KR102162289B1 - Golga2 유전자 넉아웃 폐 섬유화 마우스 모델 - Google Patents

Abstract

본 발명은 GOLGA2 유전자가 넉아웃된 폐 섬유화 마우스 모델, 상기 폐 섬유화 마우스 모델 제조용 조성물, 폐 섬유화 마우스 모델 제조방법 및 폐 섬유화 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법에 관한 것이다. 본 발명에 따른 GOLGA2 유전자 넉아웃 폐 섬유화 마우스 모델을 이용하면, 기존에 존재하지 않았던 폐 섬유화 모델을 얻을 수 있으며 폐 조직의 심각한 병변 없이 유전적 변이로 인해 폐의 전체적인 부위에 섬유화가 유발된 모델을 사용할 수 있다는 장점이 있다. 또한 상기 모델은 골지체의 이상형태, 자가포식 및 폐 섬유화의 연관성 연구를 위한 모델로서 다양하게 활용할 수 있으며, 폐 섬유화의 치료제, 특히 케미컬 기반 폐 섬유화가 아닌 유전적 기반 폐 섬유화의 치료제 스크리닝을 위한 동물 모델로 사용할 수 있다.

Description

GOLGA2 유전자 넉아웃 폐 섬유화 마우스 모델{Pulmonary fibrosis mouse model without GOLGA2 gene}

본 발명은 GOLGA2 유전자가 넉아웃된 폐 섬유화 마우스 모델, 상기 폐 섬유화 마우스 모델 제조용 조성물, 폐 섬유화 마우스 모델 제조방법 및 폐 섬유화 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법에 관한 것이다.

자가포식(autophagy or self-eating) 현상은 필요하지 않거나 손상된 세포내 단백질, 리피드, 소기관들이 라이소좀에 의해 제거되는 과정으로서 생리학적으로 자가포식 과정은 단순히 제거의 의미라기보다는 다이내믹하게 세포를 개선하거나 항상성을 유지하기 위한 에너지들을 공급하고 새로운 소기관 등 기반을 구축하는 재활용 시스템으로 중요한 역할을 담당하고 있다. 이러한 자가포식 작용과 관련하여 골지체는 자가소화포(autophagosome) 조립 초기에 생성되는 이중 격리막(phagophore)을 제공한다고 알려져 있다.

한편 폐 섬유화증(pulmonary fibrosis)은 만성적으로 진행하는 폐 간질의 섬유화를 특징으로 하는 원인 불명의 질환이다. 상기 질환은 주로 폐에 국한되어 나타나며 조직학적으로 특징적인 통상형 간질성 폐렴(usual interstitial pneumonia, UIP) 소견을 보인다. 이 질환의 유병률은 보고마다 차이가 있지만 인구 10만 명 중 2-29명으로 알려져 있으며, 국내에서는 희귀난치성 질환으로 지정되어 있다. 폐 섬유화증의 임상 경과는 다양하며, 일반적으로 서서히 진행하는 폐 기능 저하로 인해 호흡부전으로 진행하여 진단 이후 평균 생존기간이 2-3년 이내인 치명적인 질환이다. 이 때문에 폐 섬유화증의 정확한 원인과 병인을 밝히고 이에 따른 치료제를 개발하기 위한 노력이 많이 시도되고 있지만 아직까지 명확한 치료제가 없는 실정이다.

기존에 이러한 폐 섬유화를 일으킨 모델은 존재하지 않았으며 다른 조직, 예컨대 간 섬유화에 대한 모델이 존재하나 이는 케미컬 기반의 섬유화 모델로서 케미컬이 닿는 조직 부위에 심각한 병변을 야기한다는 문제점이 있었다. 또한 골지체, 자가포식 및 폐 섬유화와의 관계와 이러한 현상에 어떠한 유전자가 관여하는지 밝혀진 바가 없으며 이에 대한 구체적인 연구가 필요한 실정이다.

이에 본 발명자들은 연구를 수행하던 중, 최초로 골지체의 형성면 쪽인 cis-골지체에 존재하는 GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스가 골지체의 붕괴를 일으키며 자가포식을 유도하고 폐 섬유화가 유발되는 것을 확인함으로써 본 발명을 완성하게 되었다.

따라서 본 발명의 목적은, GOLGA2 유전자 넉아웃된, 폐 섬유화 마우스 모델, 상기 폐 섬유화 마우스 모델 제조용 조성물, 상기 폐 섬유화 마우스 모델 제조방법 및 폐 섬유화 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법을 제공하는 것이다.

