KR101402300B1 - 근육 특이적 마이크로 ｒｎａ－２０６ 영역의 ｓｎｐ를 이용한 돼지의 육질 향상 여부 확인용 ｄｎａ 표지인자 - Google Patents

근육 특이적 마이크로 ｒｎａ－２０６ 영역의 ｓｎｐ를 이용한 돼지의 육질 향상 여부 확인용 ｄｎａ 표지인자 Download PDF

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Abstract

본 발명은 1차 마이크로 RNA-206 영역의 SNP를 포함하는 돼지의 육질 향상 여부 확인용 DNA 표지인자에 관한 것으로, 더욱 구체적으로 서열번호 1의 염기서열에서, 207번째 T 염기, 299번째 T 염기, 300번째 G 염기, 또는 420번째 G 염기를 포함하는 15 내지 700개의 연속서열로 구성되는 돼지의 육질 향상 여부 확인용 DNA 표지인자에 관한 것이다.
본 발명에 따르면, 돼지의 육질 특성에 관여하는 1차 마이크로 RNA 영역에서 새로운 SNP 부위를 발견하고 이러한 SNP를 이용한 표지인자를 제공하여, 육질이 향상된 개체를 용이하게 선별할 수 있다.

Description

근육 특이적 마이크로 ＲＮＡ－２０６ 영역의 ＳＮＰ를 이용한 돼지의 육질 향상 여부 확인용 ＤＮＡ 표지인자{DNA markers for detecting improvement of porcine meat quality using SNPs in region of muscle specific microRNA-206}
본 발명은 근육 특이적 마이크로 RNA-206 영역의 SNP(Single nucleotide polymorphism)를 이용한 돼지의 육질 향상 여부 확인용 DNA 표지인자에 관한 것으로, 더욱 구체적으로는 근섬유 타입 IIa의 증가 및 타입 IIb의 감소와 상관관계가 있는 근육 특이적 마이크로RNA-206 (서열번호 1의 염기서열에서 207-420번째 염기)영역의 4개 SNP를 발굴하여 이를 이용하여 육질이 향상된 개체를 조기에 진단하고 선별할 수 있는 돼지의 육질 향상 여부 확인용 DNA 표지인자 및 상기 표지인자를 이용하여 돼지 육질 향상 여부를 확인하는 방법에 관한 것이다.
오랜 기간 돼지육종은 사료효율과 성장률을 증가시키는 방향으로 이루어져 왔으며, 등지방을 비롯한 지방량을 줄이고 적육비율을 높인 살코기형 돈육생산 방향으로 진행되어왔다. 현재 적육생산 효율면에서 상당한 발전을 가져왔으나 이는 주로 근세포의 크기 성장에 의한 결과로 해석되고 있으며, 이러한 결과로 스트레스에 민감한 돼지가 발생하고 이상돈육 발생이 증가하는 등 육질의 저하를 가져오게 되었다. 따라서, 기존의 적육생산능력과 함께 육질을 향상시키기 위한 개량체계의 마련은 시급하다.
골격근의 성장과 발달을 이해하는 것은 육용가축의 적육생산량과 육질적 측면에서 매우 중요한 의미를 지니고 있다. 근육은 근섬유로 이루어져 있으며 근육생산량은 근섬유의 수와 크기에 의해 결정되는데, 출생 전 결정되는 근섬유의 수와 출생 후 근섬유 크기 성장을 통해 적육생산량이 증가하게 된다. 그러나 육질의 경우는, 근섬유 수와 크기보다는 근섬유조성에 의해 크게 영향을 받는다 (Ryu, Y. et al. 2005. Meat Science 71: 351-357).
돼지의 근육 내 근섬유는 ATPase 활성을 담당하는 myosin heavy chain의 종류에 따라서 크게 세 가지 형태(type I, type IIa, type IIb)로 구분이 되며 육질과 밀접한 관련이 있는 것으로 보고되었다. Type I의 경우 느린 산화작용의 성질을 띠어 사후 대사속도를 지연시켜 함량이 높을 경우 육질에 긍정적인 영향을 미치게 되는 반면, type IIb는 빠른 당분해의 성질을 가져 빠른 사후 대사속도로 인해 함량이 많을 경우 육색이 창백하고 조직이 흐물거리며 육즙이 많이 나오는 이상육(pale, soft, exudative; PSE)으로 판정될 가능성이 커진다. Type IIa의 경우는 type I과 type IIb의 중간 성질인 느린 당분해 성질을 갖는다. 이들 세 가지 근섬유 형태에 따라 근섬유조성이 결정되며, 돼지의 등심근은 대부분 백색근 계열로서 type IIb가 80% 정도를 차지하기 때문에, 육질 개선을 위해 근육 내 근섬유 조성 중 type I의 비율을 높여주기 위한 연구가 필요하다.
한편, RNA 간섭현상 (RNA interference, RNAi)은 진핵생물에서 진화적으로 보존되는 현상으로, 약 22-뉴클레오티드(nucleotide, nt)의 크기의 작은 RNA가 염기서열 상보적인 메신저 RNA (messenger RNA, mRNA)를 분해하거나, 단백질로의 번역을 억제함으로써 특정 유전자 발현을 조절하는 현상이다. 이러한 RNA 간섭현상은 생체의 발생 및 생리, 세포의 분화, 증식, 사멸, 유전체 안정성 (genome stability), 바이러스에 대한 저항성, 그리고 다양한 인간 질병 등 다양한 생물학적 과정에 관련하는 것으로 보고되고 있다 (Hannon G. J., 2002, Nature 418:244-251). RNA 간섭현상의 기전(mechanism)은 다양한 모델 시스템에서 유전학 및 생화학적 방법들을 이용한 연구들을 통해 일부 이해되고 있지만, 아직도 명확하게 설명을 하지 못하고 있으며, 현재 활발한 연구가 경쟁적으로 진행되고 있다.
RNA 간섭현상에서 다이서(Dicer)는 이중가닥 RNA (double-stranded RNA, dsRNA) 또는 전구체 마이크로 RNA (precursor microRNA, pre-miRNA)를 인식해 절단 (processing)함으로써 21-23 뉴클레오티드 길이를 갖는 두 부류의 작은 RNA들을 생산한다. 그 중 하나는 작은 간섭 RNA (small interfering RNA, siRNA)로 이들은 작은 RNA 간섭현상 유도 복합체 (siRNA-induced silencing complex, siRISC)가 염기서열 상보적인 mRNA들을 절단하는 데 있어 안내자(guide)역할을 한다. 다른 하나는 마이크로RNA (microRNA, miRNA)로, 마이크로 RNA 간섭현상 유도 복합체 (miRNA-induced silencing complex, miRISC)로 들어가, 동물의 경우 주로 표적 (target) mRNA들과의 부분적인 염기서열로의 접합으로 인한 mRNA들이 단백질로 번역되는 것을 저해 또는 절단을 유도하는 안내자 역할을 한다 (Zamore P. D. et al, 2005, Science 309:1519-1524, Bartel D.P., 2004, Cell 116:281-297). RNA 간섭현상의 기전은 완전하게 규명된 것이 아니기에 작은 RNA (small RNA)들의 발생 및 작용 기전을 명확하게 밝히기 위한 연구들이 진행되고 있는 시점이지만, 현재까지 알려진 발생 및 작용기전을 이용한 기술의 축적을 통한 경쟁력을 확보하는 것은 필수적이다.
