KR20150132650A - 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법 - Google Patents

어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법 Download PDF

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Abstract

본 발명은 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법, 특히 어류에서 나온 어린(漁鱗)을 전저리 후 가수분해하여 여과, 정제 공정을 거쳐 제조된 피쉬 콜라겐 펩타이드(Fish collagen peptide)의 제조방법에 관한 것이다. 특히, 기존 동물성 콜라겐에 비해 저분자 분포가 높은 것, 콜라겐의 주요 지표성분인 Hydroxy proline의 함량이 증진된 것, 제품에 적용이 용이하도록 색도 및 이미/이취 성분이 크게 저감화 된 것이 특징이다. 다음과 같이 개발된 저분자 피쉬 콜라겐 펩타이드는 세포수준에서 독성이 없는 것으로 확인되었고, 유의적 수준의 피부보습 효능을 확인할 수 있었다.

Description

어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법{Method for preparing lowmolecular collagen peptide from fish}
본 발명은 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법, 특히 어류에서 나온 어린(漁鱗)을 전저리 후 가수분해하여 여과, 정제 공정을 거쳐 제조된 피쉬 콜라겐 펩타이드(Fish collagen peptide)의 제조방법에 관한 것이다. 특히, 기존 동물성 콜라겐에 비해 저분자 분포가 높은 것, 콜라겐의 주요 지표성분인 Hydroxy proline의 함량이 증진된 것, 제품에 적용이 용이하도록 색도 및 이미/이취 성분이 크게 저감화 된 것이 특징이다. 다음과 같이 개발된 저분자 피쉬 콜라겐 펩타이드는 세포수준에서 독성이 없는 것으로 확인되었고, 유의적 수준의 피부보습 효능을 확인할 수 있었다.
콜라겐은 대부분 동물에서 발견되는 단백질로 특히 포유동물의 살과 결합조직을 구성하는 주요 단백질이다. 신체를 구성하는 단백질 중 25%에서 35%를 차지할 정도로 매우 풍부하다. 늘어난 섬유 형태의 콜라겐은 주로 힘줄, 인대, 피부와 같은 섬유조직에 존재하며 각막, 연골조직, 뼈, 혈관, 소화관, 척추원반 등에도 존재한다. 근육조직에서 콜라겐은 근내막의 주요 구성성분으로 작용한다.
콜라겐은 분자량 30만으로 분자량 10만의 α사 3개가 모여 γ사를 이루는데 40잔기에 1회전하는 오른쪽 회전의 나선을 만든다. 직경 1.5nm 길이 300nm의 삼중나선구조이다. α사슬은 다소의 수소결합에 의해 강하게 결합되어 있으며 micro fibril이 모여들게 되면 공유가교결합에 의해 콜라겐 세섬유가 되고 이들이 모여서 섬유(fiber)가 된다.
콜라겐은 다른 단백질들과 마찬가지로 유전자정보에 따라 구조, 합성량 등이 결정된다. Collagen에 관한 분자생물학, 생화학의 연구는 최근 현저히 진보하여 그 구조에 대해 상세하게 해명되어가고 있다. Collagen이라는 주제로 문헌을 검색하면 일년에도 만여 개 이상의 문헌이 발표되고 있는 것을 알 수 있다. 현재까지 분자의 종류에 따라 13종이상, polypeptide chain의 종류로 22종 이상이 보고되어있다. 일반적으로 다른 단백질과의 차이점은 Collagen 단백질이 단독으로 존재하는 한 개의 분자로서의 기능은 없으며, 다수의 분자가 회합하여 고차구조체를 형성하여야만 비로소 생체 중에서 그 역할을 담당한다는 것이다.
또한 콜라겐은 인체 내에서 양적 및 기능적으로 가장 큰 부분을 차지하는 단백질로, 인체 내 모든 세포의 뼈대를 형성하는 세포 외 기질(extracellular matrix), 보다 구체적으로 결합조직(connective tissue)의 주요 구성 인자를 의미한다. 콜라겐을 다량 함유하는 인체 조직으로는 피부(skin), 뼈 및 연골 등의 골(bone) 조직, 건(tendon), 인대(ligament) 등이 있다. 이러한 조직들의 노화로 인해 피부 주름 및 처짐, 골다공증 등의 인체 노화 질환들이 비롯되며, 이는 조직의 콜라겐 합성 감소로 인한 체내 콜라겐 양 및 기능 감소에 의한 것으로 알려져 있다.
