KR101090850B1 - Ｈｓｃ７０ 저해제로서의 이미다졸 유도체와 그 약학적 조성물 - Google Patents
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Abstract
본 발명은 세포사멸을 유도하는 화합물을 포함하는 약학적 조성물, 암세포의 세포사멸을 유도하는 방법, 림프구의 활성을 억제하는 방법, 변형된 돌연변이 단백질의 세포 내 수송을 향상하는 방법 및 세포사멸 유도물질을 동정하는 스크리닝 방법에 관한 것으로서, 보다 상세하게는, 암과 면역 관련 질환을 포함하는 다양한 질환을 치료하기 위해 이미다졸 유도체를 세포사멸을 유도하는 활성 성분으로서 포함하는 약학적 조성물, 암세포를 상기 약학적 조성물로 처리하여 세포사멸을 유도하는 방법, 림프구를 상기 약학적 조성물로 처리하여 인간 림프구를 비활성화 시키는 방법, 돌연변이 단백질을 함유하는 세포를 상기 약학적 조성물로 처리하여 변형된 돌이변이 단백질의 세포내 수송을 향상시키는 방법, 및 세포를 상기 약학적 조성물과 함께 배양하고 검출하여 세포사멸을 유도하기 위한 추가적인 유용한 화합물을 동정하는 스크리닝 방법에 관한 것이다.
세포사멸, 이미다졸 유도체, 암세포, 낭포성 섬유증
Description
본 발명은 세포사멸(apoptosis)을 유도하는 신규 화합물과 상기 화합물을 포함하는 약학적 조성물에 관한 것이다. 보다 상세하게는, 본 발명은 세포사멸을 유도하는 Hsc70(chaperone heat shock cognate 70) 저해제로서의 이미다졸 구조체를 함유한 화합물에 관한 것이다. 본 발명의 다른 구체예들에서는, 이미다졸 유도체를 포함하는 약학적 조성물이 제공된다. 또한, 본 발명은 다양한 의학적 기능장애, 질병, 특히 암, 면역 관련 질환 및 낭포성 섬유증(cystic fibrosis)을 치료하기 위한 치료제로서 상기 화합물을 사용하는 것에 관한 것이다.
세포사멸은 다세포 생명체의 정상적인 발달 및 기능에 중요한 과정이다. 생명체에서 손상된 세포나 불필요한 세포는 미토콘드리아에서 일어나는 내적인 세포사멸 과정(intrinsic apoptotic pathway)과, 사멸 리간드(death ligand, 예: 파스(Fas) 리간드)와 그에 상응하는 수용체가 결합하여 일어나는 외적인 세포사멸 과정(extrinsic apoptotic pathway)을 통해 제거된다(Cell, 2003, 112, 481-490, Science 1998, 281, 1305-1308, Cell, 1999, 96, 245-254). 생리학적 세포사멸은 다양한 정상적인 과정에서 중요한 역할을 수행하지만, 비정상적인 세포사멸은 인간에게 다양한 질병을 일으킨다(Science 1995, 267, 1456-1462, Nat. Rev. Drug Dis. 2002, 1, 111-121, Nat. Rev. MoI. Cell. Biol. 2000, 1, 120-129). 예를 들면, 세포사멸이 잘 일어나지 않으면 인간은 암에 걸리게 되거나, 자가면역세포(autoreactive lymphocytes)를 제거하지 못하게 된다. 반대로, 과도한 세포사멸이 일어나면 퇴행성 신경질환이나 심장 관련 질환이 발생한다. 세포사멸은 앞서 언급한 인간의 다양한 질환과 관련이 있으므로, 세포사멸 연구는 생물의학적인 측면에서 중요한 연구로 인식되어 왔다. 세포사멸을 유도하거나 저해하는 소유기 분자(small molecules)는 세포사멸 관련 단백질의 작용 메카니즘을 이해하는데 매우 유용하다. 그리고, 이러한 소유기 분자는 자가 면역 질환이나 암과 같은 세포사멸 관련 질환 치료에 새로운 치료제로 이용될 수 있다(Science 1995, 267, 1456-1462, Nat. Rev. Drug Dis. 2002, 1, 111-121, Nat. Rev. MoI. Cell. Biol. 2000, 1, 120-129, Chem. Biol. 2002, 9, 1059-1072, Nat. Chem. Biol. 2006, 2, 543-550).