RNA 간섭현상의 중요한 구성요소인 마이크로 RNA는 여러 종에 걸쳐 보존되어 있어 생체의 생리작용을 조절하는 중요한 인자로 알려져 있으며, 특히 암(cancer)을 비롯한 특이 질병에 대한 유발 혹은 억제인자로 기능을 한다 (Jun Lu1 el al. 2005. Nature 435:834-838). 생체 내 중요한 역할을 담당하고 있는 마이크로 RNA는 전사체의 분절로 유전체에 암호화되어 전사체의 어느 부위에든 존재한다.
특히, 마이크로 RNA의 특징적인 구조는 그들의 동정 및 표적 유전자의 예측을 용이하게 한다. 1차 마이크로 RNA (primary-microRNA, pri-miRNA)에서 발생되는 전구체 마이크로 RNA (precursor microRNA. pre-miRNA)는 독특한 2차 구조를 가지고 있으므로, 전사체의 접힘(folding) 구조를 파악함으로써 마이크로 RNA의 존재를 유추할 수 있다. 1차 마이크로 RNA는 특정 구조를 인식할 수 있는 효소(Drosha)에 의해 세포핵에서 전구체 마이크로 RNA를 생성하게 되고 세포질로 이동하게 된다. 세포질로 이동한 전구체 마이크로 RNA는 또 다른 효소(Dicer)에 의해 성숙된 마이크로 RNA를 생성하게 된다. 성숙된 마이크로 RNA는 표적 mRNA와 염기서열 상보성에 의존하여 표적 유전자의 발현을 조절한다. 마이크로 RNA와 표적 RNA간의 염기쌍 전형적으로 마이크로 RNA의 5'의 2-9번 염기서열인 종자 잔기(seed residue)와 표적 RNA의 염기서열과의 상호작용을 통해 형성된다 (Andrew Grimson1 et al, 2007, Molecular Cell 27:91-105). 이에 근거하여 조절되는 후보 표적유전자들 또한 예측이 가능하다. 본 발명에서는 근육에서 특이적으로 발현하며 근육의 분화 및 근육의 주요 구성성분 변화에 영향을 줄 수 있을 것으로 예상되는 마이크로 RNA를 선정하여 마이크로 RNA 전사체상의 염기서열을 비교분석하여 육질과의 연관성을 확인하였다.
최근 단일염기다형성 (Single nucleotide polymorphism, SNP)과 마이크로 RNA의 상호작용에 대한 연구가 활발하게 진행되고 있다. 마이크로 RNA는 미성숙의 일차 전사체 (primary transcript)로 최초 발현된 후, 두 개의 서로 다른 RNase III 효소인 Drosha와 Dicer에 의해 핵과 세포질에서 연속적으로 절단(processing) 되어 성숙됨으로써 최종적으로 생성된다. 따라서 마이크로 RNA 유전자의 전사에 필요한 cis-regulatory element (예: promoter)의 염기서열 변화, Drosha와 Dicer의 발생에 영향을 미칠 수 있는 염기서열 변화, 그리고 성숙한 마이크로 RNA에 해당하는 염기서열 변화는 그 마이크로 RNA에 의한 표적 유전자 발현억제 기작에 모두 영향을 미칠 수 있다. 이러한 염기서열 변화로 인한 마이크로 RNA의 생성 및 표적유전자의 발현억제 활성 차이는 이미 인간에서 보고된 바 있다 (Sun G. et al., 2009 RNA 15:1640-1651). 이에 근육 특이적 miRNA 유전자와 그들에 의해 발현이 조절되는 표적 유전자에서 생물학적 의미를 갖는 염기 다형성을 돼지군 별로 이미 분석된 육질 데이터와 비교 분석함으로써 상호 연관성을 분석하는 것이 절실하다.
마이크로 RNA-1, -133, -206은 실험적으로 근육에서 특이적으로 발현하는 마이크로 RNA 집단으로, 근육의 분화 및 발달 과정에 중요한 역할을 하는 유전자의 발현을 조절한다. 예를 들어, 마이크로 RNA-1은 근육 유전자 발현의 억제자인 histone deacetylase 4 (HDAC4)의 발현을 조절하여 근육분화를 촉진하며, 마이크로 RNA-133은 serum response factor (SRF)의 발현을 조절하며 근육분화세포의 증식을 촉진한다고 보고되었다 (Jian-Fu Chen et al., 2005, Nature Genetics 38:228-233). 본 발명에서는 돼지 근육에서 특이적으로 발현하는 마이크로 RNA-206 전구체 주변 영역 염기에 존재하는 SNP를 발굴하여 개체군 내에서 돼지의 근육의 특성을 파악하였고, 그에 따른 육질 향상 기능을 규명하여 관련 DNA 표지인자로서 효용성을 검증하였다.
본 발명의 배경이 되는 기술로서 대한민국 특허공보 제10-0784166호(2007.12.04)의 Myogenin 유전자 관련 돼지 근세포수 증가 확인용 DNA 표지인자 및 대한민국 공개특허공보 제10-2011-0067941호(2011.06.22)의 PPARGC1A 유전자 관련 돼지의 근육 내 근섬유 타입 I 증가 확인용 DNA 표지인자가 공개되어 있으나, 돼지 근육에서 특이적으로 발현하는 마이크로 RNA-206 전구체 주변 영역 염기에 존재하는 SNP와 관련된 DNA 표지인자에 대해서는 전혀 언급되어 있지 않다.
대한민국 특허공보 제10-0784166호(2007.12.04) 대한민국 공개특허공보 제10-2011-0067941호(2011.06.22)
따라서, 본 발명의 주된 목적은 돼지의 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역의 SNP를 이용하여 육질을 향상시키는 돼지 육질 향상 관련 DNA 표지인자 및 이를 이용한 SNP 분석용 키트를 제공하는 데 있다.
본 발명의 다른 목적은 상기 육질 향상 관련 DNA 표지인자를 이용한 돼지의 육질 향상 여부를 확인하는 방법을 제공하는 데 있다.
본 발명의 다른 목적 및 이점은 하기의 발명의 상세한 설명, 청구범위 및 도면에 의해 더욱 명확하게 된다.
본 발명의 한 양태에 따르면, 본 발명은 서열번호 1의 염기서열에서, 207번째 T 염기, 299번째 T 염기, 300번째 G 염기, 또는 420번째 G 염기를 포함하는 15 내지 700개의 연속서열로 구성되는 돼지의 육질 향상 여부 확인용 DNA 표지인자를 제공한다.
본 발명자들은 서열번호 1로 표시된 돼지 1차 마이크로 RNA-206 중에서 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서 돼지의 육질 특성과 관련된 단염기다형성(single nucleotide polymorphism, SNP)을 찾아내고, 이러한 SNP에 따른 유전자형과 돼지 육질 특성 및 유전자형과의 연관성을 분석하였다. 상기 DNA 표지인자는 가축의 육질 관련 후보유전자로 알려져 있는 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역 서열 중 일부로서, 서열번호 1 염기서열에서, 207번째(T→C), 299번째(T→C), 300번째(G→A), 420번째(G→A) 위치에서 각각 염기가 치환된 SNP 부위를 포함한다.
본 발명은 돼지의 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서 육질의 향상과 관련된 것으로, 서열번호 1의 염기서열에서, 207번째 (T→C 치환), 299번째 (T→C 치환), 300번째 (G→A 치환), 420번째 (G→A 치환) 부위를 발굴하고 이를 포함하는 DNA 단편의 “돼지의 육질 향상 여부를 확인하기 위한 DNA 표지인자”로서의 신규한 용도에 관한 것이다.