콜라겐 아미노산 조성의 특징은 Glycine이 전체의 약 1/3을 차지하는 것이다. 그리고 전체의 2/9가 Proline 또는 Hydroxy-proline으로 구성되어있다. Hydroxy-proline는 Collagen유전자의 translation peptide상의 Proline이 분자상의 산소에 의해 4위의 탄소가 수산화되면서 생성된다. 아미노산(Proline 또는 Hydroxyproline)의 함량은 동물의 종류, 특히 그 동물의 서식하는 체온의 상한에 따라 다르며, 2/9라고 하는 것은 조류, 포유류 등 항온동물의 경우이다. 즉, Collagen 구조의 열 안정성은 이미노산 함량에 따라 달라지는데, 특히 Hydroxy-proline량에 따라 결정된다. 변온동물 예를 들면 어류의 경우 주변의 온도에 대응하여 변성온도 및 아미노산함량의 저하가 보여진다. 다른 구상단백질과는 달리 Collagen은 소수성 아미노산의 함량이 현저히 낮은 것을 볼 수 있다.
Hydroxy-proline은 Collagen 이외의 단백질에서는 거의 볼 수 없으며(elastin에는 다소 존재), 또한 peptide중에 들어가 있는 Proline만이 수산화되어 Hydroxy-proline가 된다는 점으로부터 Hydroxyproline의 정량에 의해 Collagen 양을 측정할 수 있다(Hydroxy-proline함량이 약 10%이므로 Hydroxy-proline가 100㎍이고, Collagen으로서는 약 1㎎).
Hydroxy-proline의 정량은 전체 Collagen 단백질의 합성량, 분해량 등의 지표로써 사용된다. 그러나 Collagen중의 Hydroxy-proline함량은 Collagen의 형태(유전자)뿐 아니라, 동물조직, 세포가 합성할 때의 조건(환경조건)등에 따라 변동한다.
Glutamic acid나 aspartic acid의 양에 비해 lysine, arginine의 양이 많고, Collagen peptide 전체의 전하는 중성pH에 있어서 양전하를 띈다. 즉, 등전점이 염기성으로 볼 수 있다. Glycine이 많고, 소수성 아미노산이 적은 것으로부터 분자의 용적이 작고 (구상단백질의 경우 0.75인데 비해 Collagen은 0.70정도), 또한 아미노산의 평균 잔기 분자량이 100이하(구상단백질은 대체적으로 110)이다.
콜라겐의 체내 생성량은 연령에 따라 감소하게 되는데 20대에 콜라겐 생성량이 최대이며, 40대는 70% 수준으로 생성되고 이후 급격히 감소하는 것으로 알려져 있다. 따라서, 콜라겐은 체내 생성되는 물질이 아니기에 식품 등으로 섭취를 해야 할 필요가 있다.
콜라겐은 분자량에 따라 고분자 콜라겐과 저분자 콜라겐으로 나눌 수 있다. 고분자 콜라겐은 일반적으로 분자량 5,000 Da. 이상의 것을 일컫는데, 분자량이 큰 만큼 체내 흡수율이 떨어지고, 기능성을 나타내기가 힘들다. 따라서, 분자량 5,000이상의 고분자 콜라겐은 일반 식품 등에 사용되고 있다. 반면 저분자 콜라겐은 분자량 1,500 Da. 이하의 것으로 체내 흡수율이 높아 피부 탄력 등의 기능성을 기대할 수 있다. 일반적으로 저분자 콜라겐은 건강기능식품, 화장품 및 일반의약품 등에 사용된다.
