KR101597314B1

KR101597314B1 - 복합 잣 생균제 제조방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 복합 잣 생균제

Info

Publication number: KR101597314B1
Application number: KR1020140054053A
Authority: KR
Inventors: 송창수; 김정범; 진용일
Original assignee: 가평군청
Priority date: 2014-05-07
Filing date: 2014-05-07
Publication date: 2016-02-25
Also published as: KR20150127373A

Abstract

본 발명은 복합 잣 생균제 제조방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 복합 잣 생균제에 관한 것이다. 상기 복합 잣 생균제 제조방법은, 고초균(Bacillus)과 유산균(Lactobacillus)과 효모균(Saccharomyces)을 동일한 비율로 섞어 액상 배양하는 복합균 액상배양단계와; 상기 액상배양단계를 통해 얻은 복합균을 부형제와 혼합하는 부형제혼합단계와; 상기 복합균과 부형제의 혼합물에, 잣추출수를 가하여 수분함량을 35% 내지 45%의 범위내로 조절하는 잣추출수투입단계와; 상기 잣추출수투입단계를 마친 결과물을 인공발효시키는 발효단계와; 상기 발효단계를 마친 발효물을 건조시키는 건조단계와; 상기 건조단계를 통해 건조된 건조물을 압축하여 펠렛 형태로 성형하는 제품화단계를 포함하는 것을 특징으로 한다.
상기와 같이 이루어지는 본 발명은, 생균제에 포함된 미생물의 작용에 의해 육질의 전단력, 조직감, 지방산조성 등이 개선된 상태에서, 잣추출수가 갖는 생리활성물질의 작용이 고기의 지방산화를 억제하여 저장성을 개선한다는 시너지를 얻을 수 있고, 함께 포함되는 부형제의 영양소가 높아 사료로서의 영양학적 가치가 높으며, 분말이나 펠렛 상태로 제조되어 취급과 운반이 용이하고 급여가 간편하다.

Description

복합 잣 생균제 제조방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 복합 잣 생균제{Method for manufacturing Complex pine nut probiotic and Complex pine nut probiotic manufacturied by the method}

본 발명은 복합 잣 생균제 제조방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 복합 잣 생균제에 관한 것이다.

지금까지 축산업은 빠른 속도로 집약화, 기업화, 대규모화 되고 있으며, 생산성을 최대로 향상시키기 위한 여러 기술들이 적용되어져 왔다. 그런데, 축산시설이 현대화되어 가축을 밀집 사육하게 됨에 따라, 성장촉진과 질병예방을 위한 항생제가 남용되고 있기도 하다. 가축을 좁은 장소에서 가두어 사육하게 되면, 질병에 약해지고 성장이 부진하여 성장촉진과 질병예방을 위한 항생제를 사용할 수 밖에 없다.

항생제의 사용은 당장의 효과면으로는 만족할 수 있으나, 가축의 장내에 항생물질에 대한 저항성이 강한 미생물을 유도함은 물론, 축산물에서의 항생제 잔류 문제를 야기하고, 이를 섭취한 사람이 항생제에 대한 내성을 갖게 하는 등의 여러 가지 부작용을 낳는다.

이러한 이유로 최근, 항생제를 대체할 수 있는 안전한 물질의 개발에 대한 관심이 커지면서 이에 대한 연구가 다양하게 이루어지고 있다. 가령, 항생제의 대체물질로 생균제(probiotics)가 사용되기도 하는데, 생균제는 가축의 장내 미생물총을 정상적으로 유지시켜 생산성을 향상시킴과 동시에 발효과정에서 효소, 항균물질, 유기산 등의 생리활성 물질을 생성하는 작용을 한다.

한편, 본 출원의 발명자에 의해 특허 등록된, 천연 추출물이 포함된 가축사료 첨가제(국내등록특허공보 제10-2011-0087374호(2012.11.9.))에는, 항생제 대체물질로서의 잣나무 구과의 인편으로부터 추출된 추출물을 사료 첨가제로 사용하는 기술이 소개되어 있다. 상기 추출물은 잣나무 구과의 인편을 스팀으로 증류시켜 얻은 것으로서 사료에 혼합하거나 물에 섞어 공급된다. 상기 추출물은 가축의 콜레스테롤을 안정화시키고, DHA성분을 증가시키는 것으로 알려져 있다.

