KR101718511B1 - 신종 인플루엔자 바이러스 ｎａ 단백질 특이적 항체 - Google Patents

신종 인플루엔자 바이러스 ｎａ 단백질 특이적 항체 Download PDF

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Abstract

본 발명은 신종 인플루엔자 바이러스에 특이적으로 결합하는 결합 분자에 관한 것으로, 본 발명의 신종 인플루엔자 바이러스에 특이적인 결합 분자는 신종 인플루엔자 바이러스 유래 질환의 예방 및 치료에 유용하며, 본 발명의 결합 분자를 이용하여 신종 인플루엔자 바이러스의 진단에도 유용하게 이용될 수 있다.

Description

신종 인플루엔자 바이러스 ＮＡ 단백질 특이적 항체 {Antibody of specific binding to NA protein of influenza viruses}
본 발명은 신종 인플루엔자 바이러스 NA 단백질에 대하여 특이적으로 결합하는 항체에 관한 것이다.
인플루엔자의 원인바이러스는 Orthomyxoviridae 패밀리에 속하는 단일 가닥 RNA (ssRNA) 바이러스이다. 인플루엔자 바이러스는 통상 A, B, C형으로 구분한다. A 형 인플루엔자는 사람뿐만 아니라 조류 및 돼지도 감염시킨다. C형 인플루엔자는 사람에서 경미한 질병만 일으킨다. A형 인플루엔자는 다시 표면항원인 헤마글루타닌 (H) 항원과 뉴라미다아제 (N) 항원에 의해 아형이 결정된다. H 항원은 H1-H16까지 알려져 있으며, N 항원은 N1-N9까지 알려져 있다. A형 인플루엔자의 유전자는 8개의 유전자 조각으로 구성되어 있으며, 이러한 이유로 유전자 재조합이 일어날 수 있다.
조류 인플루엔자 바이러스나 돼지 인플루엔자 바이러스는 사람을 잘 감염시키지 못하며, 그 이유는 종간 장벽이 있기 때문이다. 하지만 드물게 종간 장벽을 넘어서는 감염병이 발생하기도 하는데, 1976년 미국의 뉴저지주에서 돼지 인플루엔자 (H1N1)가 일으킨 감염사례가 발생하였다. 모두 13명의 감염환자가 발생하였으며 이 중 1명이 사망하였다. 1997년 홍콩에서는 조류 인플루엔자 H5N1가 일으킨 감염병이 발생하였으며, H5N1 인플루엔자 바이러스에 의한 감염은 현재까지도 산발적으로 발생하고 있다. 2009년 6월 1일까지 세계적으로 모두 432명의 조류 인플루엔자 환자가 발생하였으며 이중 262명 (60%)이 사망하였다.
　신종 인플루엔자[A(H1N1)pdm09]의 원인 미생물은 인플루엔자 A H1N1임이 밝혀졌다. 하지만 신종 인플루엔자[A(H1N1)pdm09]의 원인 바이러스는 계절 인플루엔자를 일으켰던 인플루엔자 A (H1N1)과 달리 돼지로부터 기인한 것임이 밝혀져서 S-OIV (돼지 기원 인플루엔자 바이러스)로 불리게 되었으며, 다시 A(H1N1)pdm09 바이러스로 이름이 바뀌게 되었다. 분자 생물학적 연구 결과 A(H1N1)pdm09 바이러스는 4가지 인플루엔자 바이러스 유전자가 재조합된 것임이 밝혀졌다. 4가지 인플루엔자 바이러스는 각각 북아메리카 돼지 인플루엔자 바이러스, 북아메리카 조류 인플루엔자 바이러스, 사람 인플루엔자 바이러스, 유라시아 돼지 인플루엔자 바이러스이다.
현재 인플루엔자 바이러스 진단 방법은 바이러스 배양이며, 시기를 잘 맞추어 배양하면 진단의 민감도도 좋다고 알려져 있다(Reina, 1997). 그러나 바이러스 배양법은 실험실적으로 비용이 많이 들고 실험실까지의 바이러스의 배송과 확진까지 많은 시간이 소요되는 단점이 있다.