콜라겐은 인체 내 구성성분이기도 하지만 육류 및 어류에도 다량 존재한다. 특히 돼지 껍데기, 닭 날개, 도가니탕, 닭 발 등에 많이 존재한다고 알려져 사람들이 많이 섭취하고 있다. 일반적으로 동물성 식품 중 육류 제품을 통해 콜라겐을 섭취하고 있지만, 식물성 식품 내 콜라겐 함량도 소량이지만 존재한다. 주로 곶감, 두충차, 감잎차 등에 있는데, 이와 같은 식품의 섭취를 통해서는 콜라겐 효과를 기대하기 어려운 측면이 있다. 요즘 들어 가장 각광받고 있는 콜라겐은 어류에서 유래한 것이다. 특히 지느러미나, 비늘로부터 추출해 낸 콜라겐이 소재로 활용되고 있다. 특히 흡수율의 차이에 대한 연구결과를 살펴보면 어류 콜라겐이 육류 콜라겐에 비해 초기 흡수율이 약 1.5배 높은 것을 확인할 수 있다. 이와 같은 연구결과는 육류 콜라겐에 비해 어류 유래 콜라겐이 저분자 분자랑 분포가 높기 때문이다.
어류 유래 콜라겐은 어류에서 유래한 만큼 비린취가 잔존하기 쉽다. 국내외 콜라겐을 보아도 저가의 제품은 비린취가 소량 잔존하고 있다. 따라서 식품 등에 함유되는 경우 마스킹 소재가 필요하며, 일본에서와 같이 콜라겐만 단독으로 섭취하기 위해서는 고순도 정제를 통한 비린취를 제거할 필요가 있다(일본특허 출원번호: 2009-189284, 일본특허 출원번호: 2012-206999). 하지만 이런 공정은 유기용매가 사용되거나 별도의 설비 보유에 대한 부담으로 콜라겐 소재의 단가가 상승하는 단점이 있다. 이런 문제로 인하여 마스킹 소재를 콜라겐에 첨가하여 이취를 저감화 하는 방법이 발명되어 왔다(국내특허 출원번호: 2012-0020480, 일본특허 출원번호: 2012-0084742). 하지만, 100% 피쉬 콜라겐이라는 측면에서 첨가물을 넣게 되면 그 의미가 퇴색되며 순수 콜라겐이라 볼 수 없게 되는 단점이 있다. 따라서 본 발명에서는 기능성적인 측면뿐만 아니라 최소한 공정 개선을 통해 관능적 특성을 개선시킨 장점이 있다고 볼 수 있다. 다음과 같이 개발된 저분자 피쉬 콜라겐 펩타이드는 세포수준에서 독성이 없는 것으로 확인되었고, 유의적 수준의 피부보습 효능을 확인할 수 있었다.
대한민국 공개특허문헌 제10-2013-0098729호
본 발명은 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법, 특히 어류에서 나온 어린(漁鱗)을 전저리 후 가수분해하여 여과, 정제 공정을 거쳐 제조된 피쉬 콜라겐 펩타이드(Fish collagen peptide)의 제조방법에 관한 것으로, 기존 동물성 콜라겐에 비해 저분자 분포가 높은 것, 콜라겐의 주요 지표성분인 Hydroxy proline의 함량이 증진된 것, 제품에 적용이 용이하도록 색도 및 이미/이취 성분이 크게 저감화 된 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법을 제공하고자 한다.
본 발명의 일 측면은 어린(漁鱗) 및 정제수를 1:5~10의 중량비로 혼합하는 단계; 어린 및 정제수 혼합물을 90~100℃에서 8시간 이상 열 또는 약산에서 처리하여 조직을 연화시키는 단계; 상기 열 또는 약산 처리된 혼합물을 단백분해효소로 단백분해하는 단계; 상기 단백분해효소를 90~100℃에서 1시간 이상 열처리하여 실활시키는 단계; 상기 효소분해물을 필터프레스로 여과하는 단계; 및 상기 여과된 액을 농축, 분말화 하는 단계;를 포함하는 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법을 제공하고자 한다.
또한, 상기 단백분해효소는 엔도(endo)-유형 단백분해효소(Alcalase)이며, 어린 100중량부에 대하여 1.5~2.5 중량부가 첨가되고, 상기 단백분해하는 단계는 pH 6~8.5, 50~60℃에서 8~16시간 동안 진행되는 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법을 제공하고자 한다.
또한, 상기 콜라겐 펩타이드는 분자량이 500 내지 3,000 Da. 인 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법을 제공하고자 한다.