그런데, 추출물 자체의 기능은 긍정적이기는 하지만, 잣나무 추출물만 사용하는 것은 별로 효과가 좋지 않다. 그 이유는 추출물내에의 작용성분의 농도가 그다지 높지 않고 또한 가축이 추출물을 주요 먹이로 할 수 있는 것이 아니기 때문이다. 추출물의 경우 어느 정도의 효과를 얻기 위해서는 꽤 오랜 급여기간을 가져야 한다. 이는 예컨대, 송아지때부터 잣나무 추출물을 섭취하지 않은 한우의 경우 추출물의 효과를 별로 얻을 수 없다는 의미이기도 하다.

본 발명은 상기 문제점을 해소하고자 창출한 것으로서, 생균제에 포함된 미생물의 작용에 의해 육질의 전단력, 조직감, 지방산조성 등이 개선된 상태에서, 잣추출수가 갖는 생리활성물질의 작용이 고기의 지방산화를 억제하여 저장성을 개선한다는 시너지를 얻을 수 있고, 함께 포함되는 부형제의 영양소가 높아 사료로서의 영양학적 가치가 높으며, 분말이나 펠렛 상태로 제조되어 취급과 운반이 용이하고 급여가 간편한 복합 잣 생균제 제조방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 복합 잣 생균제를 제공함에 목적이 있다.

상기 목적을 달성하기 위한 본 발명의 복합 잣 생균제 제조방법은, 고초균(Bacillus)과 유산균(Lactobacillus)과 효모균(Saccharomyces)을 동일한 비율로 섞어 액상 배양하는 복합균 액상배양단계와; 상기 액상배양단계를 통해 얻은 복합균을 부형제와 혼합하는 부형제혼합단계와; 상기 복합균과 부형제의 혼합물에, 잣추출수를 가하여 수분함량을 35% 내지 45%의 범위내로 조절하는 잣추출수투입단계와; 상기 잣추출수투입단계를 마친 결과물을 발효기에서 인공발효시키는 발효단계와; 상기 발효단계를 마친 발효물을 수분함량 15% 이하로 건조시키되, 40 ℃ 이하의 열풍을 가하여 건조시키는 건조단계와; 상기 건조단계를 통해 건조된 건조물을 압축하되 40℃ 이하의 온도를 유지하며 압축하여 펠렛 형태로 성형하는 제품화단계를 포함하는 것을 특징으로 한다.

또한, 상기 액상배양단계시 사용되는 균에 누룩곰팡이균이 더 포함되며, 상기 고초균과 유산균과 효모균과 누룩곰팡이균은 동일한 비율로 혼합되는 것을 특징으로 한다.

또한, 상기 부형제는, 옥수수 또는 대두박 또는 소맥을 포함하고, 상기 부형제혼합단계시 복합균과의 혼합비는, 복합균 1리터 당 부형제 10kg인 것을 특징으로 한다.

아울러, 상기 발효단계는; 36℃의 온도에서 48시간 동안 진행되는 호기성발효과정인 것을 특징으로 한다.

또한, 상기 목적을 달성하기 위한 본 발명의 복합 잣 생균제는, 고초균(Bacillus)과 유산균(Lactobacillus)과 효모균(Saccharomyces)을 동일한 비율로 섞어 액상 배양하는 복합균 액상배양단계와; 상기 액상배양단계를 통해 얻은 복합균을 부형제와 혼합하는 부형제혼합단계와; 상기 복합균과 부형제의 혼합물에, 잣추출수를 가하여 수분함량을 35% 내지 45%의 범위내로 조절하는 잣추출수투입단계와; 상기 잣추출수투입단계를 마친 결과물을 발효기에서 인공발효시키는 발효단계와; 상기 발효단계를 마친 발효물을 수분함량 15% 이하로 건조시키되, 40 ℃ 이하의 열풍을 가하여 건조시키는 건조단계와; 상기 건조단계를 통해 건조된 건조물을 압축하되 40℃ 이하의 온도를 유지하며 압축하여 펠렛 형태로 성형하는 제품화단계를 통해 제작된 것을 특징으로 한다.

