KR102189581B1 - Primers and probes for simultaneous detection of lineage of lassa virus and detecting method for lassa virus using the same - Google Patents
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Abstract
본 발명은 라싸 바이러스(Lassa virus)의 계통(lineage)인 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV를 동시에 검출하기 위한 프라이머 및 프로브, 및 이를 이용한 라싸 바이러스의 검출방법에 관한 것이다. 구체적으로, 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트는 라싸 바이러스의 4종 계통(Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV)을 특이적으로 동시에 검출할 수 있고, 민감도가 우수하므로, 라싸 바이러스의 검출에 유용하게 사용될 수 있다.The present invention relates to primers and probes for simultaneously detecting Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV, which are lineages of Lassa virus, and a method for detecting Lassa virus using the same. Specifically, the primer and probe set of the present invention can specifically simultaneously detect four strains of Lhasa virus (Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV), and has excellent sensitivity, so detection of Lhasa virus It can be usefully used for
Description
본 발명은 라싸 바이러스(Lassa virus)의 계통(lineage)인 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV를 동시에 검출하기 위한 프라이머 및 프로브, 및 이를 이용한 라싸 바이러스의 검출방법에 관한 것이다.The present invention relates to primers and probes for simultaneously detecting Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV, which are lineages of Lassa virus, and a method for detecting Lassa virus using the same.
라싸 바이러스는 아레나바이러스과(Arenaviridae), 아레나바이러스속(Aremavirus) 및 맘아레나바이러스속(Mammaremavirus)에 속하는 바이러스로, 이분절 단일가닥의 양성 RNA 바이러스이며, 직경은 60~280 nm이고, 외피(envelop)를 가진다. 라싸 바이러스는 주로 서부 아프리카에 위치한 시에라리온(Sierra Leone), 라이베리아(Liberia), 기니아(Guinea), 나이지리아(Nigeria)에서 발생하고, 연간 30만~50만명이 감염되어 5천~만명이 사망한다. 라싸 바이러스는 유전적 변이(genetic variation)에 따라 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV의 4가지 계통(lineage)으로 분류되고, Lineage I, Lineage II 및 Lineage III는 나이지리아에서 발생하고, Lineage IV는 그 외 서부 아프리카 지역에서 발생한다.Lhasa virus is a virus belonging to the arenaviridae, arenavirus, and mammaremavirus, is a bi-segmented single-stranded positive RNA virus, the diameter is 60-280 nm, and the envelope (envelop) Have. The Lhasa virus mainly occurs in Sierra Leone, Liberia, Guinea, and Nigeria, located in West Africa, and infects 300,000 to 500,000 people per year, killing 50 to 10,000 people. Lhasa virus is classified into four lineages of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV according to genetic variation, and Lineage I, Lineage II and Lineage III occur in Nigeria, and Lineage IV occurs elsewhere in West Africa.
라싸 바이러스는 바이러스에 감염된 설치류에 물려 전파되거나, 감염된 설치류의 타액, 분비물, 혈액, 또는 감염된 환자의 소변, 인두분비물에 대한 직접적 접촉이나 공기접촉으로 전파되며, 오염된 주사바늘 및 의료기기에 의한 병원감염도 발생한다. 라싸 바이러스에 감염된 환자 중 80%는 경미하거나 무증상을 나타내고, 증상이 나타나는 환자에서는 초기에 열, 구토, 복통, 인후통, 기침, 구강 점막 궤양, 삼출성 인두염, 경부 림프절 비대 등이 나타나며, 이후 목과 머리에 심한 붓기, 흉막과 심막 삼출 증상이 나타난다.The Lhasa virus is transmitted through direct contact or air contact with the saliva, secretions, blood, or urine of infected patients, or pharyngeal secretions from infected rodents, or by viral-infected rodent bites. Hospitals caused by contaminated needles and medical devices Infection also occurs. 80% of patients infected with the Lhasa virus are mild or asymptomatic, and in patients with symptoms, fever, vomiting, abdominal pain, sore throat, cough, oral mucosa ulcers, exudative pharyngitis, cervical lymph node enlargement, etc. Symptoms of severe swelling, pleural and pericardial effusion appear.
라싸 바이러스는 현재까지 안전하고 효과적인 백신이 없다. 이러한 고위험 바이러스가 생물테러로 사용될 경우 진단과 치료에 있어 치명적이며, 확산을 방지하기 어려워 국민보건에 심각한 영향을 끼칠 우려가 있어 이에 대한 대응책 마련이 시급하다. 그러나 생물테러 사건현장에서 주로 이용되는 면역크로마토그래피 시험법으로는 검출 가능한 생물작용제가 한정되어 있어 검출 가능한 생물작용제의 확대가 요구되고 있다. 또한 면역크로마토그래피 시험법의 경우, 민감도 개선 필요성이 제기됨에 따라 이를 보완할 수 있는 실시간 유전자중폭장비(real-time PCR)기기에서 운용될 수 있는 현장진단(Point of Care Testing, POCT) 검사법의 도입이 요구되고 있다.There is currently no safe and effective vaccine for the Lhasa virus. If such a high-risk virus is used as a bioterrorism, it is fatal in diagnosis and treatment, and it is difficult to prevent its spread and may seriously affect public health, so it is urgent to prepare countermeasures. However, as the immunochromatographic test method mainly used at the site of a biological terrorist incident, detectable biological agents are limited, and thus, expansion of detectable biological agents is required. In addition, in the case of immunochromatography, as the need to improve sensitivity is raised, a point of care testing (POCT) test method that can be operated in a real-time PCR device that can compensate for this has been introduced. Is being demanded.
현장진단은 체외진단 중 하나로, 피검자 및 환자와 가까운 위치에서 원심분리 등 샘플 사전가공을 거치지 않고, 신속하게 시행해 진료 및 치료에 활용할 수 있는 임상병리 검사방식이다. 최근까지는 개인의 자가혈당측정 용도로 많이 사용되었으나 수년 전부터 점차 다양한 질환의 진단 목적으로 사용 및 개발되고 있고, 서유럽에서 다른 진단 제품들이 가지고 있는 비용문제, 규제문제를 해결할 수 있는 분야로 각광받고 있으며, 저비용의 장점으로 개발도상국가에서도 수요가 증가하고 있다.On-site diagnosis is one of the in vitro diagnosis, and it is a clinical pathology test method that can be used for treatment and treatment by promptly performing the sample without pre-processing such as centrifugation at a location close to the subject and patient. Until recently, it was widely used for the purpose of measuring personal blood sugar, but it has been gradually used and developed for the purpose of diagnosing various diseases from several years ago, and is in the spotlight as a field that can solve the cost and regulatory problems of other diagnostic products in Western Europe. Due to its low cost, demand is also increasing in developing countries.