상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 GOLGA2 유전자가 넉아웃된, 폐 섬유화 마우스 모델을 제공한다.

또한 본 발명은 GOLGA2 유전자 엑손 1 내지 26번이 결실된 배아줄기 세포를 포함하는, 폐 섬유화 마우스 모델 제조용 조성물을 제공한다.

또한 본 발명은 GOLGA2 유전자를 넉아웃시키는 단계;를 포함하는, 폐 섬유화 마우스 모델 제조방법을 제공한다.

또한 본 발명은 (S1) 상기 폐 섬유화 마우스 모델에 후보 물질을 처리하는 단계; 및 (S2) 상기 후보 물질이 처리된 폐 섬유화 마우스 모델에서 폐 섬유화 억제 또는 치료 물질을 판정하는 단계;를 포함하는, 폐 섬유화 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법을 제공한다.

본 발명에 따른 GOLGA2 유전자 넉아웃 폐 섬유화 마우스 모델을 이용하면, 기존에 존재하지 않았던 폐 섬유화 모델을 얻을 수 있으며 폐 조직의 심각한 병변 없이 유전적 변이로 인해 폐의 전체적인 부위에 섬유화가 유발된 모델을 사용할 수 있다는 장점이 있다. 또한 상기 모델은 골지체의 이상형태, 자가포식 및 폐 섬유화의 연관성 연구를 위한 모델로서 다양하게 활용할 수 있으며, 폐 섬유화의 치료제, 특히 케미컬 기반 폐 섬유화가 아닌 유전적 기반 폐 섬유화의 치료제 스크리닝을 위한 동물 모델로 사용할 수 있다.

도 1은 GOLGA2 유전자의 위치와 GOLGA2 넉아웃 마우스 제작에 사용된 배아줄기 세포의 모식도를 나타낸 도이다.
도 2는 간세포주에서 GOLGA2 넉아웃에 의해 GOLGA2 단백질이 골지에서 없어짐을 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 3은 GOLGA2 넉아웃 간세포주에서 증가된 자가포식 작용이 유리지방산(free fatty acid, FFA)에 의해 형성된 지방 방울을 분해함을 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 4는 GOLGA2 넉아웃 간 세포주에서 자가포식 마커 단백질 SQSTM1, LC3I 및 LC3ll의 발현이 증가됨을 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 5는 정상, 이형접합체 및 GOLGA2 넉아웃 마우스의 유전형질분석 결과를 나타낸 도이다.
도 6은 GOLGA2 넉아웃 마우스의 조직 내 GOLGA2 mRNA의 발현 분석을 통해 GOLGA2 넉아웃 마우스를 선별한 결과를 나타낸 도이다.
도 7은 정상, 이형접합체 및 GOLGA2 넉아웃 마우스의 크기를 비교한 사진을 나타낸 도이다.
도 8은 정상, 이형접합체 및 GOLGA2 넉아웃 마우스의 크기 비교 그래프를 나타낸 도이다.
도 9는 정상, 이형접합체 및 GOLGA2 넉아웃 마우스의 몸무게 비교 그래프를 나타낸 도이다.
도 10은 수컷 GOLGA2 넉아웃 마우스의 장기 크기 감소를 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 11은 GOLGA2 넉아웃 마우스 폐조직의 면역형광염색 분석을 통해 자가포식 마커 단백질인 LC3B가 폐의 특정 세포에서 매우 활성화된 것을 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 12는 GOLGA2 넉아웃 마우스의 2형 폐포세포에서 자가포식 마커 단백질인 LC3B가 활성화된 결과를 나타낸 도이다.
도 13은 GOLGA2 넉아웃 마우스 폐의 전자현미경 이미지 분석을 통해 방전된 층판소체의 수가 많아짐을 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 14는 MALDI-TOF를 이용한 폐의 지질 스캐닝 분석을 통해 GOLGA2 넉아웃 마우스의 폐에서 폐포를 유지시키는 계면활성제가 부족하다는 것을 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 15는 GOLGA2 넉아웃 마우스 폐의 조직학적 분석을 통해 폐 전체에 섬유화 병변이 발견됨을 확인한 결과를 나타낸 도이다.
도 16은 GOLGA2 유전자 넉아웃으로 의한 폐조직 섬유화 마우스 모델 제조기전을 나타낸 도이다.