상기와 같이 이루어지는 본 발명의 복합 잣 생균제 제조방법 및 상기 제조방법에 의해 제조된 복합 잣 생균제는, 생균제에 포함된 미생물의 작용에 의해 육질의 전단력, 조직감, 지방산조성 등이 개선된 상태에서, 잣추출수가 갖는 생리활성물질의 작용이 고기의 지방산화를 억제하여 저장성을 개선한다는 시너지를 얻을 수 있고, 함께 포함되는 부형제의 영양소가 높아 사료로서의 영양학적 가치가 높으며, 분말이나 펠렛 상태로 제조되어 취급과 운반이 용이하고 급여가 간편하다.

도 1은 본 발명의 일 실시예에 따른 복합 잣 생균제의 제조방법을 설명하기 위한 순서도이다.

이하, 본 발명에 따른 하나의 실시예를 첨부된 도면을 참조하여 보다 상세히 설명하기로 한다.

도시한 바와같이, 본 실시예에 따른 복합 잣 생균제 제조방법은, 별도로 준비된 고초균(Bacillus)과, 유산균(Lactobacillus)과, 효모균(Saccharomyces)을 혼합하여 배양하는 복합균 액상배양단계(100)와, 배양된 복합균에 부형제를 믹싱하는 부형제혼합단계(102)와, 부형제 혼합물에 잣추출수를 가하여 수분함량을 맞추는 잣추출수투입단계(104)와, 수분이 조절된 결과물을 발효시키는 발효단계(106)와, 발효물을 건조하는 건조단계(108)와, 건조를 마친 건조물을 압축하여 성형하는 제품화단계(110)로 이루어진다.

먼저, 상기 복합균 액상배양단계(100)는, 고초균(Bacillus)과 유산균(Lactobacillus)과 효모균(Saccharomyces)을 동일한 비율로 혼합한 상태로 상온에서 교반하는 과정이다. 특히 경우에 따라 상기 3종의 균 이외에 누룩곰팡이균을 추가로 사용할 수도 있다. 3종의 균을 사용하던, 4종의 균을 사용하던, 사용되는 균의 혼합비는 동일하다. 즉, 3종의 균을 사용할 때 각 균의 혼합비는 1:1:1 이고, 4종의 균을 사용할 때 각 균의 혼합비는 1:1:1:1이다.

이어지는 부형제 혼합단계(102)는, 상기 복합균 액상배양단계를 통해 얻어진 복합균과 부형제를 혼합 반죽하는 과정이다.

상기 부형제 혼합단계(102)를 위하여, 복합균이 미리 수용되어 있는 혼합조 내에 부형제를 쏟아 넣을 수 도 있고, 반대로 부형제가 채워져 있는 혼합조에 복합균을 부워 넣을 수 도 있다. 상기 복합균과 부형제는 혼합조 내에서 혼합되며 반죽된다.

상기 부형제로서 옥수수나 대두박 또는 소맥을 선택적으로 사용할 수 있다. 상기 부형제는, 생균제 즉 복합균과 혼합된 상태로 후술하는 펠렛의 형태로 성형되어 가축이 생균제를 쉽게 섭취할 수 있도록 하는 것으로서, 특히 자체 영양소를 가지고 있어 영양학적 가치가 높다.

상기 옥수수나 대두박 또는 소맥은, 영양소의 균형을 고려한 선택 및 배합으로 기호성 증진과 더불어 보조사료로서의 이용성을 증대시키는 역할을 하는 것이다.

상기 복합균에 대한 부형제의 혼합비율은, 복합균 1리터당 부형제 10kg정도이면 좋다. 예컨대 부형제를 2톤(ton) 사용할 때 복합균을 200리터 혼합하는 것이다.

이어지는 잣추출수투입단계(104)는, 부형제와 생균제 혼합물에 잣추출수를 가하여 총 수분함량을 40% 정도로 맞추는 과정이다.

상기 잣추출수(104)는 잣나무 부산물인 잣송이(잣을 채취하고 남은 것)를 수증기 증류 추출하여 얻은 것으로서, 생리활성물질을 가져 가축에 급여시 콜레스테롤 수치를 개선하는 효능을 갖는 것으로 알려져 있다.

상기 잣추출수를 얻는 과정을 참고적으로 설명하면 다음과 같다.

상기 잣추출수를 채취하기 위해서는, 잣송이를 스팀챔버에 투입한 상태로 잣송이에 100℃ 이상의 스팀을 1시간 이상 가한다. 상기 스팀은 잣송이의 사이를 통과하며 잣송이를 가열하여 잣송이가 가진 성분(가령, 피톤치드나 오일 등)을 뽑아낸 후 응축되어 스팀챔버 바닥에 모인다. 상기 스팀챔버의 바닥에 모인 추출수 중 불필요한 부분을 걸러 잣추출수로 사용하는 것이다.

