KR102263984B1 - 직장암 환자에서 수술-전 화학방사선치료의 반응을 예측하기 위한 분석방법 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 직장암 환자에서 수술-전 화학방사선치료에 대한 반응을 나타내는 환자의 진단에 필요한 정보를 제공하기 위한 분석방법을 제공한다. 직장암 환자의 종양조직에서 9개의 유전자 즉, FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 유전자의 발현량을 조합하여 분석할 경우 높은 정확도로 수술-전 화학방사선치료에 대한 반응(감수성)을 예측할 수 있다는 것이 본 발명에 의해 밝혀졌다. 따라서, 상기 유전자들의 조합은 수술-전 화학방사선치료에 대한 반응을 나타내는 직장암 환자를 선별할 수 있는 바이오마커로서 유용하게 사용될 수 있다.
Description
본 발명은 직장암 환자에서 수술-전 화학방사선치료의 반응을 예측하기 위한 분석방법에 관한 것이다. 더욱 상세하게는, 직장암 환자에서 수술-전 화학방사선치료에 대한 반응을 나타내는 환자의 진단에 필요한 정보를 제공하기 위한 분석방법에 관한 것이다.
국소진행성 직장암(locally advanced rectal cancer, LARC)은, 직장간막근막(mesorectal fascia)을 포함한 절제할 수 없는 부위(unresectable margins) 및 임상적으로 의심되는 림프절(측방 골반 림프절)을 갖는, 침습성 직장암으로 기술된다(de Wilt JH, et al., Management of locally advanced primary and recurrent rectal cancer. Clin Colon Rectal Surg 2007;20:255-63; Glynne-Jones R, et al., Locally advanced rectal cancer: what is the evidence for induction chemoradiation? Oncologist 2007;12:1309-18). 수술-전 화학방사선치료(preoperative chemoradiotherapy, PCRT) 및 이후의 수술적 절제(surgical resection)가 LARC에 대한 표준 다학제적 치료(standard multimodal treatment)이다(Kapiteijn E, et al., Preoperative radiotherapy combined with total mesorectal excision for resectable rectal cancer. N Engl J Med 2001;345:638-46; Rodel C., et al., Radiotherapy: Preoperative chemoradiotherapy for rectal cancer. Nat Rev Clin Oncol 2010;7:129-30). PCRT는 국소 재발의 위험을 줄이고, 괄략근 보존의 가능성을 증가시킨다. PCRT에 대하여 좋은 반응을 보이는 환자는 바람직한 종양학적 결과를 나타낸다(Fokas E, et al., Tumor regression grading after preoperative chemoradiotherapy for locally advanced rectal carcinoma revisited: updated results of the CAO/ARO/AIO-94 trial. J Clin Oncol 2014;32:1554-62; Park IJ, et al., Neoadjuvant treatment response as an early response indicator for patients with rectal cancer. J Clin Oncol 2012;30:1770-6).
PCRT에 대하여 완전하거나 혹은 거의 완전한 반응을 나타내는 환자에 있어서, 이러한 치료법은 종양의 직장-보존적인(rectal-sparing) 수술적 치료를 가능하게 한다. PCRT 및 이에 따른 수술적 절제가 LARC에 대한 표준적인 치료법이지만, 약 2/3의 환자는 PCRT에 대하여 부분적인 반응 혹은 비-반응을 보이며; 이러한 환자에서 PCRT는 임상적 결과를 개선하지 못한다(Lee YC et al., Prognostic significance of partial tumor regression after preoperative chemoradiotherapy for rectal cancer: a meta-analysis. Dis Colon Rectum 2013;56:1093-101). 더욱이, PCRT는 비-반응자(non-responders)에서 두가지의 부작용과 관련된다: 1) 방사선 치료는 환자의 삶의 질에 영향을 주는 장기간의 합병증(long-term complications)과 관련되며, 2) PCRT로 인하여 수술적 절제가 지연됨으로써 종양이 국소적 및 원위적으로 전이될 될 수 있다(Conde-Muino R, et al. Predictive Biomarkers to Chemoradiation in Locally Advanced Rectal Cancer. Biomed Res Int 2015;2015:921435; Millino C, et al. Gene and MicroRNA Expression Are Predictive of Tumor Response in Rectal Adenocarcinoma Patients Treated With Preoperative Chemoradiotherapy. J Cell Physiol 2017;232:426-435). 따라서, PCRT로부터 이익을 얻을 수 있는 반응자(responders)의 선택을 가능하게는 바이오마커, 즉 LARC 환자에서 PCRT에 대한 반응을 예측하기 위한 바이오마커를 개발하기 위한 다양한 노력이 진행되고 있다.
몇몇의 연구가 PCRT에 대한 반응 및 결과를 정확히 예측하기 위한 유전적 바이오마커의 잠재성을 입증한 바 있다(Watanabe T, et al. Prediction of sensitivity of rectal cancer cells in response to preoperative radiotherapy by DNA microarray analysis of gene expression profiles. Cancer Res 2006;66:3370-4; Agostini M, et al. An integrative approach for the identification of prognostic and predictive biomarkers in rectal cancer. Oncotarget 2015;6:32561-74; Gim J, et al. Predicting multi-class responses to preoperative chemoradiotherapy in rectal cancer patients. Radiat Oncol 2016;11:50). Ghadimi 등은 반응자 및 비-반응자에서 54개의 상이하게 발현되는 유전자를 보고한 바 있으며, 발현 프로파일링은 LARC 환자의 83%에서 종양 거동을 예측할 수 있다(p=0.02)(Ghadimi BM, et al. Effectiveness of gene expression profiling for response prediction of rectal adenocarcinomas to preoperative chemoradiotherapy. J Clin Oncol 2005;23:1826-38). Gantt 등은 33개의 직장암 생검 샘플(biopsy samples)로부터, 반응자로부터 비-반응자를 분류하는, 2개의 유전자 발현 프로파일을 밝힌 바 있다(Gantt GA, et al. Gene expression profile is associated with chemoradiation resistance in rectal cancer. Colorectal Dis 2014;16:57-66). 최근, Guo 등은 LARC 환자에서 27개 유전자를 동정함으로써, REO(relative expression orderings) 패턴에 근거하여 PCRT에 대한 반응을 예측한 바 있다(Guo Y, et al. A qualitative signature for predicting pathological response to neoadjuvant chemoradiation in locally advanced rectal cancers. Radiother Oncol 2018;129:149-153). 또한, Chauvin 등은 LARC 환자에서 PCRT에 대한 반응을 예측하기 위한 프로테오믹 프로파일링(proteomic profiling)의 잠재성을 보고한 바 있다(Chauvin A, et al. The response to neoadjuvant chemoradiotherapy with 5-fluorouracil in locally advanced rectal cancer patients: a predictive proteomic signature. Clin. Proteomics 2018;15:16; Repetto O, et al. Identification of protein clusters predictive of tumor response in rectal cancer patients receiving neoadjuvant chemo-radiotherapy. Oncotarget 2017;8:28328-28341). 그러나, LARC와 관련된 유전자 발현 프로파일의 동정에도 불구하고, 현재까지 임상적 사용을 위한 바이오마커는 아직 동정되지 못하였다.