Bcl-2(B cell lymphoma-2) 및 IAP(inhibitor of apoptosis protein)를 포함하는 다양한 단백질들은 세포사멸 과정에 관련이 있다. 특히 아스파르테이트 특이성을 가진 캐스패이즈(apartate-specific caspases)는 세포사멸에서 중요한 집행자 효소(executioner enzymes)이다(Science 1998, 281, 1312-1316). 흥미롭게도, 샤페론 열 충격 동족 70 (chaperone heat shock cognate 70, Hsc70)은 Apaf-1과 같은 세포사멸 유도 인자와 직접적으로 결합함으로써 세포사멸을 억제시킨다(EMBO J. 1997, 16, 6209-6216, Nat. Cell. Biol. 2001, 3, 839-843). Hsc70은 새로이 합성되는 세포질 단백질의 접힘, 손상된 단백질의 재접힘, 잘못 접힌 단백질의 분해 및 세포질 단백질의 특정기관으로의 운반과 같은 세포학적 과정에서 다양한 역할을 수 행하는 것으로 알려져 있다(Nature 1996, 381, 571-579, Cell 1998, 92, 351-366, Science 1999, 286, 1888-1893). 세포사멸을 야기시키는 Hsc70의 억제제는 항암제 치료제(Gene Dev. 2005, 19, 570-582, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2000, 97, 7871-7876)로 알려져 있고 면역억제제(Pediatr Transplant. 2004, 8, 594-599, J. Clin. Pharmacol. 1998, 38, 981-993)로 사용될 수 있다. 그러므로, Hsc70를 저해하여 세포사멸을 유도시키는 소유기 분자는 세포사멸 관련 단백질의 작용 메카니즘을 이해하기 위한 기초 생물학적 연구에 이용되거나, 세포사멸과 관련된 질환, 특히 암과 면역 관련 질환을 치료하기 위한 새로운 치료제로 이용될 수 있다.
발명의 개시
기술적 문제
그러므로 세포사멸을 유도시키는 소유기 분자와 이들의 약학적 조성물을 이용하여 세포사멸을 유도시키는 방법을 개발할 필요가 있다. 개발된 소유기 분자는 세포사멸 조절 단백질의 분자수준에서의 작용 메카니즘을 규명하는데 귀중한 정보를 제공할 뿐만 아니라, 궁극적으로, 세포사멸 관련 질환의 새로운 치료제로써 이용될 수 있다. 현재의 발명은 이들 요구와 그리고 또 다른 요구들을 충족시킨다.
기술적 해결
본 발명은 세포사멸을 유도시키는 신규 화합물과 약학적 조성물, 그리고 방법에 관한 것이다. 따라서, 상기 화합물과 조성물은 세포사멸을 야기시킴으로써 암이나 면역 관련 질환을 치료하는데 사용될 수 있다.
본 발명의 첫 번째 목적은 세포사멸을 유도시킬 수 있는 신규화합물을 제공하는 것이다.
본 발명의 두 번째 목적은 암, 면역 관련 질환, 낭포성 섬유증(cystic fibrosis)과 같은 다양한 질환의 치료를 위해 세포사멸을 유도시킬 수 있는 유용한 약학적 조성물을 제공하는 것이다. 상기 화합물은 약학적으로 수용 가능한 모든 이성질체, 염 형태(salts), 수화 형태(hydrates), 용매화 형태(solvates) 그리고 전약제(prodrugs)를 포함한다.
본 발명의 세 번째 목적은 세포사멸을 유도하는 방법을 제공하는 것이다. 상기 화합물을 인간 암세포와 함께 배양하면 암세포의 세포사멸이 진행된다.
본 발명의 네 번째 목적은 림프구의 활성을 억제시키는 방법을 제공하는 것이다. 상기 화합물을 인간 림프구와 함께 배양하면, 이 화합물로 인해 림프구의 비활성화가 일어난다.
본 발명의 다섯 번째 목적은 낭포성 섬유증 치료 방법을 제공하는 것이다. 상기 화합물을 변형된 돌연변이 낭포성 섬유증 트랜스멤브레인 전도성 조절 단백질(cystic fibrosis transmembrane conductance regulator, CFTR)이 발현되는 세포와 함께 배양하면, 돌연변이 단백질은 상기 화합물에 의해 원형질막(plasma membrane)으로 이동된다.
본 발명의 여섯 번째 목적은 세포사멸을 유도시킬 수 있는 또 다른 유용한 화합물을 동정하기 위한 스크리닝 방법을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 구체적인 내용은 다음의 설명에서부터 명백해질 것이다.
유용한 효과들
본 발명의 화합물이나 약학적 조성물을 이용하면 세포사멸을 유도시켜 암이나 면역 관련 질환을 치료할 수 있다.
도면의 간단한 설명
도 1은 아폽토졸(apoptozole) 1-4 의 구조.
도 2는 아폽토졸의 인간 암세포에 대한 세포사멸 효과.
암세포를 다양한 농도의 아폽토졸 1과 6시간 동안 배양시킨 후, CyQuant kit를 이용하여 세포의 개수를 세어 세포사멸의 정도를 조사하였다.
(A) 난소암 세포 (SK-OV-3)
(B) 대장암 세포 (HCT-15)
(C) 폐암세포 (A549)
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도 3은 아폽토졸 1에 의해 변형된 △F508-CFTR의 세포 내 수송.
(A) 원형질막에 정상 CFTR을 발현하는 Capan-1 세포는 CFTR 항체를 처리하였을 때 세포막에서 원형 형태의 강한 형광을 보여준다.