상용화된 신속진단 시약으로는 인체용의 경우, A 항원형 및 B 항원형 동시 검출 키트가 있으며 동물용의 경우에는 A 항원형만 검출하는 키트가 있다. 그러나, 현재 상용화된 인플루엔자 신속 진단 키트는 최근 유행하고 있는 신종 인플루엔자[A(H1N1)pdm09] 바이러스와 계절형 독감을 구별할 수 없는 단점이 있다. 현재 신종 인플루엔자[A(H1N1)pdm09] 바이러스와 계절형 독감을 구별할 수 있는 방법은 RT-PCR(real time polymerase chain reaction)법으로 많은 병원에서 신종인플루엔자[A(H1N1)pdm09] 바이러스 확진 검사로 사용되고 있으나 고가의 장비와 높은 기술력을 요해 사용 편리성이 떨어지는 단점이 있다.
본 발명은 신종 인플루엔자 바이러스에 대하여 특이적으로 결합하는 결합분자를 제공하는 것을 목적으로 한다.
본 발명은 신종 인플루엔자 바이러스의 NA 단백질에 특이적으로 결합하는 결합 분자에 있어서, 상기 결합 분자가 결합하는 에피토프는 NA 단백질의 아미노산 서열 중 P272를 포함하는 결합 분자에 관한 것이다. 본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기 NA 단백질은 서열번호 1이다.
본 발명의 일 실시예에 있어서, 결합 분자가 결합하는 에피토프는 NA 단백질의 아미노산 서열 중 P272를 포함하는 신종 인플루엔자 바이러스의 NA 단백질에 특이적으로 결합하는 결합 분자; 및 신종 인플루엔자 바이러스 치료제를 포함하는 항체-약물 접합체를 제공하고, 본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기 NA 단백질은 서열번호 1이다.
본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기의 결합 분자를 코딩하는 유전자를 포함하는 벡터를 제공한다.
본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기의 벡터를 포함하는 세포주를 제공하고, 본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기 세포주는 F2N, HEK293, CHOK1, DG44, DXB11, CHO-S, BHK, Sp2/0, 또는 NS이다.
본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기의 벡터를 세포주에 형질 감염시켜 결합 분자를 생산하는 방법을 제공한다.
본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기의 결합분자를 포함하는 신종 인플루엔자 바이러스 예방 또는 치료용 조성물을 제공하고, 본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기 예방 또는 치료용 조성물은 0.001~100 mg/kg을 투여하고, 본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기 예방 또는 치료용 조성물은 쥐, 개, 돼지, 소, 말, 토끼, 라마, 페렛용이고, 본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기 예방 또는 치료용 조성물은 경구형 제형, 외용제, 사전 충전식 주사(pre-filled syringe)용액제, 좌제, 멸균 주사용액 또는 동결건조(lyophilized)된 형태이다.
본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기의 결합분자를 목적하는 시료와 반응시키는 과정을 포함하는 신종 인플루엔자 바이러스의 존재 여부에 관한 정보제공 방법을 제공한다.
본 발명의 일 실시예에 있어서, 상기의 결합분자를 포함하는 신종 인플루엔자 바이러스의 진단 키트.
항체의 역가는, 인플루엔자바이러스의 면역 및 감염에 의해 생성된 인플루엔자바이러스의 HA 단백질의 헤드 부분인 HA1에 대한 항체들이 인플루엔자바이러스와 적혈구 사이에 헤마글루티네이션 (hemagglutination)을 저해하는 작용을 하는데, 이러한 항체의 헤마글루티네이션 저해 효과를 이용하여 측정한다.
회피 변이는, 헤마글루티네이션 저해 능력을 갖는 단일 클론 항체를 제작 시 사용된 인플루엔자 바이러스를 단일 클론 항체와 공배양하면, 단일 클론 항체의 저해를 피해 생존하는 변이체 인플루엔자바이러스가 생기는데, 이러한 바이러스는 주로 단일 클론 항체가 작용하는 인플루엔자바이러스 표면항원에 변이를 갖게 되어 단일 클론 항체의 작용을 회피한다고 하여 회피 변이라 한다. 이렇게 밝혀진 회피 돌연변이는 단일 클론 항체가 작용하는 에피토프에 발생하게 되므로 에피토프의 위치 결정에 이용될 수 있다.
본 발명에서 사용하는 형질 전황 방법은 당업계에 공지된 방법, 예를 들어 이에 한정되지는 않으나, CaCl2 완충액을 사용한 컴피턴트 세포를 만든 후 열충격(42℃) 방법에 의해 발현벡터를 숙주세포 내로 넣는 방법, 전기 충격에 의한 형질전환 방법, 일시적 형질감염(transient transfection), 미세주사, 세포융합, 칼슘 포스페이트 침전법, 전기침공법(electroporation) 등에 의해 숙주 세포 내로 도입할 수 있다.
