 평행 그룹을 설정하였다. 블랭크군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 비히클 용액(10 mM의 시트르산나트륨, 2% 아르기닌염산염, 3% 만니톨, pH 7.4), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 블랭크 대조군에 21.5 μL의 생리식염수, 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하며; 비히클 대조군에 21.5 μL의 SOD-1 단백질(Nanjing GenScript Biotechnology Co., Ltd., 인간 SOD-1의 맞춤 제작 및 발현, UniProtKB-P00441, 1.0 mg/mL), 4.6 μL의 비히클 용액, 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물을 첨가하고; 플라스미노겐군에 21. μL의 SOD-1 단백질(1.0 mg/mL), 4.6 μL의 플라스미노겐 용액(2 mg/mL), 23.9 μL의 마우스 뇌 균질물에 첨가하였다. 각 그룹의 샘플을 첨가한 후, 37℃에서 6 h 동안 배양하고 50 μL의 0.1% 트리플루오로아세트산 용액을 각각 첨가하여 반응을 종결시켰다.
SDS-PAGE의 겔 조제 지침에 따라 15% 겔을 제조하였다. 각 그룹의 샘플은 각각 4×로딩 완충액(TaKaRa, e2139)과 3:1의 부피비로 골고루 혼합한 다음, 100℃에서 5 min 동안 가열하고, 냉각 후 2 min 동안 원심분리하며, 그 다음 20 μL의 샘플을 로딩하였다. 전기영동 조건은 30 V에서 30 min 동안 실행한 다음, 100 V에서 겔 바닥까지 전기영동하는 것이다. 전기영동 후 겔을 벗겨내고 활성화된 PVDF 필름(GE, A29433753)에 전이하며, 전기영동 조건은 15 V, 2.5 h이다. 전이된 PVDF 필름을 차단 용액(5% 탈지 에멀션)에 담그고 4℃의 냉장고에서 밤새 차단하며, TBST(0.01 M의 Tris-NaCl, pH 7.6 완충액)로 4회 세척한 다음, 토끼 항 인간 SOD-1 항체(BOSTER Biological Technology,PB0453)를 첨가하고 실온에서 3 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, 염소 항 토끼 IgG(HRP) 항체(Abcam, ab6721) 2차 항체를 첨가하고 실온에서 1 h 동안 배양하며, TBST로 4회 세척한 다음, PVDF 필름을 깨끗한 이미징 플레이트에 놓고, Immobilon Western HRP Substrate(MILLIPORE, WBKLS0100)를 첨가하여 발색하며, 바이오 분자 이미지 분석기로 촬영하고 Image J로 밴드 광학 밀도를 정량적 분석하였다.
결과에 따르면, SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐군의 SOD-1 단백질의 양은 비히클 대조군보다 유의하게 낮고, 차이가 매우 현저하다(***는 P<0.001을 나타냄)(도 26). 이는 SOD1-G93A 유전자 변형 마우스의 뇌 균질액에서 플라스미노겐이 SOD-1 단백질 분해를 효과적으로 촉진할 수 있음을 나타낸다.
(참고 문헌)
SEQUENCE LISTING
<110> TALENGEN INTERNATIONAL LIMITED
<120> METHOD AND DRUG FOR PROMOTING DEGRADATION OF MISFOLDED PROTEIN AND AGGREGATE THEREOF
<130> FE00368PCT
<150> 202010212897X
<151> 2020-03-24
<160> 14
<170> PatentIn version 3.5
<210> 1
<211> 2376
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<220>
<223> nucleotide sequence of the natural plasminogen(Glu-PLG,Glu-plasminogen)without the signal peptide
<400> 1
gagcctctgg atgactatgt gaatacccag ggggcttcac tgttcagtgt cactaagaag 60
cagctgggag caggaagtat agaagaatgt gcagcaaaat gtgaggagga cgaagaattc 120
acctgcaggg cattccaata tcacagtaaa gagcaacaat gtgtgataat ggctgaaaac 180
aggaagtcct ccataatcat taggatgaga gatgtagttt tatttgaaaa gaaagtgtat 240
ctctcagagt gcaagactgg gaatggaaag aactacagag ggacgatgtc caaaacaaaa 300
aatggcatca cctgtcaaaa atggagttcc acttctcccc acagacctag attctcacct 360
gctacacacc cctcagaggg actggaggag aactactgca ggaatccaga caacgatccg 420
caggggccct ggtgctatac tactgatcca gaaaagagat atgactactg cgacattctt 480
gagtgtgaag aggaatgtat gcattgcagt ggagaaaact atgacggcaa aatttccaag 540
accatgtctg gactggaatg ccaggcctgg gactctcaga gcccacacgc tcatggatac 600
attccttcca aatttccaaa caagaacctg aagaagaatt actgtcgtaa ccccgatagg 660
gagctgcggc cttggtgttt caccaccgac cccaacaagc gctgggaact ttgtgacatc 720
ccccgctgca caacacctcc accatcttct ggtcccacct accagtgtct gaagggaaca 780
ggtgaaaact atcgcgggaa tgtggctgtt accgtgtccg ggcacacctg tcagcactgg 840
agtgcacaga cccctcacac acataacagg acaccagaaa acttcccctg caaaaatttg 900
gatgaaaact actgccgcaa tcctgacgga aaaagggccc catggtgcca tacaaccaac 960
agccaagtgc ggtgggagta ctgtaagata ccgtcctgtg actcctcccc agtatccacg 1020
gaacaattgg ctcccacagc accacctgag ctaacccctg tggtccagga ctgctaccat 1080
ggtgatggac agagctaccg aggcacatcc tccaccacca ccacaggaaa gaagtgtcag 1140
tcttggtcat ctatgacacc acaccggcac cagaagaccc cagaaaacta cccaaatgct 1200
ggcctgacaa tgaactactg caggaatcca gatgccgata aaggcccctg gtgttttacc 1260
acagacccca gcgtcaggtg ggagtactgc aacctgaaaa aatgctcagg aacagaagcg 1320
agtgttgtag cacctccgcc tgttgtcctg cttccagatg tagagactcc ttccgaagaa 1380
gactgtatgt ttgggaatgg gaaaggatac cgaggcaaga gggcgaccac tgttactggg 1440
acgccatgcc aggactgggc tgcccaggag ccccatagac acagcatttt cactccagag 1500
acaaatccac gggcgggtct ggaaaaaaat tactgccgta accctgatgg tgatgtaggt 1560
ggtccctggt gctacacgac aaatccaaga aaactttacg actactgtga tgtccctcag 1620
tgtgcggccc cttcatttga ttgtgggaag cctcaagtgg agccgaagaa atgtcctgga 1680
agggttgtag gggggtgtgt ggcccaccca cattcctggc cctggcaagt cagtcttaga 1740
acaaggtttg gaatgcactt ctgtggaggc accttgatat ccccagagtg ggtgttgact 1800
gctgcccact gcttggagaa gtccccaagg ccttcatcct acaaggtcat cctgggtgca 1860
caccaagaag tgaatctcga accgcatgtt caggaaatag aagtgtctag gctgttcttg 1920
gagcccacac gaaaagatat tgccttgcta aagctaagca gtcctgccgt catcactgac 1980
aaagtaatcc cagcttgtct gccatcccca aattatgtgg tcgctgaccg gaccgaatgt 2040
ttcatcactg gctggggaga aacccaaggt acttttggag ctggccttct caaggaagcc 2100