본 발명은 GOLGA2 유전자가 넉아웃된, 폐 섬유화 마우스 모델을 제공한다.

본 발명의 GOLGA2 유전자는 NCBI Gene ID 99412 의 유전자이며 크로모좀 2에 속하는 유전자로서 다양한 종에 존재한다. 구체적으로 상기 GOLGA2 유전자는 NCBI Reference Sequence NM_133852 의 염기서열로 이루어지는 폴리뉴클레오타이드일 수 있다. 또한 상기 GOLGA2 유전자는 골지체의 형성면 쪽인 cis-골지체에 존재하는 유전자이다.

상기 마우스 모델은 골지체에서 GOLGA2 단백질이 넉아웃된 것일 수 있다. 이로 인해 골지체가 붕괴되며 자가포식이 유도된다. 또한 상기 마우스 모델은 폐에서 자가포식 작용이 증가된 것일 수 있다. 상기 마우스 모델은 폐에서 자가포식 마커 단백질인 LC3B의 발현이 증가된 것일 수 있다.

또한 상기 폐는 2형 폐포 세포일 수 있으며 2형 폐포 세포는 층판소체를 분비하는 세포이다. 본 발명의 GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스 모델에서는 상기 2형 페포 세포의 층판소체가 방전(discharge)되며 층판소체는 주성분으로 계면활성제를 포함하고 상기 계면활성제는 폐포를 유지시키는 역할을 한다.

또한 상기 마우스 모델은 폐에서 DPPC(dipalmitoylphosphatidylcholine)가 감소된 것일 수 있으며, 바람직하게는 디팔미토일레시틴(dipalmitoyllecithin)이 감소된 것일 수 있다. 상기 DPPC는 계면활성제로서 층판소체의 주성분이며 2형 페포 세포의 층판소체가 방전되어 DPPC가 감소하게 되면 비가역적으로 폐포가 막히게 되는 문제가 생기며 이는 폐 섬유화의 원인일 수 있다.

상기 마우스 모델은 GOLGA2 유전자 엑손 1 내지 26번이 결실된 배아줄기 세포로 제조된 것일 수 있으며 이에 제한되지는 않는다. 또한 상기 배아줄기 세포는 마우스의 배반포에 주입될 수 있다.

본 발명의 GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스 모델은 기존에 존재하지 않았던 폐 섬유화 모델이며, 상기 본 발명의 마우스 모델을 통해 GOLGA2 넉아웃으로 골지체에서 GOLGA2 단백질이 넉아웃되며 폐에서 자가포식 작용이 증가하고 폐 섬유화가 유발됨을 확인할 수 있다. 또한 본 발명에 따른 GOLGA2 유전자 넉아웃 폐 섬유화 마우스 모델을 이용하면, 폐 조직의 심각한 병변 없이 유전적 변이로 인해 폐의 전체적인 부위에 섬유화가 유발된 모델을 사용할 수 있다는 장점이 있다. 또한 상기 모델은 골지체의 이상형태, 자가포식 및 폐 섬유화의 연관성 연구를 위한 모델로서 다양하게 활용할 수 있으며, 폐 섬유화의 치료제, 특히 케미컬 기반 폐 섬유화가 아닌 유전적 기반 폐 섬유화의 치료제 스크리닝을 위한 동물 모델로 사용할 수 있다.

또한 본 발명은 GOLGA2 유전자 엑손 1 내지 26번이 결실된 배아줄기 세포를 포함하는, 폐 섬유화 마우스 모델 제조용 조성물을 제공한다. 상기 조성물은 바람직하게는 배지 조성물일 수 있으며 상기 “배지(culture media)"는 인 비트로에서 세포 성장 및 생존을 지지할 수 있게 하는 배지를 의미하고, 세포의 배양에 적절한 당 분야에서 사용되는 통상의 배지를 모두 포함한다. 상기 배지는 세포가 최소 증식 및/또는 생존하는데 필요한 필수 및 비필수 아미노산, 비타민, 에너지원, 지질 및 미량원소 등을 포함할 수 있다.