PCRT 바이오마커의 개발을 제한하는 요소 중 하나는 PCRT 및 수술적 절제 전에 얻어지는 포르말린-고정된 파라핀-포매된(formalin-fixed paraffin-embedded, FFPE) 생검 샘플의 사용이다. 종양세포충실도(tumor cellularity), 괴사(necrosis)와 같은 요인 때문에 냉동 샘플(Fresh-frozen samples)은 사용될 수 없으며, 면역 침윤(immune infiltrates)은 하위 발현 분석(downstream expression analyses)을 제한한다.
본 발명자들은 PCRT에 대한 반응을 예측할 수 있는, 임상적으로 적용가능한 바이오머커("유전자 시그니쳐(gene signature)"로도 지칭됨)를 개발하기 위하여 다양한 연구를 수행하였다. 특히, 본 발명자들은 FFPE 조직 샘플을 사용하여 RNA를 추출하였으며 FDA-승인된 하드웨어 및 키트를 사용하여 유전자 발현 분석을 수행하였다. 그 결과, 직장암 환자의 종양조직에서 특정 유전자들, 즉 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 유전자의 발현량을 조합하여 분석할 경우 높은 정확도로 수술-전 화학방사선치료에 대한 반응("감수성(susceptibility)"로도 지칭됨)을 예측할 수 있다는 것을 발견하였다.
따라서, 본 발명은 바이오마커로서 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 유전자를 사용하는 것을 포함하는, 직장암 환자에서 수술-전 화학방사선치료의 반응을 예측하기 위한 분석방법을 제공하는 것을 목적으로 한다.
본 발명의 일 태양에 따라, 직장암 환자에서 수술-전 화학방사선치료에 대한 반응을 나타내는 환자의 진단에 필요한 정보를 제공하기 위하여, 직장암 환자로부터 체외로 분리된 종양조직 샘플 중에서 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 유전자의 발현량을 각각 측정하는 단계를 포함하는 분석방법이 제공된다.
본 발명의 분석방법에 있어서, 상기 직장암 환자는 바람직하게는 국소진행성 직장암 환자이다.
또한, 본 발명의 분석방법에 있어서, 상기 직장암 환자로부터 체외로 분리된 종양조직 샘플은 포르말린-고정된 파라핀-포매된 종양조직-유래의 생검 샘플일 수 있다.
직장암 환자의 종양조직에서 특정 유전자들, 즉 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 유전자의 발현량을 조합하여 분석할 경우 높은 정확도로 수술-전 화학방사선치료에 대한 반응(감수성)을 예측할 수 있다는 것이 본 발명에 의해 밝혀졌다. 따라서, 상기 유전자들의 조합은 수술-전 화학방사선치료에 대한 반응을 나타내는 직장암 환자를 선별할 수 있는 바이오마커로서 유용하게 사용될 수 있다.
도 1은 유전자 시그니쳐 개발의 플로우챠트를 나타낸다.
도 2는 메타-데이터 분석(Meta-data analysis)의 플로우챠트를 나타낸다.
도 3은 PCRT 반응자 유전자 시그니쳐 관련 경로: PI3K-Akt 신호전달경로에 근거한 메타데이터 분석결과를 나타낸다.
도 4는 메타데이터 분석에 기초한 PCRT 반응자에 대한 PI3K-Akt 신호전달경로의 3차원 게놈 발현 지도를 나타낸다.
도 5는 nCounter(Nanostring Technologies, Seattle, WA)에 제공되는 nSolver Analysis Software v 3.0(Nanostring Technologies)에서 Background subtraction 체크를 해제한 것을 나타내는 일 예이다.
도 6은 표준화 파라미터 설정을 나타내는 일 예이다.
도 2는 메타-데이터 분석(Meta-data analysis)의 플로우챠트를 나타낸다.
도 3은 PCRT 반응자 유전자 시그니쳐 관련 경로: PI3K-Akt 신호전달경로에 근거한 메타데이터 분석결과를 나타낸다.
도 4는 메타데이터 분석에 기초한 PCRT 반응자에 대한 PI3K-Akt 신호전달경로의 3차원 게놈 발현 지도를 나타낸다.
도 5는 nCounter(Nanostring Technologies, Seattle, WA)에 제공되는 nSolver Analysis Software v 3.0(Nanostring Technologies)에서 Background subtraction 체크를 해제한 것을 나타내는 일 예이다.
도 6은 표준화 파라미터 설정을 나타내는 일 예이다.
PCRT 및 이에 따른 수술적 절제가 LARC에 대한 표준적인 치료법이다. 그러나, 약 2/3의 환자는 PCRT에 대하여 부분적인 반응 혹은 비-반응을 보이며, 바람직한 임상적 결과 없이 PCRT-관련 부작용을 야기하게 된다. 본 발명자들은 PCRT 후에 수술적 절제를 받은 156명의 LARC 환자(트레이닝 코호트 n=60; 검증 코호트 n=96)를 대상으로 PCRT에 대한 종양의 병리학적 반응을 평가하고, 반응자(완전 혹은 거의-완전한 회복을 갖는 환자; n=72) 및 비-반응자(다른 모든 환자; n=84)로 분류하였다. FFPE 샘플로부터 얻은 RNA에 대한 유전자 발현 분석을 nCounter(Nanostring Technologies, Seattle, WA)을 사용하여 수행하였다. 단변량 및 다변량 로지스틱 회귀분석을 사용하여, 반응자 및 비-반응자간에 상이한 발현을 나타내는 9개의 유전자(FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 유전자)를 동정하였다. 60개의 LARC 샘플의 트레이닝 코호트에서 9개의 유전자 시그니쳐의 발현이 반응자(n=27) 및 비-반응자(n=33)에서 명확히 상이하였다[정확도(accuracy) = 86.9%, 특이도(pecificity) = 84.8%, 민감도(sensitivity) = 81.5%). 상기 결과는 96명의 LARC 환자의 독립적인 코호트에서 검증되었으며, 비-반응자로부터 PCRT 반응자를 성공적으로 분리하였다(정확도 = 81.0%, 특이도 = 79.4%, 민감도 = 82.3%). 상기 시그니쳐는 모든 병리학적 및 임상적 특징에 대하여 독립적이었다. 따라서, 상기 9개의 유전자 시그니쳐는 LARC 환자에서 PCRT에 대한 반응을 예측할 수 있는 바이오마커로서 사용될 수 있으며, 상기 유전자 시그니쳐는 FFPE 샘플 및 FDA-승인된 하드웨어 및 시약을 사용하여 임상적 세팅에 쉽게 적용될 수 있다. PCRT에 대한 반응자 및 비-반응자에 있어서의 맞춤형 치료 접근은 LARC 환자의 암 치료 효율을 개선할 수 있다.