cagctccctg tgattgagaa taaagtgtgc aatcgctatg agtttctgaa tggaagagtc 2160
caatccaccg aactctgtgc tgggcatttg gccggaggca ctgacagttg ccagggtgac 2220
agtggaggtc ctctggtttg cttcgagaag gacaaataca ttttacaagg agtcacttct 2280
tggggtcttg gctgtgcacg ccccaataag cctggtgtct atgttcgtgt ttcaaggttt 2340
gttacttgga ttgagggagt gatgagaaat aattaa 2376
<210> 2
<211> 791
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<220>
<223> amino acid sequence of the natural plasminogen (Glu-PLG,Glu-plasminogen) without the signal peptide
<400> 2
Glu Pro Leu Asp Asp Tyr Val Asn Thr Gln Gly Ala Ser Leu Phe Ser
1 5 10 15
Val Thr Lys Lys Gln Leu Gly Ala Gly Ser Ile Glu Glu Cys Ala Ala
20 25 30
Lys Cys Glu Glu Asp Glu Glu Phe Thr Cys Arg Ala Phe Gln Tyr His
35 40 45
Ser Lys Glu Gln Gln Cys Val Ile Met Ala Glu Asn Arg Lys Ser Ser
50 55 60
Ile Ile Ile Arg Met Arg Asp Val Val Leu Phe Glu Lys Lys Val Tyr
65 70 75 80
Leu Ser Glu Cys Lys Thr Gly Asn Gly Lys Asn Tyr Arg Gly Thr Met
85 90 95
Ser Lys Thr Lys Asn Gly Ile Thr Cys Gln Lys Trp Ser Ser Thr Ser
100 105 110
Pro His Arg Pro Arg Phe Ser Pro Ala Thr His Pro Ser Glu Gly Leu
115 120 125
Glu Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Asn Asp Pro Gln Gly Pro Trp
130 135 140
Cys Tyr Thr Thr Asp Pro Glu Lys Arg Tyr Asp Tyr Cys Asp Ile Leu
145 150 155 160
Glu Cys Glu Glu Glu Cys Met His Cys Ser Gly Glu Asn Tyr Asp Gly
165 170 175
Lys Ile Ser Lys Thr Met Ser Gly Leu Glu Cys Gln Ala Trp Asp Ser
180 185 190
Gln Ser Pro His Ala His Gly Tyr Ile Pro Ser Lys Phe Pro Asn Lys
195 200 205
Asn Leu Lys Lys Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Arg Glu Leu Arg Pro
210 215 220
Trp Cys Phe Thr Thr Asp Pro Asn Lys Arg Trp Glu Leu Cys Asp Ile
225 230 235 240
Pro Arg Cys Thr Thr Pro Pro Pro Ser Ser Gly Pro Thr Tyr Gln Cys
245 250 255
Leu Lys Gly Thr Gly Glu Asn Tyr Arg Gly Asn Val Ala Val Thr Val
260 265 270
Ser Gly His Thr Cys Gln His Trp Ser Ala Gln Thr Pro His Thr His
275 280 285
Asn Arg Thr Pro Glu Asn Phe Pro Cys Lys Asn Leu Asp Glu Asn Tyr
290 295 300
Cys Arg Asn Pro Asp Gly Lys Arg Ala Pro Trp Cys His Thr Thr Asn
305 310 315 320
Ser Gln Val Arg Trp Glu Tyr Cys Lys Ile Pro Ser Cys Asp Ser Ser
325 330 335
Pro Val Ser Thr Glu Gln Leu Ala Pro Thr Ala Pro Pro Glu Leu Thr
340 345 350
Pro Val Val Gln Asp Cys Tyr His Gly Asp Gly Gln Ser Tyr Arg Gly
355 360 365
Thr Ser Ser Thr Thr Thr Thr Gly Lys Lys Cys Gln Ser Trp Ser Ser
370 375 380
Met Thr Pro His Arg His Gln Lys Thr Pro Glu Asn Tyr Pro Asn Ala
385 390 395 400
Gly Leu Thr Met Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Ala Asp Lys Gly Pro
405 410 415
Trp Cys Phe Thr Thr Asp Pro Ser Val Arg Trp Glu Tyr Cys Asn Leu
420 425 430
Lys Lys Cys Ser Gly Thr Glu Ala Ser Val Val Ala Pro Pro Pro Val
435 440 445
Val Leu Leu Pro Asp Val Glu Thr Pro Ser Glu Glu Asp Cys Met Phe
450 455 460
Gly Asn Gly Lys Gly Tyr Arg Gly Lys Arg Ala Thr Thr Val Thr Gly
465 470 475 480
Thr Pro Cys Gln Asp Trp Ala Ala Gln Glu Pro His Arg His Ser Ile
485 490 495
Phe Thr Pro Glu Thr Asn Pro Arg Ala Gly Leu Glu Lys Asn Tyr Cys
500 505 510
Arg Asn Pro Asp Gly Asp Val Gly Gly Pro Trp Cys Tyr Thr Thr Asn
515 520 525
Pro Arg Lys Leu Tyr Asp Tyr Cys Asp Val Pro Gln Cys Ala Ala Pro
530 535 540
Ser Phe Asp Cys Gly Lys Pro Gln Val Glu Pro Lys Lys Cys Pro Gly
545 550 555 560
Arg Val Val Gly Gly Cys Val Ala His Pro His Ser Trp Pro Trp Gln
565 570 575
Val Ser Leu Arg Thr Arg Phe Gly Met His Phe Cys Gly Gly Thr Leu
580 585 590
Ile Ser Pro Glu Trp Val Leu Thr Ala Ala His Cys Leu Glu Lys Ser
595 600 605
Pro Arg Pro Ser Ser Tyr Lys Val Ile Leu Gly Ala His Gln Glu Val
610 615 620
Asn Leu Glu Pro His Val Gln Glu Ile Glu Val Ser Arg Leu Phe Leu
625 630 635 640
Glu Pro Thr Arg Lys Asp Ile Ala Leu Leu Lys Leu Ser Ser Pro Ala
645 650 655
Val Ile Thr Asp Lys Val Ile Pro Ala Cys Leu Pro Ser Pro Asn Tyr
660 665 670
Val Val Ala Asp Arg Thr Glu Cys Phe Ile Thr Gly Trp Gly Glu Thr
675 680 685
Gln Gly Thr Phe Gly Ala Gly Leu Leu Lys Glu Ala Gln Leu Pro Val
690 695 700
Ile Glu Asn Lys Val Cys Asn Arg Tyr Glu Phe Leu Asn Gly Arg Val
705 710 715 720
Gln Ser Thr Glu Leu Cys Ala Gly His Leu Ala Gly Gly Thr Asp Ser
725 730 735
Cys Gln Gly Asp Ser Gly Gly Pro Leu Val Cys Phe Glu Lys Asp Lys
740 745 750
Tyr Ile Leu Gln Gly Val Thr Ser Trp Gly Leu Gly Cys Ala Arg Pro
755 760 765
Asn Lys Pro Gly Val Tyr Val Arg Val Ser Arg Phe Val Thr Trp Ile
770 775 780
Glu Gly Val Met Arg Asn Asn
785 790
<210> 3
<211> 2433
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<220>
<223> nucleotide sequence of the natural plasminogen(from swiss prot)with the signal peptide
<400> 3