상기 마이크로 RNA-206은 돼지의 근육조직 특이적으로 발현하는 마이크로RNA 중 하나이고 근육 조직에서의 육질관련 유전자의 발현 조절 기능이 있을 것이라 예상되고 있다. 그러나 돼지의 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서 특정부위의 SNP를 이용하여 육질이 향상된 개체를 선별하는 방법은 전혀 알려져 있지 않으며, 본 발명자들이 이러한 육질 향상 관련 SNP를 처음으로 밝혔다.
본 발명에서, 용어 “마이크로 RNA”는 여러 종에 걸쳐 게놈 상에 암호화되어있는 작은 RNA로, 1차 마이크로 RNA (primary miRNA), 전구체 마이크로 RNA (precursor miRNA), 및 성숙한 마이크로 RNA (mature miRNA)로 발생되어 기능을 하게 된다. 따라서 상기 “1차 마이크로 RNA”란 마이크로 RNA-206 유전자로부터 전사(transcription)된 미성숙의 1차 마이크로 RNA를 의미하고, 상기 “마이크로 RNA-206 전구체”는 상기 1차 마이크로 RNA가 RNase III 효소인 Drosha에 의해 생성되는 전구체(precursor miRNA)를 의미한다.
또한 상기 용어 “마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역”은 돼지 게놈 DNA(genomic DNA) 상에서 상기 마이크로 RNA-206 전구체를 중심으로 upstream과 downstream 방향으로 염기서열을 포함하는 영역을 의미하는 것으로, RNase III 효소에 의해 제거될 부위이나, 본 발명자들은 상기 주위 영역에서 SNP를 발견하였다.
본 발명에서 서열번호 1의 207번째, 299번째, 300번째 염기에 위치한 SNP들은 마이크로 RNA-206 전구체에서 upstream으로 123번째, 31번째, 30번째 염기이며, 서열번호 1의 420번째 염기에 위치한 SNP들은 downstream으로 11번째 염기이다(도 2 참조).
본 발명에서, 상기 서열번호 1의 염기서열의 207번째 T 염기가 C 염기로 치환되었을 경우, 서열번호 1의 염기서열의 299번째 T 염기가 C 염기로, 서열번호 1의 염기서열의 300번째 G 염기가 A로, 서열번호 1의 염기서열의 420번째 G 염기가 A로 치환됨을 확인하였다.
이는 상기 4개의 SNP (서열번호 1의 염기서열의 207번째, 299번째, 300번째, 420번째 염기위치)가 완전연관(complete linkage) 되어있음을 의미하며, 마이크로 RNA-206 전구체 주위영역의 SNP를 이용한 돼지 육질향상 여부를 판정에 있어 하나의 SNP를 이용할 수 있음을 나타낸다 (도 3 참조).
본 발명에 있어서, 상기 DNA 단편은 서열번호 1로 표시된 돼지 1차 마이크로 RNA-206 중에서 돼지의 육질 특성과 관련한 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역의 새로운 유전적 변이 부위(SNP site)인 207번째 T 염기, 299번째 T 염기, 300번째 G 염기, 또는 420번째 G 염기를 포함하는 DNA 표지인자이다. 이 유전적 변이 부위는 T→C로 혹은 G→A로 염기가 치환되어 결과적으로 육질 향상에 영향을 미치게 된다. 상기 DNA 단편의 크기는 전체 유전자의 full length가 아닌 한 상기 SNP 부위 1 이상을 포함하는 어떤 단편 크기일 수 있으나, 바람직하게는 15 내지 수백 개의 연속서열로 구성되는 염기일 수 있으며, 더욱 바람직하게는 15 내지 700개의 연속서열로 구성되는 염기일 수 있다. 특히 15 내지 30 염기의 경우는 상기 SNP를 탐지하기 위한 프로브(probe)나 프라이머로 이용될 수 있다.
또한 본 발명에 있어서, 상기 DNA 표지인자는 돼지의 근육 내 근섬유 수 및 단면적 조성 중 근섬유 타입 IIa의 비율을 증가시키고, 근섬유 타입 IIb의 비율을 감소시키며, 육질 관련 형질인 유리육즙량(drip loss) 또는 육색 명도(lightness)를 감소시킴으로써 육질을 향상시키는 것과 관련된 것임을 특징으로 한다.
본 발명의 실시예 5에서와 같이, SNP에 따른 유전자형(GG, GA, AA)과 근섬유조성 및 육질특성의 연관성을 분석하여 GA, AA 유전자형이 향상된 육질을 나타냄을 확인하였다.
본 발명에서, “육질의 향상”이란 SNP로 인한 개체별 유전자형(AA, GA, GG)에 따라, 근섬유조성 중 근섬유 타입 IIa의 비율이 증가하고 육질에 부정적인 영향을 주는 것으로 알려져 있는 근섬유 타입 IIb의 비율이 감소하고, 돼지의 육질 관련 형질인 유리육즙량(drip loss) 또는 육색 명도(lightness)가 감소하는 것을 의미한다. 즉, AA 유전자형 개체가 GG 유전자형 개체와 비교하여 근섬유 타입 IIb의 비율과 유리육즙량(drip loss) 또는 육색 명도(lightness)가 감소한 상태를 의미한다.
본 발명에 서열번호 1의 염기서열에서, 207번째 (T→C 치환), 420번째 (G→A 치환)부위에 사용된 “PCR-RFLP” 방법은 유전적 특성이나 능력개량을 위한 다양한 DNA 분석기술 중, PCR(Polymerase Chain Reaction) 기술을 이용한 유전자 단편들의 다형성(Restriction Fragment length polymorphism)을 분석하는 기법으로, 특정 점 돌연변이(point mutation) 부위에 제한효소 인지부위가 존재할 경우, 각 개체의 유전자형 차이에 따라 제한효소에 의해 절단되어 생기는 절편의 길이가 다양하게 나타나는 DNA의 다형성을 비교하여 각 개체의 바람직한 유전자형을 보다 신속하고 정확하게 판정하는 방법이다.
본 발명에서, 돼지의 육질특성은 도축 45분 후 근육 pH (pH45min), 유리육즙량 (drip loss), 육색 명도 (lightness) 등에 따라 측정될 수 있으며, 이 중 특히 유리육즙량(drip loss)과 육색 명도(lightness)는 돼지의 육질특성을 나타내는데 중요한 판별 기준이 된다. 최근 돼지고기의 가격이 급등하고 있기 때문에 육질이 우수한 돼지를 선발하고 육종 및 생산함으로써 품질이 향상된 고급육의 개발이 중요하다. 따라서 본 발명의 DNA 표지인자를 이용하면 육질이 향상된 개체를 조기에 진단하고 선별하여 육질이 향상된 고급육을 손쉽게 생산할 수 있다.
본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 서열번호 2와 서열번호 3으로 표시된 올리고뉴클레오티드로 구성되는, 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서의 육질 향상 여부 관련 SNP를 탐색하기 위한 프라이머를 제공한다. 본 발명의 실시예에서는 대표적인 마이크로 RNA portal site (http://www.mirbase.org/)에 명시된 ssc-miR-206 (accession no. MIMAT0013869)의 stem-loop의 염기서열에 근거하여 주변 게놈 DNA 염기서열을 확인하여 SNP를 탐색할 수 있는 프라이머를 제작하였다. 본 발명의 프라이머는 종래 밝혀지지 않은 SNP를 포함하는 유전자 단편을 증폭하기 위한 것으로, 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역의 유전자 서열 중 특정 부위 (서열번호 1에서 207번째 염기 혹은 서열번호 1에서 420번째 염기)에서 SNP를 포함하는 유전자 단편을 제조할 수 있게 해준다.