따라서, 본 발명은 직장암 환자에서 수술-전 화학방사선치료에 대한 반응을 나타내는 환자의 진단에 필요한 정보를 제공하기 위하여, 직장암 환자로부터 체외로 분리된 종양조직 샘플 중에서 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 유전자의 발현량을 각각 측정하는 단계를 포함하는 분석방법을 제공한다.
본 발명의 분석방법에 있어서, 상기 직장암 환자는 바람직하게는 국소진행성 직장암 환자일 수 있다. 또한, 본 발명의 분석방법에 있어서, 상기 직장암 환자로부터 체외로 분리된 종양조직 샘플은 포르말린-고정된 파라핀-포매된 종양조직-유래의 생검 샘플일 수 있다.
본 발명의 분석방법에서 바이오마커로 사용되는 상기 9개의 유전자 즉, FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 유전자는 공지의 유전자로서, 그 서열은 진뱅크(GenBank) 등에 공지되어 있다. 예를 들어, FGFR3(Fibroblast Growth Factor Receptor 3) 단백질의 NCBI 억세션 번호(NCBI accession number)는 NP_000133, NP_001156685, NP_075254, NP_001341738, NP_001341739 등이며, 이를 코딩하는 유전자 mRNA의 NCBI 억세션 번호는 NM_000142, NM_001163213, NM_022965, NM_001354809, NM_001354810 등이다. GNA11(Guanine nucleotide-binding protein subunit alpha-11) 단백질의 NCBI 억세션 번호는 NP_002058 이며, 이를 코딩하는 유전자 mRNA의 NCBI 억세션 번호는 NM_002067 이다. H3F3A(Histone H3.3) 단백질의 NCBI 억세션 번호는 NP_005315 이며, 이를 코딩하는 유전자 mRNA의 NCBI 억세션 번호는 NM_002107 이다. IL12A(Interleukin-12 subunit alpha) 단백질의 NCBI 억세션 번호는 NP_000873, NP_001341511, NP_001341512 등이며, 이를 코딩하는 유전자 mRNA의 NCBI 억세션 번호는 NM_000882, NM_001354582, NM_001354583 등이다. IL1R1(Interleukin 1 receptor, type I) 단백질의 NCBI 억세션 번호는 NP_000868, NP_001275635, NP_001307907, NP_001307909, NP_001307910 등이며, 이를 코딩하는 유전자 mRNA의 NCBI 억세션 번호는 NM_000877, NM_001288706, NM_001320978, NM_001320980, NM_001320981 등이다. IL2RB(Interleukin-2 receptor subunit beta) 단백질의 NCBI 억세션 번호는 NP_000869, NP_001333151, NP_001333152 등이며, 이를 코딩하는 유전자 mRNA의 NCBI 억세션 번호는 NM_000878, NM_001346222, NM_001346223 등이다. NKD1(Naked cuticle 1) 단백질의 NCBI 억세션 번호는 NP_149110.1 이며, 이를 코딩하는 유전자 mRNA의 NCBI 억세션 번호는 NM_033119.5 이다. SGK2(Serine/threonine-protein kinase Sgk2) 단백질의 NCBI 억세션 번호는 NP_001186193, NP_057360, NP_733794 등이며, 이를 코딩하는 유전자 mRNA의 NCBI 억세션 번호는 NM_170693, NM_001199264, NM_016276 등이다. SPRY2(Sprouty homolog 2) 단백질의 NCBI 억세션 번호는 NP_001305465, NP_001305466, NP_001305467, NP_005833 등이며, 이를 코딩하는 유전자 mRNA의 NCBI 억세션 번호는 NM_005842, NM_001318536, NM_001318537, NM_001318538 등이다.
본 발명에 따른 분석방법의 일 구현예에서, 직장암 환자로부터 체외로 분리된 종양조직 샘플 중 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 유전자의 발현량을 측정하고; 하기 식에 따라 측정된 TBPS(Treatment Benefit Prediction Score) 값이 -7.269813 보다 클 경우에는 PCRT에 대한 반응을 나타내는 환자(즉, PCRT에 대하여 감수성을 나타내는 환자)로 분류할 수 있으며, -7.269813 이하일 경우에는 PCRT에 대한 반응을 나타내지 않는 환자(즉, PCRT에 대하여 감수성을 나타내지 않는 환자)로 분류할 수 있다.
TBPS = (-0.006697)*GFGFR3 + (-0.001805)*GGNA11 + (-0.000373)*GH3F3A + (0.063996)*GIL12A + (0.015269)*GIL1R1 + (0.017445)*GIL2RB + (-0.003099)*GNKD1 + (-0.004739)*GSGK2 + (-0.002763)*GSPRY2
상기 식에서 GFGFR3, GGNA11, GH3F3A, GIL12A, GIL1R1, GIL2RB, GNKD1, GSGK2, 및 GSPRY2는 각각 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2의 유전자 발현량을 나타낸다. 즉, 상기 각각의 유전자 발현량은 유전자 발현량 측정 기기인 nCounter(Nanostring Technologies, Seattle, WA)를 사용하여 얻어진 표준화된 발현량(normalized expressioin level)을 나타낸다. 상기 표준화(normalization)는 nCounter(Nanostring Technologies, Seattle, WA)에 제공되는 nSolver Analysis Software v 3.0(Nanostring Technologies)을 사용하여 제조사 권장사항에 따라 수행된다.