본 발명의 목적은 라싸 바이러스의 계통인 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV를 동시에 검출하기 위한 프라이머 및 프로브, 및 이를 이용한 라싸 바이러스의 검출방법을 제공하는 것이다.An object of the present invention is to provide a primer and a probe for simultaneously detecting Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV, which are lines of Lhasa virus, and a method of detecting Lhasa virus using the same.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 서열번호 1로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 정방향 프라이머; 서열번호 2로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 정방향 프라이머; 서열번호 3으로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 역방향 프라이머; 및 서열번호 4로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 역방향 프라이머로 이루어진 라싸 바이러스(Lassa virus)의 계통(lineage)을 동시에 검출할 수 있는 프라이머 세트를 제공한다.In order to achieve the above object, the present invention provides a first forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1; A second forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2; A first reverse primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 3; And it provides a primer set capable of simultaneously detecting the lineage of the Lassa virus consisting of a second reverse primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 4.
또한, 본 발명은 상기 프라이머 세트를 포함하는 라싸 바이러스의 계통을 동시에 검출할 수 있는 검출용 조성물을 제공한다.In addition, the present invention provides a composition for detection capable of simultaneously detecting the strains of Lhasa virus including the primer set.
또한, 본 발명은 상기 조성물을 포함하는 라싸 바이러스의 계통을 동시에 검출할 수 있는 검출용 키트를 제공한다.In addition, the present invention provides a detection kit capable of simultaneously detecting the strains of Lhasa virus comprising the composition.
또한, 본 발명은 검체로부터 분리된 핵산을 주형으로 상기 프라이머 세트를 이용하여 중합효소 연쇄반응(polymerase chain reaction, PCR)을 수행하는 단계를 포함하는 라싸 바이러스의 계통을 동시에 검출할 수 있는 방법을 제공한다.In addition, the present invention provides a method for simultaneously detecting the strains of Lhasa virus, including performing a polymerase chain reaction (PCR) using the primer set as a template using the nucleic acid isolated from a sample. do.
본 발명의 프라이머 및 프로브 세트는 라싸 바이러스의 4종 계통(Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV)을 특이적으로 동시에 검출할 수 있고, 민감도가 우수하므로, 라싸 바이러스의 검출에 유용하게 사용될 수 있다.The primer and probe set of the present invention can specifically simultaneously detect four strains of Lhasa virus (Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV), and has excellent sensitivity, making it useful for detection of Lhasa virus. Can be used.
도 1은 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트를 제작하기 위해 수집한 라싸 바이러스 균주(strain)의 염기서열을 정렬(alignment)한 도이다.
도 2는 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트를 이용하여 PCR 수행 시 검출한계를 확인한 도이다
(녹색: 내부 양성 대조군(ITC); 빨간색: 라싸 바이러스 시료; 파란선: 음성 대조군).
도 3은 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트를 이용하여 PCR 수행 시 간섭물질에 의한 간섭반응 여부를 확인한 도이다
(녹색: 내부 양성 대조군(ITC); 빨간색: 간섭물질이 첨가되거나 첨가되지 않은 라싸 바이러스 시료; 파란색: 음성 대조군).
도 4는 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트를 이용하여 PCR 수행 시 검출 재현성을 확인한 도이다
(녹색: 내부 양성 대조군(ITC); 빨간색: 라싸 바이러스 시료; 파란색: 음성 대조군).
도 5는 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트의 보관 안정성을 확인한 도이다
(녹색: 내부 양성 대조군(ITC); 빨간색: 라싸 바이러스 시료; 파란색: 음성 대조군).1 is a diagram illustrating alignment of the base sequences of the Lhasa virus strains collected to prepare the primer and probe set of the present invention.
Figure 2 is a diagram showing the detection limit when performing PCR using the primer and probe set of the present invention
(Green: internal positive control (ITC); red: Lhasa virus sample; blue line: negative control).
FIG. 3 is a diagram illustrating whether an interference reaction caused by an interfering substance is performed when PCR is performed using the primer and probe set of the present invention.
(Green: internal positive control (ITC); red: Lhasa virus sample with or without interfering substances; blue: negative control).
4 is a diagram illustrating detection reproducibility when performing PCR using the primer and probe set of the present invention.
(Green: internal positive control (ITC); red: Lhasa virus sample; blue: negative control).
5 is a diagram confirming the storage stability of the primer and probe set of the present invention
(Green: internal positive control (ITC); red: Lhasa virus sample; blue: negative control).
이하 본 발명을 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail.
본 발명은 서열번호 1로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 정방향 프라이머; 서열번호 2로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 정방향 프라이머; 서열번호 3으로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 역방향 프라이머; 및 서열번호 4로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 역방향 프라이머로 이루어진 라싸 바이러스(Lassa virus)의 계통(lineage)을 동시에 검출할 수 있는 프라이머 세트를 제공한다.The present invention is a first forward primer consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1; A second forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2; A first reverse primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 3; And it provides a primer set capable of simultaneously detecting the lineage of the Lassa virus consisting of a second reverse primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 4.
상기 라싸 바이러스의 계통은 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV일 수 있다.The lineage of the Lhasa virus may be Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV.
상기 프라이머는 라싸 바이러스의 계통인 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV의 특정 영역에 대해서 특이적으로 증폭하는 프라이머일 수 있으며, 보다 구체적으로는 S분절 유전자 단편을 특이적으로 증폭하는 것일 수 있다. 또한, 본 발명의 프라이머는 상기 특정 영역의 유전자에 상보적으로 결합가능한 10 내지 40개, 구체적으로는 15 내지 30개의 염기서열로 이루어진 정방향 또는 역방향 프라이머일 수 있다. 본 발명의 일 실시예에서, 상기 프라이머는 서열번호 1로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 정방향 프라이머, 서열번호 2로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 정방향 프라이머, 서열번호 3으로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 역방향 프라이머, 또는 서열번호 4로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 역방향 프라이머일 수 있다.The primer may be a primer that specifically amplifies a specific region of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV, which are lines of the Lhasa virus, and more specifically, specifically amplifies the S-segment gene fragment. I can. In addition, the primer of the present invention may be a forward or reverse primer consisting of 10 to 40, specifically 15 to 30 nucleotide sequences capable of complementarily binding to the gene of the specific region. In one embodiment of the present invention, the primer is a first forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1, a second forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2, and a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 3 It may be a first reverse primer consisting of, or a second reverse primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 4.