본 발명에서 사용하는 신종 인플루엔자 치료제는, 이에 제한되는 것은 아니나, 타미플루 또는 리렌자일 수 있다.
본 발명의 항체는 신종 인플루엔자 바이러스의 NA 단백질에 대하여 특이적으로 결합하므로, 상기 신종 인플루엔자 바이러스의 치료 및 감염 여부를 진단하는 방법으로 유용하다.
도 1은 본 발명의 일 실시예에 따른 결합분자 mAb319의 각종 바이러스에 대한 결합 여부를 면역형광법을 통하여 확인한 결과이다.
이하 본 발명의 단어를 다음과 같이 정의한다.
본 발명에서 사용되는 "뉴라미니다아제 (neuraminidase, 이하 "NA"라 칭함)"은 인플루엔자 바이러스의 외피 (envelope) 단백질로, 뉴라민산을 가수분해하여 시알산을 분리하는 효소를 나타낸다. NA는 인플루엔자 바이러스가 숙주 세포로부터 바이러스가 유출할 때 작용하는 것으로 알려져 있다.
본 발명에서 사용되는 “결합 분자”는 키메라, 인간화 또는 인간 단일클론 항체와 같은 단일클론 항체를 포함하는 온전한(intact) 이뮤노글로블린(immunoglobulin), 또는 항원에 결합하는 이뮤노글로믈린, 예를 들면 인플루엔자 A 바이러스의 단량체 HA 또는 삼량체 HA와의 결합을 위해 온전한(intact) 이뮤노글로블린과 경쟁하는 이뮤노글로블린 단편을 포함하는 가변성 도메인 또는 기질과 결합 가능한 효소, 수용체, 단백질을 뜻한다. 구조와는 상관없이 항원-결합 단편은 온전한(intact) 이뮤노글로블린에 의해 인식된 동일한 항원과 결합된다. 항원-결합 단편은 결합 분자의 아미노산 서열의 2개 이상의 연속기, 20개 이상의 연속 아미노산 잔기, 25개 이상의 연속 아미노산 잔기, 30개 이상의 연속 아미노산 잔기, 35개 이상의 연속 아미노산 잔기, 40개 이상의 연속 아미노산 잔기, 50개 이상의 연속 아미노산 잔기, 60개 이상의 연속 아미노산 잔기, 70개 이상의 연속 아미노산 잔기, 80개 이상의 연속 아미노산 잔기, 90개 이상의 연속 아미노산 잔기, 100개 이상의 연속 아미노산 잔기, 125개 이상의 연속 아미노산 잔기, 150개 이상의 연속 아미노산 잔기, 175개 이상 연속 아미노산 잔기, 200개 이상의 연속 아미노산 잔기, 또는 250개 이상의 연속 아미노산 잔기의 아미노산 서열을 포함하는 펩티드 또는 폴리펩티드를 포함할 수 있다. “항원-결합 단편”은 특히 Fab, F(ab'), F(ab')2, Fv, dAb, Fd, 상보성 결정 영역(CDR) 단편, 단일-쇄 항체(scFv), 2가(bivalent) 단일-쇄 항체, 단일-쇄 파지 항체, 디아바디(diabody), 트리아바디, 테트라바디, 폴리펩티드로의 특정 항원에 결합하기에 충분한 이뮤노글로브린의 하나 이상의 단편을 함유하는 폴리펩티드 등을 포함한다. 상기 단편은 합성으로 또는 완전한 이뮤노글로블린의 효소적 또는 화학적 분해에 의해 생성되거나, 재조합 DNA 기술에 의해 유전공학적으로 생성될 수 있다. 생성 방법은 당업계에 잘 알려져 있다.
본 발명에서 사용되는 “약제학적으로 허용가능한 부형제”라는 용어는 용인가능한 또는 편리한 투약 형태를 제조하기 위한 약물, 제제 또는 결합 분자와 같은 활성 분자로 조합되는 불활성 물질을 의미한다. 약제학적으로 허용가능한 부형제는 비독성이거나, 적어도 독성이 사용된 용량 및 농도에서 수용자에게 이의 의도된 용도를 위해 허용될 수 있는 부형제이고, 약물, 제제 또는 결합 분제를 포함하는 제형화의 다른 성분과 양립할 수 있다.