(B) △F508-CFTR이 발현되는 CFPAC-1 세포는 프로테아좀(proteasome)에서 Hsc70에 의해 △F508-CFTR이 분해되므로, CFTR 항체를 처리하였을 때 세포막에 형광 신호가 거의 나타나지 않는다.
(C) 세포사멸을 유도시키지 않는 농도의 아폽토졸 1 (100 nM)로 24시간 처리한 CFPAC-1 세포에서는 Hsc70에 의한 △F508-CFTR 분해가 억제된다(왼쪽: 현미경 이미지, 오른쪽: 형광 이미지, 면역염색). 세포표면의 CFTR을 검출하기 위해 비투과 면역염색법을 사용하였다.
본 발명을 실시하기 위한 최량의 형태
본 발명은 다음의 구조와 세포사멸 유도 활성을 가지는 신규 이미다졸 유도체를 제공하는 것이다.
또한, 본 발명은 세포사멸을 유도시키기 위한 활성성분으로써 일반식 (I)의 이미다졸 유도체를 포함하는 약학적 조성물을 제공하는 것이다.
일반식 (I)
여기서, R1은 수소, C0-4 알킬아릴, C1-6 알킬, C3-8 시클로알킬 또는 -[(CH2)2-O]0-3-(CH2)2-NH2를 포함하지만, 이들에 한정되는 것은 아니며;
R2는 알킬, C3-8 시클로알킬, C0-4 알킬아릴 또는 알케닐아릴을 포함하지만, 이들에 한정되는 것은 아니며;
R3는 알킬, C3-8 시클로알킬, C0-4 알킬아릴 또는 알케닐아릴을 포함하지만, 이들에 한정되는 것은 아니며;
R4는 알킬, C3-8 시클로알킬, C0-4 알킬아릴 또는 알케닐아릴을 포함하지만, 이들에 한정되는 것은 아니다.
바람직한 화합물들은 R1-R4 기가 여기에 한정되지 않지만 다음을 포함하는 작용기인 유도체들이다.
R1 =
R2 =
R3 - R4 =
본 발명의 더욱 바람직한 화합물들은 하기의 화합물들이지만, 이들에 한정되는 것은 아니다.
또한 본 발명은 그것의 약학적으로 수용 가능한 이성질체, 염형태, 수화형태, 용매화 형태 및 전약제를 제공하는 것이다.
또한 본 발명은 암 치료를 위한 활성 성분으로써 상기 화합물을 포함하는 약학적 조성물을 제공하는 것이다.
또한 본 발명은 암세포를 본 발명의 상기 화합물로 처리하여 암세포를 사멸시키는 세포사멸 유도 방법을 제공하는 것이다. 암세포의 세포사멸을 유도하는 방법은 암세포의 세포사멸을 검출하는 단계를 더 포함하는 것이 바람직하고, 암세포의 세포사멸을 검출하는 것은 암세포의 원형질막 위의 인지질 (phospholipid)의 비대칭 손실을 측정하는 것이 더욱 바람직하다.
또한 본 발명은 림프구 활성 억제를 위한 활성 성분으로써 상기 화합물을 포함한 약학적 조성물을 제공하는 것이다.
또한 본 발명은 림프구를 본 발명의 화합물로 처리하여 림프구를 비활성화시켜서 림프구의 비활성화 방법을 제공하는 것이다.
또한 본 발명은 낭포성 섬유증 치료를 위한 활성 성분으로써 상기 화합물을 포함하는 약학적 조성물을 제공하는 것이다.
또한 본 발명은 돌연변이 단백질을 함유하는 세포를 본 발명의 화합물로 처리하여 변형 돌연변이 단백질을 세포막으로 이동시켜서 돌연변이 단백질의 세포 내 수송을 증가시키는 방법을 제공하는 것이다.
또한 본 발명은 세포사멸을 유도하는데 유용한 추가적인 화합물들을 동정하기 위한 스크리닝 방법을 제공하는 것으로, 세포들은 본 발명의 화합물과 배양되어 검출된다.