상기 프라이머는 포스포르아미다이트 고체 지지체 방법, 또는 기타 널리 공지된 방법을 사용하여 화학적으로 합성할 수 있다. 이러한 프라이머는 라싸 바이러스를 검출할 수 있는 효과를 나타내는 한, 당해 분야에 공지된 많은 수단을 이용하여 변형시킬 수 있다. 이러한 변형의 예로는 메틸화, 캡화, 천연 뉴클레오티드 하나 이상의 동족체로의 치환, 및 뉴클레오티드 간의 변형, 예를 들면, 하전되지 않은 연결체(예를 들어, 메틸 포스포네이트, 포스포트리에스테르, 포스포로아미데이트, 카바메이트 등) 또는 하전된 연결체(예를 들어, 포스포로티오에이트, 포스포로디티오에이트 등)로의 변형을 포함할 수 있다. 핵산은 하나 이상의 부가적인 공유 결합된 잔기, 예를 들면, 단백질(예를 들어, 뉴클레아제, 독소, 항체, 시그널 펩타이드, 폴리-L-리신 등), 삽입제(예를 들어, 아크리딘, 프로랄렌 등), 킬레이트화제(예를 들어, 금속, 방사성 금속, 철, 산화성 금속 등) 및 알킬화제를 함유할 수 있다. 또한, 본 발명의 프라이머는 필요한 경우, 분광학적, 광화학적, 생화학적, 면역화학적 또는 화학적 수단에 의해 직접적으로 또는 간접적으로 검출 가능한 표지를 포함할 수 있다. 표지의 예로는, 효소(예를 들어, 호스래디쉬 퍼옥시다제, 알칼린 포스파타아제), 방사성 동위원소(예를 들어, 32P), 형광성 분자 및 화학그룹(예를 들어, 바이오틴) 등이 있다.The primer can be chemically synthesized using a phosphoramidite solid support method, or other well known methods. Such primers can be modified using a number of means known in the art, as long as they exhibit an effect capable of detecting Lhasa virus. Examples of such modifications include methylation, encapsulation, substitution of one or more homologues of natural nucleotides, and modifications between nucleotides, such as uncharged linkers (e.g., methyl phosphonate, phosphoroester, phosphoroamidate. , Carbamate, etc.) or a charged linker (eg, phosphorothioate, phosphorodithioate, etc.). Nucleic acids may be one or more additional covalently linked moieties, e.g., proteins (e.g., nucleases, toxins, antibodies, signal peptides, poly-L-lysine, etc.), intercalating agents (e.g., acridin , Proralene, etc.), a chelating agent (eg, a metal, a radioactive metal, iron, an oxidizing metal, etc.), and an alkylating agent. In addition, the primer of the present invention may contain a label detectable directly or indirectly by spectroscopic, photochemical, biochemical, immunochemical or chemical means, if necessary. Examples of labels include enzymes (e.g. horseradish peroxidase, alkaline phosphatase), radioactive isotopes (e.g., 32P), fluorescent molecules and chemical groups (e.g., biotin), etc. have.
상기 프라이머는 현장진단(Point of Care Testing, POCT)을 위한 것일 수 있다. The primer may be for point of care testing (POCT).
또한, 본 발명은 상기 프라이머 세트를 포함하는 라싸 바이러스의 계통을 동시에 검출할 수 있는 검출용 조성물을 제공한다.In addition, the present invention provides a composition for detection capable of simultaneously detecting the strains of Lhasa virus including the primer set.
상기 라싸 바이러스의 계통은 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV일 수 있다.The lineage of the Lhasa virus may be Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV.
상기 프라이머 세트는 상술한 바와 같은 특징을 가질 수 있다. 일례로, 상기 프라이머는 라싸 바이러스의 계통인 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV의 특정 영역에 대해서 특이적으로 증폭하는 프라이머일 수 있고, 서열번호 1로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 정방향 프라이머, 서열번호 2로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 정방향 프라이머, 서열번호 3으로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 역방향 프라이머, 또는 서열번호 4로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 역방향 프라이머일 수 있다.The primer set may have the characteristics as described above. As an example, the primer may be a primer that specifically amplifies a specific region of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV, which is a lineage of Lhasa virus, and consists of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1. It may be a forward primer, a second forward primer consisting of a nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 2, a first reverse primer consisting of a nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 3, or a second reverse primer consisting of a nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 4 have.
상기 조성물은 서열번호 5로 기재되는 염기서열로 이루어진 프로브, 및 서열번호 6으로 기재되는 염기서열로 이루어진 프로브를 더 포함할 수 있다.The composition may further include a probe consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 5, and a probe consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 6.
본 명세서에서 사용되는 용어 "프로브"는 DNA 또는 RNA와 특이적으로 결합할 수 있는 수개 내지 수백 개의 염기에 해당하는 핵산 단편을 의미하며, 올리고뉴클레오티드(oligonucleotide) 프로브, 단쇄 DNA(single stranded DNA) 프로브, 이중쇄 DNA(double stranded DNA) 프로브 또는 RNA 프로브 등의 형태로 제작될 수 있다.The term "probe" as used herein refers to a nucleic acid fragment corresponding to several to hundreds of bases capable of specifically binding to DNA or RNA, and an oligonucleotide probe, a single stranded DNA probe , Double stranded DNA (DNA) probe or RNA probe, etc. may be produced.
상기 프로브는 포스포르아미다이트 고체 지지체 방법, 또는 기타 널리 공지된 방법을 사용하여 화학적으로 합성할 수 있다. 이러한 프로브는 라싸 바이러스를 검출할 수 있는 효과를 나타내는 한, 당해 분야에 공지된 많은 수단을 이용하여 변형시킬 수 있다. 이러한 변형의 예로는 메틸화, 캡화, 천연 뉴클레오티드 하나 이상의 동족체로의 치환, 및 뉴클레오티드 간의 변형, 예를 들면, 하전되지 않은 연결체(예를 들어, 메틸 포스포네이트, 포스포트리에스테르, 포스포로아미데이트, 카바메이트 등) 또는 하전된 연결체(예를 들어, 포스포로티오에이트, 포스포로디티오에이트 등)로의 변형을 포함할 수 있다. 핵산은 하나 이상의 부가적인 공유 결합된 잔기, 예를 들면, 단백질(예를 들어, 뉴클레아제, 독소, 항체, 시그널 펩타이드, 폴리-L-리신 등), 삽입제(예를 들어, 아크리딘, 프로랄렌 등), 킬레이트화제(예를 들어, 금속, 방사성 금속, 철, 산화성 금속 등) 및 알킬화제를 함유할 수 있다.The probe can be chemically synthesized using a phosphoramidite solid support method, or other well known method. Such probes can be modified using a number of means known in the art as long as they exhibit an effect capable of detecting Lhasa virus. Examples of such modifications include methylation, encapsulation, substitution of one or more homologues of natural nucleotides, and modifications between nucleotides, such as uncharged linkers (e.g., methyl phosphonate, phosphoroester, phosphoroamidate. , Carbamate, etc.) or a charged linker (eg, phosphorothioate, phosphorodithioate, etc.). Nucleic acids may be one or more additional covalently linked moieties, e.g., proteins (e.g., nucleases, toxins, antibodies, signal peptides, poly-L-lysine, etc.), intercalating agents (e.g., acridin , Proralene, etc.), a chelating agent (eg, a metal, a radioactive metal, iron, an oxidizing metal, etc.), and an alkylating agent.