또한, 상기 콜라겐 펩타이드의 필터프레스 여과 공정을 2회 이상 처리하여 이취가 최소화되고 색도가 향상되는 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법을 제공하고자 한다.
본 발명에 의하여 제조된 피쉬 콜라겐 펩타이드는 청정지역의 어류에서 유래한 어린을 활용하여 개발되었다. 동물성 콜라겐에 비해 안전성이 검증되어 있으며, 저분자 펩타이드 분포도가 높아 체내 흡수율이 뛰어나다. 또한 기능성 지표성분으로 알려져 있는 Hydroxy proline 아미노산 함량이 11% 수준으로 고 함유되어 있다. 또한 어류에서 유래된 콜라겐은 일반적으로 비린취가 잔존하여 단독제품으로 쓰기에 다소 부적절한 측면이 있다. 따라서 활성탄 처리공정을 최적화하여 이미, 이취를 획기적으로 저감화 하였으며, 색도 또한 백색에 가깝게 형성되어 단독 제품으로 활용 시에도 문제가 없게 개발되었다.
도 1은 본 발명의 일 측면에 따른 어류 유래 콜라겐 펩타이드 제조공정을 나타낸 순서도이다.
도 2는 어린의 색상과 형태를 보기 위한 사진이다.
도 3은 전처리 조건에 따른 분해율(Brix) 측정결과를 나타낸 막대 그래프이다.
도 4는 주효과도, 교호작용 및 반응 최적화 결과를 나타낸 그래프이다.
도 5는 알칼레이즈 효소 처리의 조건별 분자량 분포를 분석한 결과를 나타낸 막대 그래프이다.
도 6은 활성탄 처리량에 따른 향기성분의 함량을 비교한 막대 그래프이다.
도 7은 국내외 피쉬 콜라겐 제품의 이취 성분을 비교한 막대 그래프이다.
도 8은 활성탄 2회 처리에 따른 향기 성분 함량을 비교한 그래프이다.
도 9는 활성탄 2회 처리에 따른 색도를 비교한 것이다.
도 10은 세포 독성에 대한 평가 결과를 나타낸 그래프이다.
도 11은 피부 보습 효능 평가 결과를 나타낸 것이다.
이하에서는 본 발명을 실시예 및 첨부된 도면에 의하여 보다 구체적으로 설명하기로 한다. 하기 실시예는 본 발명을 더 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 본 발명이 하기 실시예에 한정되는 것은 아니다.
도 1은 피쉬 콜라겐 펩타이드 제조공정을 나타낸 것이다. 도 1을 참고하면, 분해율 및 저분자 펩타이드의 함량을 증진시키기 위하여 어린을 별도의 공정을 통해 전처리 하였으며, 전처리 된 어린을 최소한의 펩타이드 단위로 분해하고 콜라겐의 지표성분인 Hydroxy proline 함량을 증진시키기 위하여 단백분해효소를 선정하여 처리하였다. 이후 단백분해효소를 실활시킨 후 활성탄 처리를 통하여 이미, 이취, 색도를 개선하였다. 어린에서 유래한 콜라겐은 분말화 후에도 비린취가 잔존할 확률이 높아 관능적으로 소비자들에게 불쾌감을 줄 수 있다. 따라서 이미, 이취의 제거는 필수적이면서 중요한 과정이라 볼 수 있다. 본 발명을 통해 개발된 콜라겐 펩타이드는 여타 국내외 콜라겐보다 이미, 이취, 색도가 크게 향상된 것이 특징이다.
[실시예 1] 어린(漁鱗)의 선정
어린(漁鱗)의 주 원산지는 해수어종에 따라 다르지만, 동남아시아가 주를 이룬다. 동남아시아 중에서도 인도네시아 및 태국의 어획량이 많은 편이다. 따라서, 어획량이 많은 두 나라에서 어린(漁鱗)의 생산량도 많은 편이다. 동남아시아에서 생산되는 어린(漁鱗)은 제조사 및 국가별로 그 품질이 다르다. 어린(漁鱗)은 백색에 가까운 것이 좋으며, 크기는 손톱크기의 것이 적당한데, 이는 최종 제품의 품질에 영향을 직접적으로 줄 수 있기 때문이다. 어린(漁鱗)의 일반적인 색상 및 형태는 도면 2와 같다.