결국, 상기 잣추출수투입단계(104)를 통해 생균제와 부형제와 잣추출수가 적정 비율로 혼합된 40%의 수분함량을 갖는 혼합체가 얻어진다.

이어지는 발효단계(106)는, 상기 혼합체를 호기성 발효장치에 넣고 인공 발효처리하는 과정이다. 상기 발효단계는 36℃의 온도에서 48시간 동안 진행된다. 발효가 호기성 발효이니만큼 발효시 혼합체를 계속적으로 교반해야 함은 물론이다.

상기 발효단계(106)가 완료되었다면 건조단계(108)를 수행한다. 상기 건조단계(108)는, 발효단계(106)를 마친 발효물을, 저장성을 고려하여 수분함량 15% 이하로 건조시키되, 40 ℃ 이하의 열풍을 가하여 건조시키는 과정이다. 가장 바람직한 수분함량은 12%이다.

특히 상기 열풍의 온도가 40℃를 넘지 않아야 한다. 열풍의 온도가 상기 온도보다 높아지면 생균제를 구성하는 미생물이 모두 사멸하기 때문이다.

상기 건조단계(108)를 마친 후 이어지는 제품화단계(110)는 건조물을 저온 압축하여 펠릿(pellet) 형태로 성형하는 단계이다. 상기 건조단계(108)를 마친 후의 건조물의 성상은 분말상태인데, 이를 저온 압축하여 펠릿 형태로 만드는 것이다.

상기 제품화단계(110)시 저온펠렛장치를 이용하여 압축시의 온도가 40℃ 보다 높게 올라가지 않도록 하여야 한다. 건조단계에서와 마찬가지로 온도가 40℃ 보다 높아지면 미생물이 사멸하는 이유이다.

굳이 펠릿의 형상으로 성형할 필요가 없는 경우에는 분말상태 그대로 제품화할 수 도 있음은 당연하다.

한편, 아래 표 1은 상기 방법을 통해 제조된 복합 잣 생균제의 일반 성분을 나타내 보인 것이다. 참고로 일반 생균제의 성분도 함께 나타내었다. 일반 생균제라 함은 잣추출수 대신 물을 사용하여 제조한 생균제이다.

[표 1]

상기 [표 1]을 참조하면, 수분함량은 생균제의 저장성에 큰 영향을 미치는 요인으로 두 생균제 모두 12% 미만의 수분함량을 보여 양호한 상태이다. 또한 단백질 함량은 15% 이상으로서 사료로서의 영양학적 가치 또한 높다. 또한 조지방은 약 2.6%로 낮은 함량을 나타내어 급여량이 증가하더라도 불가식 지방이 증가하는 등의 문제점을 예방할 수 있을 것이다.

또한 아래 [표 2]는 본 실시예에 다른 복합 잣 생균제의, 생균제로서의 가치를 평가하기 위하여 미생물의 생균수를 측정한 결과이다.

[표 2]

[표 2]에 나타낸 바와같이, 복합 잣 생균제에서의 모든 미생물이 10⁶이상의 높은 생균수를 가짐으로서 생균제로서의 가치가 높은 것을 확인할 수 있다.

<비교시험예>

본 시험예는, 평균 23.5개월 령의 거세한우 20두(592.20±69.13kg)를 공시하여 처리당 5두, 5처리로 시행한 사양시험으로서, 경기도 가평군 설악면 소재 에코농장에서 2013년 3월부터 9월까지 6개월 간 수행하였다.

처리구는, 무처리인 대조구, 일반생균제를 농후 사료 급여량의 1% 첨가 급여한 처리구1, 복합 잣 생균제를 1% 첨가 급여한 처리구2, 복합 잣 생균제를 3% 첨가 급여한 처리구3으로 구분하였다.

또한, 사료는 오전과 오후 총 2회 급여하였고, 농후 사료는 일일 두당 8kg, 면실 및 볏짚은 각각 1kg 및 2kg으로 제한 급여하였다. 이외에 물과 미네럴블럭은 자유섭취하도록 하였고 기타 사양관리는 시험 농장의 일반관리에 준하여 실시하였다.