또한 본 발명은 GOLGA2 유전자를 넉아웃시키는 단계;를 포함하는, 폐 섬유화 마우스 모델 제조방법을 제공한다. 상기 넉아웃은 당 분야에 알려진 통상의 방법으로 실시될 수 있고 바람직하게는 GOLGA2 CRISPR/Cas9 시스템을 이용하여 실시될 수 있으나 이에 제한되지는 않는다. 상기 GOLGA2 유전자를 넉아웃시키는 단계를 거쳐 폐 섬유화 마우스 모델을 제조하면 폐 조직의 심각한 병변 없이 유전적 변이로 인해 폐의 전체적인 부위에 섬유화가 유발된 폐 섬유화 모델을 얻을 수 있다. 또한 케미컬 기반 폐 섬유화가 아닌 유전적 기반 폐 섬유화 모델을 얻을 수 있다.

또한 본 발명은 (S1) 상기 폐 섬유화 마우스 모델에 후보 물질을 처리하는 단계; 및 (S2) 상기 후보 물질이 처리된 폐 섬유화 마우스 모델에서 폐 섬유화 억제 또는 치료 물질을 판정하는 단계;를 포함하는, 폐 섬유화 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법을 제공한다.

상기 (S1) 단계는 본 발명의 GOLGA2 유전자가 넉아웃된 폐 섬유화 마우스 모델에 후보 물질을 처리하는 단계이다. 상기 “후보 물질”은 폐 섬유화를 치료, 예방 또는 개선할 수 있는 것으로 기대되는 물질로서 화학물질, 올리고뉴클레오타이드, 펩티드, 유전자, 단백질, 식품, 제형, 화합물, 조성물, 의약, 영양보조제, 건강관리제품 또는 음료 등의 물질을 제한 없이 포함한다. 또한 상기 “처리”는 후보 물질을 본 발명의 폐 섬유화 마우스 모델에 투여하는 방법일 수 있으며 이에 제한되지는 않는다. 상기 “투여하는 방법”으로는 경구투여, 정맥주사, 피하투여, 복강내 투여 등 종래의 투여 방법 중 적절한 방법을 선택할 수 있으며, 후보 물질의 투여량은 투여 방법, 실험 동물의 체중 및 상태나 사전 실험 결과 등에 따라 적절히 선택할 수 있으며 이에 제한되지는 않는다.

상기 (S2) 단계는 (S1) 단계에서 처리된 후보 물질 중 폐 섬유화를 개선시킴이 확인된 물질을 선별함으로써 폐 섬유화 억제 또는 치료 물질로 판정하는 단계이다. 상기 “선별”은, 후보 물질의 처리 전 본 발명의 폐 섬유화 마우스 모델의 폐 섬유화 정도를 측정한 결과와 후보 물질의 처리 후 측정 결과를 비교한 결과, 후보 물질의 처리 전 폐 섬유화 정도보다 그 정도를 감소시킨 후보 물질을 선택함으로써 이루어질 수 있다.

본 발명의 GOLGA2 유전자가 넉아웃된 폐 섬유화 마우스 모델을 이용한 상기 폐 섬유화 억제 또는 치료제의 스크리닝 방법을 이용하면, 유전적 변이로 인해 간의 전체적인 부위에 섬유화가 유발된 모델을 사용하여 치료제를 스크리닝할 수 있다는 장점이 있다. 또한 케미컬 기반 폐 섬유화가 아닌 유전적 기반 폐 섬유화의 치료제를 스크리닝할 수 있다.

이하, 본 발명을 실시예에 의거하여 보다 구체적으로 설명한다. 실시예는 오로지 본 발명을 보다 구체적으로 설명하기 위한 것으로, 본 발명의 요지에 따라 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다는 것은 당업계에서 통상의 지식을 가진 자에 있어서 자명할 것이다.

실시예 상의 각 실험의 통계는 ± S.D 사용하였고, p < 0.05 (* 또는 #), p < 0.01 (** 또는 ##)로 기록하였다.

실험예 1. 간 세포주 배양 및 GOLGA2 넉아웃 세포주 제작

인간 정상 간세포주인 Chang 세포주를 Dulbecco's modified Eagle medium/high-glucose 배지 (WELGENE Inc.), 우태아 혈청 10%, 항생제 10%, Heps 20%를 첨가하여 37℃, 5% CO₂ 배양기에서 배양하였다.

또한 GOLGA2 넉아웃된 Chang 세포주는 GOLGA2 CRISPR/Cas9 시스템으로 제작하였다.

실험예 2. GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스 제작

Wellcome Trust Sanger Institute로부터 GOLGA2 1-26 엑손이 결실된 배아줄기 세포를 구입하여 C57B/L6J 계통 마우스의 배반포에 주입하여 이형접합체 자손들을 얻어냈고 그 이형접합 마우스의 근친교배를 통한 자손들의 유전형질분석을 통해 GOLGA2 넉아웃 마우스를 선별하였다.