아폽토졸들의 세포 내 표적 단백질로서의 Hsc70
본 발명의 아폽토졸들의 작용 메카니즘을 이해하면 세포사멸 과정을 이해하는데 귀중한 정보를 줄 수 있으며, 또한 비정상적인 세포사멸로 인해 발생하는 질병을 치료하는데 유용한 다른 의약제 개발에 도움을 줄 수 있다. 세포사멸을 일으키는 아폽토졸들의 작용 메카니즘을 조사하기 위해 아폽토졸이 결합된 아가로즈 (agarose)를 P19 세포에서 추출한 단백질과 함께 배양하였으며, 아폽토졸에 결합된 단백질들은 SDS/PAGE로 분석되었다. 친화도 크로마토그래피(affinity chromatography) 후 70 kDa 근처에서 하나의 두꺼운 밴드가 관찰되었다. 단백질 추출물을 경쟁적 저해제로써 아폽토졸 (0.25, 0.50 mM)로 선배양 하였을 때, 아폽토졸 메트릭스에 70 kDa 단백질이 결합되지 않았으며, 이는 이 단백질에 대한 아폽토졸의 특이성을 보여 주는 것이다. 이 밴드는 나노 LC-MS/MS에 의해 Hsc70으로 밝혀졌다. Hsc70이 아폽토졸의 표적 단백질임을 확인하기 위하여, 외부 아폽토졸의 존재하에 아폽토졸 메트릭스에 결합하는 단백질을 Hsc70 항체를 이용하여 분석하였다. 외부 경쟁자가 있을 경우 Hsc70는 친화도 크로마토그래피 동안 아폽토졸에 결합하지 않았다. 이 결과를 더 확인하기 위하여, ~40 - 50% 정도 Hsc70 단백질과 mRNA의 발현을 감소시키는 소듐 4-페닐부타레이트 (sodium 4-phenylbutyrate, 4-PBA, 0-1.5 mM)를 P19 세포와 함께 배양시킨 후, 이 세포에서 얻어진 단백질 추출물을 아폽토졸 메트릭스와 반응시켜 결합된 단백질을 Hsc70 항체를 이용하여 분석하였다. P19 세포를 4-PBA로 처리하면 세포내 Hsc70 발현 양이 감소하기 때문에 아폽토졸 메트릭스에 결합한 Hsc70의 양은 4-PBA의 농도가 증가할수록 감소되었다.
표적 단백질인 Hsc70은 세포 내에서 새로 합성된 단백질의 접힘(folding), 손상을 입은 단백질의 재접힘(refolding), 잘못 접힌 단백질의 분해, 세포질 단백질의 특정 조직으로의 이동 및 소낭(vesicle)에서 클래스린(clathrin)을 제거하는 것 같은 다양하고 중요한 역할을 수행한다. 이 단백질은 세포사멸 억제 단백질이기 때문에 Hsc70은 또한 암 유발과 관계가 있는 것으로 알려져 있다. 따라서 이 단백질의 활성을 저해하면 세포사멸을 일으키기 때문에 이 단백질의 저해제 개발은 항암제 개발에 유용하다. 더욱이, Hsc70은 림프구 활성을 수반하는 NF-kB 같은 전사인자의 핵 수송을 중개하는 샤페론 단백질이다. 제어되지 않는 NF-kB의 활성화는 동종 이식 거부(allograft rejection), 류마티스 관절염과 기관지 천식 같은 많은 면역, 염증 질환을 유발하는 것으로 알려져 있다. 이러한 결과로, Hsc70의 기능을 억제할 수 있는 소유기 분자는 이식거부를 막는 면역억제제와 NF-kB의 활성을 부분적으로 억제함으로써 자가면역질환(autoimmune diseases) 치료제로 이용될 수 있다. 또한 Hsc70은 소포체에서 비정상으로 접힌 단백질의 분해를 돕는 것으로 알려져 있다. 낭포성 섬유증은 소포체 내의 돌연변이 CFTR이 분해되어 염소이온 채널의 역할을 하지 못하므로써 일어난다. CFTR의 가장 흔한 돌연변이는 508번 위치의 페닐알라닌이 제거된 CFTR (ΔF508-CFTR)이다. 이 돌연변이 CFTR은 비정상으로 접힌 형태로 발현되며 소포체에서 Hsc70과 결합한 채 유비퀴틴-프로테아좀 경로를 통해 분해된다. 이로 인해 세포막에서 염소 이온 채널로 작동하는 CFTR이 없어지게 되고, 따라서 많은 조직에서 비정상적인 염소 이온 수송을 유발한다. 돌연변이 CFTR과 Hsc70의 결합을 저해시키면 돌연변이 CFTR이 소포체에서 분해되지 않고 소포체에서 빠져 나오는 것으로 알려져 있다. 따라서 Hsc70의 기능을 억제함으로써 ΔF508-CFTR을 세포막으로 이동시키도록 하는 소유기 분자는 낭포성 섬유증의 치료제로서 사용될 수 있다.
아폽토졸을 이용하여 암세포사멸을 유도시키는 방법
본 발명의 하나의 구체예는 암 치료를 위한 암세포사멸을 유도시키는 방법을 제공한다. 하나의 예시적 구체예에서, 암세포를 아폽토졸 1-4를 포함하는 약학적 조성물과 함께 배양하면, 암세포의 세포사멸이 일어난다. 인간 암세포(난소암세포; SK-OV-3, 대장암세포; HCT- 15, 폐암세포; A549)를 다양한 농도의 일반식 I의 화합물(또는 그것의 조성물)과 함께 배양하면, 암세포가 사멸하게 된다. 아폽토졸 1 - 4과 같은 일반식 I의 화합물의 농도는 암세포의 사멸을 유도하도록 조정될 수 있다. 전형적으로는, 암세포를 아폽토졸 1-4 0.05 μM 와 1.0 μM 사이 농도에서 배양한다.