본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 상기 프라이머와 PCR 반응혼합물 및 RFLP 분석용 제한효소인 PstI 혹은 SacII를 포함하는 돼지의 육질 향상 여부 관련 SNP 분석용 키트를 제공한다. 본 발명의 SNP 분석용 키트는 PCR-RFLP 기법을 이용하는 것으로, 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역 유전자의 발현 조절 즉, 육질 특성에 관여하는 유전자의 다양한 발현을 분석하기 위하여 특정한 제한효소인 PstI 혹은 SacII를 포함한다. 이러한 특정 제한효소는 본 발명자들이 육질 특성의 변화를 일으키는 SNP를 밝혀내고 이 SNP에 기초하여 선택된 것이다.
본 발명의 실시예 3에서는 구체적으로, 본 발명의 상기 SNP 부위를 인식할 수 있는 제한효소인 PstI 혹은 SacII의 처리에 따라서 다르게 나타나는 밴드 패턴을 파악하여 유전자형을 구분하였다. 예를 들어, 서열번호 2와 서열번호 3의 프라이머로 증폭하였을 경우 SNP1의 유전자형은 TT, TC, CC로 구분될 수 있으며, T allele은 528 bp, 210 bp의 밴드가, C allele은 738 bp의 밴드가 나타난다. 또한 SNP2의 유전자형은 GG, GA, AA로 구분될 수 있으며, G allele은 421 bp, 317 bp의 밴드가, A allele은 738 bp의 밴드가 나타난다 (도 4 참조).
또한 본 발명에 서열번호 1의 염기서열에서, 299번째 (T→C 치환), 300번째 (G→A 치환)부위에는 DNA 단편을 직접적인 서열분석법(sequencing)을 이용하여 SNP 부위의 염기서열을 결정하여 유전자형을 구분하였다.
본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 서열번호 5와 서열번호 6으로 표시된 올리고뉴클레오티드로 구성되는, 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서의 육질 향상 여부 관련 SNP를 탐색하기 위한 프라이머를 제공한다. 본 발명의 실시예에서는 대표적인 마이크로 RNA portal site (http://www.mirbase.org/)에 명시된 ssc-miR-206 (accession no. MIMAT0013869)의 stem-loop의 염기서열에 근거하여 주변 게놈 DNA 염기서열을 확인하여 SNP를 탐색할 수 있는 프라이머를 제작하였다. 본 발명의 프라이머는 종래 밝혀지지 않은 SNP를 포함하는 유전자 단편을 증폭하기 위한 것으로, 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역의 유전자 서열 중 특정 부위 (서열번호 1의 염기서열의 207번째, 299번째, 300번째, 420번째 염기)에서 SNP를 포함하는 유전자 단편을 제조할 수 있게 해준다 (도 5 참조).
상기 프라이머를 이용하여 제조된 유전자 단편의 염기서열의 결정은, 당업계에 알려진 다양한 방법에 의하여 이루어질 수 있다. 예를 들면, 디데옥시 법에 의하여 직접적인 핵산의 뉴클레오티드 서열의 결정을 통하여 이루어지거나, SNP 부위의 서열을 포함하는 프로브 또는 그에 상보적인 프로브를 상기 DNA와 혼성화시키고 그로부터 얻어지는 혼성화 정도를 측정함으로써 다형성 부위의 뉴클레오티드 서열을 결정하는 방법 등이 이용될 수 있다. 혼성화의 정도는 예를 들면, 검출가능한 표지를 표적 DNA에 표지하여, 혼성화된 표적 DNA 만을 특이적으로 검출함으로써 이루어질 수 있으나, 그외 전기적 신호 검출방법 등이 사용될 수 있다.
구체적으로, 대립형질 특이적 프로브 혼성화 방법(allele-specific probe hybridization), 대립형질 특이적 증폭 방법(allele-specific amplification), 서열분석법(sequencing), 5' 뉴클레아제 분해법(5' nuclease digestion), 분자 비콘 어세이법(molecular beacon assay), 올리고뉴클레오티드 결합 어세이법(oligonucleotide ligation assay), 크기 분석법(size analysis), 단일 가닥 배좌 다형성법(single-stranded conformation polymorphism) 등의 방법에 의해 수행될 수 있다.
본 발명의 실시예 4에서는, 본 발명의 상기 변이 부위 (SNP site)인 서열번호 1의 염기서열에서, 207번째 (T→C 치환), 299번째 (T→C 치환), 300번째 (G→A 치환), 420번째 (G→A 치환)부위를 포함하는 DNA단편을 제조하고 DNA 단편을 직접적인 서열분석법(sequencing)을 이용하여 SNP 부위의 염기서열을 결정하여 유전자형을 구분하였다. 예를 들어, 서열번호 5와 서열 번호 6의 프라이머로 증폭한 DNA 단편(414bp)을 이용하여 서열번호 1의 염기서열에서 207번째, 및 299번째 유전자형을 TT, TC, CC로, 300번째, 및 420번째 유전자형을 GG, GA, AA로 구분할 수 있었다(도 6a 및 도 6b 참조).
본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 서열번호 4로 표시되는 상기 DNA 표지인자에 상보적으로 결합하는 프로브(probe)를 포함하는 돼지의 육질 향상 여부 관련 SNP 분석용 키트를 제공한다. 본 발명에서 프로브(probe)란 혼성화 프로브를 의미하는 것으로, 핵산의 상보성 가닥에 서열 특이적으로 결합할 수 있는 올리고뉴클레오티드를 의미한다. 본 발명의 상기 프로브는 SNP를 검출하기 위한 방법 등에 사용될 수 있다. 상기 검출 방법에는 서던 블롯팅 등과 같은 핵산의 혼성화에 근거한 검출방법들이 포함되며, 마이크로어레이를 이용한 방법에서 마이크로어레이의 기판에 미리 결합된 형태로 제공될 수도 있다.
본 발명의 다른 양태에 따르면, 서열번호 1의 207번째, 299번째, 300번째, 및 420번째 자리로 이루어진 군에서 선택되는 하나 이상의 SNP를 이용하여 돼지의 육질 향상 여부를 확인하는 방법을 제공한다.
본 발명에 의한 상기 SNP는 유리육즙량(drip loss)과 육색 명도(lightness) 를 포함하여 돼지의 육질특성과 관련이 있으므로, 상기 SNP의 변이를 확인함으로써 돼지의 육질 향상 여부를 용이하게 확인할 수 있다. 상기 SNP의 변이는 공지된 다양한 방법에 의해 확인할 수 있으며, 예를 들어 PCR-RFLP 분석법 및 직접서열분석법 등을 이용할 수 있다.
본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 하기 단계들을 포함하는 돼지의 육질 향상 여부를 확인하는 방법을 제공한다:
a) 돼지로부터 게놈 DNA(genomic DNA)를 분리하는 단계;
b) 상기 a)단계의 DNA를 주형으로 하여 서열번호 1의 207번째, 299번째, 300번째, 또는 420번째 염기를 포함하는 특정 부위를 증폭시키는 단계;
c) 상기 b)단계에서 증폭된 DNA를 제한효소 PstI 혹은 SacII로 처리하는 단계; 및
d) 상기 c)단계에서 얻어진 유전자 단편들에서 다형성(RFLP; restriction fragment length polymorphism)을 비교하는 단계.
