KR20160124544A - 담즙울체성 간질환 동물 모델 및 이의 제조 방법 - Google Patents

담즙울체성 간질환 동물 모델 및 이의 제조 방법 Download PDF

Info

Publication number
KR20160124544A
KR20160124544A KR1020150055345A KR20150055345A KR20160124544A KR 20160124544 A KR20160124544 A KR 20160124544A KR 1020150055345 A KR1020150055345 A KR 1020150055345A KR 20150055345 A KR20150055345 A KR 20150055345A KR 20160124544 A KR20160124544 A KR 20160124544A
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
animal model
liver disease
cholestatic liver
branch
cholestatic
Prior art date
Application number
KR1020150055345A
Other languages
English (en)
Inventor
유제영
Original Assignee
삼성전자주식회사
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 삼성전자주식회사 filed Critical 삼성전자주식회사
Priority to KR1020150055345A priority Critical patent/KR20160124544A/ko
Priority to PCT/KR2016/004069 priority patent/WO2016171449A1/ko
Publication of KR20160124544A publication Critical patent/KR20160124544A/ko

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K67/00Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
    • A01K67/027New or modified breeds of vertebrates
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2227/00Animals characterised by species
    • A01K2227/10Mammal
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A01AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01KANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2267/00Animals characterised by purpose
    • A01K2267/03Animal model, e.g. for test or diseases

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Environmental Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Animal Husbandry (AREA)
  • Biodiversity & Conservation Biology (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

간의 우엽을 향해 분기된 담관 가지 및 좌문맥이 폐쇄되어 있고 담즙울체성 간질환을 갖는, 담즙울체성 간질환 동물모델, 상기 동물모델의 제조방법, 및 상기 동물모델을 이용한 담즙울체성 간질환 치료제의 스크리닝 방법을 제공한다.