대장암세포(HCT-15)와 난소암세포(SK-OV-3)는 10% 피탈 보바인 세룸(fetal bovine serum, FBS)이 들어있는 RPMI 1640의 배양 배지에서 배양한다. 폐암세포(A549)는 10% FBS이 첨가된 Ham's F12K 배양 배지에서 배양한다. 모든 배양 배지에는 4 mM L-글루타민, 100 units/mL 페니실린 및 100 ㎍/ml 스트렙토마이신이 함유되어 있다. 암세포들은 성장에 필요한 최적의 조건에서 배양된다. 이 같은 조건은 공 내 5% CO2, 37℃의 온도 조건을 포함한다. 세포는 본 발명의 방법에 따라 플라스틱 접시, 플라스크, 또는 롤러 병에서 배양된다. 적당한 배양 용기는 다중-용기 플레이트, 페트리디쉬, 조직 배양 관, 플라스크, 롤러 병 등을 포함한다.
세포사멸은 FITC-아넥신 V (FITC-annexin V, 2 ㎍/mL)와 프로피듐 아이오다이드(propidium iodide, PI, 5 ㎍/mL)의 조합을 이용하여 측정하였다(Cytometry 1999, 37, 197-204). 세포사멸 과정은 비교적 빠르며(2-4 시간), 원형질막(plasma membrane) 상에서의 인지질의 비대칭의 소멸로, 포스파티딜세린이 세포표면으로 노출되는 것을 포함한다. 세포표면에 노출된 포스파티딜세린은 FITC-아넥신 V로 검출된다. PI는 세포사멸보다 더 막이 파괴된 세포(늦은 세포사멸이나 세포괴사 과정)를 검출하기 위해 사용한다. 따라서, P19 세포 내에 아넥신 V에는 염색되고, PI에는 염색되지 않는 화합물을 선택한다. 세포증식은 CyQuant 세포 증식 분석 키트(Invitrogen)를 사용하여 측정한다.
세포사멸 유도 화합물 스크리닝 방법
본 발명의 또 다른 구체예는 세포사멸을 유도하는 추가적인 화합물을 동정하기 위한 스크리닝 방법을 제공한다. 세포를 세포사멸을 유도하는 잠재력을 가진 시험 화합물과 함께 배양한다. 세포사멸은 FITC-아넥신 V (2 ㎍/mL)와 PI (5 ㎍/ mL)의 조합을 이용하여 검출할 수 있고(Cytometry 1999, 37, 197-204), 세포 수는 CyQuant 세포 증식 분석 키트를 사용하여 계수한다. 이 실험을 통해 세포사멸을 유도하는 화합물을 “선도물질(hit)”로 한다.
좀 더 바람직한 구체예에서, 고속 약물 스크리닝(high-throughput screening) 방법은 많은 수의 잠재적인 생리활성 화합물을 포함하는 화합물 라이브러리를 제공하는 것을 포함한다. 그 후 조합된 화합물 라이브러리는 세포사멸을 유도하는 활성을 나타내는 이들 라이브러리 멤버를 동정하기 위하여 하나 또는 그 이상의 분석을 통해 스크리닝 한다. 이렇게 하여 동정된 화합물은 종래의 선도 화합물이 되거나, 잠재적인 또는 실질적인 치료제로 사용될 수 있다.
아폽토졸에 의한 인간 림프구의 비활성화
본 발명의 또 다른 구체예는 면역 관련 질병 치료를 위해 인간 림프구를 비활성화시키는 방법을 제공하는 것이다. 이 구체예에서는 림프구를 일반식 I의(또는 그것으로 구성된) 화합물과 함께 배양하면, 림프구가 비활성화 된다. Hsc70은 아폽토졸의 표적 단백질로 림프구 활성에 관련된 NF-κB와 같은 전사인자를 세포핵으로 이동시키는 샤페론 단백질이다. NF-κB의 활성을 정상적으로 조절하지 못하는 경우 동종 이식 거부, 류머티즘 관절염 그리고 기관지 천식과 같은 많은 면역과 염증 질환이 일어나는 것으로 알려져 있다(Pediatr. Transplant. 2004, 8, 594-599, J. Clin. Pharmacol. 1998, 38, 981-993). 결과적으로, Hsc70의 기능을 억제하는 소유기 분자는 NF-KB 활성을 부분적으로 억제하여 이식 거부 예방 및 자가 면역 질환 치료를 위한 면역억제제로 사용될 수 있다.
림프구가 활성되면 세포 분극과 세포 증식 동안 후방 극에 배다리(uropod)가 형성된다. Jurkat 림프구를 다양한 농도의 아폽토졸을 포함시켜 1시간 동안 배양하였고, 이렇게 처리된 세포를 1시간 동안 TNF-α로 처리하면 활성화된다. 아폽토졸은 TNF-α만 처리한 세포와 비교 했을 경우 TNF-α에 의해 유도된 배다리 형성을 45% 감소시킨다. 아폽토졸은 또한 TNF-α에 의해 유도된 T-세포 증식을 억제시킨다(100 nM 아폽토졸로 65% 증식을 감소). 더욱이, 아폽토졸은 파이토헤마글루티닌(PHA)으로 유도된 림프구의 동종형 세포응집(homotypic aggregation)을 억제시킨다. Jurkat 림프구를 다양한 농도의 아폽토졸로 1시간 동안 처리한 후, 동종형 세포응집을 유도시키기 위해 파이토헤마글루티닌을 처리하였다. 아폽토졸은 림프구 응집(100 nM 아폽토졸에 의하여 76% 감소)을 억제시킨다.