본 발명에서 사용되는 “치료학적으로 유효한 양”이라는 용어는 인플루엔자 A 바이러스의 노출 전 또는 노출 후에 예방 또는 치료에 유효한 본 발명의 결합 분자의 양을 나타낸다.
본 발명에 따른 물질을 포함하는 조성물은, 각각 통상의 방법에 따라 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 현탁액, 에멀젼, 시럽, 에어로졸 등의 경구형 제형, 외용제, 좌제 멸균 주사용액, 사전 충전식 주사(pre-filled syringe)용액제의 형태 또는 동결건조(lyophilized)된 형태로 제형화할 수 있다. 상세하게는, 제제화할 경우에는 보통 사용하는 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제를 사용하여 조제될 수 있다. 경구투여를 위한 고형제제에는 정제, 환제, 산제, 과립제, 캡슐제 등이 포함되며, 이러한 고형제제는 상기 추출물에 적어도 하나 이상의 부형제 예를 들면, 전분, 칼슘카보네이트(calcium carbonate), 수크로스(sucrose), 락토오스(lactose), 젤라틴 등을 섞어 조제될 수 있다. 또한, 단순한 부형제 이외에 마그네슘 스테아레이트, 탈크 같은 윤활제들도 사용될 수 있다. 경구를 위한 액상 제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제 등이 해당되는 데, 흔히 사용되는 단순 희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제에는 멸균된 수용액, 비수성용제, 현탁제, 유제, 동결건조 제제 및 좌제가 포함된다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜(propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween)61, 카카오지, 라우린지, 글리세로젤라틴 등이 사용될 수 있다.
본 발명의 화합물, 특히 본 발명의 결합 분자들은 신종 인플루엔자 바이러스를 검출하는데 있어서 진단 시약으로서 특히 유용하다.
진단 조성물에 사용되는 본 발명의 상기 화합물들은 검출가능하게 표식되는 것이 바람직하다. 생분자들을 표식시키는데 사용가능한 다양한 방법들이 당업자에게 잘 알려져 있고, 본 발명의 범주내에서 고려된다. 상기 방법들은 Tijssen, 'Practice and theory of enzyme immuno assays', Burden, RH and von Knippenburg (Eds), Volume 15 (1985), 'Basic methods in molecular biology'; Davis LG, Dibmer MD; Battey Elsevier (1990), Mayer et al., (Eds) 'Immunochemical methods in cell and molecular biology' Academic Press, London (1987), or in the series 'Methods in Enzymology', Academic Press, Inc에 기술되어 있다.
당업자에게 공지되어 있는 표식 방법과 많은 다른 표식들이 있다. 본 발명에서 사용될 수 있는 표식 종류의 예로는 효소, 방사성 동위원소, 콜로이드 금속, 형광 화합물, 화학발광 화합물 및 생발광 화합물이 있다.
통상적으로 사용되는 표식들은 형광물질(가령, 플루레신, 로다민, 텍사스 레드 등), 효소(가령, 고추냉이 퍼옥시다아제, β-갈락토시다아제, 알칼리 포스파타 아제), 방사성 동위원소(가령, 32 P 또는 125I), 바이오틴, 디곡시게닌, 콜로이드 금속, 화학발광 또는 생발광 화합물(가령, 디옥세탄, 루미놀 또는 아크리디늄)을 포함한다. 효소 또는 바이오티닐기의 공유 결합법, 요오드화법, 인산화법, 바이오틴화법 등과 같은 표식 방법들이 당 분야에 잘 알려져 있다.
검출 방법들로는 오토라디오그래피, 형광 현미경, 직접 및 간접 효소반응 등이 있으며, 이에 제한되지는 않는다. 통상적으로 사용되는 검출 분석법으로는 방사성 동위원소 또는 비-방사성 동위원소 방법이 있다. 이들은 그중에서도 웨스턴블롯팅, 오버레이-분석법, RIA(Radioimmuno Assay) 및 IRMA(Immune Radioimmunometric Assay), EIA(Enzyme Immuno Assay), ELISA(Enzyme Linked Immuno Sorbent Assay), FIA(Fluorescent Immuno Assay) 및 CLIA(Chemioluminescent Immune Assay)이 있다.