Description

담즙울체성 간질환 동물 모델 및 이의 제조 방법{Cholestatic liver disease animal model and a method for producing the same}
담즙울체성 간질환 동물 모델 및 이의 제조 방법에 관한 것이다.
간에서 분비되는 담즙은 장에서 지방 및 비타민의 흡수를 돕고 혈액으로부터 체내 노폐물을 제거하는 역할을 한다. 담즙울체(cholestasis)는 담즙의 순환장애로 인한 생화학적, 생리적, 또는 임상적 변화를 의미한다. 유전적 또는 후천적 원인에 의해 간담도계(hepatobiliary system)의 기능이 저하되면 담즙울체가 발생한다. 담즙 분비의 이상은 간 내 또는 전신에 독성 물질의 축적을 유발하여 간 손상 또는 황달을 일으킬 수 있다.
담즙울체성 간질환을 완전하게 치료하는 방법은 현재 간이식술 외에는 알려져 있지 않다. 약물요법에 의한 치료는 질환의 증상을 감소시키고 합병증을 예방하는 수준에 그친다. 수술적 방법을 이용한 동물 모델 및 유전자 조작 방법을 이용한 동물 모델이 담즙울체성 간질환의 병인 및 치료 방법의 연구를 위해 개발되어 있다. 일반적으로 이용되는 총 담관 결찰(common bile duct ligation) 동물 모델은 생존 기간이 짧아 장기적인 실험에 부적합하다.
따라서, 종래의 기술에 의해서도 보다 정확하고 장기적인 담즙울체성 간질환 연구 또는 치료 약물의 스크리닝을 위한 담즙울체성 간질환 모델이 요구된다.
일 양상은 우측 간엽(right lateral lobe)을 향해 분기된 담관 가지 및 좌문맥(left portal vein)이 폐쇄되어 있고 담즙울체성 간질환을 갖는, 담즙울체성 간질환 동물모델을 제공한다.
다른 양상은 상기 담즙울체성 간질환 동물모델의 제조방법을 제공한다.
또 다른 양상은 상기 담즙울체성 간질환 동물모델을 이용하는 담즙울체성 간질환 치료제의 스크리닝 방법을 제공한다.
일 양상은 우측 간엽(right lateral lobe)을 향해 분기된 담관 가지 및 좌문맥(left portal vein)이 폐쇄되어 있고 담즙울체성 간질환을 갖는, 담즙울체성 간질환 동물모델을 제공한다.
용어 "우측 간엽을 향해 분기된 담관 가지"는 총 담관(common bile duct)으로부터 우측 간엽을 향해 분기된 담관을 의미한다. 상기 동물모델에서 담관 가지의 폐쇄는, 상기 가지의 결찰(ligation) 또는 색전술(embolization)에 의해 이루어진 것일 수 있다.
상기 동물모델에서 좌문맥의 폐쇄는, 좌문맥과 우문맥의 분기점(branching point)과, 상기 좌문맥으로부터 분기하는 문맥 가지 중 상기 분기점과 가장 가까운 가지가 분기하는 지점의 사이에서의 좌문맥의 결찰에 의해 이루어진 것일 수 있다. 상기 분기점은 주문맥(main portal vein)이 좌문맥 및 우문맥으로 갈라지는 지점을 의미한다.
또한, 상기 좌문맥의 폐쇄는 좌측 간엽 또는 중간엽을 향해 분기하는 하나 이상의 문맥 가지의 결찰에 의해 이루어진 것일 수 있다. 상기 좌문맥의 폐쇄는, 좌측 간엽 또는 중간엽을 향해 분기하는 문맥 가지 중 1개 이상, 2개 이상, 3개 이상, 또는 4개 이상의 문맥 가지의 결찰에 의해 이루어진 것일 수 있다. 상기 좌문맥의 폐쇄는 좌측 간엽 또는 중간엽을 향해 분기하는 모든 문맥 가지의 결찰에 의해 이루어진 것일 수 있다.
상기 담즙울체성 간질환은, 간내 담즙울체성 황달(intrahepatic cholestatic jaundice), 담즙울체성 간염(cholestatic hepatitis), 일차성 담즙성 간경화증(primary biliary cirrhosis), 일차성 경화성 담관염(primary sclerosing cholangitis), 담석증, 및 담종양으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상을 포함할 수 있다.