아폽토졸에 의한 돌연변이 CFTR의 원형질막으로 이동
본 발명의 또 다른 구체예는 낭포성 섬유증 치료를 위해 돌연변이 CFTR의 원형질막으로의 이동 방법을 제공한다. Hsc70은 소포체 안에서 잘못 접힌 단백질을 분해시키는데 중요한 역할을 한다(Nature 1996, 381, 571-579, Cell 1998, 92, 351-366, Science 1999, 286, 1888-1893). 낭포성 섬유증은 소포체에서 만들어지는 돌연변이 CFTR이 제거되어 생기는 질환이다. CFTR의 가장 흔한 돌연변이는 508번째 페닐알라닌이 없는 △F508-CFRT이다. 이 돌연변이 단백질은 잘못 접힌 형태로 발현되는데, 이 단백질은 소포체에서 Hsc70와 결합한 후 유비퀴틴-프로테아좀 경로를 통해 분해된다. 이로 인해 원형질막에 CFTR 염소 이온 채널이 없게 되어 많은 조직에서 비정상적인 염소 이온 수송이 일어난다. Hsc70과 돌연변이 CFTR의 결합을 저해하면 돌연변이 CFTR이 소포체에서 빠져 나와 분해되지 않는다는 것이 알려져 있다(Am. J. Physiol. Lung Cell MoI. Physiol. 2001, 281, L43, Am. J. Physiol. Cell Physiol. 2000, 278, C259-C267). 이것은 소유기 분자가 Hsc70의 기능을 억제하면, △F508-CFTR이 원형질막으로 이동하게 하여 낭포성 섬유증의 치료제로 사용될 수 있다는 것을 보여준다. 상기 아폽토졸이 △F508-CFTR을 원형질막으로 수송시킬 수 있는지 조사하기 위해 두 종류의 세포주(Capan-1, CFPAC-1)를 실험에 이용하였다. 비투과성 Capan-1 세포는 세포막에 정상적인 CFTR을 발현한다. 비투과성 CFPAC-1 세포는 돌연변이 △F508-CFTR을 가지는 낭포성 섬유증(CF) 환자에서부터 유래된 췌장관 세포주로서 프로테아좀 과정을 통해 돌연변이 단백질을 분해하기 때문에 세포표면에는 이 단백질이 거의 발현되지 않는다. Capan-1 세포를 CFTR 항체로 면역 염색하면, 세포표면에서 강한 형광이 관찰된다. 반면에, CFPAC-1 세포를 면역 염색하면 돌연변이 CFTR은 세포 내에서 분해되기 때문에 세포표면에는 형광 신호를 거의 보이지 않는다. 그러나, CFPAC-1 세포를 100 nM 아폽토졸(세포사멸이 일어나지 않는 농도)로 24시간 처리하면, 이 화합물이 Hsc70의 기능을 억제시키기 때문에 돌연변이 단백질이 세포 내에서 분해되지 않고 원형질막에 △F508-CFTR이 일부 발현된다.
치료방법
본 발명의 또 다른 실시예는 아폽토졸을 환자에게 투여하여 질환을 치료하는 방법을 제공하는 것이다. 이 실시예에서는 그러한 치료가 필요한 환자에게 일반식 I의 화합물(예를 들면 아폽토졸 화합물 1-4 또는 그것의 조성물)을 투여하면 암세포는 사멸되고, 림프구는 비활성되고, 돌연변이 CFTR은 세포막에서 발현된다.
이하, 본 발명을 아래 실시예를 통하여 보다 상세히 설명하고자 한다. 본 발명의 범위는 이들 실시예에 의해 제한되지 않는다.
실시예 1: 4-2-[3,5-비스(트리플루오로메틸)페닐]-4,5-비스(4-메톡시페닐)이미다졸-1-일-메틸-벤자미드(아폽토졸 1)의 합성
암모늄 아세테이트 (0.6 g, 8 mmol)를 아세트산 (5 mL)과 섞은 후 여기에 3,5-비스(트리플루오로메틸벤즈알데히드(0.3 μL, 1.7 mmol), 4,4’-디메톡시벤질(0.5 g, 1.7 mmol) 및 4-(아미노메틸)벤자미드(0.2 g, 1.3 mmol)를 첨가한다. 100 ℃에서 5시간 동안 교반시킨 후 그 반응 혼합물을 CH2Cl2로 희석시킨다. 유기층 을 물과 염수로 세정하고 무수 MgSO4로 건조 여과 후 감압 농축한다. 얻어진 조생성물(crude product)을 플래쉬 컬럼 크로마토그래피(3:1 - 1:1, hexane/EtOAc)를 이용하여 정제하여 생성물(0.4 mmol, 30% 수득율)을 얻었다: 1H NMR (250 MHz, CD3OD) δ8.82 (s, 2 H), 8.67 (s, 2 H), 8.40 (d, 2 H, J = 10.0), 8.06 (d, 2 H, J = 8.8), 7.90 (d, 2 H, J = 8.1), 7.62-7.58 (m, 4 H), 7.45 (d, 2 H, J = 8.8), 5.91 (s, 2 H), 4.45 (s, 3 H), 4.40 (s, 3 H); 13C NMR (125 MHz, CD3OD) δ171.6, 162.0, 160.5, 145.9, 142.4, 140.1, 134.5, 134.3, 133.7, 133.4, 133.2, 132.5, 130.4, 129.6, 129.4, 127.6, 127.2, 123.7, 123.1, 115.8, 114.8, 55.9, 55.8, 40.5; MALDI-TOF-MS calcd for C33H25F6N3O3 (M+Na)+ 648.18, found 648.18.