콜라겐 제조에 적합한 어린(漁鱗)으로 생산량이 많고, 경제성이 있으며, 원료 조달에 용이한 틸라피아(Tilapia) 어종의 것으로 선정하였다. 어린(漁鱗)은 수세 및 칼슘을 제거하는 공정 등을 통해 제조되는데, 칼슘 이온이 제거되는 이유는 어린(漁鱗)이 효소분해 등의 가공과정을 거치게 될 때 분해효율에 부정적인 영향을 미치기 때문이다. 참고로 어린(漁鱗)의 pH가 서로 다른 이유는 최종 수세 과정에서 처리되는 조건에 따라 달라진다.
[실시예 2] 어린(漁鱗) 전처리 공정 최적화
어린(漁鱗)의 주성분은 단백질이며, 단백분해효소의 효율을 최대한으로 증가시키기 위해서는 전처리 공정이 필요하다. 건조된 어린(漁鱗)을 증류수에 첨가 후 효소를 바로 처리하면 분해도 잘 되지 않을 뿐만 아니라 시간이 오래 걸리게 된다. 어린(漁鱗)을 전처리 할 수 있는 방법으로 90℃이상의 정제수에 혼합한 후 장시간 처리하는 것, 산(acid)을 처리하는 것과 알칼리(alkali)를 처리하는 방법 세 가지가 있다. 산과 알칼리를 처리하는 것은 소비자의 인식과도 연관이 있었기에 신중히 조건을 설정할 필요가 있었다. 따라서 무처리군(Control)과 약산 처리 후 중화(조건 1), 알칼리 처리 후 중화(조건 2) 세 가지 조건으로 실험을 진행하였다. 약산은 약 pH 2~4.5까지 5N-HCl을 투입하여 95?에서 8시간 처리하는 것으로 하였으며, 알칼리는 pH 9~12까지 5N-NaOH를 투입하여 90~100?에서 6~10시간 처리하는 것으로 하였다. 중화되는 pH는 6.5로, 일반적인 효소가 가장 높은 활성을 보이는 조건으로 조절하였다. 중화 후 효소처리는 어린 선정 과정 중 가장 분해율이 높았던 Alcalase와 Delvolase 2종을 사용하였으며, 상세 실험 조건은 표 1과 같다.
No. 공정 조건
1 교반속도(rpm) 300~800
2 증류수 (ml) 기질대비 6~10배 가수
3 처리시간 6~10시간
4 처리온도 90~100℃
5 중화 pH 6.5
어린 전처리 조건을 선정하기 위하여 효소처리 후 분해율(Brix)와 분자량 분포를 측정하여 비교하였다. 1차로 분해율을 측정해 보았을 때3가지 조건 중 약산 처리 후 중화하는 전처리 공정이 가장 좋은 결과를 보였다(도면 3). Control에 비해 약산 처리시 분해율이 약 10%(12.5 → 14) 상승하였다. 반면 알칼리 처리한 경우에는 분해율이 Control과 큰 차이를 보이지 않는 것을 확인할 수 있었다. 이는 약산 처리 시 어린(漁鱗)의 조직이 연화되어 효소의 작용이 잘 일어날 수 있도록 했기 때문으로 유추할 수 있었다.
도 3은 전처리 조건에 따른 분해율(Brix) 측정결과를 나타낸 것이다. 도 3을 참고하여 분해율(Brix) 결과와 함께 분자량 분포 측정을 통해 전처리 효과를 비교해 보았다. 콜라겐은 서론에서 설명 하였듯이 저분자 분자량 분포가 높을수록 흡수율이 높아지고, 부가 기능성을 기대할 수 있다. 따라서 전처리 후 분자량 분포를 HPLC를 통해 측정하였다. 분자량 측정 그래프는 오른쪽으로 갈수록 저분자 분포가 높은 것으로 해석할 수 있다. 그 이유는 GPC(Gel chromatography) 컬럼의 경우 컬럼 내 충진 물질이 다공성으로 되어 있어, 저분자의 경우 통과하는데 시간이 오래 걸리기 때문이다.