상기 프로브는 이의 5' 말단에 리포터가 추가로 더 접합될 수 있다. 상기 리포터는 FAM(6-carboxyfluorescein), 텍사스 레드(texas red), 플루오레신(fluorescein), 플루오레신 클로로트리아지닐(fluorescein chlorotriazinyl), HEX(2',4',5',7'-tetrachloro-6-carboxy-4,7-dichlorofluorescein), 로다민 그린(rhodamine green), 로다민 레드(rhodamine red), 테트라메틸로다민(tetramethylrhodamine), FITC(fluorescein isothiocyanate), 오레곤 그린(oregon green), 알렉사 플루오로(alexa fluor), JOE(6-Carboxy-4',5'-Dichloro-2',7'-Dimethoxyfluorescein), ROX(6-Carboxyl-X-Rhodamine), TET(Tetrachloro-Fluorescein), TRITC(tertramethylrodamine isothiocyanate), TAMRA(6-carboxytetramethyl-rhodamine), NED(N-(1-Naphthyl) ethylenediamine), 시아닌(Cyanine) 계열 염료 및 씨아디카르보시아닌(thiadicarbocyanine)으로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상일 수 있으나, 이외에 당업계에서 리포터로 사용될 수 있는 물질이라고 알려진 것이라면 모두 사용할 수 있다. 본 발명의 일 실시예에서, 상기 리포터는 FAM(6-carboxyfluorescein)일 수 있다.The probe may further have a reporter attached to its 5'end. The reporter is FAM (6-carboxyfluorescein), Texas red (texas red), fluorescein (fluorescein), fluorescein chlorotriazinyl (fluorescein chlorotriazinyl), HEX (2',4',5',7'-tetrachloro) -6-carboxy-4,7-dichlorofluorescein), rhodamine green, rhodamine red, tetramethylrhodamine, FITC (fluorescein isothiocyanate), oregon green, Alexa Fluoro (alexa fluor), JOE (6-Carboxy-4',5'-Dichloro-2',7'-Dimethoxyfluorescein), ROX (6-Carboxyl-X-Rhodamine), TET (Tetrachloro-Fluorescein), TRITC ( tertramethylrodamine isothiocyanate), TAMRA (6-carboxytetramethyl-rhodamine), NED (N-(1-Naphthyl) ethylenediamine), cyanine-based dyes, and thiadicarbocyanine can be any one or more selected from the group consisting of However, any other known material that can be used as a reporter in the art can be used. In an embodiment of the present invention, the reporter may be 6-carboxyfluorescein (FAM).
상기 프로브는 이의 3' 말단에 소광자가 추가로 더 접합될 수 있다. 상기 소광자는 TAMRA, BHQ(black hole quencher) 1, BHQ2, BHQ3, NFQ(nonfluorescent quencher), 답실(dabcyl), Eclipse, DDQ(deep dark quencher), 블랙베리 퀸처(Blackberry Quencher), 아이오와 블랙(Iowa black)으로 구성된 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상일 수 있으나, 이외에 당업계에서 소광자로 사용될 수 있는 물질이라고 알려진 것이라면 모두 사용할 수 있다. 본 발명의 일 실시예에서, 상기 소광자는 BHQ(black hole quencher) 1일 수 있다.The probe may be further conjugated with a quencher to its 3'end. The quencher is TAMRA, BHQ (black hole quencher) 1, BHQ2, BHQ3, NFQ (nonfluorescent quencher), dabcyl, Eclipse, DDQ (deep dark quencher), Blackberry Quencher, Iowa black ) May be any one or more selected from the group consisting of, but any other known material that can be used as a quencher in the art may be used. In an embodiment of the present invention, the quencher may be a black hole quencher (BHQ) 1.
상기 조성물에는 상기 프라이머 세트 및 프로브 세트 이외에 역전사 중합효소, DNA 중합효소, Mg2+와 같은 조인자, dATP, dCTP, dGTP 및 dTTP가 포함될 수 있다. 역전사된 cDNA를 증폭하기 위하여 다양한 DNA 중합효소가 본 발명의 증폭 단계에 이용될 수 있으며, DNA 중합효소의 예로 E.coli DNA 중합효소 I의 클레나우 단편, 열안정성 DNA 중합효소 또는 박테리오파지 T7 DNA 중합효소가 있다. 중합효소는 박테리아 그 자체로부터 분리하거나 상업적으로 구입하거나 중합효소를 암호화하는 클로닝 유전자의 높은 레벨을 발현하는 세포로부터 수득할 수 있다.The composition may include reverse transcription polymerase, DNA polymerase, cofactors such as Mg2+, dATP, dCTP, dGTP, and dTTP, in addition to the primer set and probe set. In order to amplify the reverse transcribed cDNA, various DNA polymerases can be used in the amplification step of the present invention. Examples of DNA polymerases include Klenow fragment of E.coli DNA polymerase I, thermostable DNA polymerase, or bacteriophage T7 DNA polymerization. There are enzymes. Polymerases can be isolated from the bacteria themselves, purchased commercially, or obtained from cells expressing high levels of the cloning gene encoding the polymerase.
본 발명의 구체적인 실시예에서, 본 발명자들은 서열번호 1로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 정방향 프라이머, 서열번호 2로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 정방향 프라이머, 서열번호 3으로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 역방향 프라이머, 서열번호 4로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 역방향 프라이머, 서열번호 5로 기재되는 염기서열로 이루어진 프로브, 및 서열번호 6으로 기재되는 염기서열로 이루어진 프로브를 제작하고(표 1 및 2, 도 1 참조), 이를 이용하여 실시간 역전사 중합효소 연쇄반응(Real-time reverse transcrption-polymerase chain reaction, 실시간 RT-PCR)을 수행시 최소검출한계가 37.17 copies/reaction이고(표 3 및 4, 도 2 참조), 라싸 바이러스만이 특이적으로 검출되며(표 5 및 6, 참조), 간섭물질에 의한 간섭반응이 없고(표 7, 도 3 참조), 재현성이 있음을(표 8, 도 4 참조) 확인하였다. 아울러, 상기 프라이머 및 프로브 세트가 365일 동안 안정성이 유지됨을 확인하였다(표 9, 도 5 참조).In a specific embodiment of the present invention, the present inventors use the first forward primer consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1, the second forward primer consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 2, and the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 3. A first reverse primer made up, a second reverse primer made up of a nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 4, a probe made up of a nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 5, and a probe made up of a nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 6 were prepared (Table 1 and 2, see Fig. 1), and when performing real-time reverse transcrption-polymerase chain reaction (RT-PCR) using this, the minimum detection limit is 37.17 copies/reaction (Table 3 and 4, see Fig. 2), only the Lhasa virus is specifically detected (see Tables 5 and 6), there is no interference reaction by an interfering substance (see Table 7, Fig. 3), and has reproducibility (Table 8, See Figure 4) was confirmed. In addition, it was confirmed that the primer and probe set maintained stability for 365 days (see Table 9 and FIG. 5).
따라서, 본 발명의 프라이머 세트 및 프로브는 라싸 바이러스를 검출 및 진단하는 데 유용하게 사용될 수 있다.Therefore, the primer set and probe of the present invention can be usefully used to detect and diagnose Lhasa virus.
또한, 본 발명은 본 발명의 조성물을 포함하는 라싸 바이러스의 계통을 동시에 검출할 수 있는 검출용 키트를 제공한다.In addition, the present invention provides a detection kit capable of simultaneously detecting the strains of Lhasa virus comprising the composition of the present invention.
*상기 라싸 바이러스의 계통은 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV일 수 있다.* The lineage of the Lhasa virus may be Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV.