상기 동물은 인간을 제외한 포유동물일 수 있다. 상기 동물은 예를 들면, 마우스, 햄스터, 랫트, 기니 피그, 토끼, 돼지, 또는 개일 수 있다.
상기 동물모델은 총담관이 결찰된(common bile duct-ligated) 동일 종류의 동물모델에 비해 생존율 또는 생존기간이 증가된 것일 수 있다. 예를 들면, 상기 동물이 마우스인 경우, 상기 동물의 생존율 또는 생존기간은 총 담관 결찰 마우스의 생존율 또는 생존기간에 비해 현저하게 증가된 것일 수 있다. 상기 동물모델은 상기 담관 가지 및 좌문맥의 폐쇄 50일 후 생존율이 60% 이상, 65% 이상, 70% 이상, 75% 이상, 80% 이상, 85% 이상일 수 있다.
다른 양상은, 포유동물의 우측 간엽을 향해 분기된 담관 가지를 폐쇄하는 단계; 및 포유동물의 좌문맥을 폐쇄하는 단계를 포함하는, 담즙울체성 간질환 동물모델의 제조방법을 제공한다.
상기 방법에서, 상기 폐쇄는 결찰, 폐쇄용 장치의 삽입, 접착, 색전제의 투여, 또는 그의 조합에 의해 이루어질 수 있다. 상기 결찰은 봉합사, 클립, 또는 집게를 이용할 수 있다. 또한, 상기 결찰은 단일 결찰(single ligation), 이중 결찰(double ligation) 또는 이중 결찰과 절제(resection)의 조합을 포함할 수 있다. 상기 폐쇄용 장치는 당해 분야에서 통상적으로 이용되는 폐쇄용 장치를 포함할 수 있다.
상기 방법에서, 상기 담관 가지를 폐쇄하는 단계는 상기 가지의 결찰 또는 색전술을 포함할 수 있다. 상기 좌문맥을 폐쇄하는 단계는, 좌문맥과 우문맥의 분기점과, 상기 좌문맥으로부터 분기하는 문맥 가지 중 상기 분기점과 가장 가까운 가지가 분기하는 지점의 사이에서의 좌문맥의 결찰을 포함할 수 있다. 상기 분기점에 대해서는 전술된 바와 같다. 또한, 상기 좌문맥을 폐쇄하는 단계는 좌측 간엽 또는 중간엽을 향해 분기하는 하나 이상의 문맥 가지의 결찰을 포함할 수 있다. 상기 좌문맥을 폐쇄하는 단계는, 좌측 간엽 또는 중간엽을 향해 분기하는 문맥 가지 중 1개 이상, 2개 이상, 3개 이상, 또는 4개 이상의 문맥 가지의 결찰을 포함할 수 있다. 상기 좌문맥을 폐쇄하는 단계는 좌측 간엽 또는 중간엽을 향해 분기하는 모든 문맥 가지의 결찰을 포함할 수 있다.
상기 동물은 인간을 제외한 포유동물일 수 있다. 상기 동물은 예를 들면, 마우스, 햄스터, 랫트, 기니 피그, 토끼, 돼지, 또는 개일 수 있다. 상기 방법에 의해 얻어지는 동물모델은 총담관이 결찰된 동일 종류의 동물모델에 비해 생존율 또는 생존기간이 증가된 것일 수 있다. 예를 들면, 상기 동물이 마우스인 경우, 상기 동물모델의 생존율 또는 생존기간은 총 담관 결찰 마우스의 생존율 또는 생존기간에 비해 현저하게 증가된 것일 수 있다. 상기 동물모델은 상기 담관 가지 및 좌문맥의 폐쇄 50일 후 생존율이 60% 이상, 65% 이상, 70% 이상, 75% 이상, 80% 이상, 85% 이상일 수 있다.
상기 방법에 의해 얻어지는 포유동물은 담즙울체성 간질환을 갖는 것일 수 있다. 상기 담즙울체성 간질환에 대해서는 전술된 바와 같다.
또 다른 양상은, 전술된 담즙울체성 간질환 동물모델에 담즙울체성 간질환의 치료제 후보 물질을 투여하는 단계; 및 상기 동물모델의 담즙울체성 간질환 증상이 완화되는지 여부를 확인하는 단계를 포함하는, 담즙울체성 간질환 치료제의 스크리닝 방법을 제공한다.