분자량 분포를 분석해 본 결과, 국내 A사에서 판매되고 있는 피쉬 콜라겐이 분자량 1,500이하 분포가 80% 수준으로 가장 높게 측정되었다. 대조군의 경우 분자량 1,500이하 분포가 45% 수준으로 가장 낮았으며, 약산 전처리 한 샘플의 경우 65% 수준으로 대조군 대비 저분자 분포가 30% 이상 상승되는 것을 확인할 수 있었다. 따라서, 최종적으로 어린(漁鱗)을 전처리 조건으로 약산을 pH 2.5로 처리하여 95℃에서 8시간 반응 후 pH 6.5로 중화시키는 것으로 결정하였다. 하지만, 국내 경쟁사 제품 수준의 저분자 분포를 보유하기 위해서는 효소분해 공정 최적화 실험이 필요하다고 판단하여 추가 실험을 진행하였다.
[실시예 3] 어린(漁鱗) 효소분해 조건 최적화
어린(漁鱗)의 전처리 공정 최적화 이후 수행된 과정은 효소분해 공정의 최적화이다. 어린(漁鱗)을 분해하기 위한 단백분해 효소는 전처리 과정 중 가장 저분자 생성률이 높은 Alcalase를 선정하여 진행하였다. 복합 효소를 사용하는 것이 효율을 높일 수 있으나, 사전 예비실험에서 단일효소 처리군과 비교해 보았을 때 유의적인 차이가 없었다.
Alcalase 생산 업체로부터 받은 스펙(spec.)상으로는 온도는 50~60℃, pH는 6~8.5 사이가 최고 활성을 보인다고 설명해 놓았다. 따라서 효소처리조건을 완전요인설계를 통해 최적화 하였으며, 실험 조건은 표 2와 같다.
온도 효소 처리량(%)
(기질대비) 		결과 (1,500이하 분자량 분포%)
50 1 63.00%
55 1 68.00%
60 1 73.80%
50 2 68.00%
55 2 80.60%
60 2 76.80%
완전요인 분석 결과는 도면 4, 5와 같으며, 예상대로 효소처리 온도와 농도는 저분자 분포 함량과 비례적인 관계를 나타내었다. 반응 최적화 결과 55℃에서 기질(어린) 중량부 대비 효소 2 중량부 처리하였을 경우 저분자 분포가 가장 높을 것으로 예상되었으며, 실험결과도 동일하게 나왔다. 한편, 60℃에서 기질(어린) 중량부 대비 효소 2 중량부 처리할 경우 가장 좋은 결과를 얻을 것으로 예상되었으나, 55℃에서 기질(어린) 중량부 대비 효소 2 중량부 처리한 경우가 저분자 분포가 약 3% 가량 높게 나왔다.
콜라겐의 주요 지표성분인 Hydroxy proline 역시 55℃에서 기질(어린) 중량부 대비 효소 2 중량부 처리하였을 경우 약 11% 수준으로 높게 측정되었다. 60℃ 이상에서 분해하였을 경우 Hydroxy proline 함량은 9% 수준으로 측정되었으며, 50℃에서도 비슷한 수준을 보였다. 효소분해 조건에 따른 Hydroxy proline 함량에 편차가 발생함을 확인할 수 있었다.
따라서, 최종적으로 어린(漁鱗) 전처리 후 최적 효소처리 조건은 55℃ 온도에서, 기질(어린) 중량부 대비 효소 2 중량부 처리하는 것이 좋으나, 1.5~2.5 중량부 사이라면 큰 편차는 없다.
그리고 pH 조건은 효소 스펙상의 6~8.5 사이에서 진행했을 경우 전반적인 분자량 분포 및 아미노산 함량이 동일한 수준으로 추출되었다. pH가 6 이하이거나 8.5 이상의 경우 분자량 분포 및 아미노산 함량 등이 10% 이상 낮아지는 것을 확인할 수 있었다.
[실시예 4] 탈색/탈취 공정 최적화
어린(漁鱗)은 어류에서 유래한 것으로 탈색/탈취 공정이 필수적으로 필요하다. 콜라겐은 일본에서 분말 타입으로 바로 섭취하는 경우도 있어, 비린취가 나면 클레임 발생의 주요 원인이 된다.