본 발명의 방법에서, 상기 b)단계에서 서열번호 2와 서열번호 3으로 표시된 프라이머를 이용하여 증폭시키는 것을 특징으로 한다. 상기 b)단계의 DNA 증폭은 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역의 207번째, 299번째, 300번째, 또는 420번째 염기가 포함된 특정부위를 증폭시킬 수 있는 어떤 프라이머일 수 있으나, 바람직하게는 서열번호 2와 서열번호 3으로 표시된 올리고뉴클레오티드로 구성된 프라이머를 이용하여 증폭시킬 수 있다.
본 발명의 방법에서, 상기 유전자 단편들의 다형성은 상기 SNP 부위를 인식할 수 있는 어떠한 제한효소로 처리하는 것이 가능하나, 바람직하게는 제한효소 PstI 혹은 SacII로 처리하는 것이 적당하다. 본 발명은 상기 SNP 부위 인식에서 표지유전자를 한 번의 PCR 반응과 효소처리로서 탐색하고 진단해 낼 수 있는 가장 효율적인 방법의 하나로 PCR-RFLP 방법을 이용한 탐색기법을 개발하였다. 구체적으로, 본 발명의 상기 SNP 부위를 인식할 수 있는 제한효소인 PstI 혹은 SacII의 처리에 따라 다르게 나타나는 밴드 패턴을 파악하여 유전자형을 구분하였다.
본 발명의 다른 양태에 따르면, 본 발명은 하기 단계들을 포함하는 돼지의 육질 향상 여부를 확인하는 방법을 제공한다:
하기 단계들을 포함하는, 돼지의 육질 향상 여부를 확인하는 방법:
a) 돼지로부터 게놈 DNA를 분리하는 단계;
b) 상기 a)단계의 DNA를 주형으로 하여 서열번호 1의 207번째, 299번째, 300번째, 또는 420번째 염기를 포함하는 특정 부위를 증폭시키는 단계;
c) 상기 b)단계에서 증폭된 DNA의 염기서열을 분석하는 단계; 및
d) 상기 c)단계의 염기서열 분석 결과로부터 서열번호 1의 염기서열의 207번째 T 염기가 C 염기로 치환, 서열번호 1의 염기서열의 299번째 T 염기가 C 염기로, 서열번호 1의 염기서열의 300번째 G 염기가 A로, 또는 서열번호 1의 염기서열의 420번째 G 염기가 A로 치환된 여부를 확인하는 단계.
본 발명의 방법에서, 상기 b)단계에서 서열번호 5와 서열번호 6으로 표시된 프라이머를 이용하여 증폭시키는 것을 특징으로 한다. 상기 b)단계의 DNA 증폭은 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역의 207번째, 299번째, 300번째, 또는 420번째 염기가 포함된 특정부위를 증폭시킬 수 있는 어떤 프라이머일 수 있으나, 바람직하게는 서열번호 5와 서열번호 6으로 표시된 올리고뉴클레오티드로 구성된 프라이머를 이용하여 증폭시킬 수 있다.
본 발명의 방법에서, 상기 SNP 부위를 포함하는 DNA 단편을 제조하고 DNA 단편을 직접적인 서열분석법(sequencing)을 이용하여 SNP 부위의 염기서열을 결정하여 유전자형을 구분할 수 있다. 상기 방법에 따르면, 서열번호 5와 서열번호 6의 프라이머로 증폭한 DNA 단편에 존재하는 SNP 부위의 염기를 확인함으로써 서열번호 1의 염기서열에서 207번째, 299번째 유전자형을 TT, TC, CC로, 300번째, 420번째 유전자형을 GG, GA, AA로 구분할 수 있다.
이상 설명한 바와 같이, 본 발명에 따르면 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역의 SNP들은 돼지의 근섬유조성 중 근섬유 타입 IIa의 비율을 증가시키고 IIb의 비율을 감소시키며, 육질 특성 중 유리육즙량(drip loss)과 육색 명도(lightness)를 감소시켜 육질 향상에 영향을 주는 것으로 판단할 수 있다. 따라서 본 발명의 유전적 변이(SNP)는 돼지의 육질 특성과 관련한 기능을 가지며 이러한 특성을 통해서 육질 개량과 관련한 DNA 마커로서 유용하게 사용될 수 있다. 본 발명은 육질이 향상된 개체를 조기에 진단하고 선별하여 육종 및 생산함으로써 품질이 향상된 고급육의 개발에 유용하게 이용될 수 있다.
도 1은 서열번호 1로 표시된 돼지 1차 마이크로 RNA-206 중에서 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역의 염기서열을 분석한 결과이다. 207번째 염기(T→C 치환), 299번째 염기(T→C치환), 300번째 염기(G→A치환), 420번째 염기 (G→A 치환)는 새로 발견한 단일염기변이부위(SNP)이다. 갈색으로 표시된 부분이 마이크로 RNA-206 전구체의 서열이다.
도 2는 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서 발견된 SNP의 위치를 나타내는 모식도이다.
도 3은 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서 발견된 SNP들이 완전연관되어 치환되는 것을 나타내는 표이다.
도 4는 본 발명에 따른 서열번호 2와 서열번호 3으로 표시된 프라이머를 이용하여 PCR-RFLP를 실시한 결과이다. 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서 발견된 서열번호 1의 염기서열에서 207번째 염기서열의 제한효소인 PstI 위치와 420번째 염기서열의 제한효소인 SacII 위치를 증폭시켜 줄 수 있게 제작되었다. 제한효소 PstI을 이용한 RFLP 방법에 의해 유전자형은 각각 TT, TC, CC 세 가지로 나타나며, T allele은 528 bp 및 210 bp, C allele는 738 bp의 밴드가 나타난다. 또한 SacII을 이용한 RFLP 방법에 의해 유전자형은 각각 GG, GA, AA 세 가지로 나타나며, G allele은 421 bp 및 317 bp, A allele는 738 bp의 밴드가 나타난다.
도 5는 본 발명에 따른 DNA 표지인자의 일례로서, 서열번호 5와 서열번호 6으로 표시된 프라이머를 이용한 직접염기서열분석에 사용된 DNA 단편을 나타낸다. 갈색으로 표시된 부분이 마이크로 RNA-206 전구체의 서열이다.
도 6a 및 도 6b는 본 발명에 따른 SNP에 대한 PCR 및 직접염기서열분석(direct sequencing)을 실시하여 염기에 따른 peak의 차이를 이용하여 유전자형을 분석하는 방법을 나타낸다.
이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하기로 한다. 이들 실시예는 단지 본 발명을 예시하기 위한 것이므로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지는 않는다.
실시예 1. 마이크로 RNA -206 전구체 주위 영역의 염기서열 분석 및 변이 탐색
돼지 마이크로 RNA-206에 대한 정보를 miRBase 홈페이지 (http://www.mirbase.org/)를 활용하여, 7번 염색체에 위치하여 서로 다른 유전자간 (intergenic)에 위치하는 전구체 마이크로 RNA-206와 주변의 게놈 DNA의 염기서열을 확인할 수 있었다 (표 1).