시험축은 사양시험 종료 후 2개월 이내에 모두 출하되었고, 축산물품질평가원에서 등급판정 후 도체성적을 수집하여 분석에 이용하였다. 또한 등급판정 후 제 1요추와 제 2요추 사이의 채끝을 약 1kg 채취하여 육질을 분석하였다.

생균제 및 사료의 일반성분은 AOAC(Association of Official Agricultural Chemists)의 방법으로 분석하였고, NDF 및 ADF는 Georing 및 Van Soest(1970) 방법을 이용하여 분석하였다. 또한 에너지는 Parr oxygen bomb calorimeter를 이용하여 측정하였다.

아울러, 생균제의 생균수 측정은 시료 5g에 45ml의 멸균된 0.1% pepton 용액을 첨가하여 10배 희석하여 10⁹배수까지 계단희석법을 사용하여 희석 후 단계별 Counting을 실시하였다. 고초균(Bacillus) 배지는 Plate count Agar(Difco)에 증류수 100ml을 첨가하였고, 유산균(Lactobacillus) 배지는 MRS Agar9Difco)에 0.02g Sodium axide와 증류수 100ml을 첨가하였으며, 효모균(Saccharomyces) 배지는 Potato dextros Agar(Difco)에 증류수 100ml와 주석산 1.8ml를 첨가하여 이용하였다.

또한, 혈액은 시험개시 및 종료 시에 시험축의 경정맥에서 개체별로 10ml를 채혈하였다. 일반혈액검사(Complete blood count, CBC) 분석을 위하여 EDTA Vacuum tube(BD Vacutainer, USA)에 혈액을 보관하고 자동혈액 분석기(Hema Vet 950, Hema Vet. Co., USA)를 이용하여 백혈구(White Blood Cell, WBC), 적혈구(Red Blood Cell, RBD), 헤모글로빈(Hemoglobin, Hb)을 측정하였다.

혈청화학검사(Serum chemistry)는 채취한 혈액을 Vacuum tube(BD Vacutainer, USA)에 보관하여 4℃에서 8시간 방치한 후 3,000 rpm으로 15분간 원심분리하여 혈청을 이용하였다. 총 단백질(Total protein), 알부민(Albumin), 글로블린(Globulin), 총 콜레스테롤(Total cholesterol), 중성지방(Triglyceride), HDL-콜레스테롤(HDL-Cholesterol), LDL-콜레스테롤(LDL-Cholesterol), 혈당(Glucose), 혈액요소질소(Blood urea nitrogen, BUN)는 생화학 분석장비(AU400, Olympus, Japan)를 이용하여 분석하였다.

면역단백질인 IgG는 Dimension Vista 500(Siemens, USA)을 이용하여 분석하였고, 스트레스 호르몬인 Cortisol은 Unicel Dxl 800 Immunoassay System (Beckman Coulter Inc., USA)을 사용하여 측정하였다.

한편, 육질분석으로서, 일반성분함량, pH, 보수력, 드립감량 및 가열감량, 총육색소함량, 지방산조성, 지방산화, 표면육색, 전단력 및 조직감의 분석을 수행하였다.

상기 일반성분함량분석을 위해, 수분은 105℃ 건조기에 의한 상압가열 건조법, 조단백질은 Kjeltec system(2200 Kjeltec Auto Distillation Unit, Foss Tecator, Sweden)에 의한 micro-Kjeldahl법, 조지방은 diethyl ether에 의한 Soxhlet 추출법, 조회분은 550℃ 회화로에 의한 건식 회화법을 이용하였다.

pH는, 시료 10g과 증류수 100mL를 homogenizer(PH91, SMT Co., Ltd., Japan)에 의해 10,000rpm에서 1분 동안 균질한 다음 pH meter(SevenEasy pH, Mettler-Toledo GmbH, Switzerland)로 측정하였다.

보수력(water-holding capacity, WHC)의 측정을 위해, 우선, plexi-glass plate(11.5×5.0×0.8cm) 위에 놓인 filter paper No. 2의 중앙에 시료 0.3g을 올려놓고 나머지 plexi-glass plate로 덮은 다음 동일한 힘으로 압착하여 5분 동안 방치하였다. 이후 digitizing area-line meter(Super PLANIX-α, Tamaya Technics Inc., Japan)를 이용하여 내부의 시료면적과 전체 면적을 측정한 다음 백분율(%)로 산출하였다. (보수력(%)=(내부의 시료면적/전체 면적)×100)

드립감량은 저장 3일 동안 발생한 육즙의 양을 시료 초기무게의 백분율(%)로 산출하였으며, 가열감량은 80℃ 항온수조에서 30분 동안 가열한 후 발생한 육즙의 양을 초기무게의 백분율(%)로 산출하였다.