상기 조성물은 상술한 바와 같은 특징을 가질 수 있다. 일례로, 상기 조성물은 서열번호 1로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 정방향 프라이머, 서열번호 2로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 정방향 프라이머, 서열번호 3으로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 역방향 프라이머, 및 서열번호 4로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 역방향 프라이머로 이루어진 프라이머 세트를 포함하는 것일 수 있다. 상기 프라이머는 라싸 바이러스의 계통인 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV의 특정 영역에 대해서 특이적으로 증폭하는 프라이머일 수 있고, 본 발명의 일 실시예에서, 상기 프라이머는 서열번호 1로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 정방향 프라이머, 서열번호 2로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 정방향 프라이머, 서열번호 3으로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 역방향 프라이머, 또는 서열번호 4로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 역방향 프라이머일 수 있다. 또한, 상기 조성물은 서열번호 5로 기재되는 염기서열로 이루어진 프로브, 및 서열번호 6으로 기재되는 염기서열로 이루어진 프로브를 더 포함할 수 있고, 상기 프로브는 이의 5' 말단에 리포터가, 이의 3' 말단에 소광자가 추가로 더 접합된 것일 수 있다.The composition may have the characteristics as described above. As an example, the composition comprises a first forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1, a second forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2, and a first reverse primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 3 , And may include a primer set consisting of a second reverse primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 4. The primer may be a primer that specifically amplifies a specific region of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV, which are lines of Lhasa virus, and in an embodiment of the present invention, the primer is SEQ ID NO: 1. The first forward primer consisting of the nucleotide sequence described, the second forward primer consisting of the nucleotide sequence described in SEQ ID NO: 2, the first reverse primer consisting of the nucleotide sequence described in SEQ ID NO: 3, or the nucleotide sequence described in SEQ ID NO: 4 It may be a second reverse primer consisting of. In addition, the composition may further include a probe consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 5, and a probe consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 6, wherein the probe has a reporter at its 5'end, and its 3' The quencher may be further bonded to the end.
상기 키트는 분석 방법에 적합한 한 종류 또는 그 이상의 다른 구성 성분 조성물, 용액 또는 장치를 더 포함할 수 있다. 상기 키트는 라싸 바이러스의 계통인 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV의 특정 영역에 대한 특이적인 프라이머 쌍 이외에도 튜브 또는 다른 적절한 컨테이너, 반응 완충액(pH 및 마그네슘 농도는 다양), 데옥시뉴클레오티드(dNTPs), Taq-폴리머라제 및 역전사 효소와 같은 효소, DNase 억제제, RNase 억제제, DEPC-수(DEPC-water) 및 멸균수 등을 포함할 수 있다. 한편, 키트에 포함되는 성분들은 액상 형태로 제조될 수도 있고, 포함 성분들의 자유도를 낮추어 제품의 안정성을 제고하기 위해 건조된 형태로 제조될 수도 있다. 이러한 건조된 형태로의 제조를 위해서는 건조 단계의 적용이 필요하고, 이때 가온건조, 자연건조, 감압건조, 동결건조 또는 이들의 복합 공정이 사용될 수 있다.The kit may further include one or more other component compositions, solutions or devices suitable for the assay method. The kit includes a tube or other suitable container, reaction buffer (varies in pH and magnesium concentration), deoxynucleotide in addition to a primer pair specific for a specific region of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV, which are lines of Lhasa virus. (dNTPs), enzymes such as Taq-polymerase and reverse transcriptase, DNase inhibitors, RNase inhibitors, DEPC-water and sterile water, and the like. Meanwhile, the components included in the kit may be prepared in a liquid form, or may be prepared in a dried form to improve product stability by lowering the degree of freedom of the included ingredients. In order to prepare such a dried form, a drying step is required, and in this case, heated drying, natural drying, vacuum drying, freeze drying, or a combination thereof may be used.
또한, 본 발명은 검체로부터 분리된 핵산을 주형으로 서열번호 1로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 정방향 프라이머, 서열번호 2로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 정방향 프라이머, 서열번호 3으로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 역방향 프라이머, 및 서열번호 4로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 역방향 프라이머로 이루어진 프라이머 세트를 이용하여 PCR을 수행하는 단계를 포함하는 라싸 바이러스의 계통을 동시에 검출할 수 있는 방법을 제공한다.In addition, the present invention uses a nucleic acid isolated from a specimen as a template, a first forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1, a second forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2, and a base represented by SEQ ID NO: 3 A method for simultaneously detecting the lineage of Lhasa virus comprising performing PCR using a primer set consisting of a first reverse primer consisting of a sequence and a second reverse primer consisting of a nucleotide sequence described in SEQ ID NO: 4 to provide.
상기 라싸 바이러스의 계통은 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV일 수 있다.The lineage of the Lhasa virus may be Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV.
상기 검체는 임상시료 또는 환경시료로부터 수득되는 것일 수 있다. 예를 들어, 임상시료는 조직, 세포, 전혈, 혈청, 혈장, 타액, 객담, 뇌척수액 또는 뇨로부터 수득되는 시료일 수 있다.The specimen may be obtained from a clinical sample or an environmental sample. For example, the clinical sample may be a sample obtained from tissue, cells, whole blood, serum, plasma, saliva, sputum, cerebrospinal fluid, or urine.
상기 프라이머 세트는 상술한 바와 같은 특징을 가질 수 있다. 일례로, 상기 프라이머는 라싸 바이러스의 계통인 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV의 특정 영역에 대해서 특이적으로 증폭하는 프라이머일 수 있고, 본 발명의 일 실시예에서, 상기 프라이머는 서열번호 1로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 정방향 프라이머, 서열번호 2로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 정방향 프라이머, 서열번호 3으로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 역방향 프라이머, 또는 서열번호 4로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 역방향 프라이머일 수 있다.The primer set may have the characteristics as described above. As an example, the primer may be a primer that specifically amplifies a specific region of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV, which are lines of Lhasa virus, and in an embodiment of the present invention, the primer is a sequence The first forward primer consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1, the second forward primer consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 2, the first reverse primer consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 3, or described in SEQ ID NO: 4 It may be a second reverse primer consisting of a nucleotide sequence.
이하 본 발명을 실시예에 의해 상세히 설명한다.Hereinafter, the present invention will be described in detail by examples.
단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하는 것일 뿐, 본 발명의 내용이 하기 실시예에 의해서 한정되는 것은 아니다.However, the following examples are merely illustrative of the present invention, and the contents of the present invention are not limited by the following examples.
실시예 1. 라싸 바이러스의 S 분절(S segment) 유전자를 표적으로 하는 프라이머 및 프로브 제작Example 1. Preparation of primers and probes targeting S segment genes of Lhasa virus
현재까지 출현한 라싸 바이러스 균주(strain)를 조사하여 미국국립생물정보센터(NCBI, https://www.ncbi.nlm.nih.gov/)에서 각 균주의 염기서열을 수집하였다(표 1). 수집된 염기서열을 정렬(alignment)한 뒤 각 균주의 S 분절 유전자 부위를 표적으로 4종(Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV)의 라싸 바이러스 계통을 한번에 검출할 수 있는 프라이머 및 프로브를 제작하였으며, 각 프라이머 및 프로브의 서열은 하기 표 2와 같다. 프로브의 5' 말단에는 리포터 FAM(6-carboxyfluorescein)를 결합시켰으며, 3' 말단에는 소광자 BHQ(black hole quencher) 1를 결합시켰다.Lhasa virus strains that have appeared so far were investigated and the nucleotide sequence of each strain was collected at the National Center for Biological Information (NCBI, https://www.ncbi.nlm.nih.gov/) (Table 1). Primers and probes capable of detecting 4 types of Lhasa virus strains at once (Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV) targeting the S-segment gene site of each strain after alignment of the collected nucleotide sequences Was prepared, and the sequences of each primer and probe are shown in Table 2 below. Reporter FAM (6-carboxyfluorescein) was bound to the 5'end of the probe, and quencher BHQ (black hole quencher) 1 was bound to the 3'end.