이하, 본 발명을 실시예를 통하여 더욱 상세히 설명한다. 그러나 이들 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 것으로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
1. 시험방법
(1) RNA 추출
RNeasy FFPE 키트(Qiagen, Hilden, Germany), 탈파라핀화 용액(Deparaffinization Solution)(Qiagen, Hilden, Germany) 및 DNase I treatment(Qiagen, Hilden, Germany)를 사용하여, FFPE 조직(n=156)으로부터 총 RNA를 추출하였다. 시험 참여 전에 환자로부터 서면 동의를 받았으며, 연구 프로토콜(2017-0333)은 서울아산병원(Asan Medical Center)의 임상시험심사위원회(institutional review board)의 승인을 받았다.
(2) 환자 및 반응 평가
무작위로 선택된 직장암 환자(n=156)를 트레이닝 코호트(training cohort)(n=60) 및 검증 코호트(validation cohort)(n=96)로 나누었다. 모든 환자는 2014년 1월부터 2017년 12월 사이에 서울아산병원에서 PCRT 후 수절적 절제를 받았다. 수술 치료를 받지 않거나, 수술전 생검(pretreatment biopsy specimen)이 가능하지 않거나, 또는 수술후 병리학적 반응을 평가할 수 없는 환자는 본 연구에 포함시키지 않았다.
PCRT는 25 또는 28 프랙션(fractions)으로 45-50.4 Gy의 선량으로 실시하였다. 화학요법(Chemotherapy)은 2 사이클로 시행하였으며, 방사선 치료의 첫째 주 및 다섯번째 주 중에 3일에 걸쳐 5-플루오로유라실(5-fluorouracil)(375 mg/m2 daily) 및 류코보린(leucovorin)(20 mg/m2 daily)을 정맥 주사(intravenous bolus injection)하였고, 방사선 치료 동안 카페시타빈(capecitabine)(1,650 mg/m2 daily)을 매일 2회 경구투여하였다. 수술적 절제는 PCRT 종료후 6-8주에 실시하였다. 수술적 절제는 국소 절제(local excision) 및 방사선 절제(radical resection)를 포함하였으며, 이는 전직장간막절제술(total mesorectal excision, TME)의 원칙에 따라 실시하였다(Heald RJ, et al., The mesorectum in rectal cancer surgery--the clue to pelvic recurrence? Br J Surg 1982;69:613-6).
종양 반응 정도(tumor regression grading, TRG)에 대한 5가지 분류(five-tier classification)을 사용하여, PCRT에 대한 원발성 종양의 병리학적 반응을 평가하였다((Mandard AM, et al. Pathologic assessment of tumor regression after preoperative chemoradiotherapy of esophageal carcinoma. Clinicopathologic correlations. Cancer 1994;73:2680-6). 잔류 종양 및 섬유화에 따라 선택되는 TRG 카테고리는 다음과 같다: 1) 완전 회복[잔류 종양 세포가 없고 단지 섬유성 덩어리만 관찰됨(no residual tumor cells and only a fibrotic mass)], 2) 거의 완전 회복[섬유성 조직 중에 잔류 종양 세포가 현미경 하에서 관찰되기 어려움(difficult to microscopically find residual tumor cells in the fibrotic tissue)], 3) 중간 회복[잔류 종양과 함께, 명백한 방사선조사-관련 변화가 쉽게 관찰될 수 있음(easily identifiable dominant irradiation-related changes with residual tumor)], 4) 최소 회복[명백한 방사선 조사-관련 변화와 함께 명백한 종양 덩어리가 관찰됨(a dominant tumor mass with obvious irradiation-related changes), 및 5) 회복 없음[방사선 조사-관련 섬유화, 괴사 또는 혈관 변화가 없음(no evidence of irradiation-related fibrosis, necrosis, or vascular changes)]. 환자들은 2개의 큰 분류로 분류하였다: 반응자(완전 혹은 거의 완전한 회복을 보인 환자: n=72) 및 비-반응자(다른 모든 환자, n=84).
(3) 유전자 발현 분석
유전자(총 770개 유전자: Endogenous 유전자 730개, Housekeeping 유전자 40개) 발현 분석은 nCounter(Nanostring Technologies, Seattle, WA)을 사용하여 수행하였다. 각각의 패널(panel)에서의 반응은 15 μl 앨리콧(aliquot)을 포함하였으며, 상기 앨리콧은 총 RNA 200 ng 및 리포터와 캡쳐 프로브를 포함하였다. 유전자 발현 데이터(raw data)의 표준화(normalization)는 nCounter(Nanostring Technologies, Seattle, WA)에 제공되는 nSolver Analysis Software v 3.0(Nanostring Technologies)을 사용하여 제조사 권장사항에 따라 수행하였다. 구체적으로, 실험된 검체중 분석할 검체들을 선택한 후 Background subtraction 체크를 해제하였다. 도 5는 nSolver Analysis Software v 3.0에서 Background subtraction 체크를 해제한 것을 나타내는 일 예이다. 표준화 파라미터(Normalization Parameters)에 있어서, Positive Control Normalization에서 POS_F를 체크 해제하고, Geometric mean을 선택하고, Range 는 0.3-3 으로 설정하였다. CodeSet Content (Reference or Housekeeping) 표준화는 Standard 로 설정하고, Codeset Content는 Endogenous 유전자들, Normalization Codes 는 Housekeeping 유전자들을 각각 선택하고, Geometric mean을 선택하였으며, Range 는 0.1-10 으로 설정하였다. 도 6은 표준화 파라미터 설정을 나타내는 일 예이다.
(4) 통계분석
트레이닝 코호트 및 검증 코호트의 임상병리학적 변수는 카이제곱 검정(χ2-test) 및 피셔의 정확성 검정(Fisher's exact test)을 사용하여 평가하였으며, p < 0.05를 통계학적으로 유의한 것으로 간주하였다.
(5) 통계적 조합 유전자 분석(Statistical Combination Gene Analysis)
본 연구에서의 모든 통계분석은 오픈 소스 통계 프로그램 환경 R 언어(open source statistical programming environment R language)(Version 3.4.3)을 사용하여 수행하였다. 트레이닝 코호트에서, 스튜던트 t-테스트를 통하여 상이하게 발현되는 유전자(DEGs)를 과발현 혹은 저발현된 것으로 분류하여(p <0.05 및 |폴드-변화(fold-change)| >1.5), PCRT 처리 반응자를 비-반응자와 비교하였다. DEGs를 추가로 단변량 로지스틱 회귀분석(univariate logistic regression)을 사용하여 선발(shortlist)하였다. 선발된 DEGs의 수를 조합하여 분석하였고, 유전자 조합(gene combinations)의 총 수는 다음 식을 사용하여 계산하였다:
상기 식에서, n은 선발된 DEGs 총 수이고, k는 조합하여 포함시킨 유전자의 수이다.