총 육색소 함량의 측정을 위해, 시료 4g과 4℃ 증류수 20mL를 homogenizer(Ultra turrax T25 basic, Ika Werke GmbH & Co., Germany)로 13,500rpm에서 10초 동안 균질한 다음 0℃, 15,000rpm에서 30분 동안 원심분리(J2-21 Centrifuge, Beckman, USA)하였다. 상등액의 흡광도를 525nm에서 UV-vis spectrophotometer(UV-mini-1240, Shimadzu, Japan)로 측정한 후 다음의 수식에 의해 산출하였다.

Mb(mg/g meat)=(OD×Mb의 MW×dilution factor)/(molar extinction coefficient×1000)

Mb의 MW(Drabkin, 1978): 16,110

Molar extinction coefficient(Bowen, 1949) : 7.6

지방산 조성 분석을 위한 시료의 지질은, 우선, 시료 6g과 chloroform : methanol(v/v, 2/1) 용액 30mL를 homogenizer(Ultra Turrax T25 basic, Ika Werke GmbH & Co., Germany)로 13,500 rpm에서 1분 동안 균질하였다. 0.88% KCl 6 mL를 넣고 3,000 rpm에서 10분 동안 원심분리(GS-6R Centrifuge, Beckman Instruments Inc., USA)하였다. 하층액을 38℃에서 질소가스 농축기(MGS-2200, Eyela Tokyo Rikakikai Co., Ltd., Japan)로 완전히 농축시킨 다음 순수 지질을 AOAC(1990)의 방법에 의해 fatty acid methyl ester(FAME)로 전환시켰다. 시료의 FAME는 GC에 의해 지방산 standard들(Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA)의 retention time과 비교, 분석하였으며, 이때 GC의 분석 조건은 [표 3]과 같다.

[표 3]

지방산화는 TBARS(2-thiobarbituric acid reactive substances) 방법에 의해 실시하였다. 즉, 시료 0.5g과 항산화제[54%(w/w) propylene glycol-40%(w/w) Tween 20-3%(w/w) BHT-3%(w/w) BHA] 3방울, 1%(w/v) TBA-0.3%(w/v) NaOH 용액 3mL, 0.25%(w/v) TCA-3.6 mM HCl 용액 17mL를 혼합하고 98℃ water bath(OB-25E, Jeio Tech Co., Korea)에서 30분 동안 가열한 후 얼음물에 담가 10분 동안 냉각하였다. 반응액 5mL를 원심분리용 glass tube에 옮기고 chloroform 3mL를 넣은 다음 3,500rpm에서 30분 동안 원심분리(GS-6R Centrifuge, Beckman Instruments Inc., USA)하였으며, 상등액의 흡광도를 UV-vis spectrophotometer(UV-mini-1240, Shimadzu, Japan)로 532nm에서 측정하였다. 최종수치는 시료 1kg당 mg malonaldehyde(MA)로 산출하였으며, blank는 증류수 0.5mL를 이용하였다.

(TBARS(mg MA/kg meat)={(시료의 흡광도-blank의 흡광도)×46}/{0.5 g×5})

시료의 표면육색은 chroma meter(CR-400, Konica Minolta Sensing, Inc., Japan)를 이용하여 CIE L*(lightness), a*(redness), b*(yellowness), C*(chroma=[a*2+b*2]1/2) 및 Ho(hue-angle =tan-1[b*/a*])을 측정하였다. 이때 calibrate plate(2° observer)의 illuminant C는 Y=93.6, x=0.3134, y=0.3194이었다.

전단력(Shear-Force) 및 조직감(texture profile analysis, TPA)은 가열감량의 측정을 완료한 시료들을 각각 1×1×1cm로 성형한 다음 Ø75mm의 aluminium platen을 장착한 texture analyser(TA-XT2i version 6.06, Stable Micro Systems Co., Ltd, UK)로 전단력(Shear-Force), 경도(hardness), 부서짐성(fractuability), 점착성(adhesiveness), 탄력성(springiness), 응집성(cohesiveness), 뭉침성(gumminess), 씹힘성(chewiness) 및 복원력(resilience)을 측정하였다. 이때 분석조건은 load cell 25kg, pre-test testposttest speed 1.0 mm/sec 및 distance 50%로 설정하였으며, 최종 수치는 kg으로 산출하였다.