프로브a Primer or
Probe a
(%)GC content
(%)
(℃)Tm b
(℃)
a: F;forward, R;reverse, P;probeb: 융해온도(melting temperature)a: F;forward, R;reverse, P;probeb: melting temperature
c: PCR 증폭산물의 크기c: size of PCR amplification product
실험예 1. 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트를 이용한 실시간 RT-PCR의 분석적 민감도 평가Experimental Example 1. Evaluation of analytical sensitivity of real-time RT-PCR using the primer and probe set of the present invention
실시예 1에서 제작한 프라이머 및 프로브 세트를 이용한 실시간 RT-PCR의 분석적 민감도를 최소검출한계(limit of detection, LoD)를 측정하여 확인하였다. 실험은 식품의약품안전처의 '체외진단용 의료기기 허가심사 가이드라인'에 따라 수행하였고, 최소검출한계는 가이드라인의 정의대로 '표준물질을 이용하여 95% 검출률을 보이는 최저 농도'로 계산하였다.The analytical sensitivity of real-time RT-PCR using the primer and probe set prepared in Example 1 was confirmed by measuring a limit of detection (LoD). The experiment was carried out in accordance with the'Guidelines for In Vitro Diagnostic Medical Device License Review' of the Ministry of Food and Drug Safety, and the minimum detection limit was calculated as'the lowest concentration showing 95% detection rate using standard substances' as defined in the guidelines.
구체적으로, 표 1에 기재된 라싸 바이러스 균주의 공통 영역을 타겟(target)으로 설정한 후, 정제된 DNA를 이용하여 시험관 내 전사(in vitro transcription(T7))를 진행하여 RNA 유전자를 합성하였다. 300, 150, 75, 37.5 및 18.75 copies/reaction 농도의 합성한 라싸 바이러스의 RNA 유전자 3 ㎕, 2x 마스터 믹스(Master mix) 5 ㎕, 프라이머 프로브 믹스(primer probe mix) 1 ㎕ 및 PCR이 잘 수행되었는지 확인하는 내부 양성 대조군(Internal positive control) 1 ㎕을 혼합한 후, 하기 표 3에 기재된 반응 조건으로 실시간 RT-PCR을 수행하였다(UltraFast LabChip real-time PCR G2-4). 동일한 조건으로 30회 반복실험을 수행하여 측정한 Ct(cycle threshold)값의 평균(average), 표준편차(standard deviation, SD), 변동계수(coefficient of variation, CV), 및 검출률을 측정하였고, 95% 양성구간을 통계프로그램(IBM SPSS Statistics, IBM)을 이용하여 프로빗(probit) 회귀모델로 검증하였다.Specifically, after setting the common region of the Lhasa virus strain described in Table 1 as a target, in vitro transcription (T7) was performed using purified DNA to synthesize an RNA gene. 300, 150, 75, 37.5 and 18.75 copies/reaction concentration of the synthesized Lhasa
(*기계 상에서 결과값을 읽는 시간까지 포함된 총 소요시간)( * Total time required including reading time on the machine)
그 결과, 하기 표 4 및 도 2에 나타낸 바와 같이, 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트를 이용한 실시간 RT-PCR의 최소검출한계는 37.17 copies/reaction으로 측정되었다.As a result, as shown in Table 4 and FIG. 2, the minimum detection limit of real-time RT-PCR using the primer and probe set of the present invention was measured as 37.17 copies/reaction.
(Target: 실험예 1의 합성된 타겟 RNA 유전자; IPC: 내부 양성 대조군(internal positive control); Average: 평균; S.D.: 표준편차; CV: 평균 대비 표준편차의 비율(coefficient of variation)).(Target: synthesized target RNA gene of Experimental Example 1; IPC: internal positive control; Average: mean; S.D.: standard deviation; CV: ratio of standard deviation to mean (coefficient of variation)).
실험예 2. 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트를 이용한 실시간 RT-PCR의 분석적 특이도 평가Experimental Example 2. Evaluation of analytical specificity of real-time RT-PCR using the primer and probe set of the present invention
실시예 1에서 제작한 프라이머 및 프로브 세트를 이용한 실시간 RT-PCR의 분석적 특이도를 다른 균주에 의한 교차반응 여부 및 간섭물질에 의한 간섭반응 여부로 확인하였다.The analytical specificity of real-time RT-PCR using the primer and probe set prepared in Example 1 was confirmed by the presence of cross-reaction by other strains and the presence of interference by interfering substances.
2-1. 다른 균주에 의한 교차반응 여부 확인2-1. Check for cross-reaction by other strains
총 88주의 병원체 유전자(표 5 및 6에서 '굵게' 표시) 및 질병관리본부에서 제공받은 전사체(transcript, 표 5 및 6에서 '밑줄'로 표시)를 사용하여 다른 균주에 의한 교차반응 여부를 확인하였다. 구체적으로, 사용한 균주들 중 바이러스는 104 copies/㎕의 농도로 적용하였고, 나머지 균주들은 1 ng/㎕의 농도로 적용하였다. 라싸 바이러스 유전자 대신 동량의 상기 병원체 유전자 및 전사체를 사용한 것을 제외하고는 실험예 1에 기재된 것과 동일한 방법으로 실시간 RT-PCR을 수행하였다.A total of 88 strains of pathogen genes (indicated in'bold' in Tables 5 and 6) and the transcript provided by the Korea Centers for Disease Control and Prevention (transcript, indicated in'underlined' in Tables 5 and 6) were used to determine whether cross-reactivity by other strains Confirmed. Specifically, among the strains used, the virus was applied at a concentration of 10 4 copies/µl, and the remaining strains were applied at a concentration of 1 ng/µl. Real-time RT-PCR was performed in the same manner as described in Experimental Example 1, except that the same amount of the pathogen gene and transcript were used instead of the Lhasa virus gene.
그 결과, 표 5 및 표 6에 나타낸 바와 같이, 실시예 1에서 제작한 프라이머 및 프로브 세트는 상기 병원체 유전자 및 전사체는 증폭시키지 않았다. 이로부터, 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트는 라싸 바이러스 외의 다른 균주에 의해 교차반응을 나타내지 않음을 알 수 있었다.As a result, as shown in Tables 5 and 6, the primer and probe set prepared in Example 1 did not amplify the pathogen gene and transcript. From this, it was found that the primer and probe set of the present invention did not exhibit cross-reaction by strains other than Lhasa virus.
2-2. 간섭물질(inhibitor)에 대한 간섭반응 여부 확인2-2. Check for interference reaction to the inhibitor
'CLSI 가이드라인'의 'EP7-A2'를 참고하여 선정한 5종의 간섭물질을 사용하여, 검체 내에 포함되어 실험적으로 영향을 미칠 수 있는 물질에 의한 간섭반응 여부를 확인하였다.Using five kinds of interfering substances selected by referring to'EP7-A2' of the'CLSI Guideline', it was confirmed whether the interference reaction caused by substances that may have an experimental influence in the specimen.