상기 유전형질분석에 사용한 PCR primer는 다음과 같다. GOLGA2 KO-F(5'-CTTCGTATAATGTATGCTATACGAAGTTATGCTAGC-3')와 Reg-GOLGA2-R(5'-ACTGAGCCGGTGAAAACTTAGAAGC-3')는 GOLGA2(-/-) 넉아웃을 확인하는데 사용하였으며, Mus GOLGA2 Exon 27 wt-F(5'-AAGACTGGCGGCCAAAGCC-3')와 Reg-GOLGA2-R는 GOLGA2(+/+)을 확인하는데 사용하였다.

도 1에 GOLGA2 유전자의 위치와 GOLGA2 넉아웃 마우스 제작에 사용된 배아줄기 세포의 모식도를 나타내었으며, 도 1에 나타낸 바와 같이 GOLGA2 유전자는 크로모좀 2에 속하며 사용된 배아줄기세포의 GOLGA2 엑손 1-26번이 결실되어 있음을 확인하였다.

실험예 3. 면역 형광법(Immunofluorescence) 분석

Chang 세포주를 배양용 8웰 챔버 슬라이드에서 배양 후 3% 파라포름알데하이드(Paraformaldehyde)로 4 ℃에서 10분 동안 고정시켰다. 그 후 0.25% Triton® X-100에 5분 처리한 다음 30분간 3% 소혈청알부민을 이용하여 블락킹 처리시켰으며, 일차 항체를 4 ℃에서 하루동안 처리한 후 형광으로 표지된 이차 항체를 처리하였다. 그 후 간조직은 파라핀 블록을 4um로 섹션하여 슬라이드에 옮긴 후 자일렌으로 파라핀을 제거, 수화시킨 후 항원항체 반응을 살리기 위해 retrival 버퍼로 10분간 끓이고 식혔으며 위의 세포와 같이 블락킹 후 동일한 방법으로 분석하였다.

실험예 4. 질량 분석

MALDI-TOF를 이용하여 실험예 2에서 제작한 GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스의 폐 질량 분석을 실시하였다.

실험예 5. 면역블랏(Western Blot) 분석

면역블랏 분석을 위해 우선 배양한 Chang 세포주를 6well plate에 각각 3X10⁵ 3well을 깐 후, 24시간 배양 후에 미디어를 제거하였다. 그 후 1X PBS로 워싱한 후에 20 mM Tris-HCl (pH 7.5), 250 mM NaCl, 3 mM EDTA, 3 mM EGTA, 0.5% NP40, 10 mM 베타-글리세로포스페이트(beta-glycerophosphate), 50 mM 플루오린화나트륨(sodium fluoride), 0.2 mM 바나듐산나트륨(sodium vanadate), 10 mM PNPP, 5 mM PMSF 및 10 μg/ml 류펩틴(leupeptin)으로 만들어진 용해 버퍼(lysis buffer)로 세포를 용해시켰다. 용해시킨 단백질을 Bradford protein assay (Bio-Rad, Hercules, CA)로 단백질 농도를 잰 다음 40ug를 정량하여 Laemmli sample buffer를 농도에 맞게 섞어 끓인 후 SDS-PAGE에 로딩 후 이동시켰으며 밀크 블락킹(milk blocking) 및 TBS-T 워싱하고 1차 항체를 넣고 밤새도록 반응시켰다. 이후 다음날 TBS-T 워싱한 후 Rabbit 2차 항체를 1시간 배양한 뒤, 20분간 3차례 TBS-T 워싱하고 필름으로 현상하였다. 마우스 폐조직은 초저온으로 얼려서 잘게 부순 후 위와 같은 방법으로 수득하여 분석하였다.