atggaacata aggaagtggt tcttctactt cttttatttc tgaaatcagg tcaaggagag 60
cctctggatg actatgtgaa tacccagggg gcttcactgt tcagtgtcac taagaagcag 120
ctgggagcag gaagtataga agaatgtgca gcaaaatgtg aggaggacga agaattcacc 180
tgcagggcat tccaatatca cagtaaagag caacaatgtg tgataatggc tgaaaacagg 240
aagtcctcca taatcattag gatgagagat gtagttttat ttgaaaagaa agtgtatctc 300
tcagagtgca agactgggaa tggaaagaac tacagaggga cgatgtccaa aacaaaaaat 360
ggcatcacct gtcaaaaatg gagttccact tctccccaca gacctagatt ctcacctgct 420
acacacccct cagagggact ggaggagaac tactgcagga atccagacaa cgatccgcag 480
gggccctggt gctatactac tgatccagaa aagagatatg actactgcga cattcttgag 540
tgtgaagagg aatgtatgca ttgcagtgga gaaaactatg acggcaaaat ttccaagacc 600
atgtctggac tggaatgcca ggcctgggac tctcagagcc cacacgctca tggatacatt 660
ccttccaaat ttccaaacaa gaacctgaag aagaattact gtcgtaaccc cgatagggag 720
ctgcggcctt ggtgtttcac caccgacccc aacaagcgct gggaactttg tgacatcccc 780
cgctgcacaa cacctccacc atcttctggt cccacctacc agtgtctgaa gggaacaggt 840
gaaaactatc gcgggaatgt ggctgttacc gtgtccgggc acacctgtca gcactggagt 900
gcacagaccc ctcacacaca taacaggaca ccagaaaact tcccctgcaa aaatttggat 960
gaaaactact gccgcaatcc tgacggaaaa agggccccat ggtgccatac aaccaacagc 1020
caagtgcggt gggagtactg taagataccg tcctgtgact cctccccagt atccacggaa 1080
caattggctc ccacagcacc acctgagcta acccctgtgg tccaggactg ctaccatggt 1140
gatggacaga gctaccgagg cacatcctcc accaccacca caggaaagaa gtgtcagtct 1200
tggtcatcta tgacaccaca ccggcaccag aagaccccag aaaactaccc aaatgctggc 1260
ctgacaatga actactgcag gaatccagat gccgataaag gcccctggtg ttttaccaca 1320
gaccccagcg tcaggtggga gtactgcaac ctgaaaaaat gctcaggaac agaagcgagt 1380
gttgtagcac ctccgcctgt tgtcctgctt ccagatgtag agactccttc cgaagaagac 1440
tgtatgtttg ggaatgggaa aggataccga ggcaagaggg cgaccactgt tactgggacg 1500
ccatgccagg actgggctgc ccaggagccc catagacaca gcattttcac tccagagaca 1560
aatccacggg cgggtctgga aaaaaattac tgccgtaacc ctgatggtga tgtaggtggt 1620
ccctggtgct acacgacaaa tccaagaaaa ctttacgact actgtgatgt ccctcagtgt 1680
gcggcccctt catttgattg tgggaagcct caagtggagc cgaagaaatg tcctggaagg 1740
gttgtagggg ggtgtgtggc ccacccacat tcctggccct ggcaagtcag tcttagaaca 1800
aggtttggaa tgcacttctg tggaggcacc ttgatatccc cagagtgggt gttgactgct 1860
gcccactgct tggagaagtc cccaaggcct tcatcctaca aggtcatcct gggtgcacac 1920
caagaagtga atctcgaacc gcatgttcag gaaatagaag tgtctaggct gttcttggag 1980
cccacacgaa aagatattgc cttgctaaag ctaagcagtc ctgccgtcat cactgacaaa 2040
gtaatcccag cttgtctgcc atccccaaat tatgtggtcg ctgaccggac cgaatgtttc 2100
atcactggct ggggagaaac ccaaggtact tttggagctg gccttctcaa ggaagcccag 2160
ctccctgtga ttgagaataa agtgtgcaat cgctatgagt ttctgaatgg aagagtccaa 2220
tccaccgaac tctgtgctgg gcatttggcc ggaggcactg acagttgcca gggtgacagt 2280
ggaggtcctc tggtttgctt cgagaaggac aaatacattt tacaaggagt cacttcttgg 2340
ggtcttggct gtgcacgccc caataagcct ggtgtctatg ttcgtgtttc aaggtttgtt 2400
acttggattg agggagtgat gagaaataat taa 2433
<210> 4
<211> 810
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<220>
<223> amino acid sequence of the natural plasminogen(from swiss prot)with the signal peptide
<400> 4
Met Glu His Lys Glu Val Val Leu Leu Leu Leu Leu Phe Leu Lys Ser
1 5 10 15
Gly Gln Gly Glu Pro Leu Asp Asp Tyr Val Asn Thr Gln Gly Ala Ser
20 25 30
Leu Phe Ser Val Thr Lys Lys Gln Leu Gly Ala Gly Ser Ile Glu Glu
35 40 45
Cys Ala Ala Lys Cys Glu Glu Asp Glu Glu Phe Thr Cys Arg Ala Phe
50 55 60
Gln Tyr His Ser Lys Glu Gln Gln Cys Val Ile Met Ala Glu Asn Arg
65 70 75 80
Lys Ser Ser Ile Ile Ile Arg Met Arg Asp Val Val Leu Phe Glu Lys
85 90 95
Lys Val Tyr Leu Ser Glu Cys Lys Thr Gly Asn Gly Lys Asn Tyr Arg
100 105 110
Gly Thr Met Ser Lys Thr Lys Asn Gly Ile Thr Cys Gln Lys Trp Ser
115 120 125
Ser Thr Ser Pro His Arg Pro Arg Phe Ser Pro Ala Thr His Pro Ser
130 135 140
Glu Gly Leu Glu Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Asn Asp Pro Gln
145 150 155 160
Gly Pro Trp Cys Tyr Thr Thr Asp Pro Glu Lys Arg Tyr Asp Tyr Cys
165 170 175
Asp Ile Leu Glu Cys Glu Glu Glu Cys Met His Cys Ser Gly Glu Asn
180 185 190
Tyr Asp Gly Lys Ile Ser Lys Thr Met Ser Gly Leu Glu Cys Gln Ala
195 200 205
Trp Asp Ser Gln Ser Pro His Ala His Gly Tyr Ile Pro Ser Lys Phe
210 215 220
Pro Asn Lys Asn Leu Lys Lys Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Arg Glu
225 230 235 240
Leu Arg Pro Trp Cys Phe Thr Thr Asp Pro Asn Lys Arg Trp Glu Leu
245 250 255
Cys Asp Ile Pro Arg Cys Thr Thr Pro Pro Pro Ser Ser Gly Pro Thr
260 265 270
Tyr Gln Cys Leu Lys Gly Thr Gly Glu Asn Tyr Arg Gly Asn Val Ala
275 280 285
Val Thr Val Ser Gly His Thr Cys Gln His Trp Ser Ala Gln Thr Pro
290 295 300