생균제의 급여가 한우의 혈액성상에 미치는 영향을 알아보기 위해 시험개시 및 종료 시에 시험축의 경정맥에서 혈액을 채취하여 혈액분석을 실시하였다.

아래의 [표 4]에 나타낸 바와같이, 시험종료 시의 혈액분석에서는 복합 잣 생균제 급여구인 처리구2 및 처리구3이 대조구에 비해 헤모글로빈이 유의적으로 낮게 나타났다(p<0.05)고, 글루코스는 처리구2가 다른 시험구들에 비해 유의적으로 낮게 나타났다(p<0.05)다. 이를 통해, 복합 잣 생균제 1% 및 3% 첨가 급여 시, 혈액내 헤모글로빈과 글루코스를 감소시키는 것을 알 수 있다.

[표 4]

^a,b : p<0.05.

육질분석

본 실시예에 따른 복합 잣 생균제가 소고기의 육질에 미치는 영향을 알아보기 위해 시험축의 도체평가 후 채끝 부위에서 시료를 채취하여 육질분석을 실시하였다.

소고기의 일반성분 및 물리화학적 특성은 [표 5]에 나타내었다. [표 5]에 나타난 바와같이, 수분은 모든 처리구가 대조구에 비해 유의적(p<0.05)으로 높게 나타났다. 또한 조단백질은 처리구3이 대조구 및 처리구1에 비해 유의적(p<0.05)으로 높았고, 조지방 함량은 대조구가 다른 처리구들 비해 유의적(p<0.05)으로 높게 나타났다. pH는 처리구1이 다른 처리구들에 비해 유의적(p<0.05)으로 가장 높게 나타났다. 또한 보수성은 처리구1 및 처리구3이 대조구에 비해 유의적(p<0.05)으로 낮게 나타났다. 지방산화도는 나타내는 TBARS는 처리구3이 유의적(p<0.05)으로 가장 낮게 나타나 다른 처리구에 비해 저장성이 좋은 것으로 판단되었다.

[표 5]

^a,b,c : p<0.05.

또한, [표 6]에 나타낸 바와같이, 소고기의 표면육색 분석 결과, 모든 처리구가 대조구에 비해 유의적(p<0.05)으로 명도(L*)가 낮게 나타났고, 휴앵글은 처리구1이 대조구에 비해 유의적으로 낮게 나타났다.

[표 6]

또한, 소고기의 전단력 및 조직감 분석 결과는 [표 7]에 나타낸 바와 같다. 전단력은 복합 잣 생균제 급여구인 처리구2 및 처리구3이 다른 처리구나 대조구에 비해 유의적(p<0.05)으로 낮게 나타났다. 경도 및 탄력성은 처리구1이 유의적(p<0.05)으로 낮게 나타났고, 뭉침성은 처리구1 및 처리구3이 대조구에 비해 유의적(p<0.05)으로 높게 나타났다. 씹힘성은 처리구3이 대조구에 비해 유의적(p<0.05)으로 높았고, 특히 처리구3이 가장 높게 나타났다(p<0.05).

[표 7]

^a,b,c : p<0.05.

처리에 따른 소고기의 지방산 조성은 [표 8]에 나타내었다. Palmitic acid는 처리구1 및 처리구3이 대조구에 비해 낮게 나타났고(p<0.05), stearic acid는 처리구1이 유의적(p<0.05)으로 가장 높게 나타났다.

또한, Gama-linolenic acid, EPA 및 DHA는 처리구1 및 처리구3이 대조구에 비해 유의적(p<0.05)으로 높았고, DTA는 처리구3이 가장 높게 나타났다(p<0.05). 처리구2는 다른 처리구들에 비해 포화지방산이 높고, 불포화지방산이 낮은 것으로 나타났다(p<0.05).

다중불포화지방산은 처리구3이 유의적(p<0.05)으로 가장 높게 나타났다. n6/n3 지방산 비율은 생균제를 급여한 처리구들이 대조구에 비해 낮은 경향을 보였고, 특히 처리구1은 대조구에 비해 유의적(p<0.05)으로 낮게 나타났다.