현장에서 피쉬 콜라겐의 탈색/탈취 공정으로 활용하기에 가장 적합한 공정은 활성탄 처리와 필터프레스 여과 방법이다. 활성탄은 처리량에 따라 그 효과가 비례적으로 증가하나, 일정 수준 이상이면 효과가 효율적으로 나타나지 않기에 최적 처리량을 설정할 필요가 있었다.
활성탄 처리에 따른 이취성분의 제거 효율을 보기 위해 향기성분 함량을 GC-MS를 통해 측정하였다. 이취성분은 특정한 성분으로 정의되지 않기에 콜라겐 제품 내 전체 향기성분 함량을 측정하였다. 향기성분 함량은 headspace extraction 방법을 이용하여 추출하였고 추출된 향기성분은 SPME fiber에 흡착시킨 후 기체크로마토그래프/질량 분석기(GC/MS; Agilent Technologies/7890A GC/5975C MSD)를 통해 정량 분석하였다. 콜라겐 분말을 20mL vial 에 3g을 담은 후 60℃에서 20분간 heating 시킨 후 headspace에 추출하였다. 추출된 향기성분은 SPME fiber (Supelco; 65um PDMS/DVB blue plain (CAT No.57311))를 사용하여 60℃, 30분간 fiber에 흡착시킨 후GC 주입구에 splitless mode로 주입하여 탈착 한 후 GC/MS를 활용하여 향기성분을 정량 하였다. 이때 주입구 온도는 250℃, 컬럼 오븐온도는 70℃에서 2분 동안 유지시킨 후 20℃/min으로 230℃까지 승온시켜 향기성분을 분석하였다. 컬럼은 HP5-MS (60 m > 0.25 mm > 0.25㎛)를 사용하였으며, 운반기체는 순도 99.999% He을 사용하였고, 유속은 1.0 mL/min로 일정하게 유지하였다. 향기성분의 정량분석은 TIC (Total Ion Current)모드로 분석하였다.
활성탄 처리량은 전체 액량 중량부 대비 1, 1.5, 2 중량부를 처리하는 세 가지 조건으로 진행하였다. 전체 액량 중량부 대비 2 중량부를 처리하였을 때 이취 성분이 거의 분석되지 않는 것을 확인할 수 있었으며, 2% 이상 처리할 경우에는 활성탄이 포집할 수 있는 이취성분의 함량에 한계가 있어 더 이상 효율의 상승폭이 늘어나지 않는 것을 확인할 수 있었다. GC/MS 분석 결과는 도면 6과 같다.
도 6을 참고하면, 활성탄을 전체 액량 중량비 대비 2 중량비로 처리하였을 경우 이미, 이취가 저감화 되는 것을 확인할 수 있었지만 경쟁 우위를 확보하기 위해 국내외 경쟁사 제품들과 비교해 보았다. 비교결과 일본 제품 1종에 비해 이미, 이취 성분이 소량 더 잔존하는 것을 확인할 수 있었다.
위와 같은 결과를 통해 활성탄 처리 공정을 2차 개선하였다. 기존의 1회 전체 중량부 대비 2 중량부 처리하는 공정을 개선하여 2회 연속으로 처리하는 것으로 개선하였다. 실험 결과 일본 B사 콜라겐 제품보다 이미, 이취 성분이 획기적으로 저감화 되었으며, 색도 또한 백색에 가깝게 형성되었다.
[실시예 5] 여과액의 건조 및 분말화
상기 여과된 효소분해액을 건조하여 분말화할 수 있다. 이때 건조의 방법에는 제한이 없고, 진공건조, 열풍건조, 분무건조, 동결건조 등 일반적인 건조방법을 이용한다.
[실시예 6] 세포 독성평가 및 피부보습 효능평가 결과
콜라겐 펩타이드가 세포 생존율에 미치는 영향을 측정하기 위해 MTS (Promega, Madison, USA) assay를 수행하였다. 96 well plate(Nunc)에 1 X 104 cell/mL의 농도로 HaCaT 세포를 분주하여 37oC, 5% CO2 조건 하에서 24시간 동안 pre-incubation시킨 후 콜라겐 펩타이드를 0, 25, 50, 100, 200, 400ug/ml 농도로 처리하여 24시간 배양하였다. 그 후 MTS시약을 0.25mg/ml 농도로 처리하여 2시간 반응시켰다. 490nm 에서 흡광도를 측정하여 콜라겐 펩타이드의 세포독성 및 증식효과에 대한 영향을 조사하였다. 실험결과 고농도 처리에도 세포 독성에 영향이 없는 것으로 확인되었다(도 10).