His Thr His Asn Arg Thr Pro Glu Asn Phe Pro Cys Lys Asn Leu Asp
305 310 315 320
Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Gly Lys Arg Ala Pro Trp Cys His
325 330 335
Thr Thr Asn Ser Gln Val Arg Trp Glu Tyr Cys Lys Ile Pro Ser Cys
340 345 350
Asp Ser Ser Pro Val Ser Thr Glu Gln Leu Ala Pro Thr Ala Pro Pro
355 360 365
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370 375 380
Tyr Arg Gly Thr Ser Ser Thr Thr Thr Thr Gly Lys Lys Cys Gln Ser
385 390 395 400
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485 490 495
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500 505 510
His Ser Ile Phe Thr Pro Glu Thr Asn Pro Arg Ala Gly Leu Glu Lys
515 520 525
Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Gly Asp Val Gly Gly Pro Trp Cys Tyr
530 535 540
Thr Thr Asn Pro Arg Lys Leu Tyr Asp Tyr Cys Asp Val Pro Gln Cys
545 550 555 560
Ala Ala Pro Ser Phe Asp Cys Gly Lys Pro Gln Val Glu Pro Lys Lys
565 570 575
Cys Pro Gly Arg Val Val Gly Gly Cys Val Ala His Pro His Ser Trp
580 585 590
Pro Trp Gln Val Ser Leu Arg Thr Arg Phe Gly Met His Phe Cys Gly
595 600 605
Gly Thr Leu Ile Ser Pro Glu Trp Val Leu Thr Ala Ala His Cys Leu
610 615 620
Glu Lys Ser Pro Arg Pro Ser Ser Tyr Lys Val Ile Leu Gly Ala His
625 630 635 640
Gln Glu Val Asn Leu Glu Pro His Val Gln Glu Ile Glu Val Ser Arg
645 650 655
Leu Phe Leu Glu Pro Thr Arg Lys Asp Ile Ala Leu Leu Lys Leu Ser
660 665 670
Ser Pro Ala Val Ile Thr Asp Lys Val Ile Pro Ala Cys Leu Pro Ser
675 680 685
Pro Asn Tyr Val Val Ala Asp Arg Thr Glu Cys Phe Ile Thr Gly Trp
690 695 700
Gly Glu Thr Gln Gly Thr Phe Gly Ala Gly Leu Leu Lys Glu Ala Gln
705 710 715 720
Leu Pro Val Ile Glu Asn Lys Val Cys Asn Arg Tyr Glu Phe Leu Asn
725 730 735
Gly Arg Val Gln Ser Thr Glu Leu Cys Ala Gly His Leu Ala Gly Gly
740 745 750
Thr Asp Ser Cys Gln Gly Asp Ser Gly Gly Pro Leu Val Cys Phe Glu
755 760 765
Lys Asp Lys Tyr Ile Leu Gln Gly Val Thr Ser Trp Gly Leu Gly Cys
770 775 780
Ala Arg Pro Asn Lys Pro Gly Val Tyr Val Arg Val Ser Arg Phe Val
785 790 795 800
Thr Trp Ile Glu Gly Val Met Arg Asn Asn
805 810
<210> 5
<211> 2145
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<220>
<223> nucleotide sequence of LYS77-PLG(Lys-plasminogen)
<400> 5
aaagtgtatc tctcagagtg caagactggg aatggaaaga actacagagg gacgatgtcc 60
aaaacaaaaa atggcatcac ctgtcaaaaa tggagttcca cttctcccca cagacctaga 120
ttctcacctg ctacacaccc ctcagaggga ctggaggaga actactgcag gaatccagac 180
aacgatccgc aggggccctg gtgctatact actgatccag aaaagagata tgactactgc 240
gacattcttg agtgtgaaga ggaatgtatg cattgcagtg gagaaaacta tgacggcaaa 300
atttccaaga ccatgtctgg actggaatgc caggcctggg actctcagag cccacacgct 360
catggataca ttccttccaa atttccaaac aagaacctga agaagaatta ctgtcgtaac 420
cccgataggg agctgcggcc ttggtgtttc accaccgacc ccaacaagcg ctgggaactt 480
tgtgacatcc cccgctgcac aacacctcca ccatcttctg gtcccaccta ccagtgtctg 540
aagggaacag gtgaaaacta tcgcgggaat gtggctgtta ccgtgtccgg gcacacctgt 600
cagcactgga gtgcacagac ccctcacaca cataacagga caccagaaaa cttcccctgc 660
aaaaatttgg atgaaaacta ctgccgcaat cctgacggaa aaagggcccc atggtgccat 720
acaaccaaca gccaagtgcg gtgggagtac tgtaagatac cgtcctgtga ctcctcccca 780
gtatccacgg aacaattggc tcccacagca ccacctgagc taacccctgt ggtccaggac 840
tgctaccatg gtgatggaca gagctaccga ggcacatcct ccaccaccac cacaggaaag 900
aagtgtcagt cttggtcatc tatgacacca caccggcacc agaagacccc agaaaactac 960
ccaaatgctg gcctgacaat gaactactgc aggaatccag atgccgataa aggcccctgg 1020
tgttttacca cagaccccag cgtcaggtgg gagtactgca acctgaaaaa atgctcagga 1080
acagaagcga gtgttgtagc acctccgcct gttgtcctgc ttccagatgt agagactcct 1140
tccgaagaag actgtatgtt tgggaatggg aaaggatacc gaggcaagag ggcgaccact 1200
gttactggga cgccatgcca ggactgggct gcccaggagc cccatagaca cagcattttc 1260
actccagaga caaatccacg ggcgggtctg gaaaaaaatt actgccgtaa ccctgatggt 1320
gatgtaggtg gtccctggtg ctacacgaca aatccaagaa aactttacga ctactgtgat 1380
gtccctcagt gtgcggcccc ttcatttgat tgtgggaagc ctcaagtgga gccgaagaaa 1440
tgtcctggaa gggttgtagg ggggtgtgtg gcccacccac attcctggcc ctggcaagtc 1500
agtcttagaa caaggtttgg aatgcacttc tgtggaggca ccttgatatc cccagagtgg 1560
gtgttgactg ctgcccactg cttggagaag tccccaaggc cttcatccta caaggtcatc 1620
ctgggtgcac accaagaagt gaatctcgaa ccgcatgttc aggaaataga agtgtctagg 1680
ctgttcttgg agcccacacg aaaagatatt gccttgctaa agctaagcag tcctgccgtc 1740
atcactgaca aagtaatccc agcttgtctg ccatccccaa attatgtggt cgctgaccgg 1800
accgaatgtt tcatcactgg ctggggagaa acccaaggta cttttggagc tggccttctc 1860
aaggaagccc agctccctgt gattgagaat aaagtgtgca atcgctatga gtttctgaat 1920
ggaagagtcc aatccaccga actctgtgct gggcatttgg ccggaggcac tgacagttgc 1980