실험예 6. 조직학(Histology) 및 면역조직화학적(Immunohistochemistry) 특성 분석

GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스의 폐 조직은 10% 포르말린에 고정 후 파라핀 엠베딩되었고 조직 블록은 4um로 섹션후 실란(silane) 코팅된 슬라이드에 옮겼다. 조직학 분석을 위해 파라핀이 제거된 조직 슬라이드를 헤마톡실린 및 에오신(hematoxylin&eosin, H&E)으로 염색하거나 콜라겐 침착을 관찰하기 위해 Sirius Red시약으로 염색하였다. 또한 면역조직화학적(Immunohistochemistry) 분석을 위해 파라핀 제거된 조직 섹션은 retrival 버퍼로 끓인 후 내생적 페록시다아제(peroxidase)를 제거하기 위해 5% 과산화수소로 15분 처리 후 tween 20 포함된 TBS 버퍼로 워싱하고 1시간동안 블락킹 하였다. 연이어 1차와 2차 항체 처리 후 다시 워싱하고 DAB 기질 용액으로 발색한 후 재빨리 멸균된 물에 워싱하였다. 카운터 염색을 위해 헤마톡실린(hematoxylin)으로 염색하였다. 그 후 알코올화 및 마운팅을 거쳐 조직 현미경으로 관찰하였다.

실험예 7. 전자현미경(Transmission electron microscope, TEM) 분석

TEM 분석을 위해 폐 조직을 1% 사산화오스뮴(osmium tetroxide) 포함된 2.5% 글루타르알데히드(glutaraldehyde) 버퍼로 4 ℃에 밤새도록 고정한 후 알콜화처리 하였으며 프로필렌옥사이드(propylene oxide) epon resin을 조직에 침투시켜 70 ℃에서 밤새도록 굳힌 다음 40nm로 초박절편하여 구리 그리드에 올렸으며 JEM1010 TEM(JEOL)을 사용하여 관찰하였다.

실시예 1. 간 세포주에서 GOLGA2 넉아웃이 자가포식 작용을 유발함을 확인

실험예 1에서 제작한 GOLGA2 넉아웃 간 세포주에서 GOLGA2 넉아웃이 미치는 영향을 확인하기 위해 면역 형광법(Immunofluorescence) 분석을 실시하였으며 이에 대한 결과를 도 2에 나타내었다.

도 2에 나타낸 바와 같이, 간 세포주에서 GOLGA2 유전자를 넉아웃시켰을 때 GOLGA2 단백질이 골지에서 없어짐을 확인함으로써, GOLGA2 넉아웃 세포주에서 골지체의 GOLGA2 단백질 넉아웃을 확인하였다. 파란색은 핵(nucleus)을 나타낸다.

또한 GOLGA2 넉아웃 간 세포주에서 자가포식 작용이 유발되는 것을 확인하기 위해, 정상 간세포주(Chang)와 GOLGA2 넉아웃 간세포주를 250uM의 유리지방산(free fatty acid, FFA)으로 24시간 처리 후 중성지방(neutral lipid) 염색으로 지방 방울을 확인하였으며, 이에 대한 결과를 도 3에 나타내었다. 도 3에서 파란색은 핵(nucleus)을 나타낸다.

도 3에 나타낸 바와 같이, GOLGA2 넉아웃 간 세포주에서 자가포식 작용의 증가로 인해 FFA에 의해 형성된 지방 방울이 분해됨을 확인하였다. 따라서 GOLGA2 넉아웃 간세포주에서 자가포식의 증가로 인해 지방 방울의 크기가 줄어든 것을 확인하였다.

또한 GOLGA2 넉아웃 간 세포주에서 자가포식 마커 단백질인 SQSTM1, LC3I 및 LC3ll 의 발현을 확인하기 위해 면역블랏(Western Blot) 분석을 실시하였으며 이에 대한 결과를 도 4에 나타내었다.

도 4에 나타낸 바와 같이, GOLGA2 넉아웃 간 세포주에서 자가포식 마커 단백질로 알려진 SQSTM1, LC3I 및 LC3II이 증가함을 확인하였다.

따라서 상기 결과들을 통해 GOLGA2 유전자를 넉아웃시켰을 때 골지체에서 GOLGA2 단백질이 넉아웃되며 자가포식이 증가함을 확인하였다.

실시예 2. GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스 특성 분석

실험예 2에서 제작한 GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스의 특성을 알아보기 위해 다음과 같이 분석하였다.

실시예 2-1. 유전형질 분석

실험예 2를 통해 제작한 GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스 선별을 위하여 중합효소 연쇄 반응(polymerase chain reaction, PCR)을 수행하였으며 PCR을 통해 정상, 이형접합 및 GOLGA2 넉아웃 마우스의 유전형질을 분석하여 도 5에 나타내었다.