구체적으로, 간섭물질을 포함하지 않은 라싸 바이러스 유전자와, 1 mg/㎖의 헤모글로빈(hemoglobin), 12.5 ㎍/㎖의 면역글로불린 G(immunoglobulin G, IgG), 0.1 mg/㎖의 헤파린(heparin), 4 mM의 EDTA(ethylenediaminetetraacetic acid) 또는 20 mM의 시트르산나트륨(Na-citrate)이 첨가된 라싸 바이러스 유전자를, 실험예 1에서 도출한 최소검출한계(37.17 copies/reaction)의 25배 또는 100배의 농도로 준비하고, 실험예 1에 기재된 것과 동일한 방법으로 실시간 RT-PCR을 수행하였다. 각 시료의 Ct값과 양성대조군의 Ct값의 차이를 계산하여 비교하였다.Specifically, a Lhasa virus gene that does not contain an interfering substance, 1 mg/ml of hemoglobin, 12.5 µg/ml of immunoglobulin G (IgG), 0.1 mg/ml of heparin, 4 The Lhasa virus gene to which mM EDTA (ethylenediaminetetraacetic acid) or 20 mM sodium citrate (Na-citrate) was added was at a concentration of 25 or 100 times the minimum detection limit (37.17 copies/reaction) derived in Experimental Example 1. Preparation and real-time RT-PCR was performed in the same manner as described in Experimental Example 1. The difference between the Ct value of each sample and the Ct value of the positive control group was calculated and compared.
그 결과, 하기 표 7 및 도 3에 나타낸 바와 같이, 5종의 간섭물질에 따른 Ct 값의 차이는 미미하므로 실시예 1에서 제작한 프라이머 및 프로브 세트는 5종의 간섭물질에 의해 간섭반응을 나타내지 않았다.As a result, as shown in Table 7 and FIG. 3, since the difference in Ct values according to the five interfering substances is insignificant, the primer and probe set prepared in Example 1 did not exhibit an interference reaction by the five interfering substances. Did.
a: 간섭물질을 포함하지 않은 라싸 바이러스 유전자a: Lhasa virus gene without interfering substances
실험예 3. 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트를 이용한 실시간 RT-PCR의 분석적 재현성 평가Experimental Example 3. Evaluation of analytical reproducibility of real-time RT-PCR using the primer and probe set of the present invention
실시예 1에서 제작한 프라이머 및 프로브를 이용한 실시간 RT-PCR의 분석적 재현성을 반복실험을 통해 확인하였다.The analytical reproducibility of real-time RT-PCR using the primers and probes prepared in Example 1 was confirmed through repeated experiments.
구체적으로, 라싸 바이러스 유전자를 실험예 1에서 도출한 최소검출한계(37.17 copies/reaction)의 5배, 25배 또는 100배의 농도로 반응시킨 것을 제외하고는 실험예 1에 기재된 것과 동일한 방법으로 실시간 RT-PCR을 수행하였다. 5일 동안 1일 2회씩 총 10번의 반복실험을 수행하였으며, 각 회당 2회씩 측정하였고, 측정한 Ct값의 평균, 표준편차 및 변동계수를 계산하여 비교하였다. 음성 대조군은 라싸 바이러스의 합성 RNA를 포함하지 않은 시료이다.Specifically, in real time in the same manner as described in Experimental Example 1, except that the Lhasa virus gene was reacted at a concentration of 5, 25 or 100 times the minimum detection limit (37.17 copies/reaction) derived in Experimental Example 1. RT-PCR was performed. A total of 10 repeated experiments were performed twice a day for 5 days, and measured twice for each time, and the average, standard deviation and coefficient of variation of the measured Ct values were calculated and compared. The negative control was a sample that did not contain synthetic RNA of Lhasa virus.
그 결과, 하기 표 8 및 도 4에 나타낸 바와 같이, 라싸 바이러스의 합성 RNA를 포함하지 않은 음성 대조군 시료의 경우 반복실험 모두에서 전혀 검출되지 않았으며, 10번의 반복실험에 따른 변동계수(CV) 값이 0.03% 이하로 나타나, 실시예 1에서 제작한 프라이머 및 프로브를 이용한 실시간 RT-PCR은 재현성이 있었다.As a result, as shown in Table 8 and FIG. 4, in the case of a negative control sample that did not contain the synthetic RNA of the Lhasa virus, it was not detected at all in all repeated experiments, and the coefficient of variation (CV) value according to 10 replicate experiments It was found to be 0.03% or less, and real-time RT-PCR using the primers and probes prepared in Example 1 had reproducibility.
실험예 4. 본 발명의 프라이머 및 프로브 세트의 분석적 보관안정성 평가Experimental Example 4. Evaluation of analytical storage stability of primer and probe set of the present invention
실시예 1에서 제작한 프라이머 및 프로브 세트의 분석적 보관안정성을 가속노화실험을 통해 평가하였다. 실험은 '식품의약품안전처 고시 제2014-178호'에 제시된 의료기기의 안정성 시험기준에 따라 수행하였다.The analytical storage stability of the primer and probe set prepared in Example 1 was evaluated through an accelerated aging experiment. The experiment was carried out in accordance with the safety test standards for medical devices presented in the'Ministry of Food and Drug Safety Notice No. 2014-178'.
구체적으로, 하기 계산식을 이용하여 가속노화계수(accelerated aging factor, AAF) 및 가속노화시간(accelerated aging time, AAT)을 산출한 뒤, 실시예 1에서 제작한 프라이머 및 프로브 세트를 산출된 조건에 따라 45℃에서 4일 동안 보관하였다. 이후, 0, 1, 2, 3 및 4일째에 가속노화시킨 프라이머 및 프로브를 이용하여 각각 2회씩 실험예 1에 기재된 것과 동일한 방법으로 실시간 RT-PCR을 수행하였다. 이때, 사용된 라싸 바이러스 유전자는 실험예 1에서 도출한 최소검출한계(37.17 copies/reaction)의 5배, 25배 또는 100배의 농도로, 역전사효소의 변성을 방지하기 위해 가속노화반응을 시키지 않고 첨가하였다. 각 시료의 평균 Ct값과 0일째 Ct값의 차이를 계산하여 비교하였다. 양성 대조군으로는 라싸 바이러스의 특정 서열로 이루어진 플라스미드 DNA를 이용하였고, 음성 대조군으로는 라싸 바이러스 합성 RNA가 포함되지 않은 시료를 이용하였다. Specifically, after calculating the accelerated aging factor (AAF) and the accelerated aging time (AAT) using the following calculation formula, the primer and probe set prepared in Example 1 were calculated according to the calculated conditions. Stored at 45° C. for 4 days. Thereafter, real-time RT-PCR was performed in the same manner as described in Experimental Example 1 twice each using the accelerated aging primers and probes on
[계산식][formula]
AAF = Q10 |(TAA-TRT)/10|= 90.51AAF = Q 10 |(TAA-TRT)/10| = 90.51
AAT = 설정된 유효기간 / AAF = 4.03AAT = set validity period / AAF = 4.03
(Q10(온도 10℃ 상승 또는 감소 시 노화계수) = 2, TAA(accelerated aging temperature, 가속노화온도) = 45℃, TRT(ambient temperature, 제품 보관온도) = -20℃, 설정된 유효기간 = 365일)(Q 10 (Aging coefficient when temperature rises or decreases by 10℃) = 2, T AA (accelerated aging temperature) = 45℃, T RT (ambient temperature, product storage temperature) = -20℃, set shelf life = 365 days)
그 결과, 하기 표 9 및 도 5에 나타낸 바와 같이, 실시예 1에서 제작한 프라이머 및 프로브 세트는 ±1 이내의 Ct 값을 나타냈으며, 통상적으로 대조군과의 Ct값 차이가 ±2범위 내에 있는 경우 안정한 것으로 판단하므로, 365일의 안정성을 보였다.As a result, as shown in Table 9 and FIG. 5, the primer and probe set prepared in Example 1 exhibited a Ct value within ±1, and typically, when the Ct value difference from the control group is within ±2 range. It was judged to be stable, so it showed 365 days of stability.