cagggtgaca gtggaggtcc tctggtttgc ttcgagaagg acaaatacat tttacaagga 2040
gtcacttctt ggggtcttgg ctgtgcacgc cccaataagc ctggtgtcta tgttcgtgtt 2100
tcaaggtttg ttacttggat tgagggagtg atgagaaata attaa 2145
<210> 6
<211> 714
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<220>
<223> amino acid sequence of LYS77-PLG(Lys-plasminogen)
<400> 6
Lys Val Tyr Leu Ser Glu Cys Lys Thr Gly Asn Gly Lys Asn Tyr Arg
1 5 10 15
Gly Thr Met Ser Lys Thr Lys Asn Gly Ile Thr Cys Gln Lys Trp Ser
20 25 30
Ser Thr Ser Pro His Arg Pro Arg Phe Ser Pro Ala Thr His Pro Ser
35 40 45
Glu Gly Leu Glu Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Asn Asp Pro Gln
50 55 60
Gly Pro Trp Cys Tyr Thr Thr Asp Pro Glu Lys Arg Tyr Asp Tyr Cys
65 70 75 80
Asp Ile Leu Glu Cys Glu Glu Glu Cys Met His Cys Ser Gly Glu Asn
85 90 95
Tyr Asp Gly Lys Ile Ser Lys Thr Met Ser Gly Leu Glu Cys Gln Ala
100 105 110
Trp Asp Ser Gln Ser Pro His Ala His Gly Tyr Ile Pro Ser Lys Phe
115 120 125
Pro Asn Lys Asn Leu Lys Lys Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Arg Glu
130 135 140
Leu Arg Pro Trp Cys Phe Thr Thr Asp Pro Asn Lys Arg Trp Glu Leu
145 150 155 160
Cys Asp Ile Pro Arg Cys Thr Thr Pro Pro Pro Ser Ser Gly Pro Thr
165 170 175
Tyr Gln Cys Leu Lys Gly Thr Gly Glu Asn Tyr Arg Gly Asn Val Ala
180 185 190
Val Thr Val Ser Gly His Thr Cys Gln His Trp Ser Ala Gln Thr Pro
195 200 205
His Thr His Asn Arg Thr Pro Glu Asn Phe Pro Cys Lys Asn Leu Asp
210 215 220
Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Gly Lys Arg Ala Pro Trp Cys His
225 230 235 240
Thr Thr Asn Ser Gln Val Arg Trp Glu Tyr Cys Lys Ile Pro Ser Cys
245 250 255
Asp Ser Ser Pro Val Ser Thr Glu Gln Leu Ala Pro Thr Ala Pro Pro
260 265 270
Glu Leu Thr Pro Val Val Gln Asp Cys Tyr His Gly Asp Gly Gln Ser
275 280 285
Tyr Arg Gly Thr Ser Ser Thr Thr Thr Thr Gly Lys Lys Cys Gln Ser
290 295 300
Trp Ser Ser Met Thr Pro His Arg His Gln Lys Thr Pro Glu Asn Tyr
305 310 315 320
Pro Asn Ala Gly Leu Thr Met Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Ala Asp
325 330 335
Lys Gly Pro Trp Cys Phe Thr Thr Asp Pro Ser Val Arg Trp Glu Tyr
340 345 350
Cys Asn Leu Lys Lys Cys Ser Gly Thr Glu Ala Ser Val Val Ala Pro
355 360 365
Pro Pro Val Val Leu Leu Pro Asp Val Glu Thr Pro Ser Glu Glu Asp
370 375 380
Cys Met Phe Gly Asn Gly Lys Gly Tyr Arg Gly Lys Arg Ala Thr Thr
385 390 395 400
Val Thr Gly Thr Pro Cys Gln Asp Trp Ala Ala Gln Glu Pro His Arg
405 410 415
His Ser Ile Phe Thr Pro Glu Thr Asn Pro Arg Ala Gly Leu Glu Lys
420 425 430
Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Gly Asp Val Gly Gly Pro Trp Cys Tyr
435 440 445
Thr Thr Asn Pro Arg Lys Leu Tyr Asp Tyr Cys Asp Val Pro Gln Cys
450 455 460
Ala Ala Pro Ser Phe Asp Cys Gly Lys Pro Gln Val Glu Pro Lys Lys
465 470 475 480
Cys Pro Gly Arg Val Val Gly Gly Cys Val Ala His Pro His Ser Trp
485 490 495
Pro Trp Gln Val Ser Leu Arg Thr Arg Phe Gly Met His Phe Cys Gly
500 505 510
Gly Thr Leu Ile Ser Pro Glu Trp Val Leu Thr Ala Ala His Cys Leu
515 520 525
Glu Lys Ser Pro Arg Pro Ser Ser Tyr Lys Val Ile Leu Gly Ala His
530 535 540
Gln Glu Val Asn Leu Glu Pro His Val Gln Glu Ile Glu Val Ser Arg
545 550 555 560
Leu Phe Leu Glu Pro Thr Arg Lys Asp Ile Ala Leu Leu Lys Leu Ser
565 570 575
Ser Pro Ala Val Ile Thr Asp Lys Val Ile Pro Ala Cys Leu Pro Ser
580 585 590
Pro Asn Tyr Val Val Ala Asp Arg Thr Glu Cys Phe Ile Thr Gly Trp
595 600 605
Gly Glu Thr Gln Gly Thr Phe Gly Ala Gly Leu Leu Lys Glu Ala Gln
610 615 620
Leu Pro Val Ile Glu Asn Lys Val Cys Asn Arg Tyr Glu Phe Leu Asn
625 630 635 640
Gly Arg Val Gln Ser Thr Glu Leu Cys Ala Gly His Leu Ala Gly Gly
645 650 655
Thr Asp Ser Cys Gln Gly Asp Ser Gly Gly Pro Leu Val Cys Phe Glu
660 665 670
Lys Asp Lys Tyr Ile Leu Gln Gly Val Thr Ser Trp Gly Leu Gly Cys
675 680 685
Ala Arg Pro Asn Lys Pro Gly Val Tyr Val Arg Val Ser Arg Phe Val
690 695 700
Thr Trp Ile Glu Gly Val Met Arg Asn Asn
705 710
<210> 7
<211> 1245
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<220>
<223> nucleotide sequence of delta-plg(delta-plasminogen)
<400> 7
gagcctctgg atgactatgt gaatacccag ggggcttcac tgttcagtgt cactaagaag 60
cagctgggag caggaagtat agaagaatgt gcagcaaaat gtgaggagga cgaagaattc 120
acctgcaggg cattccaata tcacagtaaa gagcaacaat gtgtgataat ggctgaaaac 180
aggaagtcct ccataatcat taggatgaga gatgtagttt tatttgaaaa gaaagtgtat 240
ctctcagagt gcaagactgg gaatggaaag aactacagag ggacgatgtc caaaacaaaa 300
aatggcatca cctgtcaaaa atggagttcc acttctcccc acagacctag attctcacct 360
gctacacacc cctcagaggg actggaggag aactactgca ggaatccaga caacgatccg 420
caggggccct ggtgctatac tactgatcca gaaaagagat atgactactg cgacattctt 480