본 발명에 따른 항체는 약제가 결합된 항체-약물 접합체의 형태로 사용될 수 있다. 약물을 국소 전달하기위해 항체-약물 접합체 (ADC), 즉 면역접합체를 사용하게 되면 상기 약물 모이어티를 감염된 세포에 표적화 전달할 수 있는데, 상기 약물 작용제를 접합시키지 않은 채로 투여하게 되면, 정상 세포에 대해서도 허용될 수 없는 수준의 독성이 야기될 수 있기 때문이다. 약물-연결성 및 약물-방출성 뿐만 아니라 폴리클로날 및 모노클로날 항체 (mAb)의 선택성을 높임으로써 ADC의 최대 효능과 최소 독성을 개선할 수 있다.
약물 모이어티를 항체에 부착시키는, 즉 공유 결합을 통하여 연결시키는 통상적인 수단으로는, 일반적으로 약물 모이어티가 항체 상의 수 많은 부위에 부착되는 불균질한 분자 혼합물이 유발된다. 예를 들어, 세포독성 약물을 전형적으로, 종종 항체의 수 많은 리신 잔기를 통하여 항체와 접합시켜 불균질한 항체-약물 접합체 혼합물을 생성킬 수 있다. 반응 조건에 따라서, 이러한 불균질한 혼합물은 전형적으로, 약물 모이어티에 부착된 항체 분포도가 0 내지 약 8 이상이다. 또한, 특별한 정수 비의 약물 모이어티 대 항체를 수반한 접합체의 각 아군은, 약물 모이어티가 항체 상의 각종 부위에 부착되는 잠재적으로 불균질한 혼합물이다. 항체는 크고, 복잡하며 구조적으로 다양한 생체 분자이고, 종종 많은 반응성 관능기를 갖고 있다. 링커 시약 및 약물-링커 중간체와의 반응성은 pH, 농도, 염 농도 및 조용매와 같은 요인들에 의해 좌우된다.
이하 본 발명을 상세히 설명한다. 그러나 하기 실시예들은 본 발명의 내용을 예시하는 것일 뿐 발명의 범위가 실시예에 의해 한정되는 것은 아니다. 본 발명에서 인용된 문헌은 본 발명의 명세서에 참조로서 통합된다.
본원에 기재된 다양한 구체예가 도면을 참조로 기재된다. 하기 설명에서, 본 발명의 완전한 이해를 위해서, 다양한 특이적 상세사항, 예컨대, 특이적 형태, 조성물, 및 공정 등이 기재되어 있다. 그러나, 특정의 구체예는 이들 특이적 상세 사항 중 하나 이상 없이, 또는 다른 공지된 방법 및 형태와 함께 실행될 수 있다. 다른 예에서, 공지된 공정 및 제조 기술은, 본 발명을 불필요하게 모호하게 하지 않게 하기 위해서, 특정의 상세사항으로 기재되지 않는다.
실시예
실시예 1. 바이러스 농축 및 정제
불활화된 신종 인플루엔자 바이러스 배양액 (A/Korea/01/2009)을 제공받았다. 국내에서 분리된 신종 인플루엔자 바이러스(A/Korea/01/2009, A(H1N1)pdm09)로부터 항원을 농축 및 정제하기 위하여, S. Kodiballi 등 (1993)의 방법을 이용하였다.
구체적으로, 약 25 NA activity가 되도록 배양된 신종 인플루엔자 바이러스를 β-프로피오락톤 (propiolactone)으로 불활화시키고, 4,000 x g에서 30분간 1차 원심분리한 후, 상층액을 2차로 70,000 x g에서 3시간 동안 초원심분리 (L8-70M, Beckman, USA)하였다. 원심분리된 펠렛 (pellet)을 수크로오즈 (sucrose)에 재부유시키고 (수크로오즈 양의 1/25배), 수크로오즈 밀도 구배 초원심분리 (sucrose density gradient ultracentrifugation, 100,000 x g, 90분)를 수행한 다음, 혈구응집능을 보이는 분획을 분리하였다. 이렇게 농축된 바이러스 분획에 5% (w/v) n-옥틸-b-D-글루코피라노시드 (n-octyl-b-D-gluco pyranoside)를 첨가하고 22℃에서 2시간 처리하여 바이러스를 파괴 (disruption)시켰다. 그 후, 70,000 x g에서 90분간 원심분리하고, 얻어진 펠렛을 0.1M NaCl로 용해시킨 후, 다시 10,000 x g에서 30분간 원심분리하여, 신종 인플루엔자 바이러스를 분리하였다.