피부 보습평가를 위해 실험에 사용한 사람 HaCaT(Immortal human keratinocyte line) 세포는 서울대학교 의과대학 피부과로부터 분양 받아 사용하였다. 분양 받은 세포주는 DMEM 배지에 10% fetal bovine serum(FBS; Hyclone, Texas, USA), 1% penicillin-streptomycin(Sigma Co.)을 첨가하여 37oC, 5% CO2 조건 하에서 배양하였으며, 계대수 6-9 사이의 세포주를 실험에 사용하였다. 세포를 60? dish에 1 X 105개로 분주하고 약 60%의 confluency에 도달할때까지 1일간 배양하고, FBS-free 배지에서 1일간 추가 배양하였다. 시료 처리 전에 배지를 제거한 후 PBS(phosphate bufferedsaline)로 세척한 다음 FBS를 첨가하지 않은 DMEM 배지에 25,100 mg/L 농도의 콜라겐 펩타이드 시료를 처리하여 CO2 배양기에서 1시간 배양하였다. 대조군은 상기와 동일한 배지에서 시험 물질을 첨가하지 않은 상태로 배양한 것을 이용하였다. AQP3의 발현을 평가하기 위하여 배양한 세포를 PBS로 세척하여 1.5 mL microtube에 옮기고 세포침전물을 Pro-prep protein extraction solution (Intron Biotechnology, Seoul, Korea)을 첨가하여 세포를 파괴한 후 4oC에서 15,000 rpm으로 20 min 동안 원심분리하고 상층액을 취하여 단백질을 분리하였다. 분리한 단백질은 BCA 방법에 따라 정량한 후 12% SDSpolyacrylamidegel을 사용하여 전기영동한 다음, PVDF membrane에 transfer시켰다. Membrane을 5% skim milk solution으로 1 h 동안 blocking한 뒤 primary antibody로 상온에서 3~4 h 동안 반응시키고, horseradish peroxidase가 결합된 secondary antibody로 처리하였다. Chemiluminescence kit을 이용하여 발색된 밴드의 강도를 확인하였다. β-actin은 각각의 시료에 동량의 단백질이 들어있는지 확인하기 위한 대조군으로 사용하였다. 실험결과 유의적으로 피부보습 효능이 있는 것으로 확인되었다. 그 결과가 도 11에 나타나있다.

Claims (4)

  1. 어린(漁鱗) 및 정제수를 1:5~10의 중량비로 혼합하는 단계;
    어린 및 정제수 혼합물을 90~100℃에서 8시간 이상 열 또는 약산에서 처리하여 조직을 연화시키는 단계;
    상기 열 또는 약산 처리된 혼합물을 단백분해효소로 단백분해하는 단계;
    상기 단백분해효소를 90~100℃에서 1시간 이상 열처리하여 실활시키는 단계;
    상기 효소분해물을 필터프레스로 여과하는 단계; 및
    상기 여과된 액을 농축, 분말화 하는 단계;를 포함하는 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법.
  2. 제 1항에 있어서
    상기 단백분해효소는 엔도(endo)-유형 단백분해효소(Alcalase)이며, 어린 100중량부에 대하여 1.5~2.5 중량부가 첨가되고,
    상기 단백분해하는 단계는 pH 6~8.5, 50~60℃에서 8~16시간 동안 진행되는 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법.
  3. 제 1항에 있어서,
    상기 콜라겐 펩타이드는 분자량이 500 내지 3,000 Da. 인 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법.
  4. 제 1항에 있어서
    상기 콜라겐 펩타이드의 필터프레스 여과 공정을 2회 이상 처리하여 이취가 최소화되고 색도가 향상되는 어류 유래 저분자 콜라겐 펩타이드의 제조방법.
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