Figure 112011075513861-pat00001
품종 간 및 품종 내 염기서열 변이를 탐색하기 위해서 4개 품종(Yorkshire, Landrace, Berkshire, Duroc)의 실험군에 대한 염기서열 분석을 실시하였다. 확보된 염기서열을 바탕으로 특이 제작된 Foward primer (5'-GAT GGG ATG GAT ACG TGG TC-3', 20mer; 서열번호 2)와 Reverse primer (5'-GCT GTG TCT TGG GTC CAT TT-3', 20mer; 서열번호 3)를 이용하여 (표 2), PCR을 통해 (표 3 및 4) 돼지 전구체 마이크로 RNA-206 전구체(80 nt)를 중심으로 upstream으로 329 bp의 염기가 추가되고, 또한 downstream으로 329 bp의 염기를 포함한 738 bp의 앰플리콘(amplicon; 서열번호 1)에 대해 염기서열을 분석함으로써 돼지 마이크로 RNA-206을 비롯한 그의 전구체와 전구체 주위의 염기서열을 확인하였다. 염기서열 분석 결과를 품종 내 변이를 탐색하여 단일염기부위(SNP)를 확인하였고, 전구체 돼지 마이크로 RNA-206의 염기서열에서 upstream에서 122번째 T염기가 C염기로 (서열번호 1로 표시된 염기서열에서 207번째 염기), upstream에서 31번째 T염기가 C염기로 (서열번호 1로 표시된 염기서열에서 299번째 염기), upstream으로 30번째 G염기가 A염기로 (서열 번호 1로 표시된 염기서열에서 300번째 염기), downstream으로 11번째 G염기가 A염기로 (서열번호 1로 표시된 염기서열에서 420번째 염기) 치환된 것을 확인하였다 (도 2).
Figure 112011075513861-pat00002
Figure 112011075513861-pat00003
Figure 112011075513861-pat00004
실시예 2. 돼지의 게놈 DNA ( genomic DNA ) 추출
상기 유전자 다형성 분석을 위한 게놈 DNA의 분리는 Sambrook 등 (1989)의 방법에 준하여 실시하였다. 돼지의 경정맥에서 10 ml의 혈액을 채취한 후, 응고를 방지하기 위해서 ACD 용액 (citric acid 0.48 g, sodium citrate 1.32 g, glucose 1.47 g to H2O 100 ml) 2 ml을 첨가하여 4℃를 유지하여 실험실까지 운반하였다. 50 ml 원심분리용 튜브에 옮긴 후 1,300 g에서 15분간 원심분리하여 buffy coat을 모아 15 ml의 DNA extraction buffer (10 mM Tris-Cl, pH 8.0; 0.1 M EDTA, pH 8.0; 0.5% SDS; 20% μg/ml)를 넣고 잘 섞은 후 37℃ 항온수조에서 1시간 동안 배양하였다. 배양 후 Proteinase K (200 μg/ml, BRL)를 혼합하여 37℃ 항온수조에서 12시간 동안 반응시켰다. 여기에 동량의 0.5M Tris-Cl (pH 8.0)으로 준비된 페놀(Phenol)에 넣고 30분 동안 섞어 추출한 후 실온에서 15분간 5,000 g로 원심분리하여 층이 생기도록 하였다. 이 과정을 3번 반복한 후, 직경이 0.3 cm 되는 피펫(pippet)으로 상징액을 취하여 50 ml Tris-Cl (pH 8.0), 10 mM EDTA (pH 8.0) 4L에서 18시간 동안 4℃에서 투석하여 chromosomal DNA를 분리하였다. 분리된 DNA 순도는 spectrophotometer (Beckman, USA)를 이용하여 흡광도 A260과 A280의 비율로 측정하였으며, 0.8% 아가로즈 겔 전기영동을 시행하여 DNA의 분자량을 확인하였다.
실시예 3. PCR - RFLP 분석
전구체 돼지 마이크로 RNA-206 주위 영역에서 확인한 SNP의 효율적인 유전자형 분석을 위하여 PCR과 RFLP(restriction fragment length polymorphism) 기법을 기반으로 유전자형 진단기법을 이용하였다. 실시예 1에서 발견한 SNP에서, 서열번호 1로 표시된 염기서열에서 207번째 염기에 가용한 제한효소 PstI, 420번째 염기에는 SacII를 NEB cutter V2.0 program (http://tools.neb.com/ NEBcutter2/index.php)을 이용하여 탐색하였다. 탐색된 제한효소인 PstI 혹은 SacII의 처리에 따라 다른 크기로 나타나는 아가로즈 겔(agarose gel) 상에서의 밴드(band)의 형태를 파악하여 유전자형을 구분할 수 있었다.
PCR 반응 시 제한효소 PstI 혹은 SacII를 이용한 RFLP 기법을 적용하기 위하여 효율적으로 적용하기 위하여, 확보된 염기서열을 바탕으로 특이 제작된 Foward primer (5'-GAT GGG ATG GAT ACG TGG TC-3', 20mer; 서열번호 2)와 Reverse primer (5'-GCT GTG TCT TGG GTC CAT TT-3', 20mer; 서열번호 3)를 사용하였다 (표 2). 유전자형을 분석하기 위한 PCR을 실시하는 데 있어 프라이머는 각 2.0 μl (10 μM)씩 첨가하고, 그 외 반응 첨가물은 10X PCR reaction buffer (100 mM Tris-Cl; pH 8.3, 500 mM KCl, 15 mM Mg2Cl) 5.0 μl, dNTP (2 mM each) 5.0 μl, Taq DNA polymerase (5 unit/μl, Enzynomics) 0.5 μl, Template (genomic) DNA 2.0 μl (약 100 ng)와 ddH2O 33.5 μl를 섞어 최종적으로 50.0 μl를 반응시켰다. 반응조건은 94℃에서 10분간 initial denaturation을 실시한 후, 94℃에서 1분간 denaturation, 64.4℃에서 1분간 annealing, 72℃에서 1분간 extension을 한 cycle로 30 cycle을 반복한 후, 72℃에서 final extension을 실시한 후 PCR 반응을 종료하였다 (표 5 및 표 6).
Figure 112011075513861-pat00005
Figure 112011075513861-pat00006
이와 같이 확보된 PCR product (738 bp; 서열번호 1)를 앞서 선발한 PstI을 이용하여 서열번호 1의 염기서열에서 207 번째 염기에 대한 유전자형 분석을 위해 제한효소를 처리하였다. 제한효소 PstI 처리 첨가물은 PstI 효소 0.5 μl (2.5 unit/μl, Enzynomics), 10X reaction buffer (20 mM Tris-acetate, 10 mM magnesium acetate, 50 mM potassium acetate, 1 mM dithiothreitol (DTT)) 1.0 μl, ddH2O 3.5 μl, PCR product 5.0 μl를 섞어 최종적으로 10.0 μl를 반응시켰다 (표 7). 이 혼합물을 37℃에서 2시간 동안 반응시키고, 2% 아가로즈 겔에서 100V로 20분간 전기영동(electrophoresis)하여 나타나는 밴드의 양상을 확인하였다. 제한효소 PstI이 인식하여 절단(digestion)할 수 있는 대립유전자는 T allele, 절단할 수 없는 대립유전자는 C allele로 나타내었다. 또한 위와 같은 방법으로 서열번호 1 염기서열에서 420번째 염기에 대한 유전자형 분석을 위해 제한효소 SacII를 처리하였다. 제한효소 SacII가 인식하여 절단(digestion)할 수 있는 대립유전자는 G allele, 절단할 수 없는 대립유전자는 A allele로 나타내었다.