도 5에 나타낸 바와 같이, PCR을 통한 GOLGA2 넉아웃 마우스 확인 결과 GOLGA2 KO 밴드만 관찰된 마우스들을 GOLGA2 넉아웃 마우스로 선별하였다.

실시예 2-2. mRNA 발현 분석

선별된 GOLGA2 넉아웃 마우스의 조직 내에서 GOLGA2 유전자가 모두 넉아웃된 것을 확인하기 위해서 mRNA의 발현 분석을 하였으며 이에 대한 결과를 도 6에 나타내었다.

도 6에 나타낸 바와 같이, 모든 장기에서 완전하게 GOLGA2가 넉아웃된 것을 확인하였다.

실시예 2-3. 마우스 크기 비교 분석

정상, 이형접합체 및 GOLGA2 넉아웃 마우스의 크기를 비교하여 사진과 그래프를 각각 도 7 및 도 8에 나타내었다.

도 7에 나타난 바와 같이, 정상 마우스에 비해 GOLGA2 넉아웃 마우스의 크기가 작으며 특히 수컷에서 더 크기가 작은 것을 확인하였다.

또한 도 8의 그래프에 나타난 바와 같이, 암수 상관없이 GOLGA2 넉아웃 마우스만이 정상에 비해 유의미하게 크기가 감소함을 확인하였다(n=3).

실시예 2-4. 마우스 몸무게 비교 분석

정상, 이형접합체 및 GOLGA2 넉아웃 마우스의 몸무게를 측정하여 비교 그래프를 도 9에 나타내었다.

도 9에 나타난 바와 같이, 암컷은 각 군의 몸무게 변화가 없었으며 수컷에서 이형접합체와 GOLGA2 넉아웃 마우스의 몸무게는 정상 마우스에 비해 유의미하게 몸무게가 감소함을 확인하였다(n=3).

실시예 2-5. 넉아웃 마우스의 장기 크기 분석

GOLGA2 넉아웃 마우스의 장기 크기를 비교하여 도 10에 나타내었다.

도 10에서와 같이, 수컷 정상 마우스와 비교하여 수컷 GOLGA2 넉아웃 마우스의 장기 크기가 감소한 것을 확인하였다.

실시예 3. GOLGA2 넉아웃 마우스의 폐에서 GOLGA2 넉아웃이 자가포식 작용을 유발시킴을 확인

상기 실험예 2에서 제작한 GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스를 통해 실제 폐에서 GOLGA2 넉아웃이 자가포식 작용을 유발시키는지 확인하기 위해 면역형광염색 분석을 실시하였으며 이에 대한 결과를 도 11에 나타내었다.

도 11에 나타낸 바와 같이, GOLGA2 넉아웃 마우스 폐조직에서 자가포식 마커 단백질인 LC3B 염색은 폐의 특정 세포에서 매우 활성화된 것을 확인하였다. 또한 그 수는 전체 폐의 10% 이하로 보이며 페포 주변이나 안으로 관찰된 것으로 보아 이들 세포는 폐포 대식 세포(macrophage)이거나 2형 폐포 세포일 가능성이 높은 것으로 확인하였다.

또한 GOLGA2 넉아웃 마우스의 2형 폐포세포에서의 자가포식 활성화를 확인하기 위해 면역형광염색 분석을 실시하였으며 이에 대한 결과를 도 12에 나타내었다.

도 12에 나타낸 바와 같이, proSP-C는 2형 폐포 세포의 마커 단백질이며 자가포식 마커 단백질인 LC3B가 넉아웃 마우스의 2형 폐포세포에서 활성화된 것을 확인하였다.

또한 GOLGA2 넉아웃 마우스 폐의 전자현미경 이미지 분석 결과를 도 13에 나타내었다.

도 13에 나타낸 바와 같이, 2형 폐포 세포는 층판소체를 분비하는데 GOLGA2 넉아웃 마우스의 2형 폐포 세포에서는 층판소체가 방전(discharge)되어 있으며 방전된 층판소체의 수가 많아짐을 확인하였다. 이 층판소체는 DPPC(dipalmitoylphosphatidylcholine)가 주성분이며 이는 폐포 계면활성제의 주성분이므로, 이를 통해 계면활성제 시스템에 이상이 생겼을 가능성이 높아진 것을 확인하였다.

또한 MALDI-TOF를 이용하여 마우스 폐의 질량 분석을 실시하여 지질 스캐닝 분석 결과를 도 14에 나타내었다.