상기 투여는 경구 또는 비경구 투여를 포함할 수 있다. 상기 비경구 투여는 정맥내, 피하, 근육내, 또는 체강내(복강, 관절, 또는 안강) 투여일 수 있다.
상기 확인하는 단계는, 상기 동물모델의 혈액 중 담즙울체성 간질환 관련 표지의 농도를 측정하거나, 상기 동물모델의 간 무게를 측정하거나, 또는 상기 동물모델의 간 섬유화 정도를 측정하는 것일 수 있다.
상기 혈액은 혈청 또는 혈장일 수 있다. 상기 담즙울체성 간질환 관련 표지는 총 콜레스테롤(total cholesterol: TCHO), 알칼라인 포스파타제(alkaline phosphatase: ALP), 아스파테이트 트랜스아미나제(aspartate transaminase: AST), 및 알라닌 아미노트랜스퍼라제(alanine aminotransferase: ALT) 중에서 선택되는 하나 이상일 수 있다.
상기 간 섬유화 정도는 간 조직 염색, 혈중 간 섬유화 표지의 측정, 및 간 섬유화 스캔을 포함하는 통상의 간 섬유화 정도 측정 방법을 통해 측정될 수 있다. 상기 염색은 헤마톡실린 및 에오신(hematoxylin and eosin: H&E) 염색, Masson-trichome 염색, 또는 시리우스 레드(sirius red) 염색일 수 있다. 상기 간 섬유화 표지는 히알루론산, 프로콜라겐 Ⅲ 펩티드, 변형성 성장 인자-베타(transforming growth factor-β), 콜라겐 타입 I, III, 또는 IV, 피브로넥틴(fibronectin), 또는 라미닌일 수 있다.
도 1은 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델의 결찰 부위를 나타낸다.
도 2는 총 담관 결찰 동물모델 및 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델의 수술 후 시간 경과에 따른 생존율 변화를 나타내는 그래프이다.
도 3a는 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델로부터 유래된 간 조직의 시리우스 레드 염색 결과를 나타낸다. 도 3b는 시리우스 레드 염색에 양성을 나타내는 면적을 산출한 그래프이다.
도 4a 및 4b는 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델의 혈청에서 측정된 담즙울체성 간질환 관련 표지의 양을 나타내는 그래프이다. 도 4a의 총 콜레스테롤(TCHO) 및 알칼라인 포스파타제(ALP)는 담즙울체성 질환 관련 표지이며, 도 4b의 아스파테이트 트랜스아미나제(AST) 및 알라닌 아미노트랜스퍼라제(ALT)는 간질환 관련 표지이다.
도 5a는 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델의 전체 간 대비 우측 간엽의 중량비를 나타내는 그래프이다.
도 5b는 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델의 체중 대비 간의 중량비를 나타내는 그래프이다.
이하 실시예를 통하여 보다 상세하게 설명한다. 그러나, 이들 실시예는 예시적으로 설명하기 위한 것으로 본 발명의 범위가 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예 1. 담즙울체성 간질환 동물모델의 제조 및 생존율 조사
1. 담즙울체성 간질환 동물모델의 제조
13주령의 BALB/c 수컷 마우스를 소동물용 흡입마취기를 이용하여 1~2% 아이소플루레인(isoflurane) 흡입 마취한 후, 복부를 절개하였다. 좌문맥(left portal vein)의 주변 결합조직을 수술용 핀셋으로 박리한 후 7-0 나일론 봉합사로 결찰하였다. 또한, 우측 간엽(right lateral lobe)으로 통하는 담관(간의 우엽을 향해 분기된 담관 가지)의 주변 결합조직을 수술용 핀셋으로 박리한 후 7-0 나일론 봉합사로 결찰하였다. 수술 후 동물은 SPF(specific pathogen free) 조건에서 사육하였다. 이러한 동물실험은 삼성생명과학연구소 실험동물윤리위원회에서 승인을 받아 수행되었다.