실시예 2: N-2-[2-(2-아미노에톡시)에톡시]에틸-4,2-[3,5-비스(트리플루오로메틸)페닐]-4,5-비스(4-메톡시페닐)이미다졸-1-일-메틸벤자미드 (아폽토졸 2)의 합성
암모늄 아세테이트 (0.9 g, 11.9 mmol)를 아세트산 (5 mL)과 섞은 후 여기에 3,5-비스(트리플루오로메틸벤잘데히드 (0.4 μL, 2.6 mmol), 4,4’-디메톡시벤질 (0.7 g, 2.6 mmol) 및 4-(아미노메틸)벤조산 (0.3 g, 2.0 mmol)을 첨가한다. 100 ℃에서 5시간 동안 교반시킨 후 휘발성 물질을 감압 제거한다. 잔류물에 물을 가하여 고체 생성물을 얻는다. 고체 생성물을 여과하여 포집한 후 에테르로 여러 번 세정하여 순수 산(0.6 mmol, 32% 수득율)을 얻었다; 1H NMR (250 MHz, DMSO-d6) δ8.18 (s, 2 H), 8.13 (s, 2 H), 7.79 (d, 2 H, J = 8.2), 7.42 (d, 2 H, J = 8.7), 7.29 (d, 2 H, J = 8.6), 7.02 (d, 2 H, J = 8.6) 6.83 (d, 4 H, J = 8.8), 5.26 (s, 2 H), 4.45 (s, 3 H), 3.78 (s, 3 H); 13C NMR (62.5 MHz, DMSO-d6) δ176.4, 169.3, 167.7, 152.9, 151.5, 147.2, 142.6, 141.8, 140.5, 140.2, 139.9, 139.4, 139.3, 138.0, 137.0, 136.3, 135.5, 134.8, 131.4, 124.3, 123.3, 64.7, 64.6, 24.7; MALDI-TOF-MS calcd for C33H24F6N2O4 (M+Na)+ 649.15, found 649.16.
상기 공정으로부터 얻은 산(50.1 mg, 80 μmol), 1-벤조트리아조일옥시트리스(디메틸아미노)포스포니움 헥사플루오로포스페이트(BOP, 53.0 mg, 120 μmol), 1-히드록시벤조트리아졸 (HOBt, 16.2 mg, 120 μmol) 및 N-에틸모폴린 (NEM, 15.2 mL, 120 μmol)을 DMF (500 μL)에 용해시킨 용액을 아미노에틸화된 왕레진 (Wang resin, 0.04 g, 40 μmol)에 첨가한다. 12시간 동안 진탕한 후, 레진을 DMF로 여러 번 세정한다. 화합물이 결합된 레진을 TFA-TES (90:10)과 1시간 동안 반응시켜 생성물을 떼어낸다. 얻어진 조생성물을 2-100% 아세토니트릴(CH3CN) 수용액에서 90분간 역상-HPLC를 이용하여 정제하였다: 1H NMR (400 MHz, CD3OD) δ8.17 (s. 2 H), 8.07 (s, 2 H), 7.70 (d, 2 H, J = 8.4), 7.40 (d, 2 H, J = 8.8), 7.25 (d, 2 H, J = 8.8), 6.96 (d, 2 H, J = 8.8), 6.81 (d, 2 H, J = 9.2), 5.27 (s, 2 H), 3.80 (s, 3 H), 3.75 (s, 3 H), 3.68-3.63(m, 8 H), 3.54 (t, 2 H, J = 5.6), 3.08 (t, 2 H, J = 5.2); 13C NMR (125 MHz, CD3OD) δ169.6, 162.1, 160.7, 145.6, 141.9, 139.4, 135.1, 133.7, 133.6, 133.5, 133.2, 132.5, 130.5, 129.7, 129.0, 127.3, 126.8, 124.0, 122.7, 115.8, 114.9, 71.5, 71.4, 70.7, 68.0, 55.9, 55.8, 40.8, 40.7; MALDI-TOF-MS calcd for C39H38F6N4O5 (M+Na)+ 779.26, found 779.27.