실시예 2. 단일클론 항체 제작
2.1 면역원 준비
면역원을 완전 프로인트 항원 보강제(complete Freund's adjuvant)(sigma사)와 혼합하여 충분히 유화시켜 마우스에 1주 간격으로 3회를, 200 ㎍씩 각각 접종하고, 꼬리 정맥 주사를 3회 실시하였다.
2.2 혈청 채취, 역가 측정 및 세포 융합
　면역된 마우스 (Balb/c)의 꼬리에서 소량 채혈을 하여 혈청을 분리 한 후 효소면역측정법으로 역가를 측정 하였다. 역가 측정은 면역원을 각각 ELISA용 플레이트에 흡착시키고 항혈청을 10, 100, 1,000, 10,000배 등으로 10배 단계별 희석을 실시한 후 반응시켰다. 구입된 염소 항-마우스 IgG-과산화효소(Goat anti-mouse IgG-peroxidase)를 이용하여 2차 반응을 시키고 TMB로 발색 시켰다. 정상 마우스 혈청의 흡광도 값보다 약 3배 이상 되는 흡광도를 컷오프로 하여 항혈청 희석배수가 1,000배 이상에서 컷오프 이상의 역가를 나타내면 세포 융합을 실시하였다(표 1).
면역된 마우스의 비장 세포를 분리하여 골수종 세포 (SP2/0)와 접합시켜 만들어진 단클론 항체를 분비하는 잡종 세포주를 혈구 응집 반응 억제 시험법 (Hemagglutinin Inhibition Assay)를 통하여 신종 인플루엔자 특이적인 헤마글루티닌 항체를 선별하고 한계 희석 방법으로 여러 단세포군을 확립하였다. 세포주를 대량 배양하여 Balb/c 마우스의 복강에 세포를 접종하여 항체가 다량 함유된 복수를 얻고 단백질 G 겔을 이용하여 IgG 항체를 정제하였다.
항혈청 희석배수 10배 100배 1,000배 10,000배
정상 마우스 혈청
흡광도( OD 450 )　 		0.091 0.095 0.110 0.096
면역 마우스 혈청
흡광도( OD 450 )　 		1.820 1.026 0.450 0.201
2.3 마우스 단일 클론 신종 인플루엔자 바이러스 헤미글루티닌 항체 선별
U-plated의 각 웰(well) 당 PBS(phosphate buffered saline) 30 ㎕를 분주하고, 검체를 첫 웰에 30 ㎕를 섞은 후 다음 웰로 1/2씩 희석하고, 마지막 웰에서는 30 ㎕를 희석 후 덜어냈으며, 대조군에는 검체를 넣지 않았다. 여러 아형(suntype)에 바이러스를 22 HAU(Hemagglutination unit)가 되도록 희석하여 검체를 넣은 웰에 30 ㎕씩 넣었으며, 대조군에는 22 HA 바이러스를 첫 웰에 넣고 1/2씩 3번 희석하여 준비하였다.
그 후 상온에서 30분간 정치시키고, 각 웰에 1% 닭 적혈구 30 ㎕를 분주하였으며, 대조군에도 동일하게 적혈구를 분주하였다. 다시 상온에서 40분간 정치시키고, 대조군과 비교하여 적혈구의 침전이 일어나는 세포 주를 선별하였다.
2.4 마우스 단클론 항체 정제
상기 실시예 2.3에서 선별된 세포주를 대량 배양하여 Balb/c 마우스의 복강에 접종하여 항체가 다량 함유된 복수를 얻은 후, 상기 복수를 2500 rpm에서 10분 동안 원심하고 침전을 제거하였다. 상기 복수의 4배 부피의 결합 완충액(binding buffer)으로 복수를 희석하고 상온에서 1시간 정치하였다.
상기 희석액을 12000 rpm으로, 4℃에서, 5분 (High speed 원심기) 동안 원심하고 침전을 제거하고, 단백질 G 겔을1.5M 내지 3M NaSCN으로 OD280 값이 0.000될 때까지 세척하였다. 세척된 단백질 G 겔을 결합 완충액으로 평형이 되도록 하였다. 준비된 상기 검체를 로딩(loading) 하고, 세척액의 OD280값이 0.05 이하 될 때까지 결합 완충액으로 세척하였다. 용출 완충액(Elution buffer)으로 용출(2반복)하고, 10분 정치한 후, 각 분획의 OD280값을 측정하였다.