도 1은 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델의 결찰 부위를 나타낸다. 도 1에서 담관 및 문맥을 각각 회색 및 흑색으로 표시하고, 결찰된 부위를 굵은 붉은 실선으로 나타내었다.
2. 담즙울체성 간질환 동물모델의 생존율 조사
전술된 방법에 의해 제조된 담즙울체성 간질환 마우스 31개체의 생존기간을 측정하였다. 또한, 전술된 마취 방법으로 마취하고 복부를 절개한 뒤 총 담관을 결찰하여 제조된 동일 연령의 총 담관 결찰 마우스 24개체의 생존기간을 측정하였다.
도 2는 총 담관 결찰 동물모델 및 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델의 수술 후 시간 경과에 따른 생존율 변화를 나타내는 그래프이다. 도 2에 나타낸 바와 같이, 총 담관 결찰 마우스(BDL로 표시)는 수술 후 약 15일 경과 후 생존율이 급감하여, 수술 후 약 25일 경과 시점에 50% 미만의 생존율을 나타내었고, 약 40일 경과 후 거의 모든 개체가 사망하였다. 이에 비해, 실시예 1의 1.에 기재된 방법에 의해 제조된 담즙울체성 간질환 마우스(SCC로 표시)는 수술 후 50일 경과 시점에 80% 이상의 높은 생존율을 나타내어, 이 제조방법에 의해 제조된 담즙울체성 간질환 동물모델의 생존율이 현저하게 향상된다는 것을 확인하였다.
실시예 2. 담즙울체성 간질환 동물모델의 질환 상태 분석
1. 간 섬유화 정도 측정
실시예 1.에 기재된 방법에 의해 제조된 동물모델 중 수술 시행 3주, 7주, 또는 15주차의 개체를 소동물용 흡입마취기를 이용하여 1~2% 아이소플루레인 흡입 마취한 후, 개복하고 횡격막을 절개하여 안락사시켰다. 각 개체로부터 전체 간을 적출한 후, PBS용액으로 3회 세척 후, 간의 우엽과 좌엽의 일부(약 1cm3)를 채취하여 조직을 얻고 4% 파라포름알데히드 용액에 하루 동안 4℃ 냉장보관하여 조직을 고정한 후 파라핀 절편을 제작하였다. 각 조직 절편을 시리우스 레드로 염색한 후 정립현미경으로 관찰하였다.
도 3a는 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델로부터 유래된 간 조직의 염색 결과를 나타낸다. Sham은 문맥 또는 담관이 결찰되지 않은 마우스를 나타내고, SCC는 실시예 1.에 기재된 방법에 따라 제조된 마우스를 나타낸다. 그 결과, SCC는 시간경과에 따라 시리우스 레드에 의해 염색된 부분이 점차 증가된 반면, 대조군인 Sham에서는 뚜렷한 변화가 나타나지 않았다.
도 3b는 시리우스 레드 염색에 양성을 나타내는 면적을 산출한 그래프이다. Sham 및 SCC에 대해서는 전술된 바와 같다. PBL은 좌문맥이 결찰된 마우스를 나타내고, RBDL은 우측 간엽을 향해 분기된 담관 가지가 결찰된 마우스를 나타낸다. BDLL은 SCC 또는 RBDL의 우측 간엽을 나타내고, PBLL은 SCC 또는 PBL의 좌측 간엽을 나타내며, NLL은 PBL 또는 RBDL에서 결찰되지 않은 담관 또는 문맥과 연결된 간엽을 나타낸다.