다변량 로지스틱 회귀분석(multivariate logistic regression analysis)를 수행하여 유전자 시그니쳐(gene signatures) 및 임상병리학적 특징의 관련성을 측정하였다(p<0.05, 표 5).
후보 유전자 시그니쳐(p < 0.05, AUC > 0.08, 민감도(sensitivity) > 75% 및 특이도(specificity) > 75%)를 k-fold 교차 검증에 의해 계층화하여 최적의 유전자 조합(gene combination)을 동정하였다. 트레이닝 코호트는 2개의 폴드(트레이닝 세트 및 시험 세트)로 나누어 트레이닝 세트에서의 기준 값을 테스트 세트에 적용하여 결과를 확인하였으며, 트레이닝 세트와 시험 세트의 환자군은 무작위로 나누었고 이를 300회 반복하여 테스트하였다. 정확도는 시험 세트에 대하여 p <0.05를 근거하여 계산하였다.
(6) 메타분석(meta-analysis)
트레이닝 코호트(n=60)에 대한 메타분석을 수행하여 PCRT 반응자에서 활성화된 신호변환경로(signal transduction pathways)의 동정하였다. 메타분석은 CBS Probe PINGSTM(Protein Interaction Network Generation System, 대한민국 특허등록 제10-0957386호)을 사용하여 수행하였다. 상기 프로그램은, 상호작용하는 유전자 및 유전자 조합(gene combination)의 유전자 상호작용 정보[상호작용 거리(interaction distance) 및 상호작용 빈도(interaction frequency) 등]를 동정하기 위한 5개의 모듈을 사용한다: 단백질-단백질 상호작용(protein-protein interactions) 모듈(PPI module), Path-Finder 모듈(Path-Finder module), Path-Linker 모듈(Path-Linker module), Path-maker 모듈(Path-maker module) 및 Path-Lister 모듈(Path-Lister module). 동정된 유전자들을 Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes(KEGG) 데이터베이스로부터 얻어진 신호변환경로로 맵핑(mapping)하였다(Kanehisa M, et al. The KEGG databases at GenomeNet. Nucleic Acids Res. 2002;30:42-6). 상호작용 및 상호작용하는 유전자의 수에 따라 가장 높은 10개의 신호변환경로를 선택하였다.
신호변환경로와 관련되는 조합 유전자들(combination genes)의 수를 계산함으로써 PCRT 반응자에서 가장 유의한 변환경로를 동정하기 위하여, 트레이닝 코호트의 메타분석을 수행하였다.
각각의 신호변환경로에 대하여, 시그니쳐 유전자와 상호작용하는 유전자들의 유전자 상호작용 빈도를 계산하였다. 각각의 신호변환경로 내에서 가장 높은 유전자 상호작용 수를 100%로 하여 이에 대비해서 상호작용 수가 75% 이상을 기준으로 하여 상호작용 유전자를 선정하였다(도 2). 높은 상호작용 빈도 유전자를 갖는 가장 높은 10개의 신호변환경로를 트레이닝 코호트의 환자로부터 동정하였으며, 유전자 시그니쳐를 관련된 신호변환경로에 매치시켰다.
2. 시험결과
(1) 임상병리학적 특징
표 1은 본 연구 코호트의 임상병리학적 특징을 요약한 것이다. 트레이닝 코호트 및 검증 코호트 사이에서 통계적으로 유한 차이는 없었다.
트레이닝 코호트 (n = 60) |
검증 코호트 (n = 96) |
p-값 | ||
성 |
남성 | 27 (45.0%) | 53 (55.2%) | 0.282 |
여성 | 33 (55.0%) | 43 (44.8%) | ||
분화도 | 고분화도 | 9 (15%) | 18 (18.9%) | 0.596 |
중증도 분화도 | 51 (85.0%) | 76 (79.1%) | ||
저분화도 | 0 (0.0%) | 2 (2.0%) | ||
임상적 T-단계 | T1 | 0 (0.0%) | 0 (0.0%) | 0.810 |
T2 | 4 (6.7%) | 9 (9.4%) | ||
T3 | 53 (88.3%) | 78 (81.3%) | ||
T4 | 3 (5.0%) | 4 (9.0%) | ||
임상적 N-단계 | N0 | 2 (3.3%) | 10 (10.4%) | 0.225 |
N1 | 24 (40.0%) | 40 (41.7%) | ||
N2 | 34 (56.7%) | 46 (47.9%) | ||
임상적 M-단계 |
M0 | 58 (96.7%) | 94 (97.9%) | 0.639 |
M1 | 2 (3.3%) | 2 (2.1%) | ||
병리학적 T-단계 |
Tis | 1 (1.7%) | 2(2.0%) | 0.908 |
T0 | 9 (15.0%) | 16 (16.7%) | ||
T1 | 3 (5.0%) | 4 (4.2%) | ||
T2 | 17 (28.3%) | 25 (26.0%) | ||
T3 | 30 (50.0%) | 46 (47.9%) | ||
T4 | 0(0.0%) | 3 (3.1%) | ||
병리학적 N-단계 |
N0 | 41 (68.3%) | 66 (68.8%) | 0.762 |
N1 | 10 (16.7%) | 22 (22.9%) | ||
N2 | 5 (8.3%) | 8 (8.3%) | ||
병리학적 M-단계 | M0 | 59 (98.3%) | 95 (99.0%) | 1.000 |
M1 | 1 (1.7%) | 1 (1.0%) |
약어: 병리학적; T, 종양; N, 절(node); M, 전이
(2) 반응자 및 비-반응자 간의 상이한 유전자 발현의 분석
트레이닝 코호트에서 반응자(n=27) 및 비-반응자(n=33) 간의 상이한 유전자 발현의 분석 결과, 47/730 유전자들이 통계적으로 유의하게 상이하게 발현되었다((p < 0.05). 다변량 로지스틱 회귀분석을 통하여, 이들 47개 유전자들 중 42개 유전자들을 선별하였다((p < 0.05). 반응자에서, 28개 유전자가 저발현(down-regulated)되었으며, 14개 유전자가 과발현(up-regulated)되었다(표 2).