도 14에 나타낸 바와 같이, 질량분석기를 이용한 폐의 이미징 분석에서 PC(32:0)+Na의 지질이 넉아웃 마우스에서 크게 감소한 것을 확인하였다. 이 지질은 계면활성제의 주성분인 DPPC이며, 이를 통해 GOLGA2 넉아웃 마우스의 폐에서 폐포를 유지시키는 계면활성제가 부족하다는 것을 확인하였다.

따라서 상기 결과들을 통해 GOLGA2 넉아웃 마우스의 폐에서 GOLGA2 넉아웃이 자가포식 작용을 활성화시키고 2형 폐포 세포에서 폐포를 유지시키는 계면활성제가 부족해지는 것을 확인하였다.

실시예 4. GOLGA2 넉아웃 마우스를 통해 폐섬유화(Pulmonary fibrosis)에서 GOLGA2 넉아웃이 미치는 영향 확인

상기 실험예 2에서 제작한 GOLGA2 유전자 넉아웃 마우스를 통해 실제 폐에서 GOLGA2 넉아웃이 폐섬유화에 어떠한 영향을 미치는지 확인하기 위해 조직학적 분석을 실시하였으며 이에 대한 결과를 도 15에 나타내었다.

도 15에 나타낸 바와 같이, H&E 염색시 GOLGA2 넉아웃 마우스의 폐포 안에 다수의 대식세포(Macrophage, 도 15 내 검은 화살표머리)가 침착되어 있으며 Sirius red 염색에서 섬유화 병변이 발견됨을 확인하였다(도 15 내 빨간 화살표).

따라서 상기 결과들을 통해 GOLGA2 넉아웃 마우스의 폐에서 GOLGA2 넉아웃이 자가포식 작용을 활성화시키고 폐 섬유화를 유발시킴을 확인하였다.

실시예 5. GOLGA2 유전자 넉아웃된 폐조직 섬유화 마우스 모델 확립

상기와 같은 실시예를 통하여, 골지체 단백질인 GOLGA2 유전자의 결실은 자가포식을 유발하고 특히 많은 지질을 포함하고 있는 폐의 2형 페포세포에서 자가포식에 의해 세포내 지질을 분해시킴을 확인하였다. 또한 이로 인해 2형 폐포 세포에서 계면활성제의 분비가 저해되어 폐조직의 섬유화를 일으킴을 확인하였다. 따라서 이를 통해 최종적으로 GOLGA2 유전자 넉아웃된 폐조직 섬유화 마우스 모델을 확립하였으며, 이를 도 16에 나타내었다.

Claims (9)

1. GOLGA2 유전자가 넉아웃된, 폐 섬유화 치료제 스크리닝용 마우스 모델.
   
2. 제1항에 있어서,
   상기 마우스 모델은 골지체에서 GOLGA2 단백질이 넉아웃된 것을 특징으로 하는, 폐 섬유화 치료제 스크리닝용 마우스 모델.
   
3. 제1항에 있어서,
   상기 마우스 모델은 폐에서 자가포식 작용이 증가된 것을 특징으로 하는, 폐 섬유화 치료제 스크리닝용 마우스 모델.
   
4. 제3항에 있어서,
   상기 폐는 폐포 세포인 것을 특징으로 하는, 폐 섬유화 치료제 스크리닝용 마우스 모델.
   
5. 제1항에 있어서,
   상기 마우스 모델은 폐에서 DPPC(dipalmitoylphosphatidylcholine)가 감소된 것을 특징으로 하는, 폐 섬유화 치료제 스크리닝용 마우스 모델.
   
6. 제1항에 있어서,
   상기 마우스 모델은 GOLGA2 유전자 엑손 1 내지 26번이 결실된 배아줄기 세포로 제조된 것을 특징으로 하는, 폐 섬유화 치료제 스크리닝용 마우스 모델.
   
7. 삭제
8. GOLGA2 유전자를 넉아웃시키는 단계;를 포함하는, 폐 섬유화 치료제 스크리닝용 마우스 모델 제조방법.
   
9. (S1) 제1항의 폐 섬유화 치료제 스크리닝용 마우스 모델에 후보 물질을 처리하는 단계; 및
   (S2) 상기 후보 물질이 처리된 폐 섬유화 치료제 스크리닝용 마우스 모델에서 폐 섬유화 억제 또는 치료 물질을 판정하는 단계;를 포함하는, 폐 섬유화 치료제의 스크리닝 방법.

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