도 3b에 나타낸 바와 같이, SCC의 우측 간엽은 수술 후 시간이 경과함에 따라 간 섬유화가 심화되었다. 하기 도 5a의 결과를 고려하면, 간 섬유화가 급격하게 진행된 RBDL의 우측 간엽에서는 담즙울체성 손상에 의한 파괴만 일어난 것에 비해, 간 섬유화가 mild하게 진행된 SCC의 우측 간엽은 재생과 담즙울체성 손상이 동시에 일어난 것으로 판단된다 (*:p<0.05). 또한, 하기 도 4a, 4b, 5a, 및 5b의 결과와 종합적으로 고려하면, RBDL은 담즙울체성 간질환 동물모델로서 적합하지 않으나, SCC는 담즙울체성 간질환 동물모델로서 적합한 것으로 판단된다.
2. 담즙울체성 간질환 관련 표지의 측정
실시예 1.에 기재된 방법에 의해 제조된 동물모델 중 수술 후 1주, 3주, 7주, 또는 15주 경과된 개체의 안와정맥 또는 심장부위로부터 각각 혈액을 채취하였다. 수술 후 1주 경과된 개체의 경우, 안와정맥으로부터 혈액을 채취하였다. 수술 후 3주 이상 경과된 개체의 경우, 소동물용 흡입마취기를 이용하여 1~2% 아이소플루레인 흡입 마취한 후, 개복하고 횡격막을 절개하여 안락사 후 심장이 멈추기 전 1 ml syringe를 이용하여 500~600 ㎕의 혈액을 채취하였다. 채취한 혈액을 모세관채혈튜브에 넣어 상온에서 20분간 방치한 후, 2000 g, 20 min, 4℃에서 원심분리하여 상층액으로부터 혈청을 얻었다. 각 혈청 중 담즙울체성 간질환 관련 표지인 총 콜레스테롤(TCHO), 알칼라인 포스파타제(ALP), 아스파테이트 트랜스아미나제(AST), 및 알라닌 아미노트랜스퍼라제(ALT)의 농도를 Fujifilm Dri-chem 3000 장비를 이용하여 제조사의 프로토콜에 따라 측정하였다.
도 4a 및 4b는 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델의 혈청에서 측정된 담즙울체성 간질환 관련 표지의 양을 나타내는 그래프이다. SCC, PBL, RBDL, Sham에 대해서는 전술된 바와 같다. BDL은 총 담관이 결찰된 마우스를 나타낸다. 도 4a 및 4b에 나타낸 바와 같이, 실시예 1.에 기재된 방법에 의해 제조된 마우스(SCC)의 혈청 중 담즙울체성 간질환 관련 표지의 양은, BDL을 제외한 대조군에 비해 유의하게 높은 수준으로 유지되었다. BDL의 경우, 대부분의 개체가 수술 3주 후 사망하였다.
3. 간 무게의 측정
실시예 1.에 기재된 방법에 의해 제조된 동물모델 중 수술 후 3주, 7주, 또는 15주 경과된 개체를 소동물용 흡입마취기를 이용하여 1~2% 아이소플루레인 흡입 마취한 후, 개복하고 횡격막을 절개하여 안락사시켰다. 각 개체로부터 적출된 전체 간을 PBS 용액으로 3회 세척한 뒤 전체 간의 중량 및 그로부터 분리된 우측 간엽의 중량을 측정하였다 (d = 0.01g).
도 5a는 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델의 전체 간 대비 우측 간엽의 중량비를 나타내는 그래프이다. SCC, PBL, RBDL, Sham에 대해서는 전술된 바와 같다. 도 5a에 나타낸 바와 같이, 실시예 1.에 기재된 방법에 의해 제조된 마우스(SCC)에서의 전체 간 대비 우측 간엽의 중량비는, PBL을 제외한 대조군에 비해 유의하게 높은 수치를 나타내었다. 이를 통해, 실시예 1.에 기재된 방법에 의해 제조된 마우스의 우측 간엽은 수술 후 재생(regeneration)이 진행된다는 것이 확인되었다.
도 5b는 일 양상에 따른 담즙울체성 간질환 동물모델의 체중 대비 간의 중량비를 나타내는 그래프이다. SCC, PBL, RBDL, Sham에 대해서는 전술된 바와 같다. 도 5b에 나타낸 바와 같이, 실시예 1.에 기재된 방법에 의해 제조된 마우스(SCC)에서의 체중 대비 간의 중량비는, 대조군에 비해 유의하게 높은 수치를 나타내었다. 이를 통해, 실시예 1.에 기재된 방법에 의해 제조된 마우스의 간은 수술 후 장기간 비정상적인 상태를 유지한다는 것을 확인하였다.