Sr. No. | 유전자 | p-값 | Fold-변화 |
1 | ID1 | 2.17E-02 | -2.78 |
2 | WNT11 | 1.99E-02 | -2.32 |
3 | NKD1 | 1.90E-03 | -2.27 |
4 | SFN | 2.45E-03 | -2.24 |
5 | LAMA5 | 8.51E-03 | -1.96 |
6 | CACNA1D | 5.06E-04 | -1.96 |
7 | IKBKB | 9.91E-03 | -1.88 |
8 | PLA2G4F | 5.89E-03 | -1.83 |
9 | CDK6 | 3.63E-03 | -1.79 |
10 | CIC | 1.21E-02 | -1.76 |
11 | SMARCB1 | 5.80E-04 | -1.75 |
12 | SRSF2 | 3.07E-03 | -1.73 |
13 | IKBKG | 1.51E-02 | -1.68 |
14 | BAP1 | 9.01E-03 | -1.68 |
15 | SPRY2 | 1.52E-03 | -1.65 |
16 | AXIN2 | 5.01E-03 | -1.65 |
17 | GNA11 | 6.73E-03 | -1.64 |
18 | FGFR4 | 1.69E-03 | -1.64 |
19 | FGFR3 | 1.05E-03 | -1.62 |
20 | HDAC10 | 1.08E-03 | -1.62 |
21 | SGK2 | 5.64E-03 | -1.6 |
22 | H3F3A | 2.42E-03 | -1.58 |
23 | EPHA2 | 1.74E-02 | -1.57 |
24 | U2AF1 | 4.56E-03 | -1.56 |
25 | ITGB4 | 3.14E-03 | -1.56 |
26 | TRAF7 | 6.07E-03 | -1.54 |
27 | CBL | 5.56E-03 | -1.53 |
28 | MAP2K2 | 1.99E-03 | -1.51 |
29 | BMP2 | 3.06E-02 | 1.5 |
30 | CDC14B | 5.16E-03 | 1.51 |
31 | CACNA2D1 | 1.13E-02 | 1.52 |
32 | ETV7 | 1.37E-02 | 1.55 |
33 | STAT1 | 1.89E-02 | 1.56 |
34 | ITGB3 | 2.98E-02 | 1.57 |
35 | FAS | 2.59E-02 | 1.58 |
36 | IL1R1 | 2.31E-02 | 1.61 |
37 | RASGRP1 | 3.42E-02 | 1.69 |
38 | IRS1 | 1.17E-02 | 1.7 |
39 | BMP8A | 1.77E-02 | 1.75 |
40 | IL12A | 3.73E-02 | 1.99 |
41 | CD40 | 1.51E-03 | 2.18 |
42 | IL2RB | 1.27E-02 | 2.33 |
폴드-변화(Fold change)는 반응자의 평균 발현 수준을 비-반응자의 평균 발현 수준으로 나누어 계산하였다.
(3) 유전자 시그니쳐의 선별 및 로지스틱 회귀 분석
42개의 상이하게 발현되는 유전자의 k-폴드 교차검증에 의해, 9개의 유전자 시그니쳐가 최적의 유전자 조합(gene combination)임을 확인하였다. 상기 9개의 유전자는 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2이다. 모든 후보 유전자 시그니쳐들의 2-폴드 교차검증 결과, 상기 9개의 유전자 시그니쳐는 반응자 및 비-반응자를 구분하는데 있어서 일관된 정확도(86.9%)를 나타내었다(트레이닝 코호트에서 민감도(sensitivity) = 81.5% 및 특이도(pecificity) = 84.8%)(표 3).
Sr. No. | 유전자 시그니쳐 | 로지스틱 회귀 p-값 | 교차검증 정확도 (%) | AUC* | 민감도 (%) |
특이도 (%) |
1 | ETV7_H3F3A_HDAC10_ID1_IL1R1_SPRY2 | 7.60E-04 | 72 | 0.841 | 77.8 | 81.8 |
2 | H3F3A_IL12A_IL1R1_NKD1_PLA2G4F_SGK2 | 1.13E-04 | 79.7 | 0.868 | 77.8 | 87.9 |
3 | H3F3A_HDAC10_ID1_IL1R1_NKD1_SPRY2_STAT1 | 1.81E-04 | 75.7 | 0.878 | 77.8 | 93.9 |
4 | H3F3A_HDAC10_IL1R1_PLA2G4F_SGK2_TRAF7_WNT11 | 7.47E-04 | 57 | 0.822 | 81.5 | 75.8 |
5 | H3F3A_IL12A_IL1R1_NKD1_PLA2G4F_RASGRP1_SGK2 | 1.99E-04 | 77.3 | 0.871 | 81.5 | 90.9 |
6 | FGFR3_H3F3A_HDAC10_ID1_IL1R1_IL2RB_TRAF7_WNT11 | 4.65E-04 | 81 | 0.851 | 77.8 | 84.8 |
7 | FGFR3_GNA11_H3F3A_IL12A_IL1R1_IL2RB_NKD1_SGK2_SPRY2 | 2.56E-04 | 83.3 | 0.869 | 81.5 | 84.8 |
8 | FGFR3_H3F3A_IL12A_IL1R1_IL2RB_NKD1_SGK2_SPRY2_TRAF7 | 3.56E-04 | 73.7 | 0.870 | 77.8 | 84.8 |
* AUC: 곡선하 면적(area under the curve)
선별된 유전자 시그니쳐와 임상병리학적 특징과의 관련성을 검토하였다. 단변량 분석 결과, 성 및 선별된 유전자 시그니쳐는 PCRT 반응과 유의하게 양성으로(significantly and positively) 관련되었다. 병리학적 T-단계는 PCRT 반응과 유의하게 음성으로(significantly and negatively) 관련되었다(표 4). 다변량 분석을 수행하여 유전자 시그니쳐, 성, 및 병리학적 T-단계 사이의 관련성을 평가하였다. 그 결과, 유전자 시그니쳐, 성, 및 병리학적 T-단계는 PCRT 반응의 독립적인 예측인자(predictors)인 것으로 확인되었다(표 5).