(대조군)0 days
(Control)
(3개월)a 1 day
(3 months) a
(6개월)a 2 days
(6 months) a
(9개월)a 3 days
(9 months) a
(12개월)a 4 days
(12 months) a
a: 단축된 시간으로 재현된 실제노화기간a: Actual aging period reproduced in a shortened time
<110> Korea Centers for Disease Control and Prevention MICOBIOMED CO., LTD. <120> PRIMERS AND PROBES FOR SIMULTANEOUS DETECTION OF LINEAGE OF LASSA VIRUS AND DETECTING METHOD FOR LASSA VIRUS USING THE SAME <130> 2018P-07-006 <160> 6 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-NG-NF1 <400> 1 cactgtggga cyatygccaa tg 22 <210> 2 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-SL-NF1 <400> 2 cattgtggca cwgttgcaaa tg 22 <210> 3 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-NG-NR1 <400> 3 ttccggaatc aagtgctatr tarc 24 <210> 4 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-SL-NR3 <400> 4 gcctgaatca agggcaatgt arct 24 <210> 5 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-NP1 <400> 5 ccaccccarg ccatcctcat raaagt 26 <210> 6 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-NP2 <400> 6 ccaccccaag ccatcctcat gaaagt 26 <110> Korea Centers for Disease Control and Prevention MICOBIOMED CO., LTD. <120> PRIMERS AND PROBES FOR SIMULTANEOUS DETECTION OF LINEAGE OF LASSA VIRUS AND DETECTING METHOD FOR LASSA VIRUS USING THE SAME <130> 2018P-07-006 <160> 6 <170> KoPatentIn 3.0 <210> 1 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-NG-NF1 <400> 1 cactgtggga cyatygccaa tg 22 <210> 2 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-SL-NF1 <400> 2 cattgtggca cwgttgcaaa tg 22 <210> 3 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-NG-NR1 <400> 3 ttccggaatc aagtgctatr tarc 24 <210> 4 <211> 24 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-SL-NR3 <400> 4 gcctgaatca agggcaatgt arct 24 <210> 5 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-NP1 <400> 5 ccaccccarg ccatcctcat raaagt 26 <210> 6 <211> 26 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> LASV-NP2 <400> 6 ccaccccaag ccatcctcat gaaagt 26
Claims (12)
서열번호 2로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 정방향 프라이머;
서열번호 3으로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 1 역방향 프라이머;
서열번호 4로 기재되는 염기서열로 이루어진 제 2 역방향 프라이머; 및
서열번호 5로 기재되는 염기서열로 이루어진 프로브, 및 서열번호 6으로 기재되는 염기서열로 이루어진 프로브로 이루어진 라싸 바이러스(Lassa virus)의 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV의 계통(lineage)을 동시에 검출할 수 있는 검출용 조성물.
A first forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1;
A second forward primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 2;
A first reverse primer consisting of a nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 3;
A second reverse primer consisting of the nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 4; And
Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV of Lassa virus consisting of a probe consisting of a nucleotide sequence of SEQ ID NO: 5 and a probe consisting of a nucleotide sequence of SEQ ID NO: 6 A composition for detection capable of simultaneously detecting the.
According to claim 1, wherein the probe is a reporter is additionally conjugated to the 5'end, the detection composition capable of simultaneously detecting the lines of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV of Lhasa virus.
According to claim 1, wherein the probe is a quencher is additionally conjugated to the 3'end, the detection composition capable of simultaneously detecting the lines of the Lhasa virus Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV.
The method of claim 3, wherein the reporter is FAM (6-carboxyfluorescein), Texas red (texas red), fluorescein, HEX (2',4',5',7'-tetrachloro-6-carboxy- 4,7-dichlorofluorescein), fluorescein chlorotriazinyl, rhodamine green, rhodamine red, tetramethylrhodamine, fluorescein isothiocyanate (FITC), oregon green (oregon green), alexa fluor, JOE(6-Carboxy-4',5'-Dichloro-2',7'-Dimethoxyfluorescein), ROX(6-Carboxyl-X-Rhodamine), TET(Tetrachloro -Fluorescein), TRITC (tertramethylrodamine isothiocyanate), TAMRA (6-carboxytetramethyl-rhodamine), NED (N-(1-Naphthyl) ethylenediamine), cyanine-based dyes, and thiadicarbocyanine. Any one selected, a composition for detection capable of simultaneously detecting the lines of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV of Lhasa virus.
The method of claim 4, wherein the quencher is TAMRA (6-carboxytetramethyl-rhodamine), BHQ1 (black hole quencher 1), BHQ2 (black hole quencher 2), BHQ3 (black hole quencher 3), NFQ (nonfluorescent quencher), dapsil ( dabcyl), Eclipse, DDQ (Deep Dark Quencher), Blackberry Quencher (Blackberry Quencher), any one selected from the group consisting of Iowa black, Lhasa virus Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage A composition for detection capable of simultaneously detecting IV lines.
A kit for detection capable of simultaneously detecting the lines of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV of the Lhasa virus comprising the composition of claim 1.
2) 상기 검체로부터 분리한 핵산을 주형으로 제1항의 조성물을 이용하여 중합 효소 연쇄반응(polymerase chain reaction, PCR)을 수행하여 표적서열을 증폭하는 단계; 및
3) 상기 단계 2)의 증폭산물을 형광측정을 통해 검출하는 단계; 를 포함하는 라싸 바이러스의 Lineage I, Lineage II, Lineage III, 및 Lineage IV의 계통을 동시에 검출할 수 있는 방법.
1) separating the nucleic acid from the specimen;
2) amplifying the target sequence by performing a polymerase chain reaction (PCR) using the composition of claim 1 using the nucleic acid isolated from the sample as a template; And
3) detecting the amplified product of step 2) through fluorescence measurement; A method capable of simultaneously detecting the strains of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV of Lhasa virus comprising a.
The method of claim 9, wherein the specimen is obtained from a clinical sample or an environmental sample, and can simultaneously detect the lines of Lineage I, Lineage II, Lineage III, and Lineage IV of Lhasa virus.
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Fukuma 등. Microbiol Immunol, Vol. 55, No. 1, 페이지 1-13 (2012.07.26.)* |
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