Figure 112011075513861-pat00007
도 4는 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에 위치한 PstI 혹은 SacII site에 대한 PCR-RFLP 판단을 나타낸다. DNA 사이즈 마커는 1kb plus DNA marker ((주)제네피아)를 이용하였다. SNP1에 대한 제한효소 PstI을 사용하였을 때 CC 유전자형의 경우 738 bp가 나타나고, TT 유전자형의 경우에는 738 bp가 PstI 제한효소에 의해 절단된 528 bp, 210 bp가 나타난다. 또한 CT 이형 접합체의 경우에는 738 bp, 528 bp, 210 bp가 모두 나타난다. 또한 SNP2에 대한 제한효소 SacII를 사용하였을 때 AA 유전자형의 경우 738 bp가 나타나고, GG 유전자형의 경우에는 738 bp가 SacII 제한효소에 의해 절단된 421 bp, 317 bp가 나타난다. 또한 CT 이형 접합체의 경우에는 738 bp, 421 bp, 317 bp가 모두 나타난다 (도 4).
실시예 4. PCR 및 직접염기서열분석을 통한 유전자형 분석
돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서 확인한 SNP, 서열번호 1의 염기서열에서, 299번째 T 염기 혹은 300번째 G 염기의 유전자형 분석을 위하여, RFLP 방법을 이용하고자 하였으나, 본 발명의 SNP를 인식할 수 있는 제한효소가 없었기 때문에, 본 발명에서는 새로이 발견한 SNP를 포함하는 영역에 대한 PCR 및 직접염기서열분석(direct sequencing)을 통해 개체별 유전자형 분석을 실시하였다. PCR 반응과 직접염기서열분석을 위해, Forward primer (5'-CTC TGG AGC CAC AAT CAG TG-3', 20mer; 서열번호 5)와 Reverse primer (5'-TGGGGACCCTCCTTAGAGTT-3', 20mer; 서열번호 6)로 구성된 프라이머 쌍을 제작하였다(표 8). 유전자형을 분석하기 위한 PCR을 실시하는데 있어 프라이머는 각 2.0 μl (10 μM)씩 첨가하고, 그 외 반응 첨가물은 10X PCR reaction buffer (100 mM Tris-Cl; pH 8.3, 500 mM KCl, 15 mM Mg2Cl) 5.0 μl, dNTP (2 mM each) 5.0 μl, Taq DNA polymerase (5 unit/μl, Enzynomics) 0.5 μl, Template (genomic) DNA 2.0 μl (약 100 ng)와 ddH2O 33.5 μl를 섞어 최종적으로 50.0 μl를 반응시켰다. 반응조건은 94℃에서 10분간 initial denaturation을 실시한 후, 94℃에서 1분간 denaturation, 62.7℃에서 1분간 annealing, 72℃에서 1분간 extension을 한 cycle로 30 cycle을 반복한 후, 72℃에서 final extension을 실시한 후 PCR 반응을 종료하였다 (표 9 및 표 10 참조).
Figure 112011075513861-pat00008
Figure 112011075513861-pat00009
Figure 112011075513861-pat00010
이와 같이 확보 확보된 PCR product (414 bp; 서열번호 4; 도 5 참조)를 직접염기서열분석을 통하여 서열번호 1의 염기서열에서, 299번째 혹은 300번째 위치의 염기 구성을 알 수 있었다.
도 6a는 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서 서열번호 1의 염기서열에서, 299번째 혹은 300번째 위치의 염기 구성을 나타낸다. 299번째 염기서열에서, TT 유전자형 (T homozygote)과 CC 유전자형 (C homozygote)의 경우 염기의 peak가 하나로 나타나고 있지만, CT 유전자형 (T/C heterozygote)의 경우 peak가 2개로 나타남을 확인할 수 있었다. 또한 300번째 염기서열도 동일하게 GG 유전자형 (GG homozygote)과 AA 유전자형 (A homozygote)의 경우 염기의 peak가 하나로 나타나고 있지만, GA 유전자형 (G/A heterozygote)의 경우 peak가 2개로 나타남을 확인할 수 있었다. 추가적으로 서열번호 1의 염기서열에서, 207번째, 420번째는 유전자형에 따른 peak를 확인할 수 있었다(도 6b).
실시예 5. 표지유전자형 별 근섬유조성 및 육질차이 확인
돼지 마이크로 RNA-206은 근육에서 특이적으로 발현되는 마이크로 RNA 집단으로 근육의 분화 및 발달과정에 중요하게 작용할 것으로 판단되므로 본 발명에서는 공시돈 453두의 근섬유특성과 육질형질을 분석하였으며, 유전자형과의 연관성분석을 실시를 통해 그 효과를 확인하였다.
1) 근섬유특성 분석
근섬유특성 분석을 위하여, 사후 45분이 지난 8번 흉추의 등심근의 근육샘플을 수집하였고, 0.5-×0.5-×1.0-cm의 조각으로 자르고, 액체 질소로 재빠르게 얼리고, 분석 전까지는 -80℃에서 보관되었다. 횡단부분(10 μm thick)은 20℃상에서 크라이오스태트(cryostat; CM1850, Leica, Germany) 기계로 준비되었고, 근섬유형 식별 분석을 위해 타입 I, IIa와 IIb 섬유를 프리인큐베이션(acid preincubation, pH 4.35)을 처리한 액토미오신(actomyosin) ATPase 방법으로 염색하여 분류하였다. 모든 샘플은 CCD 카메라(charge-coupled device color camera; IK-642K, Toshiba, Japan)와 이미지 분석 시스템(the image analysis system; Image-Pro Plus, Media Cybernetics, USA) 장치를 이용하여 근섬유 특성이 분석되었다.
2) 육질 분석
근육의 pH는 사후 45분에 스피어-형 전극(spear-type electrode)의 사용으로 등뼈 13번/14번 부분에서 측정되었다. 육색 명도(lightness)는 색도계(chromameter; CR-300, Minolta Camera Co., Japan)를 사용하여 등심근의 사후 45분경에 측정하였다. 유리육즙량(drip loss)은 2℃에서 48시간 동안 플라스틱 백에서 표면에 있는 근육 샘플의 양의 차이를 측정하는 방법으로 분석되었다 (Honikel, K. O. (1987). Martinus Nijhoff, In P. V. Tarrant, G. Eikelenboom, & G. Monin (Eds.): 129142). 결과는 하기 표 12에 나타내었다.
3) 유전자형과 형질과의 연관성 분석
공시돈 451두에 대해 본 발명의 SNP에 따른 유전자형과 근섬유특성 및 육질형질과의 연관성분석을 실시했다. 통계분석 프로그램으로는 SAS 9.2 package에서 제공되는 SAS/GLM procedure를 이용하였고, 통계분석 모델에서 품종, 성별, 계절 및 품종-유전자형 상호작용을 고정효과로 분석하였으며, 각 유전자형의 최소제곱평균(Least Squares Means)을 구하여 유의차를 평가였다.
본 발명에서 Berkshire, Landrace, Yorkshire의 3개 품종으로 구성된 공시돈에 대해 SNP의 유전자형이 451두가 분석되었으며, 유전자형 및 대립유전자 빈도는 하기 표 11과 같다. 세 품종 모두에서 AA 유전자형의 빈도가 다른 유전자형들보다 높게 나타났으며, 이에 따라 대립유전자 빈도에서도 A allele이 G allele 보다 높게 나타났다. 따라서, 공시돈 전체에서 AA 유전자빈도는 0.50로, A allele의 빈도는 0.63으로 나타났다.