변수1 | N2 | Coef3 | SE4(Coef) | Z-스코어 | p-값 |
후보 유전자 | |||||
FGFR3_GNA11_H3F3A_IL12A_IL1R1_IL2RB_NKD1_SGK2_SPRY2 (low vs. high) | 60 | 3.204371 | 0.693663 | 4.619491 | 3.85E-06 |
임상병리학적 특징 | |||||
GENDER (Male vs. Female) | 60 | 1.170379 | 0.549265 | 2.130811 | 3.31E-02 |
GRADED_DESCRIPTION (Moderate vs. Well) | 59 | -0.787079 | 0.783116 | -1.00506 | 3.15E-01 |
CLIN_T_TNM (T2 vs. T3-T4) | 60 | -1.386294 | 1.185853 | -1.16903 | 2.42E-01 |
CLIN_N_TNM (N0-N1 vs. N2) | 60 | -0.633724 | 0.528492 | -1.19912 | 2.30E-01 |
CLIN_M_TNM (M0 vs. M1) | 60 | 16.8437 | 1696.73436 | 0.009927 | 9.92E-01 |
PATH_T_TNM (Tis-T0-T1-T2 vs. T3) | 60 | -2.233592 | 0.605857 | -3.68666 | 2.27E-04 |
PATH_N_TNM (N0-N1 vs. N2) | 56 | -0.04879 | 0.956183 | -0.05103 | 9.59E-01 |
PATH_M_TNM (M0 vs. M1) | 60 | -15.39617 | 1455.39756 | -0.01058 | 9.92E-01 |
1약어: CLIN; 임상적, PATH; 병리학적, T; 종양, N; 절(node), M; 전이
2Coef; 계수(Coefficient)
3SE; 표준 편차(Standard error)
4N; 샘플의 수
변수1 | Odds Ratio | 95% CI2 | p-값 |
FGFR3_GNA11_H3F3A_IL12A_IL1R1_IL2RB_NKD1_SGK2_SPRY2 (low vs. high) | 25.6 | 4.71 - 139.23 | 0.0002 |
GENDER (Male vs. Female) | 2.26 | 0.48 - 10.72 | 0.3048 |
PATH_T_TNM (Tis-T0-T1-T2 vs. T3) | 0.08 | 0.02 - 0.46 | 0.0042 |
1약어: CLIN; 임상적, PATH; 병리학적, T; 종양, N; 절(node), M; 전이
2CI; 신뢰구간(Confidence interval)
(4) 선별된 유전자 시그니쳐 검증
선별된 유전자 시그니쳐는, 검증 코호트((n=96)에서, 비-반응자로부터 PCRT 반응자를 81.0%의 정확도로 구분하였다. (표 6)
유전자 시그니쳐 | FGFR3_GNA11_H3F3A_IL12A_IL1R1_IL2RB_NKD1_SGK2_SPRY2 | |
로지스틱 회귀분석 p-값 | 4.62 Х 10-4 | |
교차 검증 정확도 (%) | 83.3 | |
유전자 수 | 9 | |
트레이닝 세트 | 정확도 (%) | 86.9 |
민감도 (%) | 81.5 | |
특이도 (%) | 84.8 | |
반응 (%) | 81.5 | |
검증 세트 | 정확도(%) | 81.0 |
민감도 (%) | 82.3 | |
특이도 (%) | 79.4 | |
PPV1 (%) | 87.9 | |
NPV2 (%) | 71.1 |
1PPV; 양성 예측치(Positive Predictive Value)
2NPV: 음성 예측치(Negative Predictive Value)
PCRT 반응의 9개 유전자 시그니쳐 예측자(predictive)는, 암-관련 경로, PI3K-Akt 신호변환경로를 포함한 KEGG 신호변환경로(도 3 및 도 4), 암에서의 프로테오글리칸, 인간 사이토메갈로바이러스 감염(Human cytomegalovirus infection) 및 인간 파필로마바이러스 감염(Human papillomavirus infection)에 높게 관련되었다. 유전자 시그니쳐와 관련된 높은 상호작용 빈도 유전자는 GRB2, HSP90AA1 및 HSP90AB1을 포함하였다(표 7).
경로명/높은 상호작용 빈도 유전자 | |
경로 | Pathways in cancer PI3K-Akt signaling pathway Proteoglycans in cancer Human cytomegalovirus infection Human papillomavirus infection |
높은 상호작용 빈도 유전자 | GRB2 HSP90AA1 HSP90AB1 |
(4) 로지스틱 회귀 분석을 통한 치료 효과 예측 점수(TBPS, Treatment Benefit Prediction Score)의 계산
상기와 같은 방법으로 선별된 9개의 유전자, 즉 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2의 조합에 대하여 단변량 로지스틱 회귀분석(univariate logistic regression)을 통하여 얻어진 각 유전자별 회귀 계수 값은 다음 표 8과 같다.
유전자 | 회귀 계수 값 |
FGFR3 | -0.006697 |
GNA11 | -0.001805 |
H3F3A | -0.000373 |
IL12A | 0.063996 |
IL1R1 | 0.015269 |
IL2RB | 0.017445 |
NKD1 | -0.003099 |
SGK2 | -0.004739 |
SPRY2 | -0.002763 |
nCounter(Nanostring Technologies, Seattle, WA)를 사용하여 얻어진 9개 유전자, 즉 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 각각의 표준화된 발현량 및 각 유전자별 회귀 계수 값을 사용하여 다음 식에 따라, 치료 효과 예측 점수(TBPS, Treatment Benefit Prediction Score)를 계산하였다.
TBPS = CFGFR3*GFGFR3 + CGNA11*GGNA11 + CH3F3A*GH3F3A + CIL12A*GIL12A + CIL1R1*GIL1R1 + CIL2RB*GIL2RB + CNKD1*GNKD1 + CSGK2*GSGK2 + CSPRY2*GSPRY2
상기 식에서 C유전자는 해당 유전자의 회귀 계수 값을 나타내며, G유전자는 nCounter(Nanostring Technologies, Seattle, WA)를 사용하여 얻어진 해당 유전자의 표준화된 발현량을 나타낸다. 따라서, 상기 표 8의 결과로부터, TBPS는 하기 식에 따라 또한 계산될 수 있다.
TBPS = (-0.006697)*GFGFR3 + (-0.001805)*GGNA11 + (-0.000373)*GH3F3A + (0.063996)*GIL12A + (0.015269)*GIL1R1 + (0.017445)*GIL2RB + (-0.003099)*GNKD1 + (-0.004739)*GSGK2 + (-0.002763)*GSPRY2
상기와 같이 계산된 TBPS 값은 -7.269813 로서, 이는 PCRT에 대한 반응을 예측할 수 있는 기준값(threshold)으로 사용될 수 있다. 즉, 직장암 환자에서 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2의 발현량을 각각 측정하고, 상기 식에 따라 얻어진 TBPS 값이 -7.269813 보다 클 경우에는 PCRT에 대한 반응을 나타내는 환자(즉, PCRT에 대하여 감수성을 나타내는 환자)로 판별될 수 있으며, -7.269813 이하일 경우에는 PCRT에 대한 반응을 나타내지 않는 환자(즉, PCRT에 대하여 감수성을 나타내지 않는 환자)로 판별될 수 있다.