gagtgtgaag aggcggcccc ttcatttgat tgtgggaagc ctcaagtgga gccgaagaaa 540
tgtcctggaa gggttgtagg ggggtgtgtg gcccacccac attcctggcc ctggcaagtc 600
agtcttagaa caaggtttgg aatgcacttc tgtggaggca ccttgatatc cccagagtgg 660
gtgttgactg ctgcccactg cttggagaag tccccaaggc cttcatccta caaggtcatc 720
ctgggtgcac accaagaagt gaatctcgaa ccgcatgttc aggaaataga agtgtctagg 780
ctgttcttgg agcccacacg aaaagatatt gccttgctaa agctaagcag tcctgccgtc 840
atcactgaca aagtaatccc agcttgtctg ccatccccaa attatgtggt cgctgaccgg 900
accgaatgtt tcatcactgg ctggggagaa acccaaggta cttttggagc tggccttctc 960
aaggaagccc agctccctgt gattgagaat aaagtgtgca atcgctatga gtttctgaat 1020
ggaagagtcc aatccaccga actctgtgct gggcatttgg ccggaggcac tgacagttgc 1080
cagggtgaca gtggaggtcc tctggtttgc ttcgagaagg acaaatacat tttacaagga 1140
gtcacttctt ggggtcttgg ctgtgcacgc cccaataagc ctggtgtcta tgttcgtgtt 1200
tcaaggtttg ttacttggat tgagggagtg atgagaaata attaa 1245
<210> 8
<211> 414
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<220>
<223> amino acid sequence of delta-plg(delta-plasminogen)
<400> 8
Glu Pro Leu Asp Asp Tyr Val Asn Thr Gln Gly Ala Ser Leu Phe Ser
1 5 10 15
Val Thr Lys Lys Gln Leu Gly Ala Gly Ser Ile Glu Glu Cys Ala Ala
20 25 30
Lys Cys Glu Glu Asp Glu Glu Phe Thr Cys Arg Ala Phe Gln Tyr His
35 40 45
Ser Lys Glu Gln Gln Cys Val Ile Met Ala Glu Asn Arg Lys Ser Ser
50 55 60
Ile Ile Ile Arg Met Arg Asp Val Val Leu Phe Glu Lys Lys Val Tyr
65 70 75 80
Leu Ser Glu Cys Lys Thr Gly Asn Gly Lys Asn Tyr Arg Gly Thr Met
85 90 95
Ser Lys Thr Lys Asn Gly Ile Thr Cys Gln Lys Trp Ser Ser Thr Ser
100 105 110
Pro His Arg Pro Arg Phe Ser Pro Ala Thr His Pro Ser Glu Gly Leu
115 120 125
Glu Glu Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Asn Asp Pro Gln Gly Pro Trp
130 135 140
Cys Tyr Thr Thr Asp Pro Glu Lys Arg Tyr Asp Tyr Cys Asp Ile Leu
145 150 155 160
Glu Cys Glu Glu Ala Ala Pro Ser Phe Asp Cys Gly Lys Pro Gln Val
165 170 175
Glu Pro Lys Lys Cys Pro Gly Arg Val Val Gly Gly Cys Val Ala His
180 185 190
Pro His Ser Trp Pro Trp Gln Val Ser Leu Arg Thr Arg Phe Gly Met
195 200 205
His Phe Cys Gly Gly Thr Leu Ile Ser Pro Glu Trp Val Leu Thr Ala
210 215 220
Ala His Cys Leu Glu Lys Ser Pro Arg Pro Ser Ser Tyr Lys Val Ile
225 230 235 240
Leu Gly Ala His Gln Glu Val Asn Leu Glu Pro His Val Gln Glu Ile
245 250 255
Glu Val Ser Arg Leu Phe Leu Glu Pro Thr Arg Lys Asp Ile Ala Leu
260 265 270
Leu Lys Leu Ser Ser Pro Ala Val Ile Thr Asp Lys Val Ile Pro Ala
275 280 285
Cys Leu Pro Ser Pro Asn Tyr Val Val Ala Asp Arg Thr Glu Cys Phe
290 295 300
Ile Thr Gly Trp Gly Glu Thr Gln Gly Thr Phe Gly Ala Gly Leu Leu
305 310 315 320
Lys Glu Ala Gln Leu Pro Val Ile Glu Asn Lys Val Cys Asn Arg Tyr
325 330 335
Glu Phe Leu Asn Gly Arg Val Gln Ser Thr Glu Leu Cys Ala Gly His
340 345 350
Leu Ala Gly Gly Thr Asp Ser Cys Gln Gly Asp Ser Gly Gly Pro Leu
355 360 365
Val Cys Phe Glu Lys Asp Lys Tyr Ile Leu Gln Gly Val Thr Ser Trp
370 375 380
Gly Leu Gly Cys Ala Arg Pro Asn Lys Pro Gly Val Tyr Val Arg Val
385 390 395 400
Ser Arg Phe Val Thr Trp Ile Glu Gly Val Met Arg Asn Asn
405 410
<210> 9
<211> 1104
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<220>
<223> nucleotide sequence of Mini-plg(mini-plasminogen)
<400> 9
gtcaggtggg agtactgcaa cctgaaaaaa tgctcaggaa cagaagcgag tgttgtagca 60
cctccgcctg ttgtcctgct tccagatgta gagactcctt ccgaagaaga ctgtatgttt 120
gggaatggga aaggataccg aggcaagagg gcgaccactg ttactgggac gccatgccag 180
gactgggctg cccaggagcc ccatagacac agcattttca ctccagagac aaatccacgg 240
gcgggtctgg aaaaaaatta ctgccgtaac cctgatggtg atgtaggtgg tccctggtgc 300
tacacgacaa atccaagaaa actttacgac tactgtgatg tccctcagtg tgcggcccct 360
tcatttgatt gtgggaagcc tcaagtggag ccgaagaaat gtcctggaag ggttgtaggg 420
gggtgtgtgg cccacccaca ttcctggccc tggcaagtca gtcttagaac aaggtttgga 480
atgcacttct gtggaggcac cttgatatcc ccagagtggg tgttgactgc tgcccactgc 540
ttggagaagt ccccaaggcc ttcatcctac aaggtcatcc tgggtgcaca ccaagaagtg 600
aatctcgaac cgcatgttca ggaaatagaa gtgtctaggc tgttcttgga gcccacacga 660
aaagatattg ccttgctaaa gctaagcagt cctgccgtca tcactgacaa agtaatccca 720
gcttgtctgc catccccaaa ttatgtggtc gctgaccgga ccgaatgttt catcactggc 780
tggggagaaa cccaaggtac ttttggagct ggccttctca aggaagccca gctccctgtg 840
attgagaata aagtgtgcaa tcgctatgag tttctgaatg gaagagtcca atccaccgaa 900
ctctgtgctg ggcatttggc cggaggcact gacagttgcc agggtgacag tggaggtcct 960
ctggtttgct tcgagaagga caaatacatt ttacaaggag tcacttcttg gggtcttggc 1020
tgtgcacgcc ccaataagcc tggtgtctat gttcgtgttt caaggtttgt tacttggatt 1080
gagggagtga tgagaaataa ttaa 1104
<210> 10
<211> 367