Claims (17)

  1. 우측 간엽(right lateral lobe)을 향해 분기된 담관 가지 및 좌문맥(left portal vein)이 폐쇄되어 있고 담즙울체성 간질환을 갖는, 담즙울체성 간질환 동물모델.
  2. 청구항 1에 있어서, 상기 담관 가지의 폐쇄는 상기 가지의 결찰 또는 색전술(embolization)에 의한 것인 동물모델.
  3. 청구항 1에 있어서, 상기 좌문맥의 폐쇄는, 좌문맥과 우문맥의 분기점과, 상기 좌문맥으로부터 분기하는 문맥 가지 중 상기 분기점과 가장 가까운 가지가 분기하는 지점의 사이에서의 좌문맥의 결찰, 또는 좌측 간엽 또는 중간엽을 향해 분기하는 하나 이상의 문맥 가지의 결찰에 의한 것인 동물모델.
  4. 청구항 1에 있어서, 상기 담즙울체성 간질환은 간내 담즙울체성 황달(intrahepatic cholestatic jaundice), 담즙울체성 간염(cholestatic hepatitis), 일차성 담즙성 간경화증(primary biliary cirrhosis), 일차성 경화성 담관염(primary sclerosing cholangitis), 담석증, 및 담종양으로 구성된 군으로부터 선택되는 하나 이상을 포함하는 것인 동물모델.
  5. 청구항 1에 있어서, 상기 동물은 인간을 제외한 포유동물인 것인 동물모델.
  6. 청구항 1에 있어서, 상기 동물은 마우스, 햄스터, 랫트, 기니 피그, 토끼, 돼지, 또는 개인 것인 동물모델.
  7. 청구항 1에 있어서, 상기 동물모델은 총 담관이 결찰된(common bile duct-ligated) 동일 종류의 동물모델에 비해 생존율이 증가된 것인 동물모델.
  8. 청구항 1에 있어서, 상기 동물모델은 상기 담관 가지 및 좌문맥의 폐쇄 50일 후 생존율이 75% 이상인 것인 동물모델.
  9. 포유동물의 우측 간엽을 향해 분기된 담관 가지를 폐쇄하는 단계; 및
    포유동물의 좌문맥을 폐쇄하는 단계를 포함하는, 담즙울체성 간질환 동물모델의 제조방법.
  10. 청구항 9에 있어서, 상기 폐쇄는 결찰, 폐쇄용 장치의 삽입, 접착, 색전제의 투여, 또는 그의 조합에 의해 이루어지는 것인 방법.
  11. 청구항 9에 있어서, 상기 담관 가지를 폐쇄하는 단계는 상기 가지의 결찰 또는 색전술을 포함하는 것인 방법.
  12. 청구항 9에 있어서, 상기 좌문맥을 폐쇄하는 단계는, 좌문맥과 우문맥의 분기점과, 상기 좌문맥으로부터 분기하는 문맥 가지 중 상기 분기점과 가장 가까운 가지가 분기하는 지점의 사이에서의 좌문맥의 결찰, 또는 좌측 간엽 또는 중간엽을 향해 분기하는 하나 이상의 문맥 가지의 결찰을 포함하는 것인 방법.
  13. 청구항 9에 있어서, 상기 동물은 인간을 제외한 포유동물인 것인 방법.
  14. 청구항 9에 있어서, 상기 동물모델은 상기 담관 가지 및 좌문맥의 폐쇄 50일 후 생존율이 75% 이상인 것인 방법.
  15. 청구항 9에 있어서, 상기 방법에 의해 얻어지는 포유동물은 담즙울체성 간질환을 갖는 것인 방법.
  16. 청구항 1의 담즙울체성 간질환 동물모델에 담즙울체성 간질환의 치료제 후보 물질을 투여하는 단계; 및
    상기 동물모델의 담즙울체성 간질환 증상이 완화되는지 여부를 확인하는 단계를 포함하는, 담즙울체성 간질환 치료제의 스크리닝 방법.
  17. 청구항 16에 있어서, 상기 확인하는 단계는 상기 동물모델의 혈액 중 담즙울체성 간질환 관련 표지의 농도를 측정하거나, 상기 동물모델의 간 무게를 측정하거나, 또는 상기 동물모델의 간 섬유화 정도를 측정하는 것인 방법.
KR1020150055345A 2015-04-20 2015-04-20 담즙울체성 간질환 동물 모델 및 이의 제조 방법 KR20160124544A (ko)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020150055345A KR20160124544A (ko) 2015-04-20 2015-04-20 담즙울체성 간질환 동물 모델 및 이의 제조 방법
PCT/KR2016/004069 WO2016171449A1 (ko) 2015-04-20 2016-04-19 담즙울체성 간질환 동물 모델 및 이의 제조 방법