측정된 OD280 값이 0.9 이상인 튜브만 PBS (pH7.2) 0.1% NaN3로 PD-10 투석한 후, 투석된 항체를 0.2 ㎛ 포어 사이즈를 가지는 필터로 거르고, OD280를 측정하여 농도 값을 결정하였다.
실시예 3. 신종 인플루엔자 바이러스 [A( H1N1 ) pdm09 ] 특이 항체의 결합 특성
상기 실시예 2를 통하여 얻어진 단일클론 항체(mAbI319)가 A(H1N1)pdm09에 대하여 특이적으로 결합하는지 확인하기 위하여 혈구 응집 반응(Hemagglutination) 억제 활성을 HAI(Hemagglutinin Inhibition) 어세이를 실시하였다. 실험은 종래 알려진 바와 동일하게 수행하였고, 항-pdmH1N1a 및 H1N1b 은 각각 A/Korea/01/2009에 및 A(H1N1)pdm09에 대한 NIID(National Institute of Infectious Diseases in Japnan)로부터 얻어진 페렛 항혈청(ferret antiserum) 대조군 양 항혈청(control sheep antiserum)이다. 한편, 항-IFN-Bc 및 항-IFN-Bd 은 각각 B/brisbane/60/2008 및 B/Florida/4/2006에 대한 인플루엔자 B 레퍼런스 양 항혈청이다.
그 결과, 하기 표 2에 기재된 바와 같이, 다른 인플루엔자 아형에 대하여 mAbI319 항체는 H1N1pdm을 제외하고 H1N1, H3N2, B(Brisbane) 및 B(Florida)에 대하여서는 결합 활성이 전혀 나타나지 않아, 교차 반응성이 없음을 알 수 있었다.
바이러스 항체 또는 항-혈청
mAb I319 anti-pdm H1N1a anti-pdm H1N1b anti-H1N1 anti-H3N2 anti-IFN-Bc anti-IFN-Bd
H1N1pdm 128 1280 2560 - - - -
H1N1 - - - 640 - - -
H3N2 - - - - 2560 - -
B (Brisbane) - - - - 40 2560 80
B
(Florida)		 - - - - 80 40 2560
실시예 4. 항원의 에피토프(Epitope)의 특정: 회피 돌연변이
MDCK세포에 인플루엔자바이러스를 감염시킨 후, mAbI319 인플루엔자바이러스 핵단백질에 특이적인 항-NP 항체를 사용하여 염색한 결과, 도 1에 나타난 바와 같이, 단일 클론 항체 mAbI319의 처리배양에 의해 생성된 mI319 (18), mI319 (19) 및 mI319 (22) 인플루엔자 바이러스의 경우, mAbI319와는 결합하지 않았다. 파랑색은 DAPI에 의해 염색된 MDCK핵이고, 녹색은 mAbI319과 항-NP에 의해 염색된 것이다.
이를 통하여 볼 때, 단일 클론 항체 mAbI319가 결합하는 부위에 회피 돌연변이(escape mutant)가 발생하였음을 알 수 있었으며, mI319 (18), mI319 (19) 및 mI319(22) 의 표면항원(NA, HA, M2)의 염기서열을 분석하여 야생형(KR01 또는 KR02)과 비교하여 회피 돌연변이 부위를 찾아내었다. 회피 변이가 일어난 부위가 mAbI319에피토프임을 알 수 있다. 시퀀스 확인 결과는 하기 표 3과 같다.
Wild virus and
escape mutants a 		HA b NA b IFA c
147 212 240 272* 319 mAbI319 anti-NP
KR02(2-5) K E R P S O O
mI319(18) K E R L S X O
mI319(19) Q E R L S X O
mI319(22)* K E R L S X O
KR01 K A Q P R O O
회피 돌연변이들의 염기 서열을 분석하고 야생형 바이러스의 서열과 비교해본 결과, NA 272번 아미노산이 mABI319의 에피토프임을 알 수 있었다.