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<220>
<223> amino acid sequence of Mini-plg(mini-plasminogen)
<400> 10
Val Arg Trp Glu Tyr Cys Asn Leu Lys Lys Cys Ser Gly Thr Glu Ala
1 5 10 15
Ser Val Val Ala Pro Pro Pro Val Val Leu Leu Pro Asp Val Glu Thr
20 25 30
Pro Ser Glu Glu Asp Cys Met Phe Gly Asn Gly Lys Gly Tyr Arg Gly
35 40 45
Lys Arg Ala Thr Thr Val Thr Gly Thr Pro Cys Gln Asp Trp Ala Ala
50 55 60
Gln Glu Pro His Arg His Ser Ile Phe Thr Pro Glu Thr Asn Pro Arg
65 70 75 80
Ala Gly Leu Glu Lys Asn Tyr Cys Arg Asn Pro Asp Gly Asp Val Gly
85 90 95
Gly Pro Trp Cys Tyr Thr Thr Asn Pro Arg Lys Leu Tyr Asp Tyr Cys
100 105 110
Asp Val Pro Gln Cys Ala Ala Pro Ser Phe Asp Cys Gly Lys Pro Gln
115 120 125
Val Glu Pro Lys Lys Cys Pro Gly Arg Val Val Gly Gly Cys Val Ala
130 135 140
His Pro His Ser Trp Pro Trp Gln Val Ser Leu Arg Thr Arg Phe Gly
145 150 155 160
Met His Phe Cys Gly Gly Thr Leu Ile Ser Pro Glu Trp Val Leu Thr
165 170 175
Ala Ala His Cys Leu Glu Lys Ser Pro Arg Pro Ser Ser Tyr Lys Val
180 185 190
Ile Leu Gly Ala His Gln Glu Val Asn Leu Glu Pro His Val Gln Glu
195 200 205
Ile Glu Val Ser Arg Leu Phe Leu Glu Pro Thr Arg Lys Asp Ile Ala
210 215 220
Leu Leu Lys Leu Ser Ser Pro Ala Val Ile Thr Asp Lys Val Ile Pro
225 230 235 240
Ala Cys Leu Pro Ser Pro Asn Tyr Val Val Ala Asp Arg Thr Glu Cys
245 250 255
Phe Ile Thr Gly Trp Gly Glu Thr Gln Gly Thr Phe Gly Ala Gly Leu
260 265 270
Leu Lys Glu Ala Gln Leu Pro Val Ile Glu Asn Lys Val Cys Asn Arg
275 280 285
Tyr Glu Phe Leu Asn Gly Arg Val Gln Ser Thr Glu Leu Cys Ala Gly
290 295 300
His Leu Ala Gly Gly Thr Asp Ser Cys Gln Gly Asp Ser Gly Gly Pro
305 310 315 320
Leu Val Cys Phe Glu Lys Asp Lys Tyr Ile Leu Gln Gly Val Thr Ser
325 330 335
Trp Gly Leu Gly Cys Ala Arg Pro Asn Lys Pro Gly Val Tyr Val Arg
340 345 350
Val Ser Arg Phe Val Thr Trp Ile Glu Gly Val Met Arg Asn Asn
355 360 365
<210> 11
<211> 750
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<220>
<223> nucleotide sequence of Micro-plg(micro-plasminogen)
<400> 11
gccccttcat ttgattgtgg gaagcctcaa gtggagccga agaaatgtcc tggaagggtt 60
gtaggggggt gtgtggccca cccacattcc tggccctggc aagtcagtct tagaacaagg 120
tttggaatgc acttctgtgg aggcaccttg atatccccag agtgggtgtt gactgctgcc 180
cactgcttgg agaagtcccc aaggccttca tcctacaagg tcatcctggg tgcacaccaa 240
gaagtgaatc tcgaaccgca tgttcaggaa atagaagtgt ctaggctgtt cttggagccc 300
acacgaaaag atattgcctt gctaaagcta agcagtcctg ccgtcatcac tgacaaagta 360
atcccagctt gtctgccatc cccaaattat gtggtcgctg accggaccga atgtttcatc 420
actggctggg gagaaaccca aggtactttt ggagctggcc ttctcaagga agcccagctc 480
cctgtgattg agaataaagt gtgcaatcgc tatgagtttc tgaatggaag agtccaatcc 540
accgaactct gtgctgggca tttggccgga ggcactgaca gttgccaggg tgacagtgga 600
ggtcctctgg tttgcttcga gaaggacaaa tacattttac aaggagtcac ttcttggggt 660
cttggctgtg cacgccccaa taagcctggt gtctatgttc gtgtttcaag gtttgttact 720
tggattgagg gagtgatgag aaataattaa 750
<210> 12
<211> 249
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<220>
<223> amino acid sequence of Micro-plg(micro-plasminogen)
<400> 12
Ala Pro Ser Phe Asp Cys Gly Lys Pro Gln Val Glu Pro Lys Lys Cys
1 5 10 15
Pro Gly Arg Val Val Gly Gly Cys Val Ala His Pro His Ser Trp Pro
20 25 30
Trp Gln Val Ser Leu Arg Thr Arg Phe Gly Met His Phe Cys Gly Gly
35 40 45
Thr Leu Ile Ser Pro Glu Trp Val Leu Thr Ala Ala His Cys Leu Glu
50 55 60
Lys Ser Pro Arg Pro Ser Ser Tyr Lys Val Ile Leu Gly Ala His Gln
65 70 75 80
Glu Val Asn Leu Glu Pro His Val Gln Glu Ile Glu Val Ser Arg Leu
85 90 95
Phe Leu Glu Pro Thr Arg Lys Asp Ile Ala Leu Leu Lys Leu Ser Ser
100 105 110
Pro Ala Val Ile Thr Asp Lys Val Ile Pro Ala Cys Leu Pro Ser Pro
115 120 125
Asn Tyr Val Val Ala Asp Arg Thr Glu Cys Phe Ile Thr Gly Trp Gly
130 135 140
Glu Thr Gln Gly Thr Phe Gly Ala Gly Leu Leu Lys Glu Ala Gln Leu
145 150 155 160
Pro Val Ile Glu Asn Lys Val Cys Asn Arg Tyr Glu Phe Leu Asn Gly
165 170 175
Arg Val Gln Ser Thr Glu Leu Cys Ala Gly His Leu Ala Gly Gly Thr
180 185 190
Asp Ser Cys Gln Gly Asp Ser Gly Gly Pro Leu Val Cys Phe Glu Lys
195 200 205
Asp Lys Tyr Ile Leu Gln Gly Val Thr Ser Trp Gly Leu Gly Cys Ala
210 215 220
Arg Pro Asn Lys Pro Gly Val Tyr Val Arg Val Ser Arg Phe Val Thr
225 230 235 240
Trp Ile Glu Gly Val Met Arg Asn Asn
245
<210> 13
<211> 684
<212> DNA
<213> Artificial sequence
<220>
<223> nucleotide sequence of the serine protease domain
<400> 13
gttgtagggg ggtgtgtggc ccacccacat tcctggccct ggcaagtcag tcttagaaca 60
aggtttggaa tgcacttctg tggaggcacc ttgatatccc cagagtgggt gttgactgct 120
gcccactgct tggagaagtc cccaaggcct tcatcctaca aggtcatcct gggtgcacac 180