3. 고찰
본 연구에서, LARC 환자에서 PCRT에 대한 반응을 예측할 수 있는 9개의 유전자 시그니쳐가 동정 및 검증되었다. 상기 9개 유전자 시그니쳐는 기존에 보고된 예측 시그니쳐에 대하여 3가지 중요한 장점을 갖는다: 1) 상기 유전자 시그니쳐는 기존에 보고된 시그니쳐에 비해 PCRT에 대한 반응을 더욱 높은 정확도로 예측할 수 있다; 2) 유전자 발현 분석은 FFPE 샘플 및 FDA-승인된 하드웨어 및 시약을 사용하여 수행될 수 있다; 및 3) 9개의 유전자 시그니쳐는 기존의 연구에서 사용된 것보다 더욱 큰 코호트에서 검증되었다. 따라서, 상기 방법은 임상적 세팅(clinical setting)에 쉽게 적용될 수 있다.
높은 정확도로 PCRT에 대한 반응을 예측할 수 있는 9개의 유전자 시그니쳐는 2가지 중요한 임상적 의미를 갖는다. 첫째, 9개의 유전자 시그니쳐를 사용하여 확인된 반응자를 PCRT로 처리할 수 있으며, 이는 직장-보존적인(rectal-sparing) 수술로 이어질 수 있다. 국소 절제 또는 수술의 연기는 때때로 근치적 절제(radical resection)와 관련된 수술 합병증을 회피하는데 사용될 수 있으며, 또한 삶의 질을 떨어뜨릴 수 있는 장루(stoma) 형성을 줄이는데 사용될 수 있다. 둘째, 낮은 반응자의 확인은 LARC 환자의 치료에 유리할 수 있으며, 이는 이러한 환자군에서 독성적이고 또한 비효율적인 방사선조사 치료에 대한 노출을 방지할 수 있기 때문이다. 또한, 비효율적인 PCRT로 인한 수술적 치료의 지연을 회피할 수 있다. LARC의 분자적인 특징에 근거한 이러한 맞춤형 접근은 LARC 환자의 전체적인 생존 및 삶의 질을 개선할 수 있다.
상기 시그니쳐에 포함된 9개의 유전자는 암에서 이상조절(dysregulated)된다(Waaler J, et al. Novel synthetic antagonists of canonical Wnt signaling inhibit colorectal cancer cell growth. Cancer Res. 2011;71:197-205; Marshall KW, et al. A blood-based biomarker panel for stratifying current risk for colorectal cancer. Int . J. Cancer 2010;126:1177-86; Chang YT, et al. Verification of gene expression profiles for colorectal cancer using 12 internet public microarray datasets. World J. Gastroenterol . 2014;20:17476-82; Stanilov NS, et al. Monocytes expression of IL-12 related and IL-10 genes in association with development of colorectal cancer. Mol. Biol. Rep. 2012;39:10895-902; Fromme JE, et al. FGFR3 mRNA overexpression defines a subset of oligometastatic colorectal cancers with worse prognosis. Oncotarget 2018;9:32204-32218; Feng YH, et al. MicroRNA-21-mediated regulation of Sprouty2 protein expression enhances the cytotoxic effect of 5-fluorouracil and metformin in colon cancer cells. Int . J. Mol . Med . 2012;29:920-6; Ayoubi HA, Investigation of the human H3.3B (H3F3B) gene expression as a novel marker in patients with colorectal cancer. J. Gastrointest . Oncol . 2017;8:64-69; Feng YH, et al. Deregulated expression of sprouty2 and microRNA-21 in human colon cancer: Correlation with the clinical stage of the disease. Cancer Biol . Ther . 2011;11:111-21). FGFR3는 직장남 환자에서 과발현되며, 세포 증식 및 이동을 촉진함으로써 암유전자(oncogene)로서 작용한다(Fromme JE, et al. FGFR3 mRNA overexpression defines a subset of oligometastatic colorectal cancers with worse prognosis. Oncotarget 2018;9:32204-32218). GNA11은 G 단백질 알파 서브유닛을 코딩하며, 다양한 암에서 발암(carcinogenesis)에 관여한다(Shoushtari AN, et al. GNAQ and GNA11 mutations in uveal melanoma. Melanoma Res. 2014;24:525-34; Van Raamsdonk CD, et al. Mutations in GNA11 in uveal melanoma. N. Engl . J. Med . 2010;363:2191-9). SPRY2 과발현은 EMT를 촉진함으로써 직장암으로의 발전에 기여한다(Zhang Q, et al. Atypical role of sprouty in colorectal cancer: sprouty repression inhibits epithelial-mesenchymal transition. Oncogene 2016;35:3151-62). SGK1는 이동 및 증식과 같은 몇몇의 생리학적 과정에 관여하며 직장암에서 과조절(upregulated)된다(Eide PW, et al. NEDD4 is overexpressed in colorectal cancer and promotes colonic cell growth independently of the PI3K/PTEN/AKT pathway. Cell. Signal. 2013;25:12-8). 따라서, 상기 9개 유전자 시그니쳐는 PCRT에 대한 반응을 예측할 수 있는 실용적인 도구일 뿐만 아니라 LARC의 생리에 대한 메카니즘적인 연결일 수 있다.
요약하면, LARC 환자에서 PCRT에 대한 반응을 예측할 수 있는 9개 유전자 시그니쳐가 동정되었으며, 상기 유전자 시그니쳐는 FFPE 샘플 및 FDA-승인된 하드웨어 및 시약을 사용하여 임상적 세팅에 쉽게 적용될 수 있다. PCRT에 대한 반응자 및 비-반응자에 있어서의 맞춤형 치료 접근은 LARC 환자의 암 치료 효율을 개선할 수 있다.
Claims (3)
- 직장암 환자에서 수술-전 화학방사선치료에 대한 반응을 나타내는 환자의 진단에 필요한 정보를 제공하기 위하여, 직장암 환자로부터 체외로 분리된 종양조직 샘플 중에서 FGFR3, GNA11, H3F3A, IL12A, IL1R1, IL2RB, NKD1, SGK2, 및 SPRY2 유전자의 발현량을 각각 측정하는 단계를 포함하는 분석방법.
- 제1항에 있어서, 상기 직장암 환자가 국소진행성 직장암 환자인 것을 특징으로 하는 분석방법.
- 제1항 또는 제2항에 있어서, 상기 직장암 환자로부터 체외로 분리된 종양조직 샘플이 포르말린-고정된 파라핀-포매된 종양조직-유래의 생검 샘플인 것을 특징으로 하는 분석방법.
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