<110> Republic of Korea <120> Antibody of specific binding to NA protein of influenza viruses <130> IPDB46124 <160> 1 <170> KopatentIn 2.0 <210> 1 <211> 469 <212> PRT <213> A/Korea/01/2009 segment 6 <400> 1 Met Asn Pro Asn Gln Lys Ile Ile Thr Ile Gly Ser Val Cys Met Thr 1 5 10 15 Ile Gly Met Ala Asn Leu Ile Leu Gln Ile Gly Asn Ile Ile Ser Ile 20 25 30 Trp Ile Ser His Ser Ile Gln Leu Gly Asn Gln Asn Gln Ile Glu Thr 35 40 45 Cys Asn Gln Ser Val Ile Thr Tyr Glu Asn Asn Thr Trp Val Asn Gln 50 55 60 Thr Tyr Val Asn Ile Ser Asn Thr Asn Phe Ala Ala Gly Gln Ser Val 65 70 75 80 Val Ser Val Lys Leu Ala Gly Asn Ser Ser Leu Cys Pro Val Ser Gly 85 90 95 Trp Ala Ile Tyr Ser Lys Asp Asn Ser Ile Arg Ile Gly Ser Lys Gly 100 105 110 Asp Val Phe Val Ile Arg Glu Pro Phe Ile Ser Cys Ser Pro Leu Glu 115 120 125 Cys Arg Thr Phe Phe Leu Thr Gln Gly Ala Leu Leu Asn Asp Lys His 130 135 140 Ser Asn Gly Thr Ile Lys Asp Arg Ser Pro Tyr Arg Thr Leu Met Ser 145 150 155 160 Cys Pro Ile Gly Glu Val Pro Ser Pro Tyr Asn Ser Arg Phe Glu Ser 165 170 175 Val Ala Trp Ser Ala Ser Ala Cys His Asp Gly Ile Asn Trp Leu Thr 180 185 190 Ile Gly Ile Ser Gly Pro Asp Asn Gly Ala Val Ala Val Leu Lys Tyr 195 200 205 Asn Gly Ile Ile Thr Asp Thr Ile Lys Ser Trp Arg Asn Asn Ile Leu 210 215 220 Arg Thr Gln Glu Ser Glu Cys Ala Cys Val Asn Gly Ser Cys Phe Thr 225 230 235 240 Val Met Thr Asp Gly Pro Ser Asn Gly Gln Ala Ser Tyr Lys Ile Phe 245 250 255 Arg Ile Glu Lys Gly Lys Ile Val Lys Ser Val Glu Met Asn Ala Pro 260 265 270 Asn Tyr His Tyr Glu Glu Cys Ser Cys Tyr Pro Asp Ser Ser Glu Ile 275 280 285 Thr Cys Val Cys Arg Asp Asn Trp His Gly Ser Asn Arg Pro Trp Val 290 295 300 Ser Phe Asn Gln Asn Leu Glu Tyr Gln Ile Gly Tyr Ile Cys Ser Gly 305 310 315 320 Ile Phe Gly Asp Asn Pro Arg Pro Asn Asp Lys Thr Gly Ser Cys Gly 325 330 335 Pro Val Ser Ser Asn Gly Ala Asn Gly Val Lys Gly Phe Ser Phe Lys 340 345 350 Tyr Gly Asn Gly Val Trp Ile Gly Arg Thr Lys Ser Ile Ser Ser Arg 355 360 365 Asn Gly Phe Glu Met Ile Trp Asp Pro Asn Gly Trp Thr Gly Thr Asp 370 375 380 Asn Asn Phe Ser Ile Lys Gln Asp Ile Val Gly Ile Asn Glu Trp Ser 385 390 395 400 Gly Tyr Ser Gly Ser Phe Val Gln His Pro Glu Leu Thr Gly Leu Asp 405 410 415 Cys Ile Arg Pro Cys Phe Trp Val Glu Leu Ile Arg Gly Arg Pro Lys 420 425 430 Glu Asn Thr Ile Trp Thr Ser Gly Ser Ser Ile Ser Phe Cys Gly Val 435 440 445 Asn Ser Asp Thr Val Gly Trp Ser Trp Pro Asp Gly Ala Glu Leu Pro 450 455 460 Phe Thr Ile Asp Lys 465

Claims (15)

  1. A/Korea/01/2009 바이러스의 뉴라미니다아제(NA) 단백질에 특이적으로 결합하는 모노클로날 항체에 있어서, 상기 모노클로날 항체가 결합하는 에피토프는 서열번호 1로 구성되는 뉴라미니다아제 단백질의 아미노산 서열 중 P272를 포함하는 모노클로날 항체를 목적하는 시료와 반응시키고, 항체와 결합하지 않는 회피 돌연변이가 발생한 A/Korea/01/2009 바이러스의 뉴라미니다아제의 염기서열을 분석하여 야생형과 비교하는 단계를 포함하는, A/Korea/01/2009 바이러스의 존재 여부에 관한 정보제공 방법.
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