caagaagtga atctcgaacc gcatgttcag gaaatagaag tgtctaggct gttcttggag 240
cccacacgaa aagatattgc cttgctaaag ctaagcagtc ctgccgtcat cactgacaaa 300
gtaatcccag cttgtctgcc atccccaaat tatgtggtcg ctgaccggac cgaatgtttc 360
atcactggct ggggagaaac ccaaggtact tttggagctg gccttctcaa ggaagcccag 420
ctccctgtga ttgagaataa agtgtgcaat cgctatgagt ttctgaatgg aagagtccaa 480
tccaccgaac tctgtgctgg gcatttggcc ggaggcactg acagttgcca gggtgacagt 540
ggaggtcctc tggtttgctt cgagaaggac aaatacattt tacaaggagt cacttcttgg 600
ggtcttggct gtgcacgccc caataagcct ggtgtctatg ttcgtgtttc aaggtttgtt 660
acttggattg agggagtgat gaga 684
<210> 14
<211> 228
<212> PRT
<213> Artificial sequence
<220>
<223> amino acid sequence of the serine protease domain
<400> 14
Val Val Gly Gly Cys Val Ala His Pro His Ser Trp Pro Trp Gln Val
1 5 10 15
Ser Leu Arg Thr Arg Phe Gly Met His Phe Cys Gly Gly Thr Leu Ile
20 25 30
Ser Pro Glu Trp Val Leu Thr Ala Ala His Cys Leu Glu Lys Ser Pro
35 40 45
Arg Pro Ser Ser Tyr Lys Val Ile Leu Gly Ala His Gln Glu Val Asn
50 55 60
Leu Glu Pro His Val Gln Glu Ile Glu Val Ser Arg Leu Phe Leu Glu
65 70 75 80
Pro Thr Arg Lys Asp Ile Ala Leu Leu Lys Leu Ser Ser Pro Ala Val
85 90 95
Ile Thr Asp Lys Val Ile Pro Ala Cys Leu Pro Ser Pro Asn Tyr Val
100 105 110
Val Ala Asp Arg Thr Glu Cys Phe Ile Thr Gly Trp Gly Glu Thr Gln
115 120 125
Gly Thr Phe Gly Ala Gly Leu Leu Lys Glu Ala Gln Leu Pro Val Ile
130 135 140
Glu Asn Lys Val Cys Asn Arg Tyr Glu Phe Leu Asn Gly Arg Val Gln
145 150 155 160
Ser Thr Glu Leu Cys Ala Gly His Leu Ala Gly Gly Thr Asp Ser Cys
165 170 175
Gln Gly Asp Ser Gly Gly Pro Leu Val Cys Phe Glu Lys Asp Lys Tyr
180 185 190
Ile Leu Gln Gly Val Thr Ser Trp Gly Leu Gly Cys Ala Arg Pro Asn
195 200 205
Lys Pro Gly Val Tyr Val Arg Val Ser Arg Phe Val Thr Trp Ile Glu
210 215 220
Gly Val Met Arg
225
Claims (15)
- 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체 분해의 촉진 방법으로서,
치료 유효량의 플라스미노겐 활성화 경로의 성분, 플라스미노겐을 직접적으로 활성화하거나 또는 플라스미노겐 활성화 경로의 업스트림 성분을 활성화하여 플라스미노겐을 간접적으로 활성화할 수 있는 화합물, 플라스미노겐 또는 플라스민의 활성을 모방하는 화합물, 플라스미노겐 또는 플라스미노겐 활성제의 발현을 상향 조절할 수 있는 화합물, 플라스미노겐 유사체, 플라스민 유사체, tPA 또는 uPA 유사체 및 피브린 용해 억제제의 길항제로부터 선택되는 하나 이상의 화합물을 피험자에게 투여하는 단계를 포함하는 방법. - 제1항에 있어서,
상기 플라스미노겐 활성화 경로의 성분은 플라스미노겐, 재조합 인간 플라스민, Lys-플라스미노겐, Glu-플라스미노겐, 플라스민, 플라스미노겐 및 플라스민의 하나 이상의 kringle 도메인 및 프로테아제 도메인을 포함하는 플라스미노겐 및 플라스민의 변이체 및 유사체, 미니플라스미노겐(mini-plasminogen), 미니플라스민(mini-plasmin), 마이크로플라스미노겐(micro-plasminogen), 마이크로플라스민(micro-plasmin), 델타-플라스미노겐, 델타-플라스민(delta-plasmin), 플라스미노겐 활성제, tPA 및 uPA로부터 선택되는 방법. - 제1항에 있어서,
상기 피브린 용해 억제제의 길항제는 PAI-1, 보체 C1 억제제, α2 항플라스민 또는 α2 마크로글로불린의 억제제, 예를 들어 항체인 방법. - 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 화합물은 인간 아밀로이드 단백질 Aβ40, 인간 아밀로이드 단백질 Aβ42, α-시누클레인, Tau 단백질, SOD-1 단백질, 폴리글루타민, 뉴로세르핀(NSP), 낭포성 섬유증 막횡단 전도 조절자, α1-항트립신, Parkin 단백질, 크리스탈린, 트랜스티레틴, 단쇄 아실-CoA 탈수소효소 변이체, 저밀도 지질단백질 수용체, 헌팅틴 단백질, 신경세사 단백질, 말초 단백질, α-중간세사 단백질, 섬 아밀로이드 폴리펩티드, β2-마이크로글로불린, 혈청 아밀로이드 단백질 A, 면역글로불린 경쇄, 인간 라이소자임, α-유청 단백질, 프로티모신 α, 아포지질단백질 E 및 아포지질단백질 J로부터 선택되는 하나 이상의 잘못 접힌 단백질 및 이의 응집체 분해를 촉진하는 방법. - 제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 화합물은 Pro-BDNF가 성숙한 BDNF로 절단되는 것을 촉진하거나, 또는 Pro-NGF가 성숙한 NGF로 절단되는 것을 촉진하는 방법. - 제1항 내지 제5항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 화합물은 플라스미노겐인 방법. - 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 플라스미노겐은 인간 전장 플라스미노겐 또는 이의 보존적 치환 변이체인 방법. - 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 플라스미노겐은 서열번호 2와 적어도 75%, 80%, 85%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98% 또는 99%의 서열 상동성을 갖고, 플라스미노겐의 라이신 결합 활성 또는 단백질 분해 활성을 여전히 갖는 방법. - 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 플라스미노겐은 서열번호 14와 적어도 80%, 90%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99%의 아미노산 서열 상동성을 갖는 아미노산 서열, 및 플라스미노겐의 단백질 분해 활성을 여전히 갖는 단백질을 포함하는 방법. - 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 플라스미노겐은 Glu-플라스미노겐, Lys-플라스미노겐, 미니플라스미노겐, 마이크로플라스미노겐, 델타-플라스미노겐 또는 플라스미노겐의 단백질 분해 활성을 유지하는 이들의 변이체로부터 선택되는 방법. - 제1항 내지 제6항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 플라스미노겐은 서열번호 2, 6, 8, 10, 12로 표시되는 아미노산 서열을 포함하거나 또는 서열번호 2, 6, 8, 10, 12로 표시되는 아미노산 서열의 보존적 치환 변이체를 포함하는 방법. - 제1항 내지 제11항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 화합물은 하나 이상의 다른 치료 방법 또는 다른 약물과 병용되는 방법. - 제12항에 있어서,
상기 다른 치료 방법은 세포 치료(줄기 세포 치료 포함), 지지 치료 및 물리 치료를 포함하는 방법. - 제12항에 있어서,
상기 하나 이상의 다른 약물은 알츠하이머병, 근위축성 축삭경화증(ALS), 또는 파킨슨병의 치료를 위한 약물인 방법. - 제1항 내지 제14항 중 어느 한 항에 있어서,
상기 화합물은 비강 흡입, 에어로졸 흡입, 점비액, 점안액, 점이액, 정맥내, 복막내, 피하, 두개내, 척추강내, 동맥내(예를 들어, 경동맥을 통해) 또는 근육내에 의해 투여되는 방법.
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