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020150055345A KR20160124544A (ko) 2015-04-20 2015-04-20 담즙울체성 간질환 동물 모델 및 이의 제조 방법

Publications (1)

Publication Number Publication Date
KR20160124544A true KR20160124544A (ko) 2016-10-28

Family

ID=57143995

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020150055345A KR20160124544A (ko) 2015-04-20 2015-04-20 담즙울체성 간질환 동물 모델 및 이의 제조 방법

Country Status (2)

Country Link
KR (1) KR20160124544A (ko)
WO (1) WO2016171449A1 (ko)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20190062140A (ko) * 2017-11-28 2019-06-05 충남대학교산학협력단 Golga2 유전자 넉아웃 폐 섬유화 마우스 모델
KR20190062139A (ko) * 2017-11-28 2019-06-05 충남대학교산학협력단 Golga2 유전자 넉아웃 간 섬유화 마우스 모델

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP2696860B1 (en) * 2011-04-13 2016-10-19 Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale (INSERM) Non human animal model for ulcerative colitis and its main complications
JP2014036613A (ja) * 2012-08-16 2014-02-27 Toyama Univ 胆汁うっ滞性障害のモデル動物およびその作製方法

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20190062140A (ko) * 2017-11-28 2019-06-05 충남대학교산학협력단 Golga2 유전자 넉아웃 폐 섬유화 마우스 모델
KR20190062139A (ko) * 2017-11-28 2019-06-05 충남대학교산학협력단 Golga2 유전자 넉아웃 간 섬유화 마우스 모델
KR20200115421A (ko) * 2017-11-28 2020-10-07 충남대학교산학협력단 Golga2 유전자 넉아웃 간 섬유화 마우스 모델
KR20200115422A (ko) * 2017-11-28 2020-10-07 충남대학교산학협력단 Golga2 유전자 넉아웃 폐 섬유화 마우스 모델

Also Published As

Publication number Publication date
WO2016171449A1 (ko) 2016-10-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Sivacharan et al. Coeliac trunk and its branches: anatomical variations and clinical implications
Lee et al. High hilar dissection: new technique to reduce biliary complication in living donor liver transplantation
KR20150126394A (ko) 정제된 양친매성 펩타이드 조성물을 이용하는 수술 방법
CN117618534A (zh) Hmgb1蛋白的片段肽的制药用途
MX2015001721A (es) Uso de polipeptidos derivados de pedf para promover la regeneración de músculo o tendón o arteriogénesis.
CN108495647A (zh) 诱导心肌细胞增殖及治疗心脏病的方法
Antounians et al. Congenital diaphragmatic hernia: state of the art in translating experimental research to the bedside
KR20160124544A (ko) 담즙울체성 간질환 동물 모델 및 이의 제조 방법
JP6256786B1 (ja) 不妊症の処置に用いられる医薬組成物およびその製造方法
Savov et al. Bilateral persistent complete sciatic artery
Lou et al. Combined gastroscopic and choledochoscopic transabdominal nasobiliary drainage
RU2559921C2 (ru) Способ восстановления целостности тонкой кишки
Fukushima et al. A reproducible swine model of a surgically created saccular thoracic aortic aneurysm
CN112402431A (zh) 帕立骨化醇在制备治疗胆汁淤积性肝损伤药物中的新用途
Jorge et al. A new method for the experimental induction of secundary biliary cirrhosis in Wistar rats
JP2015057984A (ja) 虚血モデル動物の作製法
Zhang et al. Minimally Invasive Extended Hepatectomy in Miniature Pigs and the Subsequent Hepatic Regenerative Response
WO2023241716A1 (zh) 一种诱导哺乳动物原位再生的方法及其应用
RU2311875C1 (ru) Способ панкреатодуоденальной резекции при местнораспространенном раке периампулярной области с опухолевой инвазией устья воротной вены
RU2743730C1 (ru) Способ корпорокаудальной резекции поджелудочной железы при злокачественных опухолях тела поджелудочной железы с опухолевой инвазией устья селезеночной вены
JP2008148693A (ja) 幹細胞の単離方法
RU2655436C1 (ru) Способ ушивания разреза аорты при операциях на аортальном клапане
JP2017165745A (ja) 筋肉若しくは腱再生又は動脈形成を促進するためのpedf由来のポリペプチドの使用
Etkin et al. Open repair of celiac artery aneurysm
Liu et al. Construction of a canine model with acute type B aortic dissection using a self-made pressure-driven flow device