일반적으로 n3 지방산은 n6 지방산을 감소시킴으로서 항혈전 억제, cycloxygenase 및 lipoxy-genase 활성 억제, 혈장 내 지방 함량 감소, 트롬복산 및 루코트리엔 합성 감소, 항응집 증가, 프로스타클란딘 합성 증가 등을 일으킨다. 영국 보건부는 인간의 건강을 위해서는 식이 내 n6/n3 지방산 비율을 4~5로 감소하여야 한다고 보고한 바 있다.

따라서 본 실시예에 따른 복합 잣 생균제를 이용한 한우사양기술은 항생제가 없고 건강한 한우를 사육할 수 있도록 하여, 건강을 생각하는 소비자의 요구를 충족시켜 줄 수 있는 것이다.

[표 8]

^a,b,c : p<0.05.

저장기간에 따른 소고기의 pH 변화는 [표 9]에 나타낸 바와 같다. 저장 0일에서는 처리구1 및 처리구3이 대조구에 비해 유의적(p<0.05)으로 pH가 높게 나타났다. 저장 3일차에서는 모든 생균제 처리구들이 대조구에 비해 높게 났고, 저장 6일차에는 처리구1 및 처리구2가 대조구에 비해 높은 pH를 나타냈다(p<0.05).

[표 9]

^a,b,c : p<0.05.

또한, [표 10]에는 저장기간에 따른 소고기의 TBARS의 변화를 나타내었다. 저장일에 관계없이 복합 잣 생균제 3% 급여구인 처리구3은 대조구에 비하여 유의적(p<0.05)으로 낮은 TBARS 값을 나타냈고, 복합 잣 생균제 1% 급여구인 처리구2 역시 6일차에서 대조구에 비하여 유의적(p<0.05)으로 낮게 나타났다. 이러한 결과는 잣추출수내의 생리활성 물질의 작용이다.

[표 10]

^a,b,c : p<0.05.

이상의 결과를 종합해 보면, 본 실시예에 따른 복합 잣 생균제의 급여는 소고기의 육색, 전단력, 조직감, 지방산조성 및 저장성에 영향을 미치는 것으로 나타났다. 특히 소고기의 n6/n3 지방산의 비율을 낮추어 소비자의 건강에 이로운 한우육을 생산할 수 있고, 소고기의 지방산화를 억제하여 저장성을 높여준다.

이상, 본 발명을 구체적인 실시예를 통하여 상세하게 설명하였으나, 본 발명은 상기 실시예에 한정하지 않고, 본 발명의 기술적 사상의 범위내에서 통상의 지식을 가진 자에 의하여 여러 가지 변형이 가능하다.

100:복합균 액상배양단계 102:부형제 혼합단계
104:잣추출수 투입단계 106:발효단계
108:건조단계 110:제품화단계

Claims

고초균(Bacillus)과 유산균(Lactobacillus)과 효모균(Saccharomyces)을 동일한 비율로 섞어 액상 배양하는 복합균 액상배양단계와;
상기 액상배양단계를 통해 얻은 복합균을 부형제와 혼합하는 부형제혼합단계와;
상기 복합균과 부형제의 혼합물에, 잣추출수를 가하여 수분함량을 35% 내지 45%의 범위내로 조절하는 잣추출수투입단계와;
상기 잣추출수투입단계를 마친 결과물을 발효기에서 인공발효시키는 발효단계와;
상기 발효단계를 마친 발효물을 수분함량 15% 이하로 건조시키되, 40 ℃ 이하의 열풍을 가하여 건조시키는 건조단계와;
상기 건조단계를 통해 건조된 건조물을 압축하되 40℃ 이하의 온도를 유지하며 압축하여 펠렛 형태로 성형하는 제품화단계를 포함하며,
상기 부형제는, 옥수수 또는 대두박 또는 소맥을 포함하고,
상기 부형제혼합단계에서 상기 복합균과의 혼합비는, 복합균 1리터 당 상기 부형제 10kg이며,
상기 잣추출수는, 잣송이에 100℃ 이상의 스팀을 1시간 이상 가하여 상기 스팀이 피톤치드나 오일 등의 생리활성물질을 함유하도록 하면서 응축되어 형성된 것이며,
상기 발효단계는 36℃의 온도에서 48시간 동안 진행되는 호기성발효과정인 것을 특징으로 하는 복합 잣 생균제 제조방법.
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