위의 실시예 1-2에 기술된 방법과 적합한 반응물질과 시약을 이용하여 다음 이미다졸 유도체를 합성하였다:
4-[2-(9H-플루오렌-3-일)-4,5-디페닐이미다졸-1-일-메틸]벤자미드 (아폽토졸 3)과 N-2-[2-(2-아미노에톡시)에톡시]에틸-4-[2-(9H-플루오렌-3-일)-4,5-디페닐이미다졸-1-일-메틸]벤자미드 (아폽토졸 4).
실시예 3: 세포 배양 및 소유기 분자 스크리닝
인간 림프구(human lymphocytes)인 Jurkat 세포는 5% FBS가 보충된 RPMI 1640 배지, 인간 대장암세포인 HCT-15와 난소암세포인 SV-OV-3는 10% FBS가 보충된 RPMI 1640 배지, 인간 폐암세포인 A549는 10% FBS가 보충된 Ham’s F12K 배지에서 배양한다. 모든 배양 배지에는 4 mM L-글루타민, 100 units/mL의 페닐실린, 및 100 μg/mL의 스트렙토마이신이 함유되어 있다. 모든 세포는 5% CO2와 37℃에서 배양한다.
소유기 분자 스크리닝을 위해, 이미다졸 유도체는 96 웰 플레이트에서 스크린되며, 이 때 한쪽 플레이트는 세포사멸이 진행되는 동안 포스파티딜세린이 세포표면에 노출되는 것(세포막을 표지하는 FITC-아넥신 V를 이용)을 측정하고, 다른 플레이트는 세포막 투과성(세포핵을 표지하는 PI를 이용)을 측정한다. 각각의 화합물을 최종농도 500 nM에서 5×104 개의 P19 세포를 함유하는 두개의 조직배양 웰 플레이트에 넣는다. 양성대조군으로 두 개의 웰 플레이트에 500 μM 과산화수소를 넣고 3시간 동안 배양해 세포사멸을 유도시킨다. 0.1% DMSO를 처리한 세포를 음성대조군으로 사용하였다. 각 화합물과 3시간 동안 배양시킨 세포는 PBS로 두 번 세정한다. 배양 세포를 PBS 내의 3% 포름알데히드와 상온에서 10분간 반응시켜 고정시킨 후, 이 고정된 세포를 PBS로 두 번 세정한다. 하나의 96 웰 플레이트에 있는 세포 배양액은 희석 FITC-아넥신 V (2 μg/mL)와 배양하고 두 번째 플레이트의 세포 배양액은 PI (5 μg/mL)로 처리한다. 두 플레이트 모두 어두운 곳에서 5분간 배양한다. 세포 배양액을 PBS로 세 번 세정한 후 형광 마이크로플레이트 리더(SpectraMax GeminiEM, Molcecular Devices)를 사용하여 형광세기를 정량한다. FITC-아넥신 V 신호는 485 nm에서 여기시키고 538 nm에서 방출시켜 읽는다. PI 신호는 544 nm에서 여기시키고 612 nm에서 방출시켜 읽는다. 양성 FITC-아넥신 V와 음성 PI를 보이는 화합물을 세포사멸을 유도하는 “선도물질(hit compound)”로 선택하였다.
실시예 4: 세포증식과 세포생존 분석
세포를 105 cells/mL로 96 웰 플레이트에 넣고 완전 성장 배지에서 48시간 동안 배양시킨다. 이 세포를 아폽토졸 1로 6시간 동안 처리한 다음 화합물이 없는 배지에서 배양한다. 시료로부터 사멸된 세포를 제거하기 위해 트립신화에 의해 세포를 적출한다. 세포증식은 CyQuant 세포증식 분석 키트에 의해 결정하였다. 상기 실시예에서 아폽토졸 1의 농도에 따른 각 암세포(난소암 세포, 대장암 세포, 폐암 세포)의 사멸시험 결과는 도 2에 나타낸 바와 같다.
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실시예 5: 세포막에서 ΔF508-CFTR 발현 관찰
Capan-1과 CFPAC-1 세포를 퍼마녹스 슬라이드(Permanox slides, Fisher Scientific) 상에서 24시간 동안 성장시킨 후 1 mM 4-PBA와 100 nM 아폽토졸 1로 24시간 동안 처리한다. 이 처리된 세포를 따뜻한 PBS로 세 번 세정한다. 세포 표면의 CFTR을 탐지하기 위해, 표준 실험절차에 따라 고정화 용액에서 Triton-X100을 제거한 세포 현탁액에 대해 토끼 유래의 CFTR 다클론항체(1:500, Abcam), 비오틴-접합 항 토끼항체(1:500, Abcam), 텍사스 레드-접합 스트렙타비딘을 이용한 면역염색법을 수행하였다. 슬라이드는 형광 현미경을 이용하여 분석하였다. Capan-1 세포, CFPAC-1 세포 및 100nM 아폽토졸 1로 처리한 CFPAC-1 세포 각각의 현미경 사진은 도 3의 (A), (B), (C)에 나타낸 바와 같다.
Claims (17)
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