Figure 112011075513861-pat00011
Figure 112011075513861-pat00012
상기 표 12의 결과에서, 근섬유특성 중 근섬유타입별 수조성(Fiber number composition) 및 단면적조성(Fibers area composition)에서 유전자형간 차이가 나타났다. 근섬유수조성에서 GA 유전자형은 GG 유전자형보다 근섬유 Type IIb가 적 나타났다 (P = 0.0997). AA 유전자형은 근섬유수조성에서 GG 유전자형과 차이가 없었지만, 근섬유면적 조성에서는 GG 유전자형보다 Type IIa가 많고 (P = 0.0644), Type IIb (P = 0.0687)가 적게 나타났다. 육질형질에서는 AA 유전자형이 다른 두 유전자형에 비해 Driploss (P = 0.0005)과 Lightness (P = 0.0288)가 낮게 나타났으며, 이를 통해 AA 유전자형이 다른 두 유전자형에 비해 육질이 우수한 것으로 판단할 수 있다. 기존 연구에 따르면 근섬유특성 중 육질에 주요하게 영향을 미치는 것은 근섬유 수 및 면적의 조성으로 보고되었으며 (Klont, R. E. et al. 1998. Meat Science 49: S219-S229), 특히 호기적 대사를 하는 근섬유 Type I이 높고, 혐기적 대사를 하는 근섬유 Type IIb가 낮을 경우 육질에 긍정적으로 영향을 미치는 것으로 알려져 있다. 본 발명에서도 같은 결과를 확인하였으며 이는 본 발명의 SNP에 따른 세 가지 유전자형 중에서 AA 유전자형이 근섬유 Type IIb 조성이 낮게 나타났고, 그 결과 향상된 육질특성을 나타내고 있는 것을 말한다.
따라서 근육 특이적으로 발현하여, 근육분화 및 발달에 주요한 역할을 하는 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에 존재하는 본 발명의 SNP는 실제로 근섬유 특성에 관여하고 있으며, 최종적으로 육질향상에 영향을 미치는 기능을 확인하였으며, 관련 DNA 표지인자로서의 효용성을 검증하였다. 또한 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서 발견한 다른 SNP들도, 상기 표 12에서 분석된 SNP와 완전연관되어 있음이 확인되었으므로(도 3) 상기 SNP와 동일한 효과를 나타냄을 확인할 수 있다.
이상으로 본 발명의 특정한 부분을 상세히 기술하였으나, 당업계의 통상의 지식을 가진 자에게 있어 이러한 구체적인 기술은 단지 바람직한 구현예일 뿐이며, 이에 본 발명의 범위가 제한되는 것이 아닌 점은 명백하다.　따라서 본 발명의 실질적인 범위는 첨부된 청구항과 그의 균등물에 의하여 정의된다고 할 것이다.
서열목록 전자파일 첨부

Claims (9)

  1. 서열번호 1의 염기서열에서, 207번째 T 염기, 299번째 T 염기, 300번째 G 염기, 또는 420번째 G 염기를 포함하는 서열번호 1 내의 15 내지 700개의 연속서열로 구성되는 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서의 육질 향상 여부 관련 SNP(Single nucleotide polymorphism)를 탐색하기 위한 돼지의 육질 향상 여부 확인용 DNA 표지인자.
  2. 제1항에 있어서, 상기 DNA 표지인자는 돼지의 근육 내 근섬유 수 및 단면적 조성 중 근섬유 타입 IIa의 비율을 증가시키고, 근섬유 타입 IIb의 비율을 감소시키며, 육질 관련 형질인 유리육즙량(drip loss) 또는 육색 명도(lightness)를 감소시킴으로써 육질을 향상시키는 것과 관련된 것임을 특징으로 하는 DNA 표지인자.
  3. 서열번호 2와 서열번호 3으로 표시된 올리고뉴클레오티드로 구성되는, 서열번호 1의 염기서열에서 제한효소 PstI 위치인 207번째 염기와 서열번호 1의 염기서열에서 제한효소 SacII 위치인 420번째 염기를 포함하는 부위를 증폭시켜 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서의 육질 향상 여부 관련 SNP(Single nucleotide polymorphism)를 탐색하기 위한 PCR용 프라이머 세트.
  4. 제3항 기재의 프라이머 세트와, PCR 반응혼합물, 및 RFLP 분석용 제한효소인 PstI 또는 SacII를 포함하는 돼지의 육질 향상 여부 관련 SNP 분석용 키트.
  5. 서열번호 5와 서열번호 6으로 표시된 올리고뉴클레오티드로 구성되는, 서열번호 1의 염기서열에서 299번째 또는 300번째 위치의 염기구성을 확인하여 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서의 돼지의 육질 향상 여부 관련 SNP를 탐색하기 위한 PCR용 프라이머 세트.
  6. 제5항 기재의 프라이머 세트에 의해 증폭된 서열번호 4로 표시되는 올리고뉴클레오티드로 구성되는 DNA 표지인자에 상보적으로 결합하는 프로브를 포함하는, 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서의 돼지의 육질 향상 여부 관련 SNP 분석용 키트.
  7. 서열번호 1의 염기서열에서 207번째, 299번째, 300번째, 및 420번째 자리로 이루어진 군에서 선택되는, 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서의 하나 이상의 SNP를 이용하여 돼지의 육질 향상 여부를 확인하는 방법.
  8. 하기 단계들을 포함하는, 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서의 육질 향상 여부 관련 SNP(Single nucleotide polymorphism)를 탐색하여 돼지의 육질 향상 여부를 확인하는 방법:
    a) 돼지로부터 게놈 DNA(genomic DNA)를 분리하는 단계;
    b) 상기 a)단계의 DNA를 주형으로 하여 서열번호 1의 207번째, 299번째, 300번째, 또는 420번째 염기를 포함하는 특정 부위를 증폭시키는 단계;
    c) 상기 b)단계에서 증폭된 DNA를 제한효소 PstI 혹은 SacII로 처리하는 단계; 및
    d) 상기 c)단계에서 얻어진 유전자 단편들에서 다형성(RFLP; restriction fragment length polymorphism)을 비교하는 단계.
  9. 하기 단계들을 포함하는, 돼지 마이크로 RNA-206 전구체 주위 영역에서의 육질 향상 여부 관련 SNP(Single nucleotide polymorphism)를 탐색하여 돼지의 육질 향상 여부를 확인하는 방법:
    a) 돼지로부터 게놈 DNA를 분리하는 단계;
    b) 상기 a)단계의 DNA를 주형으로 하여 서열번호 1의 207번째, 299번째, 300번째, 또는 420번째 염기를 포함하는 특정 부위를 증폭시키는 단계;
    c) 상기 b)단계에서 증폭된 DNA의 염기서열을 분석하는 단계; 및
    d) 상기 c)단계의 염기서열 분석 결과로부터 서열번호 1의 염기서열의 207번째 T 염기가 C 염기로 치환, 서열번호 1의 염기서열의 299번째 T 염기가 C 염기로, 서열번호 1의 염기서열의 300번째 G 염기가 A로, 또는 서열번호 1의 염기서열의 420번째 G 염기가 A로 치환된 여부를 확인하는 단계.
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Eveline M. Ibeagha-Awemu 등. Mammalian Genome. Vol. 19, No. 9, 페이지 591-617 (2008.) *
M. Georges 등. Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. Vol. 71, 페이지 343-350 (2006.) *

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